JP6294309B2 - アニリン生産性の向上したコリネ型細菌形質転換体及びそれを用いるアニリンの製造方法 - Google Patents
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Description
本発明は、アニリン生産性を向上するよう改善された酵素の突然変異体に関し、該突然変異体を使用してアニリン生産性を付与する為に特定の遺伝子操作が施されたコリネ型細菌形質転換体、及びこの形質転換体を用いた効率的なアニリン生成方法も提供する。
近年の化石資源枯渇問題とそれに伴う化石資源の価格高騰、地球温暖化問題を解決する為に、化成品の化石資源に依存しない製造プロセスが求められている。その解決手段の一つとして、バイオマス資源、とりわけ非可食バイオマス資源を原料としたバイオリファイナリー技術が大きな注目を集めている。
アニリンは、染料、機能性ポリマー、加硫促進剤や老化防止剤等のタイヤ用ゴム薬品、農薬、医薬品等の合成出発原料として広く使用されている。
現在、アニリンは、原油を原料として化学変換によって生産されている。具体的には、原油を蒸留分離して得られるナフサより得られたベンゼンを原料としている。より具体的には、ベンゼンをニトロ化してニトロベンゼンとして、銅やニッケル等の金属触媒を用いる方法や、ニトロベンゼンを鉄と塩酸で還元する事によって水素添加する方法、もしくは高温高圧条件下でクロロベンゼンとアンモニアとを反応させる方法が挙げられる。
しかしながら、これらの方法は、出発物質であるベンゼンを化石原料に依存しているだけでなく、反応プロセス中で高温高圧条件を必要とするため、生産過程において、大量の化石燃料を消費し、二酸化炭素等の温室効果ガスを排出するという問題がある。そこで、再生可能資源を原料とし、原材料や製造過程において化石資源に依存することのない、環境調和型バイオプロセスの開発が求められている。
アニリンをはじめとした芳香族化合物をバイオプロセスで生産する場合、微生物や植物が持つシキミ酸経路とよばれる合成経路を利用することが考えられるが、原料となる糖類からの代謝反応ステップ数が非常に多いことから生産性が低いという難点がある。
さらに、アニリンをバイオプロセスで生産する場合、アニリンによる細胞毒性、微生物の増殖阻害等の影響により、微生物の生育自体が阻害される。このため、アニリンのバイオプロセスによる工業的生産は非常に困難である。
これまで、非遺伝子組み換え菌によるアニリン生成技術は、Mycobacterium smegmatisに４−アミノ安息香酸を添加してアニリンを生成したという例（非特許文献１）、及び病原性大腸菌Escherichia coli O111:B4の細胞又は細胞抽出液に、アントラニル酸又は４−アミノ安息香酸を添加してアニリンを生成したという例（非特許文献２）が開示されている。
しかしながら、これらは、アニリン生成に関わる酵素分子及び酵素遺伝子について特定されておらず、その後の報告もなされていない。非特許文献１では、７．３ｍＭの４−アミノ安息香酸からアニリン生成を報告しているが、生成濃度が６．９μＭと極めて微量であり、また、アニリンの同定方法がペーパークロマトグラフィーでの比較によって行われており、物質同定の真偽が不明である。
非特許文献２では、使用する微生物が病原性を有するという問題があり、工業的生産に向かない。また、この場合のアニリン同定は、ジアゾ発色による間接同定によって行われており、物質同定の真偽が不明である。この他、一般にアニリンの細胞毒性によって微生物の増殖が阻害され、高濃度のアニリン生成が困難であるという問題がある。
また、本発明者らは、アミノ安息香酸デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする、エンテロバクター クロアカエ由来の遺伝子を宿主のコリネ型細菌に導入された形質転換体が、５ｍＭの４−アミノ安息香酸から１．２５ｍＭのアニリンを製造することを既に見出しているが（特許文献１）、工業的生産コスト低減のためには、より高濃度のアニリン生産レベルが必要であり、アミノ安息香酸デカルボキシラーゼ活性のさらなる改善が必要である。
The Journal of Biological Chemistry, vol. 193, 453-458(1951)
Journal of the American Chemical Society, vol. 79, 628-630 (1957)
本発明は、アミノ安息香酸を原料として効率よくアニリンに変換する酵素、及び酵素をコードする遺伝子、この遺伝子を宿主としてアミノ安息香酸を原料として効率よくアニリンを製造する微生物、この微生物を用いて効率よくアニリンを製造する方法を提供することを目的とする。
本発明者らは、エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）由来のアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ(aminobenzoate decarboxylase)をコードする遺伝子をコリネ型細菌に導入した形質転換体が、効率よくアミノ安息香酸からアニリンを生産することを見出した。
さらに、エンテロバクター クロアカエ由来の４−ヒドロキシ安息香酸デカルボキシラーゼのアニリン生産性を一段と高めることを目的として、鋭意研究を重ねた結果、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）がスレオニン（Ｔ）に置換された突然変異体を見出すことができ、この突然変異体をコードする遺伝子をコリネ型細菌に導入した形質転換体のアニリン生産性が増大することを見出した。
加えて、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）をメチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、グルタミン（Ｑ）、セリン（Ｓ）、アルギニン（Ｒ）のいずれかに置換した部位特異的変異体をコードする遺伝子をコリネ型細菌に導入した形質転換体では、アニリン生産性が更に増大することを見出し、本発明を完成するに至った。
この他、本発明者らは、遺伝子組み換え宿主として汎用される大腸菌にアニリンを添加して好気培養を行った結果、アニリン濃度２０ｍＭ以上であると増殖に多大な影響がみられるが、アミノ酸生産菌として知られるコリネ型細菌の場合は、アニリン濃度を６０ｍＭにまで上げても増殖可能であることを見出した。即ち、遺伝子組み換え宿主として汎用される大腸菌よりもコリネ型細菌のアニリン耐性が高く、従ってアニリンの工業的生産性に優れていることを見出した（図２、図３）。
加えて、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）をメチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、グルタミン（Ｑ）、セリン（Ｓ）、アルギニン（Ｒ）のいずれかに置換した部位特異的変異体をコードする遺伝子をコリネ型細菌に導入した形質転換体では、アニリン生産性が更に増大することを見出し、本発明を完成するに至った。
この他、本発明者らは、遺伝子組み換え宿主として汎用される大腸菌にアニリンを添加して好気培養を行った結果、アニリン濃度２０ｍＭ以上であると増殖に多大な影響がみられるが、アミノ酸生産菌として知られるコリネ型細菌の場合は、アニリン濃度を６０ｍＭにまで上げても増殖可能であることを見出した。即ち、遺伝子組み換え宿主として汎用される大腸菌よりもコリネ型細菌のアニリン耐性が高く、従ってアニリンの工業的生産性に優れていることを見出した（図２、図３）。
すなわち、本発明は以下の発明に関する。
［１］アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子が宿主のコリネ型細菌に導入された、アニリン生産能を有する形質転換体であって、前記アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素が配列番号2で表されるアミノ酸配列から構成され、前記アミノ酸配列が少なくともＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）に変異を有することを特徴とする形質転換体。
［２］前記変異が、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）の、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、グルタミン（Ｑ）、スレオニン（Ｔ）、セリン（Ｓ）及びアルギニン（Ｒ）からなる群から選ばれる１種以上のアミノ酸への置換であることを特徴とする前記［１］記載の形質転換体。
［３］前記変異が、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）の、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）及びグルタミン（Ｑ）からなる群から選ばれる１種以上のアミノ酸への置換であることを特徴とする前記［１］又は［２］に記載の形質転換体。
［４］アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子が、エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）由来の遺伝子である前記［１］〜［３］のいずれか１項に記載の形質転換体。
［５］宿主のコリネ型細菌がコリネバクテリウム グルタミカムである前記［１］〜［４］のいずれか１項に記載の形質転換体。
［６］宿主のコリネバクテリウム グルタミカムが、コリネバクテリウム グルタミカムＲ(FERM P-18976（FERM BP-18976)、ATCC13032、又はATCC13869である前記［５］に記載の形質転換体。
［７］コリネバクテリウム グルタミカム ANI-13（受託番号：NITE P-01583（NITE BP-01583）形質転換体、コリネバクテリウム グルタミカム ANI-14（受託番号：NITE P-01584（NITE BP-01584）形質転換体又はコリネバクテリウム グルタミカム ANI-15（受託番号：NITE P-01585（NITE BP-01585）形質転換体。
［８］前記［１］〜［７］のいずれかに記載の形質転換体を、還元条件下、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩を含有する反応液中で反応させる工程と、反応培地中のアニリンを回収する工程とを含むアニリンの製造方法。
［９］反応工程において、形質転換体が実質的に増殖しない前記［８］に記載のアニリンの製造方法。
［１０］還元条件下の反応液の酸化還元電位が−２００〜−５００ミリボルトである前記［８］又は［９］に記載のアニリンの製造方法。
［１］アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子が宿主のコリネ型細菌に導入された、アニリン生産能を有する形質転換体であって、前記アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素が配列番号2で表されるアミノ酸配列から構成され、前記アミノ酸配列が少なくともＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）に変異を有することを特徴とする形質転換体。
［２］前記変異が、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）の、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、グルタミン（Ｑ）、スレオニン（Ｔ）、セリン（Ｓ）及びアルギニン（Ｒ）からなる群から選ばれる１種以上のアミノ酸への置換であることを特徴とする前記［１］記載の形質転換体。
［３］前記変異が、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）の、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）及びグルタミン（Ｑ）からなる群から選ばれる１種以上のアミノ酸への置換であることを特徴とする前記［１］又は［２］に記載の形質転換体。
［４］アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子が、エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）由来の遺伝子である前記［１］〜［３］のいずれか１項に記載の形質転換体。
［５］宿主のコリネ型細菌がコリネバクテリウム グルタミカムである前記［１］〜［４］のいずれか１項に記載の形質転換体。
［６］宿主のコリネバクテリウム グルタミカムが、コリネバクテリウム グルタミカムＲ(FERM P-18976（FERM BP-18976)、ATCC13032、又はATCC13869である前記［５］に記載の形質転換体。
［７］コリネバクテリウム グルタミカム ANI-13（受託番号：NITE P-01583（NITE BP-01583）形質転換体、コリネバクテリウム グルタミカム ANI-14（受託番号：NITE P-01584（NITE BP-01584）形質転換体又はコリネバクテリウム グルタミカム ANI-15（受託番号：NITE P-01585（NITE BP-01585）形質転換体。
［８］前記［１］〜［７］のいずれかに記載の形質転換体を、還元条件下、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩を含有する反応液中で反応させる工程と、反応培地中のアニリンを回収する工程とを含むアニリンの製造方法。
［９］反応工程において、形質転換体が実質的に増殖しない前記［８］に記載のアニリンの製造方法。
［１０］還元条件下の反応液の酸化還元電位が−２００〜−５００ミリボルトである前記［８］又は［９］に記載のアニリンの製造方法。
本発明の突然変異体をコードする遺伝子をコリネ型細菌に導入した形質転換体を用いることにより、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩から、アニリンを高効率で製造することができる。
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明の態様の一つとして、アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素を構成する配列番号2で表されるアミノ酸配列のうち少なくともＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）が、プロリン以外のアミノ酸へ置換された変異を含む酵素をコードする遺伝子が宿主のコリネ型細菌に導入された、アニリン生産能を有する形質転換体が挙げられる。
宿主
コリネ型細菌とは、バージーズ・マニュアル・デターミネイティブ・バクテリオロジー〔Bargeys Manual of Determinative Bacteriology、Vol. 8、599（1974）〕に定義されている一群の微生物であり、通常の好気的条件で増殖するものならば特に限定されるものではない。具体例を挙げれば、コリネバクテリウム属菌、ブレビバクテリウム属菌、アースロバクター属菌、マイコバクテリウム属菌、マイクロコッカス属菌等が挙げられる。コリネ型細菌の中ではコリネバクテリウム属菌が好ましい。
コリネ型細菌とは、バージーズ・マニュアル・デターミネイティブ・バクテリオロジー〔Bargeys Manual of Determinative Bacteriology、Vol. 8、599（1974）〕に定義されている一群の微生物であり、通常の好気的条件で増殖するものならば特に限定されるものではない。具体例を挙げれば、コリネバクテリウム属菌、ブレビバクテリウム属菌、アースロバクター属菌、マイコバクテリウム属菌、マイクロコッカス属菌等が挙げられる。コリネ型細菌の中ではコリネバクテリウム属菌が好ましい。
コリネバクテリウム属菌としては、コリネバクテリウム グルタミカム、コリネバクテリウム エフィシェンス（Corynebacterium efficiens）、コリネバクテリウム アンモニアゲネス（Corynebacterium ammoniagenes）、コリネバクテリウム ハロトレランス（Corynebacterium halotolerance）、コリネバクテリウム アルカノリティカム（Corynebacterium alkanolyticum）等が挙げられる。中でも、安全でかつアニリン生産性が高い点で、コリネバクテリウム グルタミカムが好ましい。好適な菌株として、コリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）Ｒ株（FERM P-18976（国際受託番号：FERM BP-18976））、ATCC13032株、ATCC13869株、ATCC13058株、ATCC13059株、ATCC13060株、ATCC13232株、ATCC13286株、ATCC13287株、ATCC13655株、ATCC13745株、ATCC13746株、ATCC13761株、ATCC14020株、ATCC31831株、MJ-233（FERM BP-1497）、MJ-233AB-41（FERM BP-1498）等が挙げられる。中でも、Ｒ株（FERM P-18976（国際受託番号：FERM BP-18976））、ATCC13032株、ATCC13869株が好ましい。
