JP6108660B2 - 細胞透過性ペプチドを用いたキナーゼ阻害剤 - Google Patents
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Description
キナーゼは、リン酸供与体(通常アデノシン−5’−三リン酸(ATP:adenosine−5’−triphosphate))から受容体基質へのホスホリル転移反応を触媒する広く分布している酵素群である。どのキナーゼも本質的に同じホスホリル転移反応触媒するが、その基質特異性、構造、および関与する経路は著しい多様性を示す。入手可能な全キナーゼ配列(約60,000配列)の最近の分類によれば、キナーゼは25の相同タンパク質のファミリーに分類することができる。これらのキナーゼファミリーは構造フォールドの類似性に基づきさらに12のフォールド群に分けられる。さらに25のファミリーのうち22ファミリー(全配列の約98.8%)は、構造フォールドが分かっている10のフォールド群に属する。他の3ファミリーのうち、ポリリン酸キナーゼが特徴的なフォールド群を形成しており、残りの2ファミリーは共に膜内在性キナーゼで、最後のフォールド群を構成する。これらのフォールド群は、ロスマン様フォールド(β−α−β−α−βトポロジーで2本のαヘリックスにより連結された3本以上の平行βストランド)、フェレドキシン様フォールド(骨格に沿ってシグニチャーβαββαβの二次構造を持つ一般的なα+β型のタンパク質フォールド)、TIMバレルフォールド(ペプチド骨格に沿って8本のαへリックスと8本の平行βストランドが交互になった保存されたタンパク質フォールドをいう)および逆平行βバレルフォールド(βバレルは大きなβシートがねじれてコイル状になり、最初のストランドと最後のストランドが水素結合して閉鎖型構造を形成する)など最も多く認められるタンパク質フォールドの一部だけでなく、タンパク質構造の主要なクラス(α型、β型、α+β型、α/β型)をすべて含む。フォールド群内では、各ファミリーのヌクレオチド結合ドメインのコアが同じ構造を持ち、タンパク質コアのトポロジーは同一であるか、あるいは円順列変異により関連付けられる。フォールド群内のファミリー間の相同性については示唆されない。
この酵素として、グリセロンキナーゼ(EC2.7.1.29)が挙げられる。
MAPK化活性プロテインキナーゼ(MAP−KAPK:MAPK:mitogen−activated protein kinase)の様々な群がマイトジェン活性化プロテインキナーゼ(MAPK)の下流で同定されている。これらの酵素は、MAPKの直接の基質ではない標的タンパク質にシグナルを伝達するため、MAPKカスケードによるリン酸化依存性シグナル伝達を多様な細胞機能に中継する働きを担う。こうした群の1つは、3つのMAPKAPK:MK2、MK3(3pKとも呼ばれる)およびMK5(PRAKとも呼ばれる)により形成される。マイトジェン活性化プロテインキナーゼ活性化プロテインキナーゼ2(「MAPKAPK2」、「MAPKAP−K2」、「MK2」とも呼ばれる)は、セリン/トレオニン(Ser/Thr)プロテインキナーゼファミリーのキナーゼである。MK2は、MK3との相同性が高い(約75%アミノ酸同一性)。MK2およびMK3のキナーゼドメインは、カルシウム/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼ(calcium/calmodulin−dependent protein kinase)(CaMK)、ホスホリラーゼbキナーゼ、およびリボソームS6キナーゼ(ribosomal S6 kinase)(RSK)アイソフォームのC末端キナーゼドメイン(C−terminal kinase domain)(CTKD)と非常に類似している(約35%〜40%同一性)。mk2遺伝子は、選択的にスプライシングされた2つの転写物、370アミノ酸(MK2A)および400アミノ酸(MK2B)をコードする。mk3遺伝子は、382アミノ酸の1つの転写物をコードする。MK2およびMK3タンパク質は相同性が高いが、MK2AはC末端領域が短い。MK2BのC末端は、より短いMK2Aアイソフォームには存在しない機能的な二極性核局在化配列(nuclear localization sequence)(NLS)(Lys−Lys−Xaa10−Lys−Arg−Arg−Lys−Lys)[配列番号45]を含むことから、MK2アイソフォームの細胞局在は選択的スプライシングにより決定されることが示唆される。MK3も類似の核局在化配列を有する。MK2BとMK3とに見られる核局在化配列はDドメイン(Leu−Leu−Lys−Arg−Arg−Lys−Lys)[配列番号46]を包含し、DドメインはMK2BおよびMK3とp38αおよびp38βとの特異的相互作用を仲介することが研究により明らかになっている。MK2BおよびMK3はさらに、NLSおよびDドメインのN末端側に位置する機能的核外移行シグナル(nuclear export signal)(NES)を有する。MK2BのNESは刺激後に核外移行を誘導するようであるが、このプロセスはレプトマイシンBにより阻害され得る。MK2およびMK3の触媒ドメインのN末端側の配列はプロリンに富み、1つ(MK3)または2つの(MK2)推定Srcホモロジー3(Src homology 3)(SH3)ドメイン結合部位を含む。この部位はインビトロでMK2がc−AblのSH3ドメインに結合するのを仲介することが研究により明らかになっている。最近の研究からは、このドメインがMK2による細胞遊走に関与していることが示唆される。
p38αおよびp38βの様々なアクチベーターがMK2およびMK3活性を強力に刺激する。p38は、インビトロおよびインビボでMK2のプロリンにより誘導される4つのセリンまたはスレオニン部位:Thr25、Thr222、Ser272およびThr334のリン酸化に関与している。これらの部位のうち、MK3に保存されてないのはThr25のみである。理論に拘泥するわけではないが、リン酸化されたThr25の機能は不明ではあるものの、Thr25は2つのSH3ドメイン結合部位の間に位置することから、タンパク質間相互作用を調節し得ることが示唆される。MK2のThr222(MK3のThr201)はキナーゼドメインの活性化ループに位置し、MK2およびMK3キナーゼ活性に不可欠であることが明らかになっている。MK2のThr334(MK3のThr313)は触媒ドメインのC末端側に位置し、キナーゼ活性に不可欠である。MK2の結晶構造は決定されており、理論に拘泥するわけではないが、Thr334のリン酸化がMK2の核内移行および核外移行のスイッチとして働いている可能性がある。Thr334のリン酸化はさらに、触媒ドメインに対するMK2のC末端の結合を抑制または妨害し、NESを露出させて核外移行を促進し得る。
MK2はMK3と同じ多くの基質を持つ。どちらの酵素も基質の選択性が類似しており、同等の速度定数でペプチド基質をリン酸化する。MK2による効率的なリン酸化に必要な最小配列は、Hyd−Xaa−Arg−Xaa−Xaa−pSer/Thrであることが確認された。この場合、Hydはかさ高い疎水性残基である。
研究から、MK2はTNFαのmRNAの翻訳速度を高めることによりTNFαの産生を増加させることが明らかになっているが、MK2欠乏マウスではTNFαの転写、プロセシングおよびシェディングの著しい低下は検出でなきかった。p38経路は、mRNAの安定性の調節に重要な役割を果たしていることが知られており、p38がこの機能を仲介すると思われる標的がMK2である。MK2欠乏マウスを用いた研究により、サイトカインの産生作用および遊走作用にはMK2の触媒活性が必要であることが明らかになったことから、理論に拘泥するわけではないが、MK2はmRNAの安定性に関与する標的をリン酸化することが示唆される。これを裏付けるように、MK2は、ヘテロ核リボヌクレオタンパク質(hnRNP)AO、トリステトラプロリン、ポリ(A)結合タンパク質PABP1およびHuR(RNA結合タンパク質のelav(キイロショウジョウバエの胚性致死視覚異常(embryonic−lethal abnormal visual))ファミリーの広範に発現するメンバー)に結合および/またはリン酸化することが示されている。これらの基質は、3’非翻訳領域AUリッチエレメントを含むmRNAと結合するか、または共精製されることが知られていることから、MK2がTNFαなどAUリッチなmRNAの安定性を調節できることが示唆される。現時点でMK3が同様の機能を果たすかどうか不明であるが、MK2−欠乏線維芽細胞をLPS処理するとhnRNP AOのリン酸化が完全に消失したため、MK3はMK2の喪失を補うことができないことが示唆される。
