JP7328261B2 - セリンプロテアーゼ阻害剤カザル(spik)組成物および方法 - Google Patents
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Description
本出願は、2018年3月6日に出願された米国仮出願第62/639,345号だけでなく、2018年3月7日に出願された米国仮出願第62/639,850号の出願日に対する優先権の利益も主張し、これらの出願の開示は参照により全体が本明細書に組み込まれる。
本発明は、Small Business Innovation Research(SBIR)プログラムの下で米国国立衛生研究所(NIH)により授与された助成金番号2R44CA165314-02A1およびFAIN番号R44CA165314の下での政府の支援により為された。政府は本発明においてある特定の権利を有する。
抗AS-SPIK抗体が、そのような抗体を作製する方法、そのような抗体を含む、医薬組成物を含む組成物、およびAS-SPIKの発現により特徴付けられる障害(例えば、肝臓がん)を診断するためのその使用と共に開示される。診断方法および抗AS-SPIK抗体を含むキットもまた開示される。
本明細書を解釈する目的のために、以下の定義が適用され、適切な場合、単数形において使用される用語はまた複数を含むことになる、逆もまた然りである。示される任意の定義が、参照により本明細書に組み込まれるいずれかの文献と矛盾する場合、以下に示す定義が優先される。
本発明は、少なくとも部分的に、ある特定の障害が特有の形態またはセリンプロテアーゼ阻害剤カザル(SPIK)の発現により特徴付けられるという発見に基づく。1つの(once)顕著な例は、肝細胞がん(HCC)および肝内胆管がん(ICC)が挙げられるがそれに限定されない肝臓がんである。より詳細には、本発明者らは、肝臓がんなどのある特定のがんは、分泌されるSPIKポリペプチドのN末端において追加の23アミノ酸を含む形態のSPIKを発現することを見出した。この23アミノ酸セグメント(配列番号:6)は、膵臓細胞などの正常細胞から分泌されるSPIKポリペプチド中には見出されない。これは、この23アミノ酸セグメントの最初の9アミノ酸は肝臓がん細胞株により分泌されるプロセシングされていないSPIK中に存在する場合があるという我々の以前の報告と合致する。Lu et al.,Immunology 2011;134(4):398-408。我々は、より長い形態のSPIKをAS-SPIK、すなわちAbnormal Secreted SPIKと称する場合がある。我々はまた、肝臓がん細胞により産生されるAS-SPIKをLC-SPIK、すなわちLiver Cancer Secreted SPIKと称する場合がある。AS-SPIKおよびLC-SPIKという用語は、本明細書において交換可能に使用される。例示的なAS-SPIKポリペプチドは配列番号:2のアミノ酸配列を有することができる。我々は、膵臓細胞などの正常細胞により分泌される形態のSPIKをNS-SPIK、すなわちNormal Secreted SPIKと称する場合がある。例示的なNS-SPIKポリペプチドは配列番号:4のアミノ酸配列を有することができる。我々はまた、AS-SPIKのコンホメーション(例えば、3D構造)がNS-SPIKのものとは異なることを見出した。
本明細書において提供される組成物は、AS-SPIKに特異的または優先的に結合しかつNS-SPIKに結合しない抗体を含む。
本明細書において提供される抗体は、配列番号:2のアミノ酸1~23内のエピトープ、またはこの領域内の少なくとも1つのアミノ酸を含有するエピトープに特異的または優先的に結合する抗体を含むことができる。エピトープはコンホメーショナルエピトープ(コンホメーション特異的エピトープ)またはリニアエピトープとすることができる。一部の実施形態では、抗体は、配列番号:6に示されるAS-SPIKタンパク質配列中のエピトープに特異的または優先的に結合する。一部の実施形態では、抗体は、配列番号:6の少なくとも1つのアミノ酸を含むコンホメーション特異的エピトープに特異的または優先的に結合する。
一部の実施形態では、本発明の組成物は、SPIKポリペプチド、例えば、上記の任意の核酸配列によりコードされるAS-SPIKポリペプチドを含むことができる。「ペプチド」、「ポリペプチド」、および「タンパク質」という用語は本明細書において交換可能に使用されるが、典型的にはそれらは異なるサイズのペプチド配列を指す。それらがアミノ酸残基の直鎖状ポリマーであることを伝えるため、および全長タンパク質からそれらを区別することを助けるために、本発明のアミノ酸ベースの組成物を「ポリペプチド」と呼ぶことがある。本発明の実施形態によるポリペプチドは、AS-SPIKポリペプチドまたはNS-SPIKポリペプチドの断片を「構成」すること、または「含む」ことができ、また本発明は、AS-SPIKポリペプチドまたはNS-SPIKポリペプチドの生物学的に活性なバリアントを構成する、または含むポリペプチドを包含する。ポリペプチドは、したがって、AS-SPIKポリペプチドまたはNS-SPIKポリペプチド(またはその生物学的に活性なバリアント)の断片のみを含むことができるが、追加の残基もまた含んでもよいことが理解されるであろう。生物学的に活性なバリアントは、プロテアーゼを阻害するために充分な活性を保持する。