なお、分子生物学的分類により、ブレビバクテリウム フラバム（Brevibacterium flavum）、ブレビバクテリウム ラクトファーメンタム（Brevibacterium lactofermentum）、ブレビバクテリウム ディバリカタム（Brevibacterium divaricatum）、コリネバクテリウム リリウム（Corynebacterium lilium）等のコリネ型細菌もコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）に菌名が統一されている〔Liebl, W. et al., Transfer of Brevibacterium divaricatum DSM 20297T, "Brevibacterium flavum" DSM 20411, "Brevibacterium lactofermentum" DSM 20412 and DSM 1412, and Corynebacterium glutamicum and their distinction by rRNA gene restriction patterns. Int J Syst Bacteriol. 41:255-260. (1991)、駒形和男ら, コリネフォルム細菌の分類, 発酵と工業, 45:944-963 (1987)〕。
旧分類のブレビバクテリウム ラクトファーメンタムATCC13869株、ブレビバクテリウム フラバムのMJ-233株（FERM BP-1497）、MJ-233AB-41株（FERM BP-1498）等も好適なコリネバクテリウム グルタミカムである。
旧分類のブレビバクテリウム ラクトファーメンタムATCC13869株、ブレビバクテリウム フラバムのMJ-233株（FERM BP-1497）、MJ-233AB-41株（FERM BP-1498）等も好適なコリネバクテリウム グルタミカムである。
ブレビバクテリウム属菌としては、ブレビバクテリウム アンモニアゲネス（Brevibacterium ammoniagenes）（例えばATCC6872株）等が挙げられる。
アースロバクター属菌としては、アースロバクター グロビフォルミス（Arthrobacter globiformis）（例えばATCC8010株、ATCC4336株、ATCC21056株、ATCC31250株、ATCC31738株、ATCC35698株）等が挙げられる。
マイコバクテリウム属菌としては、マイコバクテリウム ボビス（Mycobacterium bovis）（例えばATCC19210株、ATCC27289株）等が挙げられる。
マイクロコッカス属菌としては、マイクロコッカス フロイデンライヒ（Micrococcus freudenreichii）（例えばNo. 239株（FERM P-13221））、マイクロコッカス ルテウス（Micrococcus leuteus）(例えばNo. 240株（FERM P-13222）)、マイクロコッカス ウレアエ（Micrococcus ureae）（例えばIAM1010株）、マイクロコッカス ロゼウス（Micrococcus roseus）（例えばIFO3764株）等が挙げられる。
また、コリネ型細菌は、野生型の他に、その変異株や人為的な遺伝子組換え体であってもよい。例えば、ラクテート（乳酸）デヒドロゲナーゼ（lactate dehydrogenase：LDH）、フォスフォエノールピルベートカルボキシラーゼ（phosphoenolpyrvate carboxylase）、マレートデヒドロゲナーゼ（malate dehydrogenase）等の遺伝子の破壊株が挙げられる。このような遺伝子破壊株を宿主として用いることにより、アニリンの生産性を向上させたり、副生成物の生成を抑制したりすることができる。
中でも、ラクテートデヒドロゲナーゼ遺伝子の破壊株が好ましい。この遺伝子破壊株は、乳酸デヒドロゲナーゼ遺伝子が破壊されていることにより、ピルビン酸から乳酸への代謝経路が遮断されている。中でも、コリネバクテリウム グルタミカムの、特にＲ（FERM P-18976（国際受託番号：FERM BP-18976））株のラクテートデヒドロゲナーゼ遺伝子の破壊株が好ましい。
このような遺伝子破壊株は、遺伝子工学的手法により常法に従い作製できる。例えば、WO2005／010182A1に、乳酸デヒドロゲナーゼ破壊株、及びその作製方法が記載されている。
コリネ型細菌は、他細菌に比べて、アニリンのような溶剤に対する耐性が高い。また、コリネ型細菌は、他の好気性細菌に比べて、実質的に増殖しない還元条件下で効率よく物質生産を行える。これらの点で、コリネ型細菌は本発明の方法によるアニリン製造に好適である。
アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ
アミノベンゾエート デカルボキシラーゼは、アミノ安息香酸から炭酸を脱離させてアニリンを生成する反応、及びその逆反応を触媒する酵素である。
アミノベンゾエート デカルボキシラーゼは、アミノ安息香酸から炭酸を脱離させてアニリンを生成する反応、及びその逆反応を触媒する酵素である。
アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子の由来は、エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）由来の遺伝子が好ましい。特に、４−アミノ安息香酸を基質とした場合、エンテロバクター クロアカエ由来の遺伝子が好ましい。
本発明に用いられるエンテロバクター クロアカエ由来遺伝子としては、例えば、配列番号1の塩基配列によってコードされるアミノ酸配列において、少なくともＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）に変異が導入され、前記変異を導入されたアミノ酸配列がアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有し、前記変異に対応する塩基の改変がなされた塩基配列（以下、「変異を含む塩基配列」という）を有するＤＮＡが挙げられる。前記変異としては、１〜数個のアミノ酸が、置換、欠失、挿入及び／又は付加されることを意味する。前記数個とは、特に限定されないが、通常２〜８個であり、２〜６個が好ましく、２〜３個がより好ましい。前記遺伝子としては、好ましくは、少なくとも前記プロリン（Ｐ）が、プロリン以外の１種以上のアミノ酸へ置換された変異を含み、前記変異を導入されたアミノ酸配列がアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有し、前記アミノ酸の変異に対応する塩基の改変がなされた塩基配列を有するＤＮＡが挙げられる。
本発明に用いられるエンテロバクター クロアカエ由来のアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素としては、配列番号2で表されるアミノ酸配列において、少なくともＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）に変異が導入された変異体が挙げられる。本発明の変異体としては、アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する限り、特に限定されず、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）に変異が導入されたものも含まれる。前記変異としては、１〜数個のアミノ酸が、置換、欠失、挿入及び／又は付加されることを意味する。前記数個とは、特に限定されないが、通常２〜８個であり、２〜６個が好ましく、２〜３個がより好ましい。前記変異体としては、特に限定されないが、好適には、配列番号2で表されるアミノ酸配列において、少なくとも前記プロリン（Ｐ）が、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、グルタミン（Ｑ）、スレオニン（Ｔ）、セリン（Ｓ）及びアルギニン（Ｒ）からなる群から選ばれる１種以上のアミノ酸へ置換された酵素が挙げられ、より好ましくは、少なくとも前記プロリン（Ｐ）が、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）及びグルタミン（Ｑ）からなる群から選ばれる１種以上のアミノ酸へ置換された変異を含む酵素が挙げられる。
また、本発明では、前記の変異を含む塩基配列と相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有するポリペプチドをコードするＤＮＡも使用できる。本発明において「ストリンジェントな条件」は、一般的な条件、例えば、Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, 1989, Vol2, p11.45に記載された条件を指す。具体的には、完全ハイブリッドの融解温度（Ｔｍ）より５〜１０℃低い温度でハイブリダイゼーションが起こる場合を指す。例えば、０．１％ＳＤＳ、０．５×ＳＳＣ中で、６５〜６８℃にて１５分間×２回等が挙げられる。
アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性は、J. Am .Chem. Soc., 79, 628-630 (1957) に記載の方法を改変して測定できる。簡単に説明すると、コリネ型細菌を栄養培地で、１８時間３３℃で培養したものを、最少培地で２回洗菌した後、最少培地に再懸濁、Intact Cellとする。次に反応として、Intact Cell にＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．０）を緩衝液として２５ｍＭ加え、基質としてアントラニル酸、又は４−アミノベンゾエートを終濃度５ｍＭになるように添加する。３３℃、２００ｒｐｍで６時間振とう後、反応液を菌と上清に遠心分離し、上清を０．２２μｍのフィルターで濾過したものをサンプルとする。生じたアニリン生成量をＧＣ／ＭＳ、又はＨＰＬＣで定量できる。
また、本発明では、前記の変異を含む塩基配列と同一性が９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９８％以上の塩基配列からなり、かつアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有するポリペプチドをコードするＤＮＡも使用できる。本発明において、塩基配列の同一性は、GENETYX ver.8（GENETYX 株式会社ゼネティックス製）により算出した値である。
前記の変異を含む塩基配列からなるＤＮＡのホモログは、例えば、これらの塩基配列に基づき常法に従い設計したプライマー又はプローブを用いたＰＣＲ又はハイブリダイゼーションにより、他生物種のＤＮＡライブラリーから選択することができ、これにより高確率でアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有するポリペプチドをコードするＤＮＡが得られる。
形質転換のためのベクターの構築
ＰＣＲで増幅したアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ酵素をコードするＤＮＡは、それぞれ、宿主で増幅できる適切なベクターにクローニングすればよい。
プラスミドベクターとしては、コリネ型細菌内で自律複製機能を司る遺伝子を含むものであれば良い。その具体例としては、ブレビバクテリウム ラクトファーメンタム（Brevibacterium lactofermentum）２２５６由来のｐＡＭ３３０〔特開昭58-67699号公報〕、〔Miwa, K. et al., Cryptic plasmids in glutamic acid-producing bacteria. Agric. Biol. Chem. 48:2901-2903（1984）〕及び〔Yamaguchi, R. et al., Determination of the complete nucleotide sequence of the Brevibacterium lactofermentum plasmid pAM330 and the analysis of its genetic information. Nucleic Acids Symp. Ser. 16:265-267（1985）〕、コリネバクテリウム グルタミカム ＡＴＣＣ１３０５８由来のｐＨＭ１５１９ 〔Miwa, K. et al., Cryptic plasmids in glutamic acid-producing bacteria. Agric. Biol. Chem. 48:2901-2903（1984）〕及びpCRY30 〔Kurusu, Y. et al., Identification of plasmid partition function in coryneform bacteria. Appl. Environ. Microbiol. 57:759-764 （1991）〕、コリネバクテリウム グルタミカム Ｔ２５０由来のｐＣＧ４〔特開昭57-183799号公報〕、〔Katsumata, R. et al., Protoplast transformation of glutamate-producing bacteria with plasmid DNA. J. Bacteriol.、159:306-311 （1984）〕、pAG1、pAG3、pAG14、pAG50〔特開昭62-166890号公報〕、pEK0、pEC5、pEKEx1 〔Eikmanns, B.J. et al., A family of Corynebacterium glutamicum/Escherichia coli shuttle vectors for cloning, controlled gene expression, and promoter probing. Gene, 102:93-98 （1991）〕等が挙げられる。
ＰＣＲで増幅したアミノベンゾエート デカルボキシラーゼ酵素をコードするＤＮＡは、それぞれ、宿主で増幅できる適切なベクターにクローニングすればよい。
プラスミドベクターとしては、コリネ型細菌内で自律複製機能を司る遺伝子を含むものであれば良い。その具体例としては、ブレビバクテリウム ラクトファーメンタム（Brevibacterium lactofermentum）２２５６由来のｐＡＭ３３０〔特開昭58-67699号公報〕、〔Miwa, K. et al., Cryptic plasmids in glutamic acid-producing bacteria. Agric. Biol. Chem. 48:2901-2903（1984）〕及び〔Yamaguchi, R. et al., Determination of the complete nucleotide sequence of the Brevibacterium lactofermentum plasmid pAM330 and the analysis of its genetic information. Nucleic Acids Symp. Ser. 16:265-267（1985）〕、コリネバクテリウム グルタミカム ＡＴＣＣ１３０５８由来のｐＨＭ１５１９ 〔Miwa, K. et al., Cryptic plasmids in glutamic acid-producing bacteria. Agric. Biol. Chem. 48:2901-2903（1984）〕及びpCRY30 〔Kurusu, Y. et al., Identification of plasmid partition function in coryneform bacteria. Appl. Environ. Microbiol. 57:759-764 （1991）〕、コリネバクテリウム グルタミカム Ｔ２５０由来のｐＣＧ４〔特開昭57-183799号公報〕、〔Katsumata, R. et al., Protoplast transformation of glutamate-producing bacteria with plasmid DNA. J. Bacteriol.、159:306-311 （1984）〕、pAG1、pAG3、pAG14、pAG50〔特開昭62-166890号公報〕、pEK0、pEC5、pEKEx1 〔Eikmanns, B.J. et al., A family of Corynebacterium glutamicum/Escherichia coli shuttle vectors for cloning, controlled gene expression, and promoter probing. Gene, 102:93-98 （1991）〕等が挙げられる。
