JP4183484B2 - Fractionated measurement of conjugated bilirubin - Google Patents
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Description
【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、ビリルビンのうち抱合ビリルビンを酵素的に測定する抱合ビリルビンの分別測定法に関するものである。
【0002】
【従来の技術】
ビリルビンは、胆汁中に最も多く存在する色素で、主として老廃赤血球により生成する血色素からつくられ、血清中では主にグルクロン酸と結合した抱合ビリルビンと、アルブミンと結合した非抱合型ビリルビンおよびδ−ビリルビンとして存在する。抱合ビリルビンと、非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンとを合わせたものを総ビリルビンと呼んでいる。
抱合ビリルビン、非抱合ビリルビンの血清中での存在量から、肝機能障害の分別診断および肝機能障害の程度を知ることが可能であるため、これらビリルビンの分別定量は臨床診断において重要な位置を占めている。特に抱合ビリルビンは、肝機能障害、胆汁うっ滞、さらにそれらの疾患の予後の指標になるものと考えられている。
【0003】
従来、このようなビリルビンの測定法としては、ジアゾ試薬による比色法(例えば、非特許文献1参照)などの化学的測定法が主に用いられてきた。
しかしながら、これらの化学的測定法では、抱合ビリルビンのうちジグルクロナイド体は速やかに反応するが、モノグルクロナイド体は反応が遅いため、反応時間を正確に規定しないと抱合ビリルビンの正確な測定ができないという問題があった。
【0004】
一方、血清中のビリルビンの高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による分析法がラウルらにより報告された(例えば、非特許文献2参照)。
この報告によると、血清中のビリルビンは主にα〜δの4分画に分けられ、δ位分画のビリルビン、すなわちδ−ビリルビンは、アルブミンと共有結合したビリルビンであることが明らかにされた。
その後、多数のグループにより、HPLCによるビリルビンの定量法が提案された(例えば、非特許文献3、4、5参照)。
しかしながら、このHPLC法では、一度に大量の検体を測定できないこと、およびランニングコストが高いことなど多くの問題があった。
【0005】
さらに、酵素を用いた抱合ビリルビンの定量法としては、ミロセシウム属(Myrothecium)由来のビリルビンオキシダーゼを用いる測定法(例えば、特許文献1参照)やビリルビンオキシダーゼをpH3.5〜4.5の範囲で作用させて測定を行う方法(例えば、特許文献2参照)などが報告されており、従来のジアゾ法に比べて、いずれも簡便性に優れたものであった。
【0006】
しかしながら、本発明者の追試によれば、前記酵素による定量法のうち、前者では非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンの反応が認められ、正確性に欠けるという問題があり、後者ではδ−ビリルビンの反応が認められ正確性に欠けること、および長い反応時間が必要であるため測定の自動化が困難であるという問題があった。
【0007】
このため、本発明者は、ビリルビンオキシダーゼに反応促進剤としてアニリン類、ペンタシアノ鉄錯塩およびコバルト(II)錯体を配合し、測定のpHを2.5〜4.0とすることにより、抱合ビリルビンを選択的かつ迅速に測定できる酵素法による抱合ビリルビン比色定量法および試薬を既に提案している(例えば、特許文献3参照)。
【0008】
【特許文献1】
特開昭59−17999号公報
【特許文献2】
特開昭59−125899号公報
【特許文献3】
特開平3−175998号公報
【0009】
【非特許文献1】
金井泉.「臨床検査法提要」昭和53年、金原出版、p.XII-24
【非特許文献2】
John J.Lauff、et.al.「J.Chromatogr」1981年、226巻、p.391-402
【非特許文献3】
Ohnishi S、et.al.「 Biochem.J」1980年、190巻、p.527-532
【非特許文献4】
Nakamura H、et.al.「分析化学」1987年、36巻、p.352-355
【非特許文献5】
