JP2732905B2 - ウリ科作物の病害防除微生物および病害防除法 - Google Patents
ウリ科作物の病害防除微生物および病害防除法Info
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Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、ウリ科作物の病害、特に土壌伝染病の防除
に有効な新規微生物、該微生物および／またはその代謝
産物を用いた病害防除法に関する。
に有効な新規微生物、該微生物および／またはその代謝
産物を用いた病害防除法に関する。
ウリ科作物の主要な病害として、キュウリつる割病、
キュウリべと病、キュウリモザイク病、メロンつる割
病、メロンべと病、スイカつる割病、スイカ炭そ病、カ
ボチャつる枯病、カボチャうどんこ病等があげられる
が、これらの中でつる割病、つる枯病は、土壌伝染病で
難防除病害とされている。
キュウリべと病、キュウリモザイク病、メロンつる割
病、メロンべと病、スイカつる割病、スイカ炭そ病、カ
ボチャつる枯病、カボチャうどんこ病等があげられる
が、これらの中でつる割病、つる枯病は、土壌伝染病で
難防除病害とされている。
ウリ科作物の病害防除法は、べと病等の空気伝染病に
対しては茎葉部への殺菌剤の散布が行われているが、つ
る割病等の土壌伝染病に対しては有効な殺菌剤がなく、
くん蒸剤や蒸気による土壌消毒の他、抵抗性品種あるい
は台木の利用、輪作等が実施されている。しかしなが
ら、化学合成農薬による防除は、薬剤耐性菌の出現や薬
害、公害発生等の恐れがあり、特にクロルピクリンや臭
化メチル等のくん蒸剤は、土壌中に生息する微生物を無
差別に殺し、作物生産に対して有益に働く微生物をも殺
生してしまうという問題があり、さらに、作物および人
畜に対する危険性が極めて大きい。一方、抵抗性品種あ
るいは台木を利用した防除は、病原菌の寄生性が分化
し、抵抗性植物を侵し得る病原菌レースが出現するとい
う問題があり、その利用については限界がある。また、
最近の野菜栽培では、施設の普及や産地の指定化にとも
なって、栽培される作物が単一となる傾向に有り、輪作
の実施も困難な状況で、連作障害の問題も深刻化してい
る。
対しては茎葉部への殺菌剤の散布が行われているが、つ
る割病等の土壌伝染病に対しては有効な殺菌剤がなく、
くん蒸剤や蒸気による土壌消毒の他、抵抗性品種あるい
は台木の利用、輪作等が実施されている。しかしなが
ら、化学合成農薬による防除は、薬剤耐性菌の出現や薬
害、公害発生等の恐れがあり、特にクロルピクリンや臭
化メチル等のくん蒸剤は、土壌中に生息する微生物を無
差別に殺し、作物生産に対して有益に働く微生物をも殺
生してしまうという問題があり、さらに、作物および人
畜に対する危険性が極めて大きい。一方、抵抗性品種あ
るいは台木を利用した防除は、病原菌の寄生性が分化
し、抵抗性植物を侵し得る病原菌レースが出現するとい
う問題があり、その利用については限界がある。また、
最近の野菜栽培では、施設の普及や産地の指定化にとも
なって、栽培される作物が単一となる傾向に有り、輪作
の実施も困難な状況で、連作障害の問題も深刻化してい
る。
本発明は、従来から行われているウリ科作物の病害防
除における前記不利な点を解決し、合成農薬に代わる新
しい防除資材を提供することを課題とする。すなわち、
新規微生物によりウリ科作物の病害、特に難防除病害で
ある土壌伝染病を防除する手段を提供することを課題と
する。
除における前記不利な点を解決し、合成農薬に代わる新
しい防除資材を提供することを課題とする。すなわち、
新規微生物によりウリ科作物の病害、特に難防除病害で
ある土壌伝染病を防除する手段を提供することを課題と
する。
本発明者らは、“抵抗性誘導”という微生物−植物間
相互の現象に注目し、微生物により作物に病害抵抗性を
付与し、防除困難な土壌伝染病を防除することを目的と