好ましいプロモーターとしては、コリネバクテリウム グルタミカムＲ由来のグリセルアルデヒド３−フォスフェートデヒドロゲナーゼＡ遺伝子(gapA)のプロモーターPgapA、マレートデヒドロゲナーゼ遺伝子（mdh）のプロモーターPmdh、ラクテートデヒドロゲナーゼA遺伝子（ldhA）のプロモーターPldhA等が挙げられ、中でも、PgapAが好ましい。
好ましいターミネーターとしては、大腸菌rRNAオペロンのrrnB T1T2 ターミネーター、大腸菌のtrpA ターミネーター、ブレビバクテリウム ラクトファーメンタム（Brevibacterium lactofermentum）のtrp ターミネーター等が挙げられ、中でも、rrnB T1T2 ターミネーターが好ましい。
形質転換
形質転換方法は、公知の方法を制限無く使用できる。このような公知の方法として、例えば塩化カルシウム／塩化ルビジウム法、リン酸カルシウム法、ＤＥＡＥ−デキストラン介在トランスフェクション、電気穿孔法等が挙げられる。中でも、コリネ型細菌には、電気パルス法が好適であり、電気パルス法は、公知の方法 〔Kurusu, Y. et al., Electroporation-transformation system for Coryneform bacteria by auxotrophic complementation. Agric. Biol. Chem. 54:443-447 （1990）〕 及び 〔Vertes A.A. et al., Presence of mrr- and mcr-like restriction systems in Coryneform bacteria. Res. Microbiol. 144:181-185 （1993）〕により行うことができる。
形質転換方法は、公知の方法を制限無く使用できる。このような公知の方法として、例えば塩化カルシウム／塩化ルビジウム法、リン酸カルシウム法、ＤＥＡＥ−デキストラン介在トランスフェクション、電気穿孔法等が挙げられる。中でも、コリネ型細菌には、電気パルス法が好適であり、電気パルス法は、公知の方法 〔Kurusu, Y. et al., Electroporation-transformation system for Coryneform bacteria by auxotrophic complementation. Agric. Biol. Chem. 54:443-447 （1990）〕 及び 〔Vertes A.A. et al., Presence of mrr- and mcr-like restriction systems in Coryneform bacteria. Res. Microbiol. 144:181-185 （1993）〕により行うことができる。
形質転換体は、微生物の培養に通常使用される培地を用いて培養すればよい。この培地としては、通常、炭素源、窒素源、無機塩類及びその他の栄養物質等を含有する天然培地又は合成培地等を用いることができる。
形質転換体に用いる前記炭素源としては、グルコース、フルクトース、スクロース、マンノース、マルトース、マンニトール、キシロース、アラビノース、ガラクトース、澱粉、糖蜜、ソルビトール、グリセリン等の糖質又は糖アルコール；酢酸、クエン酸、乳酸、フマル酸、マレイン酸又はグルコン酸等の有機酸；エタノール、プロパノール等のアルコール等が挙げられる。また、所望によりノルマルパラフィン等の炭化水素等も用いることができる。炭素源は、１種を単独で使用でき、又は２種以上を混合して使用してもよい。培地中のこれら炭素源の濃度は、通常、約０．１〜１０（ｗ／ｖ％）とすればよい。
形質転換体に用いる前記窒素源としては、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、酢酸アンモニウム等の無機又は有機アンモニウム化合物、尿素、アンモニア水、硝酸ナトリウム、硝酸カリウム等が挙げられる。また、コーンスティープリカー、肉エキス、ベプトン、ＮＺ−アミン、蛋白質加水分解物、アミノ酸等の含窒素有機化合物等も使用できる。窒素源は、１種を単独で使用してもよく、また２種以上を混合して使用してもよい。培地中の窒素源濃度は、使用する窒素化合物によっても異なるが、通常、約０．１〜１０（ｗ／ｖ％）とすればよい。
形質転換体に用いる前記無機塩類としては、例えばリン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硝酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、硫酸コバルト、又は炭酸カルシウム等が挙げられる。これら無機塩は、１種を単独で使用してもよく、また２種以上を混合して使用してもよい。培地中の無機塩類濃度は、使用する無機塩によっても異なるが、通常、約０．０１〜１（ｗ／ｖ％）とすればよい。
形質転換体に用いる前記栄養物質としては、例えば肉エキス、ペプトン、ポリペプトン、酵母エキス、乾燥酵母、コーンスティープリカー、脱脂粉乳、脱脂大豆塩酸加水分解物、又は動植物若しくは微生物菌体のエキスやそれらの分解物等が挙げられる。栄養物質の培地濃度は、使用する栄養物質によっても異なるが、通常、約０．１〜１０（ｗ／ｖ％）とすればよい。さらに、必要に応じて、ビタミン類を添加することもできる。ビタミン類としては、例えば、ビオチン、チアミン（ビタミンＢ１）、ピリドキシン（ビタミンＢ６）、パントテン酸、イノシトール、ニコチン酸等が挙げられる。培地のｐＨは約５〜８が好ましい。
形質転換体に用いる好ましい微生物培養培地としては、Ａ培地〔Inui, M. et al., Metabolic analysis of Corynebacterium glutamicum during lactate and succinate productions under oxygen deprivation conditions. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 7:182-196 (2004)〕、ＢＴ培地〔Omumasaba, C.A. et al., Corynebacterium glutamicum glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase isoforms with opposite, ATP-dependent regulation. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 8:91-103 (2004)〕等が挙げられる。
培養温度は約１５〜４５℃とすればよく、培養時間は約１〜７日間とすればよい。
培養温度は約１５〜４５℃とすればよく、培養時間は約１〜７日間とすればよい。
アニリンの製造方法
上記説明した本発明の形質転換体を、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩を含有する反応液中で反応させる工程と、反応液中のアニリンを回収する工程とを含む方法によりアニリンを製造することができる。
上記説明した本発明の形質転換体を、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩を含有する反応液中で反応させる工程と、反応液中のアニリンを回収する工程とを含む方法によりアニリンを製造することができる。
微生物の増殖
アニリンの製造における反応に先立ち、形質転換体を好気条件下で、温度約２５〜３５℃で、約１２〜４８時間培養して増殖させることが好ましい。
アニリンの製造における反応に先立ち、形質転換体を好気条件下で、温度約２５〜３５℃で、約１２〜４８時間培養して増殖させることが好ましい。
培養用培地
反応に先立つ形質転換体の好気的培養に用いる培地は、炭素源、窒素源、無機塩類及びその他の栄養物質等を含有する天然培地又は合成培地を用いることができる。
前記好気的培養における炭素源として、糖類（グルコース、フルクトース、マンノース、キシロース、アラビノース、ガラクトースのような単糖；スクロース、マルトース、ラクトース、セロビオース、キシロビオース、トレハロースのような二糖；澱粉のような多糖；糖蜜等）、マンニトール、ソルビトール、キシリトール、グリセリンのような糖アルコール；酢酸、クエン酸、乳酸、フマル酸、マレイン酸、グルコン酸のような有機酸；エタノール、プロパノールのようなアルコール；ノルマルパラフィンのような炭化水素等も用いることができる。
炭素源は、１種を単独で、又は２種以上を混合して使用できる。
培地中のこれら炭素源の濃度は、通常、約０．１〜１０（ｗ／ｖ％）とすればよい。
反応に先立つ形質転換体の好気的培養に用いる培地は、炭素源、窒素源、無機塩類及びその他の栄養物質等を含有する天然培地又は合成培地を用いることができる。
前記好気的培養における炭素源として、糖類（グルコース、フルクトース、マンノース、キシロース、アラビノース、ガラクトースのような単糖；スクロース、マルトース、ラクトース、セロビオース、キシロビオース、トレハロースのような二糖；澱粉のような多糖；糖蜜等）、マンニトール、ソルビトール、キシリトール、グリセリンのような糖アルコール；酢酸、クエン酸、乳酸、フマル酸、マレイン酸、グルコン酸のような有機酸；エタノール、プロパノールのようなアルコール；ノルマルパラフィンのような炭化水素等も用いることができる。
炭素源は、１種を単独で、又は２種以上を混合して使用できる。
培地中のこれら炭素源の濃度は、通常、約０．１〜１０（ｗ／ｖ％）とすればよい。
前記好気的培養における窒素源としては、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、酢酸アンモニウムのような無機又は有機アンモニウム化合物、尿素、アンモニア水、硝酸ナトリウム、硝酸カリウム等を使用できる。また、コーンスティープリカー、肉エキス、ペプトン、ＮＺ−アミン、蛋白質加水分解物、アミノ酸等の含窒素有機化合物等も使用できる。窒素源は、１種を単独で、又は２種以上を混合して使用できる。窒素源の培地中の濃度は、使用する窒素化合物によっても異なるが、通常、約０．１〜１０（ｗ／ｖ％）とすればよい。
前記好気的培養における無機塩類としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硝酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、硫酸コバルト、炭酸カルシウム等が挙げられる。無機塩は、１種を単独で、又は２種以上を混合して使用できる。無機塩類の培地中の濃度は、使用する無機塩によっても異なるが、通常、約０．０１〜１（ｗ／ｖ％）とすればよい。
前記好気的培養における栄養物質としては、肉エキス、ペプトン、ポリペプトン、酵母エキス、乾燥酵母、コーンスティープリカー、脱脂粉乳、脱脂大豆塩酸加水分解物、動植物又は微生物菌体のエキスやそれらの分解物等が挙げられる。栄養物質の培地中の濃度は、使用する栄養物質によっても異なるが、通常約０．１〜１０（ｗ／ｖ％）とすればよい。
さらに、必要に応じて、ビタミン類を添加することもできる。ビタミン類としては、ビオチン、チアミン（ビタミンＢ１）、ピリドキシン（ビタミンＢ６）、パントテン酸、イノシトール、ニコチン酸等が挙げられる。培地のｐＨは約６〜８が好ましい。
さらに、必要に応じて、ビタミン類を添加することもできる。ビタミン類としては、ビオチン、チアミン（ビタミンＢ１）、ピリドキシン（ビタミンＢ６）、パントテン酸、イノシトール、ニコチン酸等が挙げられる。培地のｐＨは約６〜８が好ましい。
前記好気的培養における、具体的な好ましいコリネ型細菌用培地としては、Ａ培地〔Inui, M. et al., Metabolic analysis of Corynebacterium glutamicum during lactate and succinate productions under oxygen deprivation conditions. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 7:182-196 (2004)〕、ＢＴ培地〔Omumasaba, C.A. et al., Corynebacterium glutamicum glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase isoforms with opposite, ATP-dependent regulation. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 8:91-103 (2004)〕等が挙げられる。これらの培地において、糖類濃度を上記範囲にして用いればよい。
反応液
本発明のアニリン製造における反応液は、アニリン前駆体（アニリン原料）を含有する水、緩衝液、無機塩培地等を用いることができる。
前記前駆体としては、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩を用いることができる。アミノ安息香酸としては、２−アミノ安息香酸（ｏ−アミノ安息香酸；アントラニル酸）、３−アミノ安息香酸（ｍ−アミノ安息香酸）、４−アミノ安息香酸（ｐ−アミノ安息香酸）のいずれも使用できる。中でも、水溶性であるため反応に使用し易い点で、２−アミノ安息香酸、４−アミノ安息香酸が好ましい。
本発明のアニリン製造における反応液は、アニリン前駆体（アニリン原料）を含有する水、緩衝液、無機塩培地等を用いることができる。
前記前駆体としては、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩を用いることができる。アミノ安息香酸としては、２−アミノ安息香酸（ｏ−アミノ安息香酸；アントラニル酸）、３−アミノ安息香酸（ｍ−アミノ安息香酸）、４−アミノ安息香酸（ｐ−アミノ安息香酸）のいずれも使用できる。中でも、水溶性であるため反応に使用し易い点で、２−アミノ安息香酸、４−アミノ安息香酸が好ましい。
前記アミノ安息香酸の塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩、塩酸塩等が挙げられる。また、前記アミノ安息香酸のエステルとしては、炭素数１〜４のアルコールとのエステル等が挙げられる。前記アニリン前駆体としては、反応液への溶解度が高くなる点で、塩が好ましい。前駆体は、１種を単独で、又は２種以上を混合して使用できる。
反応液中のアミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩の濃度は、０．１〜５００ｍＭが好ましく、０．５〜３００ｍＭがより好ましく、１〜２００ｍＭがさらにより好ましい。上記範囲であれば、効率良く、アニリンを製造できる。
前記反応液における緩衝液としては、リン酸バッファー、トリスバッファー、炭酸バッファー等が挙げられる。緩衝液の濃度は、約１０〜１５０ｍＭが好ましい。
前記反応液における無機塩培地としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硝酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、硫酸コバルト、炭酸カルシウム等の無機塩の１種又は２種以上を含む培地が挙げられる。中でも、硫酸マグネシウムを含む培地が好ましい。無機塩培地として、具体的には、ＢＴ培地〔Omumasaba, C.A. et al., Corynebacterium glutamicum glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase isoforms with opposite, ATP-dependent regulation. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 8:91-103 (2004)〕等が挙げられる。無機塩類の培地中の濃度は、使用する無機塩によっても異なるが、通常、約０．０１〜１（ｗ／ｖ％）とすればよい。
反応液のｐＨは約５〜８が好ましい。反応中は、アンモニア水溶液、水酸化ナトリウム水溶液等を用いて、ｐＨコントローラー(例えば、エイブル株式会社製、型式：DT-1023）で、反応液のｐＨを中性付近、特に約６〜７にコントロールしながら反応させることが好ましい。
反応条件
反応温度、即ち反応中の形質転換体の生存温度は、約２０〜４０℃が好ましく、約２５〜３５℃がより好ましい。上記温度範囲であれば、効率良くアニリンを製造できる。また、反応時間は、約１〜７日間が好ましく、約１〜３日間がより好ましい。培養は、バッチ式、流加式、連続式の何れでもよい。中でも、バッチ式が好ましい。
反応温度、即ち反応中の形質転換体の生存温度は、約２０〜４０℃が好ましく、約２５〜３５℃がより好ましい。上記温度範囲であれば、効率良くアニリンを製造できる。また、反応時間は、約１〜７日間が好ましく、約１〜３日間がより好ましい。培養は、バッチ式、流加式、連続式の何れでもよい。中でも、バッチ式が好ましい。
還元条件
反応は、好気的条件で行ってもよく、還元条件で行ってもよいが、還元条件で行うことが好ましい。還元条件では、コリネ型細菌は実質的に増殖せず、一層効率的にアニリンを生産させることができる。
