JP4434580B2 - 予防及び治療のために抗rsv抗体を投与/処方する方法 - Google Patents
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Description
本発明はRSV抗原と免疫特異的に結合する抗体またはその断片を含んでなる組成物、及び前記組成物を用いて呼吸器合胞体ウイルス(RSV)感染に関連した予防、治療または症状を改善する方法に関する。特に、本発明はRSV感染に関連した予防、治療または症状を改善する方法であって、ヒト被験者にRSV抗原と免疫特異的に結合する1以上の抗体またはその断片の有効量を投与し、前記ヒト被験者において前記抗体または抗体断片のある一定の血清力価(serum titer)を達成することを含んでなる前記方法に関する。本発明はまた、RSV抗原と免疫特異的に結合する抗体またはその断片を含んでなる検出可能なまたは診断用の組成物ならびに前記組成物を利用してRSV感染を検出または診断する方法にも関する。
呼吸器合胞体ウイルス(RSV)は、幼児及び小児における重篤な下気道疾患の主導的な病因である(Feigenら, 編, 1987, In : Textbook of Pediatric Infectious Diseases, WB Saunders, Philadelphia, 1653-1675頁;New Vaccine Development, Establishing Priorities, Vol.1, 1985, National Academy Press, Washington DC, 397-409頁;及びRuuskanenら, 1993, Curr. Probl. Pediatr. 23:50-79)。世界中のRSV感染の年間流行特性は明らかであるが、所与のシーズンにおけるRSV疾患の発病率と重篤度は地域により変化する(Hall, C. B., 1993, Contemp. Pediatr. 10: 92-110)。北半球の温帯地域では、通常、晩秋に始まり晩春に終わる。院内流行時に、一次RSV感染が起こるのは6週〜2歳齢の小児において最も高頻度であり、出生後最初の4週間においては珍しい(Hallら, 1979, New Engl. J. Med. 300:393-396)。RSV感染リスクの高い小児は、未熟児(Hallら, 1979, New Engl. J. Med. 300:393-396)ならびに気管支肺異形成症(Groothuisら, 1988, Pediatrics 82:199-203)、先天性心疾患(MacDonaldら, New Engl. J. Med. 307:397-400)、先天性もしくは後天性免疫不全(Ograら, 1988, Pediatr. Infect. Dis. J. 7:246-249;及びPohlら, 1992, J. Infect. Dis. 165:166-169)及び嚢胞性線維症(Abmanら,1988、J. Pediatr. 113:826-830)を患う小児が挙げられる。心または肺疾患で入院中の幼児のRSV感染による致死率は3%〜4%である(Navasら, 1992, J. Pediatr. 121:348-354)。
本発明は、一部分は、哺乳類において呼吸器合胞体ウイルス(RSV)抗原と免疫特異的に結合する抗体またはその断片の予防または治療上有効な血清力価を、かかる抗体またはその断片を用いる受動免疫感作により達成するかまたは誘導する方法であって、従来公知の方法より低い用量及び/または少ない頻度の投与しか必要としない前記方法の開発に基づく。本発明はまた、一部分は、RSV抗原に対してさらに高いアフィニティをもつ抗体であって、予防または治療上の利用の効果を増加し、より低い血清力価で予防または治療上有効であり、それによってより低い用量及び/または減少した頻度の投与を可能にする前記抗体の同定に基づく。
、12、20、29、もしくは79を有するVH CDR3及び配列番号:6、16もしくは61を有するVL CDR3を含有する1以上の抗体またはその断片の第1用量を前記哺乳類に投与して治療または予防上有効な血清力価を達成することを含んでなり、ここで前記有効血清力価が、ある一定の日数(例えば、限定されるものでないが、20、25、30または35日)後、かつその期間いずれの他の投与もなしにその後の用量の投与前に、30μg/ml未満(そして好ましくは少なくとも2μg/ml、さらに好ましくは少なくとも4μg/ml、そして最も好ましくは少なくとも6μg/mlである)であることを特徴とする前記方法を提供する。
本明細書に使用される用語「類似体」は、あるRSVポリペプチド、あるRSVポリペプチドの断片、ある抗体、もしくはある抗体断片と類似のもしくは同一の機能を有するポリペプチドであって、必ずしも、あるRSVポリペプチド、あるRSVポリペプチドの断片、ある抗体、もしくはある抗体断片と類似のもしくは同一のアミノ酸配列を含有するかまたはあるRSVポリペプチド、あるRSVポリペプチドの断片、ある抗体、もしくはある抗体断片と類似のもしくは同一の構造を持つものでない前記ポリペプチドを意味する。類似のアミノ酸配列を有するポリペプチドは、少なくとも次の(a)〜(c)の1つを満たすポリペプチドを意味する:(a)本明細書に記載のRSVポリペプチド、RSVポリペプチドの断片、抗体、もしくは抗体断片のアミノ酸配列と少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、少なくとも50%、少なくとも55%、少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%、同一であるアミノ酸配列を有するポリペプチド;(b)本明細書に記載のRSVポリペプチド、RSVポリペプチドの断片、抗体、または抗体断片の少なくとも5個のアミノ酸残基、少なくとも10個のアミノ酸残基、少なくとも15個のアミノ酸残基、少なくとも20個のアミノ酸残基、少なくとも25個のアミノ酸残基、少なくとも40個のアミノ酸残基、少なくとも50個のアミノ酸残基、少なくとも60個のアミノ酸残基、少なくとも70個のアミノ酸残基、少なくとも80個のアミノ酸残基、少なくとも90個のアミノ酸残基、少なくとも100個のアミノ酸残基、少なくとも125個のアミノ酸残基、または少なくとも150個のアミノ酸残基をコードするヌクレオチド配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列によりコードされたポリペプチド;ならびに(c)本明細書に記載のRSVポリペプチド、RSVポリペプチドの断片、抗体、または抗体断片をコードするヌクレオチド配列と少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、少なくとも50%、少なくとも55%、少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%、同一であるヌクレオチド配列によりコードされるポリペプチド。本明細書に記載のRSVポリペプチド、RSVポリペプチドの断片、抗体、または抗体断片と類似の構造をもつポリペプチドは、本明細書に記載のRSVポリペプチド、RSVポリペプチドの断片、抗体、または抗体断片と類似の二次、三次または四次構造を有するポリペプチドを意味する。ポリペプチドの構造は、当業者が周知する方法により決定することができ、限定されるものでないが、X線結晶学、核磁気共鳴、及び結晶電子顕微鏡が挙げられる。
図面の簡単な説明については以下参照。
本発明は、被験者のRSV感染に関連して予防、中和、治療及び1以上の症状を改善する方法であって、1以上のRSV抗原と高アフィニティ及び/または高アビディティで免疫特異的に結合し及び/またはより長い血清半減期を有する1以上の抗体を前記被験者に投与することを含んでなる前記方法を提供する。本発明の抗体は高アフィニティ及び/または高アビディティを有するので、従来RSV感染に関連して予防、中和、治療、及び症状を改善するために有効であると考えられていたよりもさらに低い前記抗体の用量の使用が可能になる。1以上のRSV抗原と免疫特異的に結合する抗体のより低い用量の使用は、有害な影響を与える可能性を低下するとともにより有効な予防を提供する。さらに、本発明の抗体の高アフィニティ及び/または高アビディティは、従来RSV感染に関連して予防、中和、治療、及び症状を改善するために有効であると考えられていたよりもさらに少ない前記抗体の投与頻度を可能にする。
