JP5820622B2 - Fermented soymilk and method for producing the same - Google Patents
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Description
本発明は、豆乳発酵物及びその製造方法に関する。 The present invention relates to a fermented soymilk and a method for producing the same.
近年、豆乳を乳酸で発酵させて得られる豆乳発酵物が、低コレステロール、低カロリーの新たな食品ないし食品素材として注目されている(例えば、特許文献1、2参照)。 In recent years, fermented soymilk obtained by fermenting soymilk with lactic acid has attracted attention as a new food or food material with low cholesterol and low calories (see, for example, Patent Documents 1 and 2).
豆乳発酵物はいくつか知られているものの、その選択肢は多いとはいえないのが実情である。特に、新たな食感を有する豆乳発酵物に対する需要は高いと考えられる。 Although some soymilk fermented products are known, the options are not many. In particular, the demand for fermented soymilk having a new texture is considered high.
そこで、本発明は、従来の豆乳発酵物にない独自の食感を有する豆乳発酵物及びそのような豆乳発酵物の製造を可能とする新規の方法を提供することを目的とする。 Then, this invention aims at providing the novel method which enables manufacture of the soymilk fermented product which has the original texture which is not in the conventional fermented soymilk product, and such a soymilk fermented product.
本発明は、β−グルカン産生能を有する乳酸菌(以下、場合により「β−グルカン産生乳酸菌」という。)を用いて豆乳を発酵させる工程を含む、豆乳発酵物の製造方法を提供する。本発明において、「β−グルカン産生」とは、乳酸菌がβ−グルカンを菌体外に産生することをいうものとする。 The present invention provides a method for producing a fermented soymilk product comprising a step of fermenting soymilk using a lactic acid bacterium having an ability to produce β-glucan (hereinafter sometimes referred to as “β-glucan-producing lactic acid bacteria”). In the present invention, “β-glucan production” means that lactic acid bacteria produce β-glucan outside the cells.
本発明の方法では、発酵中に乳酸菌によりβ−グルカンが菌体外に生成される。そのため、乳酸菌由来のβ−グルカンを含有し、独自の性状・食感を有する豆乳発酵物が得られる。本発明の方法によれば、例えば下記のような性状を有する豆乳発酵物を得ることが可能となる。
・乳清の分離がほとんどなく、粘稠で糸引き性を示す。
・口に入れたときに崩れにくく、飲み込むまで口中でなめらかさが維持される。
In the method of the present invention, β-glucan is produced outside the cells by lactic acid bacteria during fermentation. Therefore, a fermented soymilk containing β-glucan derived from lactic acid bacteria and having unique properties and texture can be obtained. According to the method of the present invention, for example, a soymilk fermented product having the following properties can be obtained.
-There is almost no separation of whey, and it is viscous and shows stringiness.
・ It is hard to collapse when put in the mouth and keeps smooth in the mouth until swallowed.
β−グルカン産生乳酸菌としては、アルギニンをオルニチン及び/又はシトルリンに変換する能力をさらに有するものが好ましい。このような乳酸菌を用いて豆乳の発酵を行うことにより、発酵過程で豆乳中のアルギニン(豆乳に添加されたものでもよい。)の少なくとも一部がオルニチン及び/又はシトルリンに変換され、オルニチン及び/又はシトルリンを含有する豆乳発酵物を得ることが可能となる。なお、オルニチンは、シジミに多く含まれるアミノ酸であり、肝機能改善効果を有することが知られている。また、シトルリンは、ウリ科植物(スイカ、キュウリ等)に多く含まれるアミノ酸であり、血流改善効果を有することが知られている。 As the β-glucan-producing lactic acid bacterium, those further having the ability to convert arginine into ornithine and / or citrulline are preferable. By performing fermentation of soymilk using such lactic acid bacteria, at least a part of arginine (which may be added to soymilk) in soymilk is converted to ornithine and / or citrulline during the fermentation process, and ornithine and / or Or it becomes possible to obtain the fermented soybean milk containing citrulline. In addition, ornithine is an amino acid that is contained in a large amount in shijimi and is known to have an effect of improving liver function. Citrulline is an amino acid that is abundant in cucurbitaceae plants (watermelon, cucumber, etc.) and is known to have a blood flow improving effect.
β−グルカン産生乳酸菌としては、例えばラクトバチラス・ブレビス(Lactobacillus brevis)SBC8027(受託番号:FERM BP−10630)が挙げられる。ラクトバチラス・ブレビスSBC8027は、アルギニンをオルニチン及びシトルリンに変換する能力をさらに有する乳酸菌である。 Examples of β-glucan-producing lactic acid bacteria include Lactobacillus brevis SBC8027 (accession number: FERM BP-10630). Lactobacillus brevis SBC8027 is a lactic acid bacterium that further has the ability to convert arginine to ornithine and citrulline.
本発明はまた、上記製造方法により得ることのできる豆乳発酵物を提供する。本発明の豆乳発酵物は、乳酸菌由来のβ−グルカンを含有し、独自の性状・食感を有する。 The present invention also provides a fermented soymilk product obtainable by the above production method. The fermented soymilk of the present invention contains β-glucan derived from lactic acid bacteria and has a unique property and texture.
一態様において、本発明の豆乳発酵物は、回転円筒式粘度計により25℃で測定される粘度が4000〜10000mPa・sの発酵物である。このような豆乳発酵物は、乳清の分離がほとんどなく、粘稠で糸引き性を示す。 In one aspect, the soymilk fermented product of the present invention is a fermented product having a viscosity of 4,000 to 10,000 mPa · s measured at 25 ° C. by a rotating cylindrical viscometer. Such a fermented soymilk has little separation of whey and is viscous and exhibits stringiness.
また、一態様において、本発明の豆乳発酵物は、η50/η10[η10、η50はそれぞれ、25℃で測定されるせん断速度10s−1、50s−1での粘度を表す。]が0.3以上の発酵物である。このような豆乳発酵物は、口に入れたときに崩れにくく、飲み込むまで口中でなめらかさが維持される。なお、せん断速度10s−1、50s−1での粘度はそれぞれ、口に入れたときの粘度、飲み込むときの粘度に対応する。 In one embodiment, the fermented soymilk of the present invention represents η 50 / η 10 [η 10 , η 50 represents the viscosity at shear rates of 10 s −1 and 50 s −1 measured at 25 ° C., respectively. ] Is a fermented product of 0.3 or more. Such a fermented soymilk is hard to collapse when put in the mouth, and remains smooth in the mouth until swallowed. The viscosities at shear rates of 10 s −1 and 50 s −1 correspond to the viscosity when put in the mouth and the viscosity when swallowed, respectively.
