JP5612239B2 - Htlvエンベロープのレセプターとしてのglut1及びその使用 - Google Patents
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Description
−GLUT1に対する特異的な結合できることにより選択される有効な化合物の以下のためのスクリーニングであり、
*個体のPTLV感染に関連する病態の予防又は治療のための化合物の調製、
*細胞表面上のGLUT1の過剰発現に関連した病態の予防又は治療のための化合物の調製、
*細胞表面のGLUT1の試験管内での検出、
−PTLV若しくはその変異体、又はPTLVエンベロープタンパク質若しくはそのフラグメントの検出、濃縮、及び/又は精製、であり
−PTLV、例えば、HTLV−1、HTLV−2、STLV−1、STLV−2、STLV−3、又はその変異株による個体又は動物感染に関連する病態、あるいはPTLVSU−関連配列の個体又は動物での存在に関連する病態の、予防又は治療のための薬剤の調製、
−腫瘍マーカーとして使用される場合の、試験管内での癌の診断、のための使用である。
−配列番号25: NAPQKVIEEFY
−配列番号26: NQTWVHRYGESILPTTLTTLWS
−配列番号27: KSFEMLILGR
−配列番号28: DSIMGNKDL
−配列番号29: YSTSIFEKAGVQQP
−配列番号30: EQLPWMSYLS
−配列番号31: QYVEQLC
−配列番号32: IVGMCFQYVEQLC
−アンドロゲン性ステロイド(36: May JM, Danzo BJ. Photolabeling of the human erythrocyte glucose carrier with androgenic steroids. Biochim Biophys Acta. 1988 Aug 18;943(2):199−210)、
−サイトカラシンB(cytochalasin B)、フォルスコリン(forskolin)ジピリダモール(dipyridamole)、イソブチルメチルキサンチン(isobutylmethylxanthine)(20: Hellwig B, Joost HG. Differentiation of erythrocyte−(GLUT1), liver−(GLUT2), and adipocyte−type (GLUT4) glucose transporters by binding of the inhibitory ligands cytochalasin B, forskolin, dipyridamole, and isobutylmethylxanthine. Mol Pharmacol. 1991 Sep;40(3):383−9)、
−エタノール(Krauss SW, Diamond I, Gordon AS. Selective inhibition by ethanol of the type 1 facilitative glucose transporter (GLUT1). Mol Pharmacol. 1994 Jun;45(6):1281−6)、
−ゲニステイン(genistein)(Vera JC, Reyes AM, Carcamo JG, Velasquez FV, Rivas CI, Zhang RH, Strobel P, Iribarren R, Scher HI, Slebe JC, et al. Genistein is a natural inhibitor of hexose and dehydroascorbic acid transport through the glucose transporter, GLUT1. J Biol Chem. 1996 Apr 12;271(15):8719−24)、
−カドミウム(Lachaal M, Liu H, Kim S, Spangler RA, Jung CY. Cadmium increases GLUT1 substrate binding affinity in vitro while reducing its cytochalasin B binding affinity. Biochemistry. 1996 Nov 26;35 (47):14958−62)、
−バルビツレート(el−Barbary A, Fenstermacher JD, Haspel HC. Barbiturate inhibition of GLUT−1 mediated hexose transport in human erythrocytes exhibits substrate dependence for equilibrium exchange but not unidirectional sugar flux. Biochemistry. 1996 Dec 3;35(48):15222−7)、
−デヒドロアスコルビン酸(dehydroascorbic acid)(Rumsey SC, Kwon O, Xu GW, Burant CF, Simpson I, Levine M. Glucose transporter isoforms GLUT1 and GLUT3 transport dehydroascorbic acid. J Biol Chem. 1997 Jul 25;272(30):18982−9)、