5μg/ml未満の予防または治療上有効な血清力価を、抗体または抗体断片の投与後30日以下達成することによる前記方法である。この実施形態によれば、1以上の抗体またはその断片の第1用量は10mg/kg未満、好ましくは5mg/kg未満、1mg/kg未満、または0.5mg/kg未満である。
当技術分野において、RSV抗原と免疫特異的に結合する抗体が公知であることは認識されるに違いない。例えば、SYNAGIS(登録商標)は、小児患者のRSV感染を予防するために現在使われるヒト化モノクローナル抗体である。本発明は、本明細書で考察した、SYNAGIS(登録商標)及び他の既知の抗RSV抗体を投与するための新規の製剤ならびにSYNAGIS(登録商標)及び他の既知の抗RSV抗体の新規の用量を包含する。
本発明は、融合タンパク質を作成するための、異種ポリペプチド(またはその部分、好ましくは少なくとも10、少なくとも20、少なくとも30、少なくとも40、少なくとも50、少なくとも60、少なくとも70、少なくとも80、少なくとも90、または少なくとも100アミノ酸のポリペプチド)に、組換え法で融合したかもしくは化学的にコンジュゲートした(共有結合および非共有結合を含む)抗体もしくはその断片を包含する。融合は必ずしも直接的ではなく、リンカー配列を介してもよい。例えば、抗体を、特定の細胞表面受容体に特異的な抗体に、融合またはコンジュゲートさせることにより、in vitroもしくはin vivoで、特定の種類の細胞(例えば、気道上皮細胞)に異種ポリペプチドを標的化するのにその抗体を使用することができる。異種ポリペプチドに融合またはコンジュゲートした抗体はまた、当該分野で公知の方法を使用してin vitroイムノアッセイおよび精製法に使用される。例えば、PCT公報WO93/21232;EP439,095;Naramuraら、Immunol. Lett. 39:91-99 (1994);米国特許5,474,981号;Gilliesら、PNAS 89:1428-1432 (1992);およびFellら、J. Immunol. 146:2446-2452 (1991)を参照されたい(これらは、参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる)。
本発明は、RSV感染に関連する1つ以上の症状を予防、治療、または改善するための、哺乳動物(好ましくはヒト)に本発明の抗体またはその断片を投与することを含む抗体ベースの治療法に関する。本発明の予防用化合物および治療用化合物には、特に限定されないが、本発明の抗体(本明細書に記載のような、その断片、類似体および誘導体を含む)、および本発明の抗体をコードする核酸(本明細書に記載のような、その断片、類似体および誘導体、および抗イディオタイプ抗体を含む)を含む。本発明の抗体またはその断片は、当該分野で公知のまたは本明細書に記載のような、薬剤学的に許容される組成物中で提供してもよい。
本発明は、有効量の抗体またはその断片、または本発明の抗体またはその断片を含む医薬組成物を被験体に投与することによる、RSV感染に関連する1つ以上の症状の治療、予防、および改善方法を提供する。好適な態様において、抗体またはその断片は実質的に精製されている(すなわち、その作用を制限したり好ましくない副作用を引き起こしたりする物質を実質的に含まない)。被験体は、好ましくは哺乳動物、例えば非霊長類(例えば、ウシ、ブタ、ウマ、ネコ、イヌ、ラットなど)および霊長類(例えば、カニクイザルのようなサル、およびヒト)である。好適な実施形態において、被験体はヒトである。別の好適な実施形態において、被験体はヒト幼児または未熟児で生まれたヒト幼児である。別の実施形態において、被験体は、嚢胞性繊維症、気管支肺異形成、先天性心疾患、先天性免疫不全もしくは後天性免疫不全を患うヒト、骨髄移植を受けたヒト、または高齢者である。
具体例において、遺伝子治療により、RSV感染に関連する1つ以上の症状を治療、予防、または改善するために、抗体またはその機能性誘導体をコードする配列を含む核酸が投与される。遺伝子治療とは、発現されたまたは発現可能な核酸を被験体に投与することにより行われる治療を意味する。本発明のこの実施形態において、核酸は、予防または治療作用を仲介する、それにコードされた抗体または抗体断片を産生する。
本発明の抗体またはその断片は、種々の方法で特性解析される。特に、本発明の抗体またはその断片は、RSV抗原に免疫特異的に結合する能力についてアッセイされる。そのようなアッセイは、溶液中(例えば、Houghten, 1992, Bio/Techniques 13:412-421)、ビーズ上(Lam, 1991, Nature 354:82-84)、チップ上(Fodor, 1993, Nature 364:555-556)、細菌上(米国特許5,223,409)、胞子上(米国特許5,571,698;5,403,484;および5,223,409)、プラスミド上(Cullら、1992, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:1865-1869)、またはファージ上(ScottとSmith, 1990, Science 249:386-390:Devlin, 1990, Science 249:404-406;Cwirlaら、1990, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:6378-6382;およびFelici, 1991, J. Mol. Biol. 222:301-310)中で行うことができる(これらの文献のそれぞれは、参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる)。RSV抗原またはその断片に免疫特異的に結合することが確認された抗体またはその断片は、次にRSV抗原に対する特異性とアフィニティについてアッセイすることができる。
RSV抗原に免疫特異的に結合する標識抗体、その断片ならびにそれらの誘導体および類似体は、RSV感染を検出、診断、またはモニターする診断目的で使用することができる。本発明は、(a) RSV抗原に免疫特異的に結合する1つ以上の抗体またはその断片を使用して、被験体の細胞または組織サンプル中のRSV抗原の発現を測定し、そして(b) RSV抗原のレベルを対照レベル(例えば、RSVに感染していない正常の組織サンプル中のレベル)と比較することを含み、こうしてRSV抗原の対照レベルと比較したRSV抗原の測定レベルの上昇は、RSV感染を示すものである、RSV感染の検出を提供する。
本発明の抗体またはその断片は、抗体の合成について当該分野で公知の任意の方法、特に化学合成または好ましくは組換え発現技術により産生することができる。
arm(San Jose,CA)のような会社が、上記と類似の技術を使用して、選択された抗原に対するヒト抗体を提供している。
本発明は、本発明の抗体またはその断片をコードするヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドを提供する。本発明はまた、本発明の抗体をコードするポリヌクレオチドに、例えば前述のような高ストリンジェンシー、中程度のストリンジェンシーまたは低ストリンジェンシーのハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドも包含する。
本発明の抗体、その誘導体または類似体(例えば、本発明の抗体の重鎖もしくは軽鎖、またはこれらの一部、あるいは本発明の1本鎖抗体)の組換え発現には、該抗体をコードするポリヌクレオチドを含有する発現ベクターの構築が必要である。本発明の抗体分子または抗体の重鎖もしくは軽鎖、あるいはその一部(必須ではないが、好ましくは、重鎖または軽鎖の可変ドメインを含有する)をコードするポリヌクレオチドがいったん得られると、その抗体分子の産生のためのベクターを、当該分野で周知の技術を使用して組換えDNA技術により産生することができる。このように、抗体をコードするヌクレオチド配列を含有するポリヌクレオチドを発現することによりタンパク質を製造する方法は、本明細書に記載されている。抗体をコードする配列と適当な転写および翻訳調節シグナルとを含有する発現ベクターを構築するのに、当該分野で周知の方法を使用することができる。これらの方法には、例えば、in vitro組換えDNA技術、合成法、およびin vivo遺伝子組換えがある。このように、本発明は、プロモーターに機能できる形で連結した、本発明の抗体分子、抗体の重鎖もしくは軽鎖、抗体の重鎖もしくは軽鎖可変ドメインまたはその一部、あるいは重鎖もしくは軽鎖CDRをコードするヌクレオチド配列を含む、複製可能なベクターを提供する。そのようなベクターは、抗体分子の定常領域をコードするヌクレオチド配列を含有し(例えば、PCT公報 WO86/05807;PCT公報 WO89/01036;および米国特許5,122,464を参照)、抗体の可変ドメインは、全重鎖、全軽鎖、または全重鎖と全軽鎖の両方の発現のために、そのようなベクター中にクローン化してもよい。
