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JP2890465B2 - Method for producing anti-NANB virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparation - Google Patents

Method for producing anti-NANB virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparation

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Publication number
JP2890465B2
JP2890465B2 JP12643589A JP12643589A JP2890465B2 JP 2890465 B2 JP2890465 B2 JP 2890465B2 JP 12643589 A JP12643589 A JP 12643589A JP 12643589 A JP12643589 A JP 12643589A JP 2890465 B2 JP2890465 B2 JP 2890465B2
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JP
Japan
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positive
virus antibody
antibody
fraction
immunoglobulin
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JP12643589A
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暉勝 有馬
八尋 上村
孝男 大村
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YOSHITOMI SEIYAKU KK
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YOSHITOMI SEIYAKU KK
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Publication date
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  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は抗NANB(非A非B肝炎またはC型肝炎ともい
う)ウイルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤の製法
に関する。
The present invention relates to a method for producing an anti-NANB (also referred to as non-A non-B hepatitis or hepatitis C) virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparation.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

特定のウイルスに対する抗体を主成分とする静注用免
疫グロブリン製剤としては、各種ウイルス(B型肝炎ウ
イルス、サイトメガロウイルス、水痘帯状ヘルペスウイ
ルス、インフルエンザウイルスなど)に対するものが知
られており、各々のウイルスによる感染の予防治療のた
めに用いられる。
As intravenous immunoglobulin preparations containing an antibody against a specific virus as a main component, those for various viruses (hepatitis B virus, cytomegalovirus, varicella-zoster virus, influenza virus, etc.) are known. Used for prophylactic treatment of viral infections.

〔発明が解決しようとする課題〕[Problems to be solved by the invention]

本発明の目的は、臨床上適用できる製剤、すなわち、
安全性と有効性の高い抗NANBウイルス抗体陽性静注用免
疫グロブリン製剤の製造方法を提供することにある。
The purpose of the present invention is to provide a clinically applicable formulation,
It is an object of the present invention to provide a method for producing an anti-NANB virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparation which is highly safe and effective.

〔課題を解決するための手段〕[Means for solving the problem]

本発明者らは、この目的に沿って抗NANBウイルス抗体
陽性静注用免疫グロブリン製剤の工業的な製法について
検討した結果、ポリエチレングリコール(以下、PEGと
いう)分画処理、加熱処理等を組み合わせ、各工程の処
理条件を設定することによって安全性と有効性の高い抗
NANBウイルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤が得ら
れることを見出し、さらに研究を重ねて本発明を完成し
た。
The present inventors have studied the industrial production method of anti-NANB virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparations for this purpose, and as a result, combined polyethylene glycol (hereinafter, referred to as PEG) fractionation treatment, heat treatment, etc. By setting processing conditions for each process, highly safe and effective
The present inventors have found that a NANB virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparation can be obtained, and have further studied to complete the present invention.

(1) 出発原料 本発明の出発原料としては、抗NANBウイルス抗体陽性
免疫グロブリンを含む画分が使用され、これはヒト血漿
由来であって、抗NANBウイルス抗体陽性免疫グロブリン
画分を含むものであれば特に限定されない。具体的に
は、抗NANBウイルス抗体陽性血漿からコーンのエタノー
ル分画により得られる画分II+III、画分II、または抗N
ANBウイルス抗体陽性免疫グロブリンを含むこれらと同
等の画分のペースト等が挙げられる。また、この出発原
料は、ヒト血液型抗体、カリクレイン、プレカリクレイ
ン、IgM、IgG重合体などを含んでいてもよい。陽性の確
認は、例えば Glu−Phe−Arg−Glu−Gln−Asp−Gln−Ile−Lys−Thr
− Lys−Asp−Arg−Thr−Gln−Gln−Arg−Lys−Thr−Lys
− Arg−Ser−Thr−Asp−Arg−Arg−Arg−Ser−Lys−Asn
− Glu−Lys−Lys−Lys−Lys−Lys−Glu−Phe のアミノ酸配列からなるペプチドを既知の免疫学的手法
(RI法、RPHA法、EIA法、ラテックス凝集反応法)によ
って試薬化し、この試薬との反応性を検知することによ
って行う。この陽性画分を出発原料とする。なお、後記
参考例にEIA試薬を例示した。
(1) Starting Material As a starting material of the present invention, a fraction containing an anti-NANB virus antibody-positive immunoglobulin is used, which is derived from human plasma and contains an anti-NANB virus antibody-positive immunoglobulin fraction. There is no particular limitation as long as it exists. Specifically, fraction II + III, fraction II, or anti-N obtained by ethanol fractionation of corn from anti-NANB virus antibody-positive plasma
Pastes of fractions equivalent to these containing ANB virus antibody-positive immunoglobulin and the like can be mentioned. The starting material may contain human blood group antibody, kallikrein, prekallikrein, IgM, IgG polymer, and the like. The confirmation of the positive is, for example, Glu-Phe-Arg-Glu-Gln-Asp-Gln-Ile-Lys-Thr
-Lys-Asp-Arg-Thr-Gln-Gln-Arg-Lys-Thr-Lys
-Arg-Ser-Thr-Asp-Arg-Arg-Arg-Ser-Lys-Asn
A peptide comprising the amino acid sequence of Glu-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Glu-Phe is converted into a reagent by a known immunological method (RI method, RPHA method, EIA method, latex agglutination method); This is done by detecting the reactivity with. This positive fraction is used as a starting material. In addition, the EIA reagent was exemplified in Reference Examples described later.

(2) 製法 本発明による製造方法は、好ましくは以下の処理より
なる。
(2) Production method The production method according to the present invention preferably comprises the following treatment.

低濃度ポリエチレングリコール(PEG)処理工程 本工程は出発原料を低濃度PEGで処理し、上清を回収
する工程である。
Low concentration polyethylene glycol (PEG) treatment step This step is a step of treating the starting material with low concentration PEG and collecting the supernatant.

出発原料を適当な水性溶媒に懸濁する。水性溶媒の溶
質として、たとえば塩化ナトリウム、リン酸ナトリウ
ム、リン酸カリウム、酢酸、酢酸ナトリウム、クエン
酸、クエン酸ナトリウム等を含ませてもよい。
The starting materials are suspended in a suitable aqueous solvent. As a solute of the aqueous solvent, for example, sodium chloride, sodium phosphate, potassium phosphate, acetic acid, sodium acetate, citric acid, sodium citrate and the like may be contained.