「核酸」および「ポリヌクレオチド」という用語は、cDNA、ゲノムDNA、合成DNA、および核酸アナログを含有するDNA(またはRNA)を含む、RNAおよびDNAの両方を指すために本明細書において交換可能に使用され、これらのいずれも本発明のポリペプチドをコードする場合があり、またこれらの全ては本発明により包含される。ポリヌクレオチドは本質的に任意の三次元構造を有することができる。核酸は、二本鎖または一本鎖(すなわち、センス鎖もしくはアンチセンス鎖)とすることができる。ポリヌクレオチドの非限定的な例としては、遺伝子、遺伝子断片、エクソン、イントロン、メッセンジャーRNA(mRNA)およびその部分、転移RNA、リボソームRNA、siRNA、マイクロRNA、リボザイム、cDNA、組換えポリヌクレオチド、分岐ポリヌクレオチド、プラスミド、ベクター、任意の配列の単離されたDNA、任意の配列の単離されたRNA、核酸プローブ、ならびにプライマーだけでなく、核酸アナログも挙げられる。本発明の文脈において、核酸は、天然に存在するAS-SPIKポリペプチドまたはNS-SPIKポリペプチドまたはその生物学的に活性なバリアントの断片をコードすることができる。核酸の非限定的な例としては、配列番号:1またはその生物学的活性断片、および配列番号:3または配列番号:5またはその生物学的活性断片がそれぞれ挙げられる。断片は、少なくとも66ヌクレオチド、好ましくは少なくとも54ヌクレオチドの長さを有してもよく、より好ましくは、配列番号:3の28番目から105番目(それを含む)のヌクレオチドを有し、よりいっそう好ましくは、配列番号:3の49番目から105番目(それを含む)のヌクレオチドを有する。Lu et al.,Immunology 2011;134(4):398-408。
本明細書に開示される組成物は、AS-SPIKの発現により特徴付けられる障害の診断および/または処置のために一般的に、かつ様々に有用である。そのような障害としては、がん、ウイルス感染症、および炎症性障害が挙げられるがそれに限定されない。1つの顕著な例は肝臓がんである。他の非限定的な例としては、「がん」という用語の定義との関連で本明細書に記載したがんが挙げられる。したがって、本発明の態様は、前記がん(例えば、肝臓がん)を有する対象、または前記がんを発生するリスクがある対象においてがんを診断および/または処置する方法に関与する。「対象」、「患者」、および「個体」という用語は本明細書において交換可能に使用される。
AS-SPIKの発現により特徴付けられる障害の1つの顕著な例は肝臓がんである。肝臓がんは、肝臓への損傷または肝臓機能不全を結果としてもたらす広範な状態を包含する。肝臓がんは、例えば、感染性因子、疾患、外傷、もしくは遺伝学的条件、または感染性因子、疾患、外傷、および遺伝学的条件の組合せの結果としてもたらされる可能性がある。
「生物学的試料」、「試験試料」または「試料」は、患者から得られるまたは患者に由来する試料を指す。試料は例えば体液試料とすることができる。例示的な体液試料としては、血液、血清、血漿、尿、唾液、精液、糞便、痰、脳脊髄液、涙液、粘液、羊水、またはその任意の組合せが挙げられる。一部の実施形態では、生物学的試料は組織試料とすることができる。例示的な組織試料としては、肝臓生検検体などの生検検体、または患者の細胞から調製された初代細胞培養検体、または初代培養物からの上清が挙げられる。
本発明の態様は、試験試料中のAS-SPIKの存在または非存在を検出するために使用することができる診断アッセイ方法、例えば、診断イムノアッセイを含む。AS-SPIKの検出のために使用されるイムノアッセイフォーマットは、様々な方法において構成することができる。イムノアッセイは、均質および不均質アッセイ、競合および非競合アッセイ、直接および間接アッセイ、ならびに「サンドイッチ」アッセイを含むことができる。有用なフォーマットとしては、酵素イムノアッセイ、例えば、酵素連結免疫吸着アッセイ(ELISA)、化学発光免疫アッセイ(CLIA)、電気化学発光アッセイ、ラジオイムノアッセイ、免疫蛍光、蛍光異方性、免疫沈降、平衡透析、免疫拡散、イムノブロッティング、凝集、発光近接アッセイ、および比濁分析が挙げられるがそれに限定されない。
