JP2022534813A - Cd33改変のための組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は2019年5月23日出願のU.S.シリアルNo.:62/852,238および2020年1月16日出願のU.S.シリアルNo.:62/962,127の優先権を主張する。これらのそれぞれの内容全体は参照によって本明細書に組み込まれる。
本願は配列表を含有する。これはASCIIフォーマットで電子的に提出されており、その全体が参照によってここに組み込まれる。2020年5月21日に作成された前記ASCIIコピーはV0291.70004WO00-Reference Listing.txtと名付けられ、サイズが23,508バイトである。
12.標的化ドメインを含むgRNAであって、標的化ドメインが配列番号10の配列を含む。
第1の相補性ドメイン;
連結ドメイン;
第1の相補性ドメインに対して相補的である第2の相補性ドメイン;
近位ドメイン;および
尾部ドメイン;
の1つ以上(例えば全て)を含む。
第1の相補性ドメイン;
連結ドメイン;
第1の相補性ドメインに対して相補的である第2の相補性ドメイン;
近位ドメイン;および
尾部ドメイン;
の1つ以上(例えば全て)に対して非相同である。
a)態様1~45のいずれかのgRNA、またはgRNAをコードする核酸、および
b)第2のgRNA、または第2のgRNAをコードする核酸、
を含む。
(a)変異を第1表の標的ドメイン(例えば、配列番号1~8のいずれかの標的ドメイン)に;および
(b)第2の変異をCD33以外の系列特異的細胞表面抗原をコードする遺伝子に;
含む。
(i)細胞(例えば造血幹細胞または前駆細胞、例えば野生型造血幹細胞または前駆細胞)を提供することと、
(ii)細胞に(a)態様1~45のいずれかのガイドRNA(gRNA)または態様46~73のいずれかの組成物もしくはキットのgRNA;および(b)gRNAに結合するエンドヌクレアーゼ(例えばCas9分子)を導入することと、
を含み、
それによって、遺伝子操作された細胞を生成する。
(i)細胞(例えば造血幹細胞または前駆細胞、例えば野生型造血幹細胞または前駆細胞)を提供することと、
(ii)細胞に(a)態様1~45のいずれかのgRNAまたは態様46~73のいずれかの組成物もしくはキットのgRNA;および(b)gRNAに結合するCas9分子を導入することと、
を含み、
それによって、遺伝子操作された細胞を生成する。
a)態様1~45のいずれかのgRNA、または態様46~73のいずれかの組成物もしくはキットのgRNA;
b)細胞、例えば造血細胞、例えばHSCまたはHPC、例えば態様112~181のいずれかの遺伝子操作された細胞;
のいずれか2つまたは全てを含む。
a)態様1~45のいずれかのgRNA、または態様46~73のいずれかの組成物もしくはキットのgRNA;
b)細胞、例えば造血細胞、例えばHSCまたはHPC、例えば態様112~181のいずれかの遺伝子操作された細胞;
c)Cas9分子;および
d)CD33を標的化する薬剤、例えば本明細書に記載される薬剤;
のいずれか2つ以上(例えば、3つまたは全て)を含む。
(i)細胞(例えば造血幹細胞または前駆細胞、例えば野生型造血幹細胞または前駆細胞)を提供することと、
(ii)細胞に標的ドメインを切断するヌクレアーゼ(例えばエンドヌクレアーゼ)を導入することと、
を含み、
それによって、遺伝子操作された造血幹細胞または前駆細胞を生成する。
いくつかの態様では、本明細書に記載される細胞(例えば、HSCまたはHPC)は本明細書に記載されるヌクレアーゼを用いて作られる。例示的なヌクレアーゼは、Cas分子(例えば、Cas9またはCas12a)、TALEN、ZFN、およびメガヌクレアーゼを包含する。いくつかの態様では、ヌクレアーゼは本明細書に記載されるCD33 gRNAとの組み合わせで用いられる(例えば、第2表に従う)。