−トリサイクリック抗うつ剤(tricyclic antidepressants) (Pinkofsky HB, Dwyer DS, Bradley RJ. The inhibition of GLUT1 glucose transport and cytochalasin B binding activity by tricyclic antidepressants. Life Sci. 2000;66(3):271−8.)、
−エストラジオール(oestradiol)、ゲニステイン(genistein)及び抗エストゲン(the anti−oestrogens)、ファスロデックス(faslodex:ICI 182780)、タモキフェン(tamoxifen)(Afzal I, Cunningham P, Naftalin RJ. Interactions of ATP, oestradiol, genistein and the anti−oestrogens, faslodex (ICI 182780) and tamoxifen, with the human erythrocyte glucose transporter, GLUT1. Biochem J. 2002 Aug 1;365(Pt 3):707−19)、
−ペルオキシソームプロリフレーター活性レセプターのガンマアゴニスト(gamma agonists of peroxisome proliferator−activated receptors:PPAR)、例えば、チアゾリジンジオン(thiazolidinedione) 〔トログリタゾン(troglitazone)、ピオグリタゾン(pioglitazone)又はシグリタゾン(siglitazone) 〕("TZDs modify astrocyte metabolism and mitochondrial function, which could be beneficial in neurological conditions where glucose availability is reduced" from Dello Russo C, Gavrilyuk V, Weinberg G, Almeida A, Bolanos JP, Palmer J, Pelligrino D, Galea E, Feinstein DL.. Peroxisome proliferator−activated receptor gamma thiazolidinedione agonists increase glucose metabolism in astrocytes. J Biol Chem. 2003 Feb 21;278(8):5828−36)の化合物の使用に関する。
−癌、例えば:
.扁平上皮癌(Kunkel M, Reichert TE, Benz P, Lehr HA, Jeong JH, Wieand S, Bartenstein P, Wagner W, Whiteside TL. Cancer. 2003 Feb 15;97(4):1015−24)
.下咽頭癌(Mineta H, Miura K, Takebayashi S, Misawa K, Araki K, Misawa Y, Ueda Y. Anticancer Res. 2002 Nov−Dec;22(6B):3489−94)、
.乳癌(Brown RS, Wahl RL.Overexpression of Glut−1 glucose transporter in human breast cancer. An immunohistochemical study. Cancer. 1993 Nov 15;72(10):2979−85)、
.子宮頚癌(cervical carinoma) (Mendez LE, Manci N, Cantuaria G, Gomez−Marin O, Penalver M, Braunschweiger P, Nadji M. Expression of glucose transporter−1 in cervical cancer and its precursors. Gynecol Oncol. 2002 Aug;86(2):138−43)、
.卵巣癌(Cantuaria G, Fagotti A, Ferrandina G, Magalhaes A, Nadji M, Angioli R, Penalver M, Mancuso S, Scambia G.GLUT−1 expression in ovarian carcinoma: association with survival and response to chemotherapy. Cancer. 2001 Sep 1;92(5):1144−50)、
.肺癌(Ito T, Noguchi Y, Satoh S, Hayashi H, Inayama Y, Kitamura H. Expression of facilitative glucose transporter isoforms in lung carcinomas: its relation to histologic type, differentiation grade, and tumor stage. Mod Pathol. 1998 May;11(5):437−43. Younes M, Brown RW, Stephenson M, Gondo M, Cagle PT. Overexpression of Glut1 and Glut3 in stage I nonsmall cell lung carcinoma is associated with poor survival. Cancer. 1997 Sep 15;80(6):1046−51)、