本発明の豆乳発酵物は食品ないし食品素材として使用することができる。すなわち、本発明はまた、上記豆乳発酵物を含有する食品(上記豆乳発酵物からなるものであってもよい。)を提供する。本発明の食品は、上記豆乳発酵物の性質が適宜付与された食品である。 The fermented soymilk of the present invention can be used as a food or food material. That is, the present invention also provides a food containing the fermented soymilk (may be composed of the fermented soymilk). The food of the present invention is a food to which the properties of the fermented soybean milk are appropriately given.
本発明によれば、従来の豆乳発酵物にない独自の食感を有する豆乳発酵物及びそのような豆乳発酵物の製造を可能とする新規の方法が提供される。 ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the novel method which enables manufacture of the soymilk fermented product which has the original texture which is not in the conventional soymilk fermented product, and such a soymilk fermented product is provided.
以下、本発明の実施形態を説明する。 Embodiments of the present invention will be described below.
豆乳発酵物の製造方法:
本発明の豆乳発酵物の製造方法は、β−グルカン産生能を有する乳酸菌を用いて豆乳を発酵させる工程を含む方法である。
Method for producing fermented soymilk:
The method for producing a fermented soymilk product of the present invention is a method including a step of fermenting soymilk using a lactic acid bacterium having β-glucan-producing ability.
本発明の方法では、例えば、3%(w/w)以上(特に4〜16%(w/w))の大豆固形分(水分を除いた大豆の成分(炭水化物、脂質、タンパク質等))を含有する豆乳を使用することができる。市販の豆乳を使用してもよい(JAS(日本農林規格)では、豆乳飲料(その他)の大豆固形分は4%以上と定められている)。 In the method of the present invention, for example, 3% (w / w) or more (particularly 4 to 16% (w / w)) of soybean solids (soybean components excluding moisture (carbohydrate, lipid, protein, etc.)) The contained soymilk can be used. Commercially available soy milk may be used (in JAS (Japanese Agricultural Standards), soy milk beverage (others) has a solid content of 4% or more).
豆乳は、例えば、糖(スクロース、マルトース、スタキオース、ラフィノース等)、植物エキス(例えばモルトエキス)、香料(例えばヨーグルトフレーバー)、甘味料(例えばガムシロップ)がさらに添加されたものであってもよい。 The soy milk may be further added with sugar (sucrose, maltose, stachyose, raffinose, etc.), plant extract (eg, malt extract), flavor (eg, yogurt flavor), sweetener (eg, gum syrup), for example. .
β−グルカン産生乳酸菌は、例えば、ラクトバチラス(Lactobacillus)属、ビフィドバクテリウム(Bifidobacterium)属、エンテロコッカス(Enterococcus)属、ストレプトコッカス(Streptococcus)属、ラクトコッカス(Lactococcus)属、ペディオコッカス(Pediococcus)属、リューコノストック(Leuconostoc)属のいずれの細菌でもよい。 β-glucan-producing lactic acid bacteria include, for example, the genus Lactobacillus, the genus Bifidobacterium, the genus Enterococcus, the genus Streptococcus, the genus Lactococcus, Any bacterium of the genus Leuconostoc can be used.
β−グルカン産生乳酸菌としては、例えばラクトバチラス・ブレビス(Lactobacillus brevis)SBC8027が挙げられる。ラクトバチラス・ブレビスSBC8027菌株は、2006年6月28日に独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター(日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1 中央第6(郵便番号305−8566))に受託番号FERM BP−10630で受託された菌株である。 Examples of β-glucan producing lactic acid bacteria include Lactobacillus brevis SBC8027. The Lactobacillus brevis SBC8027 strain was founded on June 28, 2006 at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Depositary Center (1st, 1st East, 1-chome, Tsukuba, Ibaraki, Japan) (zip code 305-8565). It is a strain deposited under the accession number FERM BP-10630.
ある乳酸菌がβ−グルカン産生能を有するかどうかは、例えば次のように判定することができる(実施例参照)。まず、β−グルカン合成遺伝子(gtf遺伝子)上の異なる領域に対応する2種のプライマーセット(例えば、配列番号1の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号2の塩基配列からなるリバースプライマーのセット及び配列番号3の塩基配列からなるフォワードプライマーと配列番号4の塩基配列からなるリバースプライマーのセット)を用い、被検乳酸菌のゲノムDNAを鋳型としてポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を行う。2種のDNA断片がいずれも増幅すれば、乳酸菌β−グルカンと反応する抗体(例えばストレプトコッカス・ニューモニエ(Streptococcus pneumoniae)タイプ37特異的抗血清)で該被検乳酸菌を処理する。そして、凝集が観察されれば、該被検乳酸菌はβ−グルカン産生能を有するものと判定する。ゲノムDNA抽出、PCR等は、当業者に一般的に知られている方法により行うことができる。 Whether or not a certain lactic acid bacterium has β-glucan production ability can be determined, for example, as follows (see Examples). First, two types of primer sets corresponding to different regions on the β-glucan synthesis gene (gtf gene) (for example, a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 1 and a reverse primer set consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 2) Using a forward primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 3 and a reverse primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 4), a polymerase chain reaction (PCR) is performed using the genomic DNA of the test lactic acid bacterium as a template. If both of the two DNA fragments are amplified, the test lactic acid bacterium is treated with an antibody that reacts with lactic acid β-glucan (for example, Streptococcus pneumoniae type 37-specific antiserum). If aggregation is observed, it is determined that the test lactic acid bacterium has β-glucan production ability. Genomic DNA extraction, PCR and the like can be performed by methods generally known to those skilled in the art.
β−グルカン産生乳酸菌としては、アルギニンをオルニチン及び/又はシトルリンに変換する能力をさらに有するものが好ましい。ラクトバチラス・ブレビスSBC8027は、アルギニンをオルニチン及びシトルリンに変換する能力を有する乳酸菌である。そのような乳酸菌を使用する場合は、豆乳にアルギニンを添加して発酵を行うことにより、オルニチン及び/又はシトルリンをより多く含有する豆乳発酵物を得ることが可能となる。 As the β-glucan-producing lactic acid bacterium, those further having the ability to convert arginine into ornithine and / or citrulline are preferable. Lactobacillus brevis SBC8027 is a lactic acid bacterium having the ability to convert arginine into ornithine and citrulline. When using such lactic acid bacteria, fermented soymilk containing more ornithine and / or citrulline can be obtained by adding arginine to soymilk and performing fermentation.