核内のMK2は、多くのMKと同様にcAMP応答配列結合タンパク質(cAMP response element binding)(CREB)、血清応答因子(serum response factor)(SRF)および転写因子ER81のリン酸化に寄与する。野生型とMK2欠損細胞との比較から、MK2はストレスにより誘導される主要なSRFキナーゼであることが明らかになったため、ストレス性の初期応答におけるMK2の役割が示唆される。MK2およびMK3はどちらもインビボで塩基性へリックス−ループ−ヘリックス転写因子E47と相互作用し、インビトロではE47をリン酸化する。MK2によるE47のリン酸化は、E47の転写活性の抑制によりE47依存性遺伝子発現を阻害することが確認されたことから、MK2およびMK3は組織特異的遺伝子発現および細胞分化を調節し得ることが示唆される。
他にいくつかのMK2およびMK3基質が同定されていることから、複数の生物学的プロセスにおけるMK2およびMK3の多様な機能が窺われる。MK2の生理的基質に足場タンパク質14−3−3ζがある。研究により、14−3−3ζはプロテインキナーゼ、ホスファターゼおよび転写因子など細胞シグナル伝達経路のいくつかの成分と相互作用することが示されている。他の研究からは、MK2による14−3−3ζのSer58のリン酸化がその結合活性を低下させることが明らかになっており、MK2は、14−3−3ζにより通常調節される複数のシグナル伝達分子の調節に影響し得ることが示唆される。
真核生物のプロテインキナーゼは、その触媒ドメインに基づき相同タンパク質の最大のスーパーファミリーの1つを構成する。関連性のあるプロテインキナーゼの大部分は、セリン/トレオニンあるいはチロシンリンの酸化に特異的なものである。プロテインキナーゼは細胞外刺激に対する細胞応答に不可欠な役割を果たしている。したがって、プロテインキナーゼの刺激は、シグナル伝達系の最も一般的な活性化機構の1つと考えられる。多くの基質は、複数のプロテインキナーゼによりリン酸化されることが知られている。様々なプロテインキナーゼの触媒ドメインの一次配列については、かなりの量の情報が公開されている。これらの配列は、ATP結合、触媒作用および構造の完全性の維持に関与する多くの残基を共有する。大部分のプロテインキナーゼは、よく保存された30〜32kDaの触媒ドメインを有する。
酵素阻害剤は、酵素に結合することにより酵素活性を低下させる分子である。阻害剤の結合により、基質が酵素の活性部位に入り込むのを防ぎ、および/または酵素がその反応を触媒するのを妨害することができる。阻害剤の結合は、可逆的結合あるいは不可逆的結合のどちらかである。不可逆的阻害剤は通常、酵素と反応し、(たとえば酵素活性に必要な必須アミノ酸残基を修飾することにより)酵素を化学的に変化させ、その反応を触媒できないようにする。これに対し、可逆的阻害剤は非共有的に結合し、こうした阻害剤の結合が酵素との結合、酵素−基質複合体との結合、またはこれらの両方との結合であるかに応じて様々な種類の阻害を起こす。
抗体は血清タンパク質であり、抗体の分子は、抗体分子の標的上にある小さな化学基と相補的な狭い領域を表面に有する。こうした相補領域(抗体結合部位または抗原結合部位と呼ばれる)は、1つの抗体分子ごとに少なくとも2、抗体分子の種類によっては10、8あり、または12と多くの相補領域がある種もあり、抗原のその対応する相補領域(抗原決定基またはエピトープ)と反応し、多価抗原のいくつかの分子と結合して格子を形成する。
ペプチドは、鎖内の一方のアミノ酸のカルボキシル基が他方のアミノ酸のアミノ基とペプチド結合を介して連結されている2個以上のアミノ酸の鎖からなる化合物である。ペプチドは、特にタンパク質の構造および機能の研究に使用されてきた。合成ペプチドは特に、タンパク質ペプチド相互作用がどこで起こるかを確認するためのプローブとして使用することができる。阻害ペプチドは、特にプロテインキナーゼ、癌タンパク質および他の障害の阻害に対するペプチドの作用を調査する臨床研究に使用してもよい。
タンパク質形質導入ドメイン(PTD)は、哺乳動物細胞の形質膜を透過し、膜を通り多くの種類および分子量の化合物を輸送できるペプチドのクラスである。そうした化合物としては、タンパク質などのエフェクター分子、DNA、コンジュゲートされたペプチド、オリゴヌクレオチドおよびリポソームなどの微小粒子が挙げられる。PTDを他のタンパク質に化学的に連結または融合しても、得られた融合タンパク質はやはり細胞に進入することができる。形質導入の正確な機構は不明であるが、こうしたタンパク質のインターナリゼーションは受容体またはトランスポーターを介したものではないと考えられる。PTDは一般に10〜16アミノ酸長であり、たとえば、アルギニンおよび/またはリジンに富むペプチドなどその組成により分類することができる。
形質導入特性を持つものとして報告された最初のタンパク質は、ウイルス由来であった。このタンパク質は依然として最も一般に受け入れられているPTDの作用モデルである。ウイルスPTDを含むタンパク質として最もよく特徴が分かっているのは、HIV−1 トランスアクチベーター・オブ・トランスクリプション(Transactivator of Transcription)(TAT)およびHSV−1 VP22タンパク質である。
ホメオタンパク質は、形態学的プロセスに関与する高度に保存されたトランス活性化転写因子である。ホメオタンパク質は60アミノ酸の特異的配列によりDNAに結合する。DNA結合ホメオドメイン(homeodomain)は、ホメオタンパク質の最も高度に保存された配列である。いくつかのホメオタンパク質はPTD様活性を示すことが報告されており、細胞型特異性を示さず、エネルギー非依存性かつエンドサイトーシス非依存性に細胞膜を通り効率的に移動することができる。
いくつかのPTDペプチドが合成されている。こうした合成ペプチドの多くは、十分に明らかにされた既存のペプチドをベースにするが、PTD機能に重要であると考えられる塩基性残基および/または正電荷を理由に選択されるものもある。合成ペプチドとしては、PTD−4(YARAAARQARA)[配列番号5];PTD−5(RRQRRTSKLMKR)[配列番号6];MST−1(AAVLLPVLLAAR)[配列番号7];L−R9(RRRRRRRRR)[配列番号8];およびペプチド2(SGWFRRWKK)[配列番号9]があるが、これに限定されるものではない。
ヒトPTDは、ヒト患者への導入時に起こり得る免疫原性の問題を回避することができる。PTD配列を含むペプチドとして、Hoxa−5、Hox−A4、Hox−B5、Hox−B6、Hox−B7、HOX−D3、GAX、MOX−2およびFtzPTDが挙げられる。これらのタンパク質はすべて、AntpPTD(RQIKIWFQNRRMKWKK)[配列番号10]に見出される配列を共有する。他のPTDとしては、Islet−1、インターロイキン−1β、腫瘍壊死因子、およびエネルギー非依存性、受容体非依存性かつエンドサイトーシス非依存性に移動できるカポジ線維芽細胞増殖因子(K−fibroblast growth factor)(K−FGFまたはFGF−4)シグナルペプチド由来の疎水性配列が挙げられる。未確定のPTDには、線維芽細胞増殖因子(FGF)ファミリーのメンバーがある。
「炎症」という用語は、本明細書で使用する場合、血管化組織が傷害に応答する生理的プロセスをいう。たとえば参照によって本明細書に援用するファンダメンタルイムノロジー(FUNDAMENTAL IMMUNOLOGY)、第4版、ウィリアムE.ポール(William E.Paul)編、リッピンコット−レイブンパブリッシャーズ(Lippincott−Raven Publishers)、フィラデルフィア(1999年)のp.1051〜1053を参照されたい。炎症プロセスにおいて解毒および修復に関与する細胞は、炎症性メディエーターにより傷害された部位に動員される。炎症は、多くの場合、炎症の部位での白血球、特に好中球(多形核細胞)の強い浸潤を特徴とする。こうした細胞は、血管壁または未損傷組織で有毒物質を放出して組織損傷を促進する。従来から、炎症は急性反応および慢性反応に分けられている。
喘息は呼吸器系に関わる慢性疾患であり、多くの場合、1つまたは複数のトリガーに反応して気道が突発的に収縮し、炎症を起こすことがあり、過剰量の粘液で覆われる。そうしたトリガーとして、以下に限定されるものではないが、アレルゲン、煙、寒気もしくは暖気、芳香、ペットのフケ、湿った空気などの環境刺激物質への曝露、運動もしくは激しい活動または精神的苦痛があるが、これに限定されるものではない。気道が狭くなると、以下に限定されるものではないが、喘鳴、息切れ、胸部圧迫感、咳嗽、呼吸困難および喘音などの症状が現れる。正常対照被検体に比べて喘息被検体のIL−6の血清レベルが高いことが、気管支喘息の病態生理に関係していると考えられている(非特許文献1)。さらに研究によれば、喘息患者の気管支肺胞洗浄液(bronchoalveolar lavage fluid)(BALF)では著しいレベルのTNF−αおよびIL−6が検出されるのに対し、無症状期喘息患者のBALFでは患者のIL−1βレベルと同レベルが検出されるという観察から、肺胞マクロファージおよびT細胞の活性化が示唆される(非特許文献2)。
