Nothing Special   »   [go: up one dir, main page]

JPH05322891A - Method for preventing nonspecific adsorption for immunological measurement - Google Patents

Method for preventing nonspecific adsorption for immunological measurement

Info

Publication number
JPH05322891A
JPH05322891A JP4124976A JP12497692A JPH05322891A JP H05322891 A JPH05322891 A JP H05322891A JP 4124976 A JP4124976 A JP 4124976A JP 12497692 A JP12497692 A JP 12497692A JP H05322891 A JPH05322891 A JP H05322891A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
casein
protein
hydrophobic
hydrophilic
measurement
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP4124976A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Shinichi Yokoyama
伸一 横山
Natsuko Kubo
奈津子 久保
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Arkray Inc
Original Assignee
Kyoto Daiichi Kagaku KK
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kyoto Daiichi Kagaku KK filed Critical Kyoto Daiichi Kagaku KK
Priority to JP4124976A priority Critical patent/JPH05322891A/en
Publication of JPH05322891A publication Critical patent/JPH05322891A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

PURPOSE:To reduce nonspecific adsorption and perform highly reliable and highly sensitive immunological measurement even in a low-concentration range by using a kind of protein in which hydrophobic and hydrophilic areas exist in a separated state as an effective component. CONSTITUTION:At the time of performing immunological measurement, a kind of protein in which hydrophobic and hydrophilic areas exist in a separated state is used as an effective component. The protein used as an effective component has a three-dimensional structure. The principal component of the protein is beta-casein, kappacasein, or their mixture. The beta-casein and kappa-casein can be taken as an example of the protein in which hydrophobic and hydrophilic areas are separated like the amino acid sequence. About a quarter part of beta-casein on its N-terminus side is hydrophilic and the rest is hydrophobic. On the contrary, about a half part of kappa-casein on its C-terminus side is hydrophilic and the remaining half is hydrophobic.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、抗原−抗体反応を利用
する免疫測定において非特異的な吸着を防止する方法に
関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for preventing nonspecific adsorption in an immunoassay utilizing an antigen-antibody reaction.

【0002】[0002]

【従来の技術とその課題】血液、尿等に含まれる物質、
または排水などの環境中に含まれる微量物質等の測定に
免疫測定法が使われている。免疫測定方法は、抗原−抗
体反応の特異的な強い結合性に基づいており、種々の物
質が潜在する試料からでも、目的物質を特異的に感度良
く測定することが可能である。
2. Description of the Related Art Substances contained in blood, urine, etc.,
Alternatively, immunoassays are used to measure trace substances contained in the environment such as wastewater. The immunoassay method is based on the specific strong binding property of the antigen-antibody reaction, and it is possible to specifically and sensitively measure the target substance even from a sample in which various substances are latent.

【0003】測定の信頼性を増し、高感度で測定するた
めには、測定対象物質に起因する抗原−抗体反応からの
特異的なシグナルとそれ以外の非特異的なバックグラウ
ンド・シグナルとを区別しなければならない。それには
特異的なシグナルを減らすことなく、非特異的なバッ
クグラウンド・シグナルをできるだけ小さくするのが望
ましい。
In order to increase the reliability of the measurement and perform the measurement with high sensitivity, a specific signal from the antigen-antibody reaction caused by the substance to be measured is distinguished from other non-specific background signals. Must. It is desirable to minimize nonspecific background signals without reducing specific signals.

【0004】免疫測定では、固相法が多用されている。
固相法では、測定対象物質が抗原のときは抗体を、測定
対象物質が抗体のときには抗原を、もしくは複合対の一
方、例えばアビジン−ビオチン複合対のどちらか一方
(特願平2−335863号参照)またはイムノグロブリ
ン−プロテインA複合対のプロテインA等を固相に固定
化している。なお、以下の説明では、説明を簡潔にする
ため測定対象物質が抗原のときを例にして説明するが、
これによって本発明が限定されるものではない。
The solid phase method is often used in immunoassay.
In the solid phase method, an antibody is used when the substance to be measured is an antigen, an antigen is used when the substance to be measured is an antibody, or one of the complex pairs, for example, either the avidin-biotin complex pair.
(See Japanese Patent Application No. 2-335863) or protein A of immunoglobulin-protein A complex pair is immobilized on a solid phase. In the following description, for the sake of brevity, the case where the measurement target substance is an antigen will be described as an example.
The present invention is not limited to this.