Adachi Y、et.al.「Clin.Chem.」1988年、34巻、p.385-388
【0010】
【発明が解決すべき課題】
しかしながら、上記酵素を利用した測定法では、ジアゾ試薬を用いる場合と同様に、ビリルビンの分別性が充分でないため、抱合ビリルビンに対し反応が完全ではないか、または、抱合ビリルビンだけでなく、非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンの一部にも反応してしまうという問題があった。
また、抱合ビリルビンの分別性を向上させるために低pH域(pH2.5〜4.0)で反応を行う必要があり、分析装置に対して好ましいものではなかった。
【0011】
従って本発明は、このような従来の課題に着目してなされたものであって、ビリルビンを含有する検体中の非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンに反応することなく、抱合ビリルビンのみを精度良く測定できる抱合ビリルビンの分別測定法を提供することを目的とする。
【0012】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意研究した結果、ヒドロキノン類、6−ヒドロキシ−クロマン類、および5−ヒドロキシベンゾ−2,3−ジヒドロフラン類から成る群から選択される少なくとも1種を共存させることによって、pH4.5〜7.0という穏やかな条件においても、抱合ビリルビンのみを精度良く測定できることを見出し、本発明を完成させた。
【0013】
すなわち、本発明は、下記のような構成からなるものである。
(1)ビリルビンを含有する検体にビリルビンオキシダーゼを作用させて、それにより生ずるビリルビンの変化を光学的に測定することにより前記検体中の抱合ビリルビン量を測定する方法において、ヒドロキノン類、6−ヒドロキシ−クロマン類、および5−ヒドロキシベンゾ−2,3−ジヒドロフラン類から成る群から選択される少なくとも1種を共存させることを特徴とする検体中の抱合ビリルビンの分別測定法。
【0014】
(2)ヒドロキノン類がヒドロキノン、メチルヒドロキノン、メトキシヒドロキノン、2,3−ジメチルヒドロキノン、クロロヒドロキノン、ブロモヒドロキノン、3’,8’−ジヒドロキシベンゾノルボルナン、2,5−ジヒドロキシ安息香酸、2,5−ジヒドロキシベンゼンスルホン酸、2,5−ジヒドロキシ−4’−メチルジフェニル、および1,2,4−トリヒドロキシベンゼンから成る群から選択される少なくとも1種である(1)記載の検体中の抱合ビリルビンの分別測定法。
【0015】
(3)6−ヒドロキシ−クロマン類が6−ヒドロキシ−2,5,7,8−テトラメチルクロマン−2−カルボン酸および/またはトコフェロールである(1)記載の検体中の抱合ビリルビンの分別測定法。
【0016】
(4)ヒドロキノン類、6−ヒドロキシ−クロマン類、および5−ヒドロキシベンゾ−2,3−ジヒドロフラン類から成る群から選択される少なくとも1種の濃度が0.001〜10mMの範囲である(1)〜(3)記載の検体中の抱合ビリルビンの分別測定法。
【0017】
(5)pH4.5〜7.0の範囲で反応させる(1)〜(4)記載の検体中の抱合ビリルビンの分別測定法。
【0018】
【発明の実施の形態】
以下、本発明について更に詳細に説明する。
酵素法によるビリルビンの測定において、抱合ビリルビンのみを測定しようとする場合、検体のpHを変化させて測定することが知られている(Akira Kosaka,Clin.Biochem.,20,451-458;1987)。つまり、非抱合ビリルビンやδ−ビリルビンは、抱合ビリルビンに比べ酵素反応性が低く、低いpH領域では酵素反応を受けにくくなるため、例えばpH3.5付近で反応させると、抱合ビリルビンが優先的に反応するようになる。pHを更に低くすると、非抱合ビリルビンやδ−ビリルビンは殆ど反応を受けなくなるが、その一方でビリルビンオキシダーゼの至適pHは、5〜7であり、酵素活性が著しく低下してしまうため、反応に長時間を要したり、充分に抱合ビリルビンが酸化されなくなる。また、pH8〜10でも同様の特性があり、満足のいく測定結果を出せなくなる。
【0019】
本発明は、抱合ビリルビンの分別剤としてヒドロキノン類、6−ヒドロキシ−クロマン類、および5−ヒドロキシベンゾ−2,3−ジヒドロフラン類から成る群から選択される少なくとも1種を用いることにより、上記の問題点を解決したものである。