強直性脊椎炎(ankylosing spondylitis)(AS、ベヒテレフ病、ベヒテレフ症候群、マリー・シュトリュンペル病)は、慢性炎症性関節炎および自己免疫疾患である。強直性脊椎炎は脊椎および骨盤の仙腸骨(sacroilium)が主に侵され、最終的に脊椎の癒合を引き起こす。研究によれば、AS患者の場合、TNF−αおよびIL−6が増加し(ただしIL−1βレベルは上昇しない)、IL−6が疾患の活性と密接に相関することが報告されている(非特許文献3)。ASの症状として、脊椎の下部または場合によっては全脊椎の慢性疼痛およびこわばり(多くの場合、疼痛はどちらか一方の臀部または大腿後部から仙腸関節に至る)、発赤を起こす眼の炎症(虹彩毛様体炎、ぶどう膜炎)、眼痛、視力喪失、飛蚊症、羞明、疲労、悪心、大動脈炎、肺尖部線維症、および仙骨神経根鞘の拡張症があるが、これに限定されるものではない。
糸球体腎炎(glomerulonephritis)(GN)は、腎臓の小血管(糸球体)の炎症を特徴とする腎臓病である。研究から、炎症性サイトカインIL−1およびTNF−αがそれぞれ糸球体腎炎の免疫/炎症プロセスに関与しており、その作用を阻止すると疾患が抑制されることが報告されている(非特許文献13、14)。別の研究からは、IL−6も糸球体腎炎に関与していることが報告されている(非特許文献15)。糸球体腎炎の症状として、浮腫、高血圧および尿中の赤血球の存在があるが、これに限定されるものではない。
泌尿器慢性骨盤痛症候群とは、膀胱と関連する疼痛症候群(すなわち、間質性膀胱炎(interstitial cystitis)(IC)、膀胱痛症候群(painful bladder syndrome)(PBS))および前立腺と関連する疼痛症候群(慢性前立腺炎(chronic prostatitis)(CP)、慢性骨盤痛症候群(chronic pelvic pain syndrome)(CPPS))をいう。慢性前立腺炎/慢性骨盤痛症候群(CP/CPPS)は、尿路感染の証拠がなく、3カ月を超えて持続する骨盤痛または会陰部痛を特徴とする。研究から、炎症および非炎症CPPSの群では対照群に比べてIL−1β、TNF−αおよびIL−6のレベルが著しく高いことが報告されている(非特許文献16、17、18)。こうした症候群の症状は、消長を繰り返すことがある。疼痛は、軽度の不快感から衰弱性のものなど多岐にわたる場合があり、背部および直腸から放射状に広がり、座ることが困難になる恐れもある。排尿障害(排尿困難または排尿痛)、関節痛(関節の痛み)、筋肉痛(筋肉の痛み)、原因不明の疲労、腹痛、陰茎の絶え間ない焼けるような痛み、およびその頻回の痛みがすべて現れる場合もある。頻尿および尿意切迫は、間質性膀胱炎(前立腺ではなく膀胱を中心とする炎症)を示唆する場合がある。精液放出時に前立腺が収縮するため、射精に痛みを伴うこともあるが、神経および筋肉による射精後疼痛の方がより一般的である。患者によっては、性欲低下、性機能障害および勃起困難を報告するものもある。射精後の疼痛は、CP/CPPSを良性前立腺肥大(benign prostatic hyperplasia)(BPH)の男性または正常男性と鑑別する非常に特有の愁訴である。
「炎症性腸疾患(IBD)」という用語は、大腸および小腸の一群の炎症状態をいう。IBDとして、クローン病(Crohn’s disease)(CD)および潰瘍性大腸炎(ulcerative colitis)(UC)が挙げられる。IBDの他の形態としては、コラーゲン性大腸炎、リンパ球性大腸炎、虚血性大腸炎、経路変更後の大腸炎、ベーチェット症候群、感染性大腸炎および中間型大腸炎が挙げられる。こうした障害の多くは、腹痛、嘔吐、下痢、血便(便の鮮血)、体重減少、および関節炎、壊疽性膿皮症および原発性硬化性胆管炎のような様々な関連する愁訴または疾患の症状を呈することがある。診断は一般に病理学的病変部の生検を伴う結腸鏡検査による。研究から、IL−6、IL−1およびTNF−αなどのサイトカインが腸の免疫系の調節中心的な役割を果たしており、IBDでは多くのプロおよび抗炎症性サイトカインの粘膜および全身濃度が高いことが報告されている(非特許文献19)。研究からはさらに、クローンの患者ではTNF−α、IL−1βおよびIL−6が高レベルであり、生検標本の培養の上澄み液のIL−1βおよびIL−6の濃度が、内視鏡的評価および組織学的評価のいずれの測定でも組織障害の程度と正の相関関係にあることが明らかになっている(非特許文献20)。
骨盤内炎症性疾患(PID)は、女性の子宮、ファローピウス管および/または卵巣の炎症をいい、近傍の組織および器官に粘着して瘢痕の形成に進展する。PIDは、組織壊死および膿瘍形成に至ることもある。研究から、抗菌治療前のPID患者では(治療後に比べて)IL−1β、IL−6およびTNF−αが著しく高く、こうしたサイトカインがPIDの病因に重要な役割を果たしていることが報告されている(非特許文献21)。
再灌流傷害とは、一定期間の虚血後に組織への血液供給が回復したときに起こる組織の損傷をいう。血液からの酸素および栄養素がなかったため、血行が回復すると、正常機能が回復するのではなく酸化ストレスが誘導され炎症および酸化損傷が引き起こされる状態になる。研究から、IL−6がTNF−αのダウンレギュレーションを介して温虚血/再灌流傷害から肝臓を守ることが報告されている(非特許文献22)。症状として、白血球レベルの上昇、アポトーシスおよびフリーラジカルの蓄積があるが、これに限定されるものではない。
関節リウマチ(RA)は、最も一般的には貧血と共に関節(関節炎)および腱鞘の炎症および組織損傷が起こる慢性全身性自己免疫障害である。また、RAでは肺、心膜、胸膜および眼の強膜のびまん性炎症が起こり、さらに皮膚の下の皮下組織では結節性病変が最も多く見られる。RAは能力傷害を来す痛みを伴う状態となることもあり、機能および運動性の実質的な喪失に至る恐れもある。研究から、RAおよび若年性関節炎患者の血清中ではIL−1β、IL−6およびTNF−αのレベルが高いことが報告されている(非特許文献23)。RAの症状は、関節(腫脹、疼痛、圧痛、局所熱感、こわばりおよび運動の制限);皮膚(リウマトイド結節);肺(線維症、カプラン症候群、胸水);腎臓(腎アミロイドーシス);心臓および血管(アテローム性動脈硬化症、心筋梗塞、脳卒中);および眼(上強膜炎、乾性角結膜炎)に発現し得る。
「血管炎」とは、血管(動脈および静脈)の炎症性破壊を特徴とする障害をいう。研究から、全身性血管炎の治療ではTNF−α、IL−1およびIL−6が有望な生物学的標的であることが報告されている(非特許文献24)。血管炎の症状は通常、単臓器または多臓器機能不全の全身性症状である。こうした症状として、疲労、脱力、発熱、関節痛、腹痛、高血圧、腎不全および神経機能障害を挙げることができる。他の症状としては、多発性単神経炎、触知可能な紫斑(皮膚の紫斑)および肺−腎症候群を挙げることができる。過敏性血管炎(hypersensitivity vasculitis)(HSV)は、外因性物質に対する免疫応答による二次性血管炎である。研究から、活発なHSV患者では健康な対照群よりも血清中のIL−6およびTNF−αが著しく高いことが報告されている(非特許文献25)。
線維症は、器官または組織の傷害または炎症により、またはそこへの血液供給の妨害によりその部位に過剰な線維性結合組織が形成または発生する。線維症は、瘢痕が生じる正常な治癒反応の結果起こることもあれば、あるいは、異常な反応プロセスであることもある。
内皮細胞機能障害(内皮機能不全)とは、凝固、血小板粘着、免疫機能、ならびに血管内腔および血管外腔の容積および電解質量の制御など内皮が行う通常の生化学的プロセスの生理学的機能異常をいう。内皮機能不全は、たとえば敗血症性ショック、高血圧、高コレステロール血症および糖尿病などの疾患の経過だけでなく、タバコ製品の喫煙など環境要因に起因することもある。研究から、IL−6、IL−1βおよびTNF−αなどのサイトカインの影響下で内皮依存性拡張反応が傷害され得、内皮が、循環血中のホルモンまたはオータコイドに反応する能力を失うことがあることが報告されている。この作用により、血管攣縮、血栓症またはアテローム発生の素因が形成され得る(非特許文献39)。さらに、研究によれば、IL−1βおよびTNF−αにより調節されるIL−6の過剰発現が、内皮細胞機能障害に重要な役割を果たすことが示唆されている(非特許文献40、41)。
本出願は、その全体を参照によって本明細書に援用する、2008年12月10日に出願された米国特許仮出願第61/121,396号に対する優先権の利益を主張するものである。