生物学的試料中のAS-SPIKのレベルは、参照試料のそれと比較することができる。標準的な参照レベルは、典型的には、個体の集団に由来する平均AS-SPIKレベルを表す。参照集団は、類似の年齢、身体サイズ、民族的背景または対象とする個体としての一般的健康状態の個体を含んでもよい。したがって、患者の試料中のAS-SPIKレベルは、1)肝臓がんを有することが既知であり、かつAS-SPIKを発現し、またその体液がAS-SPIKを含有する個体;2)肝臓がんを有さずかつその体液が低いレベルのAS-SPIKを含有する個体に由来する値と比較することができる。
一部の実施形態では、方法は、標準的な参照セットの使用を含むことができる。参照セットは、精製されたSPIKポリペプチドまたはその断片の1つまたは複数の試料を含むことができる。複数の試料が使用される場合、これらは異なる濃度とすることができる。一実施形態では、参照セットは、50ng/ml、30ng/ml、8ng/ml、3ng/ml、1ng/mlおよび0ng/mlの濃度のAS-SPIKである組換えAS-SPIKの6つの試料を含むことができる。組換えAS-SPIKは、IM-CA22などの抗AS-SPIK抗体または抗タグ抗体のいずれかを使用してアフィニティークロマトグラフィー(HPLC)を用いて精製することができる。血液または他の体液中の参照値は変動し得る。しかしながら、当業者は、各々の集団の異なる体液中のAS-SPIKの平均レベルを決定し、かつ決定すべき肝臓がんを有する患者におけるAS-SPIKのレベルが参照値より充分に高い一方、検出すべき肝臓がんを患っていない患者または健常個体のレベルが各々の参照値より充分に低いことを確実にする各々の参照値を決定することができる。好ましい実施形態では、参照値は、通常の健常個体の集団からの試料中に見出されるAS-SPIKの平均レベルより約5%、より好ましくは約7%、よりいっそう好ましくは約10%高い。生物学的試料中および対照試料中のAS-SPIKのレベルは同じ方法を介して決定され、それにより比較可能性が与えられることが留意される。例えばAS-SPIKレベルの絶対値は、上記のような組換えAS-SPIKを使用してキャリブレーション曲線を介して決定することができる。
本明細書に記載の組成物は、例えば、生物学的試料中のAS-SPIKの検出、特定、および定量化において使用するために、ラベルを付けた好適な容器中に包装することができる。「キット」とも称される製品は、本発明の抗体、培地、陽性対照として使用するための抗原の精製された試料、またはその任意の組合せを含んでもよい。キットに含まれる容器は、AS-SPIKに特異的または優先的に結合するがNS-SPIKに対してはそうではない本発明の抗体を含む組成物を含むことができる。キットはまた、AS-SPIKおよびNS-SPIKの両方に結合する抗体も含むことができる。試験試料および抗体を希釈または再構成するための好適な緩衝液もまた提供されてもよい。成分の一部は乾燥形態で提供されてもよく、また再構成を必要としてもよい。抗SPIK抗体は、アッセイデバイス、例えば、マイクロプレートにあらかじめ結合することができる。したがって、一実施形態では、AS-SPIKの検出、特定および定量化のためのキットは、抗AS-SPIK抗体および汎SPIK抗体を含む。キットは、検出可能な標識を任意選択的に備えてもよい。
HPLCを使用してAS-SPIKをS2-3細胞の培地から精製し、NS-SPIKを膵臓細胞の培地から精製した。1μgの各タンパク質を5~15%の勾配のSDS-PAGEゲル(Invitrogen、Carlsbad,CA)に流した。PVDF膜に転写した後、タンパク質をクマシーブルー染色により可視化した。図1は、膵臓細胞により産生されたNS-SPIKのサイズは約6.5KDであることを示し、これは刊行された配列データと合致しており、NS-SPIK内の最初の23アミノ酸が分泌の間に除去されることを示唆する(図2、下線を引いた配列)。Horii et al.,Biochemical and biophysical research communications 1987;149(2):635-641;Bartelt et al.,Arch Biochem Biophys.1977;179(1):189-199。対照的に、AS-SPIKのサイズはNS-SPIKより大きく、約10~15KDである。
NS-SPIKおよびAS-SPIKは共通の配列(残基24~79)を共有する(図3を参照のこと)。AS-SPIKにおける追加のアミノ酸がタンパク質コンホメーションに効果を有するかどうかを解析した。抗体IM-BA1に対するAS-SPIKおよびNS-SPIKの結合活性を測定した。IM-BA1は本発明者らが開発したモノクローナル抗体であり、AS-SPIKおよびNS-SPIKの両方に見出されるC1-C2領域に結合する(図3および図4)。96ウェルプレートを、それぞれS2-3および膵臓細胞培地から部分的に精製されたAS-SPIKおよびNS-SPIKでコーティングした後、モノクローナル抗体IM-BA1と共にインキュベートした。