.膵癌(Reske SN, Grillenberger KG, Glatting G, Port M, Hildebrandt M, Gansauge F, Beger HG. Overexpression of glucose transporter 1 and increased FDG uptake in pancreatic carcinoma. J Nucl Med. 1997 Sep;38(9):1344−8)、
.インスリノーマ(1: Boden G, Murer E, Mozzoli M. Glucose transporter proteins in human insulinoma. Ann Intern Med. 1994 Jul 15;121(2):109−12、
−炎症性状態
−免疫病又は自己免疫病、例えば、
.自己免疫性心筋炎(Tokita N, Hasegawa S, Tsujimura E, Yutani K, Izumi T, Nishimura T. Serial changes in 14C−deoxyglucose and 201Tl uptake in autoimmune myocarditis in rats. J Nucl Med. 2001 Feb;42(2):285−91)、
.CD28T細胞活性化のフレームの(in the frame of)免疫病又は自己免疫病 (Frauwirth KA, Riley JL, Harris MH, Parry RV, Rathmell JC, Plas DR, Elstrom RL, June CH, Thompson CB. The CD28 signaling pathway regulates glucose metabolism. Immunity. 2002 Jun;16(6):769−77)、
.免疫調節のフレーム(in the frame of)の免疫病又は自己免疫病(Moriguchi S, Kato M, Sakai K, Yamamoto S, Shimizu E. Decreased mitogen response of splenic lymphocytes in obese Zucker rats is associated with the decreased expression of glucose transporter 1 (GLUT−1). Am J Clin Nutr. 1998 Jun;67(6):1124−9)、
−中枢神経系の障害、例えば、進行性グルコース輸送担体タンパク1型(GLUT1)欠乏症候群(review in Klepper J, Voit T. Eur J Pediatr. 2002 Jun;161(6):295−304.)である、化合物の使用に関する。
−PTLVのエンベロープタンパク質に相当するポリペプチド又はGLUT1に結合することができるフラグメント若しくはそれ由来の配列、
−グルコース又は誘導体、例えば、ガラクトース、2−フッ化デオキシグルコース、2−デオキシグルコース、3−0−メチルグルコース、
−前記アンドロゲン性ステロイド、サイトケラシンB(cytochalasin B)、フォルスコリン(forskolin)、ジピリダモール(dipyridamole)、イソブチルメチルキサンチン(isobutylmethylxanthine)エタノール、ゲニステイン(genistein)、カドミウム、バルビツレート(barbiturate)デヒドロアスコルビン酸(dehydroascorbic acid)、トリサイクリック抗うつ剤(tricyclic antidepressants)エストラジオール(oestradiol)抗エストゲン(anti−oestrogens)ファスロデックス(faslodex:ICI 182780)、タモキフェン(tamoxifen)、ペルオキシソームプロリフレーター活性レセプターのガンマアゴニスト(gamma agonists of peroxisome proliferator−activated receptors:PPAR)、例えば、チアゾリジンジオン(thiazolidinedione)、トログリタゾン(troglitazone)、ピオグリタゾン(pioglitazone)又はシグリタゾン(siglitazone)である、化合物の使用に関する。
−配列番号4に対応するHTLV―1、又は配列番号6に対応するHTLV―2、又は配列番号8に対応するSTLV―1、又は配列番号10に対応するSTLV―2、又は配列番号12に対応するSTLV―3のエンベロープタンパク質、
−前記PTLVのエンベロープタンパク質、例えば、配列番号4、6、8、10、12の、N末端の1〜90の位置、又は75〜90の位置に位置するアミノ酸によって、及びC末端の135〜245の位置、又は135〜150の位置に位置するアミノ酸によって区切られるポリペプチドに対応するPTLVのエンベロープタンパク質のフラグメント、
−以下のポリペプチドに対応する、PTLVのエンベロープタンパク質のフラグメント:
*配列番号4に対応するHTLV−1のMT−2株のエンベロープタンパク質の、N末端の83〜89に位置するアミノ酸によって、及びC末端の139〜145に位置するアミノ酸によって区切られる前記ポリペプチド、
*配列番号6に対応するHTLV−2のNRA株のエンベロープタンパク質の、N末端の79〜85に位置するアミノ酸によって、及びC末端の135〜141に位置するアミノ酸によって区切られる前記ポリペプチド、
*配列番号8に対応するSTLV−1のエンベロープタンパク質の、N末端の83〜89に位置するアミノ酸によって、及びC末端の139〜145に位置するアミノ酸によって区切られる前記ポリペプチド、
*配列番号10に対応するSTLV−2のエンベロープタンパク質の、N末端の79〜85に位置するアミノ酸によって、及びC末端の135〜141に位置するアミノ酸によって区切られる前記ポリペプチド、
*配列番号12に対応するSTLV−3のエンベロープタンパク質の、N末端の82〜88に位置するアミノ酸によって、及びC末端の138〜144に位置するアミノ酸によって区切られる前記ポリペプチド、
*以下の配列番号14の配列を有する、HTLV−1の変異株のエンベロープタンパク質に対応するポリペプチド、
I K K P N P N G G G Y Y L A S Y S D
P C S L K C P Y L G C Q S W T C P Y
T G A V S S P Y W K F Q Q D V
*以下の配列番号16の配列を有する、HTLV−1の変異株のエンベロープタンパク質に対応するポリペプチド、
V K K P N R N G G G Y Y L A S Y S D
P C S L K C P Y L G C Q S W T C P Y
T G A V S S P Y W K F Q Q D V
*以下の配列番号18の配列を有する、HTLV−1の変異株のエンベロープタンパク質に対応するポリペプチド、
I K K P N R N G G G Y Y L A S Y S D
P C S L K C P Y L G C Q S W T C P Y
T G A V S S P Y W K F Q Q D V
*以下の配列番号20の配列を有するHTLV−1の変異株のエンベロープタンパク質に対応するポリペプチド、
I K K P N R N G G G Y Y L A S Y S D
P C S L K C P Y L G C Q S W T C P Y
T G P V S S P Y W K F Q Q D V
*以下の配列番号22の配列を有するHTLV−1の変異株のエンベロープタンパク質に対応するポリペプチド、
I K K P N R N G G G Y H S A S Y S D P
C S L K C P Y L G C Q S W T C P Y A G
A V S S P Y W K F Q Q D V N F T Q E V
*以下の配列番号24の配列を有するHTLV−2の変異株のエンベロープタンパク質に対応するポリペプチド、
I R K P N R Q G L G Y Y S P S Y N D
P C S L Q C P Y L G S Q S W T C P Y
T A P V S T P S W N F H S D V。
−固形腫瘍、例えば、脳腫瘍、扁平上皮癌、下咽頭癌、乳癌、頚癌、卵巣癌、膵癌、インスリノーマ、
−炎症状態、例えば、多発性硬化症、関節リウマチ、
−免疫病又は自己免疫病、例えば、自己免疫性心筋炎、又はCD28T細胞活性化のフレームの(in the frame of)免疫病又は自己免疫病、又は免疫調節のフレームの(in the frame of)免疫病又は自己免疫病、又は全身性紅斑性狼瘡、
−中枢神経の障害、例えば、進行性グルコース輸送担体タンパク1型(GLUT1)欠乏症候群、
である前記GLUT1結合ポリぺプチドの使用に関する。
−個体からの生物学的検体(例えば、腫瘍バイオプシー検体、又は細胞、又は組織検体、又は疑似異常GLUT1発現プロファイルを有する検体)を化合物、そしてより具体的には前記定義されたGLUT1結合性ポリペプチドと接触させる工程であって、前記化合物又はGLUT1結合性ポリペプチドが場合により標識され、又は標識分子によって認識されることができるものである、工程
−生物学的な検体に含まれる細胞に結合した前記化合物、又はGLUT1結合性ポリペプチドの濃度を決定し、そして健常人からの生物学的な検体に含まれる細胞に対する前記化合物、又は前記GLUT1結合性ポリペプチドの結合の濃度と比較する工程。
−非変異ポリペプチドに特異的に結合することのできる化合物のスクリーニングのフレームの(in the frame of)陰性対照として、そのため、PTLVの個体の感染に関連する病態の予防又は治療のための薬剤の調製のフレームで(in the frame of)信頼され使用されるものであり、
−個体のPTLV感染に関連する病態の予防又は治療のための薬剤の調製のための、変異ポリペプチドの使用に関する。
−配列番号4に対応するHTLV−1のエンベロープタンパク質の中の106の位置のD、及び/又は114の位置のY、
−配列番号6に対応するHTLV−2のエンベロープタンパク質の中の102の位置のD、及び/又は110の位置のY、
−配列番号8に対応するSTLV−1のエンベロープタンパク質の中の106の位置のD、及び/又は114の位置のY、
−配列番号10に対応するSTLV−2のエンベロープタンパク質の中の102の位置のD、及び/又は110の位置のY、