還元条件は、反応液の酸化還元電位で規定される。反応液の酸化還元電位は、約−２００ｍＶ〜−５００ｍＶが好ましく、約−２５０ｍＶ〜−５００ｍＶがより好ましい。反応液の還元状態は、簡便にはレサズリン指示薬（還元状態であれば、青色から無色への脱色）で推定できるが、正確には酸化還元電位差計（例えば、BROADLEY JAMES社製、ORP Electrodes）を用いて測定できる。
反応は、好気的条件で行ってもよく、還元条件で行ってもよいが、還元条件で行うことが好ましい。還元条件では、コリネ型細菌は実質的に増殖せず、一層効率的にアニリンを生産させることができる。
還元条件は、反応液の酸化還元電位で規定される。反応液の酸化還元電位は、約−２００ｍＶ〜−５００ｍＶが好ましく、約−２５０ｍＶ〜−５００ｍＶがより好ましい。反応液の還元状態は、簡便にはレサズリン指示薬（還元状態であれば、青色から無色への脱色）で推定できるが、正確には酸化還元電位差計（例えば、BROADLEY JAMES社製、ORP Electrodes）を用いて測定できる。
還元条件にある反応液の調整方法は、公知の方法を制限なく使用できる。例えば、反応液調製用の液体媒体として、蒸留水等の代わりに反応液用水溶液を使用してもよく、反応液用水溶液の調整方法は、例えば硫酸還元微生物等の絶対嫌気性微生物用の培養液調整方法（Pfennig, N. et al．（1981）：The dissimilatory sulfate-reducing bacteria，In The Prokaryotes，A Handbook on Habitats，Isolation and Identification of Bacteria，Ed. By Starr，M.P. et al．p926-940，Berlin，Springer Verlag．）や「農芸化学実験書 第三巻、京都大学農学部 農芸化学教室編、1990年第26刷、産業図書株式会社出版」等が参考となり、所望する還元条件下の水溶液を得ることができる。
具体的には、蒸留水等を加熱処理や減圧処理して溶解ガスを除去することにより、還元条件の反応液用水溶液を得ることができる。この場合、通常約１０ｍｍＨｇ以下、好ましくは約５ｍｍＨｇ以下、より好ましくは約３ｍｍＨｇ以下の減圧下で、約１〜６０分程度、好ましくは約５〜４０分程度、蒸留水等を処理することにより、溶解ガス、特に溶解酸素を除去して還元条件下の反応液用水溶液を作成することができる。
また、適当な還元剤（例えば、チオグリコール酸、アスコルビン酸、システィン塩酸塩、メルカプト酢酸、チオール酢酸、グルタチオン、硫化ソーダ等）を添加して還元条件の反応液用水溶液を調整することもできる。
これらの方法を適宜組み合わせることも有効な還元条件の反応液用水溶液の調整方法である。
これらの方法を適宜組み合わせることも有効な還元条件の反応液用水溶液の調整方法である。
反応中も反応液を還元条件に維持することが好ましい。反応途中での還元条件を維持するために、反応系外からの酸素の混入を可能な限り防止することが望ましく、具体的には、反応系を窒素ガス等の不活性ガスや炭酸ガス等で封入する方法が挙げられる。酸素混入をより効果的に防止する方法としては、反応途中において本発明の好気性細菌の菌体内の代謝機能を効率よく機能させるために、反応系のｐＨ維持調整液の添加や各種栄養素溶解液を適宜添加する必要が生じる場合もあるが、このような場合には添加溶液から酸素を予め除去しておくことが有効である。
アニリンの回収
上記のようにして培養することにより、反応液中にアニリンが生産される。反応液を回収することによりアニリンを回収できるが、さらに、公知の方法でアニリンを反応液から分離することもできる。そのような公知の方法として、蒸留法、膜透過法、有機溶媒抽出法等が挙げられる。なお、蒸留法、膜透過法、有機溶媒抽出法は、従来十分に確立されているので、本発明においてもそれに従ってよい。
上記のようにして培養することにより、反応液中にアニリンが生産される。反応液を回収することによりアニリンを回収できるが、さらに、公知の方法でアニリンを反応液から分離することもできる。そのような公知の方法として、蒸留法、膜透過法、有機溶媒抽出法等が挙げられる。なお、蒸留法、膜透過法、有機溶媒抽出法は、従来十分に確立されているので、本発明においてもそれに従ってよい。
本発明は、本発明の効果を奏する限り、本発明の技術的範囲内において、上記の構成を種々組み合わせた態様を含む。
次に、実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら限定されるものではなく、多くの変形が本発明の技術的思想内で当分野において通常の知識を有する者により可能である。
［製造例１］アニリン生産遺伝子のクローニングと発現
(1) 微生物からの染色体ＤＮＡの抽出
エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）NBRC 13535からの染色体ＤＮＡ抽出は、NBRC Medium No.802培地 [polypeptone 10 g, yeast extract 2 g, MgSO4・7H2O 1 gを蒸留水1 Lに溶解]に、白金耳を用いて植菌後、対数増殖期まで３７℃で振とう培養し、菌体を集菌後、ＤＮＡゲノム抽出キット(商品名：GenomicPrep Cells and Tissue DNA Isolation Kit、アマシャム社製）を用いて、取扱説明書に従い、集めた菌体から染色体ＤＮＡを回収した。
(1) 微生物からの染色体ＤＮＡの抽出
エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）NBRC 13535からの染色体ＤＮＡ抽出は、NBRC Medium No.802培地 [polypeptone 10 g, yeast extract 2 g, MgSO4・7H2O 1 gを蒸留水1 Lに溶解]に、白金耳を用いて植菌後、対数増殖期まで３７℃で振とう培養し、菌体を集菌後、ＤＮＡゲノム抽出キット(商品名：GenomicPrep Cells and Tissue DNA Isolation Kit、アマシャム社製）を用いて、取扱説明書に従い、集めた菌体から染色体ＤＮＡを回収した。
(2) クローニングベクターの構築
クローニングベクターpCRB22の構築
コリネバクテリウム カゼイ JCM12072由来のプラスミドpCASE1のＤＮＡ複製起点（以降、pCASE1-oriと記す）配列、及びクローニングベクターpHSG298（タカラバイオ株式会社製）をそれぞれ含むＤＮＡ断片を以下のＰＣＲ法により増幅した。
ＰＣＲに際して、pCASE1-ori配列、クローニングベクターpHSG298をそれぞれクローン化するべく、配列番号3（pCASE1-ori配列）、配列番号4（クローニングベクター−pHSG298）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを合成し、使用した。
クローニングベクターpCRB22の構築
コリネバクテリウム カゼイ JCM12072由来のプラスミドpCASE1のＤＮＡ複製起点（以降、pCASE1-oriと記す）配列、及びクローニングベクターpHSG298（タカラバイオ株式会社製）をそれぞれ含むＤＮＡ断片を以下のＰＣＲ法により増幅した。
ＰＣＲに際して、pCASE1-ori配列、クローニングベクターpHSG298をそれぞれクローン化するべく、配列番号3（pCASE1-ori配列）、配列番号4（クローニングベクター−pHSG298）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを合成し、使用した。
pCASE1-ori配列増幅用プライマー
（a-1）； 5’- AT AGATCT AGAACGTCCGTAGGAGC -3’ （配列番号5）
（b-1）； 5’- AT AGATCT GACTTGGTTACGATGGAC -3’ （配列番号6）
なお、プライマー（a-1）及び（b-1）には、BglII制限酵素部位が付加されている。
クローニングベクターpHSG298増幅用プライマー
（a-2）； 5’- AT AGATCT AGGTTTCCCGACTGGAAAG -3’ （配列番号7）
（b-2）； 5’- AT AGATCT CGTGCCAGCTGCATTAATGA -3’ （配列番号8）
なお、プライマー（a-2）及び（b-2）には、BglII制限酵素部位が付加されている。
（a-1）； 5’- AT AGATCT AGAACGTCCGTAGGAGC -3’ （配列番号5）
（b-1）； 5’- AT AGATCT GACTTGGTTACGATGGAC -3’ （配列番号6）
なお、プライマー（a-1）及び（b-1）には、BglII制限酵素部位が付加されている。
クローニングベクターpHSG298増幅用プライマー
（a-2）； 5’- AT AGATCT AGGTTTCCCGACTGGAAAG -3’ （配列番号7）
（b-2）； 5’- AT AGATCT CGTGCCAGCTGCATTAATGA -3’ （配列番号8）
なお、プライマー（a-2）及び（b-2）には、BglII制限酵素部位が付加されている。
鋳型ＤＮＡは、Japan. Collection of Microorganisms (JCM)より入手したコリネバクテリウム カゼイ JCM12072から抽出したトータルＤＮＡ及びクローニングベクターpHSG298（タカラバイオ株式会社製）を用いた。
実際のＰＣＲは、サーマルサイクラー GeneAmp PCR System 9700(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い、反応試薬としてTaKaRa LA Taq（タカラバイオ株式会社製）を用いて下記の条件で行った。
実際のＰＣＲは、サーマルサイクラー GeneAmp PCR System 9700(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い、反応試薬としてTaKaRa LA Taq（タカラバイオ株式会社製）を用いて下記の条件で行った。
反応液：
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の２種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*) pCASE1-ori配列を増幅する場合はプライマー（a-1）と（b-1）の組み合わせ、クローニングベクターpHSG298を増幅する場合はプライマー（a-2）と（b-2）の組み合わせで行った。
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の２種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*) pCASE1-ori配列を増幅する場合はプライマー（a-1）と（b-1）の組み合わせ、クローニングベクターpHSG298を増幅する場合はプライマー（a-2）と（b-2）の組み合わせで行った。
ＰＣＲサイクル：
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃
pCASE1-ori配列 150秒
クローニングベクターpHSG298 180秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃
pCASE1-ori配列 150秒
クローニングベクターpHSG298 180秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
上記で生成した反応液１０μｌを０．８％アガロースゲルにより電気泳動を行い、pCASE1-ori配列の場合約1.4-kb、クローニングベクターpHSG298の場合、約2.7-kbのＤＮＡ断片を検出した。
上記のＰＣＲにより増幅したコリネバクテリウム カゼイ株由来のプラスミドpCASE1-ori配列含む約1.4-kｂＤＮＡ断片１０μｌ及びクローニングベクターpHSG298を含む約2.7-kb DNA断片10μlを各々制限酵素BglIIで切断し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、両者を混合し、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液 1μl 、T4 DNAリガーゼ （タカラバイオ株式会社製）1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをライゲーションＡ液とした。
得られたライゲーションＡ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素BglIIでそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、クローニングベクターpHSG298約2.7-kbのＤＮＡ断片に加え、pCASE-ori配列の約1.4-kb ＤＮＡ断片が認められた。
pCASE1-ori配列を含むクローニングベクターをpCRB22と命名した。
得られたライゲーションＡ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素BglIIでそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、クローニングベクターpHSG298約2.7-kbのＤＮＡ断片に加え、pCASE-ori配列の約1.4-kb ＤＮＡ断片が認められた。
pCASE1-ori配列を含むクローニングベクターをpCRB22と命名した。
クローニングベクターpCRB207の構築
コリネバクテリウム グルタミカムＲ由来のグリセルアルデヒド３リン酸デヒドロゲナーゼ（glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase）をコードするgapA遺伝子のプロモーター配列（以降、PgapAと記す）を含むＤＮＡ断片、及びクローニングベクターpKK223-3（ファルマシア社製）由来rrnBT1T2双方向ターミネーター配列（以降、ターミネーター配列と記す）を含むＤＮＡ断片を以下の方法により増幅した。
ＰＣＲに際して、PgapA配列及びターミネーター配列をそれぞれクローン化するべく、配列番号9（PgapA配列）、配列番号10（ターミネーター配列）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを合成し、使用した。
コリネバクテリウム グルタミカムＲ由来のグリセルアルデヒド３リン酸デヒドロゲナーゼ（glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase）をコードするgapA遺伝子のプロモーター配列（以降、PgapAと記す）を含むＤＮＡ断片、及びクローニングベクターpKK223-3（ファルマシア社製）由来rrnBT1T2双方向ターミネーター配列（以降、ターミネーター配列と記す）を含むＤＮＡ断片を以下の方法により増幅した。
ＰＣＲに際して、PgapA配列及びターミネーター配列をそれぞれクローン化するべく、配列番号9（PgapA配列）、配列番号10（ターミネーター配列）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを合成し、使用した。
PgapA配列増幅用プライマー
（a-3）； 5’- CTCT GTCGAC CCGAAGATCTGAAGATTCCTG -3’（配列番号11）
（b-3）；5’- CTCT GTCGAC GGATCC CCATGG TGTGTCTCCTCTAAAGATTGTAGG -3’
（配列番号12）
なお、プライマー（a-3）には、SalI制限酵素部位が、プライマー（b-3）には、SalI、BamHI及びNcoI制限酵素部位が付加されている。
ターミネーター配列増幅用プライマー
（a-4）； 5’- CTCT GCATGC CCATGG CTGTTTTGGCGGATGAGAGA -3’
（配列番号13）
（b-4）； 5’- CTCT GCATGC TCATGA AAGAGTTTGTAGAAACGCAAAAAGG -3
（配列番号14）
なお、プライマー（a-4）には、SphI及びNcoI制限酵素部位が、プライマー（b-4）には、SphI及びBspHI制限酵素部位が付加されている。
（a-3）； 5’- CTCT GTCGAC CCGAAGATCTGAAGATTCCTG -3’（配列番号11）
（b-3）；5’- CTCT GTCGAC GGATCC CCATGG TGTGTCTCCTCTAAAGATTGTAGG -3’
（配列番号12）
なお、プライマー（a-3）には、SalI制限酵素部位が、プライマー（b-3）には、SalI、BamHI及びNcoI制限酵素部位が付加されている。
ターミネーター配列増幅用プライマー
（a-4）； 5’- CTCT GCATGC CCATGG CTGTTTTGGCGGATGAGAGA -3’
（配列番号13）
（b-4）； 5’- CTCT GCATGC TCATGA AAGAGTTTGTAGAAACGCAAAAAGG -3
（配列番号14）
なお、プライマー（a-4）には、SphI及びNcoI制限酵素部位が、プライマー（b-4）には、SphI及びBspHI制限酵素部位が付加されている。
