JP7512413B2 - 抗pd-l1およびpd-l2抗体ならびにその誘導体および用途 - Google Patents
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Description
アミノ酸配列がSEQ ID NO:57に示されるようなCDR1、アミノ酸配列がSEQ ID NO:58に示されるようなCDR2、およびアミノ酸配列がSEQ ID NO:59に示されるようなCDR3、または
アミノ酸配列がSEQ ID NO:60に示されるようなCDR1、アミノ酸配列がSEQ ID NO:61に示されるようなCDR2、およびアミノ酸配列がSEQ ID NO:62に示されるようなCDR3で構成されるか、
あるいは、前記抗PD-L2ナノボディのVHH鎖のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:1、2、4、5、6、7、8、9、10、11、13、14、17または18に示されたとおりである。
アミノ酸配列がSEQ ID NO:63に示されるようなCDR1、アミノ酸配列がSEQ ID NO:64に示されるようなCDR2、およびアミノ酸配列がSEQ ID NO:65に示されるようなCDR3等で構成される。
A-L1-Fc1-L2-B(式I)
A-L3-B-L4-Fc1(式II)
A-L5-Fc2-L6-Fc1(式III)
B-L7-Fc2(式IV)
ここで、
AおよびBは、それぞれ独立して、本発明の第2の態様に記載の抗PD-L1ナノボディまたは本発明の第1の態様に記載の抗PD-L2ナノボディであり、AおよびBは、異なる抗体であり、
L1、L2、L3およびL4は、それぞれ独立して、ペプチド結合またはリンカー要素であり、
Fc1、Fc2は、どちらも抗体のFcセグメントであり、ここで、Fc1は、ヒトIgGドメイン(好ましくは、LALA突然変異型IgGドメインである)であり、Fc2は、CH1+CLドメインであり、
「-」は、ペプチド結合である。
あるいは、前記宿主細胞は、本発明の第1の態様に記載の抗PD-L2ナノボディ、本発明の第2の態様に記載の抗PD-L1ナノボディ、または本発明の第3の態様に記載の二重特異性抗体を発現する。
(a)適切な条件下で、本発明の第6の態様に記載の宿主細胞を培養することにより、前記抗PD-L1ナノボディ、抗PD-L2ナノボディ、または二重特異性抗体を含む培養物を獲得する段階と、および
(b)段階(a)で得られた培養物を精製および/または分離して、前記抗PD-L1ナノボディ、抗PD-L2ナノボディ、または二重特異性抗体を獲得する段階とを含む。
(a)本発明の第1の態様に記載の抗PD-L2ナノボディ、本発明の第2の態様に記載の抗PD-L1ナノボディ、または本発明の第3の態様に記載の二重特異性抗体と、および
(b)検出可能な標識、薬物、毒素、サイトカイン、放射性核種、または酵素、金ナノ粒子/ナノロッド、ナノ磁性粒子、ウイルスコートタンパク質またはVLP、またはその組み合わせからなる群から選択されるカップリング部分とを含む。
(i)Tc-99m、Ga-68、F-18、I-123、I-125、I-131、In-111、Ga-67、Cu-64、Zr-89、C-11、Lu-177、Re-188、またはその組み合わせからなる群から選択される、診断用同位体、および/または
(ii)Lu-177、Y-90、Ac-225、As-211、Bi-212、Bi-213、Cs-137、Cr-51、Co-60、Dy-165、Er-169、Fm-255、Au-198、Ho-166、I-125、I-131、Ir-192、Fe-59、Pb-212、Mo-99、Pd-103、P-32、K-42、Re-186、Re-188、Sm-153、Ra223、Ru-106、Na24、Sr89、Tb-149、Th-227、Xe-133、Yb-169、Yb-177、またはその組み合わせからなる群から選択される、治療用同位体とを含む。