して、自然界から多数の微生物を純粋分離し、キュウリ
を主たる対象として研究を進めた結果、キュウリのみな
らず広くウリ科作物の病害防除に有効で、しかも人畜な
らびに作物に安全な微生物を見い出し、本発明を完成す
るにいたった。
相互の現象に注目し、微生物により作物に病害抵抗性を
付与し、防除困難な土壌伝染病を防除することを目的と
して、自然界から多数の微生物を純粋分離し、キュウリ
を主たる対象として研究を進めた結果、キュウリのみな
らず広くウリ科作物の病害防除に有効で、しかも人畜な
らびに作物に安全な微生物を見い出し、本発明を完成す
るにいたった。
すなわち、本発明は、ウリ科作物の病害防除に有効な
新規微生物フザリウム オキシスポルム（Fusarium oxy
sporum）MT−3013（微工研菌寄第10787）、該微生物お
よび／またはその代謝産物を植物根または土壌に処理す
ることを特徴とするウリ科作物病害の防除方法である。
新規微生物フザリウム オキシスポルム（Fusarium oxy
sporum）MT−3013（微工研菌寄第10787）、該微生物お
よび／またはその代謝産物を植物根または土壌に処理す
ることを特徴とするウリ科作物病害の防除方法である。
本発明に係わる微生物は、自然畑土壌で生育させたキ
ュウリの根圏から分離して得られたフザリウム属オキシ
スポルム種（Fusarium oxysporum）の新規菌株である。
ュウリの根圏から分離して得られたフザリウム属オキシ
スポルム種（Fusarium oxysporum）の新規菌株である。
フザリウム属オキシスポルム種（Fusarium oxysporu
m）は、国立予防衛生研究所の病原体等安全管理規程に
よれば、危険度が最も低い“1;多量に取り扱っても、実
験室感染の可能性が殆どない”と定められ、人畜に対す
る安全性が保証されており、本菌株も同様である。
m）は、国立予防衛生研究所の病原体等安全管理規程に
よれば、危険度が最も低い“1;多量に取り扱っても、実
験室感染の可能性が殆どない”と定められ、人畜に対す
る安全性が保証されており、本菌株も同様である。
本発明に係わる微生物の培養は、ツアペック液体培
地、ポテト・デキストロース液体培地等の糸状菌用液体
培地を用いた振とう培養あるいは静置培養で容易に行な
うことができ、さらに寒天入りの平板、斜面培地等の固
体培地による培養も有効である。また、ジャーファメン
タを用いた培養や土壌ふすま培養により大量に培養する
ことも可能である。
地、ポテト・デキストロース液体培地等の糸状菌用液体
培地を用いた振とう培養あるいは静置培養で容易に行な
うことができ、さらに寒天入りの平板、斜面培地等の固
体培地による培養も有効である。また、ジャーファメン
タを用いた培養や土壌ふすま培養により大量に培養する
ことも可能である。
本発明に係わる処理方法は、作物の根部または栽培土
壌に対して行われ、その処理形態は、胞子のみならず菌
糸を含む菌糸体、さらには、本微生物の培養濾液，胞子
発芽液等の代謝産物も有効である。
壌に対して行われ、その処理形態は、胞子のみならず菌
糸を含む菌糸体、さらには、本微生物の培養濾液，胞子
発芽液等の代謝産物も有効である。
植物根部への処理は、胞子あるいは菌糸体懸濁液、培
養濾液、胞子発芽液に根部を浸漬する方法で行ない、土
壌への処理は、灌注あるいは作条施用の方法を用いる。
養濾液、胞子発芽液に根部を浸漬する方法で行ない、土
壌への処理は、灌注あるいは作条施用の方法を用いる。
処理時期は、育苗中及び定植時の両方が望ましく、さ
らに、本圃における栽培途中の追加施用は防除効果を持
続させることに有効である。
らに、本圃における栽培途中の追加施用は防除効果を持
続させることに有効である。
なお、浸根処理の場合は懸濁液1ml当り胞子で104個以
上、望ましくは106個以上で、土壌処理の場合は乾土1g
当り103個以上、望ましくは105以上で十分な防除効果が
認められる。