鋳型ＤＮＡは、コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ (FERM P-18976（FERM BP-18976）)から抽出した染色体DNA及びpKK223-3プラスミド（ファルマシア社製）を用いた。
実際のＰＣＲは、サーマルサイクラー GeneAmp PCR System 9700(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い、反応試薬としてTaKaRa LA Taq（タカラバイオ株式会社製）を用いて下記の条件で行った。
実際のＰＣＲは、サーマルサイクラー GeneAmp PCR System 9700(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い、反応試薬としてTaKaRa LA Taq（タカラバイオ株式会社製）を用いて下記の条件で行った。
反応液：
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の2種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*) PgapA配列を増幅する場合はプライマー(a-3)と(b-3)の組み合わせ、ターミネーター配列を増幅する場合はプライマー(a-4)と(b-4)の組み合わせで行った。
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の2種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*) PgapA配列を増幅する場合はプライマー(a-3)と(b-3)の組み合わせ、ターミネーター配列を増幅する場合はプライマー(a-4)と(b-4)の組み合わせで行った。
dec/LR遺伝子増幅用プライマー
（a-5）；5’- CTCT CATATG ACAGCATCACCTTGGG -3’ （配列番号15）
（b-5）；5’- CTCT CATATG TCATCTTAACGACGCTCCATTC -3’（配列番号16）
なお、プライマー（a-5）及び（b-5）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
dec/LB遺伝子増幅用プライマー
（a-6）； 5’- CTCT CATATG GTAAATGATCCTTATGATTTACGAAAAG -3’
（配列番号17）
（b-6）； 5’- CTCT CATATG CTAATCTCCCTCCCAACG -3’ （配列番号18）
なお、プライマー（a-6）及び（b-6）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
（a-5）；5’- CTCT CATATG ACAGCATCACCTTGGG -3’ （配列番号15）
（b-5）；5’- CTCT CATATG TCATCTTAACGACGCTCCATTC -3’（配列番号16）
なお、プライマー（a-5）及び（b-5）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
dec/LB遺伝子増幅用プライマー
（a-6）； 5’- CTCT CATATG GTAAATGATCCTTATGATTTACGAAAAG -3’
（配列番号17）
（b-6）； 5’- CTCT CATATG CTAATCTCCCTCCCAACG -3’ （配列番号18）
なお、プライマー（a-6）及び（b-6）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
PCRサイクル：
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃
PgapA配列 45秒
ターミネーター配列 30秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃
PgapA配列 45秒
ターミネーター配列 30秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
上記で生成した反応液１０μｌを０．８％アガロースゲルにより電気泳動を行い、PgapA配列の場合約0.6-kb、ターミネーター配列の場合、約0.4-kbのＤＮＡ断片が検出できた。
上記のＰＣＲにより増幅したコリネバクテリウム グルタミカム Ｒ由来PgapA配列を含む約0.6-kb ＤＮＡ断片１０μｌとクローニングベクターpCRB22約4.1-kbを各々制限酵素SalIで切断し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、両者を混合し、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液 １μｌ、T4 DNAリガーゼ （タカラバイオ株式会社製） 1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをライゲーションＢ液とした。
得られたライゲーションＢ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素SalIでそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、クローニングベクターpCRB22約4.1-kbのＤＮＡ断片に加え、PgapA配列の約0.6-kb ＤＮＡ断片が認められた。
PgapA配列を含むクローニングベクターをpCRB206と命名した。
得られたライゲーションＢ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素SalIでそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、クローニングベクターpCRB22約4.1-kbのＤＮＡ断片に加え、PgapA配列の約0.6-kb ＤＮＡ断片が認められた。
PgapA配列を含むクローニングベクターをpCRB206と命名した。
上記ＰＣＲにより増幅したpKK223-3プラスミド由来ターミネーター配列を含む約0.4-kb ＤＮＡ断片１０μｌを制限酵素NcoI及びBspHIで、上述のクローニングベクターpCRB206 2μlを制限酵素NcoIで切断し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、両者を混合し、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液 1μl 、T4 DNAリガーゼ （タカラバイオ株式会社製） 1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをライゲーションＣ液とした。
得られたライゲーションＣ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素で切断し、挿入断片を確認した。この結果、クローニングベクターpCRB206約4.7-kbのＤＮＡ断片に加え、ターミネーター配列の約0.4-kb ＤＮＡ断片が認められた。
rrnBT1T2ターミネーター配列を含むクローニングベクターをpCRB207と命名した。
得られたライゲーションＣ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素で切断し、挿入断片を確認した。この結果、クローニングベクターpCRB206約4.7-kbのＤＮＡ断片に加え、ターミネーター配列の約0.4-kb ＤＮＡ断片が認められた。
rrnBT1T2ターミネーター配列を含むクローニングベクターをpCRB207と命名した。
クローニングベクターpCRB209の構築
コリネバクテリウム グルタミカムＲ由来のgapA（glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase A）遺伝子のプロモーター（以降、PgapAと記す）配列を含むＤＮＡ断片を以下の方法により増幅した。
ＰＣＲに際して、pCRB207配列をクローン化するべく、配列番号19（pCRB207）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを合成し、使用した。
コリネバクテリウム グルタミカムＲ由来のgapA（glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase A）遺伝子のプロモーター（以降、PgapAと記す）配列を含むＤＮＡ断片を以下の方法により増幅した。
ＰＣＲに際して、pCRB207配列をクローン化するべく、配列番号19（pCRB207）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを合成し、使用した。
pCRB207配列増幅用プライマー
（a-7）；5’- CTCT CATATG CTGTTTTGGCGGATGAGAG -3’（配列番号20）
（b-7）；5’- CTCT CATATG GTGTCTCCTCTAAAGATTGTAGG -3’（配列番号21）
尚、プライマー（a-7）及び（b-7）にはNdeI制限酵素部位が付加されている。
（a-7）；5’- CTCT CATATG CTGTTTTGGCGGATGAGAG -3’（配列番号20）
（b-7）；5’- CTCT CATATG GTGTCTCCTCTAAAGATTGTAGG -3’（配列番号21）
尚、プライマー（a-7）及び（b-7）にはNdeI制限酵素部位が付加されている。
鋳型ＤＮＡは、gapAプロモーター及びrrnBT1T2ターミネーター配列を含有するクローニングベクターpCRB207を用いた。
実際のＰＣＲは、サーマルサイクラー GeneAmp PCR System 9700(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い、反応試薬としてTaKaRa LA Taq（タカラバイオ株式会社製）を用いて下記の条件で行った。
実際のＰＣＲは、サーマルサイクラー GeneAmp PCR System 9700(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い、反応試薬としてTaKaRa LA Taq（タカラバイオ株式会社製）を用いて下記の条件で行った。
反応液：
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の2種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*)pCRB207配列を増幅する場合はプライマー(a-7)と(b-7)の組み合わせで行った。
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の2種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*)pCRB207配列を増幅する場合はプライマー(a-7)と(b-7)の組み合わせで行った。
dec/PP遺伝子増幅用プライマー
（a-8）； 5’- CTCT CATATG AACGGGCCGGAAC -3’ （配列番号22）
（b-8）； 5’- CTCT CATATG TCAATCATCCACCCCGAAG -3’ （配列番号23）
なお、プライマー（a-8）及び（b-8）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
（a-8）； 5’- CTCT CATATG AACGGGCCGGAAC -3’ （配列番号22）
（b-8）； 5’- CTCT CATATG TCAATCATCCACCCCGAAG -3’ （配列番号23）
なお、プライマー（a-8）及び（b-8）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
PCRサイクル：
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃ 307秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃ 307秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
上記で生成した反応液１０μｌを０．８％アガロースゲルにより電気泳動を行い、クローニングベクターpCRB207配列を含む約5.1-kbのＤＮＡ断片が検出できた。
上記のＰＣＲにより増幅したpCRB207由来遺伝子を含む約5.1-kb ＤＮＡ断片１０μｌを制限酵素NdeIで切断し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液 １μｌ、T4 DNAリガーゼ（タカラバイオ株式会社製） 1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをライゲーションＤ液とした。
得られたライゲーションＤ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
この培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素NdeIで切断し、制限酵素サイトの挿入を確認した。
PgapA配列及びrrnBT1T2ターミネーター配列を含むクローニングベクターをpCRB209と命名した。
得られたライゲーションＤ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
この培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素NdeIで切断し、制限酵素サイトの挿入を確認した。
PgapA配列及びrrnBT1T2ターミネーター配列を含むクローニングベクターをpCRB209と命名した。
(3) エンテロバクター クロアカエ由来のアニリン生産遺伝子のクローニング
エンテロバクター クロアカエ由来のアミノベンゾエート デカルボキシラーゼをコードするECL_04083-ECL_04082-ECL_04081（以降、dec/ECLと記載）遺伝子を含むＤＮＡ断片を以下のＰＣＲ法により増幅した。
ＰＣＲに際して、dec/ECL遺伝子をクローン化するべく、配列番号24（エンテロバクター クロアカエdec/ECL遺伝子）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを、アプライド・バイオシステムズ（Applied Biosystems）社製「394 DNA/RNAシンセサイザー（synthesizer）」を用いて合成し、使用した。
エンテロバクター クロアカエ由来のアミノベンゾエート デカルボキシラーゼをコードするECL_04083-ECL_04082-ECL_04081（以降、dec/ECLと記載）遺伝子を含むＤＮＡ断片を以下のＰＣＲ法により増幅した。
ＰＣＲに際して、dec/ECL遺伝子をクローン化するべく、配列番号24（エンテロバクター クロアカエdec/ECL遺伝子）を基に、それぞれ下記の一対のプライマーを、アプライド・バイオシステムズ（Applied Biosystems）社製「394 DNA/RNAシンセサイザー（synthesizer）」を用いて合成し、使用した。
dec/ECL遺伝子増幅用プライマー
（a-9）； 5’- CTCT CATATG AGATTGATCGTGGGAATGAC -3’（配列番号25）
（b-9）； 5’- CTCT CATATG TTACAGCAATGGCGGAATGG -3’（配列番号26）
なお、プライマー（a-9）及び（b-9）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
（a-9）； 5’- CTCT CATATG AGATTGATCGTGGGAATGAC -3’（配列番号25）
（b-9）； 5’- CTCT CATATG TTACAGCAATGGCGGAATGG -3’（配列番号26）
なお、プライマー（a-9）及び（b-9）には、NdeI制限酵素部位が付加されている。
鋳型DNAは、エンテロバクター クロアカエは、NITE Biological Resource Center（NBRC）より入手したエンテロバクター クロアカエ NBRC 13535から抽出した染色体ＤＮＡを用いた。
実際のＰＣＲは、サーマルサイクラー GeneAmp PCR System 9700(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い、反応試薬としてTaKaRa LA Taq（タカラバイオ株式会社製）を用いて下記の条件で行った。
反応液：
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の2種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*)エンテロバクター クロアカエdec/ECL遺伝子を増幅時には、プライマー(a-9) と(b-9) の組み合わせで行った。
反応液：
TaKaRa LA TaqTM (5 units/μl) 0.5μl