アウリスタチン(例えば、アウリスタチンE、アウリスタチンF、MMAEおよびMMAF)、クロルテトラサイクリン(chlortetracycline)、メイタンシノール(maytansinol)、リシン毒素(ricin toxin)、リシン毒素A-鎖、コンブレタスタチン(combretastatin)、ドカルマイシン(duocarmycin)、ドラスタチン(dolastatin)、アドリアマイシン(adriamycin)、ダウノルビシン(daunorubicin)、パクリタキセル(paclitaxel)、シスプラチン(cisplatin)、cc1065、臭化エチジウム(ethidium bromide)、マイトマイシン(mitomycin)、エトポシド、テノポシド(tenoposide)、ビンクリスチン(vincristine)、ビンブラスチン(vinblastine)、コルヒチン(colchicine)、ジヒドロキシアンスラキシオン(dihydroxyanthraxdione)、アクチノマイシン(actinomycin)、ジフテリア毒素(diphtheria toxin)、シュードモナス外毒素(PE)A、PE40、アブリン(abrin)、アブリンA鎖、モデシン(modeccin)A鎖、α-サルシナ、ゲロニン(gelonin)、マイトジェリン(mitogellin)、レトリトシン(retstrictocin)、フェノマイシン(phenomycin)、エノマイシン(enomycin)、クリシン(curicin)、クロチン(crotin)、カリケアマイシン(calicheamicin)、サボンソウ(Sapaonaria officinalis)阻害剤、グルココルチコイド(glucocorticoid)、またはその組み合わせからなる群から選択される。
(i)ヒトPD-L1分子および/またはPD-L2分子の検出用、(ii)フロー検出用、(iii)細胞免疫蛍光検出用、(iv)腫瘍の治療用、(v)腫瘍の診断用、(vi)PD-1とPD-L1との間の相互作用の遮断用、および/または(vii)PD-L2とPD-1との間の相互作用の遮断用からなる群から選択される本発明の第1の態様に記載の抗PD-L2ナノボディ、本発明の第2の態様に記載の抗PD-L1ナノボディ、または本発明の第3の態様に記載の二重特異性抗体の一つまたは複数の種の用途を提供する。
本開示を理解しやすくするために、まず特定の用語を定義する。本発明で使用されるように、本明細書で特に明記されない限り、以下の各用語は、以下に示される意味を有するべきである。発明の全体で他の定義を説明する。
本明細書で使用されるように、「本発明の二重特異性抗体」、「本発明の二重抗体」、「抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体」という用語は、同じ意味を有し、どちらもPD-L1およびPD-L2を特異的に識別および結合する二重特異性抗体を指す。
A-L1-Fc1-L2-B(式I)
A-L3-B-L4-Fc1(式II)
A-L5-Fc2-L6-Fc1(式III)
B-L7-Fc2(式IV)
ここで、
AおよびBは、それぞれ独立して、抗PD-L1単一ドメイン抗体または抗PD-L2単一ドメイン抗体であり、AおよびBは、異なる抗体であり、
L1、L2、L3およびL4は、それぞれ独立して、ペプチド結合またはリンカー要素であり、
Fc1、Fc2は、どちらも抗体のFcセグメントであり、ここで、Fc1は、ヒトIgGドメイン(好ましくは、LALA突然変異型IgGドメインである)であり、Fc2は、CH1+CLドメインであり、
「-」は、ペプチド結合である。
本発明は、前記抗体またはそのフラグメントまたはその融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド分子をさらに提供する。本発明のポリヌクレオチドは、DNA形態またはRNA形態であり得る。DNA形態は、cDNA、ゲノムDNAまたは合成DNAを含む。DNAは、一本鎖または二本鎖であり得る。DNAは、コード鎖または非コード鎖であり得る。
本発明は、組成物をさらに提供する。好ましくは、前記組成物は、上記の抗体またはその活性断片またはその融合タンパク質、および薬学的に許容されるベクターを含む、医薬組成物である。一般に、これらの物質を、毒性がなく、不活性で、薬学的に許容される水性ベクター媒体で処方することができ、ここで、pHは、通常、約5~8、好ましくは、約6~8であり、pH値は、処方される物質の性質および治療される病症によって異なる。処方された医薬組成物は、従来の経路で投与されることができ、ここで、腫瘍内、腹腔内、静脈内、または局所投与等を含む(これらに限定されない)。