本発明は、米国国立衛生研究所が交付するGrant K25HL074968による政府支援を受けて行われた。政府は本発明に一定の権利を有する。
アミノ酸について本明細書に使用する略語は、以下のとおり従来から使用されている略語である:A=Ala=アラニン;R=Arg=アルギニン;N=Asn=アスパラギン;D=Asp=アスパラギン酸;C=Cys=システイン;Q=Gln=グルタミン;E=Glu=グルタミン酸;G=Gly=グリシン;H=His=ヒスチジン;I=Ile=ルソロイシン(lsoleucine);L−Leu=ロイシン;K=Lys=リジン;M=Met=メチオニン;F=Phe=フェニアラニン(Phenyalanine);P=Pro=プロリン;S=Ser=セリン;T=Thr=トレオニン;W=Trp=トリプトファン;Y=Tyr=チロシン;V=Val=バリン。アミノ酸は、L−アミノ酸でも、またはD−アミノ酸でもよい。アミノ酸は、ペプチドの半減期が延長する、またはペプチドの力価が向上する、またはペプチドのバイオアベイラビリティーが向上するように改変された合成アミノ酸により置換されていてもよい。
一態様によれば、本発明は、病態生理として炎症性サイトカインの発現を含む炎症性障害を治療する、キナーゼを阻害する組成物であって、
FAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号12]、
KAFAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号15]、
YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]、
YARAAARQARAKALNRQLGVAA[配列番号16]、
YARAAARGQRAKALARQLAVA[配列番号17]、
YARAAARGQRAKALARQLGVA[配列番号18]、
YARAAARGQRAKALNRQLAVA[配列番号19]、
YARAAARGQRAKALNRQLGVA[配列番号20]および
YARAAARGQRAKALNRQLGVAA[配列番号21]
のアミノ酸配列を持つペプチドからなる群から選択される、アミノ酸配列を持つ少なくとも1つのペプチドである。
別の態様によれば、本発明は、病態生理として炎症性サイトカインの発現を含む炎症性障害を治療する方法であって:(a)キナーゼ阻害組成物であって、治療有効量の治療用阻害ペプチドが少なくとも1種のキナーゼ酵素を阻害し、キナーゼ阻害組成物は、治療有効量の治療用阻害ペプチドを含み、治療用阻害ペプチドは第1のドメインおよび第2のドメインを含み、第1のドメインは第2のドメインに対して近位に位置するタンパク質形質導入ドメイン(PTD)を含み、第2のドメインは第1のドメインに対して近位に位置する治療ドメインを含む、キナーゼ阻害組成物を得るステップ;(b)キナーゼ阻害組成物を必要としている被検体に投与し、それにより少なくとも1種のキナーゼ酵素を阻害するステップ;および(c)少なくとも1種の炎症性サイトカインの発現を低下させ、それにより炎症性障害を治療するステップを含む、方法を提供する。
KAFAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号15]、
YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]、
YARAAARQARAKALNRQLGVAA[配列番号16]、
YARAAARGQRAKALARQLAVA[配列番号17]、
YARAAARGQRAKALARQLGVA[配列番号18]、
YARAAARGQRAKALNRQLAVA[配列番号19]、
YARAAARGQRAKALNRQLGVA[配列番号20]および
YARAAARGQRAKALNRQLGVAA[配列番号21]からなる群から選択されるアミノ酸配列を持つ少なくとも1つのペプチドである。
ペプチド合成および精製
Symphony(登録商標)ペプチド合成機(プロテイン・テクノロジーズ・インク(Protein Technologies, Inc))でRinkアミドまたはKnorrアミド樹脂(シンバイオサイ(Synbiosci)コーポレーション)を用いて標準的なFMOC化学反応によりペプチドを合成した。アミノ酸のカップリング試薬(シンバイオサイ・コーポレーション)は2−1H−ベンゾトリアゾール−1−イル)−1,1,3,3−テトラメチルウロニウムヘキサフルオルホスファート(hexafluorphosphate)/N−メチルマレイミド(HBTU/NMM)であった。合成後、トリフルオロ酢酸ベースのカクテルで樹脂からペプチドを切断し、エーテルで沈殿させ、遠心分離により回収した。回収したペプチドを減圧乾燥させ、ミリQ精製水で再懸濁し、22/250 C18プレップ−スケールカラム(グレース・デービッドソン(Grace Davidson))を備えた高速タンパク質液体クロマトグラフィー(FPLC:fast protein liquid chromatography)(AKTA Explorer、GEヘルスケア(Healthcare))を用いて精製した。精製には、定濃度の0.1%トリフルオロ酢酸あるいは0.1%酢酸とアセトニトリルのグラジエントを使用した。所望の分子量は、4800 Plus MALDI TOF/TOFTMアナライザー(アプライドバイオシステムズ(Applied Biosystems))を用いて飛行時間型マトリックス支援レーザー脱離イオン化(matrix−assisted laser desorption ionization)(MALDI)質量分析法で確認した。
MK2の治療用阻害ペプチドの必須アミノ酸の決定
MK2の治療用阻害ペプチドの必須アミノ酸を、AlaおよびD−アミノ酸の置換を利用して同定した。100μMのKALNRQLGVAA[配列番号13]はMK2活性を73%阻害した。最初に、治療ドメイン(KALNRQLGVAA)[配列番号13]の各アミノ酸を独立にAlaで置換した。次いで、ペプチドの治療ドメインの各アミノ酸を独立にそのD−アミノ酸で置換した。
MAPKAP−K2キット(インビトロジェン、カールズバッド、カリフォルニア州)のOmnia(登録商標)キナーゼアッセイを使用して、表1に示す各ペプチドの存在下および非存在下でMK2の反応速度を判定した。キットには、独自開発された反応緩衝液が含まれており、これに下記(最終濃度を示す)を加えた:1mMのATP、0.2mMのDTT、10μMのMAPKAP−K2 Sox修飾ペプチド基質、5ngのMK2および目的の阻害ペプチド(最終容量50μL)。ヒトMK2はインビトロジェンから購入した。反応は、キットに付属の、タンパク結合率が低い96ウェルプレートのウェル30℃で行い、蛍光測定値(励起=360nm、発光=485nm)は、SpectraMax M5分光光度計(モレキュラーデバイス(Molecular Devices))を用いて30秒ごとに20分間取得した。各反応ウェルの反応速度は、相対蛍光単位と時間との関係を示す図の傾きから判定した。各阻害ペプチドは、少なくとも4つの濃度12.5、25、50および100μmolで3回ずつ試験した。
PTDによるMK2の阻害
3つのPTD:1)WLRRIKAWLRRIKA[配列番号31];2)YGRKKRRQRRR[配列番号33];および3)YARAAARQARA[配列番号5]を使用して、PTDによるMK2の阻害が明らかになった。
治療ドメインの改変体はIC50に影響を与える
IC50値に影響を与えるように治療用阻害ペプチドの治療ドメインを改変した。その後改変された治療用阻害ペプチドをラジオメトリックアッセイで解析した。
市販のラジオメトリックアッセイサービス(ミリポア(Millipore)、ビルリカ、マサチューセッツ州)を使用して、形質導入ドメインと治療ドメインとを連結したもの、以下「完全なペプチド」)を含むペプチドの特異性および力価を試験した。このアッセイでは、キナーゼが阻害ペプチドにより阻害されない場合、正電荷を持つ基質がATPの放射能標識リン酸基でリン酸化される。正電荷を持つ基質は負電荷を持つフィルター膜に引き付けられ、シンチレーションカウンターで定量され、100%活性対照と比較される。ATP濃度がKmに近いとキナーゼが同じ相対量のリン酸化活性を持ち得るため、ATPに対する見かけのKmが15μM以内のATP濃度を選択した。
(1)Abl(h)