【0005】抗体を固定化した後、非特異的吸着による
バックグラウンド・シグナルを小さくするために、プロ
ッキングと呼ばれる非特異的吸着防止操作を行なう。ブ
ロッキング剤としては牛血清アルブミン(例えば、石川
他編酵素免疫測定法第3版、学書院、1987年)、カ
ゼイン(例えば特開平1−217266号公報)、ゼラチ
ン等がよく使用され、主に物理吸着により固相に結合さ
せて非特異的吸着を少なくしている。これらのブロッキ
ングによっても、マイクロプレートやビーズを固相と
し、通常の測定感度で測定する場合には、実用上ブロッ
キング効果があり免疫測定可能であった。
After immobilizing the antibody, a nonspecific adsorption preventing operation called procking is performed in order to reduce the background signal due to nonspecific adsorption. As a blocking agent, bovine serum albumin (for example, Ishikawa et al., Enzyme Immunoassay 3rd Edition, Gakushoin, 1987), casein (for example, JP-A 1-217266), gelatin, etc. are often used and are mainly physical. Non-specific adsorption is reduced by binding to the solid phase by adsorption. Even with these blockings, when microplates or beads were used as a solid phase and measurement was performed with ordinary measurement sensitivity, there was a blocking effect in practice and immunoassay was possible.

【0006】しかしながら、従来のブロッキング法では
高感度測定、もしくは表面積の大きな多孔質性担体など
を固相に用いるとき、あるいは吸着の起こり易い標識物
等を用いる場合、ブロッキング効果が弱く、満足できる
結果は得られなかった。また、短時間測定や特別な技術
を必要とせず誰にでもできる測定法確立のためにも、よ
り有効な非特異的吸着防止法が必要であった。
However, in the conventional blocking method, the blocking effect is weak and satisfactory results are obtained when highly sensitive measurement is performed, or when a porous carrier having a large surface area is used as the solid phase, or when a label that easily adsorbs is used. Was not obtained. In addition, a more effective non-specific adsorption prevention method was needed to establish a measurement method that can be performed by anyone without requiring short-time measurement or special technology.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】ブロッキング剤を固相に
吸着させている主な結合力は疎水結合であると考えられ
る。また非特異的吸着を少なくするには固相の表面を親
水性にすることが有効であろう。したがってブロッキン
グ剤としては、疎水性と親水性を合わせて持つことが必
要とされる。しかしながら、従来のブロッキング法で
は、牛血清アルブミンやゼラチンのように疎水性領域と
親水性領域がアミノ酸配列順序的にも立体構造的にも明
確に分かれていないタンパク質をそのまま使ったり、あ
るいはαs−、β−およびκ−カゼインを含む全カゼイ
ン、もしくはゼラチンの部分分解物の混合物をそのまま
使っていたので、プロッキング効果が悪かった。
[Means for Solving the Problems] It is considered that the main binding force for adsorbing a blocking agent on a solid phase is hydrophobic binding. In order to reduce non-specific adsorption, it is effective to make the surface of the solid phase hydrophilic. Therefore, the blocking agent is required to have both hydrophobicity and hydrophilicity. However, in the conventional blocking method, a protein such as bovine serum albumin or gelatin in which the hydrophobic region and the hydrophilic region are not clearly separated in terms of amino acid sequence order or three-dimensional structure is used as it is, or αs-, Since the whole casein including β- and κ-casein or the mixture of the partial decomposition products of gelatin was used as it was, the pocking effect was poor.

【0008】そこで、疎水性領域と親水性領域とがアミ
ノ酸配列順序的にまたは立体構造的に、もしくは両方で
明確に分かれているタンパク質を用いるブロッキング法
が非特異的吸着を少なくするのにきわめて有効であろう
と考え、鋭意検討した結果本発明を完成するに至った。
Therefore, the blocking method using a protein in which the hydrophobic region and the hydrophilic region are clearly separated in the order of amino acid sequence, the three-dimensional structure, or both is extremely effective in reducing nonspecific adsorption. As a result of intensive studies, the present invention has been completed.