この分別剤は、抱合ビリルビンが最もビリルビンオキシダーゼの酵素活性が高いpH領域で反応でき、更に非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンの反応を選択的に阻害するという効果を有している。
【0020】
本発明で抱合ビリルビンの分別剤として使用するヒドロキノン類としては、公知のものの中から適宜選択することができる。その具体例としては、ヒドロキノン、メチルヒドロキノン、メトキシヒドロキノン、2,3−ジメチルヒドロキノン、クロロヒドロキノン、ブロモヒドロキノン、3’,8’−ジヒドロキシベンゾノルボルナン、2,5−ジヒドロキシ安息香酸、2,5−ジヒドロキシベンゼンスルホン酸、2,5−ジヒドロキシ−4’−メチルジフェニル、および1,2,4−トリヒドロキシベンゼンから成る群から選択される少なくとも1種が挙げられる。
【0021】
また、6−ヒドロキシ−クロマン類も公知のものの中から適宜選択すれば良いが、特に6−ヒドロキシ−2,5,7,8−テトラメチルクロマン−2−カルボン酸、および/またはトコフェロールが好ましい。
【0022】
これら抱合ビリルビンの分別剤の濃度は0.001〜10mMの範囲であることが好ましく、より好ましくは0.01〜0.5mMの範囲である。
分別剤の濃度が0.001mM未満となると、非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンの反応を選択的に阻害できないため、抱合ビリルビンのみを精度良く測定することができなくなり、逆に、10mMを超えると、ビリルビンオキシダーゼの酵素活性が阻害される。
【0023】
ビリルビンオキシダーゼの至適pHは、5.0〜7.0、好ましくは5.0〜6.5であるため、測定中は反応液のpHを一定に維持することが必要である。このため、一般に酵素反応により抱合ビリルビンを測定する場合は、緩衝液を用いる。
本発明で用いることのできる緩衝液としては、pHを上記範囲に維持できるものであれば、特に制限されず、公知の緩衝液の中から適宜選択することができるが、特にグッド緩衝液やリン酸緩衝液などが好ましい。
本発明においては、pH4.5〜7.0という穏やかな条件下で反応を行えるため、分析装置に対しても好ましいと言える。
【0024】
本発明において、抱合ビリルビンの測定を行う検体としては、一般にビリルビンを含有する水性検体であり、例えば、血清、血漿、胆汁などが挙げられる。これらの検体は、必要に応じて希釈されたり、前処理されていても良い。
また、本発明で用いられるビリルビンオキシダーゼとしては、一般にビリルビンオキシダーゼとして用いられている酵素であればいずれでも良いが、入手し易さや取り扱い易さを考慮すると、ミロセシウム属由来のものが好ましい。このビリルビンオキシダーゼの反応中の濃度は、0.01〜10単位/mL、好ましくは0.1〜2単位/mLである。
【0025】
本発明は、ヒドロキノン類、6−ヒドロキシ−クロマン類、および5−ヒドロキシベンゾ−2,3−ジヒドロフラン類から成る群から選択される少なくとも1種を含む緩衝液(第1試薬)と、ビリルビンオキシダーゼ溶液(第2試薬)とからなる2試薬系の抱合ビリルビン測定用試薬を提供することができる。
ヒドロキノン類および6−ヒドロキシ−クロマン類としては、上述したものの中から適宜選択すれば良い。
【0026】
本発明による抱合ビリルビンの測定は、上記ヒドロキノン類、6−ヒドロキシ−クロマン類、および5−ヒドロキシベンゾ−2,3−ジヒドロフラン類から成る群から選択される少なくとも1種を含む緩衝液(第1試薬)を加え、予備加温後、ビリルビンオキシダーゼ溶液(第2試薬)を加えて反応させ、その結果生ずる抱合ビリルビンの減少を光学的に測定することにより行われる。
【0027】
また、ヒスチジンやアルギニンを添加することによりヒドロキノン類などの分別剤としての効果を更に増強させることができる。本発明においては、特に必要とされないが、必要に応じて安息香酸などの反応促進剤、界面活性剤、アルブミンなどの蛋白質などを適宜添加することができる。
【0028】
【発明の効果】
本発明は、ヒドロキノン類、6−ヒドロキシ−クロマン類、および5−ヒドロキシベンゾ−2,3−ジヒドロフラン類から成る群から選択される少なくとも1種を共存させることによって、ビリルビンを含有する検体中の非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンに反応することなく、抱合ビリルビンのみを精度良く測定できる抱合ビリルビンの分別測定法を提供することができる。