本発明の好ましい例において、前記抗体は、検出可能な標識を有する。より好ましくは、前記標識は、同位体、コロイド金標識、着色標識または蛍光標識からなる群から選択される。
本発明は、PD-L1および/またはPD-L2タンパク質を検出するための方法にさらに関する。当該方法の段階は、大まかに次のとおりである:細胞および/または組織サンプルを獲得し、サンプルを媒体に溶解し、前記溶解されたサンプル中のPD-L1および/またはPD-L2タンパク質のレベルを検出する。
本発明は、本発明の抗体(またはその断片)または検出プレートを含むキットをさらに提供し、本発明の好ましい例において、前記キットは、容器、取扱説明書、緩衝剤等をさらに含む。
上記のように、本発明の単一ドメイン抗体は、幅広い生物学的適用価値および臨床的適用価値を有し、その適用は、PD-L1および/またはPD-L2に関連する疾患の診断および治療、基礎医学研究、生物学的研究等の多数の分野に関する。好ましい適用は、腫瘍治療等のPD-L1および/またはPD-L2に対する臨床診断および標的治療である。
実施例1:抗ヒトPD-L2ナノボディ
1.1.ナノボディライブラリーの構築
動物免疫化
1mgのヒトPD-L2抗原(AcroBiosystemsから購入)を等量のフロイントアジュバントと混合し、2匹のラマ(Llama)を週1回、合計4回免疫し、B細胞を剌激して抗原特異的なナノボディを発現させる。4回免疫後、50mlのラマ末梢血を抽出し、リンパ球分離液で分離してリンパ球を得る。RNA抽出試薬Trizol(Invitrogenから購入)を使用して全RNAを抽出する。cDNA合成キット(Invitrogenから購入)によって逆転写して、ラマ全cDNAを獲得する。
1回目のPCRにおいて、cDNAからIgG2、IgG3配列が増幅される。
線形化された酵母ディスプレイベクターと3回目のPCR生成物を混合した後にサッカロマイセスセンビシエ(ATCCから購入)に電気形質転換し、2匹の動物から抗PD-L2ナノボディライブラリーを構築し、かつライブラリーの容量を測定し、ライブラリーの用量の大きさは、それぞれ4.47×107および4.14×107である。
ヒトPD-L2タンパク質のビオチン化標識
適切な体積の再蒸留水を取り、ヒトPD-L2タンパク質(AcroBiosystemsから購入)を溶解し、ビオチン標識キット(Thermoから購入)の製品取扱説明書に従う,ビオチンを溶解した後にタンパク質溶液と混合し、4℃下で2時間インキュベートする。脱塩カラム(Thermoから購入)で余分なビオチンを除去し、脱塩カラムの前処理およびサンプル収集操作は、製品取扱説明書の手順を参照する。
実施例1.2で構築したVHHライブラリーをSD-CAA増幅培地(1L SD-CAA増幅培地は、6.7gのYNB、5gのチロシン、13.62gのNa2HPO4・12H2O、7.44gのNaH2PO4および2%グルコースを含む)に接種し、接種した酵母細胞の数は、>10×ライブラリー容量(初期増幅濃度=0.5OD600/ml)であり、30℃下で、225rpmで一晩培養する。10×ライブラリーの容量の酵母細胞を取り、3000rpm×5minで遠心分離して(以下の遠心分離操作も同様)培地を除去し、SD-CAA誘導培地で酵母細胞を再懸濁し、初期濃度を0.5OD600/mlに調整し、一晩誘導する。誘導後のライブラリー濃度を測定し、10×ライブラリーの容量の酵母細胞を取り、遠心分離して培地を除去する。50mlの洗浄液(PBS+0.5%BSA+2mMのEDTA)で酵母細胞を再懸濁し、遠心分離して上清を除去する。10mlの洗浄液で酵母細胞を再懸濁する。
MACSによって濃縮された酵母細胞をSD-CAA増幅培地に接種し、初期増幅濃度=0.5OD600/mlである。30℃下で、225rpmで振とうフラスコを一晩培養する。SD-CAA誘導培地(1LのSD-CAA誘導培地は、6.7gのYNB、5gのチロシン、13.62gのNa2HPO4・12H2O、7.44gのNaH2PO4ならびに2%ガラクトース、2%ラフィノースおよび0.1%グルコースを含む)で酵母細胞を再懸濁し、初期濃度は、0.5OD600/mlであり、一晩誘導する。1:200で希釈した抗-c-Mycマウス抗体(Thermoから購入)および100nMのビオチン標識PD-L2抗原を加え、室温下で10分間インキュベートする。PBSを加えて酵母を3回洗浄し、1:500で希釈したヤギ抗マウスIgG(H+L)Alexa Fluor Plus 488蛍光抗体(Invitrogenから購入)およびストレプトアビジンAPCコンジュゲート蛍光抗体(Invitrogenから購入)を加え、4℃下で暗所で15分間インキュベートする。2mlのPBSを加えて細胞を再懸濁し、BD FACSAriaII機器を用いてソーティングして、PD-L2抗原への結合能の高い酵母を獲得する。
