JP6822973B2 - 凝集の検出方法及びその方法を実施する際に使用する組成物 - Google Patents
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Description
本願は、2015年4月17日に提出された米国特許仮出願第62/149,324号に基づく恩典を主張するものであり、この仮出願は、参照により、その全体が本明細書に援用される。
本発明は、National Institutes of Healthにより拠出されたGMO059907−13号助成金の下、米国政府の支援によりなされたものである。米国政府は本発明において一定の権利を有する。
「BERK−284WO_SeqList_ST25.txt」というテキストファイルとして、2016年4月15日に作成した4KBのサイズの配列表を本明細書とともに提供する。このテキストファイルの内容は、参照により、その全体が本明細書に援用される。
利用可能な多くの生体分子検出アッセイ方法のうち、ラテックス粒子の凝集を含む、粒子の凝集に基づく方法は、生物学研究、ならびにヒト及び動物用医療において、特には、流体試験サンプル中の抗体を検出するために、広く使用され続けている。凝集アッセイの手順には、簡潔、応用範囲が広い、無害といった利点がある。また、凝集アッセイは、概して迅速であり、短期間で結果が得られる。これらの利点にもかかわらず、凝集アッセイは、検出限界が劣っており、かつ/または凝集アッセイでは大量のサンプルが必要であることから、解析目的では酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)が好まれ、凝集アッセイは一般的に見過ごされている。
サンプル中の抗原結合物質の検出方法を提供する。この方法の態様には、近接に基づく抗原結合ポリヌクレオチドの高感度な会合によって、ポリヌクレオチド結合抗原を伴う抗原結合物質が凝集したことを検出することが含まれる。この方法の態様は、核酸の増幅を通じて、上記のような近接に基づく会合を検出する方法も含む。加えて、本発明の方法の様々な実施形態を実施するのに有用な組成物、例えば試薬、キット及び器具を提供する。
[本発明1001]
サンプル中の抗原結合物質の検出方法であって、
a)前記サンプルを、第1のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた、抗原である第1の分子、及び第2のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた、抗原である第2の分子に、前記第1の分子と前記第2の分子に結合した前記抗原結合物質を含む複合体を形成させるのに十分な条件で、接触させる工程と、
b)アンプリコンを形成させるために、前記複合体の前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドを結合させる工程と、
c)増幅産物を生成するために、前記アンプリコンを増幅する工程と、
d)前記増幅産物を検出する工程であって、前記増幅産物の検出によって、前記抗原結合物質の検出を可能にする、前記工程と
を含む前記方法。
[本発明1002]
前記第1の分子の前記抗原と前記第2の分子の前記抗原が同じである、本発明1001の方法。
[本発明1003]
前記抗原結合物質が抗体である、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1004]
前記抗体が、免疫グロブリンA(IgA)、免疫グロブリンD(IgD)、免疫グロブリンE(IgE)、免疫グロブリンG(IgG)または免疫グロブリンM(IgM)である、本発明1003の方法。
[本発明1005]
前記抗原がポリペプチドである、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1006]
前記結合工程が、架橋ポリヌクレオチドを前記第1のポリヌクレオチド及び前記第2のポリヌクレオチドにハイブリダイズさせることを含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1007]
前記結合工程が、前記第1のポリヌクレオチドのヌクレオチド配列を前記第2のポリヌクレオチドの相補的なヌクレオチド配列にハイブリダイズさせることを含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1008]
前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドの前記相補的なヌクレオチド配列が、少なくとも6ヌクレオチド長である、本発明1007の方法。
[本発明1009]
前記結合工程が、前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドをライゲーションすることを含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1010]
前記サンプルをスプリントポリヌクレオチドと接触させる工程をさらに含み、前記結合工程が、前記スプリットポリヌクレオチドを前記第1のポリヌクレオチドもしくは前記第2のポリヌクレオチド、または前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドの両方にライゲーションすることを含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1011]
前記第1のポリヌクレオチドと、前記第2のポリヌクレオチドと、前記架橋ポリヌクレオチドが、DNAポリヌクレオチドであり、前記ライゲーションが、前記サンプルをDNAリガーゼと接触させることを含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1012]
架橋ポリヌクレオチドを前記第1のポリヌクレオチド及び前記第2のポリヌクレオチドにハイブリダイズさせる工程と、前記ハイブリダイズ工程後に、前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドをライゲーションする工程と、前記ライゲーション工程後に、前記架橋ポリヌクレオチドを特異的に分解する工程とを含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1013]
前記架橋ポリヌクレオチドが、1つ以上のヌクレオシドアナログを含み、前記分解工程が、前記サンプルを1つ以上の塩基除去試薬と接触させることを介して、前記1つ以上のヌクレオシドアナログの塩基を除去することを含む、本発明1012の方法。
[本発明1014]
前記1つ以上の塩基除去試薬が、グリコシラーゼ、エンドヌクレアーゼまたはこれらを組み合わせたものを含む、本発明1013の方法。