上、望ましくは106個以上で、土壌処理の場合は乾土1g
当り103個以上、望ましくは105以上で十分な防除効果が
認められる。
また、本発明に係わる防除法と抵抗性品種の利用等の
他の防除法を併用することにより、連作圃場等病原菌密
度が高まった病害激発土壌においても有効となる。
他の防除法を併用することにより、連作圃場等病原菌密
度が高まった病害激発土壌においても有効となる。
本発明に係わる微生物および病害防除法は、キュウリ
の場合はつる割病、苗立枯病、うどんこ病等の防除に極
めて有効で、メロンの場合はつる割病、つる枯病、うど
んこ病の防除に有効である。また、スイカ、カボチャ等
の他のウリ科作物においても同様で、類似病害の防除に
有効である。
の場合はつる割病、苗立枯病、うどんこ病等の防除に極
めて有効で、メロンの場合はつる割病、つる枯病、うど
んこ病の防除に有効である。また、スイカ、カボチャ等
の他のウリ科作物においても同様で、類似病害の防除に
有効である。
以下、例をあげて本発明に係わる新規微生物および該
微生物および／またはその代謝産物を用いた病害防除法
について詳細に説明する。
微生物および／またはその代謝産物を用いた病害防除法
について詳細に説明する。
本発明に係わる微生物は、自然畑土壌で生育させたキ
ュウリの根圏から分離して得られた新規菌株であり、次
のように特定される。
ュウリの根圏から分離して得られた新規菌株であり、次
のように特定される。
フザリウム属菌で、ツアペック寒天培地等の糸状菌用
培地において短担子梗上で小型分生胞子を擬頭状に形成
することからオキシスポルム種と同定される。
培地において短担子梗上で小型分生胞子を擬頭状に形成
することからオキシスポルム種と同定される。
キュウリをはじめとするウリ科作物およびその他の有
用作物に病原性を示さない。
用作物に病原性を示さない。
実施例１ 新規微生物の分離方法 圃場の自然土壌で生育しているキュウリの根部を採取
した。根部は長さが５から10mmの切片を作製し、70％の
エタノール水溶液に２から３秒間浸漬した後、２％次亜
塩素酸ナトリウム水溶液に10分間浸漬することにより、
根切片を表面殺菌した。滅菌水で洗浄後、寒天を1.5％
含む無栄養平板培地上に置床し、25℃の恒温器中で72か
ら120時間培養し、植物組織から出現した微生物を実体
顕微鏡下で単菌糸分離を行うことにより純粋分離した。
得られた微生物は、キュウリつる割病に対する防除効果
を検定し、さらに、他の作物に対する病原性を検定し、
キュウリつる割病に対し防除効果を示し、他の作物に対
し病原性を示さない新規微生物MT−3013を分離した。
した。根部は長さが５から10mmの切片を作製し、70％の
エタノール水溶液に２から３秒間浸漬した後、２％次亜
塩素酸ナトリウム水溶液に10分間浸漬することにより、
根切片を表面殺菌した。滅菌水で洗浄後、寒天を1.5％
含む無栄養平板培地上に置床し、25℃の恒温器中で72か
ら120時間培養し、植物組織から出現した微生物を実体
顕微鏡下で単菌糸分離を行うことにより純粋分離した。
得られた微生物は、キュウリつる割病に対する防除効果
を検定し、さらに、他の作物に対する病原性を検定し、
キュウリつる割病に対し防除効果を示し、他の作物に対
し病原性を示さない新規微生物MT−3013を分離した。
実施例２ 新規微生物の同定 本発明に係わる微生物の同定は、微生物をPS（ポテト
・シュークロース）寒天培地上で培養することにより行
った。その結果、MT−3013は、25℃、４日間で、コロニ
ーの直径が６から7cmに達する。大型分生胞子，小型分
生胞子および厚膜胞子を多数形成する。大型分生胞子は
三日月型で、小型分生胞子は円筒形から長い楕円形で、
厚膜胞子は球形である。いずれの胞子も連鎖状に形成さ
れることはない。暗所に於ける培養で、紫色の色素酸生
が認められる。これらの特徴から、MT−3013はフザリウ
ム属オキシスポルム種（Fusarium oxysporum）と判定さ