最終反応容量を25μLとし、Abl(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、50μMのEAIYAAPFAKKK[配列番号48]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマット(filtermat)にスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、AMPK(r)(5〜10mU)を32mMのHEPES pH7.4、0.65mMのDTT、0.012%Brij−35、200μMのAMP、200μMのAMARAASAAALARRR[配列番号49]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Aurora−A(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、200μMのLRRASLG[配列番号50](ケンプチド)、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P〜ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、50mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、BTK(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、250μMのKVEKIGEGTYGVVYK[配列番号51](Cdc2ペプチド)、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、CaMKI(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.5mMのCaCl2、16μg/mLのカルモジュリン、250μMのKKLNRTLSFAEPG[配列番号52]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、CDK1/cyclinB(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.1mg/mLのヒストンH1、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、CHK1(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、200μMのKKKVSRSGLYRSPSMPENLNRPR[配列番号53]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、CK1δ(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、200μMのKRRRALS(p)VASLPGL[配列番号54]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、CK2(h)(5〜10mU)を20mMのHEPES pH7.6、0.15MのNaCl、0.1mMのEDTA、5mMのDTT、0.1%トリトンX−100、165μMのRRRDDDSDDD[配列番号55]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、c−Kit(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、10mMのMnCl2、0.1mg/mLのポリ(Glu,Tyr)4:1、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をフィルターマットA(Filtermat A)にスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、DYRK2(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、2mg/mLのカゼイン、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、EGFR(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、10mMのMnCl2、0.1mg/mLのポリ(Glu,Tyr)4:1、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をフィルターマットA(Filtermat A)にスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、EphA2(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.1mg/mLのポリ(Glu、Tyr)4:1、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をフィルターマットA(Filtermat A)にスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、FGFR1(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、250μMのKKKSPGEYVNIEFG[配列番号56]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Flt3(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、50μMのEAIYAAPFAKKK[配列番号48]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、GSK3β(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、20μMのYRRAAVPPSPSLSRHSSPHQS(p)EDEEE[配列番号57](ホスホGS2ペプチド)、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、50mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、IGF−1R(h)(5〜10mU)を50mMのトリス pH7.5、0.1mMのEGTA、0.1mMのNa3VO4、0.1%β−メルカプトエタノール、250μMのKKKSPGEYVNIEFG[配列番号56]、10mMのMnCl2、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、IRAK4(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.33mg/mLのミエリン塩基性タンパク質、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、JAK3(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、500μMのGGEEEEYFELVKKKK[配列番号58]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、KDR(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.33mg/mLのミエリン塩基性タンパク質、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Lck(h)(5〜10mU)を50mMのトリス pH7.5、0.1mMのEGTA、0.1mMのNa3VO4、250μMのKVEKIGEGTYGVVYK[配列番号51](Cdc2ペプチド)、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、LIMK1(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.6mg/mLのコフィリン、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、MAPK1(h)(5〜10mU)を25mMのトリス pH7.5、0.02mMのEGTA、250μMのペプチド、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、MEK1(h)(1〜5mU)を50mMのトリス pH7.5、0.2mMのEGTA、0.1%β−メルカプトエタノール、0.01%Brij−35、1μMの不活性MAPK2(m)、10mMの酢酸Mgおよび非放射性ATP(必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLのこのインキュベーションミックスを使用してMAPK2(m)アッセイを開始する。