いくつかの態様では、本明細書に記載されるCD33 gRNAはCas9分子と複合体化する。種々のCas9分子が用いられ得る。いくつかの態様では、gRNA/Cas9分子複合体をCD33上の標的ドメインへと標的化するための所望のPAM特異性を有するCas9分子が選択される。いくつかの態様では、細胞を遺伝子操作することは、1つ以上の(例えば、1、2、3、またはより多くの)Cas9分子を細胞に導入することをもまた含む。
いくつかの態様では、本明細書に記載される細胞または細胞集団はジンクフィンガー(ZFN)テクノロジーを用いて生成する。いくつかの態様では、ZFNは本明細書において例えば第1表に記載される標的ドメインを認識する。一般的に、ジンクフィンガーによって媒介されるゲノム編集にはジンクフィンガーヌクレアーゼの使用が関わり、これは典型的にはジンクフィンガーDNA結合ドメインおよびヌクレアーゼドメインを含む。ジンクフィンガー結合ドメインは、目当てのいずれかの標的ドメインを認識および結合するように操作され得る。例えば、長さが約3ヌクレオチドから約21ヌクレオチドまたは長さが約8から約19ヌクレオチドの範囲であるDNA配列を認識するように設計され得る。ジンクフィンガー結合ドメインは典型的には少なくとも3つのジンクフィンガー認識領域(例えば、ジンクフィンガー)を含む。
いくつかの態様では、本明細書に記載される細胞または細胞集団はTALENテクノロジーを用いて生成する。いくつかの態様では、TALENは本明細書において例えば第1表に記載される標的ドメインを認識する。一般的に、TALENは、所望の標的DNA分子に特異的に結合および切断し得る操作された制限酵素である。TALENは、典型的には、DNA切断ドメインに融合された転写活性化因子様エフェクター(TALE)DNA結合ドメインを含有する。DNA結合ドメインは、多様な2アミノ酸RVD(リピート可変ジペプチドモチーフ)を位置12および13に有する高度に保存された33~34アミノ酸配列を含有し得る。RVDモチーフは核酸配列に対する結合特異性を決定し、所望のDNA配列に特異的に結合するように操作され得る。1つの例では、DNA切断ドメインはFokIエンドヌクレアーゼに由来し得る。いくつかの態様では、FokIドメインは、適切な向きおよび間隔を有する標的ゲノム上の部位のための独特のDNA結合ドメインを有する2つの構築物を用いて、二量体として機能する。
gRNA構成一般
gRNAはいくつものドメインを含み得る。ある態様では、単分子sgRNAまたはキメラgRNAは、例えば5'から3'に:
標的化ドメイン(これはCD33遺伝子上の標的核酸に対して相補的である;
第1の相補性ドメイン;
連結ドメイン;
第2の相補性ドメイン(これは第1の相補性ドメインに対して相補的である);
近位ドメイン;および
任意に尾部ドメイン;
を含む。
例えば5'から3'に;
標的化ドメイン(これはCD33遺伝子上の標的核酸に対して相補的である)および
第1の相補性ドメイン;
を含む第1のストランドと、
好ましくは5'から3'に:
任意に5'延長ドメイン;
第2の相補性ドメイン;
近位ドメイン;および
任意に尾部ドメイン;
を含む第2のストランドと、
を含む。
本開示は、エンドヌクレアーゼをヒトCD33へと標的化し得るいくつもの有用なgRNAを提供する。下の第1表は、本明細書に記載されるgRNAによって結合され得るヒトの内在性のCD33上の標的ドメインを例解する。
いくつかの態様では、例えばヌクレアーゼをゲノム上の2つの部位へと導くために、本明細書に記載されるgRNA(例えば、第2表のgRNA)は第2のgRNAとの組み合わせで用いられ得る。例えば、いくつかの態様では、例えば細胞が2つの薬剤:抗CD33薬剤および第2の系列特異的細胞表面抗原を標的化する薬剤に対して抵抗性であり得るようにして、CD33および第2の系列特異的細胞表面抗原について欠損がある造血細胞を生成することが望まれる。いくつかの態様では、2つのカットを作り、2つのカット部位間の欠失を作り出すために、CD33の異なる領域を標的化する2つの異なるgRNAと細胞を接触させることが望ましい。従って、本開示はgRNAの種々の組み合わせを提供する。