MACSおよびFACS濃縮によって得られたPD-L2抗原に対する結合能の高い酵母液を、SD-CAA増幅培地で30℃下で、225rpmで一晩培養し、酵母プラスミド抽出キット(Tiangenから購入)に従って酵母プラスミドを抽出する。プラスミドをTop10コンピテント細胞(Tiangenから購入)に電気形質転換し、アンピシリン耐性プレートでコーティングし、37℃下で一晩培養する。シーケンシング用の単一クローンを選択してVHH遺伝子配列を獲得する。
pCDNA3.1発現ベクターへの抗体遺伝子の構築
VHH遺伝子配列は、ヒトIgG1(LALA突然変異)Fcセグメントに連結され、相同性リコンビナーゼを使用して、(Vazymeから購入)およびEcoR I/Not I二重制限酵素で線形化されたpCDNA3.1ベクターで構築され、プロセスは、製品取扱説明書に従う。相同性組換え生成物をTop10コンピテント細胞に形質転換し、アンピシリン耐性プレートでコーティングし、37℃下で一晩培養し、シーケンシング用の単一クローンを選択し、プラスミドを抽出する。
ExpiCHOTM発現システムキット(Thermoから購入)を使用して、抽出したプラスミドをExpi-CHO細胞に導入し、トランスフェクション方法は、製品取扱説明書に従い、細胞を5日間培養した後に上清を収集し、タンパク質A磁気ビーズ(GenScriptから購入)ソーティング法で目的タンパク質を精製する。磁気ビーズを適切な体積の結合緩衝液(PBS+0.1%トゥイーン20、pH7.4)で再懸濁(1~4倍の磁気ビーズの体積)した後に精製するサンプルに加え、室温下で穏やかに振とうしながら1時間インキュベートする。サンプルを磁気スタンド(Beaverから購入)に置き、上清を捨て、磁気ビーズを結合緩衝液で3回洗浄する。磁気ビーズ体積の3~5倍の体積で溶出緩衝液(0.1Mクエン酸ナトリウム、pH3.2)を加え、室温下で5~10分間振とうし、磁気スタンドに戻し、溶出緩衝液を収集し、中和緩衝液(1MのTris、pH8.54)を加えたコレクションチューブに収集し、均一に混合して、目的タンパク質を獲得する。
ヒトPD-L2 cDNA(Sino Biologicalから購入)をクローニングするpCHO1.0ベクター(Invitrogenから購入)をトランスフェクションによって、ヒトPD-L2を過剰発現するCHO細胞(CHO-hPD-L2細胞)を生成する。拡大培養したCHO-hPD-L2細胞を2×106細胞/mlの細胞密度に調整し、100μl/ウェルを96ウェルフロープレートに加え、遠心分離して備蓄する。精製したPD-L2抗体をPBSで希釈し、1000nMから初めて3倍で合計12ポイントを希釈し、上記の希釈したサンプル100μl/ウェルを上記の細胞含有96ウェルフロープレートに加え、4℃下で30分間インキュベートし、PBSで2回洗浄する。PBSで100倍希釈したヤギF(ab’)2抗ヒトIgG-Fc(PE)(Abcamから購入)を100μl/ウェル加え、4℃下で30分間インキュベートし、PBSで2回洗浄する。100μl/ウェルをPBSに加えて細胞を再懸濁し、CytoFlex(Bechman)フローサイトメーターで検出し、かつ対応するMFIを計算する。
ForteBio親和性測定は、既存の方法(Estep、Pら、ハイスループット法に基づく抗体-抗原親和性とエピトープとの結合の測定.MAbs、2013.5(2):p.270-8)に従って実行される。簡単に言えば、センサーは、分析緩衝液で30分間オフラインで平衡化し、次に60秒間オンラインで検出してベースラインを構築し、上記で得られた精製抗体をAHQセンサーにオンラインでロードされる。センサーを100nMのPD-L2抗原に5分間入れ、その後センサーをPBSに移して5分間解離させる。1:1結合モデルを使用して動態学的分析を実行する。
1.6.PD-L2とPD-1との結合を遮断する精製抗PD-L2抗体