【0009】すなわち、本発明は、免疫測定において、
疎水性領域と親水性領域とが分離した状態で存在するタ
ンパク質を有効成分として使用することを特徴とする非
特異的吸着防止法を提供する。
That is, the present invention provides immunoassay
Provided is a method for preventing non-specific adsorption, which comprises using a protein existing in a state where a hydrophobic region and a hydrophilic region are separated as an active ingredient.

【0010】疎水性領域と親水性領域とがアミノ酸配列
順序的に分かれている例としては、β−カゼインおよび
κ−カゼインが挙げられる。β−カゼインは、N−末端
側の約1/4が親水的であり、残りの部分は疎水的であ
る。κ−カゼインは反対に、C−末端側の約半分が親水
的であり、他の半分は疎水的である。一方、αs−カゼ
インではこの様な配列になっていない。(吉川および千
葉、カゼインミセルの構造、「食品の物性」第6集153
〜173頁)。
Examples in which the hydrophobic region and the hydrophilic region are separated in order of amino acid sequence include β-casein and κ-casein. About 1/4 of the N-terminal side of β-casein is hydrophilic, and the remaining part is hydrophobic. κ-Casein, on the other hand, is approximately C-terminal half hydrophilic and the other half hydrophobic. On the other hand, αs-casein does not have such a sequence. (Structure of casein micelles by Yoshikawa and Chiba, “Physical properties of food”, 6th 153
~ 173).

【0011】β−カゼインまたはκ−カゼインもしくは
β−カゼインとκ−カゼインとの任意の割合の混合物
は、ブロッキング剤として好適であり、αs−カゼイン
は、本発明のようなブロッキング剤としては不適であ
る。しかし、実用上αs−カゼインがブロッキング効果
を損なわない程度含まれていてもかまわない。例えば
αs−カゼインはCa2+等の二価金属イオンにより沈澱す
る性質があるので カゼイン水溶液にCa2+を加え、大
部分のαs−カゼインを沈澱させて除いた上清またはこ
の上清を透析した液は、実用的に良好なブロッキング液
である。
[0011] β-casein or κ-casein or a mixture of β-casein and κ-casein in any proportion is suitable as a blocking agent, αs-casein is not suitable as a blocking agent such as the present invention. is there. However, in practical use, αs-casein may be contained to the extent that the blocking effect is not impaired. For example
αs- casein was dialyzed bivalent because the property of precipitating a metal ion Ca 2+ was added to the casein solution, the supernatant or the supernatant was removed by precipitation most of αs- casein Ca 2+, etc. The solution is a practically good blocking solution.

【0012】疎水性領域と親水性領域とはアミノ酸配列
順序的に分かれていなくても、立体構造的に分かれてい
てもよい。立体構造が解明されていないタンパク質で
は、通常使われている方法、例えばチャウとファスマン
の方法[ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジ
ー(J.Mol.Biol.)115, 135−175(197
7)によって推定される構造上で分離していればよい。
The hydrophobic region and the hydrophilic region may or may not be separated in the order of amino acid sequence or in a three-dimensional structure. For proteins whose three-dimensional structure has not been elucidated, commonly used methods such as the method of Chow and Fassman [J. Mol. Biol. 115 , 135-175 (197)
It suffices if they are separated on the structure estimated by 7).

【0013】立体的な分離は、一分子内であっても、い
くつかのサブユニットが会合した状態の中であってもよ
い。例えば、グルコース輸送体は 前者の例であり[サ
イエンティフィック・アメリカン(Scientific Americ
an, 1992年1月号)、ポーリンは後者の例である(E
XPERIENTIA,1990年 46(2)号16
7〜173頁)。
The steric separation may be in a single molecule or in the state where several subunits are associated with each other. For example, the glucose transporter is an example of the former [Scientific American
an, January 1992), Pauline is an example of the latter (E
XPERIENTIA, 1990 46 (2) No. 16
7-173).