この懸濁液を分子量1,000〜10,000(好適には約2,000
〜6,000)のPEGで処理する(たとえば、両者を混合す
る)。処理条件としては、PEG濃度4〜10w/v%(特に4
〜8w/v%)、pH4〜6(特に4.5〜5.5)、イオン強度0.0
001〜0.1M(特に、0.0001〜0.01M)であることが好まし
い。
This suspension is prepared with a molecular weight of 1,000 to 10,000 (preferably about 2,000
6,000 6,000) (eg, mixing both). As the processing conditions, the PEG concentration is 4 to 10 w / v% (particularly 4%).
-8w / v%), pH 4-6 (especially 4.5-5.5), ionic strength 0.0
It is preferably 001 to 0.1M (particularly 0.0001 to 0.01M).

この際、蛋白濃度1〜20w/v%(特に、5〜15w/v%)
であることが好ましい。
At this time, the protein concentration is 1 to 20 w / v% (particularly, 5 to 15 w / v%)
It is preferred that

当該処理は、0〜4℃程度で通常30分〜6時間程度撹
拌することによって行われる。
This treatment is carried out by stirring at about 0 to 4 ° C., usually for about 30 minutes to 6 hours.

その後、たとえば遠心分離(6000〜8000rpm、10〜30
分間)して上清を回収する。
Then, for example, centrifugation (6000-8000 rpm, 10-30
Minutes) and collect the supernatant.

高濃度PEG処理工程 本工程はの工程で得られた上清を高濃度PEGで処理
し、沈澱を回収する工程である。
High concentration PEG treatment step This step is a step of treating the supernatant obtained in the step with high concentration PEG and collecting the precipitate.

上記上清を分子量1,000〜10,000(好適には2,000〜6,
000)のPEGにてさらに処理する(たとえば、両者を混合
する)。処理条件としては、PEG濃度10〜15w/v%(特
に、約11〜13w/v%)、pH6〜9(特に7.5〜8.5)、イオ
ン強度0.0001〜0.1M(特に、0.0001〜0.01M)であるこ
とが好ましい。
The above supernatant was used for a molecular weight of 1,000 to 10,000 (preferably 2,000 to 6,
000) (for example, both are mixed). The processing conditions include a PEG concentration of 10 to 15 w / v% (particularly about 11 to 13 w / v%), a pH of 6 to 9 (particularly 7.5 to 8.5), and an ionic strength of 0.0001 to 0.1 M (particularly 0.0001 to 0.01 M). Preferably, there is.

この際、蛋白濃度1〜20w/v%(特に、5〜15w/v%)
であることが好ましい。
At this time, the protein concentration is 1 to 20 w / v% (particularly, 5 to 15 w / v%)
It is preferred that

当該処理は、0〜4℃程度で通常30分〜6時間程度撹
拌することによって行われる。
This treatment is carried out by stirring at about 0 to 4 ° C., usually for about 30 minutes to 6 hours.

その後、たとえば遠心分離(6000〜8000rpm、10〜30
分間)して沈澱を回収する。
Then, for example, centrifugation (6000-8000 rpm, 10-30
Min) and collect the precipitate.

陰イオン交換体処理工程 本工程はの工程で得られた沈澱画分を水性溶媒に溶
解後、または後記の工程の処理後陰イオン交換体で接
触処理して非吸着画分を回収する工程である。
Anion exchanger treatment step This step is a step of dissolving the precipitate fraction obtained in the step in an aqueous solvent or contacting with an anion exchanger after the treatment in the step described below to collect a non-adsorbed fraction. is there.

本工程は、IgM、IgAおよびIgG重合体を除くために行
われる。
This step is performed to remove IgM, IgA and IgG polymers.

(i)陰イオン交換体の調製 陰イオン交換体は陰イオン交換基を不溶性担体に結合
したものであるが、陰イオン交換基としてはジエチルア
ミノエチル(DEAE)基、四級アミノエチル(QAE)基等
を、不溶性担体としてはアガロース、セルロース、デキ
ストラン、ポリアクリルアミド等を用いることができ
る。
(I) Preparation of anion exchanger The anion exchanger is obtained by bonding an anion exchange group to an insoluble carrier. Examples of the anion exchange group include a diethylaminoethyl (DEAE) group and a quaternary aminoethyl (QAE) group. And agarose, cellulose, dextran, polyacrylamide and the like can be used as the insoluble carrier.

その結合は公知の方法で行われる。 The coupling is performed by a known method.

(ii)処理方法 の工程で得られた沈澱画分を適当な水性溶媒に溶解
する。水性溶媒はpH5〜7(好ましくはpH5.5〜6.5)、
低イオン強度(好ましくは0.0001〜0.1M)の水溶液であ
ることが好ましい。の工程と同様の溶質を含んでいて
もよい。蛋白濃度としては1〜15w/v%(特に、3〜10w
/v%)が好ましい。
(Ii) The precipitate fraction obtained in the step of the treatment method is dissolved in a suitable aqueous solvent. The aqueous solvent is pH 5-7 (preferably pH 5.5-6.5),
It is preferably an aqueous solution having a low ionic strength (preferably 0.0001 to 0.1 M). May be included. The protein concentration is 1 to 15 w / v% (particularly, 3 to 10 w / v
/ v%) is preferred.

さらに、上記水性溶媒で平衡化した陰イオン交換体と
接触処理する。その処理に際してはバッチ法、カラム法
のどちらを用いてもよい。
Further, a contact treatment is performed with the anion exchanger equilibrated with the aqueous solvent. In the treatment, either a batch method or a column method may be used.

たとえば、バッチ法では、陰イオン交換体1mlに対し
て処理対象溶液10〜100ml程度と混合させ、0〜4℃で3
0分〜2時間程度撹拌した後、遠心分離(6,000〜8,000r
pm、10〜30分間)して上清を回収する。
For example, in the batch method, 1 ml of the anion exchanger is mixed with about 10 to 100 ml of the solution to be treated,
After stirring for about 0 minutes to 2 hours, centrifuge (6,000 to 8,000 r
pm, 10-30 minutes) and collect the supernatant.

カラム法でも、陰イオン交換体1mlに対して処理対象
溶液10〜100ml程度を接触させ、非吸着画分を回収す
る。
Also in the column method, about 10 to 100 ml of the solution to be treated is brought into contact with 1 ml of the anion exchanger to collect the non-adsorbed fraction.