−配列番号12に対応するSTLV−3のエンベロープタンパク質の中の105の位置のD、及び/又は113の位置のY、
−配列番号14、16、18、20、22、及び24に対応するポリペプチドの18の位置のD、及び/又は26の位置のY、
が、野生型又は野生型でない他のアミノ酸、例えば、前記のD及び/又はA残基がAに置換された前記ポリペプチドに相当する変異ポリペプチドの使用に関する。
−配列番号4に対応するHTLV−1のエンベロープタンパク質の中の106の位置のD、及び/又は114の位置のY、
−配列番号6に対応するHTLV−2のエンベロープタンパク質の中の102の位置のD、及び/又は110の位置のY、
−配列番号12に対応するSTLV−3のエンベロープタンパク質の中の105の位置のD、及び/又は113の位置のY、
−配列番号14、16、18、20、22、及び24に対応するポリペプチドの18の位置のD、及び/又は26の位置のY、
が、野生型の又は野生型でない他のアミノ酸、例えば、前記のD及び/又はA残基がAに置換された、前記ポリペプチドに相当する変異ポリペプチドを含む医薬組成物に関する。
*個体のPTLV感染に関連する病態の予防又は治療のための薬剤の調製、
*細胞表面のGLUT1の過剰発現に関連する病態の予防又は治療のための薬剤の調製、
*細胞表面のGLUT1の試験管内での検出、
のためであって、前記方法が:
−配列番号2で表わされるGLUT1、又はそれ由来のフラグメント、若しくは配列であって、前記フラグメント又は由来配列が霊長類T細胞白血病ウイルス(PTLV)のエンベロープタンパク質と結合可能なフラグメント又は由来配列、と接触させる工程
−GLUT1又はそれ由来のフラグメント若しくは配列に特異的に結合可能な化合物を、例えば、前期方法に従って、選択する工程
を含む化合物のスクリーニング方法に関する。
−個体からの、生物学的検体(例えば、生検材料、又は細胞、又は組織検体、又は擬似異常GLUT1発現を示す検体)及び化合物、又はより具体的には前記で定義されたGLUT1に対する特異的な結合によって選択されたポリペプチドであって、前記化合物又はポリペプチドが、場合により標識されるか、又は標識分子に認識されることができるものとを、接触させる工程、
−生物学的検体に含まれる細胞に結合した前記化合物又はポリペプチドの濃度を決定し、そして、健常人からの生物学的検体に含まれる細胞に対して結合している前記化合物の濃度と比較する工程、
を含むことを特徴とする診断方法。
通常、培養液中の細胞増殖は、培地pH指示薬のフェノールレッドが存在下するために、赤から黄色への色調の変化で示される環境の酸性化を伴って起こる。高度にシンシチウムを形成するHTLV−1及びHTLV−2のエンベロープ又はMLV ENVにHTLV−1 RBDを組み入れたシンシチウム形成を起こさないキメラエンベロープ(H183FEnv)のいずれのトランスフェクションによっても、培養液は容易には酸性化せず、トランスフェクション後、数日間赤の色調を保っていた(図1a)。更に、またGFP、HAタグ又はrFcタグとの不完全な可溶性HTLV RBD融合タンパク質の発現も、培地の酸性化を阻害した。対照的に、HTLV RBDを有さない、VSV−G及びエボラ糖タンパク質はもちろんであるが、異なるMLVグループ、ネコ、ブタ、レンチウイルス、及びジャグジエクト(Jaagsiekte)レトロウイルスEnvsのエンベロープを含むエンベロープ構築物は、この効果を示さなかった。(i)シンシチウムを形成する広い宿主域を有するMLV ENV(Rペプチドを欠失しているA−MLV)(図1a)を発現している細胞では、培地の酸性化が、観察されたが、(ii)HTLV ENV介在性のシンシチウム形成に抵抗性の細胞(NIH3T3 TK− 細胞)でHTLV ENVを発現させた場合は、培地の酸性化が、阻害されることから[Kim, 2003]、HTLV−1又はHTLV−2 ENV発現に関連して酸性化が起こらないのは、それらのシンシチウム活性の間接的な関与ではなかった。
HTLVエンベロープレセプターの結合及び細胞外の酸性化の低下及び乳酸蓄積の間に直接的な関連が存在するかを調べるために、我々は、レセプター結合能機能が正常でないHTLV−1 RBD(H1RBD)変異株の作成を試みた。この目的のために、霊長類Tリンパ球向性ウイルスで高度に保存されたH1RBDの2つの異なる位置、D106及びY114に、一個のアラニンの置換が導入された変異株を得た。D106A及びY114AのRBDのいずれの変異株ともに、野生株H1RDBと同じように効率的に発現され分泌されたけれども(図2a)、FACS解析による検出では、それらのHTLVレセプターに対する結合は、著しく減少(D106A)又は検出できなかった(Y114A)。更に、結合能のないY114A RBD変異体を発現している細胞では、HTLVレセプターに関連している乳酸代謝の変化である、乳酸蓄積は減少せず、D106 RBDを含んでいる細胞では最小の減少であった(図2c)。同じ対立遺伝子を持つ、H2RBDで、同じような結果が見られた。このような結果は、乳酸関連代謝の変化及びHTLV ENVレセプター結合の直接的に関連していることを支持している。