【0014】本発明でいう疎水性領域とは、疎水性アミ
ノ酸残基を多く含む領域のことであり、具体的には、フ
ェニルアラニン、トリプトファン、イソロイシン、ロイ
シン、プロリン、メチオニン、バリン、アラニンなどを
含む。親水性領域とは、親水性アミノ酸残基を多く含む
領域のことであり、具体的には、リジン、グルタミン、
アスパラギン酸、グルタミン酸、トレオニン、アスパラ
ギン、アルギニン、セリンなどを含む。
The hydrophobic region referred to in the present invention is a region containing a large number of hydrophobic amino acid residues, and specifically includes phenylalanine, tryptophan, isoleucine, leucine, proline, methionine, valine, alanine and the like. .. The hydrophilic region is a region containing many hydrophilic amino acid residues, and specifically, lysine, glutamine,
Includes aspartic acid, glutamic acid, threonine, asparagine, arginine, serine and the like.

【0015】[0015]

【発明の効果】本発明によれば、免疫測定において非特
異的吸着を少なくすることが出来る。本発明は種々の免
疫測定法に適用することができる。第一に、測定対象物
からの特異的なシグナルの大きさを減ずることなく、非
特異的なバックグラウンド・シグナルを下げるので、低
濃度範囲まで信頼性良く測定できることになり、高感度
測定が可能になる。また、非特異的なバックグラウンド
・シグナルの低下によって表面積の大きな固相をも使用
可能になり、測定範囲を広げられる。さらに多孔性の広
い表面積を持つ固相の使用により、反応物の拡散に要す
る時間が短くなり、短時間測定出来る。微小粒子や蛍光
あるいは化学発光標識物など吸着の起こり易いものも容
易に活用できる。
Industrial Applicability According to the present invention, non-specific adsorption can be reduced in immunoassay. The present invention can be applied to various immunoassay methods. First, it reduces non-specific background signals without reducing the size of the specific signal from the measurement target, enabling reliable measurement even in the low concentration range, enabling highly sensitive measurement. become. In addition, a nonspecific background signal can be reduced to allow the use of a solid phase having a large surface area, and the measurement range can be expanded. Furthermore, the use of a solid phase having a large surface area with porosity shortens the time required for the diffusion of the reactants, and enables short time measurement. It is possible to easily utilize fine particles, fluorescent or chemiluminescent labeling substances that are easily adsorbed.

【0016】特に、ヘテロジニアスな免疫測定系では、
測定手順を大幅に省略することができる。今までは、ヘ
テロジニアスな免疫系では洗浄のため多量の液体が必要
だった。しかし本発明を用いることで、ヘテロジニアス
な免疫測定系で必要とする液量を少なくできる。このこ
とは、現在、生化学検査分野で一般化している乾式分析
を免疫測定の分野に応用する際に有効である。
Particularly, in a heterogeneous immunoassay system,
The measurement procedure can be largely omitted. Until now, the heterogeneous immune system required large amounts of liquid for cleaning. However, by using the present invention, it is possible to reduce the amount of liquid required in a heterogeneous immunoassay system. This is effective in applying the dry analysis, which is currently generalized in the biochemical test field, to the field of immunoassay.

【0017】[0017]

【実施例】本発明を更に具体的に説明するために実施例
を以下に示すが、本発明はこれら実施例に限定されるも
のではない。
EXAMPLES Examples will be shown below to more specifically describe the present invention, but the present invention is not limited to these examples.

【0018】実施例1 カゼイン分画液の作製 1.PIPESバッファー(0.1M、pH6.4)にウ
シミルクカゼイン(ナカライテスク製)を10mg/mlとな
るよう溶解する。 2.CaCl2を0.3mol/lとなるよう1.に溶解し、α
s−カゼインを沈殿させる。 3.2.を遠心分離し、その上清をカゼイン分画液とす
る。
Example 1 Preparation of Casein Fractionation 1. Bovine milk casein (manufactured by Nacalai Tesque) is dissolved in PIPES buffer (0.1 M, pH 6.4) at 10 mg / ml. 2. CaCl 2 was dissolved in 1. to 0.3 mol / l, and α
Precipitate s-casein. 3.2. Centrifuge and use the supernatant as the casein fraction.