従って本発明によれば、検体中の抱合ビリルビンを高い精度で測定できるので、肝機能や造血機能系疾患を精度良く診断することができる。
【0029】
また、本発明は、pH4.5〜7.0という穏やかな条件下においても、抱合ビリルビンのみを精度良く測定できるので、分析装置に対しても好ましいと言える。
【0030】
【実施例】
以下、本発明を実施例に基づき更に詳細に説明するが、本発明はこれによって限定されるものではない。
【0031】
実施例1 非抱合ビリルビン反応の抑制効果
50μMの各種ヒドロキノン類、0.05%のトリトンX−305、および100mMのサリチル酸ナトリウムを含有する200mMの2−モルホリノエタンスルホン酸(MES)緩衝液(第1試薬:pH5.50)0.24mLに、非抱合ビリルビン(干渉チェック BIL−Fを15mg/dLに希釈したもの:国際試薬社製)0.008mLを加え、37℃で5分間予備加熱後、ビリルビンオキシダーゼ2.0U/mLを含む10mMのN−シクロヘキシル−3−アミノプロパンスルホン酸(CAPS:pH9.0)緩衝液(第2試薬)0.06mLを加えて、37℃で日立7170形自動分析装置を用いて波長450nmにおける吸光度の経時的変化を測定した。
また、ヒドロキノン類を含まない他は、上記と全く同様な方法で測定を行い、コントロールとして上記測定値と比較した。その結果、図1に示すように、本発明の抱合ビリルビンの分別測定法によれば、第2試薬添加後のある一定時間経過まで非抱合ビリルビンは殆ど酸化されないことが判る。非抱合ビリルビンの酸化を防止できる時間は、ヒドロキノンの種類や添加濃度によりコントロールできる。
尚、1,2,4−トリヒドロキシベンゼンでは、吸光度の上昇が見られるが、この場合でも非抱合ビリルビンの反応は抑制されていることが判る。
【0032】
実施例2 抱合ビリルビン反応に対する影響
実施例1における非抱合ビリルビン試料の代わりにジタウロビリルビン試料(干渉チェック BIL−Cを10mg/dLに希釈したもの:国際試薬社製の抱合ビリルビン)を用いた他は、実施例1と全く同様にして吸光度の経時的変化を測定した。その結果、図2に示すように、抱合ビリルビンの酸化反応は、非常に速やかであり、ヒドロキノン類の影響は殆どないことが判る。
実施例1および実施例2の結果から、ヒドロキノン類は、非抱合ビリルビンの酸化反応のみを特異的に阻害するため、抱合ビリルビンのみを分別測定できることが判る。
【0033】
実施例3 試薬における各種ビリルビンの反応性
実施例1におけるヒドロキノン類としてヒドロキノンを用いた第1試薬0.45mLと血清検体0.015mLとを37℃で5分間予備加熱後、実施例1で用いた第2試薬0.112mLを加えて、更に37℃で5分間予備加熱し、3g/dLのフッ化ナトリウム水溶液0.03mLおよび10g/dLのアスコルビン酸水溶液0.01mLを加えて、その反応液0.1mLをHPLCに供した。
HPLCは、溶離液-1中にフッ化ナトリウムが0.05g/dLおよびアスコルビン酸が0.2g/dLとなる様に添加したこと、カラムとしてLicrospher 100RP-18(メルク社製)を使用したこと、および装置として東ソー8020分析装置を用いた他は、上記したラウルらの方法に準じて行った。
尚、第1試薬と血清検体とを37℃で5分間予備加熱後、フッ化ナトリウム水溶液およびアスコルビン酸水溶液を添加し、次いで第2試薬を加え、ビリルビンオキシダーゼ反応を抑制した時の溶液中の各種ビリルビンを対照とした。
その結果、図3に示すように、本発明の試薬によるビリルビンオキシダーゼ反応により、ジグルクロナイドビリルビンおよびモノグルクロナイドビリルビンに相当するピークが消失し、非抱合ビリルビンおよびδ−ビリルビンに相当するピークは、それぞれ100%、96%残存していることが判る。
このことから、本発明による試薬により抱合ビリルビンのみを分別測定できることが示された。
【図面の簡単な説明】
【図1】非抱合ビリルビン反応の抑制効果を示すグラフである。
【図2】抱合ビリルビン反応に対する影響を示すグラフである。
【図3】試薬反応前後の各種ビリルビンに対する反応性を示すグラフである。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for differential measurement of conjugated bilirubin in which conjugated bilirubin is enzymatically measured in bilirubin.