ある乳酸菌がアルギニンをオルニチン及び/又はシトルリンに変換する能力を有するかどうかは、例えば、該被検乳酸菌で豆乳(アルギニンを添加したものでもよい。)を発酵させ、豆乳発酵物中のアルギニン、オルニチン及びシトルリン量を調べることによって判定することができる。発酵によりアルギニン量が減少し、オルニチン及び/又はシトルリン量が増加すれば、該被検乳酸菌はアルギニンをオルニチン及び/又はシトルリンに変換する能力を有するものと判定される。 Whether a certain lactic acid bacterium has the ability to convert arginine into ornithine and / or citrulline is, for example, fermenting soy milk (which may be supplemented with arginine) with the test lactic acid bacterium, and then arginine and ornithine in the fermented soy milk And by determining the amount of citrulline. If the amount of arginine decreases by fermentation and the amount of ornithine and / or citrulline increases, it is determined that the test lactic acid bacterium has the ability to convert arginine to ornithine and / or citrulline.
発酵の際には、β−グルカン産生乳酸菌のみを使用してもよいし、また、β−グルカン非産生乳酸菌を共存させてもよい。 In the fermentation, only β-glucan-producing lactic acid bacteria may be used, or β-glucan non-producing lactic acid bacteria may coexist.
豆乳の発酵は、当業者に一般的に知られている発酵乳製品(ヨーグルト、乳酸飲料等)の製法に基づいて行うことができ、また、発酵の際の温度及び時間は、使用する豆乳や乳酸菌の種類に応じて適宜設定することができる。例えば、殺菌した豆乳にβ−グルカン産生乳酸菌を1×105〜1×107cfu/mLになるように添加し、25〜35℃で20〜50時間静置すればよい。 Fermentation of soy milk can be performed based on a method for producing a fermented milk product (yogurt, lactic acid beverage, etc.) generally known to those skilled in the art, and the temperature and time during the fermentation are determined depending on the soy milk used. It can set suitably according to the kind of lactic acid bacteria. For example, β-glucan-producing lactic acid bacteria may be added to sterilized soymilk so as to be 1 × 10 5 to 1 × 10 7 cfu / mL, and left at 25 to 35 ° C. for 20 to 50 hours.
本発明の方法は、発酵工程からなるものであっても、また、さらに他の工程を含むものであってもよい。例えば、豆乳を調製する工程を発酵工程の前に実施してもよい。 The method of the present invention may comprise a fermentation process or may further include other processes. For example, the step of preparing soy milk may be performed before the fermentation step.
豆乳発酵物:
上記製造方法により豆乳発酵物を得ることができる。本発明の豆乳発酵物は、乳酸菌由来のβ−グルカンを含有し、独自の性状・食感を有する。
Fermented soymilk:
Fermented soymilk can be obtained by the above production method. The fermented soymilk of the present invention contains β-glucan derived from lactic acid bacteria and has a unique property and texture.
本発明の豆乳発酵物は、乳清の分離がほとんどなく、粘稠で糸引き性を示す。回転円筒式粘度計により25℃で測定される粘度は、例えば、4000〜10000mPa・s、5000〜9000mPa・s又は6000〜8000mPa・sである。回転円筒式粘度計としては、例えばビスコメータVS−10(リオン)が挙げられる。また、粘度の測定は、例えば下記条件で行うことができる。
粘度測定の条件:
ロータ回転速度:60rpm
ロータサイズ:2.7cm(直径)×4.5cm
外筒サイズ:4.8cm(直径)×6.5cm
The fermented soymilk of the present invention has almost no whey separation, is viscous, and exhibits stringiness. The viscosity measured at 25 ° C. with a rotating cylindrical viscometer is, for example, 4000 to 10000 mPa · s, 5000 to 9000 mPa · s, or 6000 to 8000 mPa · s. An example of the rotating cylindrical viscometer is a viscometer VS-10 (Lion). Moreover, the measurement of a viscosity can be performed on the following conditions, for example.
Viscosity measurement conditions:
Rotor rotation speed: 60rpm
Rotor size: 2.7cm (diameter) x 4.5cm
Outer cylinder size: 4.8cm (diameter) x 6.5cm
また、本発明の豆乳発酵物は、せん断速度を変化させた際の粘度変化が比較的小さく、高いせん断速度でも比較的大きな粘度を示す。そのため、口に入れたときに崩れにくく、また、飲み込むまで口中でなめらかさが維持される。25℃で測定されるせん断速度10s−1、50s−1での粘度をそれぞれη10、η50とすると、本発明の豆乳発酵物において、η50/η10は、例えば、0.3〜1.0、0.4〜0.8又は0.4〜0.6であり、η50は、例えば、500〜1500mPa・s又は800〜1200mPa・sである。 Moreover, the fermented soymilk of the present invention has a relatively small viscosity change when the shear rate is changed, and exhibits a relatively large viscosity even at a high shear rate. Therefore, it is hard to collapse when put in the mouth, and the smoothness is maintained in the mouth until swallowed. When the viscosity at a shear rate of 10 s −1 and 50 s −1 measured at 25 ° C. is η 10 and η 50 , respectively, in the fermented soymilk of the present invention, η 50 / η 10 is 0.3 to 1 0.0, 0.4 to 0.8, or 0.4 to 0.6, and η 50 is, for example, 500 to 1500 mPa · s or 800 to 1200 mPa · s.
発酵の際に、オルニチン及び/又はシトルリンへの変換能を有する乳酸菌を使用すれば、オルニチン及び/又はシトルリンを含有する豆乳発酵物が得られる。すなわち、一態様において、本発明の豆乳発酵物はオルニチン及び/又はシトルリンを含有する。 If a lactic acid bacterium having the ability to convert ornithine and / or citrulline is used during fermentation, a fermented soymilk containing ornithine and / or citrulline is obtained. That is, in one aspect, the fermented soymilk of the present invention contains ornithine and / or citrulline.