【0019】各種ブロッキング剤の作製と、ブロッキン
グ 1.β−カゼイン、κ−カゼイン、および前記カゼイン
分画液は、PIPESバッファー(0.1M、pH6.
4)を用いて、タンパク質濃度を1mg/mlとする。これら
をそれぞれのカゼインによるブロッキング剤とする。 2.各ブロッキング剤にニトロセルロースフィルター
(孔径5μm、東洋濾紙製)を室温で2時間浸漬する。 3.40℃で30分間送風乾燥し、直径6mmの円形に打
ちぬき測定試料とする。
Preparation of various blocking agents and blocking 1. β-casein, κ-casein, and the casein fraction were prepared using PIPES buffer (0.1M, pH6.
Using 4), make the protein concentration 1 mg / ml. These are used as blocking agents by the respective caseins. 2. Nitrocellulose filter for each blocking agent
(Pore size 5 μm, manufactured by Toyo Roshi Kaisha, Ltd.) is immersed at room temperature for 2 hours. 3. Blow dry at 40 ° C for 30 minutes and punch out into a circle with a diameter of 6 mm to obtain a measurement sample.

【0020】1.抗ヒトC−反応性タンバク質(CRP
と略す)ウサギ抗体と、牛血清アルブミンで被覆した青
色微粒子(直径0.2μm、バングス・ラボラトリーズ・
インコーポレイテッド(Bangs Laboratories,Inc.)米
国)の3%懸濁液を用意する。 2.洗浄液として、10mMのリン酸バッファー pH
7.4(塩化ナトリウム 150mM、Tween 20 0.1
%、牛血清アルブミン 0.1%を含む)を用意する。
3.前記1.懸濁液4μlをブロッキングした各ニトロセ
ルロースフィルターに点着し、37℃で2分間静置す
る。 4.2.の洗浄液30μlで2回洗浄し、各ニトロセルロ
ースフィルターを640nmの反射率(R)より測定する。 これらの測定値が非特異的吸着の量を示している。
1. Anti-human C-reactive protein (CRP
Abbreviated as rabbit antibody and blue fine particles coated with bovine serum albumin (diameter 0.2 μm, Bangs Laboratories
Prepare a 3% suspension of Incorporated (Bangs Laboratories, Inc. USA). 2. As a washing solution, 10 mM phosphate buffer pH
7.4 (sodium chloride 150 mM, Tween 20 0.1
%, Bovine serum albumin 0.1%).
3. 4 μl of the above suspension was spotted on each blocked nitrocellulose filter and allowed to stand at 37 ° C. for 2 minutes. It is washed twice with 30 μl of the washing solution of 4.2. Each nitrocellulose filter is measured from the reflectance (R) at 640 nm. These measurements indicate the amount of non-specific adsorption.

【0021】対照として、αs−カゼイン、全カゼイ
ン、または乳タンパク質から調製した市販ブロッキング
剤(ブロックエース、雪印乳業(株))を用いて同様な実験
を行った。これらの結果を表1に示す。
As a control, the same experiment was carried out using αs-casein, whole casein, or a commercially available blocking agent prepared from milk protein (Block Ace, Snow Brand Milk Products Co., Ltd.). The results are shown in Table 1.

【0022】β−カゼイン、κ−カゼイン、全カゼイン
溶液にCa2+を加えた上清を用いたときは、αs−カゼイ
ン、全カゼインおよびブロックエースのいずれかを用い
たときより、非特異的吸着が顕著に減少した。
When the supernatant obtained by adding Ca 2+ to the β-casein, κ-casein, and total casein solutions was used, it was more nonspecific than when αs-casein, whole casein or block ace was used. Adsorption was significantly reduced.