本発明はまた、本発明の医薬組成物の1つ以上の成分を充填した1つ以上の容器を含む医薬パックまたはキットを提供する。そのような容器には、場合により、医薬品または生物学的製剤の製造、使用または販売を規制する政府機関により定められた様式の注意書(この注意書は、ヒトへの投与のための製造、使用または販売についてのその機関の認可を示すものである)が添付されていてもよい。
典型的な速度論研究では、0.05%Tween-20を含有するPBSバッファー(PBS/Tween)中の種々の濃度(25〜300nM)の250μlのモノクローナル抗体(「Mab」)を注入することを含んだ。流速を75μl/分で維持して、15分の解離時間を与えた。Mabの注入後、解離速度を測定するために、流れ液をPBS/Tweenバッファーと30分間交換した。センサーチップを、100mM HClの1分パルスのサイクル間で再生した。再生工程により、固定化F-タンパク質の結合能力のわずかな喪失が起きた(1サイクルにつき4%の喪失)。この小さな減少は、結合と解離の速度定数(それぞれ、konとkoffとも呼ぶ)の計算値を変化させることはなかった。
dR/dt=kon[Mab]Rmax-(kon[Mab]+koff)R
式中、RとRmaxは、それぞれ時間tと無限大における応答単位である。Rの関数としてのdr/dtのプロットは、傾き(ka[Mab]+kd)を与える。これらの傾きは[Mab]に線形に比例するため、傾き対[Mab]の再プロットから、konの値を導くことができる。新しい直線の傾きは、konに等しい。koffの値はY切片から外挿できるが、より正確な値は、koffの直接測定により決定された。Mabの注入相の後に、PBS/Tweenバッファーはセンサーチップと通過して流れる。この点から、[Mab]=0。従ってdR/dtについての上記式は、以下のように還元する:
dr/dt=k または dR/R=koffdt
次いでこの式を積分すると、以下のようになる:
ln(R0/Rt)=kofft
式中、(R0/Rt)は、それぞれ時間0(解離相の開始点)とtにおける応答単位である。最後に、ln(R0/Rt)をtの関数としてプロットすると、koffの傾きが得られる。
本発明の抗体の中和は、マイクロ中和アッセイにより測定した。このマイクロ中和アッセイは、Andersonらが記載した方法(1985, J. Clin. Microbiol. 22:1050-1052、この開示内容は、参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる)を改変したものである。ここで使用した方法は、Johnsonら、1999, J. Infectious Diseases 180:35-40に記載されている(この開示内容は、参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる)。抗体希釈は、96ウェルプレートを使用して、三重で行った。10 TCID50の呼吸器合胞体ウイルス(respiratory syncytial virus)(RSV-Long株)を、試験すべき抗体(またはFab)の連続希釈物と、37℃で2時間、96ウェルプレートのウェル中でインキュベートした。次に、RSV感受性HEp-2細胞(2.5×104)を各ウェルに加え、37℃で5%CO2中で5日間培養した。5日後、培地を吸引し、細胞を洗浄し、80%メタノールと20%PBSでプレートに固定した。次に、RSV複製を、Fタンパク質発現により測定した。固定した細胞を、ビオチンコンジュゲート抗Fタンパク質モノクローナル抗体(panFタンパク質、C部位特異的Mab 133-1H)とインキュベートし、洗浄し、西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートアビジンをウェルに加えた。ウェルを再度洗浄し、基質TMB(チオニトロ安息香酸)のターンオーバーを450nmで測定した。中和力価を、ウイルスのみの対照細胞から、450nmの吸収度(OD450)の少なくとも50%低下を引き起こした抗体濃度として表した。表2に挙げたモノクローナル抗体とFab断片のアッセイからの結果を、上記表4と下記表8に示す。
細胞にウイルスが結合後、RSV誘導性の融合を本発明の抗体またはその断片が阻止する能力は、融合阻害アッセイで測定される。このアッセイは、マイクロ中和アッセイと同じであるが、細胞は、抗体を加える前に4時間RSV(Long)で感染させた(Taylorら、1992, J. Gen. Virol. 73:2217-2223)。
熱力学的結合親和性とエンタルピーを、抗体と、RSV F糖タンパク質(NUF4)(RSVウイルスの結合部位を模倣する抗原)との相互作用について、等温滴定熱量測定(ITC)値から決定した。
抗体と抗原
A13c4、A17d4、A4B4、およびSYNAGIS(登録商標)を、透析液で希釈し、濃度を、パーキンエルマー(Perkin Elmer)Lambda 4B分光光度計を用いて、280nmでの最大ピークの217,000M-1cm-1の吸光係数を使用して、UV分光吸収測定により測定した。吸光係数は、多量のサンプルを使用せずに正確な濃度を測定するには小さすぎるため、希釈したNUF4濃度は、元々のサンプルの量と希釈したサンプルの量の比から計算した。
抗体の結合熱力学を、Microcal, Inc.のVP Titration Calorimeterを使用して、ITC測定により測定した。VP titration calorimeterは、断熱容器中に封入した対応した対のサンプル容器と参照容器(1.409ml)と、サンプル容器中にリガンド溶液を滴定するための回転スターラー−シリンジからなる。ITC測定は、25℃と35℃で行った。サンプル容器は、リン酸バッファー中に抗体を含有し、一方参照容器はバッファー溶液のみを含有した。リン酸バッファー溶液は、HyClone, Inc.の生理食塩水67mM PO4(pH7.4)であった。5もしくは10μlアリコートの0.05〜0.1mM NUF4溶液を、抗体サンプル溶液中に3〜4分間隔で、結合が飽和して熱交換シグナルが無くなって明らかになるまで、滴定した。一部の抗体サンプル溶液については、抗体の結合飽和後に、各アリコートの添加により追加の一定熱量が観察された。これは、NUF4滴定物の希釈の熱によるものであり、データの解析前に、滴定中に得られた滴定熱から引いた。
Qt=nCtΔHb°V{1+Xt/nCt+1/nKbCt-[(1+Xt/nCt+1/nKbCt)2-4Xt/nCt]1/2}/2
(1a)
ΔQ(i)=Q(i)+dVi/2V{Q(i)+Q(i-1)}-Q(i-1) (1b)
(式中、Ctはサンプル容器中の初期抗体濃度、Vはサンプル容器の容量、そしてnは結合反応の化学量論量である)、Kb、ΔHb°、およびnを得た。Kbの測定のためのサンプル濃度の最適範囲は、Kbの値に依存し、以下の関係により定義される。
従って、1μMでは、測定可能な最大Kbは、2.5×108M-1未満である。最初の滴定添加が結合等温線に適合しない場合、シリンジ開口部−溶液界面での気泡の放出を反映しているかもしれないため、これは最終解析では無視した。
ITC結果を表9に要約する。表9で2化学量論量より大きい値は、抗体またはNUF4の濃度測定が正しくないことを示す。同じNUF4サンプルを、35℃でA13c4および35℃でA17d4のアミノ酸配列を有する抗体とともに滴定物として使用したため(これは、滴定の少なくとも1つで正しい化学量論量2を示す)、滴定物濃度は正しく、nの大きな値は、間違って測定された抗体濃度から得られると仮定される。しかし、結合定数は、滴定物濃度に決定的に依存し、従って、nの2〜3の不一致にもかかわらず、結合定数は正しいことを示すことができる。25℃でA4B4とA13c4のアミノ酸配列を有する抗体の結合定数は、ITC(式2)による測定上限に近く、利用可能なNUF4の量が制限されているため、結合親和性を含むための参照温度として35℃を使用することに決定した。表9に要約した結果は、NUF4に対する結合親和性が、A4B4>A13c4>A17d4>SYNAGIS(登録商標)の順であることを示す。