細胞外乳酸蓄積の減少に加えて、HTLV RBDの発現は、乳酸輸送の上流の代謝変化である細胞内の乳酸濃度の減少も引き起こす。細胞培養における乳酸の蓄積は、嫌気的解糖によるグルコースの分解に由来している。そのため、我々は、HTLV RBDの発現において観察される乳酸蓄積の減少が、グルコース代謝と関連するかどうかを評価した。我々は、細胞タンパク質の濃度で補正したグルコース消費を測定した。H183FEnv全長エンベロープ又はH1RBDのようなHTLV RBDが発現している細胞のグルコース消費は、対照細胞と比較すると顕著に減少しており(図3a)、そしてこの減少は、早くもトランスフェクション8時間後には検出可能であった。グルコ−ス消費の減少が、細胞表面へのグルコース輸送の減少によるものであるかを調べるために、我々は、対照細胞及びHTLV RBDを発現している細胞の、2−デオキシグルコース及びフルクトースの摂取を測定した(図3b)。我々は、HTLV−1又はHTLV−2 RBDのいずれかを発現していることにより、約4倍の2−デオキシグルコースの減少が観察されたが、A−MLV RBDは軽微な影響のみであった。グルコース摂取の阻害剤である、サイトケラシンB及びフロテリン(phloterin)もまた、グルコースの摂取を阻害した。これらの結果は、3−O−メチルグルコースの輸送ともあてはまる。HTLV−1、又はHTLV−2 RBDの存在している、同じ細胞でのフルクトースの摂取は、変化は見られなかったが、A−MLV RBDでは、わずかな減少を示した。次に、我々は、付着性のヒト293細胞及び浮遊性のジャーカット(Jurkat)T細胞両方において、HTLVレセプターを利用する上において、グルコ−ス欠乏の効果を調べた。グルコース欠乏下で細胞を一昼夜培養することによって、H1RBDの結合は、いずれの細胞でも確実に2倍に増加した。このグルコース欠乏の効果は、HTLVに特異的であって、広指向性nMLV RBD(ARBD)の結合は、わずかに影響を受けたのみであった(図3c)。この現象は、一般的な代謝物の輸送のフィードバック機構、基質が欠乏することにより細胞表面上の利用可能な輸送担体が増加することを思い出させる[Martineau, 1972]。
HTLVエンベロープがグルコース輸送担体に直接、結合することによって、グルコースの消費を阻害するという単純なモデルにより、前記の代謝の効果を説明することが可能である。異なるグルコース輸送担体候補の評価によって、GLUT−1が、HTLVレセプターのすべての公知の性質を網羅している唯一のもののようである。確かに、GLUT−1の発現は、グルコース欠乏によって増加し、そしてすべての脊椎動物細胞でグルコースの輸送担体である[Mueckler, 1985]。一方で、フルクトースはGLUT−5によって、輸送される。更に、GLUT−1は休止期のプライマリーT細胞には発現しておらず、そしてその発現は、T細胞の活性化によって誘導されるが[Rathmell, 2000; Chakrabarti, 1994]、その動態は、我々がHTLVレセプターで報告した動態と非常に似ている[Manel, 2003]。ヒトの赤血球は、マウスと異なり、高いGLUT−1を発現していることが報告されているため[Mueckler, 1994]、我々は、新鮮な分離赤血球における、HTLVレセプターの利用について評価を行なった。ヒト赤血球へのH1RBDの結合は、非常に効率的であり、他の調べた細胞で観察されたものより高いレベルであったが、一方、ARBDの結合は、最小限に止まっていた(図4a)。そして、マウス及びヒトの赤血球でのARBDの結合は同じレベルにもかかわらず、マウスの赤血球では、高いH1RBD結合は、確認できなかった。加えて、プライマリーヒト肝細胞はGLUT−1を発現しておらず、従って、我々はARBDのプライマリーヒト肝細胞での結合を容易に確認できたが、H1RBD結合については、確認できなかった。
ここで、我々は、HTLV−1及びHTLV−2のエンベロープが、それらのレセプター結合ドメインを介して、GLUT−1と相互作用していることを示した。この相互作用は、グルコースの消費及びグルコースの摂取を強く阻害しており、乳酸産生の減少及び細胞外環境の酸性化の防止につながっている。レセプター結合部位を特異的に変異させたHTLV−1及びHTLV−2のいずれの変異株においても、グルコース消費の阻害は解除され、このことは、HTLVエンベロープのレセプター結合部位及びグルコース輸送の間の直接的な関係を示している。グルコースの枯渇は、HTLVエンベロープの結合が増加することによって、速やかに進行し、グルコースの利用と細胞表面のHTLVレセプターの発現の間の、栄養感受性ネガティブフィードバックが強く起こる。更に、GLUT−1をレセプターであるとする証拠が、蓄積してきており、GLUT−1の過剰発現でHTLV RBDの結合が増加するが、GLUT−3では増加しないこと、H1RBDによって、GLUT−1が免疫沈降されるが、レセプター結合変異体であるH1RBDY114Aでは免疫沈降されないこと、GLUT−1が主要なグルコース輸送担体アイソフォームであるヒト赤血球でHTLV RBDは強く結合するが、GLUT−1がほとんど発現していないヒト初代肝細胞やマウス赤血球では、HTLV RBDは結合しない。最後に、GLUT−1はHTLV RBDによって誘導される感染の妨害を特異的に回避できた。GLUT−1は、HTLV−1のレセプターとして知られている他のすべての特徴に一致している。確かに、GLUT2−4のアイソフォームでなく、以前レセプターとして証明された[Manel, 2003]、GLUT−1は、休止期のTリンパ球には発現しておらず[Chakrabarti, 1994; Korgun, 2002]、免疫的[Frauwirth, 2002; Yu, 2003]又は薬剤[Chakrabarti, 1994]による活性化によって誘導される。更に、GLUT−1のオルソローガス(orthologues)は、脊椎動物では高度に保存されているが、脊椎動物と昆虫の間では、かなりの違いがある[Escher, 1999]。