ヒトPD-1 cDNA(Sino Biologicalから購入)をクローニングしたpCHO1.0ベクター(Invitrogenから購入)トランスフェクションによって、ヒトPD-1を過剰発現するCHO細胞(CHO-hPD-1細胞)を生成する。拡大培養したCHO-hPD-1細胞を2×106細胞/mlの細胞密度に調整し、100μl/ウェルを96ウェルフロープレートに加え、遠心分離して備蓄する。精製した突然変異サンプルをPBSで希釈し、1000nMから3倍で合計12ポイントを希釈し、96ウェルサンプル希釈プレートに上記の希釈サンプル60μl/ウェルを加え、同時に60μl/ウェルにビオチン化ヒトPD-L2タンパク質(AcroBiosystemsから購入)を加え、最終濃度は、1μg/mlであり、4℃下で精製サンプルを30分間インキュベートする。100μl/ウェルの共培養サンプルを、細胞含有上記の96ウェルフロープレートに加え、4℃下で30分間インキュベートし、PBSで2回洗浄する。PBSで100倍希釈した100μl/ウェルのAPCヤギ抗マウスIgG(最小×反応性)抗体(Biolegendから購入)を加え、4℃下で30分間インキュベートし、PBSで2回洗浄する。100μl/ウェルをPBSに加えて細胞を再懸濁し、CytoFlex(Bechman)フローサイトメーターで検出し、かつ対応するMFIを計算する。
ヒトインビボにおけるモノクローナル抗体の免疫原性の生成を減少させるために、D-NA-96およびD-Ye-29抗体をヒト化する。ヒト化方法は、VHHヒト化一般フレームワーク移植法を使用し、同時に文献(Vincke、C.ら、ヒト化ラクダ単一ドメイン抗体および一般的なヒト化ナノボディ足場を同定する一般的戦略、J Biol Chem 284(5):3273-3284)で報告された方法に従って、抗体フレームワーク2(framework2)の部分アミノ酸を完全に突然変異させる。
タンパク質の構築、発現および精製方法は、実施例1.3と同じであり、HPLCを使用して得られたタンパク質の純度を検出する。HPLC方法は、次のとおりである。移動相:150mMのNa2HPO4・12H2O、pH7.0。クロマトグラフィー条件:検出波長:280nm、カラム温度:25℃、流速:0.35ml/min、検出時間:20分間、Zenix-C SEC-300クロマトグラフィーカラム(SEPAX 4.6×300mm、3μm)。
1.8.D-Na-96ヒト化サンプルとヒトPD-L2との結合
この実験では、精製されたD-Na-96ヒト化サンプルとCHO-hPD-L2細胞との結合活性を検出し、実験方法は、実施例1.4と同じであり、実験結果は、図3に示されたとおりであり、D-Na-96ヒト化サンプルは、CHO-hPD-L2細胞に対して良好な結合活性を有し、レベルは、D-Na-96に匹敵する。
この実験は、精製されたD-Na-96/D-Ye-29ヒト化サンプルとヒトPD-L2との結合親和性を検出し、実験方法は、実施例1.5と同じであり、実験結果は、表7に示されたとおりであり、D-Na-96/D-Ye-29ヒト化サンプルは、ヒトPD-L2タンパク質に対して良好な結合活性を有する。
1.10.PD-L2とPD-1との結合を遮断するD-Na-96ヒト化サンプル
この実験では、PD-L2とPD-1との結合を遮断する精製されたD-Na-96ヒト化サンプルを検出し、実験方法は、実施例1.6と同じであり、実験結果は、図4に示されたとおりであり、本発明のすべてのヒト化サンプルは、PD-L2とPD-1との結合を遮断することができ、遮断レベルは、D-Na-96に匹敵する。
2.1.ナノボディライブラリーの構築
動物免疫化
lmgのヒトPD-L1抗原(AcroBiosystemsから購入)を等量の与フロイントアジュバントと混合し、2匹のラマ(LlamaおよびAlpacaは、それぞれ1匹)を免疫氏、それぞれ1、2、3、5、7週目に動物を免疫し、B細胞を剌激して抗原特異的なナノボディを発現させる。5回免疫後、300mlのラマ末梢血を抽出し、リンパ球分離液で分離してリンパ球を得る。RNA抽出試薬Trizol(Invitrogenから購入)を使用して全RNAを抽出する。cDNA合成キット(Invitrogenから購入)によって逆転写して、ラマ全cDNAを獲得する。