37℃で1時間のインキュベーション後、洗浄緩衝液(PBS、リン酸緩衝生理食塩水、pH7.4、0.5%のTween 20を含む)を用いてプレートを3回洗浄した後、ウマペルオキシダーゼ(HRP)を用いて標識された抗マウス抗体と共にインキュベートした。TMB(Thermo Scientific、Rockford,lL)とのインキュベーション後に顕色し、それをOD450nm(光学密度)においてプレートリーダーにより測定した。図5に示すように、IM-BA1はNS-SPIKに強く結合したが、AS-SPIKには弱く結合したかまたは全く結合しなかった。AS-SPIKに結合するIM-BA1の能力の強度はバックグラウンドレベルに類似しており(図5、バックグラウンド)、IM-BA1とAS-SPIKとの非常に弱い相互作用を示唆した。これらのデータは、AS-SPIKのN末端の追加的長さは、タンパク質のコンホメーションの変化を引き起こし、またはIM-BA1の標的エピトープへのアクセスを遮断することを示唆した。
AS-SPIKは、そのN末端において23個の追加のアミノ酸を有するという点でNS-SPIKとは異なる(図3)。したがって、抗AS-SPIK抗体はこの領域を特異的または優先的に認識するはずである。そのような抗体を生成するために、この領域の異なるサブセットを含有する一連の組換えタンパク質を設計し、それを使用してマウスを免疫化した。組換えタンパク質は、1)GSTおよびHisなどのタグ、2)トロンビン切断部位(アミノ酸VPRGS(配列番号:66))を含むアミノ酸配列VPRGSPGIHRA(配列番号:65)だけでなく、配列番号:6のサブセットである22アミノ酸までの異なる長さの配列などのリンカー、ならびに3)AS-SPIKおよびNS-SPIKの共通の領域(配列番号:4)からなる(図6を参照のこと)。我々の研究は、AS-SPIKの追加の23AA断片におけるアミノ酸の一部は、AS-SPIKのみを認識できる抗体の生成において不可欠であることを示唆する。
周知かつ標準的な手順によりモノクローナル抗体を生成した。簡潔に述べれば、以前に記載された組換えタンパク質を用いてマウスを免疫化した。血液を3または4回のインバースメント(imbursements)後にELISAにより試験した。S2-3細胞からの部分的に精製されたAS-SPIKおよび膵臓細胞からのNS-SPIKを96ウェルプレートを使用して捕捉した。血液をプレートと反応させ、HRPを用いて標識された抗マウス抗体とのプレートのインキュベーションにより顕色させ、基質TMBとの反応後に光学密度を測定した。AS-SPIKのみに結合することができる(かつNS-SPIKに結合しない)抗体を産生したマウスを屠殺した。脾臓を次に骨髄腫細胞と融合させた。融合後、クローンをスクリーニングし、AS-SPIKに結合する抗体を産生した陽性クローンを以前のようにELISAにより評価および選択した。最後に、AS-SPIKに対する高い親和性を有する最良のハイブリドーマを選んだ。この技術を使用して、22個より多くのモノクローナル抗体を選択した。図7は、IM-C18、IM-CA22、IM-CA29、IM-CA34、IMCA46およびIM-CA71と命名した6つのクローンを示し、これらは、AS-SPIKへの高い結合活性を示したが、これらのNS-SPIKへの結合活性は陰性対照としてのバックグラウンドレベルに過ぎない(図7、陰性対照)。対照的に、AS-SPIKおよびNS-SPIKの共通の区画に結合できる陽性対照、モノクローナル抗SPIK抗体MA86は、両方のSPIKに対して高い結合活性を示した(図7、陽性対照)。
IM-CA系列の抗体(配列番号7~14)などのAS-SPIKに特異的なモノクローナル抗体だけでなく、IM-BA1、IM-S14などのAS-SPIKおよびNS-SPIKの共通の領域に結合する他の抗体の軽鎖(VL)および重鎖(VH)の可変領域の配列も決定した。さらに、CB77などの、AS-SPIKに対してはるかに弱い結合親和性を有するがNS-SPIKに対してはそうではない抗体の配列もまた決定した。上記の抗体の全てのCDRのシークエンシングも行った。全ての記載した抗体の配列を、North Carolina State Universityにより開発されたソフトウェアプログラム「BioEdit」を使用して比較した。配列が少なくとも50%相同的である場合、それらは顕著な類似性を有すると考えられる。IM-CA46、IM-CA29、IM-CA34およびIM-CA71は同一の配列を有するので(多くは同じ親クローンからのものであり得る)、さらなる研究のためにIM-CA46を使用することのみを選択した。