[細胞培養]
293Tヒト胚性腎細胞及びHeLa子宮頚癌細胞は、高濃度のグルコース(4.5 g/L)のDulbecco's modified Eagle medium (DMEM)に、ジャーカット(Jurkat)T細胞は、RPMIに、それぞれ10%ウシ胎児血清(FBS)を添加し、37℃、5%CO2−95%空気雰囲気下で培養した。グルコース枯渇実験は、細胞を、グルコースを除いたDMEM(Life Technologies)又はグルコースを除いたRPMI(Dutscher)に10%の滅菌ウシ胎児血清(Life Technologies)を添加して培養し、そして実験時に、グルコース(1g/L)を添加した。
HTLV―1の全長発現ベクター(pCEL/2[Denesvre, 1995])及びフレンド狭宿主性MLVの全長発現ベクター(pCEL/F [Denesvre, 1995])は、以前に報告している。HTLV−2のエンベロープは、tax、rex及びenv遺伝子及び3’LTRを含んでいるHTE2[Rosenberg, 1998]からのフラグメントを、pCISベクター[Battini, 1999]に組み込んだ(pCSIX.H2)。広宿主性MLVのエンベロープ全長発現ベクター(pCSI.A)、又はそのRペプチドの欠失体(pCSI.AΔR)、及びF−MLVエンベロープに、HTLV−1レセプター結合ドメインのN末端183アミノ酸を含んだH183FEnv、同様に、pCSI由来の不完全なエンベロープ発現ベクター、HTLV−1SUの最初の215残基(H1RBD)、HTLV−2―SUの最初の178残基(H2RBD)、又は広宿主性マウス白血病ウイルス(MLV)SUの最初の397残基(ARBD)、ウサギIgGのC末のFcタグ(rFc)又はEGFP(H2RBD−GFP)に結合させたものを作製した。HTLV−1及び2 RBDの構築のすべての点変異は、quickchange site−directed mutagenesis法を用いて導入し、変異は配列を決定することで確認した。ヒトGlut−1 及びGlut−3のcDNAは、pLib HeLa cDNAライブラリー((Clontech)から、PCRによって増幅し、pCSIベクターの改良ベクターである、pCHIXに組み込んだ。pCHIXはファクターXa切断部位、2コピーのヘマグルチニン(HA)タグ及びヒスチジンタグを有している。得られた構築物(pCHIX.hGLUT1)は、C末にHA−Hisタグを有するGLUT−1をコードしている。また、GLUT−1及びGLUT−3も、DsRed2のC末タグを有しているpCSIの改良ベクターに挿入した。同様に、ヒトCD147は293T細胞の全RNAからRT−PCRで増幅し、HA−Hisタグを有するpCHIXベクターに組み込んだ。
改良されたカルシウムリン酸変法を用いて、293T細胞に、種々のエンベロープ発現ベクターをトランスフェクトした。トランスフェクション後、一昼夜おいて、細胞をリン酸塩バッファー(PBS)で洗浄し、新鮮な培地を加えた。培地は、指示時間のポイントで回収し、0.45μmのポアサイズのフィルターを通し、乳酸とグルコースを酵素診断キット(Sigma)で測定した。測定値は、溶解バッファー(50 mM Tris−HCl pH 8.0, 150 mM NaCl, 0.1% sodium dodecyl sulfate, 1.0% Nonidet P−40, 0.5% deoxycholate)で細胞を可溶化し、遠心した後に、ブラッドフォード法を用いて細胞タンパク量を測定し、標準化した。
2−デオキシ−D[1−3H]グルコース、 D[U−14C]フルクトース及び3−O−[14C]メチル−D−グルコースは、アマシャムから購入した。ヘキソースの摂取試験は、Harrison(REF HARRISON 1991)らの方法に従った。トランスフェクション後、ウエルあたり約250,000細胞を24ウェルプレートで培養した。次の日、細胞をPBSで2回洗浄し、血清を含まないDMEMで培養し、血清およびグルコースを含まないDMEMで1回洗浄し、そして500μLの血清及びグルコースを含まないDMEMに阻害物質(20 μM cytochalasin B, 300 μM phloretin; SIGMA)を加えて、20分培養した。摂取は、標識されたヘキソース(2 μCi/ml for 2−2−deoxy−D[1−3H]glucose and 0,2 μCi/ml for D[U−14C]fructose and 3−O−[14C]methyl−D−glucose)を最終濃度0.1mMの濃度で添加することにより開始し、細胞を更に5分間培養する。それから、細胞を500μLの血清およびグルコースを含まないDMEMに再懸濁し、1回血清およびグルコースを含まないDMEMで洗浄し、400μLの0.1%SDSで可溶化する。3μLを使い、ブラッドフォード法でタンパク量を標準化し、残りを、3H又は14Cをベックマンカウンターの液体シンチレーターで、検出に使用した。