れた。
・シュークロース）寒天培地上で培養することにより行
った。その結果、MT−3013は、25℃、４日間で、コロニ
ーの直径が６から7cmに達する。大型分生胞子，小型分
生胞子および厚膜胞子を多数形成する。大型分生胞子は
三日月型で、小型分生胞子は円筒形から長い楕円形で、
厚膜胞子は球形である。いずれの胞子も連鎖状に形成さ
れることはない。暗所に於ける培養で、紫色の色素酸生
が認められる。これらの特徴から、MT−3013はフザリウ
ム属オキシスポルム種（Fusarium oxysporum）と判定さ
れた。
実施例３ 新規微生物の生理学的性質 本発明に係わる微生物は、好気性であり、生育可能な
pHは３から10で、温度は５から35℃であるが、最適pHは
６から８、最適温度は25から30℃である。
pHは３から10で、温度は５から35℃であるが、最適pHは
６から８、最適温度は25から30℃である。
実施例４ 新規微生物の大量培養法 本発明に係わる微生物は、PS（ポテト・シュークロー
ス）やMS（マッシュポテト・シュークロース）培地等の
安価な培養基により容易に培養を行うことが可能で、ジ
ャーファメンタで72時間液体培養することにより、培養
液1ml当り１億もの胞子が得られた。この様に、本発明
の微生物は、効率的に大量培養が行えることから、工業
的に使用可能である。
ス）やMS（マッシュポテト・シュークロース）培地等の
安価な培養基により容易に培養を行うことが可能で、ジ
ャーファメンタで72時間液体培養することにより、培養
液1ml当り１億もの胞子が得られた。この様に、本発明
の微生物は、効率的に大量培養が行えることから、工業
的に使用可能である。
試験例１ バーミキュライトで育苗した本葉が２から３枚期のキ
ュウリ苗（品種；霜知不地這）を実験区当り10個体供試
した。本発明の微生物を、ポテト・デキストロース液体
培地で27℃、６日間振とう培養することにより得られた
胞子を、滅菌蒸留水で107個/mlに希釈調整した懸濁液
に、キュウリ苗の根を30分間浸漬した後、バーミキュラ
イトに各々仮植した。なお、対照は、キュウリ苗を滅菌
蒸留水に同様の処理をした後バーミキュライトに仮植し
た。36時間後、ポテト・デキストロース液体培地で27
℃、６日間振とう培養することにより得られた胞子を、
滅菌蒸留水で希釈調整して得られたつる割病菌（Fusari
um oxysporum f.sp.cucumerinum）の胞子懸濁液107個/m
lに再び30分間浸漬し、育苗床土1000mlに各々定植して
栽培した。30日後に発病状態を観察し、発病の度合を、
本葉の各葉位について階級値として表した。
ュウリ苗（品種；霜知不地這）を実験区当り10個体供試
した。本発明の微生物を、ポテト・デキストロース液体
培地で27℃、６日間振とう培養することにより得られた
胞子を、滅菌蒸留水で107個/mlに希釈調整した懸濁液
に、キュウリ苗の根を30分間浸漬した後、バーミキュラ
イトに各々仮植した。なお、対照は、キュウリ苗を滅菌
蒸留水に同様の処理をした後バーミキュライトに仮植し
た。36時間後、ポテト・デキストロース液体培地で27
℃、６日間振とう培養することにより得られた胞子を、
滅菌蒸留水で希釈調整して得られたつる割病菌（Fusari
um oxysporum f.sp.cucumerinum）の胞子懸濁液107個/m
lに再び30分間浸漬し、育苗床土1000mlに各々定植して
栽培した。30日後に発病状態を観察し、発病の度合を、
本葉の各葉位について階級値として表した。
0;無発病 1;葉の一部分の発病（黄化，萎凋） 2;葉の1/2程度発病 3;葉の大部分発病または落葉 さらに、個体ごとの発病指数を次式により計算し、平均
発病指数を求めた。さらに、下記の式により本菌株を浸
根処理することによる防除率を対照区の平均発病指数に
対して算出した。
発病指数を求めた。さらに、下記の式により本菌株を浸