【0023】[0023]

【表1】 ブロッキング剤 Log(1/R) β−カゼイン 0.071 κ−カゼイン 0.078 全カゼイン溶液にCa2+を加えた上清 0.101 αs−カゼイン 0.482 全カゼイン 0.199 ブロック エース 0.202[Table 1] Blocking agent Log (1 / R) β-casein 0.071 κ-casein 0.078 Supernatant obtained by adding Ca 2+ to a total casein solution 0.101 αs-casein 0.482 total casein 0.199 Block Ace 0.202

【0024】実施例2 CRPの測定 抗CRPヤギ抗体を吸着させたニトロセルロースフィル
ターを、実施例1で作製したカゼイン分画液を用いて実
施例1の「各種ブロッキング剤の作製と、ブロッキン
グ」の1、2と同様にブロッキングし、乾燥した。これ
に実施例1で用いた青色微小粒子懸濁液を均一に含浸
し、乾燥した後、直径6mmの円形に打ち抜き試料とし
た。
Example 2 Measurement of CRP Using the casein fraction prepared in Example 1 for a nitrocellulose filter having an anti-CRP goat antibody adsorbed thereon, the "preparation of various blocking agents and blocking" of Example 1 was performed. Blocking was carried out in the same manner as 1 and 2 and drying was performed. This was uniformly impregnated with the blue fine particle suspension used in Example 1, dried and then punched into a circle having a diameter of 6 mm to obtain a sample.

【0025】CRP既知濃度の溶液4μlを前記試料フ
ィルターに点着し、37℃で2分間反応させた後、30
μlの実施例1で用いた10mMのリン酸バッファーと同
じ洗浄液で2回洗浄した。洗浄後ニトロセルロースフィ
ルター中の青色微小粒子量を640nmの反射率(R)より
測定し、Log(1/R)で表示した。結果を図1に示す。
図中、□は各CRP濃度における反射率(R)のLog(1
/R)である。明らかに、CRPの迅速かつ簡易な測定
が出来た。
4 μl of a solution having a known concentration of CRP was spotted on the sample filter and reacted at 37 ° C. for 2 minutes, and then 30
The plate was washed twice with the same washing solution as the μl of the 10 mM phosphate buffer used in Example 1. After washing, the amount of blue fine particles in the nitrocellulose filter was measured from the reflectance (R) at 640 nm and expressed as Log (1 / R). The results are shown in Figure 1.
In the figure, □ indicates Log (1) of reflectance (R) at each CRP concentration.
/ R). Clearly, a quick and easy measurement of CRP was possible.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 実施例2の結果を示すグラフである。FIG. 1 is a graph showing the results of Example 2.

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 免疫測定において、疎水性領域と親水性
領域とが分離した状態で存在するタンパク質を有効成分
として使用することを特徴とする非特異的吸着防止法。
1. A method for preventing non-specific adsorption, which comprises using a protein that exists in a state where a hydrophobic region and a hydrophilic region are separated in an immunoassay as an active ingredient.
【請求項2】 疎水性領域と親水性領域との分離が少な
くともアミノ酸配列において認められるタンパク質を使
用することを特徴とする請求項1記載の非特異的吸着防
止法。
2. The method for preventing non-specific adsorption according to claim 1, wherein a protein in which the separation of the hydrophobic region and the hydrophilic region is recognized in at least the amino acid sequence is used.
【請求項3】 疎水性領域と親水性領域との分離が立体
構造的に認められるタンパク質を使用することを特徴と
する請求項1記載の非特異的吸着防止法。
3. The method for preventing non-specific adsorption according to claim 1, wherein a protein in which a hydrophobic region and a hydrophilic region are separated in a three-dimensional structure is used.
【請求項4】 前記タンパク質の主成分が、β−カゼイ
ンまたはκ−カゼインもしくはβ−カゼインとκ−カゼ
インとの混合物である請求項1記載の非特異的吸着防止
法。
4. The method for preventing non-specific adsorption according to claim 1, wherein the main component of the protein is β-casein or κ-casein or a mixture of β-casein and κ-casein.
JP4124976A 1992-05-18 1992-05-18 Method for preventing nonspecific adsorption for immunological measurement Pending JPH05322891A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP4124976A JPH05322891A (en) 1992-05-18 1992-05-18 Method for preventing nonspecific adsorption for immunological measurement