[0002]
[Prior art]
Bilirubin is the most abundant pigment in bile, made mainly from hemoglobin produced by waste red blood cells. In serum, conjugated bilirubin mainly bound to glucuronic acid and unconjugated bilirubin and δ-bilirubin bound to albumin Exists as. A combination of conjugated bilirubin, unconjugated bilirubin and δ-bilirubin is called total bilirubin.
Since it is possible to know the differential diagnosis of liver dysfunction and the degree of liver dysfunction from the abundance of conjugated bilirubin and unconjugated bilirubin in serum, the differential quantification of these bilirubins occupies an important position in clinical diagnosis. ing. In particular, conjugated bilirubin is considered to be a prognostic indicator of liver dysfunction, cholestasis, and those diseases.
[0003]
Conventionally, as such a bilirubin measurement method, a chemical measurement method such as a colorimetric method using a diazo reagent (for example, see Non-Patent Document 1) has been mainly used.
However, in these chemical measurement methods, diglucuronide form of conjugated bilirubin reacts quickly, but monoglucuronide form reacts slowly, so accurate measurement of conjugated bilirubin is not possible unless the reaction time is specified accurately. There was a problem.
[0004]
On the other hand, Raul et al. Reported an analysis method of bilirubin in serum by high performance liquid chromatography (HPLC) (see, for example, Non-Patent Document 2).
According to this report, serum bilirubin was mainly divided into 4 fractions of α to δ, and it was revealed that bilirubin in the δ position, that is, δ-bilirubin, is bilirubin covalently bound to albumin. .
Thereafter, many groups proposed a method for quantifying bilirubin by HPLC (see, for example, Non-Patent Documents 3, 4, and 5).
However, this HPLC method has many problems such as the inability to measure a large amount of sample at a time and the high running cost.
[0005]
Furthermore, as a method for quantifying conjugated bilirubin using an enzyme, a measurement method using bilirubin oxidase derived from Myrothecium (see, for example, Patent Document 1) or bilirubin oxidase acts in a pH range of 3.5 to 4.5. The method (for example, refer patent document 2) etc. which are made to measure is reported, and all were excellent in the convenience compared with the conventional diazo method.
[0006]
However, according to the follow-up test of the present inventor, among the enzyme quantification methods, there is a problem that the reaction of unconjugated bilirubin and δ-bilirubin is recognized in the former and lacks accuracy, and the latter is a reaction of δ-bilirubin. Is recognized and lacks accuracy, and a long reaction time is required, making it difficult to automate the measurement.
[0007]
For this reason, this inventor mix | blended aniline, a pentacyano iron complex salt, and a cobalt (II) complex as a reaction accelerator with bilirubin oxidase, and set the measurement pH to 2.5-4.0. A conjugated bilirubin colorimetric method and reagent by an enzymatic method that can be measured selectively and rapidly have already been proposed (see, for example, Patent Document 3).
[0008]
[Patent Document 1]
JP 59-17999 A [Patent Document 2]
JP 59-125899 A [Patent Document 3]
Japanese Patent Laid-Open No. 3-175998
[Non-Patent Document 1]
Izumi Kanai, “Proposal for Clinical Laboratory Methods”, 1978, Kanbara Publishing, p.XII-24
[Non-Patent Document 2]
John J. Lauff, et.al.``J. Chromatogr '', 1981, 226, p.391-402
[Non-Patent Document 3]
Ohnishi S, et.al.``Biochem.J '' 1980, 190, p.527-532
[Non-Patent Document 4]
Nakamura H, et.al. "Analytical Chemistry" 1987, 36, p.352-355
[Non-Patent Document 5]
Adachi Y, et.al. "Clin. Chem." 1988, 34, 385-388
[0010]
[Problems to be Solved by the Invention]
However, in the measurement method using the enzyme, as in the case of using a diazo reagent, the bilirubin is not sufficiently fractionated, so that the reaction with respect to the conjugated bilirubin is not complete, or not only the conjugated bilirubin but also the non-conjugated. There was a problem that it also reacted with a part of bilirubin and δ-bilirubin.