なお、本の工程は所望により省略することもでき
る。また、液状加熱処理を行う場合にはの固定化ヒト
血液型物質処理後に当該陰イオン交換体処理を実施する
ことが好ましい。
Note that this step can be omitted if desired. In the case of performing liquid heat treatment, it is preferable to perform the anion exchanger treatment after the immobilized human blood group substance treatment.

固定化ヒト血液型物質処理工程 本工程はの工程の沈澱画分またはの非吸着画分を
固定化ヒト血液型物質で接触処理して、非吸着画分を回
収する工程である。
Immobilized human blood group substance treatment step This step is a step of recovering the non-adsorbed fraction by contacting the precipitated fraction or the non-adsorbed fraction obtained in the step with the immobilized human blood group substance.

本工程はヒト血液型抗体を除くために行われる。 This step is performed to remove human blood group antibodies.

(i)固定化ヒト血液型物質の調製 固定化ヒト血液型物質はヒト血液型物質の不溶性担体
に固定化したものである。
(I) Preparation of immobilized human blood group substance The immobilized human blood group substance is immobilized on an insoluble carrier of human blood group substance.

ヒト血液型物質の調製は、公知の方法を用いればよ
い。たとえば、ヒトA、B、ABまたはO型の赤血球を低
張溶液中で溶血、または超音波処理した後、硫安分画法
またはPEG分画法により精製すること等により得られ
る。
A known method may be used for preparing a human blood group substance. For example, it can be obtained by subjecting human A, B, AB or O type erythrocytes to hemolysis or sonication in a hypotonic solution, followed by purification by ammonium sulfate fractionation or PEG fractionation.

さらにこのヒト血液型物質は生理的食塩液に溶解後、
夾雑するウイルスの不活化に有効とされている、たとえ
ば、約50〜70℃、好ましくは約60℃で、7〜13時間、好
ましくは約10時間、又は約80〜130℃、好ましくは95℃
〜121℃で約1〜40分、好ましくは約2〜30分間加熱処
理する。その後、遠心分離して不溶物を除去し、蒸留水
に対して透析して、各ヒト血液型物質を得る。また、ヒ
ト血液型物質として合成抗原(糖鎖)を用いることもで
きる。[Chem.Soc.Rev.p423〜452(1978)を参照] 一方、不溶性担体としてはアガロース、セルロース、
デキストラン、シリカゲル、ガラス等が用いられる。
Furthermore, after this human blood group substance is dissolved in physiological saline,
It is said to be effective for inactivating contaminating viruses, for example, at about 50 to 70 ° C., preferably about 60 ° C., for 7 to 13 hours, preferably for about 10 hours, or about 80 to 130 ° C., preferably 95 ° C.
Heat treatment at ~ 121 ° C for about 1-40 minutes, preferably about 2-30 minutes. Then, centrifugation is performed to remove insolubles, and dialyzed against distilled water to obtain each human blood group substance. Further, a synthetic antigen (sugar chain) can also be used as a human blood group substance. [See Chem. Soc. Rev. p423-452 (1978)] On the other hand, agarose, cellulose,
Dextran, silica gel, glass and the like are used.

固定化は公知の方法に準じればよい。例えば、アガロ
ース、セルロース等はCNBr活性化法により、シリカゲ
ル、ガラス等はオキシラン法によりヒト血液型物質を固
定化できる。
Immobilization may be performed according to a known method. For example, agarose, cellulose and the like can immobilize a human blood group substance by the CNBr activation method, silica gel, glass and the like can be immobilized by the oxirane method.

(ii)処理方法 処理対象物、たとえばの工程の沈澱画分を水性溶媒
に溶解したもの、あるいはの工程の非吸着画分をpH5
〜8(特にpH6〜7)、イオン濃度0.0001〜0.1M(特に
0.0001〜0.01M)の条件下で、上記水性溶媒で平衡化し
た固定化ヒト血液型物質と接触処理する。その際、蛋白
濃度1〜15w/v%(特に、3〜10w/v%)であることが好
ましく、またバッチ法、カラム法のどちらを用いてもよ
い。
(Ii) Treatment method The substance to be treated, for example, a solution obtained by dissolving a precipitate fraction from the step (1) in an aqueous solvent or a non-adsorbed fraction from the step (3)
-8 (especially pH 6-7), ion concentration 0.0001-0.1M (especially
(0.0001 to 0.01 M) under the condition of contact with the immobilized human blood group substance equilibrated with the above aqueous solvent. At that time, the protein concentration is preferably 1 to 15 w / v% (particularly, 3 to 10 w / v%), and either the batch method or the column method may be used.

たとえばバッチ法では、固定化ヒト血液型物質1mlに
対して処理対象溶液10〜100ml程度と混合させ、0〜10
℃、好ましくは0〜4℃で、30分〜4時間、好ましくは
30分〜2時間程度撹拌した後、遠心分離(6,000〜8,000
rpm、10〜30分間)して上清を回収する。
For example, in the batch method, 1 ml of the immobilized human blood group substance is mixed with about 10 to 100 ml of the solution to be treated, and 0 to 10
° C, preferably at 0-4 ° C for 30 minutes-4 hours, preferably
After stirring for about 30 minutes to 2 hours, centrifuge (6,000 to 8,000
rpm, 10-30 minutes) and collect the supernatant.

カラム法でも、固定化ヒト血液型物質1mlに対して処
理対象溶液10〜100ml程度を接触させ、非吸着画分を回
収する。
Also in the column method, about 10 to 100 ml of the solution to be treated is brought into contact with 1 ml of the immobilized human blood group substance, and the non-adsorbed fraction is collected.

このの工程は所望により省略することもできる。 This step can be omitted if desired.

加熱処理工程 本工程は、所望の段階で安定化剤の存在下に当該免疫
グロブリンのNANBウイルスに対する抗体活性の減少は最
小限にとどめるが、夾雑するウイルス、例えばHBウイル
ス、NANBウイルス等は完全に不活化する条件下で加熱処
理する工程である。加熱処理は、含湿度3%以下の乾燥
状態(即ち、乾燥処理)、または溶液状態、即ち免疫グ
ロブリンの水溶液状態(即ち、液状加熱処理)で行う。
より好ましくは液状加熱処理が推奨される。
Heat treatment step This step minimizes the decrease in the antibody activity of the immunoglobulin against the NANB virus in the presence of the stabilizer at the desired stage, but completely eliminates contaminating viruses such as HB virus and NANB virus. This is a step of performing a heat treatment under inactivating conditions. The heat treatment is performed in a dry state having a humidity of 3% or less (that is, a dry treatment) or in a solution state, that is, in an aqueous state of an immunoglobulin (that is, a liquid heat treatment).
More preferably, liquid heat treatment is recommended.