[本発明1015]
前記1つ以上のヌクレオシドアナログが、デオキシリボウラシルを含む、本発明1014の方法。
[本発明1016]
前記増幅工程が、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)による増幅を含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1017]
前記増幅工程が、等温増幅を含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1018]
前記検出工程が、前記増幅産物の定量に基づいて、前記サンプル中の前記抗原結合物質の量を測定することを含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1019]
前記増幅工程が、定量PCRを含む、本発明1018の方法。
[本発明1020]
15ng/ml未満の濃度の、前記サンプル中の前記抗原結合物質の存在を検出する、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1021]
100pg/ml未満の濃度の、前記サンプル中の前記抗原結合物質の存在を検出する、本発明1020の方法。
[本発明1022]
抗ポリヌクレオチド抗体を有する疑いのある対象から前記サンプルが入手される、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1023]
ある状態を有する疑いのある対象から前記サンプルが入手される、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1024]
前記状態が感染を含む、本発明1023の方法。
[本発明1025]
前記状態が、自己免疫障害または炎症性障害を含む、本発明1023の方法。
[本発明1026]
前記状態が、新生物に対する免疫応答である、本発明1023の方法。
[本発明1027]
前記状態が、腫瘍随伴症候群である、本発明1022の方法。
[本発明1028]
前記新生物が、前立腺がん、乳がん、肺がん、大腸がん、胃がん、肝臓がん及び甲状腺がんからなる群から選択されるがんである、本発明1026の方法。
[本発明1029]
前記状態が代謝性疾患を含む、本発明1022の方法。
[本発明1030]
前記代謝性疾患が糖尿病である、本発明1029の方法。
[本発明1031]
前記サンプルが組織サンプルである、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1032]
前記組織サンプルが血液サンプルである、本発明1031の方法。
[本発明1033]
前記血液サンプルが血清サンプルである、本発明1032の方法。
[本発明1034]
前記サンプルが、排出体液または半固体である、本発明1001〜1030のいずれかの方法。
[本発明1035]
前記排出体液または半固体が、尿、唾液、涙、汗、膿及び糞便からなる群から選択される、本発明1034の方法。
[本発明1036]
前記サンプルが、前記抗原結合物質を産生するように構成された細胞に由来する、本発明1001〜1021のいずれかの方法。
[本発明1037]
前記細胞が、ハイブリドーマであり、前記抗原結合物質が、前記ハイブリドーマによって産生される抗体である、本発明1036の方法。
[本発明1038]
前記サンプルが、前記抗原結合物質を産生するように構成された実験動物に由来する、本発明1001〜1021のいずれかの方法。
[本発明1039]
前記サンプルが血液サンプルである、本発明1038の方法。
[本発明1040]
前記血液サンプルが血清サンプルである、本発明1039の方法。
[本発明1041]
前記サンプルが、排出体液または半固体である、本発明1040の方法。
[本発明1042]
前記排出体液または半固体が、尿、唾液、涙、汗、膿及び糞便からなる群から選択される、本発明1041の方法。
[本発明1043]
前記接触工程が、前記サンプルを遊離DNAと接触させることをさらに含む、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1044]
抗原である前記第1の分子と前記第1のポリヌクレオチド、及び抗原である前記第2の分子と前記第2のポリヌクレオチドがどちらも、抗原:ポリヌクレオチドが1:1〜1:4であるモル比でコンジュゲートされている、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1045]
抗原結合物質を検出するためのキットであって、
a)第1のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた第1の抗原であって、前記抗原結合物質の第1の抗原結合部位で、前記抗原結合物質に特異的に結合する、前記第1の抗原と、
b)第2のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた第2の抗原であって、前記抗原結合物質の第2の抗原結合部位で、前記抗原結合物質に特異的に結合する、前記第2の抗原と、
を含む前記キット。
[本発明1046]
前記第1のポリヌクレオチドと第2のポリヌクレオチドに特異的にハイブリダイズする架橋ポリヌクレオチドをさらに含む、本発明1045のキット。
[本発明1047]
前記第1のポリヌクレオチドが、前記第2のポリヌクレオチドのヌクレオチド配列に相補的であるヌクレオチド配列を含む、本発明1045〜1046のいずれかのキット。
[本発明1048]
前記第1のポリヌクレオチド、前記第2のポリヌクレオチドまたは前記架橋ポリヌクレオチドのうちの1つ以上に特異的にハイブリダイズするスプリントポリヌクレオチドをさらに含む、本発明1045〜1047のいずれかのキット。
[本発明1049]
前記第1の抗原と前記第2の抗原が同じである、本発明1045〜1048のいずれかのキット。
[本発明1050]
リガーゼをさらに含む、本発明1045〜1049のいずれかのキット。
[本発明1051]
1つ以上の増幅試薬をさらに含む、本発明1045〜1050のいずれかのキット。
[本発明1052]
キットの構成要素a)及びb)が単一の容器に存在する、本発明1045〜1051のいずれかのキット。
[本発明1053]
キットの構成要素a)及びb)が別々の容器に存在する、本発明1045〜1051のいずれかのキット。
[本発明1054]
抗原結合物質の多重化された検出のためのライブラリーであって、
a)特有のプライマー結合部位を含むポリヌクレオチドにそれぞれコンジュゲートされた2つの同じ抗原を各抗原対が含む、複数の抗原対と、