豆乳発酵物含有食品:
上記豆乳発酵物は食品ないし食品素材として使用することができる。例えば、デザートないしその素材として、また、乳化調味料(マヨネーズ、ドレッシング等)の素材として使用可能である。
Food containing fermented soymilk:
The fermented soybean milk can be used as a food or food material. For example, it can be used as a dessert or a material thereof, and as a material for an emulsified seasoning (mayonnaise, dressing, etc.).
以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明する。但し、本発明は、以下の実施例により限定されるものではない。 Hereinafter, based on an Example, this invention is demonstrated more concretely. However, the present invention is not limited to the following examples.
実施例1(β−グルカン産生乳酸菌の探索):
サッポロビール社が保有する乳酸菌83株(ラクトバチラス(Lactobacillus)属:76株;ストレプトコッカス(Streptococcus)属:5株;ペディオコッカス(Pediococcus)属:2株)から、以下のようにβ−グルカン産生乳酸菌を探索した。
Example 1 (Search for β-glucan-producing lactic acid bacteria):
From lactic acid bacteria strain 83 (Lactobacillus genus: 76 strains; Streptococcus genus: 5 strains; Pediococcus genus: 2 strains) possessed by Sapporo Breweries, β-glucan producing lactic acid bacteria as follows Explored.
乳酸菌の培養:
MRS液体培地(4mL)に各乳酸菌を植菌し、30℃、嫌気ボックス下で2〜3日間培養を行った。なお、ラクトバチラス・ブレビス(Lactobacillus brevis)SBC8027の培養液は粘稠で糸引き性を示した。
Culture of lactic acid bacteria:
Each lactic acid bacterium was inoculated into MRS liquid medium (4 mL), and cultured at 30 ° C. in an anaerobic box for 2 to 3 days. The culture solution of Lactobacillus brevis SBC8027 was viscous and showed stringiness.
ゲノムDNAの抽出:
培養液0.5mLをエッペンドルフチューブに入れ、10000rpmで5分間遠心分離して菌体を回収した。得られた菌体を0.1mLのDNA抽出液(PrepMan Ultra)に懸濁後、99℃で15分間加温し、さらに10000rpmで5分間遠心分離した。上清を回収してゲノムDNA溶液を得た。
Extraction of genomic DNA:
0.5 mL of the culture solution was placed in an Eppendorf tube and centrifuged at 10,000 rpm for 5 minutes to recover the cells. The obtained cells were suspended in 0.1 mL of DNA extract (PrepMan Ultra), heated at 99 ° C. for 15 minutes, and further centrifuged at 10,000 rpm for 5 minutes. The supernatant was collected to obtain a genomic DNA solution.
PCR:
β−グルカン合成遺伝子(gtf遺伝子)上の異なる領域(gtfプライマー領域及びmGTFプライマー領域)に対応する2種のプライマーセット(下記)を用い、各乳酸菌のゲノムDNAを鋳型として下記条件でPCRを行った。ラクトバチラス・ブレビスSBC8027についてのみ、2種のDNA断片の増幅が観察された。
・gtfプライマー領域:
フォワードプライマー:5’−AACGCCTGCAGACTGGCACC−3’(配列番号1)
リバースプライマー:5’−ACCAGCCACCTTCAACGCTTCG−3’(配列番号2)
・mGTFプライマー領域:
フォワードプライマー:5’−CGGTAATGAAGCGTTTCCTG−3’(配列番号3)
リバースプライマー:5’−GCTAGTACGGTAGACTTG−3’(配列番号4)
・PCR条件:
反応液:Lithos qPCRTM HotStart Master Mix−2mM(Eurogentec)
反応温度:変性(95℃、10分)→[変性(95℃、15秒)→アニーリング(55℃、5秒)→伸長(72℃、20秒)]×40サイクル
PCR:
PCR was performed under the following conditions using two types of primer sets (below) corresponding to different regions (gtf primer region and mGTF primer region) on the β-glucan synthesis gene (gtf gene), using the genomic DNA of each lactic acid bacterium as a template. It was. Only for Lactobacillus brevis SBC8027, amplification of two DNA fragments was observed.
Gtf primer region:
Forward primer: 5′-AACGCCTGCAGACTGGCACC-3 ′ (SEQ ID NO: 1)
Reverse primer: 5′-ACCAGCCACCTCTCAACGCTTCG-3 ′ (SEQ ID NO: 2)
MGTF primer region:
Forward primer: 5′-CGGTAATGAAGCGTTTCCTG-3 ′ (SEQ ID NO: 3)
Reverse primer: 5′-GCTAGTACGGTAGACTTG-3 ′ (SEQ ID NO: 4)
・ PCR conditions:
Reaction solution: Lithos qPCR ™ HotStart Master Mix-2 mM (Eurogentec)
Reaction temperature: denaturation (95 ° C., 10 minutes) → [denaturation (95 ° C., 15 seconds) → annealing (55 ° C., 5 seconds) → extension (72 ° C., 20 seconds)] × 40 cycles
遺伝子解析:
ラクトバチラス・ブレビスSBC8027については、2種のDNA断片の塩基配列を決定し、これをラクトバチラス・スエビカス(Lactobacillus suebicus)CUPV221のgtf遺伝子配列(アクセッション番号:GU174474(GU174474.1))と比較した。遺伝子解析には、MicroSeq ver.1.4.3(Applied Biosystems)を使用した。
Genetic analysis:
For Lactobacillus brevis SBC8027, the nucleotide sequences of two types of DNA fragments were determined and compared with the gtf gene sequence of Lactobacillus suebicus CUPV221 (accession number: GU174474 (GU1744474.1)). For gene analysis, MicroSeq ver. 1.4.3 (Applied Biosystems) was used.