静脈内(IV)経路で投与された時、コトンラットの下気道RSV感染を予防するSYNAGIS(登録商標)の能力を測定するため、およびSYNAGIS(登録商標)の血清濃度を肺RSV力価の低下と相関させるために。
研究III-47とIII-47Aのために、SYNAGIS(登録商標)ロットL94H048を使用した。研究III-58には、SYNAGIS(登録商標)ロットL95K016を使用した。ウシ血清アルブミン(BSA)(画分V、Sigma Chemicals)。RSV-Long(Aサブタイプ)を、Hep-2細胞中で増殖させた。
個々の実験の結果を表10〜12に示す。まとめたすべての実験の結果を表13に示す。すべての3つの研究は、SYNAGIS(登録商標)で処理した動物の肺ウイルス力価の有意な低下を示す。動物で、明瞭な用量応答作用が観察された。まとめたデータは、2.5mg/kgの投与量が、肺RSV力価の99%を超える低下を引き起こすことを示した。ウイルスチャレンジ時のこの投与量のSYNAGIS(登録商標)の平均血清濃度は、28.6μg/mlであった。
この実験は、A4b4、A4b4-F52S、またはA4b4/L1FR-S28Rをコトンラットに筋肉内投与する時は、同じ濃度のSYNAGIS(登録商標)をコトンラットに筋肉内投与する時より、RSV力価のより大きな低下が得られることを証明する。
筋肉内コトンラット予防
コトンラット(S.ヒスピダス(S. hispidus)、平均体重100g)をメトキシフルランで麻酔し、0.1mlの精製モノクローナル抗体(MAb)またはBSA対照を筋肉内(i.m.)注射により投薬した。24時間後、再度動物を麻酔し、血清MAb濃度測定のために出血させ、105 pfuのRSV longを鼻内(i.n.)滴下によりチャレンジした。4日後、動物を屠殺し、血清サンプルを得て、肺を採取した。10部(wt/vol)のハンクス平衡塩溶液中で肺をホモジナイズし、生じる懸濁液を使用して、プラークアッセイにより肺ウイルス力価を測定した。
コトンラット(S.ヒスピダス、平均体重100g)をメトキシフルランで麻酔し、0.1mlの精製MAbまたはBSA対照を筋肉内(i.m.)注射により投薬した。24時間後、すべての動物を血清MAb濃度測定のために出血させ、各群の半分の動物を屠殺して、気管支肺胞洗浄(BAL)を行った。4日後、残りの動物を屠殺し、血清サンプルを得て、BALを行った。
この実施例は、SYNAGIS(登録商標)の存在下で複数回の選択により、RSV実験室株A/Longから、MARMが単離できることを示す。
SYNAGIS(登録商標)(調製品:refRN1002.148)、対照Pan RSV MAbプール(Chemicon MAB858-4、3つのMAb 抗F、G、およびNタンパク質の混合物)、抗RSV A型MAb(Chemicon MAB858-1)、および抗RSV B型MAb(Chemicon MAB858-2)をこの研究で使用した。2次検出試薬は、Alexa(商標名)488コンジュゲートヤギF(ab')2抗マウスまたはヒトIgG(H+L)であった。RSV A/Long株(5×107 TCID50/ml)を、Master Virus Bank 031797から増殖させた。HEp-2細胞を、10%FBSと2mM L-Glnを補足したEMEM中で37℃で、5%CO2環境中で増殖させた。全細胞RNAを、Promega RNAgents キットを使用して、感染HEp-2細胞から単離した。Boehringer Mannheim 1st Strand cDNA 合成キットを用いて、オリゴ(dT)プライマーを使用して、cDNAを合成した。DNA配列決定のためのFタンパク質の断片の増幅を、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により、遺伝子特異的オリゴヌクレオチド(MR-120とMR-122)およびBoehringer Mannheim High Fidelity PCRキットを使用して行った。
MARMの選択:
24ウェルプレートの1ウェルあたり4×105 HEp-2細胞を、増殖培地(EMEM、10%FBS、2mM L-Gln)中に接種し、増殖条件(37℃、5%CO2)で一晩インキュベートした。個々のMARM選択のために、40ウェルに接種した。感染の前に、master virus bank RSV A/Longの新鮮なバイアルを、37℃で急速に融解し、HEp-2増殖培地でウイルス力価を4×106 pfu/mlに調整した。ウイルス接種物にSYNAGIS(登録商標)を最終濃度30μg/mlになるように加え、混合物を37℃で1時間インキュベートした。RSVのアリコートを無関係のヒトIgG1 MAb(MEDI-507)とインキュベートし、陰性対照として使用した。各プレートについて、未感染対照ウェルも準備した。細胞を新鮮な培地で1回洗浄し、100μlのRSV A/Longウイルスストック/MAb混合物(感染多重度[m.o.i.]=4)を重層した。増殖条件下で細胞を4時間インキュベートし、次に各ウェルに1mlの増殖培地を加えた。細胞変性作用(CPE)を、毎日光学顕微鏡でモニターした。選択の7日後、各ウェルの内容物に、さらに30μg/mlのSYNAGIS(登録商標)または無関係のヒトIgG1 MAbを補足し、新鮮な接種したHEp-2細胞を感染するのに使用した(24ウェルプレートの1ウェル当たり4×105細胞)。さらに7日間の選択後、このプロセスを、もう一度繰り返し、全部で3回選択した。
3回目の選択後、10個の独立したウェルの内容物をランダムに選択し、MARMのプラーク精製のために使用した。残りの上清を50%ショ糖溶液と1:1で混合し、直ちに-80℃で凍結した。上清を、増殖培地で1:10、1:100、および1:1000で希釈し、30μg/mlのSYNAGIS(登録商標)と1時間インキュベーション後、感染させた。60mmの丸い培養シャーレ(1×106細胞/シャーレ)中のHEp-2細胞の単層に1mlのウイルス接種物を重層し、増殖条件下で4時間インキュベートした。感染後、接種物を注意深く吸引し、細胞に、0.8%低融点アガロース(Gibco BRL)を補足し、30μg/mlのSYNAGIS(登録商標)を含有する3mlの増殖培地を重層した。アガロースが完全に固化してから、シャーレをインキュベーターに戻し、プラーク形成を毎日モニターした。比較のために、未感染対照と野生型RSV対照プレートを準備した。5〜6日後、各プレートに、50μg/mlのニュートラルレッドを補足した増殖培地中0.8%のアガロースをさらに2ml重層した。増殖条件下で一晩インキュベーション後、プラークをスコアし、2回目の精製のために拾い上げた。
2回目のプラーク精製後、各分離株からの2つのクローンを、高力価ウイルスストックの産生のために拡張した。個々のプラークを、ピペットチップで拾い上げ、0.1mlの新鮮な培地中で4℃で一晩インキュベートして、ウイルスを溶出させた。各アリコートを使用して、平底96ウェルプレート中でHEp-2細胞(1×104細胞/ウェル)を30μg/mlのSYNAGIS(登録商標)の存在下で感染させた。5日後、ウェルの全内容物を使用して、24ウェルプレート中でHEp-2細胞を30μg/mlのSYNAGIS(登録商標)の存在下で感染させた。次に、各接種物を、30μg/mlのSYNAGIS(登録商標)の存在下でT-25フラスコ(1×106細胞/フラスコ)に拡張し、5mlの高力価ウイルスストックを産生した。MARMストックを、前述のように凍結した。
SYNAGIS(登録商標)のエピトープを含有すると考えられるFタンパク質遺伝子の約400ヌクレオチド領域のヌクレオチド配列を決定するために、感染4日後にMARM感染HEp-2細胞から単離した全細胞RNAを用いて、First strand cDNA合成を行った。材料の節に記載のように、DNA配列決定のためにFタンパク質の断片の増幅を行った。増幅したMARM Fタンパク質 cDNAを、フェノール/クロロホルム抽出とエタノール沈殿により精製し、遺伝子特異的オリゴとPerkin-Elmer Cetus Big-Dye Terminator反応混合物を用いたPCR配列決定反応に使用して、関連する領域を配列決定した。