b)抗原対の特有のプライマー結合部位に対する相補的な配列を各プライマー対が含む、複数のプライマー対であって、前記抗原対が抗原結合物質に結合すると、前記抗原対の前記ポリヌクレオチドが、前記プライマー対によって特異的に増幅できるアンプリコンを形成し、それによって、前記抗原結合物質の多重化された検出を可能にする、前記複数のプライマー対と
を含む前記ライブラリー。
[本発明1055]
前記複数の抗原対の抗原が、自己免疫疾患抗原を含む、本発明1054のライブラリー。
[本発明1056]
前記複数の抗原対の抗原が、がん抗原を含む、本発明1054〜1055のいずれかのライブラリー。
[本発明1057]
前記複数の抗原対の抗原が、病原体抗原を含む、本発明1054〜1056のいずれかのライブラリー。
[本発明1058]
各抗原対の前記ポリヌクレオチドが、互いに対して相補的な配列を含む、本発明1054〜1057のいずれかのライブラリー。
[本発明1059]
各抗原対の前記ポリヌクレオチドがそれぞれ、架橋ポリヌクレオチドに対して相補的な配列を含む、本発明1054〜1057のいずれかのライブラリー。
[本発明1060]
前記複数の抗原対が、単一の容器内にある、本発明1054〜1059のいずれかのライブラリー。
[本発明1061]
前記複数のプライマー対の各プライマー対が、別々の容器またはマルチウェルプレートの別々のウェルに存在する、本発明1054〜1059のいずれかのライブラリー。
「凝集(agglutination)」及び「凝集(aggregation)という用語は、同義的に用いられており、本明細書で使用する場合、抗原と抗原結合物質が結合して複合体になることを指し、この複合体は、2つ以上の抗原と、1つの抗原結合物質を含む。概して、凝集では、多価の抗原結合物質、すなわち、抗原である2つ以上の分子に結合する抗原結合物質を利用する。多価の抗原結合物質は、多くの抗原と抗原結合物質が凝集して複合体になるように促すことができる。凝集においては、抗原は、一価または多価であってよい。特定の実施形態では、凝集は、一価の抗原と多価の抗原結合物質を利用することによって生じる。特定の実施形態では、凝集は、一価の抗原と二価の抗原結合物質を利用することによって生じる。特定の実施形態では、凝集は、多価の抗原に結合する多価の抗原結合物質を利用することによって生じる。特定の実施形態では、凝集は、多価の抗原に結合する二価の抗原結合物質を利用することによって生じる。特定の実施形態では、凝集は、二価の抗原に結合する多価の抗原結合物質を利用することによって生じる。特定の実施形態では、凝集は、二価の抗原に結合する二価の抗原結合物質を利用することによって生じる。本明細書で使用する場合、凝集複合体の成分は、会合及び/または相互作用できるように、近接した状態に保つことができる。いくつかのケースでは、反応混合物の特定の成分は、凝集複合体内で近接した状態に保たれているときに、それらの相互作用の特質及び/またはその反応混合物におけるそれらの成分の相対濃度が原因で、相互作用、例えば、凝集の検出に必要な相互作用の可能性が著しく高いだけであることがある。
方法
上に概説したように、本開示の実施形態は、ポリヌクレオチド結合抗原を伴う抗原結合物質が凝集して複合体になることを通じて、サンプルに抗原結合物質が存在することを検出する方法に対するものである。この方法の態様は、その複合体の凝集抗原のポリヌクレオチドが近接に基づいて会合することと、その後、その会合を検出することを含む。
本発明の方法の態様は、抗原結合物質の検出に、ポリヌクレオチド結合抗原を使用することを含む。本明細書で使用する場合、「抗原結合物質」とは、抗原に特異的に結合するとともに、記載されている方法の目的においては、抗原と抗原結合物質が凝集して複合体になるのを媒介できる任意の物質を意味する。いくつかのケースでは、例えば、図1を参照すると、抗原と抗原結合物質との複合体(100)は最低でも、抗原(102)である2つの分子に結合した、抗原結合物質(101)を1分子含みうる。したがって、抗原結合物質とは、本明細書で使用する場合、単一抗原である少なくとも2つの分子に同時に結合する生体分子及び/または異なる抗原である少なくとも2つの分子に同時に結合する生体分子を指してよい。いくつかのケースでは、抗原(105)が、2分子以上の抗原結合物質に同時に結合する能力により、抗原と抗原結合物質との複合体(103)は、抗原結合物質(104)を少なくとも2分子含みうる。
アンプリコン、アンプリコンを形成できる合わさったポリヌクレオチドまたはアンプリコンを形成できる延長ポリヌクレオチドが形成されたら、増幅産物を生成させるために、アンプリコンが増幅されうる。下にさらに詳細に説明されているように、増幅産物の生成には、任意の利便的な増幅方法を用いてよく、この方法は、形成される具体的なポリヌクレオチド複合体及び/または全体的な検出アッセイの具体的な要件に左右され得る。アンプリコンの形成は、抗原結合物質の媒介によってポリヌクレオチド結合抗原が凝集することに依存するので、増幅産物の存在により、サンプル中の抗原結合物質の存在及び/または抗原結合物質の量を示すことができる。
増幅産物の存在は、任意の利便的な方法によって割り出してよい(定性的な割り出しまたは定量的な割り出しを含む)。いくつかのケースでは、増幅産物の存在は、例えば、増幅反応における物理的変化であって、標的ポリヌクレオチド複合体の効率的な増幅を示す変化を通じて、定性的に割り出してよい。
本明細書に記載されている方法によれば、サンプルにおける標的抗原結合物質の存在が容易にスクリーニングされる。この方法は、単一の標的抗原結合物質の検出と多重解析(サンプルにおいて、2つ以上の異なる標的抗原結合物質をアッセイする解析)に適する。後者の多重状況では、用いられうる異なるポリヌクレオチド結合抗原セットの数は典型的には、約2〜約20以上、例えば、上限が100以上、1000以上などの範囲であり、例えば、2〜50、2〜100、10〜100、50〜100、50〜200、50〜300、50〜400、50〜500などが挙げられるが、これらに限らない。一実施形態では、多重アッセイでは、一意的タグ化ポリヌクレオチドに結合した様々な異なる抗原を用いて、特定の一意的タグ化ポリヌクレオチドの増幅によって、増幅したタグ化ポリヌクレオチドの特定の抗原に対応する抗原結合物質の存在を示すようにしてよい。したがって、対象のアッセイでは、核酸のタグ付け及び/または「バーコード付加」法を用いて、サンプル中の複数の抗原結合物質の検出及び/または定量を可能にしうる。核酸バーコードで一意的にタグ付けされた異なる抗原であって、本明細書に記載されているような多重アッセイに含めてよい抗原の数は様々であり得、例えば、抗原結合ポリヌクレオチドにおいてバーコード用に利用可能なポリヌクレオチドの長さ、凝集アッセイ及び/またはポリヌクレオチド結合に悪影響を及ぼさずに反応物に存在し得る抗原濃度の物理的限界などによってのみ限定され得る。