安定化剤としては、いずれの処理の場合も、二糖類
(例、サッカロース、マルトース)、糖アルコール
(例、ソルビトール、マンニトール)が好適に例示され
る。より好ましくはソルビトールである。
As a stabilizer, a disaccharide (eg, saccharose, maltose) and a sugar alcohol (eg, sorbitol, mannitol) are preferably exemplified in any treatment. More preferred is sorbitol.

安定化剤の添加量は、乾熱処理法では、二糖類、糖ア
ルコール等を0.5〜5w/v%(好ましくは、1〜3w/v%)
液状加熱処理法では二糖類、糖アルコール等を10w/v%
以上(好ましくは20〜45w/v%または10〜35w/w%)を用
いることが好適に例示される。
In the dry heat treatment method, the amount of the stabilizer added is 0.5 to 5 w / v% (preferably, 1 to 3 w / v%) of disaccharides, sugar alcohols, and the like.
In liquid heat treatment, disaccharides, sugar alcohols, etc. are 10w / v%
Use of the above (preferably 20 to 45 w / v% or 10 to 35 w / w%) is suitably exemplified.

加熱の対象となる免疫グロブリンの量は、乾熱処理で
は、蛋白質として1〜10w/v%(好ましくは3〜7w/v
%)となるように調整することが好適である。液状加熱
処理では、蛋白量として0.1〜30w/v%(好ましくは5〜
20w/v%)に調整することが好ましい。
The amount of immunoglobulin to be heated is 1 to 10 w / v% (preferably 3 to 7 w / v%) as a protein in the dry heat treatment.
%) Is preferably adjusted. In the liquid heat treatment, the protein amount is 0.1 to 30 w / v% (preferably 5 to 30 w / v%).
It is preferably adjusted to 20 w / v%).

加熱処理は、乾熱処理の場合は、安定化剤を添加後、
要すれば除菌濾過し、たとえば凍結乾燥などによって含
水率3%以下、好ましくは1%以下とする。凍結乾燥の
条件としては0.5mmHgの真空下、20〜40℃で24〜96時間
程度が例示される。次いで、たとえば50〜70℃(好まし
くは60℃程度)、10〜200時間(好ましくは50〜100時間
程度)で処理する。
In the case of dry heat treatment, after adding a stabilizer,
If necessary, sterilization filtration is performed, and the moisture content is reduced to 3% or less, preferably 1% or less, for example, by freeze-drying. Examples of the freeze-drying conditions include a vacuum of 0.5 mmHg at 20 to 40 ° C. for about 24 to 96 hours. Then, for example, the treatment is performed at 50 to 70 ° C. (preferably about 60 ° C.) for 10 to 200 hours (preferably about 50 to 100 hours).

また、本加熱処理工程は不活性ガス雰囲気下で行うこ
とにより、加熱時の安定性をより高めることができる。
不活性ガスとしては例えば、窒素ガス、アルゴン、ヘリ
ウムなどが挙げられる。
Further, by performing this heat treatment step in an inert gas atmosphere, stability during heating can be further improved.
Examples of the inert gas include nitrogen gas, argon, and helium.

液状加熱処理の場合は水溶液のpHを4.5〜6.5、好まし
くはpH5〜6に調整し、液状加熱処理法ではたとえば50
〜70℃(好ましくは60℃程度)で10分〜20時間(好まし
くは10時間程度)処理される。
In the case of liquid heat treatment, the pH of the aqueous solution is adjusted to 4.5 to 6.5, preferably to pH 5 to 6, and in the liquid heat treatment method, for example, 50 to 50 is used.
The treatment is carried out at a temperature of about 70 ° C. (preferably about 60 ° C.) for 10 minutes to 20 hours (preferably about 10 hours).

加熱処理の工程は、乾熱処理の場合は最終工程で行う
ことが好ましい。
In the case of dry heat treatment, the heat treatment step is preferably performed in the final step.

液状加熱処理の場合は、出発原料に対して、または
の工程の後に行うのが好適である。
In the case of the liquid heat treatment, it is preferable to perform the heat treatment on the starting material or after the step.

なお、の工程のあとに行う場合は、およびの処
理を再度行うことが夾雑物除去の点でより好ましい。
In addition, when it performs after the process of, it is more preferable to perform the process of and again from the point of a foreign substance removal.

また、必要に応じて、他の公知の手段(例えば、固定
化ジアミノ加護による処理など)を行ってもよい。
Further, if necessary, other known means (for example, treatment by protection of immobilized diamino) may be performed.

全工程終了後、公知の方法、すなわち透析、除菌濾
過、分注などの操作により液状製剤とすることができ
る。さらに、凍結乾燥などの操作により乾燥製剤とする
こともできる。
After completion of all the steps, a liquid preparation can be prepared by a known method, that is, dialysis, sterilization filtration, dispensing, or the like. Furthermore, a dry preparation can be obtained by an operation such as freeze-drying.

液状製剤の場合、グロブリン濃度としては1〜15w/v
%(好ましくは5〜10w/v%)程度である。また、安定
化剤を添加しておくことが好ましい。安定化剤として
は、糖、糖アルコールなどが例示される。その具体的な
例についてはの加熱処理において既に開示したものと
同様である。
In the case of a liquid preparation, the globulin concentration is 1 to 15 w / v
% (Preferably 5 to 10 w / v%). It is preferable to add a stabilizer. Examples of the stabilizer include sugars and sugar alcohols. Specific examples thereof are the same as those already disclosed in the heat treatment.

安定化剤の添加量としては、グロブリン1〜15w/v%
当たり、1〜10w/v%程度、好ましくは5w/v%程度が挙
げられる。
The amount of the stabilizer added is globulin 1 to 15 w / v%
Per unit, about 1 to 10 w / v%, preferably about 5 w / v%.

また、液状製剤のpHは5.3〜5.7程度、好ましくは5.5
程度としておくことが例示される。
The pH of the liquid preparation is about 5.3 to 5.7, preferably 5.5.
For example, it is set as the degree.