RSV分離株を感染させた細胞を、SYNAGIS(登録商標)と対照 Pan RSV MAbプールにより、以下のように抗RSV結合について試験した。4〜5日のRSV感染HEp-2培養物をPBSと混合し、300×gで室温で5分間遠心分離した。分析のために、ペレットを少量のPBSに再懸濁した。5mmウェルあたり各細胞懸濁液の5〜10μlを、アセトンで洗浄した12ウェルHTCスーパー硬化ガラススライドにスポットし、風乾させた。スライドを、冷(-20℃)アセトン中で10分間固定した。各ウェルにPBS中1% BSAの10μlをスポットし、室温で10分間インキュベートして、反応をブロッキングした。スライドを、1×PBS/0.1%Tween-20で3回洗浄し、風乾した。ブロッキングバッファーで250ng/mlに希釈した各1次抗体試薬10μlを1ウェルあたりにスポットし、反応物を、加湿37℃環境で30分間インキュベートした。次にスライドを、1×PBS/0.1%Tween-20を3回交換して1分間洗浄し、風乾した。ブロッキングバッファーで250ng/mlに希釈した適当な2次コンジュゲート抗体試薬の10μlを各ウェルに加え、反応物を、加湿37℃環境でさらに30分間インキュベートした。次に、スライドを1×PBS/0.1%Tween-20を3回交換して1分間洗浄した。PBS、10mM Tris(pH8.0)、1mM EDTA中の50%グリセロールの5μlを、各反応ウェルにスポットし、スライドにカバーガラスをのせた。次に、各反応ウェルを、蛍光顕微鏡で200×の倍率でB-2Aフィルター(EX450〜490nm)を使用して分析した。陽性反応物を、染色していない細胞または2次試薬のみで染色した細胞で得られた自己蛍光バックグランドに対して、スコアした。
ここで使用した方法は、Johnsonら、1999, J. Infectious Diseases 180:35-40に記載されている(この開示内容は、参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる)。簡単に説明すると、抗体希釈は、96ウェルプレートを使用して、三重で行った。10 TCID50のRSV A MARMSを、試験すべき抗体の連続希釈物と、37℃で2時間、96ウェルプレートのウェル中でインキュベートした。このアッセイで使用した抗体は、SYNAGIS(登録商標)の重鎖、点突然変異を有するSYNAGIS(登録商標)の重鎖、またはA4B4の重鎖、およびSYNAGIS(登録商標)の軽鎖、点突然変異を有するSYNAGIS(登録商標)の軽鎖、点突然変異を有するA4B4の軽鎖、点突然変異を有するA4B4の軽鎖、L1FR(a.k.a. 1X-493L1FR)の軽鎖、または点突然変異を有するL1FRの軽鎖を含んだ。アッセイで陽性対照としてMab13/19を使用した。次に、RSV感受性HEp-2細胞(2.5×104)を各ウェルに加え、37℃で5%CO2中で5日間培養した。5日後、培地を吸引し、細胞を洗浄し、80%メタノールと20%PBSを有するプレートに固定した。次に、RSV複製を、Fタンパク質発現により測定した。固定した細胞を、ビオチンコンジュゲート抗Fタンパク質モノクローナル抗体(panFタンパク質、C部位特異的MAb133-1H)とインキュベートし、洗浄し、西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートアビジンをウェルに加えた。ウェルを再度洗浄し、基質TMB(チオニトロ安息香酸)のターンオーバーを450nmで測定した。モノクローナル抗体についてのアッセイの結果を下記表19に示す。
SYNAGIS(登録商標)の結合活性を、IFAにより、SYNAGIS(登録商標)の存在下でHEp-2細胞上での3回の選択で得られた20個のRSV A/Long MARMのパネルに対して試験した。RSVの融合タンパク質、糖タンパク質、核タンパク質に対するモノクローナル抗体のプール(対照 Pan RSV MAb プール)を、RSVの検出のための陽性対照として使用した。A型とB型の糖タンパク質を区別する2つのモノクローナル抗体を用いて、RSV MARMのサブタイプ決定を行った。表17に要約したように、SYNAGIS(登録商標)による結合活性の欠如が、すべての20個のMARMで証明された。SYNAGIS(登録商標)による結合の欠如に対して、対照 Pan RSV MAb プールの結合は、試験したすべてのMARMで証明された。すべての20個のMARMを、RSV A型として分類した。野生型RSV A/Longを感染させたHEp-2細胞は、SYNAGIS(登録商標)、Pan RSV MAb プール、およびRSV A型MAbに結合したが、予測された通り、RSV B型MAbには反応しなかった。
本実施例は、A4B4の存在下での複数回の選択によりRSV実験株A/LongからMARMが単離できることを証明する。
A4B4(ロット#524-9、3.57mg/ml)、対照 Pan RSV MAb プール(Chemicon MAB858-4、3つのMAb 抗F、G、およびNタンパク質の混合物)、抗RSV A型MAb(Chemicon MAB858-1)、および抗RSV B型MAb(Chemicon MAB858-2)を、この研究で使用した。2次検出試薬は、Alexa(商標名)488コンジュゲートヤギF(ab')2抗マウスまたはヒトIgG(H+L)であった。RSV A/Long株NWVB020500のウイルスバンク(2.38×107 TCID50/ml)を、Master Virus Bank 031797から増殖させた。HEp-2細胞を、10%FBSと2mM L-Glnを補足したEMEM中で37℃で、5%CO2環境中で増殖させた。mRNA捕捉キット(Roche)を使用して、感染細胞からメッセンジャーRNAを精製した。mRNAサンプルを使用して、cDNA First Strand 反応キット(Roche)の試薬を用いてcDNAを作製し、遺伝子特異的プライマーを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によりRSV Fタンパク質遺伝子を増幅した。
MARMの選択:
24ウェルプレートの1ウェルあたり4×105 HEp-2細胞を、増殖培地(EMEM、10%FBS、2mM L-Gln)中に接種し、増殖条件(37℃、5%CO2)で一晩インキュベートした。個々のMARM選択のために、44ウェルに接種した。感染の前に、ウイルスバンクRSV A/Longの新鮮なバイアルを、37℃で急速に融解し、HEp-2増殖培地中でウイルス力価を4×106 pfu/mlに調整した。ウイルス接種物にA4B4を最終濃度2μg/mlになるように加え、混合物を37℃で1時間インキュベートした。RSVのアリコートを、無関係のヒトIgG1 MAb(MEDI-507)とインキュベートし、陰性対照として使用した。各プレートについて、未感染対照ウェルも準備した。細胞を新鮮な培地で1回洗浄し、100μlのRSV A/Longウイルスストック/MAb混合物を重層した。増殖条件下で細胞を4時間インキュベートし、次に各ウェルに1mlの増殖培地を加えた。細胞変性作用(CPE)を、毎日光学顕微鏡でモニターした。選択の7日後、各ウェルの内容物に、さらに4μg/mlのA4B4または無関係のヒトIgG1 MAbを補足し、新鮮な接種したHEp-2細胞を感染するのに使用した(24ウェルプレートの1ウェル当たり4×105細胞)。さらに7日間の選択後、このプロセスをもう一度繰り返し、全部で3回選択した。明瞭なCPEを示すウェルの内容物を、50%ショ糖溶液と1:1で混合し、直ちに-80℃で凍結した。
3回目の選択後、2個の独立したウェルの内容物をランダムに選択し、MARMのプラーク精製のために使用した。MARMストックの新鮮なバイアル(3回目の選択後凍結した)を室温で融解し、増殖培地で1:10、1:100、および1:1000に希釈し、4μg/mlのA4B4と1時間インキュベーション後、感染させた。6ウェルプレート(5×105細胞/ウェル)中のHEp-2細胞の単層上に0.5mlのウイルス接種物を重層し、増殖条件下で4時間インキュベートした。感染後、接種物を注意深く吸引し、細胞に、0.8%低融解温度アガロース(Gibco BRL)を補足し4μg/mlのA4B4を含有する2mlの増殖培地を重層した。アガロースが完全に固化した後、シャーレをインキュベーターに戻し、プラーク形成について毎日モニターした。比較のために、未感染対照と野生型RSV対照プレートを準備した。5〜6日後、各プレートに、50μg/mlのニュートラルレッドを補足した増殖培地中0.8%のアガロースをさらに2ml重層した。増殖条件下で一晩インキュベーション後、プラークをスコアし、2回目の精製のために拾い上げた。