本明細書に記載されている方法及び組成物には、サンプルに存在する抗原結合物質の検出及び/または定量において、特定の有用性がある。このような検出では、様々な技術分野において様々な用途を見出すことができ、例えば、基礎科学的研究(例えば、生物医学研究、生化学研究、免疫学研究、分子生物学研究、微生物学研究、細胞生物学研究、遺伝学など)、医学及び/または薬学研究(例えば、創薬研究、薬剤設計研究、薬剤開発研究、薬理学、毒物学、医薬品化学、前臨床研究、臨床研究、オーダーメイド医療など)、医療、疫学、公衆衛生、バイオテクノロジー、畜産学、獣医学、農学、材料科学、分子検出、分子診断学などが挙げられるが、これらに限らない。
ngella kingae))、クールー(PRNP)、ラッサ熱(ラッサウイルス)、レジオネラ症(レジオネラ病)(レジオネラ・ニューモフィラ(Legionella pneumophila))、レジオネラ症(ポンティアック熱)(レジオネラ・ニューモフィラ)、リーシュマニア症(リーシュマニア(Leishmania)属)、ハンセン病(マイコバクテリウム・レプラエ(Mycobacterium leprae)及びマイコバクテリウム・レプロマトーシス(Mycobacterium lepromatosis))、レプトスピラ症(レプトスピラ(Leptospira)属)、リステリア症(リステリア・モノサイトゲネス(Listeria monocytogenes))、ライム病(ライムボレリア症)(通常、ボレリア・ブルグドルフェリ(Borrelia burgdorferi)及びその他のボレリア属種)、リンパ性フィラリア症(象皮病)(ウケレリア・バンクロフチ(Wuchereria bancrofti)及びブルギア・マライ(Brugia malayi))、リンパ球性脈絡髄膜炎(リンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス(LCMV))、マラリア(プラスモディウム(Plasmodium)属)、マールブルグ出血熱(MHF)(マールブルグウイルス)、麻疹(麻疹ウイルス)、中東呼吸器症候群(MERS)(中東呼吸器症候群コロナウイルス)、類鼻疽(ホイットモア病)(バークホルデリア・プセウドマレイ(Burkholderia pseudomallei))、髄膜炎(多数の病原体)、髄膜炎菌性疾患(ナイセリア・メニンギチディス(Neisseria meningitidis))、横川吸虫症(通常、メタゴニムス・ヨカガワイ(Metagonimus yokagawai))、微胞子虫症(ミクロスポリジア・フィルム(Microsporidia phylum))、伝染性軟属腫(MC)(伝染性軟属腫ウイルス(MCV))、サル痘(サル痘ウイルス)、ムンプス(ムンプスウイルス)、発疹熱(地方性発疹チフス)(リケッチア・チフィ(Rickettsia typhi))、肺炎マイコプラスマ(マイコプラスマ・ニューモニアエ(Mycoplasma pneumoniae))、マイセトーマ(多くの種の細菌(アクチノミセトーマ(Actinomycetoma))及び真菌(ユーミセトーマ(Eumycetoma)))、ハエウジ症(寄生性双翅目ハエ幼虫)、新生児結膜炎(新生児眼炎)(最も一般的には、クラミジア・トラコーマティス及びナイセリア・ゴノルロエア(Neisseria gonorrhoeae))、ノカルジア症(通常、ノカルディア・アステロイデス(Nocardia asteroides)及び他のノカルディア属種)、オンコセルカ症(河川盲目症)(オンコセルカ・ボルブルス(Onchocerca volvulus))、パラコクシジオイド症(南アメリカブラストミセス症)(パラコクシジオイデス・ブラジリエンシス(Paracoccidioides brasiliensis))、肺吸虫症(通常、パラゴニムス・ウェステルマニ(Paragonimus westermani)及び他のパラゴニムス属種)、パスツレラ症(パスツレラ(Pasteurella)属)、病原性腸疾患(例えば、腸内細菌の病原性株(例えば、病原性クロストリジウム・ディフィシレ、病原性サルモネラ・エンテリカ(Salmonella enterica)、病原性バシラス・セレウス、病原性ヘリコバクター・ピロリ、病原性カンピロバクターなどを原因とするものを含む)、アタマジラミ寄生症(アタマジラミ)(ペディクルス・ヒューマヌス・カピティス(Pediculus humanus capitis))、コロモジラミ寄生症(ヒトジラミ)(ペディクルス・ヒューマヌス・コルポリス(Pediculus humanus corporis))、ケジラミ寄生症(ケジラミ)(フィチルス・プビス(Phthirus pubis))、骨盤腹膜炎(PID)(多数の病原体)、百日咳(ボルデテラ・ペルツッシス(Bordetella pertussis))、ペスト(エルシニア・ペスティス(Yersinia pestis))、肺炎球菌感染(ストレプトコッカス・ニューモニアエ(Streptococcus pneumoniae))、ニューモシスチス肺炎(PCP)(ニューモシスチス・ジロヴェシイ(Pneumocystis jirovecii))、肺炎(多数の病原体)、ポリオ(ポリオウイルス)、プレボテラ感染(プレボテラ(Prevotella)属)、原発性アメーバ性髄膜脳炎(PAM)(通常、ナエグレリア・フォウレリ(Naegleria fowleri))、進行性多巣性白質脳症(JCウイルス)、オウム病(クラミドフィラ・プシタシ(Chlamydophila psittaci))、Q熱(コキシエラ・ブルネティイ(Coxiella burnetii))、狂犬病(狂犬病ウイルス)、鼠咬熱(ストレプトバシラス・モニリフォルミス(Streptobacillus moniliformis)またはスピリルム・ミヌス(Spirillum minus))、呼吸器合胞体ウイルス感染(呼吸器合胞体ウイルス(RSV))、リノスポリジウム症(リノスポリジウム・セーベリー(Rhinosporidium seeberi))、ライノウイルス感染(ライノウイルス)、リケッチア感染(リケッチア属)、リケッチア痘(リケッチア・アカリ(Rickettsia akari))、リフトバレー熱(RVF)(リフトバレー熱ウイルス)、ロッキー山紅斑熱(RMSF)(リケッチア・リケッチイ(Rickettsia rickettsii))、ロタウイルス感染(ロタウイルス)、風疹(風疹ウイルス)、サルモネラ症(サルモネラ属)、SARS(重症急性呼吸器症候群)(SARSコロナウイルス)、疥癬(サルコプテス・スカビエイ(Sarcoptes scabiei))、住血吸虫症(シストソーマ(Schistosoma)属)、敗血症(多数の病原体、例えば、カプノシトファガ(Capnocytophaga)を含む)、細菌性赤痢(シゲラ(Shigella)属)、帯状疱疹(帯状ヘルペス)(水痘帯状疱疹ウイルス(VZV))、天然痘(痘瘡)(バリオラ・メジャー(Variola