根処理することによる防除率を対照区の平均発病指数に
対して算出した。
結果は第１表に示すとおり、本発明の微生物の胞子懸
濁液をキュウリの根に処理することにより、つる割病の
発病指数が対照区と比べて著しく減少し、極めて高い防
除率が得られた。
濁液をキュウリの根に処理することにより、つる割病の
発病指数が対照区と比べて著しく減少し、極めて高い防
除率が得られた。
試験例２ 試験例１と同様の方法で得られた本発明の微生物の胞
子が105個/g生存している育苗床土100mlにキュウリ種子
（品種；霜知地這）を各々播種、育苗し、実験区当り10
個体を供試した。なお、対照は、無菌の育苗床土で同様
に育苗をしたものを用いた。本葉が第３から４枚期に育
苗床土1000mlに各々定植した後、試験例１と同様の方法
で得られたつる割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.cucu
merinum）の胞子懸濁液10mlを各株基に灌注接種して栽
培した。50日後に発病状態を観察し、試験例１と同様に
平均発病指数を求め、さらに、処理区の対照区に対する
防除率を算出した。
子が105個/g生存している育苗床土100mlにキュウリ種子
（品種；霜知地這）を各々播種、育苗し、実験区当り10
個体を供試した。なお、対照は、無菌の育苗床土で同様
に育苗をしたものを用いた。本葉が第３から４枚期に育
苗床土1000mlに各々定植した後、試験例１と同様の方法
で得られたつる割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.cucu
merinum）の胞子懸濁液10mlを各株基に灌注接種して栽
培した。50日後に発病状態を観察し、試験例１と同様に
平均発病指数を求め、さらに、処理区の対照区に対する
防除率を算出した。
結果は第２表に示すとおり、本発明の微生物を含む育
苗床土で育苗したキュウリ苗は、つる割病の発病指数が
いずれも対照区と比べて著しく減少し、高い防除効果が
認められた。
苗床土で育苗したキュウリ苗は、つる割病の発病指数が
いずれも対照区と比べて著しく減少し、高い防除効果が
認められた。
試験例３ バーミキュライトで育苗した本葉２から３枚期のキュ
ウリ苗（品種；霜知不地這号）を実験区当り10個体供試
した。キュウリ苗は、ツアペック液体培地で27℃、６日
間振とう培養した後無菌濾過することにより得られた本
発明の微生物の培養濾液、あるいは本発明の微生物の胞
子を107個/ml含むツアペック液体培地を27℃、12時間振
とう培養して胞子を発芽させた後無菌濾過することによ
り得られた胞子発芽液に30分間浸漬した後、バーミキュ
ライトに各々仮植した。なお、対照は、キュウリ苗を滅
菌蒸留水に同様の処理をした後バーミキュライトに仮植
した。36時間後、試験例１と同様の方法で得られたつる
割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.cucumerinum）の胞
子懸濁液に再び30分間浸漬し、育苗床土1000mlに各々定
植して栽培した。20日後に発病状態を観察し、試験例１
と同様に平均発病指数を求め、さらに、処理区の対照区
に対する防除率を算出した。
ウリ苗（品種；霜知不地這号）を実験区当り10個体供試
した。キュウリ苗は、ツアペック液体培地で27℃、６日
間振とう培養した後無菌濾過することにより得られた本
発明の微生物の培養濾液、あるいは本発明の微生物の胞
子を107個/ml含むツアペック液体培地を27℃、12時間振
とう培養して胞子を発芽させた後無菌濾過することによ
り得られた胞子発芽液に30分間浸漬した後、バーミキュ
ライトに各々仮植した。なお、対照は、キュウリ苗を滅
菌蒸留水に同様の処理をした後バーミキュライトに仮植
した。36時間後、試験例１と同様の方法で得られたつる
割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.cucumerinum）の胞