いくつかの態様では、本明細書に記載される操作された細胞は2つの変異を含み、第1の変異はCD33にあり、第2の変異は第2の系列特異的細胞表面抗原にある。かかる細胞は、いくつかの態様では、2つの薬剤:抗CD33薬剤および第2の系列特異的細胞表面抗原を標的化する薬剤に対して抵抗性であり得る。いくつかの態様では、かかる細胞は、本明細書に記載される2つ以上のgRNA、例えば第2表のgRNAおよび第2のgRNAを用いて生成し得る。いくつかの態様では、細胞は例えばZFNまたはTALENを用いて生成し得る。本開示は本明細書に記載される細胞を含む集団をもまた提供する。
いくつかの態様では、CD33の改変を有する細胞(例えばHSCまたはHPC)が本明細書に記載されるヌクレアーゼおよび/またはgRNAを用いて作られる。いくつかの態様では、CD33の改変および第2の系列特異的細胞表面抗原の改変を有する細胞(例えばHSCまたはHPC)が本明細書に記載されるヌクレアーゼおよび/またはgRNAを用いて作られる。細胞は細胞それ自体をヌクレアーゼおよび/もしくはgRNAと接触させることによって作られ得るか、または細胞はヌクレアーゼおよび/もしくはgRNAと接触させられた細胞の娘細胞であり得るということが理解される。いくつかの態様では、本明細書に記載される細胞(例えばHSC)は対象の造血系を再構築することができる。いくつかの態様では、本明細書に記載される細胞(例えばHSC)は:ヒト対象に生着すること、骨髄系列細胞を生成すること、およびリンパ系列細胞を生成すること(producing and)の1つ以上(例えば全て)ができる。
いくつかの態様では、有効数の本明細書に記載されるCD33を改変された細胞が、抗CD33治療、例えば抗CD33癌治療との組み合わせで投与される。いくつかの態様では、改変されたCD33および改変された第2の系列特異的細胞表面抗原を含む有効数の細胞が、抗CD33治療、例えば抗CD33癌治療との組み合わせで投与される。いくつかの態様では、抗CD33治療は、抗体、ADC、またはCARを発現する免疫細胞を含む。
抗CD33重鎖可変領域のアミノ酸配列(配列番号15)
sgRNA構築物の設計
第4表に指示されているsgRNAを、標的領域に密に近接したSpCas9 PAM(5'-NGG-3')のマニュアル点検によって設計し、オンライン検索アルゴリズム(例えばBenchlingアルゴリズム、Doench et al 2016、Hsu et al 2013)によってヒトゲノム上の潜在的オフターゲット部位を最小化することによって予測される特異性に従って優先付けした。全ての設計された合成sgRNAは5'および3'端両方の3つの末端位置に化学修飾ヌクレオチドを有して生成した。修飾ヌクレオチドは2'-O-メチル-3'-ホスホロチオエート(「ms」と略称される)を含有し、ms-sgRNAはHPLC精製した。Cas9蛋白質はSynthegoから購入した。
動員末梢血に由来する凍結CD34+HSCをHemacareまたはFred Hutchinson Cancer Centerどちらかから購入し、製造者の説明書に従って解凍した。HSCを編集するためには、~1×106のHSCを解凍し、RNPによるエレクトロポレーション前に24~48hに渡ってStemSpan CC110カクテル(StemCell Technologies)を補ったStemSpan SFEM培地によって培養した。HSCをエレクトロポレーションするためには、1.5×105細胞をペレット化し、20μLのLonza P3溶液に再懸濁し、10μLのCas9 RNPと混合した。CD34+HSCをLonza Nucleofector 2(プログラムDU-100)およびヒトP3細胞ヌクレオフェクションキット(VPA-1002、Lonza)を用いてエレクトロポレーションした。