major)またはバリオラ・マイナー(Variola minor))、スポロトリクス症(スポロトリクス・シェンキイ(Sporothrix schenckii))、ブドウ球菌性食中毒(スタフィロコッカス属)、ブドウ球菌感染(スタフィロコッカス属)、糞線虫症(ストロンギロイデス・ステルコラリス(Strongyloides stercoralis))、亜急性硬化性全脳炎(麻疹ウイルス)、梅毒(トレポネーマ・パルリドゥム(Treponema pallidum))、条虫症(Taenia属)、破傷風(開口障害)(クロストリジウム・テタニ(Clostridium tetani))、須毛白癬(床屋疹しん)(通常、トリコフィトン(Trichophyton)属)、頭部白癬(通常、トリコフィトン・トンスランス(Trichophyton tonsurans))、体部白癬(通常、トリコフィトン属)、股部白癬(いんきんたむし)(通常、エピデルモフィトン・フロコッスム(Epidermophyton floccosum)、トリコフィトン・ルブルム(Trichophyton rubrum)及びトリコフィトン・メンタグロフィテス(Trichophyton mentagrophytes))、手白癬(トリコフィトン・ルブルム)、黒癬(通常、ホルテア・ウェルネッキイ(Hortaea werneckii))、足白癬(水虫)(通常、トリコフィトン属)、爪白癬(爪甲真菌症)(通常、トリコフィトン属)、癜風(なまず)(マラセジア(Malassezia)属)、トキソカラ症(眼幼虫移行症(OLM))(トキソカラ・カニス(Toxocara canis)またはトキソカラ・カチ(Toxocara cati))、トキソカラ症(内臓幼虫移行症(VLM))(トキソカラ・カニスまたはトキソカラ・カチ)、トラコーマ(クラミジア・トラコーマティス)、トキソプラズマ症(トキソプラズマ・ゴンディイ(Toxoplasma gondii))、旋毛虫症(トリキネラ・スピラリス(Trichinella spiralis))、トリコモナス症(トリコモナス・バギナリス(Trichomonas vaginalis))、鞭虫症(鞭虫感染)(トリチュリス・トリチュラ(Trichuris trichiura))、結核(通常、マイコバクテリウム・ツーベルクロシス(Mycobacterium tuberculosis))、ツラレミア(フランシセラ・ツラレンシス(Francisella tularensis))、腸チフス(サルモネラ・エンテリカ亜種エンテリカ、血清型チフィ)、ウレアプラズマ・ウレアリチクム感染(ウレアプラズマ・ウレアリチクム(Ureaplasma urealyticum))、渓谷熱(コッシジオイデス・イミティス(Coccidioides immitis)またはコッシジオイデス・ポサダシイ(Coccidioides posadasii))、ベネズエラ馬脳炎(ベネズエラ馬脳炎ウイルス)、ベネズエラ出血熱(グアナリトウイルス)、ウイルス性肺炎(多数のウイルス)、西ナイル熱(西ナイルウイルス)、白色砂毛(トリコスポロン・ベイゲリイ(Trichosporon beigelii))、エルシニア・シュードツベルクローシス感染(エルシニア・シュードツベルクローシス(Yersinia pseudotuberculosis))、エルシニア症(エルシニア・エンテロコリチカ(Yersinia enterocolitica))、黄熱(黄熱ウイルス)、ジカウイルス疾患(ジカウイルス)、接合真菌症(ムコラレス(Mucorales)の系統(ムコール症)及びエントモフィトラレス(Entomophthorales)の系統(エントモフトラ症))などである。概して本明細書では、記載されている方法による、感染状態の検出は、病原体由来抗原に対する1つ以上の抗原結合物質(例えば、宿主由来抗体)であって、宿主に由来するサンプルに存在する抗原結合物質を検出することによって、感染に対する宿主免疫応答を検出することを含む。
本開示は、本明細書に記載されている方法を実施するのに有用な組成物、例えば試薬、キット及び器具を含む。本明細書に記載されている試薬のいずれかには、抗原結合物質を検出するための方法またはキットにおいて個々に用途を見出すことができる。例えば、本開示は、記載されている凝集アッセイにおいて有用なポリヌクレオチド結合抗原を提供する。
組み換えインスリン(Sigma−Aldrich)を再懸濁させて、反応バッファー(55mMのリン酸ナトリウム、150mMの塩化ナトリウム、20mMのEDTA、pH7.2)中の1mg/mL溶液を作ることによって、インスリン−DNAコンジュゲート体を合成した。このタンパク質溶液10μLに、1μLのスルホ−SMCC(Pierce Biotechnologies)の4mM無水DMSO溶液を加え、室温で2時間インキュベートした。チオール化DNA(IDT)を反応バッファーに100μMまで再懸濁させた。続いて、100μMのチオール化DNAストック3マイクロリットルを50μLの反応バッファーに加えた。この溶液に、4μLのDTT(Life Technologies)の100mM溶液を加えて、酸化チオール化−DNAを還元した。続いて、この溶液を37℃で1時間インキュベートした。分画分子量(MWCO)7kのゲルマイクロスピンカラム(Life Technologies)を反応バッファーで平衡化した。還元したオリゴヌクレオチドを平衡化マイクロスピンカラムによって2回脱塩した。MWCO3kの遠心フィルターカラム(EMD Millipore)によって、未反応スルホ−SMCCをインスリン溶液から除去して、最終量60μLにした。続いて、チオール化DNAとインスリン溶液を混合し、一晩4℃で反応させてから、MWCO10kのフィルターカラムによって精製した。BCAアッセイ(Life Technologies)によってコンジュゲート体濃度を割り出した。SDS−PAGE及び銀染色によってコンジュゲート効率を解析した。図20には、代表的な銀染色が示されている(サンプルをSDS−PAGEによって解像してから、銀染色によって総タンパク質/DNAを可視化した。レーン1は非改変GFPであり、レーン2はGFP−2Aコンジュゲート体であり、レーン3はGFP−2Bコンジュゲート体である。タンパク質に14kDのオリゴヌクレオチドを付加したことにより、有意な質量シフトがレーン2及び3において観察された。レーン2及び3のラダー形成は、多数のオリゴヌクレオチドを単一のタンパク質に付加したことによるものである)とともに、スルホ−SMCCによるGFP−DNAコンジュゲートの反応スキームの概略が示されている。コンジュゲート体のDNAと抗原の比は、紫外・可視分光法によって推定した。抗原−DNAコンジュゲート体は、短期使用の際には4℃で保存し、または−80℃での長期保存する際には小分けにした。GFP−DNAコンジュゲート体、マウス−IgG−DNAコンジュゲート体及びサイログロブリン−DNAコンジュゲート体を同様に、ただし、わずかに修正を加えて合成した。簡潔に述べると、未反応SMCCを、MWCO7kのゲルマイクロスピンカラムによってろ過した。遠心フィルターカラム(GFP:MWCO30kカラム、マウスIgG:MWCO100kカラム、サイログロブリン:MWCO100kカラム)によって、コンジュゲート体を非コンジュゲートDNAから精製した。