野生型又は変異型HTLV−1 RBDs、及び/又はGLUT−1又はGLUT−2を発現している、293T細胞からの培養液(10μL)をSDS−15%アクリルアミドゲルで電気泳動し、ニトロセルロース(Protran; Schleicher & Schuell)に転写し、5%粉ミルク及び0.5%Tween20を含むPBSでブロッキングし、1:5000倍に希釈した西洋わさびペルオキシダーゼ標識抗ウサギ免疫グロブリン、又は1:2000倍に希釈した抗HA 12CAS(Roche)モノクローナル抗体に続き、1:5000倍に希釈した西洋わさびペルオキシダーゼ標識抗マウス免疫グロブリンを結合させ、高感度化学発光キット(アマシャム)を用い、可視化した。
結合試験は、以前に報告した方法[Manel, 2003]に従って、行なった。簡単には、5 x 105細胞(293T、HeLa、Jurkat 又は 新しく分離したヒト赤血球)を、500μLのH1RBD、H2RBD又はARBDの上清と37℃、30分間培養し、PBA(1% BSA, 0.1% sodium azide in PBS)で洗浄し、そしてフルオレセインイソチアシアネートで標識したヒツジ抗ウサギIgG抗体(Sigma)とインキュベートした。測定のため、サイトカラシンB(20 mM; Sigma)を測定1時間前に添加した。結合は、FACSCalibur(Becton Dickinson)で解析し、データ解析は、CellQuest (Becton Dickinson)及びWinMDI (Scripps)ソフトウエアを用いた。
293T細胞は、6ウエルプレートでトランスフェクトし、一日後に、フルクトース(5μ/L)及び非必須アミノ酸を添加した高グルコースDMEMに替えた。次の日、HTLV−2又はA−MLVいずれかのエンベロープを有するシュードタイプのMLV粒子を含む上清を添加することにより、感染を開始させた。翌日、新鮮な培地を加え、そして、24時間後に細胞を固定し、アルカリ性フォスファターゼ活性で染色し、暗い感染フォーカスを測定した。pLAPSN, pGagPoule 及びpCSIX.H2 又は pCSI.Aのいずれかを293T細胞にトランスフェクトすることによって、ウイルス粒子が得られ、24時間後に0.45μmフィルターによって上清を回収した。
Claims (7)
- PTLVのエンベロープタンパク質のポリペプチド、又はそれ由来のフラグメント、あるいは前記ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の、
細胞表面上のGLUT1の過剰発現に関連した病態の試験管内での検出のための使用であって、
前記ポリペプチドは、脊椎動物に偏在する配列番号2のグルコーストランスポーターGLUT1に特異的に結合するそれらの能力で選択され、以下の中から選択されるGLUT1結合性ポリペプチドである、前記使用:
−配列番号4に記載されたHTLV―1、又は配列番号6に記載されたHTLV―2、又は配列番号8に記載されたSTLV―1、又は配列番号10に記載されたSTLV―2のエンベロープタンパク質、
−配列番号4における1〜215アミノ酸を有するHTLV―1のエンベロープタンパク質のフラグメント、又は配列番号6における1〜178アミノ酸を有するHTLV―2のエンベロープタンパク質のフラグメント。 - 前記病態が、以下の病態であることを特徴とする、請求項1に記載のGLUT1結合性ポリペプチドの使用:
−固形腫瘍、
−炎症状態、
−免疫病又は自己免疫病、
−中枢神経の障害。 - 細胞表面上のGLUT1の過剰発現に関連した請求項2で定義した病態の試験管内での検出のためのGLUT1結合性ポリペプチドの使用であって、前記方法が以下の工程を含む請求項1又2に記載の使用:
−個体からの生体サンプルをGLUT1結合性ポリペプチドと接触させる工程であって、前記GLUT1結合性ポリペプチドが、場合により標識され、又は標識分子によって認識されることができるものである工程
−生体サンプルに含まれる細胞に結合した前記GLUT1結合性ポリペプチドの濃度を決定し、そして健常人の生体サンプルに含まれる細胞に対する前記GLUT1結合性ポリペプチドの結合の濃度と比較する工程。 - 細胞表面上のGLUT1の過剰発現に関連した病態の、試験管内での検出方法であって、
−個体からの生体サンプルを、請求項1で定義されたGLUT1に特異的に結合できることによって選択されたポリペプチドであって、前記ポリペプチドが場合によって標識され、又は標識分子によって認識されることができるものであるポリペプチドと接触させる工程、
−生体サンプルに含まれる細胞に結合する前記ポリペプチドの濃度を決定し、そして健常人の生体サンプルに含まれる細胞に結合する前記ポリペプチの濃度と比較する工程、
を含むことを特徴とする検出方法。 - 請求項2で定義された病態の試験管内での検出のための、請求項4に記載の方法。
- 請求項1で定義されたGLUT1結合性ポリペプチドを含み、前記請求項1で定義されたGLUT1結合性ポリペプチドが場合により標識化されているキットであって、
請求項4又は5に記載の方法による、細胞表面上のGLUT1の過剰発現に関連した病態の試験管内での検出用キット。 - 生物学的検体の細胞表面上に最初に存在しているGLUT1に対するポリペプチドの結合を検出するための試薬を更に含む、請求項6に記載の、細胞表面上のGLUT1の過剰発現に関連した病態の試験管内での検出用キット。
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