2回目のプラーク精製後、各分離株からの3つのクローンを、高力価ウイルスストックの産生のために拡張した。個々のプラークを、ピペットチップで拾い上げ、0.2mlの新鮮な培地中で4℃で一晩インキュベートして、ウイルスを溶出させた。各アリコートを使用して、平底24ウェルプレート中でHEp-2細胞(前日に接種した2.5×105細胞/ウェル)を4μg/mlのA4B4の存在下で感染させた。5日後、ウェルの全内容物を使用して、24ウェルプレート中でHEp-2細胞を4μg/mlのA4B4の存在下で感染させた。次に、各接種物を、4μg/mlのA4B4の存在下でT-25フラスコ(前日に接種した6.5×106細胞/フラスコ)に拡張し、5mlの高力価ウイルスストックを産生した。MARMストックを、前述のように凍結した。
SYNAGIS(登録商標)のエピトープを含有すると考えられるFタンパク質遺伝子の約800ヌクレオチド領域のヌクレオチド配列を決定するために、感染4日後にMARM感染HEp-2細胞から単離したmRNAを用いて、First strand cDNA合成を行った。RSV感染HEp-2細胞を、mRNA捕捉キットで提供される150μlの溶解バッファーで溶解した。ビオチン化オリゴdTを、ヌクレアーゼを含まないH2Oで1:10に希釈し、4μlを各溶解物に加えた。サンプルを、42℃で10分間インキュベートして、オリゴdTをmRNAにアニーリングさせた。溶解物の50μlアリコートを、ストレプトアビジン被覆PCRチューブに移し、37℃で3分間インキュベートした。PCRチューブから溶解物を取り出し、捨てた。チューブに捕捉されたRNAを、200μlの洗浄バッファーで3回洗浄した。
RSV分離株を感染させた細胞を、A4B4、SYNAGIS(登録商標)および対照 Pan RSV MAbプールにより、以下のように抗RSV結合について試験した。4〜5日のRSV感染HEp-2培養物をPBSと混合し、300×gで室温で5分間遠心分離した。分析のために、ペレットを少量のPBSに再懸濁した。5mmウェルあたり各細胞懸濁液の5〜10μlを、アセトンで洗浄した12ウェルHTCスーパー硬化ガラススライド上にスポットし、風乾させた。スライドを、冷(-20℃)アセトン中で10分間固定した。各ウェルにPBS中1% BSAの10μlをスポットし、室温で10分間インキュベートして、反応をブロッキングした。スライドを、1×PBS/0.1%Tween-20で3回洗浄し、風乾した。1ウェルあたりブロッキングバッファーで250ng/mlに希釈した各1次抗体試薬10μlをスポットし、反応物を、加湿37℃環境で30分間インキュベートした。次にスライドを、1×PBS/0.1%Tween-20を3回交換して1分間洗浄し、風乾した。ブロッキングバッファーで250ng/mlに希釈した適当な2次コンジュゲート抗体試薬の10μlを各ウェルに加え、反応物を、加湿37℃環境でさらに30分間インキュベートした。次に、スライドを1×PBS/0.1%Tween-20を3回交換して1分間洗浄した。PBS、10mM Tris(pH8.0)、1mM EDTA中の50%グリセロールの5μlを、各反応ウェルにスポットし、スライドにカバーガラスをのせた。次に、各反応ウェルを、蛍光顕微鏡で200×の倍率でB-2Aフィルター(EX450〜490nm)を使用して分析した。陽性反応物を、染色していない細胞または2次試薬のみで染色した細胞で得られた自己蛍光バックグランドに対して、スコアした。
ここで使用した方法は、Johnsonら、1999, J. Infectious Diseases 180:35-40に記載されている(この開示内容は、参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる)。簡単に説明すると、抗体希釈は、96ウェルプレートを使用して、三重で行った。10 TCID50のRSV A MARMを、試験すべき抗体の連続希釈物と、37℃で2時間、96ウェルプレートのウェル中でインキュベートした。このアッセイで使用した抗体は、SYNAGIS(登録商標)の重鎖および軽鎖、A4B4の重鎖と軽鎖、SYNAGIS(登録商標)とA4B4の重鎖と軽鎖の組合せ、軽鎖または重鎖に点突然変異を有するSYNAGIS(登録商標)重鎖または軽鎖、または軽鎖に点突然変異を有するA4B4の重鎖を含んだ。アッセイで陽性対照としてMAb13/19を使用した。次に、RSV感受性HEp-2細胞(2.5X104)を各ウェルに加え、37℃で5%CO2中で5日間培養した。5日後、培地を吸引し、細胞を洗浄し、80%メタノールと20%PBSを有するプレートに固定した。次に、RSV複製を、Fタンパク質発現により測定した。固定した細胞を、ビオチンコンジュゲート抗Fタンパク質モノクローナル抗体(panFタンパク質、C部位特異的MAb133-1H)とインキュベートし、洗浄し、西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートアビジンをウェルに加えた。ウェルを再度洗浄し、基質TMB(チオニトロ安息香酸)のターンオーバーを450nmで測定した。モノクローナル抗体についてのアッセイの結果を下記表22に示す。
A4B4の結合活性を、IFAにより、SYNAGIS(登録商標)の存在下でHEp-2細胞上での3回の選択で得られたRSV A/Long MARMのパネルに対して試験した。RSVの融合タンパク質、糖タンパク質、および核タンパク質に対するモノクローナル抗体のプール(対照 Pan RSV MAb プール)を、RSVの検出のための陽性対照として使用した。A型とB型の糖タンパク質を区別する2つのモノクローナル抗体を用いて、RSV MARMのサブタイプ決定を行った。表20に要約したように、A4B4とSYNAGIS(登録商標)による結合活性の欠如が、MARMで証明された。A4B4とSYNAGIS(登録商標)による結合の欠如に対して、対照 Pan RSV MAb プールの結合は、試験したすべてのMARMで証明された。双方のMARMを、RSV A型として分類した。野生型RSV A/Longを感染させたHEp-2細胞は、A4B4およびSYNAGIS(登録商標)、Pan RSV MAb プール、およびRSV A型MAbに結合したが、予測された通り、RSV B型MAbには反応しなかった。
本実施例は、A4B4の存在下での複数回の選択によりSYNAGISに対するRSVA/LongのMARM(MARM B9)からMARMが単離できることを証明する。
A4B4(ロット#524-9、3.57mg/ml)、対照 Pan RSV MAb プール(Chemicon MAB858-4、3つのMAb 抗F、G、およびNタンパク質の混合物)、抗RSV A型MAb(Chemicon MAB858-1)、および抗RSV B型MAb(Chemicon MAB858-2)を、この研究で使用した。2次検出試薬は、Alexa(商標名)488コンジュゲートヤギF(ab')2抗マウスまたはヒトIgG(H+L)であった。ここでは、MARM B9(1.78×106 TCID50/ml)を使用した。HEp-2細胞を、10%FBSと2mM L-Glnを補足したEMEM中で37℃で、5%CO2環境中で増殖させた。mRNA捕捉キット(Roche)を使用して、感染細胞からメッセンジャーRNAを精製した。mRNAサンプルを使用して、cDNA First Strand 反応キット(Roche)を用いてcDNAを作製し、遺伝子特異的プライマーを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によりRSV Fタンパク質遺伝子を増幅した。
MARMの選択:
24ウェルプレートの1ウェルあたり4×105 HEp-2細胞を、増殖培地(EMEM、10%FBS、2mM L-Gln)に接種し、増殖条件(37℃、5%CO2)で一晩インキュベートした。個々のMARM選択のために、44ウェルに接種した。感染の前に、ウイルスバンクMARM B9の新鮮なバイアルを、37℃で急速に融解し、HEp-2増殖培地でウイルス力価を6×105 pfu/mlに調整した。ウイルス接種物にA4B4を最終濃度2μg/mlになるように加え、混合物を37℃で1時間インキュベートした。RSVのアリコートを、無関係のヒトIgG1 MAb(MEDI-507)とインキュベートし、陰性対照として使用した。各プレートについて、未感染対照ウェルも準備した。細胞を新鮮な培地で1回洗浄し、100μlのRSV A/Longウイルスストック/MAb混合物を重層した。増殖条件下で細胞を4時間インキュベートし、次に各ウェルに1mlの増殖培地を加えた。細胞変性作用(CPE)を、毎日光学顕微鏡でモニターした。選択の7日後、各ウェルの内容物に、さらに4μg/mlのA4B4または無関係のヒトIgG1 MAbを補足し、新鮮な接種したHEp-2細胞を感染するのに使用した(24ウェルプレートの1ウェル当たり4×105細胞)。さらに7日間の選択後、このプロセスを、もう一度繰り返し、全部で3回選択した。明瞭なCPEを示すウェルの内容物を、50%ショ糖溶液と1:1で混合し、直ちに-80℃で凍結した。
3回目の選択後、独立したウェルの内容物をMARMのプラーク精製のために使用した。MARMストックの新鮮なバイアル(3回目の選択後凍結した)を室温で融解し、増殖培地で1:10、1:100、および1:1000で希釈し、4μg/mlのA4B4と1時間インキュベーション後、感染させた。6ウェルプレート(5×105細胞/ウェル)中のHEp-2細胞の単層上に0.5mlのウイルス接種物を重層し、増殖条件下で4時間インキュベートした。感染後、接種物を注意深く吸引し、細胞に、0.8%低融解温度アガロース(Gibco BRL)を補足し4μg/mlのA4B4を含有する2mlの増殖培地を重層した。アガロースが完全に固化した後、シャーレをインキュベーターに戻し、プラーク形成について毎日モニターした。比較のために、未感染対照とMARM B9 RSV対照プレートを準備した。5〜6日後、各プレートに、50μg/mlのニュートラルレッドを補足した増殖培地中0.8%のアガロースをさらに2ml重層した。増殖条件下で一晩インキュベーション後、プラークをスコアし、2回目の精製のために拾い上げた。
2回目のプラーク精製後、分離株からの3つのクローンを、高力価ウイルスストックの産生のために拡張した。個々のプラークを、ピペットチップで拾い上げ、0.2mlの新鮮な培地中で4℃で一晩インキュベートして、ウイルスを溶出させた。各アリコートを使用して、平底24ウェルプレート中でHEp-2細胞(前日に接種した2.5×105細胞/ウェル)を4μg/mlのA4B4の存在下で感染させた。5日後、ウェルの全内容物を使用して、24ウェルプレート中でHEp-2細胞を4μg/mlのA4B4の存在下で感染させた。次に、各接種物を、4μg/mlのA4B4の存在下でT-25フラスコ(前日に接種した6.5×106細胞/フラスコ)に拡張し、5mlの高力価ウイルスストックを産生した。MARMストックを、前述のように凍結した。
SYNAGIS(登録商標)のエピトープを含有すると考えられるFタンパク質遺伝子の約800ヌクレオチド領域のヌクレオチド配列を決定するために、感染4日後にMARM感染HEp-2細胞から単離したmRNAを用いて、First strand cDNA合成を行った。RSV感染HEp-2細胞を、mRNA捕捉キットで提供される150μlの溶解バッファーで溶解した。ビオチン化オリゴdTを、ヌクレアーゼを含まないH2Oで1:10に希釈し、4μlを各溶解物に加えた。サンプルを、42℃で10分間インキュベートして、オリゴdTをmRNAにアニーリングさせた。溶解物の50μlアリコートを、ストレプトアビジン被覆PCRチューブに移し、37℃で3分間インキュベートした。PCRチューブから溶解物を取り出し、捨てた。チューブに捕捉されたRNAを、200μlの洗浄バッファーで3回洗浄した。
RSV分離株を感染させた細胞を、A4B4、SYNAGIS(登録商標)および対照 Pan RSV MAbプールにより、以下のように抗RSV結合について試験した。4〜5日のRSV感染HEp-2培養物をPBSと混合し、300×gで室温で5分間遠心分離した。分析のために、ペレットを少量のPBSに再懸濁した。5mmウェルあたり各細胞懸濁液の5〜10μlを、アセトンで洗浄した12ウェルHTCスーパー硬化ガラススライドにスポットし、風乾させた。スライドを、冷(-20℃)アセトン中で10分間固定した。各ウェルにPBS中1% BSAの10μlをスポットし、室温で10分間インキュベートして、反応をブロッキングした。スライドを、1×PBS/0.1%Tween-20で3回洗浄し、風乾した。1ウェルあたりブロッキングバッファーで250ng/mlに希釈した各1次抗体試薬10μlをスポットし、反応物を、加湿37℃環境で30分間インキュベートした。次にスライドを、1×PBS/0.1%Tween-20を3回交換して1分間洗浄し、風乾した。ブロッキングバッファーで250ng/mlに希釈した適当な2次コンジュゲート抗体試薬の10μlを各ウェルに加え、反応物を、加湿37℃環境でさらに30分間インキュベートした。次に、スライドを1×PBS/0.1%Tween-20を3回交換して1分間洗浄した。PBS、10mM Tris(pH8.0)、1mM EDTA中の50%グリセロールの5μlを、各反応ウェルにスポットし、スライドにカバーガラスをのせた。次に、各反応ウェルを、蛍光顕微鏡で200×の倍率でB-2Aフィルター(EX450〜490nm)を使用して分析した。陽性反応物を、染色していない細胞または2次試薬のみで染色した細胞で得られた自己蛍光バックグランドに対して、スコアした。
ここで使用した方法は、Johnsonら、1999, J. Infectious Diseases 180:35-40に記載されている(この開示内容は、参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる)。簡単に説明すると、抗体希釈は、96ウェルプレートを使用して、三重で行った。10 TCID50のRSV A MARMSを、試験すべき抗体の連続希釈物と、37℃で2時間、96ウェルプレートのウェル中でインキュベートした。このアッセイで使用した抗体は、SYNAGIS(登録商標)の重鎖またはA4B4の重鎖、およびSYNAGIS(登録商標)の軽鎖、A4B4の軽鎖、点突然変異を有するA4B4の軽鎖、L1FRの軽鎖、または点突然変異を有するL1FRの軽鎖を含んだ。アッセイで陽性対照としてMAb13/19を使用した。次に、RSV感受性HEp-2細胞(2.5×104)を各ウェルに加え、37℃で5%CO2中で5日間培養した。5日後、培地を吸引し、細胞を洗浄し、80%メタノールと20%PBSを有するプレートに固定した。次に、RSV複製を、Fタンパク質発現により測定した。固定した細胞を、ビオチンコンジュゲート抗Fタンパク質モノクローナル抗体(panFタンパク質、C部位特異的MAb133-1H)とインキュベートし、洗浄し、西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートアビジンをウェルに加えた。ウェルを再度洗浄し、基質TMB(チオニトロ安息香酸)のターンオーバーを450nmで測定した。モノクローナル抗体についてのアッセイの結果を下記表25に示す。
A4B4の結合活性を、IFAにより、A4B4の存在下でHEp-2細胞での3回の選択で得られたMARMに対して試験した。RSVの融合タンパク質、糖タンパク質、および核タンパク質に対するモノクローナル抗体のプール(対照 Pan RSV MAb プール)を、RSVの検出のための陽性対照として使用した。A型とB型の糖タンパク質を区別する2つのモノクローナル抗体を用いて、RSV MARMのサブタイプ決定を行った。表23に要約したように、A4B4とSYNAGIS(登録商標)による結合活性の欠如が、両方のMARMで証明された。A4B4とSYNAGIS(登録商標)による結合の欠如に対して、対照 Pan RSV MAb プールの結合は、試験したすべてのMARMで証明された。両方のMARMを、RSV A型として分類した。野生型RSV A/Longを感染させたHEp-2細胞は、A4B4およびSYNAGIS(登録商標)、Pan RSV MAb プール、およびRSV A型MAbに結合したが、予測された通り、RSV B型MAbには反応しなかった。
in vitroアッセイと動物モデルで試験した本発明の抗体またはその断片を、さらに安全性、耐性、および薬物動態について、正常で健康な成人ボランティアの群で評価できる。ボランティアに、筋肉内、静脈内、または肺送達系で、RSV抗原に免疫特異的に結合する抗体またはその断片の0.5mg/kg、3mg/kg、5mg/kg、10mg/kgまたは15mg/kgの単一用量を投与した。各ボランティアを少なくとも24時間モニターした後、抗体またはその断片の単一用量を受け、各ボランティアは、臨床の場で用量を受けた後少なくとも48時間モニターされるだろう。次にボランティアは、投薬後3、7、14、21、28、35、42、49、および56日目に通院患者としてモニターされる。