Moreover, in order to improve the fractionation property of the conjugated bilirubin, it is necessary to perform the reaction in a low pH range (pH 2.5 to 4.0), which is not preferable for the analyzer.
[0011]
Therefore, the present invention has been made paying attention to such conventional problems, and can accurately measure only conjugated bilirubin without reacting with unconjugated bilirubin and δ-bilirubin in a sample containing bilirubin. The object is to provide a method for differential measurement of conjugated bilirubin.
[0012]
[Means for Solving the Problems]
As a result of intensive studies to solve the above problems, the present inventors have found that at least one selected from the group consisting of hydroquinones, 6-hydroxy-chromans, and 5-hydroxybenzo-2,3-dihydrofurans. By coexisting, the inventors have found that only conjugated bilirubin can be accurately measured even under mild conditions of pH 4.5 to 7.0, and the present invention has been completed.
[0013]
That is, the present invention has the following configuration.
(1) In a method for measuring the amount of conjugated bilirubin in a specimen by allowing bilirubin oxidase to act on the specimen containing bilirubin and optically measuring the change in bilirubin caused thereby, hydroquinones, 6-hydroxy- A method for differential measurement of conjugated bilirubin in a specimen, wherein at least one selected from the group consisting of chromans and 5-hydroxybenzo-2,3-dihydrofurans coexists.
[0014]
(2) Hydroquinones are hydroquinone, methylhydroquinone, methoxyhydroquinone, 2,3-dimethylhydroquinone, chlorohydroquinone, bromohydroquinone, 3 ', 8'-dihydroxybenzonorbornane, 2,5-dihydroxybenzoic acid, 2,5-dihydroxy Fractionation of conjugated bilirubin in a specimen according to (1), which is at least one selected from the group consisting of benzenesulfonic acid, 2,5-dihydroxy-4′-methyldiphenyl, and 1,2,4-trihydroxybenzene Measurement method.
[0015]
(3) The method for differential measurement of conjugated bilirubin in a specimen according to (1), wherein the 6-hydroxy-chromans are 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid and / or tocopherol .
[0016]
(4) At least one concentration selected from the group consisting of hydroquinones, 6-hydroxy-chromans, and 5-hydroxybenzo-2,3-dihydrofurans is in the range of 0.001 to 10 mM (1 ) To (3) The method for differential measurement of conjugated bilirubin in the specimen.
[0017]
(5) The method for differential measurement of conjugated bilirubin in a specimen according to (1) to (4), wherein the reaction is performed in a pH range of 4.5 to 7.0.
[0018]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be described in more detail.
In the measurement of bilirubin by an enzymatic method, it is known that when only conjugated bilirubin is to be measured, measurement is performed by changing the pH of the specimen (Akira Kosaka, Clin. Biochem., 20, 451-458; 1987). In other words, unconjugated bilirubin and δ-bilirubin have lower enzyme reactivity than conjugated bilirubin and are less susceptible to enzymatic reaction in a low pH range. For example, when reacted near pH 3.5, conjugated bilirubin reacts preferentially. To come. When the pH is further lowered, unconjugated bilirubin and δ-bilirubin are hardly affected. On the other hand, the optimum pH of bilirubin oxidase is 5 to 7, and the enzyme activity is significantly reduced. It takes a long time or the conjugated bilirubin is not oxidized enough. Moreover, there are similar characteristics even at pH 8-10, and satisfactory measurement results cannot be obtained.
[0019]
The present invention uses at least one selected from the group consisting of hydroquinones, 6-hydroxy-chromans, and 5-hydroxybenzo-2,3-dihydrofurans as a fractionating agent for conjugated bilirubin. It solves the problem.
This fractionating agent has an effect that conjugated bilirubin can react in a pH region where the enzyme activity of bilirubin oxidase is the highest, and further selectively inhibits the reaction of unconjugated bilirubin and δ-bilirubin.