対の抗原−DNAコンジュゲート体1フェムトモルを2μLのインキュベートバッファーC(PBS中の2%BSA、0.2%Triton X−100、8mMのEDTA)に再懸濁した。2マイクロリットルの分析対象物をこのコンジュゲート体に加えてから、37℃で30分インキュベートした。116μLのライゲーションミックス(20mMのTris、50mMのKCl、20mMのMgCl2、20mMのDTT、25μMのNAD、0.025U/μLのリガーゼ、100nMの架橋オリゴ、0.01%のBSA、pH=7.5)を加えてから、30℃で15分インキュベートした。10マイクロリットルのウラシル除去ミックス(0.025U/μL、Epicenter Bio)を加え、15分、30℃でインキュベートした。その溶液25マイクロリットルを2×PCR Master Mix(Qiagen)25μLに、10nMのプライマーとともに加えてから、PCRによって増幅した(95℃で10分、95℃で15秒、60℃で30秒、12サイクル)。続いて、この反応物をddH2Oに1:20で希釈した。希釈したPCRサンプル8.5μLを2×qPCR Master Mix(Life Technologies)10μLに、プライマー1.5μLとともに加えた(終濃度690nM)。リアルタイムPCR検出システムのBio−Rad CFX96またはBio−Rad iQ5のいずれかでqPCRを行った。
上記のように、ただし、下記の修正を加えて、抗DNP抗血清(Abcam)に対するADAP PCR検出アッセイを行った。DNPコンジュゲートキャリアタンパク質を接種したウサギから、抗DNP抗血清を得て、さらなる精製は行わなかった。ADAP検出のために、DNP−DNAコンジュゲート体2マイクロリットルを、2μLの段階希釈したバッファーC中抗DNP抗血清(濃度範囲:0.4〜0.0002mg/mL)と混合した。
上記のように、ただし、下記の修正を加えて、抗サイログロブリン陽性患者血漿(ImmunoVision)に対するADAP検出アッセイを行った。ADAP検出のために、サイログロブリン−DNAコンジュゲート体2マイクロリットルを、2μLの段階希釈したバッファーC中患者血漿(希釈係数:100〜106)と混合した。
上記のように、ただし、下記の修正を加えて、抗ビオチン抗体と抗マウスIgG抗体に対する多重ADAPアッセイを行った。ビオチン−DNAコンジュゲート体(表2におけるような配列1)1μLとマウス−IgG−DNAコンジュゲート体(表2におけるような配列2)1μLを、2μLの段階希釈した(1)バッファーC中抗ビオチン抗体(濃度範囲:102〜10−4μg/ml)またはバッファーのみ(ブランク)、(2)バッファーC中抗マウス抗体(濃度範囲:102〜10−4μg/ml)またはバッファーのみ(ブランク)、(3)バッファーC中抗ビオチン抗体及び抗マウス抗体の両方(濃度範囲:102〜10−4μg/ml)またはバッファーのみ(ブランク)のいずれかと混合した。この抗原・抗体混合物を上記のように処理及び解析した。
ADAP及びPLA19−22(近接ライゲーションアッセイ)を併せて用いて、所定のサンプル中の特異的抗体と総抗体量を定量した。上記のように、ただし、下記の修正を加えて、抗ビオチン及び全IgGに対する多重ADAP検出アッセイを行った。ビオチン−DNAコンジュゲート体(配列1)1μLと抗ヤギIgG−DNAコンジュゲート体(配列2)1μLを、2μLの段階希釈した(1)バッファーC中ヤギ抗ビオチン抗体(濃度範囲:102〜10−4μg/ml)またはバッファーのみ(ブランク)、(2)バッファーC中ヤギIgG(濃度範囲:102〜10−4μg/ml)またはバッファーのみ(ブランク)、(3)バッファーC中の抗ビオチン及びヤギIgGの両方(全IgGは0.7μg/mlで固定し、抗ビオチン抗体の割合は100%から0%まで様々であった)またはバッファーのみ(ブランク)のいずれかと混合した。抗原と抗体の混合物を上記のように処理及び解析した。
組み換えヒトインスリン(Sigma)を再懸濁して、PBSにおいて1mg/mLとした。そのインスリン溶液75μLを酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)プレート(Santa Cruz Biotech)のウェルに加えた。そのプレートをプラスチックの膜で覆い、インスリンをそのプレートに一晩、4℃で吸着させた。過剰な上清をデカントし、ウェルをPBS中の5%BSAで一晩、4℃でブロックした。抗インスリン抗体をPBSで希釈し、室温で1時間結合させた。上清をデカントし、ウェルをPBSで4回洗浄した。二次抗体−HRPプローブ(Santa Cruz Biotech)を1:5000でPBS中の5%BSAにおいて希釈し、ウェルに加え、室温で1時間インキュベートさせた。上清をデカントしてから、PBSで4回洗浄した。50μLのTMB基質溶液を加え、15分発光させてから、2MのH2SO4を50μL加えることによってクエンチした。吸光度を450nmでプレートリーダーにおいて測定した。
抗DNA抗体陽性患者血漿をImmunoVisionから購入した。上記のように、ただし、わずかに修正を加えて、抗DNA血漿のADAP検出を行った。抗GFP抗体の検出では、抗GFP抗体を抗DNA血漿と正常血漿に加えた。GFP−DNAコンジュゲート体を含む2μL溶液とともに、100μMの競合DNAを含めて、または競合DNAなしで、2μLの段階希釈抗GFP溶液のサンプルをインキュベートした。競合DNAは、IDTから購入した
という配列を有するものである。
Tg−RIA(Kronus)、Beckman Access TgAb(Beckman Coulter)及びRoche Elecsys TgAb(Roche Diagnostics)をメーカーの指示に従って行った。これらのアッセイは、WHO標準血清65/93に対して標準化されている。