当業者は、ルーチン実験のみを使用することで、本明細書に記載の発明の特定の実施形態に対する多くの同等物を、認識するだろうしまたは確認することができる。そのような同等物は、以下の特許請求の範囲に包含されることが意図される。
Claims (50)
- 呼吸器合胞体ウイルス(RSV)F抗原に特異的に結合する抗体であって、
配列番号254で表されるアミノ酸配列を含む可変重鎖( VH chain) 及び
配列番号255で表されるアミノ酸配列を含む可変軽鎖( VL chain)を含む、前記抗体 。 - 呼吸器合胞体ウイルス(RSV)F抗原に特異的に結合する抗体であって、
配列番号10で表されるアミノ酸配列からなるVH CDR1 、配列番号19で表されるアミノ酸配列からなるVH CDR2、及び配列番号20で表されるアミノ酸配列からなるVH CDR3を含む可変重鎖( VH chain)又は可変重(VH)ドメイン、並びに
配列番号39で表されるアミノ酸配列からなるVL CDR1、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるVL CDR2、及び配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるVL CDR3 を含む可変軽鎖( VL chain)又は可変軽(VL)ドメインを含む、
前記抗体。 - 図2に示されるフレームワーク領域を含む請求項2に記載の抗体。
- 前記抗体がモノクローナル抗体である請求項1又は3記載の抗体
- 前記抗体がFab又は F(ab’)2 フラグメントである請求項2又は3記載の抗体。
- 前記抗体がヒト化抗体である請求項2記載の抗体。
- 前記フレームワーク領域が一つ以上のアミノ酸の変異を含む請求項3記載の抗体。
- 請求項1-7いずれか1項記載の抗体及び製薬上許容されうる担体を含む組成物。
- 前記組成物が製薬組成物である請求項8記載の組成物。
- 請求項1,2又は3に記載の抗体をコードするヌクレオチド配列を含む核酸分子。
- 請求項10記載の核酸分子を含むベクター。
- 核酸分子の発現を制御するヌクレオチド配列を更に含む請求項11記載のベクター。
- 請求項10記載の核酸分子を含む又は発現するように遺伝子操作された宿主細胞。
- 請求項11記載のベクターを含む宿主細胞。
- 宿主細胞が哺乳類の宿主細胞である請求項13又は14記載の宿主細胞。
- 哺乳類宿主細胞が、CHO, VERY, BHK, HeLa, COS, MDCK, 292, 3T3 W138, BT483, Hs578T, HTB2, BT2O, T47D, NS0, CRL7O30 及び HsS78Bstからなる群から選ばれる哺乳類細胞である請求項15に記載の宿主細胞。
- 請求項13〜16いずれか1項に記載の宿主細胞を前記核酸分子が発現される条件下で培養することを含む、抗体の製造方法。
- 使用説明書及び容器内の請求項1〜7いずれか1項に記載の抗体、を含むキット。
- 使用説明書及び容器内の請求項10に記載される核酸分子、を含むキット。
- 非-IgGポリペプチドが組換え法により融合された請求項1〜7いずれか1項に記載の抗体を含む融合タンパク質。
- 請求項20の融合タンパク質及び製薬上許容されうる担体を含む組成物。
- 前記組成物が医薬組成物である請求項21記載の組成物。
- 使用説明書及び容器に入れられた請求項20記載の融合タンパク質、を含むキット。
- 非−IgGポリペプチドが化学的にコンジュゲートされた請求項1〜7いずれか1項記載の抗体を含む抗体コンジュゲート。
- 前記非−IgGポリペプチドが診断剤又は治療剤である請求項24記載の抗体コンジュゲート。
- 請求項24又は25記載の抗体コンジュゲート及び製薬上許容されうる担体を含む組成物。
- 前記組成物が医薬組成物である請求項26に記載の組成物。
- 使用説明書及び容器に入れられた請求項24又は25に記載の抗体コンジュゲート、を含むキット。
- 請求項20に記載される融合タンパク質の製造方法であって、
(a) 前記融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列に制御可能に結合されたプロモーターを含むベクターで宿主細胞を形質転換し、そして
(b) 該宿主細胞を培養して該融合タンパク質を生産することを含む、前記方法。 - in vitro でRSV感染を検出する方法であって、
(a) 被験者の細胞又は組織のサンプルを請求項1〜7いずれか1項に記載の抗体と接触させ、そして
(b) 該細胞又は組織のサンプル中のRSV F抗原のレベルを検出することを含み、ここで、RSVに感染していない細胞又は組織中のRSV F抗原の対照レベルと比較して被験者の細胞又は組織サンプル中のRSV F抗原の増加をRSV感染の指標とする、前記方法。 - in vitroでRSV感染を検出する方法であって、
(a) 被験者の細胞又は組織のサンプルを請求項20に記載の融合タンパク質と接触させ、そして
(b) 前記細胞又は組織サンプル中にRSV Fタンパク質のレベルを検出し、ここで、RSVに感染していない細胞又は組織中のRSV F抗原の対照レベルと比較して被験者の細胞又は組織サンプル中のRSV F抗原の増加をRSV感染の指標とする、前記方法。 - in vitro でRSV感染を検出する方法であって、
(a) 被験者の細胞又は組織のサンプルを請求項24又は25に記載の抗体コンジュゲートに接触させ、そして
(b) 前記細胞又は組織サンプル中にRSV Fタンパク質のレベルを検出し、ここで、RSVに感染していない細胞又は組織中のRSV F抗原の対照レベルと比較して被験者の細胞又は組織サンプル中のRSV F抗原の増加をRSV感染の指標とする、前記方法。 - 筋肉内送達用に製剤化された請求項9に記載される組成物。
- RSV感染又はその症状の防止に使用するための請求項21, 22, 26, 27, 又は33記載の組成物 。
- RSV感染又はその症状の治療に使用するための請求項21, 22, 26, 27,又は33記載の組成物 。
- RSV感染又はその症状の診断に使用するための請求項21, 22, 26, 27,又は33記載の組成物 。
- 哺乳類におけるRSV感染又はその症状の予防に使用するための医薬の製造における請求項1〜7いずれか1項に記載の抗体の使用。
- 哺乳類におけるRSV感染又はその症状の予防に使用するための医薬の製造における請求項8又は9に記載の組成物の使用。
- 哺乳類におけるRSV感染又はその症状の予防に使用するための医薬の製造における請求項33に記載の組成物の使用。
- 哺乳類におけるRSV感染又はその症状の治療に使用するための医薬の製造における請求項1〜7いずれか1項に記載の抗体の使用。
- 哺乳類におけるRSV感染又はその症状の治療に使用するための医薬の製造における請求項8又は9に記載の組成物の使用。
- 哺乳類におけるRSV感染又はその症状の治療に使用するための医薬の製造における請求項33に記載の組成物の使用。
- 哺乳類におけるRSV力価の低下に使用するための医薬の製造における請求項1〜7いずれか1項に記載の抗体の使用。
- 哺乳類におけるRSV力価の低下に使用するための医薬の製造における請求項8又は9に記載の組成物の使用。
- 哺乳類におけるRSV力価の低下に使用するための医薬の製造における請求項33に記載の組成物の使用。
- 筋肉内に投与される、請求項37〜45のいずれか1項に記載の使用。
- 哺乳類がヒト被験者である請求項37〜45いずれか1項記載の使用。
- 哺乳類が老人ホームにおけるヒト被験者、孤児院のヒト被験者、骨髄移植を受けたヒト被験者、老齢のヒト被験者又は嚢胞性線維症、気管支肺異形成、先天性心疾患、先天性免疫不全もしくは後天性免疫不全を患うヒト被験者である、請求項37〜45のいずれか1項に記載の使用。
- 哺乳類がヒト幼児である、請求項37〜45のいずれか1項に記載の使用。
- 哺乳類が未熟児であるかまたはRSV感染で入院するリスクのあるヒト幼児である、請求項37〜45のいずれか1項に記載の使用。
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