可変領域中のCDRは抗体の特異性を決定するので、研究用抗体のCDRとAS-SPIKへの結合活性との関係性を研究した。CA22と57%の相同性のCDRL2および69%のVLフレーム相同性を有するCA18は、LS-SPIKに対してほぼ同じ結合親和性を有し、CA22と顕著な類似性(それぞれ60%および50%の相同性)を有する2つのCDR(CDRH1およびCDRH2)ならびに68%のVHフレーム相同性を有するCA46はAS-SPIKに対して顕著な結合親和性を有する(CA22の70%)ことを見出した。CDRおよび可変鎖の相同性が低くなるとAS-SPIKに結合する親和性はより弱くなる。CA18およびCA46と比較して、CB77はAS-SPIKに対してCA22の20%の親和性を有するに過ぎない。より重要なことに、CA22とCDRまたは可変領域の両方においていかなる顕著な類似性も有しない抗体は、BA1およびS14などのようにSPIKの共通の領域に結合するか、または抗VD受容体などのようにSPIKに完全に無関連であるのかにかかわらず、AS-SPIKに全く結合しない(表1)。これらの結果は、抗体のCDR相同性、恐らくは可変領域の相同性がAS-SPIKへの抗体の結合活性に高度に関係することを暗示する。
免疫沈降アッセイは、IM-CA22だけでなく、他の抗AS-SPIK抗体もAS-SPIKと免疫複合体を特異的に形成することができることを示した。IM-CA22をアガロースビーズに共有結合的に連結させた後、ビーズをS2-3細胞の培地からのAS-SPIKと共にインキュベートした。洗浄して非特異的なタンパク質を除去した後、アガロースビーズを遠心分離により収集した。ビーズに結合したタンパク質をpH2.5の緩衝液処理によりビーズから解放させ、SDS PAGEにおいて分離した。沈殿したタンパク質をPVDF膜に転写し、抗SPIKコンジュゲートを用いて膜を染色した。図8に示すように、抗AS-SPIK抗体IM-CA22およびAS-SPIKの両方の存在下でAS-SPIKを沈殿させた(図9の3および4を参照のこと、重複)。AS-SPIKまたはIM-CA22が省略された対照試料中ではAS-SPIKは検出されなかった(図9の1および2を参照のこと)。これらのデータは、IM-CA22はAS-SPIKと複合体を形成することができ、該複合体を溶液から沈殿させることができることを指し示す。
AS-SPIKを特異的に検出するためのELISAアッセイを確立した。96ウェルプレートを100μl/ウェル(1μg/ml)のポリクローナル抗SPIK抗体でコーティングした。非特異的結合を1%のウシ血清アルブミン(BSA)を用いて遮断した。プレートを次にS2-3細胞または膵臓細胞の100μl/ウェルの培養培地と37℃で2時間反応させて、AS-SPIKまたはNS-SPIKが捕捉されることを確実にした。洗浄後、HRPを用いて標識されたモノクローナル抗AS-SPIK抗体IM-CA22と共にプレートを37℃で1時間インキュベートして、抗体-抗原複合体(AS-SPIK複合体)を形成させた。洗浄して未結合のIM-CA22を除去した後、形成されたAS-SPIK複合体を定量化するために使用した基質TMBを加えることにより、光学密度(OD450nm)で顕色させた。図10は、IM-CA22のみがS2-3の培地中でAS-SPIKとAS-SPIK複合体を形成したことを示す(図10、S2-3)。膵臓細胞培地中のSPIKの存在がウエスタンブロットにより確認されたが(図7、MA86)、バックグラウンドレベルのみの光学密度(陰性対照と同じ)がIM-CA22を使用して膵臓細胞培地中に検出された(図10、PanC1および対照)。
実施例8に記載の免疫アッセイを使用して、AS-SPIK複合体の濃度を定量的に決定した。簡潔に述べれば、96ウェルプレートをポリクローナル抗SPIK抗体でコーティングした。非特異的結合を1%のBSAを用いて遮断した。PMVプロモーターの制御下のSPIK遺伝子全体をコードするベクターから生成され、親和性カラムにより精製された一連の組換えAS-SPIKポリペプチドを1ng/ml~100ng/mの濃度範囲でプレートに加えた。HRP標識されたIM-CA22抗体を加えることによりAS-SPIK複合体を形成させ、基質TMBを加えることにより顕色させた。プレートリーダーを用いて光学密度を測定した。図11に示すように、形成されたAS-SPIK複合体の濃度はAS-SPIKの濃度に正比例した。この直線状の関係性は60ng/mlまでのAS-SPIK濃度において維持された。グラフの直線部分における最良適合線のR値は0.94であり、AS-SPIKとAS-SPIK複合体形成との相関を指し示した。
AS-SPIK複合体を検出するためのアッセイを開発した。アッセイは、1)HPRを用いて標識されたIM-CA22抗体(本発明の任意のAS-SPIK抗体は、IM-CA22の代わりにまたはIM-CA22に加えて使用することができる;アッセイは、本発明のAS-SPIK抗体の混合物を含むことが可能である);2)IM-CA22との一致したペアの一部として作用する(異なる領域に結合し、IM-CA22結合に干渉しない)ポリクローナルまたはモノクローナル抗SPIK抗体で固定化された96ウェルプレート;3)6つの異なる濃度の精製された組換えAS-SPIKからなる標準的な参照セット;ならびに4)陽性対照としての100μlのS2-3細胞培地および陰性対照としての100μlの膵臓細胞培地を含んだ。