[0020]
The hydroquinones used as a fractionating agent for conjugated bilirubin in the present invention can be appropriately selected from known ones. Specific examples thereof include hydroquinone, methylhydroquinone, methoxyhydroquinone, 2,3-dimethylhydroquinone, chlorohydroquinone, bromohydroquinone, 3 ′, 8′-dihydroxybenzonorbornane, 2,5-dihydroxybenzoic acid, 2,5-dihydroxy. Examples include at least one selected from the group consisting of benzenesulfonic acid, 2,5-dihydroxy-4′-methyldiphenyl, and 1,2,4-trihydroxybenzene.
[0021]
Further, 6-hydroxy-chromans may be appropriately selected from known ones, but 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid and / or tocopherol are particularly preferable.
[0022]
The concentration of the conjugated bilirubin fractionating agent is preferably in the range of 0.001 to 10 mM, more preferably in the range of 0.01 to 0.5 mM.
When the concentration of the fractionating agent is less than 0.001 mM, the reaction of unconjugated bilirubin and δ-bilirubin cannot be selectively inhibited. Therefore, only the conjugated bilirubin cannot be accurately measured, and conversely, when it exceeds 10 mM, The enzyme activity of bilirubin oxidase is inhibited.
[0023]
Since the optimum pH of bilirubin oxidase is 5.0 to 7.0, preferably 5.0 to 6.5, it is necessary to keep the pH of the reaction solution constant during the measurement. For this reason, when measuring a conjugated bilirubin by an enzyme reaction generally, a buffer solution is used.
The buffer that can be used in the present invention is not particularly limited as long as the pH can be maintained in the above range, and can be appropriately selected from known buffer solutions. An acid buffer or the like is preferable.
In the present invention, the reaction can be performed under a mild condition of pH 4.5 to 7.0, which is preferable for the analyzer.
[0024]
In the present invention, the sample for measuring conjugated bilirubin is generally an aqueous sample containing bilirubin, and examples thereof include serum, plasma, bile and the like. These specimens may be diluted or pretreated as necessary.
In addition, the bilirubin oxidase used in the present invention may be any enzyme that is generally used as bilirubin oxidase, but in view of availability and ease of handling, those derived from the genus Miloseces are preferable. The concentration of this bilirubin oxidase during the reaction is 0.01 to 10 units / mL, preferably 0.1 to 2 units / mL.
[0025]
The present invention relates to a buffer solution (first reagent) containing at least one selected from the group consisting of hydroquinones, 6-hydroxy-chromans, and 5-hydroxybenzo-2,3-dihydrofurans, bilirubin oxidase A reagent for measuring conjugated bilirubin consisting of a solution (second reagent) can be provided.
Hydroquinones and 6-hydroxy-chromans may be appropriately selected from those described above.
[0026]
The measurement of the conjugated bilirubin according to the present invention is carried out by using a buffer solution containing at least one selected from the group consisting of the above hydroquinones, 6-hydroxy-chromans, and 5-hydroxybenzo-2,3-dihydrofurans (first Reagent) is added, and after preheating, a bilirubin oxidase solution (second reagent) is added and reacted, and the resulting decrease in conjugated bilirubin is measured optically.
[0027]
Moreover, the effect as a fractionating agent such as hydroquinones can be further enhanced by adding histidine or arginine. In the present invention, although not particularly required, a reaction accelerator such as benzoic acid, a surfactant, a protein such as albumin, and the like can be appropriately added as necessary.
[0028]
【The invention's effect】
The present invention provides a sample containing bilirubin by coexisting at least one selected from the group consisting of hydroquinones, 6-hydroxy-chromans, and 5-hydroxybenzo-2,3-dihydrofurans. It is possible to provide a differential measurement method for conjugated bilirubin capable of accurately measuring only conjugated bilirubin without reacting with unconjugated bilirubin and δ-bilirubin.
Therefore, according to the present invention, since conjugated bilirubin in a sample can be measured with high accuracy, liver function and hematopoietic functional disease can be diagnosed with high accuracy.