乾燥製剤の場合も安定化剤を添加しておくことが好ま
しい。安定化剤としては、糖、糖アルコール、アルブミ
ン、無機塩などが例示される。その具体的な例として
は、糖、糖アルコールについてはの加熱処理において
既に開示したものと同様であり、無機塩としては塩化ナ
トリウムが例示される。
In the case of a dry preparation, it is preferable to add a stabilizer. Examples of the stabilizer include sugar, sugar alcohol, albumin, inorganic salt and the like. Specific examples thereof are the same as those already disclosed in the heat treatment for sugar and sugar alcohol, and sodium chloride is exemplified as an inorganic salt.

安定化剤の添加量としては、グロブリン1〜15重量部
当たり、糖または糖アルコールで1〜10重量部(好まし
くは2重量部)程度、アルブミンで0.5〜5重量部(好
ましくは1重量部)程度、無機塩で0.1〜1重量部(好
ましくは0.5重量部)程度が挙げられる。
The amount of the stabilizer added is about 1 to 10 parts by weight (preferably 2 parts by weight) of sugar or sugar alcohol and 0.5 to 5 parts by weight (preferably 1 part by weight) of albumin per 1 to 15 parts by weight of globulin. And about 0.1 to 1 part by weight (preferably 0.5 part by weight) of inorganic salt.

〔作用・効果〕[Action / Effect]

本発明により得られた製剤は免疫グロブリンが殆ど不
活化されておらず、しかも、抗ヒト血液型物質抗体等の
夾雑物は含まれず、加熱処理を施しているので夾雑ウイ
ルスは不活化され、抗補体活性も充分に低い等の性質を
有し、日本国生物学的製剤基準(以下、生基準)に適合
できる安全な製剤である。非化学修飾免疫グロブリン製
剤は好ましいものである。
The preparation obtained according to the present invention has almost no immunoglobulin inactivated, and further, does not contain impurities such as anti-human blood group substance antibodies and is subjected to heat treatment, so that contaminating viruses are inactivated, and It is a safe preparation that has properties such as sufficiently low complement activity and can meet the Japanese Standards for Biological Preparations (hereinafter referred to as “raw standards”). Non-chemically modified immunoglobulin preparations are preferred.

また、乾燥製剤の場合は溶解性もよい。 In the case of a dry preparation, the solubility is good.

本発明により得られた製剤は、用時、液状製剤の場合
はそのまま、あるいは適当な溶媒(例えば、注射用蒸留
水、生理食塩液、ブドウ糖液など)で希釈して、また、
乾燥製剤の場合は適当な溶媒(例えば、注射用蒸留水)
に溶解して、静脈内投与、点滴などにより、NANBウィル
ス由来の肝炎の予防または治療に用いられる。また、公
知の他の肝炎予防治療剤、就中NANB予防治療剤との併用
も可能である。
When the preparation obtained by the present invention is used, when it is a liquid preparation, it can be used as it is, or diluted with an appropriate solvent (for example, distilled water for injection, physiological saline, glucose solution, etc.),
For dry preparations, a suitable solvent (eg, distilled water for injection)
And used for prevention or treatment of NANB virus-derived hepatitis by intravenous administration, infusion, or the like. It can also be used in combination with other known hepatitis prophylactic / therapeutic agents, especially NANB prophylactic / therapeutic agents.

〔実施例・参考例・実験例〕[Examples, Reference Examples, Experimental Examples]

本発明をより詳細に説明するために実施例および実験
例を挙げるが、本発明はこれらによって何ら限定される
ものではない。
Examples and experimental examples are described in order to explain the present invention in more detail, but the present invention is not limited to these examples.

実施例1 参考例で得たEIA試薬を使ってスクリーニングした抗N
ANBウィルス抗体陽性血漿を冷エタノール法により得ら
れたコーン画分II+III 1kgに冷水10を加え、pHを5.5
に調整した後、PEG#4000を終濃度が8%になるように
添加し、2℃で遠心分離を行った。
Example 1 Anti-N screened using the EIA reagent obtained in Reference Example
ANB virus antibody-positive plasma was added to 1 kg of the corn fraction II + III obtained by the cold ethanol method, and cold water 10 was added thereto to adjust the pH to 5.5.
Then, PEG # 4000 was added to a final concentration of 8%, and centrifuged at 2 ° C.

得られた上清を1N−水酸化ナトリウムを用いてpH8.0
とした後、PEG#4000を終濃度が12%になるように加
え、2℃で遠心分離を行い、IgG画分を集めた。
The resulting supernatant was adjusted to pH 8.0 using 1N-sodium hydroxide.
After that, PEG # 4000 was added to a final concentration of 12%, and centrifugation was performed at 2 ° C. to collect an IgG fraction.

このIgG画分を0.6%塩化ナトリウム溶液を用いIgG濃
度が7%になるように溶解せしめ、pHを6.5に調整し
た。
This IgG fraction was dissolved using a 0.6% sodium chloride solution so that the IgG concentration became 7%, and the pH was adjusted to 6.5.

このIgG溶液100mlを別途調整したヒト血液型物質フォ
ルミルセルロファインカラム3mlを通過させヒト血液型
抗体を吸着除去した。この工程での吸着により血液型抗
体は(1:32)から(1:2)に低下した。
100 ml of this IgG solution was passed through 3 ml of a separately prepared human blood group substance formyl cellulofine column to adsorb and remove human blood group antibodies. Blood group antibody was reduced from (1:32) to (1: 2) by adsorption in this step.

この未吸着画分にIgG5w/v%溶液当たりヒトアルブミ
ンを1w/v%、サッカロースを2w/v%添加し、除菌濾過
後、凍結乾燥した。
To this unadsorbed fraction, human albumin (1 w / v%) and saccharose (2 w / v%) were added per IgG5 w / v% solution, sterilized, filtered and lyophilized.

凍結乾燥後、60℃で72時間加熱処理を行い、静注用免
疫グロブリン製剤を得た。
After freeze-drying, heat treatment was performed at 60 ° C for 72 hours to obtain an intravenous immunoglobulin preparation.

本製剤は、実質的にIgG単量体のみを含み、ヒト血液
型抗体量も充分少なく、抗補体価も10〜15CH50程度であ
った。
This formulation comprises substantially only IgG monomeric, human blood group antibodies amount sufficient small, anti-complement activity was also about 10~15CH 50.

また、溶解性も高く、静注用免疫グロブリンとしての
生基準にも合格した。
In addition, the solubility was high, and it passed the raw standard as an immunoglobulin for intravenous injection.