アラインメント結果は図1、2のとおりであった。図1は、ラクトバチラス・スエビカスCUPV221のgtfプライマー領域(gtf遺伝子中の314〜773位の塩基配列(配列番号6))とそれに対応するラクトバチラス・ブレビスSBC8027由来DNA断片(配列番号5)とのアラインメント結果である。図2は、ラクトバチラス・スエビカスCUPV221のmGTFプライマー領域(gtf遺伝子中の981〜1390位の塩基配列(配列番号8))とそれに対応するラクトバチラス・ブレビスSBC8027由来DNA断片(配列番号7)とのアラインメント結果である。図1、2において、「SEQ−5」、「SEQ−6」、「SEQ−7」、「SEQ−8」は、それぞれ配列番号5〜8の塩基配列を表す。また、配列中の「−」はギャップを表す。図1、2から明らかなように、gtfプライマー領域で約99%、mGTFプライマー領域で約96%の相同性が認められた。 The alignment results were as shown in FIGS. FIG. 1 shows an alignment result of the gtf primer region of Lactobacillus suevicus CUPV221 (base sequence at positions 314 to 773 in the gtf gene (SEQ ID NO: 6)) and the corresponding DNA fragment derived from Lactobacillus brevis SBC8027 (SEQ ID NO: 5). It is. FIG. 2 shows the alignment result of the mGTF primer region (base sequence at positions 981 to 1390 in the gtf gene (SEQ ID NO: 8)) of Lactobacillus suevicus CUPV221 and the corresponding DNA fragment derived from Lactobacillus brevis SBC8027 (SEQ ID NO: 7). It is. 1 and 2, “SEQ-5”, “SEQ-6”, “SEQ-7”, and “SEQ-8” represent the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 5 to 8, respectively. Moreover, “-” in the sequence represents a gap. As is clear from FIGS. 1 and 2, homology of about 99% was observed in the gtf primer region and about 96% in the mGTF primer region.
抗体処理:
ラクトバチラス・ブレビスSBC8027については、MRS寒天プレート上で生育した菌体をスライドガラス上でストレプトコッカス・ニューモニエ(Streptococcus pneumoniae)タイプ37特異的抗血清(Statens Serum Institut)で処理した。ストレプトコッカス・ニューモニエ タイプ37特異的抗血清は、乳酸菌β−グルカンと反応することが知られている。光学顕微鏡で凝集の有無を観察したところ、凝集が観察された(図3)。図3において、(a)は抗体処理前、(b)は抗体処理後の顕微鏡写真である。(b)において、凝集は丸枠内に認められる。
Antibody treatment:
For Lactobacillus brevis SBC8027, cells grown on MRS agar plates were treated with Streptococcus pneumoniae type 37-specific antiserum (Statens Serum Institute) on a slide glass. Streptococcus pneumoniae type 37 specific antiserum is known to react with lactic acid bacteria β-glucan. When the presence or absence of aggregation was observed with an optical microscope, aggregation was observed (FIG. 3). In FIG. 3, (a) is a photomicrograph before antibody treatment, and (b) is a photomicrograph after antibody treatment. In (b), aggregation is observed within the round frame.
以上により、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027はβ−グルカン産生能を有することが判明した。 From the above, it was found that Lactobacillus brevis SBC8027 has β-glucan production ability.
菌体外多糖の精製:
MRS液体培地(4L)にラクトバチラス・ブレビスSBC8027のグリセロール凍結保存液を植菌し、30℃で40〜60時間培養した。培養後、湯浴(60℃)中で20分間加熱処理し、冷却後、8000rpmで30分間遠心分離して菌体及び熱変性物を除去した。得られた液に1N塩酸を加えてpHを3.0まで低下させた後、これを、純水で平衡化したホクエツHS樹脂(味の素ファインテクノ)(カラムサイズ:2.6×50cm)に通液し、非吸着画分を回収した。これを約1Lまで減圧濃縮した後、2倍量のアセトンを加え、デカンテーションにより上清を除去して淡褐色の沈殿を得た。沈殿を純水に溶解後、これを、純水で平衡化したダイヤイオンPA308(三菱化学)(カラムサイズ:2.6×50cm)に通液し、非吸着画分を回収した。次いで、これを、純水で平衡化したダイヤイオンPK208(三菱化学)(カラムサイズ:2.6×50cm)に通液し、非吸着画分を回収した。そして、これを、純水で平衡化したダイヤイオンPA308(三菱化学)(カラムサイズ:2.6×50cm)に再度通液し、非吸着画分を回収した。これを約500mLまで減圧濃縮した後、2倍量のアセトンを加え、デカンテーションにより上清を除去して乳白色の沈殿を得た。沈殿を純水に溶解後、これにアセトンを加えて沈殿を形成させた。得られた沈殿を再度純水に溶解後、減圧濃縮によりアセトンを除去し、凍結乾燥して白色綿状の標品(菌体外多糖)を得た。
Purification of exopolysaccharide:
A glycerol frozen stock solution of Lactobacillus brevis SBC8027 was inoculated into MRS liquid medium (4 L) and cultured at 30 ° C. for 40 to 60 hours. After culturing, the cells were heat-treated in a hot water bath (60 ° C.) for 20 minutes, cooled, and centrifuged at 8000 rpm for 30 minutes to remove cells and heat-denatured products. 1N Hydrochloric acid was added to the resulting solution to lower the pH to 3.0, and then the solution was passed through Hokuetsu HS resin (Ajinomoto Fine Techno) (column size: 2.6 × 50 cm) equilibrated with pure water. The non-adsorbed fraction was collected. This was concentrated under reduced pressure to about 1 L, 2 times the amount of acetone was added, and the supernatant was removed by decantation to obtain a light brown precipitate. After dissolving the precipitate in pure water, this was passed through Diaion PA308 (Mitsubishi Chemical) (column size: 2.6 × 50 cm) equilibrated with pure water, and the non-adsorbed fraction was collected. Next, this was passed through Diaion PK208 (Mitsubishi Chemical) (column size: 2.6 × 50 cm) equilibrated with pure water, and the non-adsorbed fraction was collected. This was again passed through Diaion PA308 (Mitsubishi Chemical) (column size: 2.6 × 50 cm) equilibrated with pure water, and the non-adsorbed fraction was collected. After concentrating this to about 500 mL under reduced pressure, twice as much acetone was added, and the supernatant was removed by decantation to obtain a milky white precipitate. After dissolving the precipitate in pure water, acetone was added thereto to form a precipitate. The obtained precipitate was dissolved again in pure water, then acetone was removed by concentration under reduced pressure, and freeze-dried to obtain a white cotton-like preparation (extracellular polysaccharide).