この研究では、実施例2.1で構築された酵母ディスプレイライブラリーから、ヒトPD-L1に特異的に結合できるナノボディ配列をスクリーニングし、具体的なスクリーニング方法は、実施例1.2と同じである。VHH遺伝子配列とヒトIgG1(LALA突然変異)Fcセグメントとを連結し、真核発現ベクターpCDNA3.1に構築した。ExpiCHO発現システムおよび磁気ビーズ親和性精製システムによって、高純度の重鎖抗体タンパク質を調製する。重鎖抗体対の構築、発現および精製方法は、実施例1.3と同じである。
この研究では、ForteBio機器を使用して、得られた抗PD-L1抗体とヒトPD-L1タンパク質との結合活性を検出し、検出方法は、実施例1.5と同じである。検出結果は、表8に示されたとおりであり、この研究で得られた3個の候補分子およびヒトPD-L1タンパク質は、すべて良好な結合活性を有する。
タンパク質の構築、発現、精製およびHPLC純度検出の方法は、実施例1.3と同じである。結果は、表10に示されたとおりであり、ワンステップ精製後に高純度のヒト化抗PD-L1重鎖抗体タンパク質を獲得する。
2.5.ヒト化抗PD-L1ナノボディとヒトPD-L1との結合
この実験では、精製されたヒト化サンプルHZ-K-Yr-13&14-02-3とCHO-hPD-L1細胞との結合活性を検出し、実験方法は、実施例1.4と同じであり、実験結果は、図5に示されたとおりであり、HZ-K-Yr-13&14-02-3およびCHO-hPD-L1細胞は、良好な結合活性を有し、レベルは、K-Yr-13&14-02および対照抗体ATEに匹敵する。
この実験では、精製されたHZ-K-Yr-13&14-02-3とヒトPD-L1との結合親和性を検出し、実験方法は、実施例1.5と同じであり、実験結果は、表11に示されたとおりであり、HZ-K-Yr-13&14-02-3およびヒトPD-L2タンパク質は、良好な結合活性を有する。
実施例3.抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体
3.1.抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体の分子構築
この研究では、三つの異なる形態の抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体を構築し、その構造概略図は、図6に示されたとおりである。
本実施例において、実施例3.1で構築された抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体Bi-201、Bi-202、Bi-203-204をコードするヌクレオチド配列は、すべてマルチクローニング部位を介して市販の真核発現ベクターpCDNA3.1(+)に連結される。ExpiCHO発現システムおよび磁気ビーズ親和性精製システムを使用して、高純度の重鎖抗体タンパク質を調製する。タンパク質の構築、発現、精製およびHPLC純度の検出方法は、実施例1.3と同じである。結果は、表12に示されたとおりであり、ワンステップ精製後に高純度の二重特異性抗体タンパク質を獲得する。
3.3.抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体親和性の測定
この研究では、ForteBio機器を使用して、獲得した抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体およびヒトPD-L1タンパク質またはヒトPD-L2の結合活性を検出し、検出方法は、実施例1.5と同じである。検出結果は、表13、表14に示されたとおりであり、この研究で得られた3個の候補分子およびヒトPD-L1ならびにヒトPD-L2タンパク質は、すべて良好な結合活性を有する。
3.4.抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体と細胞表面ヒトPD-L1またはヒトPD-L2との結合
この実験では、精製された抗PD-L1/PD-L2二重特異性抗体とCHO-hPD-L1細胞またはCHO-hPD-L2との結合活性を検出し、実験方法は、実施例1.4と同じであり、実験結果は、図7Aおよび7Bに示されたとおりであり、Bi-201、Bi-202、Bi-203-204ならびにCHO-hPD-L1細胞およびCHO-hPD-L2細胞は、すべて良好な結合活性を有する。