また、この免疫グロブリンはチンパンジーを使った試
験でNANBウィルスの増殖を抑制した。
In addition, this immunoglobulin suppressed the growth of NANB virus in a test using chimpanzees.

実施例2 参考例で得たEIA試薬を使ってスクリーニングした抗N
ANBウィルス抗体陽性血漿から冷エタノール法により得
られたコーン画分II+III 1kgに水10を加え、さらに1
00ml当たりソルビトールを50g添加し、pHを5.5に調整し
た後、60℃で10時間加熱処理を行った。
Example 2 Anti-N screened using the EIA reagent obtained in Reference Example
Water 10 was added to 1 kg of the corn fraction II + III obtained from the ANB virus antibody-positive plasma by the cold ethanol method, and
After adding 50 g of sorbitol per 00 ml and adjusting the pH to 5.5, a heat treatment was performed at 60 ° C. for 10 hours.

加熱処理後、pHを5.5に調整した後、PEG#4000を終濃
度が6%になるように添加し、2℃3時間抽出を行った
後、2℃で遠心分離を行った。
After the heat treatment, the pH was adjusted to 5.5, PEG # 4000 was added to a final concentration of 6%, extraction was performed at 2 ° C. for 3 hours, and then centrifugation was performed at 2 ° C.

得られた上清を1N−水酸化ナトリウムを用いpH8.8と
した後、PEG#4000を終濃度が12%になるように加え、
2℃で遠心分離を行い、沈澱画分にIgG画分を得た。こ
の沈澱を蒸溜水に溶解し、このIgG溶液100mlを蒸溜水で
平衡化したヒト血液型物質フォルミルセルロファインカ
ラム3mlを通過させヒト血液型抗体を吸着除去した。こ
の工程での吸着により血液型抗体は(1:32)から(1:
2)に低下した。この沈澱に0.4%食塩水で平衡化したDE
AE−セファデックスを添加(50ml溶液当り2ml)し、0
〜4℃の条件下、約1時間接触処理し、処理後濾過にて
DEAE−セファデックスを除き濾過液(IgG溶液)を回収
した。
The resulting supernatant was adjusted to pH 8.8 using 1N-sodium hydroxide, and then PEG # 4000 was added to a final concentration of 12%.
Centrifugation was performed at 2 ° C., and an IgG fraction was obtained as a precipitate fraction. The precipitate was dissolved in distilled water, and 100 ml of this IgG solution was passed through a 3 ml human blood group substance formyl cellulofine column equilibrated with distilled water to adsorb and remove human blood group antibodies. Due to the adsorption in this step, the blood group antibody is changed from (1:32) to (1:32).
2) decreased. The precipitate was equilibrated with 0.4% saline
Add AE-Sephadex (2 ml per 50 ml solution) and add 0
Contact treatment at ~ 4 ° C for about 1 hour, and filtration after treatment
The filtrate (IgG solution) was recovered except for DEAE-Sephadex.

IgG画分に2%ソルビトール、0.5%NaClおよび1%ア
ルブミンを添加溶解し、pH6.8とした後、除菌濾過し、
凍結乾燥して静注用免疫グロブリン製剤を得た。
After adding and dissolving 2% sorbitol, 0.5% NaCl and 1% albumin to the IgG fraction to adjust the pH to 6.8, the mixture was sterilized and filtered.
It was freeze-dried to obtain an intravenous immunoglobulin preparation.

本製剤は、実質的にIgG単量体のみを含み、ヒト血液
型抗体量も充分少なく、抗補体価も10〜15CH50程度であ
った。
This formulation comprises substantially only IgG monomeric, human blood group antibodies amount sufficient small, anti-complement activity was also about 10~15CH 50.

また、溶解性も高く、静注用免疫グロブリンとしての
生基準にも合格した。
In addition, the solubility was high, and it passed the raw standard as an immunoglobulin for intravenous injection.

実施例3 実施例2において、DEAE−セファデックスによる処理
後遠心分離(7000rpm、約20分間)して上清(IgG溶液)
を回収した。
Example 3 In Example 2, after treatment with DEAE-Sephadex, the mixture was centrifuged (7000 rpm, about 20 minutes) and the supernatant (IgG solution) was obtained.
Was recovered.

このIgG溶液を蒸留水で5%IgG溶液に調整し、酢酸ナ
トリウムで溶液のpHを約5.5にし、さらにソルビトール
を終濃度5%まで添加した。この水溶液(電導度約1mmh
o)を除菌濾過し静注用免疫グロブリン液状製剤を得
た。
This IgG solution was adjusted to a 5% IgG solution with distilled water, the pH of the solution was adjusted to about 5.5 with sodium acetate, and sorbitol was further added to a final concentration of 5%. This aqueous solution (conductivity about 1mmh
o) was sterilized and filtered to obtain a liquid immunoglobulin preparation for intravenous injection.

本製剤は、実質的にIgG単量体のみを含み、ヒト血液
型抗体量も充分少なく、抗補体価も10〜15CH50程度であ
り、静注用免疫グロブリンとしての生基準にも合格し
た。
This formulation comprises substantially only IgG monomeric, human blood group antibodies amount sufficient small, anti-complement activity is also about 10~15CH 50, was also passed to the raw reference as intravenous immunoglobulin .

またチンパンジーを使った試験で、NANBウィルスの増
殖を抑制した。
In a test using chimpanzees, the growth of NANB virus was suppressed.

実施例4 参考例で得たEIA試薬を使ってスクリーニングした抗N
ANBウィルス抗体陽性血漿を56℃で30分間加温後以下の
ような冷エタノール法によりコーン画分IIを回収した。
Example 4 Anti-N screened using the EIA reagent obtained in Reference Example
After heating the ANB virus antibody-positive plasma at 56 ° C. for 30 minutes, the corn fraction II was collected by the cold ethanol method as described below.