我々のアッセイの感度を決定するために、精製された組換えAS-SPIKを、1ng/ml~100ng/mlの範囲に及ぶ一連の濃度において、固定化されたポリクローナル抗SPIK抗体を含有するプレートを用いてインキュベートした後、IM-CA22コンジュゲートと反応させてAS-SPIK複合体を形成させた。TMBを加えた後、光学密度を測定した。結果は、このアッセイを使用してAS-SPIK複合体の推定される最小の検出可能な濃度が1.0ng/mlであることを示した。線形曲線が回帰分析を用いて生成された(図12)。試験の直線範囲はおおよそ1ng/ml~50ng/mlであり、これは6つの独立した試験により確認され、図12に示される。IBMソフトウェアSPSS 22(IBM、Armonk,NY)を使用して信頼性を解析し、試験についてのクロンバックのアルファ値は0.998であり、優れた一貫性を示唆した。標準参照曲線の式は、AS-SPIK複合体(ng/ml)=31.5×OD450nm-6.80、R=0.95である。
トリプシン基質BML(Boc-Gln-Ala-Arg-AMC、Enzo Life Sciences、Farmingdale,NY)を使用してSPIK活性に対する本発明のAS-SPIK抗体の効果を測定した。合成基質のトリプシン消化は蛍光色素(AMC)を生成し、これは蛍光分光計により検出可能である。蛍光の強度はトリプシン活性のレベルと直接的に相関し、定量的に測定することができる。BMLのトリプシン消化へのAS-SPIKの添加は、トリプシン活性を遮断し、結果として生じる蛍光を低減する。図13に示すように、2ng/mlのトリプシン(Sigma、ST Louis、MO)へのS2-3細胞の培地から精製された3nMのAS-SPIKの添加は、60分後に1μMのBMLのトリプシン消化を70%阻害した(図13、トリプシン単独およびAS-SPIK)。トリプシン活性を回復させる抗AS-SPIK抗体の能力を評価するために、3nMのAS-SPIKを最初に1μg/mlのIM-CA22と20分間インキュベートした後、2ng/mlのヒトトリプシンと室温で30分インキュベートした。1μMのBMLを次に加え、380nmでの励起および440nmでの発光と共に0、20、40、60、80および100分後に蛍光分光計により蛍光を測定した。式:AS-SPIK活性の阻害%=(ΔD-ΔS)/(ΔG-ΔS)×100を使用して、トリプシン消化が最大に達する60分時にAS-SPIK活性の阻害を算出した。ここで、ΔGは、0分時および60分時のトリプシン処理単独の間の吸光度の差異を表し、ΔSは、0分時および60分時のAS-SPIKの添加の間の吸光度の差異を表し、ΔDは、0分時または60分時のいずれかにおける、最初に抗AS-SPIKとインキュベートされた後にトリプシンとインキュベートされたAS-SPIKの間の吸光度の差異を表す。図13は、IM-CA22は60%より多くのトリプシン活性を回復させることができたことを示す。この結果は、抗AS-SPIK抗体がAS-SPIK活性を阻害できることを暗示する。
HCC患者からの合計で58の血清検体ならびに健常個体、B型/C型肝炎患者、肝硬変患者、および膵炎患者からの88の血清検体を実施例9に記載のアッセイ系を使用して試験し、20μlの各血清検体を希釈緩衝液で100μlに希釈し、解析のために使用した。各試料を3回ずつ試験した。各試料についてのOD450nm値の平均および標準偏差(SD)を算出し、標準的な参照セットにより生成された標準曲線との比較によりAS-SPIK複合体レベルを決定した。IBMソフトウェアSPSS 22を使用して統計解析を行った。AS-SPIKレベルが対照対象と比較してHCC患者において有意に異なるかどうかを決定するために、一元配置分散分析を使用し、多重ペアワイズ比較を行った。HCC患者の血清中のAS-SPIKの平均濃度は43ng/mlであり、対照においてはわずか2~11ng/mlであった。より特異的には、HCC患者におけるAS-SPIKの平均レベル(43ng/ml)は、肝炎、肝硬変、膵炎を有する患者および健常対象(それぞれ11ng/ml、10ng/ml、2.3ng/mlおよび3.2ng/ml)におけるより有意に高かった(P<0.001)。22ng/mlのカットオフ値を使用して、HCCについてのアッセイの感度および特異性はそれぞれ79%および94%であった(図15)。患者の年齢、性別、およびALTなどの肝臓機能の亜群の間でAS-SPIKレベルの有意差はなかった(全てP>0.05)。これらの結果は、AS-SPIKはHCCの診断のための有用なバイオマーカーであることを示した。膵炎を有する患者の血清中のNS-SPIKの存在はAS-SPIKの検出を妨げなかった。これは、高レベルのNS-SPIK(平均37ng/ml、95% CI:28.8~44.2、t検定)が膵炎を有する患者において観察されたが健常対照においては観察されなかったとはいえ、膵炎を有する患者および健常対象の血清中のAS-SPIK複合体レベルは有意に異ならないという観察(P>0.05)によりサポートされた(図14、膵炎および健常)。