10X LA PCRTM Buffer II (Mg2+ free) 5μl
25mM MgCl2 5μl
dNTP Mixture (2.5mM each) 8μl
鋳型DNA 5μl（ＤＮＡ含有量１μｇ以下）
上記記載の2種プライマー*) 各々0.5μl（最終濃度１μＭ）
滅菌蒸留水 25.5μl
以上を混合し、この５０μｌの反応液を用いてＰＣＲを行った。
*)エンテロバクター クロアカエdec/ECL遺伝子を増幅時には、プライマー(a-9) と(b-9) の組み合わせで行った。
ＰＣＲサイクル：
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃
エンテロバクター クロアカエ dec/ECL遺伝子 135秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
デナチュレーション過程 ：94℃ 60秒
アニーリング過程 ：52℃ 60秒
エクステンション過程 ：72℃
エンテロバクター クロアカエ dec/ECL遺伝子 135秒
以上を１サイクルとし、３０サイクル行った。
上記で生成した反応液１０μｌを０．８％アガロースゲルにより電気泳動を行い、エンテロバクター クロアカエdec/ECL遺伝子の場合約2.3-kbのＤＮＡ断片が検出できた。
(4) アニリン生産遺伝子発現プラスミドの構築
アニリン生産遺伝子のpCRB209へのクローニング
上記項(3)に示したエンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL遺伝子を含む約2.3-kbのＤＮＡ断片１０μｌ及びPgapAプロモーターを含有するクローニングベクターpCRB209 2μlを各々制限酵素NdeIで切断し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、両者を混合し、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液 １μｌ、T4 DNAリガーゼ（タカラバイオ株式会社製） 1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをライゲーションＥ液とした。
アニリン生産遺伝子のpCRB209へのクローニング
上記項(3)に示したエンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL遺伝子を含む約2.3-kbのＤＮＡ断片１０μｌ及びPgapAプロモーターを含有するクローニングベクターpCRB209 2μlを各々制限酵素NdeIで切断し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、両者を混合し、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液 １μｌ、T4 DNAリガーゼ（タカラバイオ株式会社製） 1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをライゲーションＥ液とした。
得られたライゲーションＥ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
各々の培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素でそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、プラスミドpCRB209約5.1-kbのＤＮＡ断片に加え、エンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL遺伝子の長さ約2.3-kbの挿入断片が認められた。
各々の培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素でそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、プラスミドpCRB209約5.1-kbのＤＮＡ断片に加え、エンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL遺伝子の長さ約2.3-kbの挿入断片が認められた。
エンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL遺伝子を含むプラスミドをpCRB209-dec/ECLと命名した（図１）。
(5) アニリン生産遺伝子導入株の構築
上述のプラスミドpCRB209-dec/ECLを用いて、電気パルス法 [Agric. Biol. Chem.、Vol.54、443-447(1990) 及び Res. Microbiol.、Vol.144、181-185(1993)] により、コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ 株を形質転換し、カナマイシン 50μg/mlを含むＡ寒天培地[(NH2)2CO 2g、(NH4)2SO4 7g、KH2PO4 0.5 g、K2HPO4 0.5 g、MgSO4.7H2O 0.5 g、0.06% (w/v) Fe2 SO4.7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4.2H2O 1 ml、0.02% (w/v) biotin solution 1 ml、0.01% (w/v) thiamin solution 2 ml、yeast extract 2 g、vitamin assay casamino acid 7 g、glucose 40 g、寒天 15 gを蒸留水1Lに懸濁]に塗布した。
この培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素で切断し、挿入断片を確認した。この結果、上記で作製のプラスミドpCRB209-dec/ECLの導入が認められた。
上述のプラスミドpCRB209-dec/ECLを用いて、電気パルス法 [Agric. Biol. Chem.、Vol.54、443-447(1990) 及び Res. Microbiol.、Vol.144、181-185(1993)] により、コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ 株を形質転換し、カナマイシン 50μg/mlを含むＡ寒天培地[(NH2)2CO 2g、(NH4)2SO4 7g、KH2PO4 0.5 g、K2HPO4 0.5 g、MgSO4.7H2O 0.5 g、0.06% (w/v) Fe2 SO4.7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4.2H2O 1 ml、0.02% (w/v) biotin solution 1 ml、0.01% (w/v) thiamin solution 2 ml、yeast extract 2 g、vitamin assay casamino acid 7 g、glucose 40 g、寒天 15 gを蒸留水1Lに懸濁]に塗布した。
この培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素で切断し、挿入断片を確認した。この結果、上記で作製のプラスミドpCRB209-dec/ECLの導入が認められた。
pCRB209-dec/ECLプラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-7と命名した。
［実施例１］
エンテロバクター クロアカエ由来アミノベンゾエート デカルボキシラーゼをコードする遺伝子をターゲットとしたランダムミューテーションの導入を行い、アニリン生成量が増大した株をスクリーニングすることによって突然変異株を取得した。具体的には、ランダムミューテーション導入キット（商品名：GeneMorphII Random Mutagenesis Kit、Agilent社製）を用いて、変異を導入した。具体的には、上述のpCRB209-dec/ECLプラスミドを鋳型として、プライマー１（5’-GTCGCTCCCATATGAGATTGATCGTG-3’、配列番号27）と、プライマー２（5’-GCTCCTGCCATATGTTACAGCAATGG-3’、配列番号28）の組み合わせにより、前記キットの添付マニュアルに従いランダム変異を導入した。変異が導入されたＤＮＡ断片とプラスミドpCRB209を制限酵素Nde Iで消化し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、精製を行った後、両者を混合し、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液１μｌ、T4 DNAリガーゼ（タカラバイオ株式会社製） 1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをＤＮＡライブラリーＦ液とした。
エンテロバクター クロアカエ由来アミノベンゾエート デカルボキシラーゼをコードする遺伝子をターゲットとしたランダムミューテーションの導入を行い、アニリン生成量が増大した株をスクリーニングすることによって突然変異株を取得した。具体的には、ランダムミューテーション導入キット（商品名：GeneMorphII Random Mutagenesis Kit、Agilent社製）を用いて、変異を導入した。具体的には、上述のpCRB209-dec/ECLプラスミドを鋳型として、プライマー１（5’-GTCGCTCCCATATGAGATTGATCGTG-3’、配列番号27）と、プライマー２（5’-GCTCCTGCCATATGTTACAGCAATGG-3’、配列番号28）の組み合わせにより、前記キットの添付マニュアルに従いランダム変異を導入した。変異が導入されたＤＮＡ断片とプラスミドpCRB209を制限酵素Nde Iで消化し、７０℃で１０分処理させることにより制限酵素を失活させた後、精製を行った後、両者を混合し、これにT4 DNAリガーゼ10×緩衝液１μｌ、T4 DNAリガーゼ（タカラバイオ株式会社製） 1 unitの各成分を添加し、滅菌蒸留水で１０μｌにして、１５℃で３時間反応させ、結合させた。これをＤＮＡライブラリーＦ液とした。
このＤＮＡライブラリーＦ液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出し、ランダムに選択したクローン由来プラスミドのDNA塩基配列を決定して変異導入を確認した。次に、上記にて抽出したＤＮＡライブラリー（プラスミドＤＮＡ混合物）を用いて、電気パルス法 [Agric. Biol. Chem.、Vol.54、443-447(1990) 及び Res. Microbiol.、Vol.144、181-185(1993)] により、コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ 株を形質転換し、カナマイシン 50μg/mlを含むＡ寒天培地に塗布した。この培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素で切断し、挿入断片を確認した。この結果、プラスミドpCRB209約5.1-kbのＤＮＡ断片に加え、エンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL遺伝子（P309部位におけるランダム変異体)の長さ約2.3-kbの挿入断片が認められた。
この変異株では、アミノベンゾエート デカルボキシラーゼの３つのサブユニット(21.7 kDa, 52.5 kDa, 8.6 kDa)のうち、52.5 kDaサブユニット中のＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）がスレオニン（Ｔ）に置換されていた。
［実施例２〜６及び比較例２〜３］
アミノ安息香酸デカルボキシラーゼの52.5 kDaサブユニット中のＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）を、スレオニン（Ｔ）以外のアミノ酸へそれぞれ置換した部位特異的変異導入を行った。具体的には、変異導入キット（商品名：PrimeSTAR（登録商標） Mutagenesis Basal Kit、タカラバイオ社製）を用いて、変異を導入した。具体的には、下記の条件で反応を行った。
PrimeSTARMax Premix (2x) 25μl
Primer1 (Fwd) 5μl（終濃度0.2μM）
Primer2 (Rev) 5μl（終濃度0.2μM）
鋳型ＤＮＡ 5μl（2pg）
(pCRB209-dec/ECLプラスミド)
滅菌蒸留水 10μl
以上を混合し、この50μlの反応液を用いてＰＣＲを行った。
アミノ安息香酸デカルボキシラーゼの52.5 kDaサブユニット中のＮ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）を、スレオニン（Ｔ）以外のアミノ酸へそれぞれ置換した部位特異的変異導入を行った。具体的には、変異導入キット（商品名：PrimeSTAR（登録商標） Mutagenesis Basal Kit、タカラバイオ社製）を用いて、変異を導入した。具体的には、下記の条件で反応を行った。
PrimeSTARMax Premix (2x) 25μl
Primer1 (Fwd) 5μl（終濃度0.2μM）
Primer2 (Rev) 5μl（終濃度0.2μM）
鋳型ＤＮＡ 5μl（2pg）
(pCRB209-dec/ECLプラスミド)
滅菌蒸留水 10μl
以上を混合し、この50μlの反応液を用いてＰＣＲを行った。
各変異体について、以下のプライマーを使用した。
実施例２（Ｐ３０９Ｒ）用Primers：
R(Fwd)； 5’- GGGATGCGCTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号29）
R(Rev)； 5’- GGTCCAGCGCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号30）
実施例２（Ｐ３０９Ｒ）用Primers：
R(Fwd)； 5’- GGGATGCGCTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号29）
R(Rev)； 5’- GGTCCAGCGCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号30）
実施例３（Ｐ３０９Ｓ）用Primers：
S(Fwd)； 5’- GGGATGTCCTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号31）
S(Rev)； 5’- GGTCCAGGACATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号32）
S(Fwd)； 5’- GGGATGTCCTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号31）
S(Rev)； 5’- GGTCCAGGACATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号32）
実施例４（Ｐ３０９Ｍ）用Primers：
M(Fwd)； 5’- GGGATGATGTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号33）
M(Rev)； 5’- GGTCCACATCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号34）
M(Fwd)； 5’- GGGATGATGTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号33）
M(Rev)； 5’- GGTCCACATCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号34）
実施例５（Ｐ３０９Ｖ）用Primers：
V(Fwd)； 5’- GGGATGGTGTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号35）
V(Rev)； 5’- GGTCCACACCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号36）
V(Fwd)； 5’- GGGATGGTGTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号35）
V(Rev)； 5’- GGTCCACACCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号36）
実施例６（Ｐ３０９Ｑ）用Primers：
Q(Fwd)； 5’- GGGATGCAGTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号37）
Q(Rev)； 5’- GGTCCACTGCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号38）