ゲルろ過クロマトグラフィー:
標品(菌体外多糖)30mgを純水5mLに溶解後、これを、0.25M NaCl水溶液で平衡化したTOYOPEARL HW−65カラム(東ソー)(カラムサイズ:2.6×60cm)に通液し、溶出画分を12mLずつ回収した。各画分について、フェノール硫酸法により全糖量(グルコース換算)を測定し、得られた全糖量を0.9倍して多糖量とした。結果(クロマトグラム)は図4のとおりであった。図4において、横軸の数字は画分の番号(溶出順に1〜20)を表す。
Gel filtration chromatography:
After dissolving 30 mg of the sample (extracellular polysaccharide) in 5 mL of pure water, this was passed through a TOYOPEARL HW-65 column (Tosoh) equilibrated with a 0.25 M NaCl aqueous solution (column size: 2.6 × 60 cm). The elution fractions were collected in 12 mL portions. About each fraction, the total amount of sugars (glucose conversion) was measured by the phenol-sulfuric acid method, and the total amount of sugars obtained was multiplied by 0.9 to obtain the amount of polysaccharides. The results (chromatogram) were as shown in FIG. In FIG. 4, the numbers on the horizontal axis represent fraction numbers (1 to 20 in the order of elution).
単糖組成分析:
画分5〜7を画分A、画分8〜9を画分B、画分10〜11を画分C、画分12〜14を画分Dとして合わせた後、透析により脱塩し、減圧乾固した。これを4M トリフルオロ酢酸(TFA)2mLに溶解してねじ栓付試験管に移した後、オイルバス(100℃)中に3時間静置した。反応液を減圧乾固し、純水を加えた後、再度減圧乾固して十分にTFAを除去した。最終液量が5mLになるように純水に溶解し、これを分析用試料液とした。試料液を還元糖分析HPLCシステム(ポストカラム法)(島津)に供した。結果は図5のとおりであった。画分Aの多糖は、構成単糖のほとんどがグルコースであり、また、分子量(プルラン換算)が数十万Daであったことから、β−グルカンと推定された。
Monosaccharide composition analysis:
Fractions 5-7 were combined as fraction A, fractions 8-9 as fraction B, fractions 10-11 as fraction C, and fractions 12-14 as fraction D, then desalted by dialysis, It was dried under reduced pressure. This was dissolved in 2 mL of 4M trifluoroacetic acid (TFA), transferred to a test tube with a screw cap, and then allowed to stand in an oil bath (100 ° C.) for 3 hours. The reaction solution was dried under reduced pressure, pure water was added, and then again dried under reduced pressure to sufficiently remove TFA. It was dissolved in pure water so that the final liquid volume was 5 mL, and this was used as a sample liquid for analysis. The sample solution was subjected to a reducing sugar analytical HPLC system (post column method) (Shimadzu). The result was as shown in FIG. The polysaccharide of fraction A was estimated to be β-glucan because most of the constituent monosaccharides were glucose and the molecular weight (in terms of pullulan) was several hundred thousand Da.
1H−NMR:
画分Aについて1H−NMRスペクトルを測定した。1H−NMRスペクトルの測定は、溶媒としてD2Oを使用し、JNM−ECA500(日本電子)により行った。結果(スペクトル)は図6のとおりであった。また、4.5〜5.0ppmに観測されたシグナルは下記のとおりであった。これらの結果により、画分Aの多糖がβ−グルカンであることが確認された。
δ(ppm):4.53(d,J=5.5Hz),4.95(d,J=6.5Hz).
1 H-NMR:
A 1 H-NMR spectrum of fraction A was measured. The measurement of 1 H-NMR spectrum was performed by JNM-ECA500 (JEOL) using D 2 O as a solvent. The result (spectrum) was as shown in FIG. Further, signals observed at 4.5 to 5.0 ppm were as follows. These results confirmed that the polysaccharide in fraction A was β-glucan.
δ (ppm): 4.53 (d, J = 5.5 Hz), 4.95 (d, J = 6.5 Hz).
実施例2(豆乳発酵物の製造):
下記組成の豆乳45mLを80mL容ジャム瓶に入れ、80℃で1時間加熱殺菌した。室温まで冷却後、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027のグリセロール凍結保存液を2.6×106cfu/mLになるように添加し、30℃で17時間又は24時間静置培養して豆乳発酵物を得た。
豆乳の組成:
無調整豆乳(マルサンアイ社):83mL
モルトエキス(MALTAX10):5g
ガムシロップ(上島コーヒー社):5g
スクロース:7g
ヨーグルトフレーバー(高砂香料社):0.2mL
Example 2 (production of fermented soymilk):
45 mL of soy milk having the following composition was placed in an 80 mL jam bottle and sterilized by heating at 80 ° C. for 1 hour. After cooling to room temperature, a glycerol cryopreservation solution of Lactobacillus brevis SBC8027 was added to 2.6 × 10 6 cfu / mL, and left to stand at 30 ° C. for 17 or 24 hours to obtain a soymilk fermented product. .
Composition of soy milk:
Unadjusted soymilk (Marsan Eye): 83mL
Malt extract (MALTAX10): 5g
Gum syrup (Kamijima Coffee): 5g
Sucrose: 7g
Yogurt flavor (Takasago Incense): 0.2mL
得られた豆乳発酵物について、生菌数、pH、酸度を測定した。なお、生菌数の測定は次のように行った。豆乳発酵物1gを滅菌容器に入れ、滅菌生理食塩水9mLを加えて懸濁した後、滅菌生理食塩水で1×104倍(17時間の発酵物)又は1×105倍(24時間の発酵物)に希釈した。そして、希釈液0.1mLをMRS寒天プレートに塗布し、30℃、アネロパック嫌気下で2日間培養を行った後、出現したコロニー数を計測した。 About the obtained soymilk fermented product, viable cell count, pH, and acidity were measured. The number of viable bacteria was measured as follows. 1 g of soy milk fermented product is put in a sterile container, 9 mL of sterile physiological saline is added and suspended, and then 1 × 10 4 times (17 hours fermented product) or 1 × 10 5 times (24 hours of fermented product) with sterile physiological saline. Diluted to fermented product). Then, 0.1 mL of the diluted solution was applied to the MRS agar plate, cultured for 2 days under anaerobac anaerobic conditions at 30 ° C., and the number of colonies that appeared was counted.
結果は表1のとおりであった。
実施例3(豆乳発酵物の製造):
下記組成の豆乳45mLを80mL容ジャム瓶に入れ、80℃で1時間加熱殺菌した。室温まで冷却後、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027のグリセロール凍結保存液を2.6×106cfu/mLになるように添加し、30℃で24時間静置培養して豆乳発酵物を得た。
豆乳の組成:
無調整豆乳(マルサンアイ社):83mL
モルトエキス(MALTAX10):5g
ガムシロップ(上島コーヒー社):5g
スクロース:7g
ヨーグルトフレーバー(高砂香料社):0.2mL
Example 3 (production of fermented soymilk):
45 mL of soy milk having the following composition was placed in an 80 mL jam bottle and sterilized by heating at 80 ° C. for 1 hour. After cooling to room temperature, a glycerol cryopreservation solution of Lactobacillus brevis SBC8027 was added to 2.6 × 10 6 cfu / mL, and the mixture was allowed to stand at 30 ° C. for 24 hours to obtain a fermented soymilk.