最終反応容量を25μLとし、Met(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、250μMのKKKSPGEYVNIEFG[配列番号56]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、MLCK(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.5mMのCaCl2、16μg/mLのカルモジュリン、250μMのKKLNRTLSFAEPG[配列番号52]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PDGFRβ(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.1mg/mLのポリ(Glu,Tyr)4:1、10mMのMnCl2、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める、次いで10μLの反応物をフィルターマットA(Filtermat A)にスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PhKγ2(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、250μMのKKLNRTLSFAEPG[配列番号52]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Pim−1(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、100μMのKKRNRTLTV[配列番号59]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PKA(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、30μMのLRRASLG[配列番号50](ケンプチド)、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、50mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PKBβ(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、30μMのGRPRTSSFAEGKK[配列番号60]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める、10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PKCβI(h)(5〜10mU)を20mMのHEPES pH7.4、0.03%トリトンX−100、0.1mMのCaCl2、0.1mg/mLのホスファチジルセリン、10μg/mLのジアシルグリセロール、0.1mg/mLのヒストンH1、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PKCδ(h)(5〜10mU)を20mMのHEPES pH7.4、0.03%トリトンX−100、0.1mg/mLのホスファチジルセリン、10μg/mLのジアシルグリセロール、50μMのERMRPRKRQGSVRRRV[配列番号61]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PKG1α(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、10μMのcGMP、200μMのRRRLSFAEPG[配列番号62]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PKG1β(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、10μMのcGMP、200μMのRRRLSFAEPG[配列番号62]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Ret(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、250μMのKKKSPGEYVNIEFG[配列番号56]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、ROCK−I(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、30μMのKEAKEKRQEQIAKRRRLSSLRASTSKSGGSQK[配列番号63]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Rsk2(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、30μMのKKKNRTLSVA[配列番号64]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、SAPK2a(h)(5〜10mU)を25mMのトリス pH7.5、0.02mMのEGTA、0.33mg/mLのミエリン塩基性タンパク質、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、SRC(1−530)(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、500mMのGGEEEEYFELVKKKK[配列番号58]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Syk(h)(5〜10mU)を50mMのトリス pH7.5、0.1mMのEGTA、0.1mMのNa3VO4、0.1%β−メルカプトエタノール、0.1mg/mLのポリ(Glu,Tyr)4:1、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33PATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をフィルターマットA(Filtermat A)にスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、Tie2(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、0.5mMのMnCl2、0.1mg/mLのポリ(Glu,Tyr)4:1、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をフィルターマットA(Filtermat A)にスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、TrkA(h)(5〜10mU)を8mMのMOPS pH7.0、0.2mMのEDTA、250μMのKKKSPGEYVNIEFG[配列番号56]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。次いで10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、75mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
最終反応容量を25μLとし、PRAK(h)(5〜10mU)を50mMのNa β−グリセロホスファート pH7.5、0.1mMのEGTA、30μMのKKLRRTLSVA[配列番号65]、10mMの酢酸Mgおよび[γ−33P−ATP](比活性約500cpm/pmol、必要に応じた濃度)とインキュベートする。MgATPミックスを添加して反応を開始する。室温で40分間インキュベートした後、5μLの3%リン酸溶液を添加して反応を止める。10μLの反応物をP30フィルターマットにスポットし、50mMのリン酸で5分間3回洗浄し、乾燥させる前にメタノールで1回洗浄し、シンチレーションを測定する。
PTDは治療用阻害ペプチドの力価に影響を与える
PTDは、治療用阻害ペプチドの力価に対して様々な影響を与えることが明らかになった。各PTDをそのそれぞれの治療ドメインと組み合わせると、治療用阻害ペプチドの阻害作用との様々なレベルの相乗作用が得られた。図2は、治療ドメイン(KALNRQLGVAA)[配列番号13]は同じだが、PTDが異なる治療用阻害ペプチド変異体のIC50曲線およびその値を示す。PTDペプチドWLRRRIKAWLRRI[配列番号38]を含む治療用阻害ペプチドのIC50値は、PTDペプチドYARAAARQARA[配列番号5]を含む治療用阻害ペプチドより低かった(30倍超低い)。
PTDおよびアミノ酸置換は治療用阻害ペプチドの特異性に影響を与える