[0029]
Further, the present invention can be said to be preferable for an analyzer because only conjugated bilirubin can be accurately measured even under mild conditions of pH 4.5 to 7.0.
[0030]
【Example】
EXAMPLES Hereinafter, although this invention is demonstrated further in detail based on an Example, this invention is not limited by this.
[0031]
Example 1 Inhibitory effect of unconjugated bilirubin reaction 200 mM 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES) buffer (first solution containing 50 μM various hydroquinones, 0.05% Triton X-305, and 100 mM sodium salicylate Reagent: pH 5.50) To 0.24 mL, 0.008 mL of unconjugated bilirubin (interference check BIL-F diluted to 15 mg / dL: manufactured by Kokusai Reagent Co., Ltd.) was added, and after preheating at 37 ° C. for 5 minutes, bilirubin Hitachi 7170 automatic analyzer at 37 ° C. with addition of 0.06 mL of 10 mM N-cyclohexyl-3-aminopropanesulfonic acid (CAPS: pH 9.0) buffer (second reagent) containing oxidase 2.0 U / mL Was used to measure the change in absorbance over time at a wavelength of 450 nm.
Moreover, except not containing hydroquinones, it measured by the method completely same as the above, and compared with the said measured value as control. As a result, as shown in FIG. 1, according to the fractionated measurement method of conjugated bilirubin of the present invention, it can be seen that the unconjugated bilirubin is hardly oxidized until a certain time has elapsed after the addition of the second reagent. The time during which oxidation of unconjugated bilirubin can be prevented can be controlled by the type and concentration of hydroquinone.
In addition, in 1,2,4-trihydroxybenzene, although the raise of an absorbance is seen, it turns out that the reaction of unconjugated bilirubin is suppressed also in this case.
[0032]
Example 2 Influence on Conjugated Bilirubin Reaction Other than using ditaurobilirubin sample (interference check BIL-C diluted to 10 mg / dL: conjugated bilirubin manufactured by Kokusai Reagent Co., Ltd.) instead of unconjugated bilirubin sample in Example 1 Measured the change in absorbance over time in exactly the same manner as in Example 1. As a result, as shown in FIG. 2, it can be seen that the oxidation reaction of the conjugated bilirubin is very rapid, and there is almost no influence of hydroquinones.
From the results of Example 1 and Example 2, it can be seen that hydroquinones specifically inhibit only the oxidation reaction of unconjugated bilirubin, so that only conjugated bilirubin can be measured separately.
[0033]
Example 3 Reactivity of Various Bilirubins in Reagents 0.45 mL of the first reagent using hydroquinone as hydroquinones in Example 1 and 0.015 mL of serum sample were preheated at 37 ° C. for 5 minutes and then used in Example 1. Add 0.112 mL of the second reagent, further preheat at 37 ° C. for 5 minutes, add 0.03 mL of 3 g / dL sodium fluoride aqueous solution and 0.01 mL of 10 g / dL ascorbic acid aqueous solution, .1 mL was subjected to HPLC.
HPLC was added so that sodium fluoride was 0.05 g / dL and ascorbic acid was 0.2 g / dL in eluent-1, and Licrospher 100RP-18 (manufactured by Merck) was used as a column. Other than using the Tosoh 8020 analyzer as the apparatus, the procedure was performed according to the method of Raul et al.
The first reagent and the serum sample were preheated at 37 ° C. for 5 minutes, and then an aqueous sodium fluoride solution and an ascorbic acid aqueous solution were added. Then, the second reagent was added, and various solutions in the solution when the bilirubin oxidase reaction was suppressed were added. Bilirubin was used as a control.
As a result, as shown in FIG. 3, the peak corresponding to diglucuronide bilirubin and monoglucuronide bilirubin disappears due to the bilirubin oxidase reaction with the reagent of the present invention, and the peak corresponding to unconjugated bilirubin and δ-bilirubin is It can be seen that 100% and 96% remain, respectively.
From this, it was shown that only the conjugated bilirubin can be separately measured by the reagent according to the present invention.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a graph showing the inhibitory effect of unconjugated bilirubin reaction.
FIG. 2 is a graph showing the effect on conjugated bilirubin response.
FIG. 3 is a graph showing reactivity to various bilirubins before and after a reagent reaction.
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