子懸濁液に再び30分間浸漬し、育苗床土1000mlに各々定
植して栽培した。20日後に発病状態を観察し、試験例１
と同様に平均発病指数を求め、さらに、処理区の対照区
に対する防除率を算出した。
結果は第３表に示すとおり、本発明の微生物の培養濾
液，胞子発芽液をキュウリ根に処理することにより、つ
る割病の発病指数が対照区と比べて減少し、高い防除率
が得られた。
液，胞子発芽液をキュウリ根に処理することにより、つ
る割病の発病指数が対照区と比べて減少し、高い防除率
が得られた。
試験例４ バーミキュライトで育苗した本葉が３から４枚期のメ
ロン苗（品種；アールス東海Ｒ−250）を実験区当り10
個供試した。メロン苗を、試験例１と同様の方法で得ら
れた本発明の微生物の胞子懸濁液に30分間浸漬した後、
バーミキュライトに各々仮植した。なお、対照は、メロ
ン苗を滅菌蒸留水に同様の処理をした後、バーミキュラ
イトに仮植した。36時間後、試験例１と同様の方法で得
られたつる割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.meloni
s）の胞子懸濁液に再び30分間浸漬し、育苗床土1000ml
に各々定植して栽培した。30日後に発病状態を観察し、
試験例１と同様に平均発病指数を求め、さらに、処理区
の対照区に対する防除率を算出した。
ロン苗（品種；アールス東海Ｒ−250）を実験区当り10
個供試した。メロン苗を、試験例１と同様の方法で得ら
れた本発明の微生物の胞子懸濁液に30分間浸漬した後、
バーミキュライトに各々仮植した。なお、対照は、メロ
ン苗を滅菌蒸留水に同様の処理をした後、バーミキュラ
イトに仮植した。36時間後、試験例１と同様の方法で得
られたつる割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.meloni
s）の胞子懸濁液に再び30分間浸漬し、育苗床土1000ml
に各々定植して栽培した。30日後に発病状態を観察し、
試験例１と同様に平均発病指数を求め、さらに、処理区
の対照区に対する防除率を算出した。
結果は第４表に示すとおり、本発明の微生物の胞子懸
濁液をメロンの根に処理することにより、つる割病の発
病指数が対照区と比べて著しく減少し、極めて高い防除
率が得られた。
濁液をメロンの根に処理することにより、つる割病の発
病指数が対照区と比べて著しく減少し、極めて高い防除
率が得られた。
試験例５ 試験例２と同様の方法で得られた本発明の微生物を含
む育苗床土100mlにメロン種子（品種；アールス東海Ｒ
−250）を各々播種，育苗し、実験区当り10個体を供試
した。なお、対照は、無菌の育苗床土で同様に育苗した
ものを用いた。本葉が第４から５枚期に育苗床土1000ml
に各々定植した後、試験例１と同様の方法で得られたつ
る割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.melonis）の胞子
懸濁液10mlを各株基に灌注接種して栽培した。50日後に
発病状態を観察し、試験例１と同様に平均発病指数を求
め、さらに、処理区の対照区に対する防除率を算出し
た。
む育苗床土100mlにメロン種子（品種；アールス東海Ｒ
−250）を各々播種，育苗し、実験区当り10個体を供試
した。なお、対照は、無菌の育苗床土で同様に育苗した
ものを用いた。本葉が第４から５枚期に育苗床土1000ml
に各々定植した後、試験例１と同様の方法で得られたつ
る割病菌（Fusarium oxysporum f.sp.melonis）の胞子
懸濁液10mlを各株基に灌注接種して栽培した。50日後に
発病状態を観察し、試験例１と同様に平均発病指数を求
め、さらに、処理区の対照区に対する防除率を算出し
た。
結果は第５表に示すとおり、本発明の微生物を含む育
苗床土で育苗したメロン苗は、つる割病の発病指数が対