治療用阻害ペプチドについて、MK2に関連するヒトキナーゼ、細胞生存率またはヒト疾患に対する作用をアッセイした。アッセイは、通常のMK2活性の2%〜8%が得られる濃度の治療用阻害ペプチドを用いて行った。誤差については2つサンプル間の標準偏差として報告し、「c」はラットAMPKであり、使用した他のすべてのキナーゼはヒトキナーゼである。
インターロイキン−6および腫瘍壊死因子−αに対する治療用阻害ペプチドの活性
サイトカイン、インターロイキン−6(IL−6)および腫瘍壊死因子−α(TNF−α)に対する治療用阻害ペプチドの阻害活性を判定した。
Symphony(登録商標)ペプチド合成機(プロテイン・テクノロジーズ・インク、ツーソン、アリゾナ州)でRinkアミドまたはKnorrアミド樹脂(シンバイオサイ・コーポレーション、リバーモア、カリフォルニア州)を用いて標準的なFMOC化学反応によりペプチドを合成した。アミノ酸のカップリング試薬(シンバイオサイ・コーポレーション)はHBTU/NMM(アナスペック(Anaspec)、フリーモント、カリフォルニア州/シグマ、セントルイス、ミズーリ州)であった。合成後、トリフルオロ酢酸ベースのカクテル(95%トリフルオロ酢酸、2.5%水、1.25%トリイソプロピルシランおよび1.25%エタンジオール)で樹脂からペプチドを切断し、エーテルで沈殿させ、遠心分離により回収した。回収したペプチドを減圧乾燥させ、ミリQ精製水で再懸濁し、22/250 C18プレップ−スケールカラム(グレース・デービッドソン、コロンビア、メリーランド州)を備えたFPLC(AKTA Explorer、GEヘルスケア、ピスカタウェイ、ニュージャージー州)を用いて精製した。精製には酢酸を使用した。所望の分子量は、4800 Plus MALDI TOF/TOF(商標)Analyzer(アプライドバイオシステムズ、フォスターシティー、カリフォルニア州)を用いて飛行時間型MALDI質量分析法で確認した。
胸膜中皮細胞の細胞株(CRL−9444)をアメリカンタイプカルチャーコレクション(American Type Culture Collection)から購入した。細胞は、Earle’s BSSおよび0.75mMのL−グルタミン(メディアテック・インク(Mediatech, Inc)、マナッサ、ヴァージニア州)、1.25g/Lの重炭酸ナトリウム(シグマ、セントルイス、ミズーリ州)、3.3nMの上皮増殖因子(MBLインターナショナル(International)、ウォバーン、マサチューセッツ州)、40nMのヒドロコルチゾン(シグマ)、870nMのインスリン(MBLインターナショナル)、20mMのHEPES(シグマ)、微量元素混合物B(メディアテック・インク)、10%ウシ胎仔血清(FBS)(ハイクローン(Hyclone)、ウォルサム、マサチューセッツ州)および1%ペニシリン/ストレプトマイシン(メディアテック・インク)を含むMedium199に播種して維持した。細胞を治療用阻害ペプチドで処理する前に、細胞を、Earle’s BSS、L−グルタミン、重炭酸ナトリウム、HEPES、微量元素混合物Bおよびペニシリン/ストレプトマイシン(濃度および供給業者は上記のとおり)を含むMedium 199のみからなる無血清培地で24時間馴化させ、その後サイトカインおよび/または阻害ペプチドで処理した。さらにこの培地組成には、阻害ペプチドもしくは市販されているプロテインキナーゼ阻害Rotterlin(IC50=5μM)(トクリス・バイオサイエンス(Tocris Bioscience)、エリスビル、ミズーリ州))と共に、あるいは、それなしでサイトカインを常に同時に加えた。すべての細胞培養実験では、細胞透過性MK2阻害ペプチド配列YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]を使用した。
一般にインターロイキン(IL)−1、IL−6および腫瘍壊死因子−α(TNF−α)などのプロ炎症性サイトカインは腹部手術後に腹腔に放出されると考えられる。これらのサイトカインは癒着形成/再形成に関与し得る。研究から、IL−1およびTNF−αはどちらも創傷治癒の初期相において重要なプロ炎症性サイトカインであり、腹膜水の活性化マクロファージにより産生されるのに対し、IL−6は炎症プロセスにおいて活性化マクロファージにより産生され、その産生はIL−1により増加されることが報告されている。さらに、研究からは、IL−1およびTNF−αがどちらもIL−6の強力な誘導因子であることも報告されている。これらのサイトカインは、線維素溶解経路と高度に相互作用し、細胞外マトリックスのリモデリングに直接的または間接的に関与し得るため重要であると考えられる。研究によれば、IL−1βおよびTNF−αがどちらも中皮細胞内のIL−6およびIL−8の発現レベルを増加させることが報告されている。加えて、IL−1βは、マクロファージにおけるTNF−α、IL−6およびIL−8の発現レベルを増強させることも明らかになっている。このため、中皮細胞またはマクロファージにおけるIL−1βまたはTNF−αにより誘導されるIL−6の発現レベルの定量は、治療用阻害ペプチドの活性を判定するモデルアッセイ系として使用される。
中皮細胞を、(IL−6の発現を誘導するため)IL−1β(1ng/ml)および/または様々な濃度の治療用阻害ペプチドとインキュベートした。市販されているプロテインキナーゼ阻害RottlerinをMK2およびPRAKの両方の阻害として導入した。
中皮細胞を、(IL−6の発現を誘導するため)TNF−αおよび/または様々な濃度の治療用阻害ペプチド(YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]またはFAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号12])とインキュベートした。市販されているプロテインキナーゼ阻害RottlerinをMK2の阻害剤として使用した。
IL−1β産生に対するMK2iの作用
神経細胞を用いて、アミノ酸配列YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]を持つ治療用阻害タンパク質のIL−1β産生に対する阻害作用を試験した。
MAPKAPKキナーゼ2阻害(MK2i)のIL−6産生に対する作用
ニューロン、アストロサイトおよびミクログリアからなる三重培養を用いて、アミノ酸配列YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]を持つ治療用阻害タンパク質のIL−6産生に対する阻害作用を試験した。細胞培地は下記のとおり調製した。簡単に説明すると、ダルベッコ変法イーグル培地(Dulbecco’ Modified Eagle Medium)(DMEM)(6.68g)および重炭酸ナトリウム(1.85g)を蒸留脱イオン(distilled de−ionized)(DDi)水(500ml)に加え;この懸濁液を濾過滅菌し、次いでペニシリン/ストレプトマイシン(500μl)、ウシ胎仔血清(fetal bovine serum)(FBS)(50ml)およびヒト血清(human serum)(HS)(50ml)を補充した。調製培地(1ml)を組織に加え、組織を無菌ピペットチップにより30秒にわたり10回ピペッティングし、破砕した。この細胞懸濁液をナイロンフィルターで濾過し、集めて、濾過した懸濁液を1100rpmで1分間遠心し、ペレットを再懸濁した。ニューロン、アストロサイトおよびミクログリアへの分化を支持するようにE18細胞を蒔いた(1×106細胞/ml)。培養から1週間後、3つの細胞型をすべて確認するために、一部の細胞を固定し、β−3チューブリン(ニューロンのバイオマーカー)、グリア線維性酸性タンパク質(glial fibrillary acidic protein)(GFAP、アストロサイトのバイオマーカー)およびイオン化カルシウム結合アダプター分子1(ionized calcium binding adaptor molecule 1)(Iba1、ミクログリアのバイオマーカー)で標識した。使用した一次抗体は、ウサギ抗Iba1(1:200;和光純薬(Wako Chemicals)米国インク、リッチモンド、ヴァージニア州)、ニワトリ抗GFAP(1:200;ミリポア・コーポレーション、ビルリカ、マサチューセッツ州)およびAlexa Fluor 488にコンジュゲートしたマウス抗β−3−チューブリン(1:200;ミリポア・コーポレーション、ビルリカ、マサチューセッツ州)であった。二次抗体は、Alexa Fluor 633ヤギ抗ウサギ(1:200;インビトロジェン、カールズバッド、カリフォルニア州)およびAlexa Fluor 555ヤギ抗ニワトリ(1:200;インビトロジェン、カールズバッド、カリフォルニア州)であった。核はHoescht33342(インビトロジェン、カールズバッド、カリフォルニア州)で標識した。陽性対照は細胞をTNF−α(5ng/mlまたは10ng/ml)で処理したもので構成され;陰性対照として、未処理の細胞を細胞培地に曝露した。処理群の構成は、(i)1mMのMK2i(治療用阻害ペプチドYARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11])とTNF−α(5ng/ml);(ii)3mMのMK2iとTNF−α(5ng/ml);(iii)1mMのMK2iとTNF−α(10ng/ml TNF−α);および(iv)3mMのMK2iとTNF−α(10ng/ml)であった。この培地組成には、治療用阻害ペプチドと共に、あるいは、治療用阻害ペプチドなしでサイトカインを常に同時に加えた。