Composition of soy milk:
Unadjusted soymilk (Marsan Eye): 83mL
Malt extract (MALTAX10): 5g
Gum syrup (Kamijima Coffee): 5g
Sucrose: 7g
Yogurt flavor (Takasago Incense): 0.2mL
得られた豆乳発酵物及び市販のヨーグルト(カスピ海ヨーグルト(フジッコ))の粘度を25℃の温度下、回転円筒式粘度計(ビスコメータVS−10(リオン))を用いて下記条件で測定したところ、豆乳発酵物では8000mPa・s、カスピ海ヨーグルトでは5000mPa・sであった。カスピ海ヨーグルトは、ラクトコッカス・クレモリス(Lactococcus cremoris)等の乳酸菌で牛乳を発酵させて得られるヨーグルトである。
粘度測定の条件:
ロータ回転速度:60rpm
ロータサイズ:2.7cm(直径)×4.5cm
外筒サイズ:4.8cm(直径)×6.5cm
When the viscosity of the obtained soymilk fermented product and commercially available yogurt (Caspian Sea yogurt (Fujikko)) was measured at 25 ° C. using a rotating cylindrical viscometer (Viscometer VS-10 (Lion)) under the following conditions: It was 8000 mPa · s for fermented soymilk and 5000 mPa · s for Caspian Sea yogurt. Caspian Sea yogurt is a yogurt obtained by fermenting milk with lactic acid bacteria such as Lactococcus cremoris.
Viscosity measurement conditions:
Rotor rotation speed: 60rpm
Rotor size: 2.7cm (diameter) x 4.5cm
Outer cylinder size: 4.8cm (diameter) x 6.5cm
また、豆乳発酵物及びカスピ海ヨーグルトについて、動的粘弾性測定装置(VAR−50)を用いて、下記条件でせん断速度を変化させながら粘度を測定した。いずれのサンプルも測定前にビーカー中で攪拌した。
粘度測定の条件:
サンプル量:2g
測定モード:一定速度モード
測定温度:25℃±0.2℃
MSジオメトリー:コーン型40mm−4°
せん断速度(s−1):1.00E+01〜8.00E+01
せん断速度上昇タイプ:リニア上昇
ディレイタイム:10秒
積算時間:10秒
測定点数:15点
レギュレータ強度:40%
Moreover, about the fermented soybean milk and the Caspian Sea yogurt, the viscosity was measured using a dynamic viscoelasticity measuring apparatus (VAR-50) while changing the shear rate under the following conditions. All samples were stirred in a beaker before measurement.
Viscosity measurement conditions:
Sample amount: 2g
Measurement mode: Constant speed mode Measurement temperature: 25 ℃ ± 0.2 ℃
MS geometry: cone type 40mm-4 °
Shear rate (s −1 ): 1.00E + 01 to 8.00E + 01
Shear rate increase type: Linear increase Delay time: 10 seconds Integration time: 10 seconds Number of measurement points: 15 points Regulator strength: 40%
結果は図7及び表2のとおりであった。図7及び表2において、「SBC8027」は、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物を表す。また、表中、η10、η50はそれぞれせん断速度10s−1、50s−1での粘度を表す。
以上の結果から明らかなように、粘度はラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物のほうが高かったが、せん断速度を変化させた際の粘度変化については両者に大きな差異が見られなかった。実際、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物では乳清の分離が見られず、カスピ海ヨーグルトよりも粘稠で糸引き性も強かった。また、カスピ海ヨーグルトと同様に、口に入れたときに崩れにくく、飲み込むまで口中でなめらかさが維持された。 As is clear from the above results, the viscosity of Lactobacillus brevis SBC8027 soymilk fermented product was higher, but there was no significant difference between the two in terms of viscosity change when the shear rate was changed. In fact, in the soymilk fermented product of Lactobacillus brevis SBC8027, no separation of whey was observed, and it was more viscous and stronger in stringiness than Caspian Sea yogurt. In addition, like Caspian Sea yogurt, it was hard to collapse when put in the mouth, and maintained smoothness in the mouth until swallowed.
実施例4(豆乳発酵物の製造):
ラクトバチラス・ブレビスSBC8027を用いて、実施例3と同様に豆乳発酵物を製造した。また、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の代わりにラクトバチラス・ブレビスに属するβ−グルカン非産生乳酸菌(以下、本実施例において「乳酸菌X」という。)を用いて、実施例3と同様に豆乳発酵物を製造した。
Example 4 (Production of fermented soybean milk):
Fermented soymilk was produced in the same manner as in Example 3 using Lactobacillus brevis SBC8027. Further, a soymilk fermented product was produced in the same manner as in Example 3 using a β-glucan non-producing lactic acid bacterium belonging to Lactobacillus brevis (hereinafter referred to as “lactic acid bacterium X” in this example) instead of Lactobacillus brevis SBC8027. .
得られた2種の豆乳発酵物の粘度を25℃の温度下、回転円筒式粘度計(ビスコメータVS−10(リオン))を用いて下記条件で測定したところ、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物では6500mPa・s、乳酸菌Xの豆乳発酵物では2800mPa・sであった。
粘度測定の条件:
ロータ回転速度:60rpm
ロータサイズ:2.7cm(直径)×4.5cm
外筒サイズ:4.8cm(直径)×6.5cm
The viscosity of the two soymilk fermented products obtained was measured under the following conditions using a rotating cylindrical viscometer (Viscometer VS-10 (Lion)) at a temperature of 25 ° C., and the soymilk fermented product of Lactobacillus brevis SBC8027 Was 6500 mPa · s, and the soymilk fermented product of lactic acid bacteria X was 2800 mPa · s.