拡大培養したCHO-hPD-1細胞を2×106細胞/mlの細胞密度に調整し、100μl/ウェルを96ウェルフロープレートに加え、遠心分離して備蓄する。精製した突然変異サンプルをPBSで希釈し、1000nMから3倍で合計12ポイントを希釈し、希釈した上記のサンプル60μl/ウェルを96ウェルサンプル希釈プレートに加え、同時に60μl/ウェルにビオチン化ヒトPD-L2タンパク質またはビオチン化ヒトPD-L1タンパク質(AcroBiosystemsから購入)を加え、最終濃度は、1μg/mlであり、4℃下で精製サンプルとともに30不安感インキュベートする。100μl/ウェルの共培養サンプルを、上記の細胞含有96ウェルフロープレートに加え、4℃下で30分間インキュベートし、PBSで2回洗浄する。PBSで100倍した100μl/ウェルのAPCヤギ抗マウスIgG(最小値×反応性)抗体(Biolegendから購入)を加え、4℃下で30分間インキュベートし、PBSで2回洗浄する。100μl/ウェルをPBSに加えて細胞を再懸濁し、CytoFlex(Bechman)フローサイトメーターで検出し、かつ対応するMFIを計算する。
PD-L1およびPD-L2は、腫瘍細胞または免疫細胞に共発現させることができ、この実施例は、ヒトPD-L1およびヒトPD-L2を共発現するCHO細胞(CHO-K1-PD-L1/PD-L2)、ならびにヒトPD-1を過剰発現し、かつNFAT-ルシフェラーゼレポーター遺伝子を含むJurkat細胞(Jurkat-PD-1-NFAT)を共培養する方法を使用して、PD-L1/PD-1経路およびPD-L2/PD-1経路に対する精製抗体Bi-201、Bi-202、Bi-203-204の同時遮断効果を検出し、具体的な方法は、次のとおりである。
Claims (15)
- 抗PD-L2ナノボディであって、
前記PD-L2ナノボディのVHH鎖の各相補性決定領域(CDR)は、
アミノ酸配列がSEQ ID NO:57に示されるCDR1、アミノ酸配列がSEQ ID NO:58に示されるCDR2、およびアミノ酸配列がSEQ ID NO:59に示されるCDR3、または
アミノ酸配列がSEQ ID NO:60に示されるCDR1、アミノ酸配列がSEQ ID NO:61に示されるCDR2、およびアミノ酸配列がSEQ ID NO:62に示されるCDR3で構成されることを特徴とする、前記抗PD-L2ナノボディ。 - 抗PD-L1ナノボディであって、
前記PD-L1ナノボディのVHH鎖の各相補性決定領域(CDR)は、
アミノ酸配列がSEQ ID NO:63に示されるCDR1、アミノ酸配列がSEQ ID NO:64に示されるCDR2、およびアミノ酸配列がSEQ ID NO:65に示されるCDR3で構成されることを特徴とする、前記抗PD-L1ナノボディ。 - 前記抗PD-L2ナノボディのVHH鎖のアミノ酸配列が、SEQ ID NO:3、16、17または18で示され;または
前記抗PD-L2ナノボディのVHH鎖のアミノ酸配列が、SEQ ID NO:12または15で示される、請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディ。 - 前記抗PD-L1ナノボディのVHH鎖のアミノ酸配列が、SEQ ID NO:19または22で示される、請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディ。
- 二重特異性抗体であって、
前記二重特異性抗体は、請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディおよび請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディを含むことを特徴とする、前記二重特異性抗体。 - 前記二重特異性抗体は、式Iまたは式IIに示される構造を有するポリペプチドを含むか、または式IIIおよび式IVに示される構造を有するポリペプチドを同時に含み、
A-L1-Fc1-L2-B(式I)
A-L3-B-L4-Fc1(式II)
A-L5-Fc2-L6-Fc1(式III)
B-L7-Fc2(式IV)
ここで、