Q(Fwd)； 5’- GGGATGCAGTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号37）
Q(Rev)； 5’- GGTCCACTGCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号38）
比較例２（Ｐ３０９Ａ）用Primers:
A (Fwd)； 5’- GGGATGGCATGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号39）
A (Rev)； 5’- GGTCCATGCCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号40）
A (Fwd)； 5’- GGGATGGCATGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号39）
A (Rev)； 5’- GGTCCATGCCATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号40）
比較例３（Ｐ３０９Ｆ）用Primers:
F(Fwd)； 5’- GGGATGTTCTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号41）
F(Rev)； 5’- GGTCCAGAACATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号42）
F(Fwd)； 5’- GGGATGTTCTGGACCGAGATCGACTAC -3’（配列番号41）
F(Rev)； 5’- GGTCCAGAACATCCCGAGATAGAGGGA -3’（配列番号42）
PCRサイクル：
デナチュレーション過程： 98℃ 10秒
アニーリング過程： 98℃ 15秒
エクステンション過程： 72℃ 40秒
以上を１サイクルとして、３０サイクル行った。
デナチュレーション過程： 98℃ 10秒
アニーリング過程： 98℃ 15秒
エクステンション過程： 72℃ 40秒
以上を１サイクルとして、３０サイクル行った。
上記で生成した反応液５μｌを０．８％アガロースゲルにより電気泳動を行い、約2.7 -kbのＤＮＡ断片が検出された。
上記のＰＣＲ反応液を、塩化カルシウム法〔Journal of Molecular Biology, 53, 159 (1970)〕によりエシェリヒア コリJM109を形質転換し、カナマイシン50μg/mlを含むＬＢ寒天培地〔1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5% 塩化ナトリウム、及び1.5% 寒天〕に塗布した。
各々の培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素でそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、プラスミドpCRB209約5.1-kbのＤＮＡ断片に加え、エンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL(P309部位変異体)遺伝子の長さ約2.3-kbの挿入断片が認められた。
また、ＤＮＡシーケンスによって、目的とする変異が導入されていることを確認した。
各々の培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素でそれぞれ切断し、挿入断片を確認した。この結果、プラスミドpCRB209約5.1-kbのＤＮＡ断片に加え、エンテロバクター クロアカエ株由来dec/ECL(P309部位変異体)遺伝子の長さ約2.3-kbの挿入断片が認められた。
また、ＤＮＡシーケンスによって、目的とする変異が導入されていることを確認した。
アニリン生産遺伝子導入株の構築
上述のプラスミドpCRB209-dec/ECL(野生型、及びP309における各変異体)を用いて、電気パルス法 [Agric. Biol. Chem.、Vol.54、443-447(1990) 及び Res. Microbiol.、Vol.144、181-185(1993)] により、コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ 株を形質転換し、カナマイシン 50μg/mlを含むＡ寒天培地に塗布した。
この培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素で切断し、挿入断片を確認した。この結果、上記で作製のプラスミドpCRB209-dec/ECL変異体の導入が認められた。
上述のプラスミドpCRB209-dec/ECL(野生型、及びP309における各変異体)を用いて、電気パルス法 [Agric. Biol. Chem.、Vol.54、443-447(1990) 及び Res. Microbiol.、Vol.144、181-185(1993)] により、コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ 株を形質転換し、カナマイシン 50μg/mlを含むＡ寒天培地に塗布した。
この培地上の生育株を常法により液体培養し、培養液よりプラスミドＤＮＡを抽出、該プラスミドを制限酵素で切断し、挿入断片を確認した。この結果、上記で作製のプラスミドpCRB209-dec/ECL変異体の導入が認められた。
pCRB209-dec/ECL(P309A変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-8と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309F変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-9と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309T変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-10と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309R変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-11と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309S変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-12と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309M変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-13と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309V変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-14と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309Q変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-15と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309F変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-9と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309T変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-10と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309R変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-11と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309S変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-12と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309M変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-13と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309V変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-14と命名した。
pCRB209-dec/ECL(P309Q変異体)プラスミドを導入した株をコリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-15と命名した。
コリネバクテリウム グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）ANI-13、ANI-14及びANI-15は、日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8（郵便番号292-0818）の独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センターに寄託した（受託日：2013年4月2日、受託番号：NITE P-01583、NITE P-01584及びNITE P-01585）。またこれらについて、同センターにブタペスト条約に基づく国際寄託への移管を申請し、移管が完了している（国際受託番号：NITE BP-01583、NITE BP-01584及びNITE BP-01585）。
また、コリネバクテリウム グルタミカムＲ（Corynebacterium glutamicum R）は、日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8（郵便番号292-0818）の独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許生物寄託センターに寄託した（受託日：2002年8月20日、受託番号：FERM P-18976）。またこれについて、同センターにブタペスト条約に基づく国際寄託への移管を申請し、移管が完了している（国際受託番号：FERM BP-18976）。
また、コリネバクテリウム グルタミカムＲ（Corynebacterium glutamicum R）は、日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8（郵便番号292-0818）の独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許生物寄託センターに寄託した（受託日：2002年8月20日、受託番号：FERM P-18976）。またこれについて、同センターにブタペスト条約に基づく国際寄託への移管を申請し、移管が完了している（国際受託番号：FERM BP-18976）。
アミノベンゾエート デカルボキシラーゼの３つのサブユニット(21.7 kDa, 52.5 kDa, 8.6 kDa)のうち、52.5 kDaサブユニット中のＮ末端から３０９番目のプロリンがアラニンに置換されたものを比較例２とし、該Ｎ末端から３０９番目のプロリンがフェニルアラニンに置換されたものを比較例３とした。該Ｎ末端から３０９番目のプロリンがスレオニンに置換されたものを実施例１とした。該Ｎ末端から３０９番目のプロリンがアルギニンに置換されたものを実施例２とした。該Ｎ末端から３０９番目のプロリンがセリンに置換されたものを実施例３とした。該Ｎ末端から３０９番目のプロリンがメチオニンに置換されたものを実施例４とした。該Ｎ末端から３０９番目のプロリンがバリンに置換されたものを実施例５とした。該Ｎ末端から３０９番目のプロリンがグルタミンに置換されたものを実施例６とした。
［比較例４］コリネバクテリウム グルタミカム アニリン生産遺伝子導入株の４−アミノベンゾエートからのアニリン製造
（１）好気培養
製造例１において作製したコリネバクテリウム グルタミカムANI-7株（野生型、比較例１）を、カナマイシン50μg/ｍｌを含むＡ寒天培地[(NH2)2CO 2g, (NH4)2SO4 7g, KH2PO4 0.5g, K2HPO4 0.5g, MgSO4・7H2O 0.5g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 ml, yeast extract 2 g, vitamin assay casamino acid 7 g, glucose 40 g, 寒天 15 gを蒸留水1Lに懸濁、カナマイシンを終濃度が50μg/mlとなるように添加]に塗布し、３３℃、１５時間暗所に静置した。
（１）好気培養
製造例１において作製したコリネバクテリウム グルタミカムANI-7株（野生型、比較例１）を、カナマイシン50μg/ｍｌを含むＡ寒天培地[(NH2)2CO 2g, (NH4)2SO4 7g, KH2PO4 0.5g, K2HPO4 0.5g, MgSO4・7H2O 0.5g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 ml, yeast extract 2 g, vitamin assay casamino acid 7 g, glucose 40 g, 寒天 15 gを蒸留水1Lに懸濁、カナマイシンを終濃度が50μg/mlとなるように添加]に塗布し、３３℃、１５時間暗所に静置した。
上記のプレートで生育したコリネバクテリウム グルタミカムANI-7株を、カナマイシン 50μg/mlを含むＡ液体培地[(NH2)2CO 2 g, (NH4)2SO4 7 g, KH2PO4 0.5 g, K2HPO4 0.5 g, MgSO4・7H2O 0.5 g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 ml, yeast extract 2 g, vitamin assay casamino acid 7 g, glucose 40 gを蒸留水1Lに溶解]１０ｍｌの入った試験管に一白金耳植菌し、３３℃にて１５時間、好気的に振とう培養を行った（前培養）。
上記条件で生育したコリネバクテリウム グルタミカムANI-7株を、Ａ液体培地１０ｍｌに初期菌体濃度ＯＤ６１０＝０．１となるように植菌し、３３℃にて好気的に振とう培養を行った。
上記条件で生育したコリネバクテリウム グルタミカムANI-7株を、Ａ液体培地１０ｍｌに初期菌体濃度ＯＤ６１０＝０．１となるように植菌し、３３℃にて好気的に振とう培養を行った。
（２）アニリン製造実験
このようにして培養増殖された菌体は、遠心分離 (4℃、15,000×g、10分) により回収した。得られた菌体を、５ｍｌの新たなＢＴ液体培地[(NH2)2CO 2g, (NH4)2SO4 7g, KH2PO4 0.5g, K2HPO4 0.5g, MgSO4・7H2O 0.5g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 mlを蒸留水1Lに溶解]を加えて懸濁後、再度遠心分離して（４℃、15000×g,10分）洗浄し、再度新たなＢＴ液体培地を加えて菌体を懸濁した。反応溶液中の最終濃度が以下の条件になるように、MESバッファー（pH 6.0）、基質(4-アミノ安息香酸 Na塩）、ＢＴ培地を添加し、33℃に保った水浴中で攪拌しながら下記の反応液組成と反応条件にて反応を行った。
反応溶液組成：
１００ｍＭ ４−アミノ安息香酸Ｎａ塩
１００ｍＭ ＭＥＳバッファー（ｐＨ６．０）
遺伝子組み換え型コリネバクテリウム グルタミカム（コリネ型細菌）最終OD610値＝25
ＢＴ培地
ここで、OD610値は菌体密度を示しており、値が大きいほど菌体密度が高いことを示す。
このようにして培養増殖された菌体は、遠心分離 (4℃、15,000×g、10分) により回収した。得られた菌体を、５ｍｌの新たなＢＴ液体培地[(NH2)2CO 2g, (NH4)2SO4 7g, KH2PO4 0.5g, K2HPO4 0.5g, MgSO4・7H2O 0.5g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 mlを蒸留水1Lに溶解]を加えて懸濁後、再度遠心分離して（４℃、15000×g,10分）洗浄し、再度新たなＢＴ液体培地を加えて菌体を懸濁した。反応溶液中の最終濃度が以下の条件になるように、MESバッファー（pH 6.0）、基質(4-アミノ安息香酸 Na塩）、ＢＴ培地を添加し、33℃に保った水浴中で攪拌しながら下記の反応液組成と反応条件にて反応を行った。
反応溶液組成：
１００ｍＭ ４−アミノ安息香酸Ｎａ塩