Claims (25)
- 病態生理として炎症性サイトカインの発現を含む炎症性障害を治療するためのキナーゼ阻害組成物であって、
(a)治療有効量の治療用阻害ペプチド
(b)薬学的に許容されるキャリア、および
(c)前記組成物のための単一用量または複数用量の容器
を含み、
前記治療有効量の前記治療用阻害ペプチドは少なくとも1種のキナーゼ酵素を阻害し、
前記治療用阻害ペプチドはタンパク質形質導入ドメインおよび治療ドメインを含み、
前記治療ドメインは、KALARQLGVAA[配列番号23]、KALNRQLGVA[配列番号29]、KALNRQLAVAA[配列番号27]、及びこれらの配列と少なくとも90%同一であるアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列からなり、
前記キャリアは、滅菌水を含み、
前記組成物は、IL−6、TNF−αおよびIL−1βからなる群より選ばれる少なくとも1種の炎症性サイトカインの発現を直接的または間接的に低下させる、
キナーゼ阻害組成物。 - 前記治療用阻害ペプチドはアミノ酸配列YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]を持つ、請求項1に記載の組成物。
- 前記治療用阻害ペプチドの前記形質導入ドメインはアミノ酸配列WLRRIKAWLRRIKA[配列番号31]と少なくとも90%同一である、請求項1に記載の組成物。
- 前記治療用阻害ペプチドの前記タンパク質形質導入ドメインはアミノ酸配列YARAAARQARA[配列番号5]と少なくとも90%同一である、請求項1に記載の組成物。
- 前記治療用阻害ペプチドの前記タンパク質形質導入ドメインはアミノ酸配列FAKLAARLYR[配列番号35]と少なくとも90%同一である、請求項1に記載の組成物。
- 前記治療用阻害ペプチドはアミノ酸配列FAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号12]を持つ、請求項1に記載の組成物。
- 前記治療用阻害ペプチドの前記タンパク質形質導入ドメインはアミノ酸配列KAFAKLAARLYR[配列番号36]と少なくとも90%同一である、請求項1に記載の組成物。
- 前記治療用阻害ペプチドはアミノ酸配列KAFAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号15]を持つ、請求項1に記載の組成物。
- 前記ペプチドは、配列番号11、配列番号12、配列番号13および配列番号15の少なくとも1つと少なくとも90%同一である少なくとも1種の変異体を含み、かつTNF−αの排出を阻害する、請求項1に記載の組成物。
- 前記ペプチドは、配列番号11、配列番号12、配列番号13および配列番号15の少なくとも1つと少なくとも90%同一である少なくとも1種の変異体を含み、かつIL−1βの排出を阻害する、請求項1に記載の組成物。
- 前記ペプチドは、配列番号11、配列番号12、配列番号13および配列番号15の少なくとも1つと少なくとも90%同一である少なくとも1種の変異体を含み、かつIL−6の排出を阻害する、請求項1に記載の組成物。
- 前記治療用阻害ペプチドは、単離されたペプチドである、請求項1〜11のいずれかに記載の組成物。
- 防腐薬をさらに含む、請求項1〜12のいずれかに記載の組成物。
- 前記容器は、滅菌されたバイアルまたはアンプルである、請求項1〜13のいずれかに記載の組成物。
- 前記少なくとも1種のキナーゼ酵素が、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ活性化プロテインキナーゼ2(MK2)、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ活性化プロテインキナーゼ3(MK3)、カルシウム/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼ(CaMKI)及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜14のいずれかに記載の組成物。
- 病態生理として炎症性サイトカインの発現を含む炎症性障害を治療するための薬剤の製造における、キナーゼ阻害組成物の使用であって、前記薬剤は、
(a)治療有効量の治療用阻害ペプチド
(b)薬学的に許容されるキャリア、および
(c)前記組成物のための単一用量または複数用量の容器
を含み、
前記治療有効量の前記治療用阻害ペプチドは少なくとも1種のキナーゼ酵素を阻害し、
前記治療用阻害ペプチドはタンパク質形質導入ドメインおよび治療ドメインを含み、
前記治療ドメインは、KALARQLGVAA[配列番号23]、KALNRQLGVA[配列番号29]、KALNRQLAVAA[配列番号27]、及びこれらの配列と少なくとも90%同一であるアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列からなり、
前記キャリアは、滅菌水を含み、
前記組成物は、IL−6、TNF−αおよびIL−1βからなる群より選ばれる少なくとも1種の炎症性サイトカインの発現を直接的または間接的に低下させる、使用。 - 前記治療用阻害ペプチドはアミノ酸配列YARAAARQARAKALARQLGVAA[配列番号11]からなる、請求項16に記載の使用。
- 前記治療用阻害ペプチドはアミノ酸配列FAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号12]からなる、請求項16に記載の使用。
- 前記治療用阻害ペプチドはアミノ酸配列KAFAKLAARLYRKALARQLGVAA[配列番号15]からなる、請求項16に記載の使用。
- 前記治療用阻害ペプチドは、単離されたペプチドである、請求項16〜19のいずれか1項に記載の使用。
- 前記薬剤は、防腐薬をさらに含む、請求項16〜20のいずれか1項に記載の使用。
- 前記容器は、滅菌されたバイアルまたはアンプルである、請求項16〜21のいずれか1項に記載の使用。
- 前記少なくとも1種のキナーゼ酵素が、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ活性化プロテインキナーゼ2(MK2)、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ活性化プロテインキナーゼ3(MK3)、カルシウム/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼ(CaMKI)及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項16〜22のいずれか1項に記載の使用。
- 前記少なくとも1種のキナーゼ酵素が、ROCK−I(Rho関連セリン/トレオニンキナーゼ)、SAPK2a、PKBβ(プロテインキナーゼB)、PKC、BTK、DYRK2、EGFR、Flt3、IRAK4(IL−1受容体(IL−1R)関連キナーゼ)、MLCK(ミオシン軽鎖キナーゼ)、Pim−1、Rsk2、SRC(1−530)、Tie2、TrkA、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1〜14のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記少なくとも1種のキナーゼ酵素が、ROCK−I(Rho関連セリン/トレオニンキナーゼ)、SAPK2a、PKBβ(プロテインキナーゼB)、PKC、BTK、DYRK2、EGFR、Flt3、IRAK4(IL−1受容体(IL−1R)関連キナーゼ)、MLCK(ミオシン軽鎖キナーゼ)、Pim−1、Rsk2、SRC(1−530)、Tie2、TrkA、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項16〜22のいずれか1項に記載の使用。
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