AおよびBは、それぞれ独立して、請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディまたは請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディであり、AおよびBは、異なる抗体であり、
L1、L2、L3およびL4は、それぞれ独立して、ペプチド結合またはリンカー要素であり、
Fc1、Fc2は、どちらも抗体のFcセグメントであり、ここで、Fc1は、ヒトIgGドメインであり、Fc2は、CH1+CLドメインであり、
「-」は、ペプチド結合であることを特徴とする
請求項5に記載の二重特異性抗体。 - 単離されたポリヌクレオチドであって、
前記ポリヌクレオチドは、請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディ、請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディ、または請求項5に記載の二重特異性抗体をコードすることを特徴とする、前記単離されたポリヌクレオチド。 - ベクターであって、
前記ベクターは、請求項7に記載のポリヌクレオチドを含むことを特徴とする、前記ベクター。 - 宿主細胞であって、
前記宿主細胞は、請求項8に記載のベクターを含むか、
あるいは、前記宿主細胞は、請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディ、請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディ、または請求項5に記載の二重特異性抗体を発現することを特徴とする、前記宿主細胞。 - 二重特異性抗体を生成する方法であって、
(a)適切な条件下で、請求項9に記載の宿主細胞を培養することにより、前記抗PD-L2ナノボディ、抗PD-L1ナノボディ、または二重特異性抗体を含む培養物を獲得する段階と、および
(b)段階(a)で得られた培養物を精製および/または分離して、前記抗PD-L2ナノボディ、抗PD-L1ナノボディ、または二重特異性抗体を獲得する段階とを含むことを特徴とする、前記二重特異性抗体を生成する方法。 - 免疫コンジュゲートであって、
前記免疫コンジュゲートは、
(a)請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディ、請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディ、または請求項5に記載の二重特異性抗体、および
(b)検出可能な標識、薬物、毒素、サイトカイン、放射性核種、または酵素、金ナノ粒子/ナノロッド、ナノ磁性粒子、ウイルスコートタンパク質またはVLP、またはその組み合わせからなる群から選択されるカップリング部分を含むことを特徴とする、前記免疫コンジュゲート。 - 請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディ、または請求項5に記載の二重特異性抗体の、薬剤、試薬、検出プレートまたはキットの調製における使用であって、
前記試薬、検出プレートまたはキットは、サンプル中のPD-L2の検出に使用され、前記薬剤は、PD-L2を発現する腫瘍の治療または予防に使用されることを特徴とする、前記使用。 - 請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディ、または請求項5に記載の二重特異性抗体の、薬剤、試薬、検出プレートまたはキットの調製における使用であって、
前記試薬、検出プレートまたはキットは、サンプル中のPD-L1の検出に使用され、前記薬剤は、PD-L1を発現する腫瘍の治療または予防に使用されることを特徴とする、前記使用。 - 医薬組成物であって、
(i)請求項1に記載の抗PD-L2ナノボディ、請求項2に記載の抗PD-L1ナノボディ、または請求項5に記載の二重特異性抗体、または請求項11に記載の免疫コンジュゲート、ならびに(ii)薬学的に許容されるベクターを含むことを特徴とする、前記医薬組成物。 - PD-L1および/またはPD-L2検出試薬であって、
前記検出試薬は、請求項11に記載の免疫コンジュゲートおよび検出学的に許容されるベクターを含むことを特徴とする、前記PD-L1および/またはPD-L2検出試薬。
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