我々のシステムがその非常に最初期のステージの肝細胞がん(BCLCステージ0;サイズ<2cm)を検出できるかどうかを解析した。非常に早期ステージのHCCを有する患者からの15の血清検体を実施例9に記載の方法を使用し、対照と比較した。実施例9に記載したものと同じ分散分析方法を使用して結果を解析した。図16に示すように、非常に早期ステージのHCCを有する患者の血清中のAS-SPIKのレベルの平均は36ng/ml(95% CI:23.49~48.37)であった。このレベルは、対照群におけるレベルより有意に高かった(P<0.001)。これらの結果は、AS-SPIKは非常に早期ステージのHCCの診断のための有用なバイオマーカーであることを指し示す。
HCCおよびICCは共に肝臓がんの種類であり、SPIK mRNAの過剰発現がHCCおよびICCの両方において実証されたので(Lee et al.,The America Journal of Gastroenterology 2008;103(7):1716-1720)、我々のシステムがICCを有する患者の血清中のAS-SPIKの増加を検出できるか否かの研究を開始した。表2は、定量的解析が、異なるステージのICCを有する5人全ての患者は血液中のAS-SPIKのレベルの有意な増加を有することを示唆することを示した。HCC検出(実施例9)におけるようにカットオフ値として22ng/mlを使用する場合、5人全ての患者は陽性の結果を有する。試験した患者におけるAS-SPIKの平均値は64ng/ml(95% CI、24.8~104.1)であり、これは全ての対照群:B型/C型肝炎の11ng/ml(95% CI:2.14~19.98)(p<0.001)、肝硬変の10ng/ml(95% CI:4.15~16.19)(P<0.001)、および健常対象の3.2ng/ml(95% CI:1.22~5.23)(p<0.001)から有意に異なる。
Claims (20)
- AS-SPIK(配列番号:2)に特異的に結合し、かつNS-SPIK(配列番号:4)に結合しない、単離された抗AS-SPIK抗体、またはその抗原結合断片であって、
(a)配列番号:15のCDRH1配列、配列番号:19のCDRH2配列、配列番号:23のCDRH3配列、配列番号:27のCDRL1配列、配列番号:31のCDRL2配列、および配列番号:35のCDRL3配列;または、
(b)配列番号:16のCDRH1配列、配列番号:20のCDRH2配列、配列番号:24のCDRH3配列、配列番号:28のCDRL1配列、配列番号:32のCDRL2配列、および配列番号:36のCDRL3配列;または、
(c)配列番号:17のCDRH1配列、配列番号:21のCDRH2配列、配列番号:25のCDRH3配列、配列番号:29のCDRL1配列、配列番号:33のCDRL2配列、および配列番号:37のCDRL3配列;または、
(d)配列番号:18のCDRH1配列、配列番号:22のCDRH2配列、配列番号:26のCDRH3配列、配列番号:30のCDRL1配列、配列番号:34のCDRL2配列、および配列番号:38のCDRL3配列
を含む、
抗体または抗原結合断片。 - 前記CDRH1、CDRH2、CDRH3、CDRL1、CDRL2、およびCDRL3配列がフレームワーク配列内に存在する、請求項1に記載の抗体または抗原結合断片。
- 前記フレームワーク配列の少なくとも一部分がヒトコンセンサスフレームワーク配列を含む、請求項2に記載の抗体または抗原結合断片。
- (a)配列番号:7の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する重鎖可変領域配列および配列番号:11の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する軽鎖可変領域配列、又は、
(b)配列番号:8の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する重鎖可変領域配列および配列番号:12の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する軽鎖可変領域配列、又は、
(c)配列番号:9の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する重鎖可変領域配列および配列番号:13の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する軽鎖可変領域配列、又は、
(d)配列番号:10の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する重鎖可変領域配列および配列番号:14の配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有する軽鎖可変領域配列