１００ｍＭ ＭＥＳバッファー（ｐＨ６．０）
遺伝子組み換え型コリネバクテリウム グルタミカム（コリネ型細菌）最終OD610値＝25
ＢＴ培地
ここで、OD610値は菌体密度を示しており、値が大きいほど菌体密度が高いことを示す。
反応条件：
温度：33℃、
反応容器：ファルコンチューブ(15 mL)、
還元条件下（酸化還元電位；-450 mV）
攪拌速度：125 rpm
温度：33℃、
反応容器：ファルコンチューブ(15 mL)、
還元条件下（酸化還元電位；-450 mV）
攪拌速度：125 rpm
上記と同様に、比較例２及び３のサンプルについても、反応を行った。
（３）反応生成物解析
嫌気反応開始から、２４時間及び４８時間後に、反応溶液を１ｍＬ採取した。反応溶液は、遠心分離によりコリネバクテリウム グルタミカムを除去した後、上清を０．２２μｍフィルターに通したものを試料としてＨＰＬＣによって生成物の分析を行った。結果を、下記表１に示す。
嫌気反応開始から、２４時間及び４８時間後に、反応溶液を１ｍＬ採取した。反応溶液は、遠心分離によりコリネバクテリウム グルタミカムを除去した後、上清を０．２２μｍフィルターに通したものを試料としてＨＰＬＣによって生成物の分析を行った。結果を、下記表１に示す。
［実施例７］コリネバクテリウム グルタミカム アニリン生産遺伝子導入株の４−アミノベンゾエートからのアニリン製造
実施例１〜６のサンプルについて、比較例４と同様の条件で、アニリンを製造した。結果を、下記表１に示す。
実施例１〜６のサンプルについて、比較例４と同様の条件で、アニリンを製造した。結果を、下記表１に示す。
実施例１は、野生型（比較例１）と比較して、より高いアニリン生産性を示した。また、アラニン（比較例２）、フェニルアラニン（比較例３）に置換した場合は、実施例１と比べてアニリン生産性が低下した。一方、アルギニン（実施例２）、セリン（実施例３）、メチオニン（実施例４）、バリン（実施例５）、グルタミン（実施例６）に置換した場合、実施例１と比較して、より高いアニリン生産性を示した（一方、遺伝子を導入していない、コリネバクテリウム グルタミカム（宿主）は同条件では全くアニリンを生成しないことを確認した。他方、アニリンの分解も認められなかった。）。
［比較例５］菌体密度を増大させた場合のアニリン製造
（１）好気培養
野生型（比較例１）を用いて、好気培養は比較例４と同様に行った。
（２）アニリン製造実験
好気培養で培養増殖された菌体を、遠心分離 (4℃、15,000×g、10分) により回収した。得られた菌体を、５ｍｌの新たなＢＴ液体培地を加えて懸濁後、再度遠心分離して(4℃、15,000×g、10分)、洗浄した。再度、新たなＢＴ液体培地を加えて懸濁後、再度遠心分離して（４℃、15000xg,10分）洗浄し、再度新たなＢＴ液体培地を加えて菌体を懸濁した。
反応溶液中の最終濃度が以下の条件になるように、MESバッファー（pH 6.0）、基質(4-アミノ安息香酸 Na塩）、ＢＴ培地を添加し、33℃に保った水浴中で攪拌しながら下記の反応液組成と反応条件にて反応を行った。
反応溶液組成：
１００ｍＭ ４−アミノ安息香酸Ｎａ塩
１００ｍＭ ＭＥＳバッファー（ｐＨ６．０）
遺伝子組み換え型コリネバクテリウム グルタミカム（コリネ型細菌）最終OD610値＝150
ＢＴ培地
ここで、OD610値は菌体密度を示しており、値が大きいほど菌体密度が高いことを示す。
（１）好気培養
野生型（比較例１）を用いて、好気培養は比較例４と同様に行った。
（２）アニリン製造実験
好気培養で培養増殖された菌体を、遠心分離 (4℃、15,000×g、10分) により回収した。得られた菌体を、５ｍｌの新たなＢＴ液体培地を加えて懸濁後、再度遠心分離して(4℃、15,000×g、10分)、洗浄した。再度、新たなＢＴ液体培地を加えて懸濁後、再度遠心分離して（４℃、15000xg,10分）洗浄し、再度新たなＢＴ液体培地を加えて菌体を懸濁した。
反応溶液中の最終濃度が以下の条件になるように、MESバッファー（pH 6.0）、基質(4-アミノ安息香酸 Na塩）、ＢＴ培地を添加し、33℃に保った水浴中で攪拌しながら下記の反応液組成と反応条件にて反応を行った。
反応溶液組成：
１００ｍＭ ４−アミノ安息香酸Ｎａ塩
１００ｍＭ ＭＥＳバッファー（ｐＨ６．０）
遺伝子組み換え型コリネバクテリウム グルタミカム（コリネ型細菌）最終OD610値＝150
ＢＴ培地
ここで、OD610値は菌体密度を示しており、値が大きいほど菌体密度が高いことを示す。
反応条件：
温度：33℃、
反応容器：ファルコンチューブ(15 mL)、
還元条件下（酸化還元電位；-450 mV）
攪拌速度：125 rpm
温度：33℃、
反応容器：ファルコンチューブ(15 mL)、
還元条件下（酸化還元電位；-450 mV）
攪拌速度：125 rpm
（３）反応生成物解析
嫌気反応開始から４８時間後に、反応溶液を０．２ｍＬ採取した。反応溶液は、遠心分離によりコリネバクテリウム グルタミカムを除去した後、上清を０．２２μｍフィルターに通したものを試料としてＨＰＬＣによって生成物の分析を行った。結果を、下記表２に示す。
嫌気反応開始から４８時間後に、反応溶液を０．２ｍＬ採取した。反応溶液は、遠心分離によりコリネバクテリウム グルタミカムを除去した後、上清を０．２２μｍフィルターに通したものを試料としてＨＰＬＣによって生成物の分析を行った。結果を、下記表２に示す。
［実施例８］菌体密度を増大させた場合のアニリン製造
実施例４〜６のサンプルについて、比較例５と同様の条件で、アニリンを製造した。結果を、下記表２に示す。
実施例４〜６のサンプルについて、比較例５と同様の条件で、アニリンを製造した。結果を、下記表２に示す。
エンテロバクター クロアカエ由来アミノベンゾエート デカルボキシラーゼの野生型をコードする遺伝子を宿主のコリネバクテリウム グルタミカムに導入した。菌体密度を比較例４の６倍に増大させてアニリンの生成を検討したところ、高いアニリン生産性を示した。
アミノ安息香酸デカルボキシラーゼの52.5 kDaサブユニット中のＮ末端から３０９番目のアミノ酸を、メチオニン(実施例４)、バリン(実施例５)、グルタミン(実施例６)にそれぞれ置換した部位特異的変異導入酵素をコードする遺伝子を宿主のコリネバクテリウム グルタミカムに導入して、比較例５同様、菌体密度を実施例７と比較してそれぞれ６倍に増大させてアニリン生産性を調べた。各変異体は、実施例７の表１に比べて、それぞれ、さらに高いアニリン生産性を示した。
［試験例１］
エシェリヒア コリとコリネバクテリウム グルタミカムについて、以下の方法で、アニリン存在下における増殖への影響を評価した。
（１）エシェリヒア コリ
エシェリヒア コリについて、好気培養におけるアニリンの生育阻害実験を行った。エシェリヒア コリHST02株をＬＢ寒天培地[1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5%塩化ナトリウム、及び1.5%寒天] に塗布し、３７℃、１５時間暗所に静置した。
上記プレートで生育したエシェリヒア コリHST02株をＬＢ液体培地[1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、及び0.5%塩化ナトリウム]10 mlの入った試験管に一白金耳植菌し、３７℃にて１３時間、好気的に振とう培養を行った。
エシェリヒア コリとコリネバクテリウム グルタミカムについて、以下の方法で、アニリン存在下における増殖への影響を評価した。
（１）エシェリヒア コリ
エシェリヒア コリについて、好気培養におけるアニリンの生育阻害実験を行った。エシェリヒア コリHST02株をＬＢ寒天培地[1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、0.5%塩化ナトリウム、及び1.5%寒天] に塗布し、３７℃、１５時間暗所に静置した。
上記プレートで生育したエシェリヒア コリHST02株をＬＢ液体培地[1% ポリペプトン、0.5% 酵母エキス、及び0.5%塩化ナトリウム]10 mlの入った試験管に一白金耳植菌し、３７℃にて１３時間、好気的に振とう培養を行った。
上記培養条件で生育したエシェリヒア コリHST02株をＬＢ液体培地１００ｍｌに初期菌体濃度ＯＤ６１０＝０．１となるように植菌し、同時にアニリン濃度が終濃度０，２０，４０，６０，８０ｍＭとなるように添加し、３７℃にて好気的に振とう培養を行った。菌体の生育は、ＯＤ６１０の吸光度を測定することにより行った。培地中へのアニリン添加による好気増殖への影響の解析結果を図２に示す。図２の縦軸はＯＤ６１０である。
エシェリヒア コリHST02株は、２０ｍＭアニリン存在下で著しく阻害を受け、４０ｍＭでは顕著に増殖が阻害された。
（２）コリネバクテリウム グルタミカム
コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ株をＡ寒天培地[(NH2)2CO 2 g, (NH4)2SO4 7 g, KH2PO4 0.5 g, K2HPO4 0.5 g, MgSO4・7H2O 0.5 g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 ml, yeast extract 2 g, vitamin assay casamino acid 7 g, glucose 40 g, 寒天 15 gを蒸留水1Lに懸濁]に塗布し、33℃、15時間暗所に静置した。
上記のプレート上で生育したコリネバクテリウム グルタミカム Ｒ株をＡ液体培地[(NH2)2CO 2 g, (NH4)2SO4 7 g, KH2PO4 0.5 g, K2HPO4 0.5 g, MgSO4・7H2O 0.5 g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 ml, yeast extract 2 g, vitamin assay casamino acid 7 g, glucose 40 gを蒸留水1Lに溶解]10 ｍＬの入った試験管に一白金耳植菌し、33℃にて15時間、好気的に振とう培養を行った。
上記条件で生育したコリネバクテリウム グルタミカム Ｒ株を、Ａ液体培地１０ｍｌに初期菌体濃度ＯＤ６１０＝０．１となるように植菌し、同時にアニリンが終濃度０，２０，４０，６０，８０ｍＭとなるように添加し、３３℃にて好気的に振とう培養を行った。菌体の生育は、ＯＤ６１０の吸光度を測定することにより行った。
コリネバクテリウム グルタミカム Ｒ株をＡ寒天培地[(NH2)2CO 2 g, (NH4)2SO4 7 g, KH2PO4 0.5 g, K2HPO4 0.5 g, MgSO4・7H2O 0.5 g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 ml, yeast extract 2 g, vitamin assay casamino acid 7 g, glucose 40 g, 寒天 15 gを蒸留水1Lに懸濁]に塗布し、33℃、15時間暗所に静置した。
上記のプレート上で生育したコリネバクテリウム グルタミカム Ｒ株をＡ液体培地[(NH2)2CO 2 g, (NH4)2SO4 7 g, KH2PO4 0.5 g, K2HPO4 0.5 g, MgSO4・7H2O 0.5 g, 0.06% (w/v) Fe2SO4・7H2O + 0.042% (w/v) MnSO4・2H2O 1 ml, 0.02% (w/v) biotin solution 1 ml, 0.01%(w/v) thiamin solution 2 ml, yeast extract 2 g, vitamin assay casamino acid 7 g, glucose 40 gを蒸留水1Lに溶解]10 ｍＬの入った試験管に一白金耳植菌し、33℃にて15時間、好気的に振とう培養を行った。
上記条件で生育したコリネバクテリウム グルタミカム Ｒ株を、Ａ液体培地１０ｍｌに初期菌体濃度ＯＤ６１０＝０．１となるように植菌し、同時にアニリンが終濃度０，２０，４０，６０，８０ｍＭとなるように添加し、３３℃にて好気的に振とう培養を行った。菌体の生育は、ＯＤ６１０の吸光度を測定することにより行った。
培地中へのアニリン添加による好気増殖への影響の解析結果を図３に示す。図３の縦軸はOD610である。
コリネバクテリウム グルタミカムは、エシェリヒア コリHST02株が顕著な増殖阻害を受けた４０ｍＭアニリン存在下においても増殖への影響はほとんどなく、エシェリヒア コリHST02株では完全に増殖が阻害された６０ｍＭのアニリン存在下でも生育可能であった。このように、コリネバクテリウム グルタミカムは、エシェリヒア コリと比較して、アニリンに対して高い耐性を示し、アニリン生産の宿主として高い適性を有することが示された。
上記のように、アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素の３つのサブユニット21.7 kDa（配列番号43で表されるアミノ酸配列から構成される）, 52.5 kDa（配列番号2で表されるアミノ酸配列から構成される）, 8.6 kDa（配列番号44で表されるアミノ酸配列から構成される）のうち、配列番号2で表されるアミノ酸配列から構成される52.5 kDaサブユニット中のＮ末端から３０９番目のプロリンに変異を導入した本発明の形質転換体は、優れたアニリン生産能を有する。
本発明によれば、微生物を用いて実用的な効率でアミノ安息香酸からアニリンを製造することができる。
Claims (9)
- アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子が宿主のコリネバクテリウム属菌に導入された、アニリン生産能を有する形質転換体であって、前記アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素が、
（ｉ）配列番号2で表されるアミノ酸配列から構成され、該アミノ酸配列において、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）が、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、グルタミン（Ｑ）、スレオニン（Ｔ）、セリン（Ｓ）及びアルギニン（Ｒ）からなる群から選ばれる１種のアミノ酸へ置換される変異を有する酵素であるか、又は
（ｉｉ）配列番号2で表されるアミノ酸配列から構成され、該アミノ酸配列において、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）が、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、グルタミン（Ｑ）、スレオニン（Ｔ）、セリン（Ｓ）及びアルギニン（Ｒ）からなる群から選ばれる１種のアミノ酸へ置換される変異と１〜数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入及び／又は付加される変異をさらに有する酵素であり、該酵素をコードする塩基配列が前記（ｉ）の酵素をコードする塩基配列と９８％以上の同一性を有する酵素である、ことを特徴とする形質転換体。 - 前記変異が、Ｎ末端から３０９番目のプロリン（Ｐ）の、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）及びグルタミン（Ｑ）からなる群から選ばれる１種のアミノ酸への置換であることを特徴とする請求項１に記載の形質転換体。
- アミノベンゾエート デカルボキシラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子が、エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）由来の遺伝子である請求項１又は２に記載の形質転換体。
- 宿主のコリネバクテリウム属菌が、コリネバクテリウム グルタミカムである請求項１〜３のいずれか１項に記載の形質転換体。
- 宿主のコリネバクテリウム グルタミカムが、コリネバクテリウム グルタミカムＲ(FERM P-18976（国際受託番号：FERM BP-18976）)、ATCC13032、又はATCC13869である請求項４に記載の形質転換体。
- コリネバクテリウム グルタミカム ANI-13（受託番号：NITE P-01583（国際受託番号：NITE BP-01583））形質転換体、コリネバクテリウム グルタミカム ANI-14（受託番号：NITE P-01584（国際受託番号：NITE BP-01584））形質転換体又はコリネバクテリウム グルタミカム ANI-15（受託番号：NITE P-01585（国際受託番号：NITE BP-01585））形質転換体。
- 請求項１〜６のいずれかに記載の形質転換体を、還元条件下、アミノ安息香酸、そのエステル、及び／又はそれらの塩を含有する反応液中で反応させる工程と、反応培地中のアニリンを回収する工程とを含むアニリンの製造方法。
- 反応工程において、形質転換体が増殖しない請求項７に記載のアニリンの製造方法。
- 還元条件下の反応液の酸化還元電位が−２００〜−５００ミリボルトである請求項７又は８に記載のアニリンの製造方法。
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