エタノール濃度8%、pH7.2、−3℃、16時間で処理
して上清を採取 エタノール濃度21%、pH6.8、−5℃、24時間で処理
して沈澱(コーン画分II+III)を採取 沈澱を溶解し、エタノール濃度20%、pH6.6、−5
℃、16時間で処理して沈澱を採取 沈澱を溶解し、エタノール濃度17%、pH5.2、−6
℃、8時間で処理して上清を採取 エタノール濃度25%、pH7.4、−5℃、16時間で処理
して沈澱(コーン画分II)を採取 このコーン画分IIペースト1kgを蒸留水10にて懸濁
し、pHを5.5に調整した後、遠心分離を行い、上清を回
収して、上清100ml当たりソルビトールを50g添加し、60
℃で10時間加熱処理した。
The supernatant was collected after treatment with ethanol concentration of 8%, pH 7.2, -3 ° C for 16 hours, and the precipitate (corn fraction II + III) was treated by treatment with ethanol concentration of 21%, pH 6.8, -5 ° C for 24 hours. The precipitate was dissolved and the ethanol concentration was 20%, pH 6.6, -5
The precipitate was dissolved by treating at 16 ° C for 16 hours, and the precipitate was dissolved.
Collect at 8 ° C for 8 hours, and collect the supernatant (ethanol concentration 25%, pH 7.4, -5 ° C, 16 hours) to collect the precipitate (corn fraction II). After suspending at 10 and adjusting the pH to 5.5, centrifugation was performed, and the supernatant was recovered.
Heat treatment was performed at 10 ° C. for 10 hours.

加熱処理後、pHを5.5に調整した後、PEG#4000を終濃
度が6%になるように添加し、2℃で遠心分離を行っ
た。
After the heat treatment, the pH was adjusted to 5.5, PEG # 4000 was added to a final concentration of 6%, and the mixture was centrifuged at 2 ° C.

得られた上清を1N−水酸化ナトリウムを用いpH8.0と
した後、PEG#4000を終濃度が12%になるように加え、
2℃で遠心分離を行い、沈澱画分にIgG画分を得た。
The obtained supernatant was adjusted to pH 8.0 using 1N-sodium hydroxide, and PEG # 4000 was added to a final concentration of 12%.
Centrifugation was performed at 2 ° C., and an IgG fraction was obtained as a precipitate fraction.

参考例 EIA試薬 (1)固定化ペプチドの調製 マイクロプレートを用意し、このマイクロプレートの
各ウェル内に合成ペプチド Glu−Phe−Arg−Glu−Gln−Asp−Gln−Ile−Lys−Thr
− Lys−Asp−Arg−Thr−Gln−Gln−Arg−Lys−Thr−Lys
− Arg−Ser−Thr−Asp−Arg−Arg−Arg−Ser−Lys−Asn
− Glu−Lys−Lys−Lys−Lys−Lys−Glu−Phe の0.05M炭酸水素ナトリウム溶液を100μずつ注下し、
4℃で1時間放置した。そして、0.05% Tween−20を含
有した0.9%塩化ナトリウム溶液で洗浄し、さらに各ウ
ェル内に0.25%ウシ血清アルブミン含有の等張化リン酸
緩衝液(pH7.2)を200μずつ注いだ。この後、室温で
3時間放置し溶媒を除去して固定化NANB関連ペプチドを
調製した。
Reference Example EIA reagent (1) Preparation of immobilized peptide A microplate was prepared, and the synthetic peptide Glu-Phe-Arg-Glu-Gln-Asp-Gln-Ile-Lys-Thr was placed in each well of the microplate.
-Lys-Asp-Arg-Thr-Gln-Gln-Arg-Lys-Thr-Lys
-Arg-Ser-Thr-Asp-Arg-Arg-Arg-Ser-Lys-Asn
-Glu-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Glu-Phe 0.05 M sodium bicarbonate solution was poured in 100 μl each,
It was left at 4 ° C. for 1 hour. Then, the plate was washed with a 0.9% sodium chloride solution containing 0.05% Tween-20, and 200 μl of an isotonic phosphate buffer (pH 7.2) containing 0.25% bovine serum albumin was poured into each well. Thereafter, the mixture was left at room temperature for 3 hours to remove the solvent, thereby preparing an immobilized NANB-related peptide.

(2)酵素標識抗体の調製例 通常のグルタルアルデヒド法により、パーオキシダー
ゼを抗ヒトIgG抗体に結合させて調製した。
(2) Preparation example of enzyme-labeled antibody A peroxidase was prepared by binding to an anti-human IgG antibody by a usual glutaraldehyde method.

(3)測定例 まず、(1)項で調製したマイクロプレートを用意
し、1%ウサギ血清および0.25%ウシ血清アルブミンを
含有した等張化リン酸緩衝液を各ウェル内に75μ注下
し、さらに各ウェル内に検体溶液を25μ添加し、室温
で1時間放置した。その後、0.05% Tween−20含有の0.
9%塩化ナトリウム溶液で洗浄し、(2)項で調製した
酵素標識抗体を、1%ウサギ血清および0.25%ウシ血清
アルブミン含有の等張化リン酸緩衝液(pH7.2)で希釈
した希釈溶液を各ウェルに100μずつ添加し、室温で
1時間放置後、0.05% Tween−20含有の0.9%塩化ナト
リウム溶液で洗浄した。そして、1mg/ml濃度のオルトフ
ェニレンジアミンおよび0.015%過酸化水素を含有した
0.05Mクエン酸−リン酸緩衝液(pH5)を各ウェル内に10
0μ添加し、室温で30分間放置した。さらに各ウェル
内に、2N硫酸を100μ添加し、これを吸光度測定に供
した。
(3) Measurement Example First, the microplate prepared in (1) was prepared, and 75 μ of an isotonic phosphate buffer containing 1% rabbit serum and 0.25% bovine serum albumin was poured into each well. Further, 25 μl of the sample solution was added to each well, and left at room temperature for 1 hour. Then, 0.05% Tween-20 was added.
A diluted solution obtained by washing with a 9% sodium chloride solution and diluting the enzyme-labeled antibody prepared in (2) with an isotonic phosphate buffer (pH 7.2) containing 1% rabbit serum and 0.25% bovine serum albumin. Was added to each well at 100 μl, left at room temperature for 1 hour, and washed with a 0.9% sodium chloride solution containing 0.05% Tween-20. And contained 1 mg / ml of orthophenylenediamine and 0.015% hydrogen peroxide.
Add 0.05 M citrate-phosphate buffer (pH 5) to each well.
0μ was added and left at room temperature for 30 minutes. Further, 100 μl of 2N sulfuric acid was added to each well, and this was subjected to absorbance measurement.