照区と比べて著しく減少し、高い防除効果が認められ
た。
苗床土で育苗したメロン苗は、つる割病の発病指数が対
照区と比べて著しく減少し、高い防除効果が認められ
た。
試験例６ 試験例２と同様の方法で得られた本発明の微生物を含
む育苗床土500mlにキュウリ（品種；霜知不地這）を各
々播種，育苗し、実験区当り５個体を供試した。なお、
対照は、無菌の育苗床土で同様に育苗をしたものを用い
た。本葉が第７から８枚期につる割病激発圃場へ定植し
た。この際に、試験例２と同様の方法で得られた本発明
の微生物を含む育苗床土を栽培土壌の1/10量植穴に添加
した。また、つる割病激発土壌をベノミル剤〔ベンレー
ト水和剤（ヂュポン社製商品名）〕1000倍液を土壌灌注
し、殺菌操作を行った土壌も供試した。60日後に発病状
態を監察し、試験例１と同様に平均発病指数を求め、さ
らに、処理区の対照区に対する防除率を算出した。
む育苗床土500mlにキュウリ（品種；霜知不地這）を各
々播種，育苗し、実験区当り５個体を供試した。なお、
対照は、無菌の育苗床土で同様に育苗をしたものを用い
た。本葉が第７から８枚期につる割病激発圃場へ定植し
た。この際に、試験例２と同様の方法で得られた本発明
の微生物を含む育苗床土を栽培土壌の1/10量植穴に添加
した。また、つる割病激発土壌をベノミル剤〔ベンレー
ト水和剤（ヂュポン社製商品名）〕1000倍液を土壌灌注
し、殺菌操作を行った土壌も供試した。60日後に発病状
態を監察し、試験例１と同様に平均発病指数を求め、さ
らに、処理区の対照区に対する防除率を算出した。
結果は第６表に示すように、本発明の微生物を育苗時
および定植時に処理することにより、ベノミル剤と同等
以上の防除効果が得られた。
および定植時に処理することにより、ベノミル剤と同等
以上の防除効果が得られた。
試験例７ ナス（品種；千両２号），トマト（品種；ポンデロー
サ），イチゴ（品種；宝交早生），ダイコン（品種；若
駒）の幼苗を実験区当り５個体供試した。試験例１と同
様の方法で得られた本発明の微生物の胞子懸濁液に30分
間浸漬し、育苗床土1000mlに各々定植して栽培した。な
お、対照として、実施例１と同様の方法で得られた各作
物に病原性を有するナス半枯病菌（Fusarium oxysporum
f.sp.melongenae）、トマト萎凋病菌（Fusarium oxysp
orum f.sp.lycopersici race J−１）、イチゴ萎黄病菌
（Fusarium oxysporum f.sp.fragariae）、ダイコン萎
黄病菌（Fusarium oxysporum f.sp.raphani）の胞子懸
濁液を同様に処理をして栽培した。30日後に発病状態を
監察し、生育阻害や葉の黄化，萎凋等の外部病徴で判断
した。
サ），イチゴ（品種；宝交早生），ダイコン（品種；若
駒）の幼苗を実験区当り５個体供試した。試験例１と同
様の方法で得られた本発明の微生物の胞子懸濁液に30分
間浸漬し、育苗床土1000mlに各々定植して栽培した。な
お、対照として、実施例１と同様の方法で得られた各作
物に病原性を有するナス半枯病菌（Fusarium oxysporum
f.sp.melongenae）、トマト萎凋病菌（Fusarium oxysp
orum f.sp.lycopersici race J−１）、イチゴ萎黄病菌
（Fusarium oxysporum f.sp.fragariae）、ダイコン萎
黄病菌（Fusarium oxysporum f.sp.raphani）の胞子懸
濁液を同様に処理をして栽培した。30日後に発病状態を
監察し、生育阻害や葉の黄化，萎凋等の外部病徴で判断
した。
結果は第７表に示すとおり、本微生物はウリ科作物を
はじめとして、ナス，トマト，イチゴ，ダイコンに対し
ても何ら病原性を示さなかった。
はじめとして、ナス，トマト，イチゴ，ダイコンに対し
ても何ら病原性を示さなかった。