Viscosity measurement conditions:
Rotor rotation speed: 60rpm
Rotor size: 2.7cm (diameter) x 4.5cm
Outer cylinder size: 4.8cm (diameter) x 6.5cm
また、2種の豆乳発酵物について、実施例3と同様にせん断速度を変化させながら粘度を測定した。さらに、市販の豆乳発酵物(豆乳グルト(マルサンアイ))についても、同様にせん断速度を変化させながら粘度を測定した。豆乳グルトは、ラクトバチルス・デルブレッキイ(Lactobacillus delbrueckii)に属する乳酸菌(菌体外多糖産生能を有するが、β−グルカン産生能は有しない。)を用いて製造されている豆乳発酵物である。 Moreover, about 2 types of fermented soybean milk, the viscosity was measured changing the shear rate similarly to Example 3. FIG. Furthermore, the viscosity of the commercially available soymilk fermented product (soymilk glut (Marsan Eye)) was also measured while changing the shear rate. Soymilk Glut is a fermented soymilk produced using lactic acid bacteria belonging to Lactobacillus delbrueckii (having an extracellular polysaccharide-producing ability, but not β-glucan-producing ability).
結果は図8、9及び表3のとおりであった。図8、9及び表3において、「SBC8027」、「乳酸菌X」は、それぞれラクトバチラス・ブレビスSBC8027、乳酸菌Xの豆乳発酵物を表す。また、表中、η10、η50はそれぞれせん断速度10s−1、50s−1での粘度を表す。ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物に関する図8、9のデータは同一である。
以上の結果から明らかなように、粘度は、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物のほうが乳酸菌Xの豆乳発酵物や市販の豆乳発酵物より高かった。また、せん断速度を変化させた際の粘度変化もラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物のほうが小さく、特にせん断速度10〜20s−1で顕著であった。実際、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物は、乳酸菌Xの豆乳発酵物や市販の豆乳発酵物よりも粘稠で糸引き性も強かった。また、乳酸菌Xの豆乳発酵物や市販の豆乳発酵物は、口に入れたときに崩れやすかったが、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027の豆乳発酵物は、口に入れたときに崩れにくく、飲み込むまで口中でなめらかさが維持された。 As is clear from the above results, the soymilk fermented product of Lactobacillus brevis SBC8027 was higher in viscosity than the soymilk fermented product of lactic acid bacteria X or a commercially available soymilk fermented product. In addition, the change in viscosity when the shear rate was changed was smaller in the fermented soymilk of Lactobacillus brevis SBC8027, particularly at a shear rate of 10 to 20 s −1 . In fact, the soymilk fermented product of Lactobacillus brevis SBC8027 was more viscous and stronger in stringiness than the soymilk fermented product of lactic acid bacteria X or a commercially available soymilk fermented product. In addition, fermented soymilk of lactic acid bacteria X and commercially available soymilk fermented products were easy to collapse when put in the mouth, but fermented soymilk of Lactobacillus brevis SBC8027 is difficult to collapse when put in the mouth and is swallowed until swallowed. The smoothness was maintained.
実施例5(豆乳発酵物の製造):
ラクトバチラス・ブレビスSBC8027を用いて実施例3と同様に豆乳発酵物を製造した。発酵前の豆乳及び発酵後の豆乳発酵物について、3種の遊離アミノ酸(アルギニン(Arg)、オルニチン(Orn)及びシトルリン(Cit))量を測定した。
Example 5 (production of fermented soymilk):
Fermented soymilk was produced in the same manner as in Example 3 using Lactobacillus brevis SBC8027. Three kinds of free amino acids (arginine (Arg), ornithine (Orn), and citrulline (Cit)) were measured for the soymilk before fermentation and the fermented soymilk after fermentation.
結果は表4のとおりであった。
表4から明らかなように、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027を用いた発酵により豆乳中のアルギニンは100%消失し、代わってオルニチン及びシトルリンが生成された(転換率:90%)。 As is apparent from Table 4, arginine in soy milk disappeared by fermentation using Lactobacillus brevis SBC8027, and ornithine and citrulline were produced instead (conversion rate: 90%).
実施例6(豆乳発酵物の製造):
豆乳にアルギニン塩酸塩を0.1%添加した後、この豆乳を用いて実施例5と同様に豆乳発酵物を製造した。発酵前の豆乳及び発酵後の豆乳発酵物について、3種の遊離アミノ酸(アルギニン(Arg)、オルニチン(Orn)及びシトルリン(Cit))量を測定した。
Example 6 (Production of fermented soybean milk):
After adding 0.1% of arginine hydrochloride to the soy milk, a fermented soy milk was produced in the same manner as in Example 5 using this soy milk. Three kinds of free amino acids (arginine (Arg), ornithine (Orn), and citrulline (Cit)) were measured for the soymilk before fermentation and the fermented soymilk after fermentation.
結果は表5のとおりであった。
表5から明らかなように、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027を用いた発酵により豆乳中のアルギニンは3分2程度消失し、代わってオルニチン及びシトルリンが生成された(転換率:55%)。 As is apparent from Table 5, arginine in soy milk disappeared by about 3 minutes and 2 by fermentation using Lactobacillus brevis SBC8027, and ornithine and citrulline were generated instead (conversion rate: 55%).
実施例5、6により、ラクトバチラス・ブレビスSBC8027はアルギニンをオルニチン及びシトルリンに変換する能力を有すること、及びそのような乳酸菌を用いて豆乳の発酵を行うことにより、オルニチン及びシトルリンを含有する豆乳発酵物が得られることが確認された。また、そのような乳酸菌を使用する場合、豆乳にアルギニンを添加して発酵を行うことにより、オルニチン及びシトルリンをより多く含有する豆乳発酵物が得られることが確認された。 According to Examples 5 and 6, Lactobacillus brevis SBC8027 has the ability to convert arginine to ornithine and citrulline, and fermenting soy milk using such lactic acid bacteria, soy milk fermented product containing ornithine and citrulline It was confirmed that Moreover, when using such lactic acid bacteria, it was confirmed that fermented soymilk containing more ornithine and citrulline is obtained by adding arginine to soymilk and performing fermentation.
Claims (3)
前記乳酸菌はラクトバチラス・ブレビスSBC8027(受託番号:FERM BP−10630)である、方法。 A method for producing a fermented soymilk comprising a step of fermenting soymilk using lactic acid bacteria having β-glucan producing ability ,
The method wherein the lactic acid bacterium is Lactobacillus brevis SBC8027 (Accession Number: FERM BP-10630) .
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Hemmaratchirakul et al. | Production of galactooligosaccharide by [Beta]-galactosidase from Lactobacillus pentosus var. plantarum BFP32 |
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