全ゲノム分析では、DNAを細胞から収穫し、標的領域をフランキングするプライマーによって増幅し、精製し、アレル改変頻度をTIDE(デコンポジションによるインデルのトラッキング)を用いて分析した。分析はモックトランスフェクションされたサンプルからの参照配列を用いて行った。パラメータは、10ヌクレオチドのデフォルト最大インデルサイズ、および高品質のトレースによる可能な最も大きいウインドウをカバーするデコンポジションウインドウにセットした。3.5%の検出感度よりも下の全てのTIDE分析は0%にセットした。
生きたHL60またはCD34+HSCを抗CD33抗体(P67.7)を用いてCD33について染色し、Attune NxTフローサイトメータ(Life Technologies)によるフローサイトメトリーによって分析した。
ヒトCD34+細胞を上に記載されている通りCas9蛋白質および指示されているCD33標的化gRNAによってエレクトロポレーションした。
パーセンテージ編集を、TIDEによって評価される%インデル(図1および図3)またはフローサイトメトリーによる表面CD33蛋白質発現(図2および図4)によって決定した。編集効率をフローサイトメトリー分析から決定した。
図1に示されている通り、gRNA F、gRNA 55E、gRNA H、gRNA C、およびgRNA Dは細胞のおよそ50~100%の範囲の高い比率のインデルを与えた。比較して、gRNA Jはかなり低い比率のインデルを与えた。gRNA Eはドナー1ではなくドナー2~4において高いインデル頻度を示した。図1の他のgRNAはより類似の結果をドナーからドナーの間で示した。
図2に示されている通り、gRNAのgRNA F、gRNA E、gRNA H、gRNA C、およびgRNA DはFACSによって検出されるCD33発現の顕著な縮減を示した。図1で観察されたそのより低い活性と整合して、gRNA JはCD33発現の類似の縮減を示さなかった。
図3に示されている通り、gRNA AおよびgRNA Bは細胞のおよそ60~90%の範囲の高い比率のインデルを与えた。
図4に示されている通り、gRNA AおよびgRNA BはFACSによって検出されるCD33発現の顕著な縮減を示した。
これらのおよび他のgRNAのサブセットの遺伝子編集効率をHL60 AML(前骨髄球性白血病)細胞株において試験した。HL-60細胞を指示されているgRNAを用いてCRISPR/Cas9によって遺伝子編集した。CD33陽性細胞のパーセンテージをエレクトロポレーションの6日後にフローサイトメトリーによって評価して、CD33をノックアウトすることにおける有効性を評価した。ゲノムDNAをPCR増幅し、上に記載されている通りTIDEによって分析して、インデル(挿入/欠失)によって評価されるパーセンテージ編集を決定した。
HSC細胞におけるCD19およびCD33遺伝子の効率的な二重ゲノム編集を、従来の方法または本明細書に記載されるものを踏襲してNALM-6細胞またはHSCどちらかにおいて行った。下の第8表はCD19のエキソン2およびCD33のエキソン3を標的化するgRNAを提供する。
細胞生存能に対する複数の座位におけるゲノム編集の効果をNALM-6、HL-60細胞、およびHSCにおいて評価した。ヌクレオフェクションの2日前に、HSPCを解凍するか、またはNalm-6もしくはHL-60細胞を継代した。24および48時間(ヌクレオフェクションの日)に、細胞をカウントし、細胞生存能を評価した。第6表のgRNAを含む複合体によって行われたヌクレオフェクションは、本明細書に記載される材料および方法に従って行った。指示されているタイムポイントにおいて、細胞をカウントし、細胞生存能を評価した。結果は図6A~6Cに図示され、二元的Cas9/gRNA送達が細胞株の生存能を損なわないということを指示している。シングルガイドRNAと比べて追加の傷害性はHSCでは観察されなかった。
結果