吸光度測定は波長492nmでの吸光度とし、これらの吸
光度を測定した。対照吸光は690nmでの吸光度とし、こ
れらの吸光度の相対比(A492/A690)を算出することに
よって行い、酵素活性を求めた。陰性血清についても同
様に操作し、酵素活性を求めた(Blank値)。Blank値の
2倍以上の値を示す検体を陽性と判断した。
The absorbance was measured at a wavelength of 492 nm, and these absorbances were measured. The control absorbance was defined as the absorbance at 690 nm, and the enzyme activity was determined by calculating the relative ratio of these absorbances (A 492 / A 690 ). The same procedure was applied to the negative serum to determine the enzyme activity (Blank value). A sample showing a value twice or more of the blank value was determined to be positive.

また、標準品を用いた反応系により標準検量線を作成
し、上記被検液の反応で得られた酵素活性を検量線と比
較することにより、被検液に含まれる抗NANBウィルス抗
体の量を求めた。
In addition, a standard calibration curve is prepared by a reaction system using a standard product, and by comparing the enzyme activity obtained in the reaction of the test solution with the calibration curve, the amount of the anti-NANB virus antibody contained in the test solution is determined. I asked.

実験例1:抗体価の測定 調製法 抗体陽性血漿については無症候で、かつ参考例で得た
EIA試薬を使ってスクリーニングされたNANBウィルス抗
体陽性キャリアより、陰性血漿については正常人より集
めた。これらの血漿から実施例4の方法により静注用免
疫グロブリンを得た。この画分のIgG含量は免疫拡散法
(MBL Co.,名古屋)により、抗体価は上記の参考例の
方法により求めた(第1表)。
Experimental Example 1: Measurement of antibody titer Preparation method Antibody-positive plasma was asymptomatic and obtained in Reference Example
Negative plasma was collected from normal individuals from NANB virus antibody positive carriers screened using EIA reagents. Intravenous immunoglobulins were obtained from these plasmas by the method of Example 4. The IgG content of this fraction was determined by the immunodiffusion method (MBL Co., Nagoya), and the antibody titer was determined by the method of the above reference example (Table 1).

フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭63−183539(JP,A) 特開 昭56−73029(JP,A) 特開 平2−186990(JP,A) G.Kuo,et al.,Scie nce,244,1989年4月,pp.362− 364 (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) A61K 39/395 A61K 39/29 CA(STN) REGISTRY(STN) WPIDS(STN) MEDLINE(STN)Continuation of the front page (56) References JP-A-63-183539 (JP, A) JP-A-56-73029 (JP, A) JP-A-2-186990 (JP, A) Kuo, et al. , Science, 244, Apr. 1989, pp. 284-143. 362- 364 (58) Fields investigated (Int. Cl. 6 , DB name) A61K 39/395 A61K 39/29 CA (STN) REGISTRY (STN) WPIDS (STN) MEDLINE (STN)

Claims (5)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】式(I): で表されるアミノ酸配列からなるペプチドと反応性を有
する抗NANBウイルス抗体陽性免疫グロブリンを含むヒト
血漿由来画分を出発原料とする、以下の処理からなる抗
NANBウイルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤の製造
方法: (a) pH4〜6、イオン強度0.0001〜0.1M、温度0〜
4℃の条件下、分子量1,000〜10,000のポリエチレング
リコール4〜10w/v%で処理して上清を回収する。 (b) (a)の上清をpH6〜9、イオン強度0.0001〜
0.1M、温度0〜4℃の条件下、分子量1,000〜10,000の
ポリエチレングリコール10〜15w/v%で処理して沈澱を
回収する。 (c) 所望の工程で夾雑するウイルスが不活化するの
に充分な条件下、安定化剤の存在下で加熱処理する。
(1) Formula (I): Starting from a human plasma-derived fraction containing an anti-NANB virus antibody-positive immunoglobulin having reactivity with a peptide consisting of the amino acid sequence represented by
Method for producing NANB virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparation: (a) pH 4 to 6, ionic strength 0.0001 to 0.1M, temperature 0 to 0
The supernatant is recovered by treating with 4 to 10 w / v% polyethylene glycol having a molecular weight of 1,000 to 10,000 under the condition of 4 ° C. (B) The supernatant of (a) was used at pH 6-9, ionic strength 0.0001-
The precipitate is recovered by treatment with polyethylene glycol having a molecular weight of 1,000 to 10,000 at 10 to 15 w / v% under conditions of 0.1 M and a temperature of 0 to 4 ° C. (C) heat-treating in the presence of a stabilizer under conditions sufficient to inactivate contaminating viruses in the desired step.
【請求項2】(b)の工程の後に、pH5〜8、イオン強
度0.0001〜0.1Mの条件下、固定化ヒト血液型物質で処理
して非吸着画分を回収する工程を含むことを特徴とする
請求項(1)記載の製造方法。
2. The method according to claim 2, further comprising, after the step (b), a step of treating with an immobilized human blood group substance under conditions of pH 5 to 8 and ionic strength of 0.0001 to 0.1 M to collect a non-adsorbed fraction. The manufacturing method according to claim 1, wherein
【請求項3】(b)の沈澱を水性溶媒に溶解し、pH5〜
7、イオン強度0.0001〜0.1Mの条件下、陰イオン交換体
で処理して非吸着画分を回収する工程を含んでなる請求
項(1)記載の製造方法。
3. The precipitate of (b) is dissolved in an aqueous solvent,
7. The production method according to claim 1, further comprising a step of recovering a non-adsorbed fraction by treating with an anion exchanger under conditions of an ionic strength of 0.0001 to 0.1M.
【請求項4】式(I): で表されるアミノ酸配列からなるペプチドと反応性を有
する抗NANBウイルス抗体陽性免疫グロブリンを含むヒト
血漿由来画分を出発原料として製造される、実質的にIg
G単量体のみを含み、感染性ウイルスを実質的に含まな
い、抗NANBウイルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製
剤。
4. Formula (I): Manufactured using a human plasma-derived fraction containing an anti-NANB virus antibody-positive immunoglobulin having reactivity with a peptide consisting of an amino acid sequence represented by the starting material, substantially Ig
An anti-NANB virus antibody-positive intravenous immunoglobulin preparation containing only G monomer and substantially no infectious virus.
【請求項5】式(I): で表されるアミノ酸配列からなるペプチドを用いたEIA
試薬で測定したときに、少なくとも51200の抗体価を有
する請求項(4)記載の免疫グロブリン製剤。
5. Formula (I): EIA using a peptide consisting of the amino acid sequence represented by
The immunoglobulin preparation according to claim 4, which has an antibody titer of at least 51200 when measured with a reagent.
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