ブランクに加えて、バッファーCにおける各抗体サンプルに対して、ADAP測定を3回繰り返して行った。同じ希釈系列ならびに同じライゲーション、除去及びプレ増幅工程調製物からアリコートを取ったが、qPCR解析のために、それらを3つの異なるウェルに入れることによって、この繰り返し測定を行った。抗ビオチン抗体の段階希釈液に対するADAPアッセイから得た代表的なリアルタイムqPCR測定プロットが図21に示されている(破線は、閾値蛍光値である)。ソフトウェアBio−Radによって、1つの閾値蛍光値を自動的に選択した。各曲線において、選択した閾値値に対応する蛍光値を示したPCRサイクル数をサイクル閾値(Ct)として定めた。ΔCtは、ブランクのCt値からサンプルのCt値を減じた値として定める。ΔCtの値は、初期アンプリコン濃度に比例している。そして、このアンプリコン濃度は、初期希釈系列に存在する標的抗体の量にも比例している。ADAP測定のために、各段階希釈系列から2μLの体積を取った。したがって、各測定における抗体分子の数は、(2×10−6L)×抗体濃度(M)×アボガドロ数である。カスタムソフトウェアを用いて、抗体希釈系列に対する非線形4パラメーターロジスティックフィットを割り出した。ADAPアッセイの検出限界は、バッファーCのみのブランクの平均ΔCt値と、そのブランクの3つの標準偏差の和として定める。各検出限界の値は、対応するブランクに対して計算する。
ADAP測定を抗GFP抗体に対してトリプリケートで、同じプレートで6回繰り返すことによって、ADAPにおけるアッセイ内変動を割り出した。アッセイ内変動は、トリプリケートの標準偏差をトリプリケートの平均値で除した値として定め、一貫して<1%である。ADAPにおけるアッセイ間変動は、抗GFP抗体濃度をトリプリケートで、5つの異なるプレートで、異なる日に測定することによって評価する。アッセイ間変動は、5つの異なるプレートから得た濃度の標準偏差を、5つの異なるプレートから得た濃度の平均値で除した値によって定め、<3%である。ADAPのアッセイ内変動とアッセイ間変動はいずれも、許容される生物医学アッセイ変動値(アッセイ内変動に関しては10%、アッセイ間変動に関しては15%)よりもはるかに小さい。ADAPの優れたアッセイ内性能とアッセイ間性能は、全体的な操作工程が少なく、洗浄工程と遠心分離工程がないことによるものである可能性が高い。他のアッセイでは、徹底的な洗浄と遠心分離が必要とされることにより、精度と再現性が損なわれる可能性がある。
凝集−ライゲーションアッセイ(「SIMPAL」(凝集−ライゲーションによる高感度免疫複合体モニタリングプラットフォーム)と称されているとともに、「ADAP」(凝集−PCRによる抗体検出)ともいう)では、PCRアンプリコンを2分割して、それぞれプライマー部位を持つようにした。この半部をそれぞれ、組み換え抗原に共有結合させ、下流断片が、5’ホスフェート基を有するようにして、DNAリガーゼの基質とした。このアッセイでは、抗原−DNAコンジュゲート体に結合して抗原−DNAコンジュゲート体を凝集させる抗体とともに、上記の抗原−DNAコンジュゲート体1〜2μLをピコモル濃度でインキュベートした。凝集したコンジュゲート体は、互いの近くに保持され、DNAリガーゼと短い架橋オリゴヌクレオチドで処理すると、2つの半部のライゲーションが促される。未結合のままの抗原−DNAコンジュゲート体は、希薄すぎて、ライゲーションされない。続いて、再構成したPCRアンプリコンをプレ増幅し、蛍光ベースの定量PCRによって定量する(図8)。
バッファー2μL中に1フェムトモルの各コンジュゲート体において、DNAリガーゼと架橋オリゴヌクレオチドを含む希釈溶液中で、抗原−DNAコンジュゲート体をインキュベートし、この架橋オリゴヌクレオチドが、両方の鎖の中央の20bp領域とハイブリダイズした。続いて、このライゲーション混合物を希釈し、13ラウンドのPCRによってプレ増幅した。その後、Sybr Greenの検出を用いて、得られたPCR産物をqPCRによって解析した。凝集抗体の濃度に対する添加量依存性応答を観察したところ、検出限界は、約37.5アトモルの抗体であった(図11A〜11C)。ウシ血清で希釈した抗体において、同様の検出限界が観察された。対応するアイソタイプコントロールとともにインキュベートしたところ、いずれのケースでも、シグナルは生成されなかった。用いる配列の適用範囲の広さを確定するために、直交的なDNA−抗原コンジュゲート体セットを合成し、実験を繰り返した。この配列は、わずかに高い性能を発揮し、検出限界は、3.75アトモルの抗体であった。
本明細書に記載されているような凝集ベースアッセイによる、サンプル中の抗原結合物質の増幅と検出は、抗原結合物質の多価性に依存する。本明細書に記載されているようなPCRベースの凝集アッセイにおけるポリヌクレオチド結合抗原を用いて、サンプルにおいて、濃度に依存する形で、qPCRによって、多価ポリクローナル抗マウス抗体(pAb α−マウス)を検出及び定量した(図15)。ポリクローナル抗体(pAb α−マウス)において、ロバストなシグナルが生成されたが、消化一価抗体断片(Fab α−マウス)とネガティブコントロール抗体断片(Fabコントロール)では、PCRベースの凝集アッセイにおけるポリヌクレオチド結合抗原を用いたqPCRでは、いずれの試験濃度でも、有意なシグナルは生成されなかった(図15)。
ADAPにおける内因性抗DNA自己抗体からの干渉を調べた。このような抗体は潜在的に、抗原に依存しない形で、抗原−DNAコンジュゲート体を凝集させることができ、その結果、偽陽性が生じる。全身性エリテマトーデス(SLE)のような自己免疫性障害の患者は、高力価で抗DNA抗体を産生することが多い。抗DNA抗体は概して、健常な成人の約10%にも少量で存在する。
高感度ADAPアッセイの中核は、抗原−DNAコンジュゲート体の作製である。タンパク質抗原では、これらの成分は、スルホスクシンイミジル4−(N−マレイミドメチル)−シクロヘキサン−1−カルボキシレート(スルホ−SMCC)とチオール化オリゴヌクレオチドを用いて、リジン−チオール架橋によって合成した。簡潔に述べると、PBSにおけるスルホ−SMCCとの反応によって、マレイミドを精製抗原のリジンに導入した(図20)。ジチオスレイトール(DTT)を介した還元によって、チオール化オリゴヌクレオチドを活性化した。抗原とオリゴヌクレオチドの両方を脱塩し、プールし、一晩反応させた。サイズ排除スピンカラムを用いた高度な精製によって、未反応試薬を除去した。抗原とDNAのコンジュゲート比を紫外・可視分光法とSDS−PAGE解析によって割り出した。典型的には、1:2の抗原・DNAコンジュゲート比によって、ADAPアッセイにおいて最適なシグナルが生成された。抗原−DNAコンジュゲートの程度が高いほど、抗体結合のためのエピトープを遮蔽する傾向があるので、それにより、アッセイ感度が低下することが明らかとなった(図22)。
HIVスクリーニングを受ける個体数が増えると、感染性の高い伝染源を公衆衛生官が遮断する能力が向上する。血清/血漿ベースのHIV検査は、確定診断のための標準的な方法であるが、この形式で採取できるサンプルの数は、低コンプライアンスと安全性の問題により、限られている。口腔流体サンプルは、採取プロセスが非侵襲的であるとともに、はるかに安全であるので、より大きな集団から得ることができる。