を含む、請求項3に記載の抗体または抗原結合断片。 - (a)配列番号:7の配列重鎖可変領域配列および配列番号:11の配列軽鎖可変領域配列、又は、
(b)配列番号:8の配列重鎖可変領域配列および配列番号:12の配列軽鎖可変領域配列、又は、
(c)配列番号:9の配列重鎖可変領域配列および配列番号:13の配列軽鎖可変領域配列、又は、
(d)配列番号:10の配列重鎖可変領域配列および配列番号:14の配列軽鎖可変領域配列を含む、請求項4に記載の抗体または抗原結合断片。 - 多重特異的である、請求項1に記載の抗体または抗原結合断片。
- 二重特異的である、請求項1に記載の抗体または抗原結合断片。
- モノクローナルである、請求項1に記載の抗体または抗原結合断片。
- 対象がAS-SPIKの発現により特徴付けられる障害を有するまたはその障害を発生するリスクがあるかどうかを決定するための診断キットであって、診断キットは、
(a)前記対象からの生物学的試験試料を、AS-SPIK(配列番号:2)に特異的に結合し、かつNS-SPIK(配列番号:4)に結合しない、抗AS-SPIK抗体または抗原結合断片と接触させて、抗AS-SPIK-抗体複合体を生成することであって、
抗AS-SPIK抗体または抗原結合断片は、
(i)配列番号:15のCDRH1配列、配列番号:19のCDRH2配列、配列番号:23のCDRH3配列、配列番号:27のCDRL1配列、配列番号:31のCDRL2配列、および配列番号:35のCDRL3配列;または、
(ii)配列番号:16のCDRH1配列、配列番号:20のCDRH2配列、配列番号:24のCDRH3配列、配列番号:28のCDRL1配列、配列番号:32のCDRL2配列、および配列番号:36のCDRL3配列;または、
(iii)配列番号:17のCDRH1配列、配列番号:21のCDRH2配列、配列番号:25のCDRH3配列、配列番号:29のCDRL1配列、配列番号:33のCDRL2配列、および配列番号:37のCDRL3配列;または、
(iv)配列番号:18のCDRH1配列、配列番号:22のCDRH2配列、配列番号:26のCDRH3配列、配列番号:30のCDRL1配列、配列番号:34のCDRL2配列、および配列番号:38のCDRL3配列
を含む、
生成すること;
(b)前記生物学的試験試料中の前記AS-SPIK-抗体複合体の濃度を検出すること;および
(c)前記AS-SPIK-抗体複合体の前記濃度を参照値と比較して、前記対象が前記障害を有するまたはその障害を発生するリスクがあるかどうかを決定すること
のための指示書を含む、診断キット。 - 前記抗体または抗原結合断片が、検出可能な標識を含む、請求項9に記載の診断キット。
- 前記障害が肝臓障害である、請求項9に記載の診断キット。
- 前記肝臓障害が、肝細胞がんである、請求項11に記載の診断キット。
- 前記肝臓障害が、肝内胆管がんである、請求項11に記載の診断キット。
- 前記肝臓障害が、肝臓のウイルス感染症である、請求項11に記載の診断キット。
- 前記肝臓障害が、炎症性肝臓障害である、請求項11に記載の診断キット。
- 前記炎症性肝臓障害が、肝臓の硬変である、請求項15に記載の診断キット。
- AS-SPIK(配列番号:2)に特異的に結合し、かつNS-SPIK(配列番号:4)に結合せず、
(a)配列番号:15のCDRH1配列、配列番号:19のCDRH2配列、配列番号:23のCDRH3配列、配列番号:27のCDRL1配列、配列番号:31のCDRL2配列、および配列番号:35のCDRL3配列;または、
(b)配列番号:16のCDRH1配列、配列番号:20のCDRH2配列、配列番号:24のCDRH3配列、配列番号:28のCDRL1配列、配列番号:32のCDRL2配列、および配列番号:36のCDRL3配列;または、
(c)配列番号:17のCDRH1配列、配列番号:21のCDRH2配列、配列番号:25のCDRH3配列、配列番号:29のCDRL1配列、配列番号:33のCDRL2配列、および配列番号:37のCDRL3配列;または、
(d)配列番号:18のCDRH1配列、配列番号:22のCDRH2配列、配列番号:26のCDRH3配列、配列番号:30のCDRL1配列、配列番号:34のCDRL2配列、および配列番号:38のCDRL3配列
を含む、抗AS-SPIK抗体、または抗原結合断片を含むキット。 - SPIKに特異的に結合する抗体または抗原結合断片をさらに含む、請求項17に記載のキット。
- AS-SPIK及びNS-SPIKの両方に特異的に結合する抗体または抗原結合断片をさらに含む、請求項17に記載のキット。
- AS-SPIKに特異的に結合し、かつNS-SPIKに結合しない抗AS-SPIK抗体、または抗原結合断片は、アッセイデバイスにあらかじめ結合されている、請求項17に記載のキット。
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