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP4124976A JPH05322891A (en) 1992-05-18 1992-05-18 Method for preventing nonspecific adsorption for immunological measurement

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH05322891A true JPH05322891A (en) 1993-12-07

Family

ID=14898873

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP4124976A Pending JPH05322891A (en) 1992-05-18 1992-05-18 Method for preventing nonspecific adsorption for immunological measurement

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPH05322891A (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013080937A1 (en) * 2011-11-28 2013-06-06 協和メデックス株式会社 Non-specific reaction inhibition method for continuous immunoassay of substance to be measured in specimen
WO2016136918A1 (en) * 2015-02-25 2016-09-01 積水メディカル株式会社 Immunoassay method and assay reagent used in said method
WO2016136917A1 (en) * 2015-02-25 2016-09-01 積水メディカル株式会社 Immunoassay method and assay reagent used in said method

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013080937A1 (en) * 2011-11-28 2013-06-06 協和メデックス株式会社 Non-specific reaction inhibition method for continuous immunoassay of substance to be measured in specimen
JPWO2013080937A1 (en) * 2011-11-28 2015-04-27 協和メデックス株式会社 Method for suppressing non-specific reaction in continuous immunoassay of analyte in specimen
WO2016136918A1 (en) * 2015-02-25 2016-09-01 積水メディカル株式会社 Immunoassay method and assay reagent used in said method
WO2016136917A1 (en) * 2015-02-25 2016-09-01 積水メディカル株式会社 Immunoassay method and assay reagent used in said method
JPWO2016136918A1 (en) * 2015-02-25 2017-11-30 積水メディカル株式会社 Immunological measurement method and measurement reagent used in the method
CN107533055A (en) * 2015-02-25 2018-01-02 积水医疗株式会社 Method of immunity and the measure reagent for methods described
CN107533054A (en) * 2015-02-25 2018-01-02 积水医疗株式会社 Method of immunity and the measure reagent for methods described
JPWO2016136917A1 (en) * 2015-02-25 2018-02-01 積水メディカル株式会社 Immunological measurement method and measurement reagent used in the method

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4579414B2 (en) Kit with ligand binding assay and inhibitory analyte separation region
US5081013A (en) Immunodiagnostic device and method
US6114180A (en) Synthetic calibrators for use in immunoassays, comprising the analytes or partial sequences thereof which are conjugated to inert carrier molecules
AU2018374469B2 (en) Target interference suppressed anti-drug antibody assay
US5188939A (en) Displacement immunoassay utilizing an oligavalent labelled antibody
US5506110A (en) Carrier for binding of anti-phospholipid antibodies, and immunoassay method using the same and a kit therefor
JPS5949545B2 (en) Antibody, antigen or antibody: reagent for antigen complex analysis
JPH06317595A (en) Complementary visual sense signal immunoassay
US4239743A (en) Carrier-bound immunoglobulin fission product and its use in immunologic analyses
JP2000508075A (en) Luminescence-specific binding assay
US5472883A (en) Solid phase reagent and assay method for measuring antibodies specific to antiphospholipid syndrome
JP3899029B2 (en) Immunological analysis method
JPH05322891A (en) Method for preventing nonspecific adsorption for immunological measurement
US4820633A (en) Process for production of an immune reactive, porous carrier material for heterogeneous immunological analysis
EP1478923A2 (en) Assay for anti-ingap antibodies
JPH1123573A (en) Immunological measuring method
CA2057693A1 (en) Method for the determination of antibodies against lipocortins
JPH06289025A (en) Nonspecific reaction prevention composition for blocking and solid-phase carrier
JPS59102161A (en) Antigen detection reagent by anti-passive agglutination
JP2004521325A (en) Flow-through membrane assay for carbohydrates using labeled lectins
JPH0740031B2 (en) Immunological measurement method
JPS63503569A (en) Preparation for immunological measurement and method for producing the preparation
US20060029926A1 (en) Blocking compositions for immunoassays
JP2001305137A (en) Method for immobilization and measurement of specific complex
JPH11248703A (en) Immunological method for measuring free hapten