単一のサンプルの少量のアリコートから得た多数の異なる抗体を並列検出するために、多重抗体探索キットを設計した。自己免疫疾患と関連する最も一般的な抗原を含む96個の抗原(代表的な例としては、サイログロブリン、C1q、MPO、トランスグルタミナーゼ、Sm/RNP、GAD65、Ro/SSA、JO−1、IA−2、La/SSB、PR3、Sm B/B’、CENP−A、U1−snRNP−C、グリアジン、ヒストンH3、H2B、SmD、ヒストンH4及びインスリンHが挙げられる)を用いて、初期の96ウェル検出プレートベースのアッセイを設計した。
Claims (15)
- サンプル中の多価の抗原結合物質の検出方法であって、
a)前記サンプルを、第1のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた、多価の抗原である第1の分子、及び第2のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた、多価の抗原である第2の分子に、該多価の抗原である第1の分子に結合した多価の抗原結合物質の第1の分子および該多価の抗原である第2の分子に結合した多価の抗原結合物質の第2の分子を含む凝集複合体を形成させるのに十分な条件で、接触させる工程であって、
前記第1の分子の多価の抗原および前記第2の分子の多価の抗原における抗原が同じである、前記工程と、
b)連続的なポリヌクレオチドを形成させるために、架橋ポリヌクレオチドを前記凝集複合体の前記第1のポリヌクレオチド及び前記第2のポリヌクレオチドにハイブリダイズさせて、前記第1のポリヌクレオチド及び第2のポリヌクレオチドをライゲーションさせる工程と、
c)増幅産物を生成するために、前記連続的なポリヌクレオチドを増幅する工程と、
d)前記増幅産物を検出する工程であって、前記増幅産物の検出によって、前記多価の抗原結合物質の検出を可能にする、前記工程と
を含む前記方法。 - 前記多価の抗原結合物質が抗体である、請求項1に記載の方法。
- 前記サンプルをスプリントポリヌクレオチドと接触させる工程をさらに含み、前記第1のポリヌクレオチド及び前記第2のポリヌクレオチドをライゲーションさせる工程が、スプリントポリヌクレオチドを前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドの両方にライゲーションすることを含む、請求項1または2に記載の方法。
- 前記ライゲーション工程後に、前記架橋ポリヌクレオチドを特異的に分解する工程を含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
- 前記架橋ポリヌクレオチドが、デオキシリボウラシルを任意で含む1つ以上のヌクレオシドアナログを含み、前記分解工程が、前記サンプルを、グリコシラーゼを任意で含む1つ以上の塩基除去試薬と接触させることを介して、前記1つ以上のヌクレオシドアナログの塩基を除去することを含む、請求項4に記載の方法。
- 前記増幅工程が、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)による増幅または等温増幅を含む、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記検出工程が、前記増幅産物の定量に基づいて、前記サンプル中の前記多価の抗原結合物質の量を測定することを含む、請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 15ng/ml未満、任意で100pg/ml未満の濃度の、前記サンプル中の前記多価の抗原結合物質の存在を検出する、請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 抗ポリヌクレオチド抗体、ある状態、またはこれらの両方を有する疑いのある対象から前記サンプルが入手される方法であって、前記状態が感染、自己免疫障害、炎症性障害、新生物に対する免疫応答、腫瘍随伴症候群、または代謝性疾患である、請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルが組織サンプル、血液サンプル、または排出体液である、請求項1〜9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルが、前記多価の抗原結合物質を産生するように構成された細胞またはヒト以外の動物に由来する、請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記接触工程が、前記サンプルを遊離DNAと接触させることをさらに含む、請求項1〜11のいずれか1項に記載の方法。
- a)第1のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた第1の多価の抗原であって、前記多価の抗原結合物質の第1の抗原結合部位で、前記多価の抗原結合物質に特異的に結合する、前記第1の多価の抗原と、
b)第2のポリヌクレオチドにコンジュゲートされた第2の多価の抗原であって、前記多価の抗原結合物質の第2の抗原結合部位で、前記多価の抗原結合物質に特異的に結合する、前記第2の多価の抗原と
を含むキットであって、
前記第1のポリヌクレオチド及び前記第2のポリヌクレオチドがそれぞれ、架橋ポリヌクレオチドに対して相補的な領域を含み、かつ、
前記第1の分子の多価の抗原および前記第2の分子の多価の抗原における抗原が同じである、
請求項1〜12のいずれか1項に記載の方法を実施するためのキット。 - 前記第1のポリヌクレオチド及び前記第2のポリヌクレオチドに特異的にハイブリダイズする架橋ポリヌクレオチドをさらに含む、請求項13に記載のキット。
- 多価の抗原結合物質の多重化された検出のためのライブラリーであって、
a)特有のプライマー結合部位を含むポリヌクレオチドにそれぞれコンジュゲートされた2つの同じ多価の抗原を各多価の抗原対が含む、多価の抗原結合物質にそれぞれ特異的な複数の多価の抗原対と、
b)多価の抗原対の特有のプライマー結合部位に対する相補的な配列を各プライマー対が含む、複数のプライマー対であって、前記多価の抗原対が多価の抗原結合物質に結合して凝集複合体を形成すると、前記多価の抗原対の前記ポリヌクレオチドが、ポリヌクレオチドのライゲーションを可能にする架橋ポリヌクレオチドを介して、前記プライマー対によって特異的に増幅できるアンプリコンとして機能し得る連続的なポリヌクレオチドを形成し、それによって、前記抗原結合物質の多重化された検出を可能にする、前記複数のプライマー対と
を含む前記ライブラリー。
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