本発明に係わる新規微生物フザリウム・オキシスポル
ム（Fusarium oxysporum）MT−3013（微工研菌寄第1078
7号）は、キュウリをはじめとするウリ科作物の病害、
特に難防除病害である土壌伝染病の防除に有効で、しか
も、自然界に生息する微生物から選抜されたものである
ことから、化学合成農薬で懸念される環境汚染の心配が
無く、安全に使用できる。
ム（Fusarium oxysporum）MT−3013（微工研菌寄第1078
7号）は、キュウリをはじめとするウリ科作物の病害、
特に難防除病害である土壌伝染病の防除に有効で、しか
も、自然界に生息する微生物から選抜されたものである
ことから、化学合成農薬で懸念される環境汚染の心配が
無く、安全に使用できる。
Claims (2)
- 【請求項１】ウリ科作物の病害防除に有効な新規微生物
フザリウム・オキシスポルム（Fusarium oxysporum）MT
−3013（微工研菌寄第10787号）。 - 【請求項２】新規微生物フザリウム・オキシスポルム
（Fusarium oxysporum）MT−3013（微工研菌寄第1078
7）および／またはその代謝産物を植物根または土壌に
処理することを特徴とするウリ科作物の病害防除方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1214090A JP2732905B2 (ja) | 1989-08-22 | 1989-08-22 | ウリ科作物の病害防除微生物および病害防除法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1214090A JP2732905B2 (ja) | 1989-08-22 | 1989-08-22 | ウリ科作物の病害防除微生物および病害防除法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0380072A JPH0380072A (ja) | 1991-04-04 |
| JP2732905B2 true JP2732905B2 (ja) | 1998-03-30 |
Family
ID=16650064
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1214090A Expired - Lifetime JP2732905B2 (ja) | 1989-08-22 | 1989-08-22 | ウリ科作物の病害防除微生物および病害防除法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2732905B2 (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2011229443A (ja) * | 2010-04-27 | 2011-11-17 | Nagasaki Prefecture | Ｆｕｓａｒｉｕｍｕｏｘｙｓｐｏｒｕｍのジャガイモシストセンチュウおよびジャガイモそうか病に対する防除方法 |
| CN114292759B (zh) * | 2022-01-12 | 2023-07-07 | 云南省烟草公司昆明市公司 | 一株具有防治烟草连作障碍作用的尖孢镰刀菌 |
-
1989
- 1989-08-22 JP JP1214090A patent/JP2732905B2/ja not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ Ｖｏｌ．７２，Ｎｏ．１１，Ｐ．１４３９−１４４１ |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0380072A (ja) | 1991-04-04 |
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