CD33、CD123、およびCLL1(CLEC12A)の細胞表面レベルを、未編集のMOLM-13細胞およびTHP-1細胞(両方ともヒトAML細胞株)においてフローサイトメトリーによって測定した。MOLM-13細胞は高いレベルのCD33およびCD123ならびに中等から低いレベルのCLL1を有した。HL-60細胞は高いレベルのCD33およびCLL1ならびに低いレベルのCD123を有した(図7)。
個々にまたは全てのペアワイズの組み合わせでCD33、CD123、またはCLL1について編集された細胞はBFU-Eコロニー(赤芽球バースト形成細胞)を生成し、細胞がこのアッセイでは有意な分化ポテンシャルを保持するということを示した(図13A)。編集された細胞はCFU-G/M/GMコロニーをもまた生成し、細胞がこのアッセイでは編集されていないコントロールとは統計的に区別できない分化ポテンシャルを保持するということを示した(図13B)。編集された細胞は検出可能なCFU-GEMMコロニーをもまた生成した(図13C)。コロニー形成単位(CFU)-G/M/GMコロニーはCFU-G(顆粒球)、CFU-M(マクロファージ)、およびCFU-GM(顆粒球/マクロファージ)コロニーを言う。CFU-GEMM(顆粒球/赤芽球/マクロファージ/巨核球)コロニーは、CFU-GMコロニーを生じさせる細胞の前駆体であるより分化していない細胞から生ずる。一緒にすると、分化アッセイは、2つの座位を編集されたヒトCD34+細胞が種々の細胞型に分化する能力を保持するということを指示している。
AML細胞株
ヒトAML細胞株HL-60はアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC)から得た。HL-60細胞は20%熱不活性化HyCloneウシ胎児血清(GE Healthcare)を補ったイスコフ改変ダルベッコ培地(IMDM、Gibco)によって培養した。ヒトAML細胞株MOLM-13はAddexBio Technologiesから得た。MOLM-13細胞は10%熱不活性化HyCloneウシ胎児血清(GE Healthcare)を補ったRPMI-1640培地(ATCC)によって培養した。
全てのsgRNAは標的領域に密に近接したSpCas9 PAM(5'-NGG-3')のマニュアル点検によって設計し、オンライン検索アルゴリズム(例えばBenchlingアルゴリズム、Doench et al 2016、Hsu et al 2013)によってヒトゲノム上の潜在的オフターゲット部位を最小化することによって予測される特異性に従って優先付けした。全ての設計された合成sgRNAはSynthegoから購入され、5'および3'端両方の3つの末端位置に化学修飾ヌクレオチドを有した。修飾ヌクレオチドは2'-O-メチル-3'-ホスホロチオエート(「ms」と略称される)を含有し、ms-sgRNAはHPLC精製した。Cas9蛋白質はAldervonから購入した。典型的には、本明細書の例に記載されるgRNAは、20ヌクレオチド(nt)の標的化配列、12ntのcrRNAリピート配列、4ntのテトラループ配列、および64ntのtracrRNA配列を含むsgRNAである。
Cas9蛋白質およびms-sgRNAを(1:1重量比で)混合し、エレクトロポレーションに先立って室温で10分に渡ってインキュベーションした。MOLM-13およびHL-60細胞をそれぞれプログラムTHP-1およびOpt-3でMaxCyte ATxエレクトロポレータシステムを用いてCas9リボ核蛋白質複合体(RNP)によってエレクトロポレーションした。フローサイトメトリーソーティングまで、細胞を37℃で5~7日に渡ってインキュベーションした。
凍結保存されたヒトCD34+細胞をHemacareから購入し、製造者の説明書に従って解凍した。ヒトCD34+細胞をヒトサイトカイン(Flt3、SCF、およびTPO。全てPeprotechから購入)を補ったGMP SCGM培地(CellGenix)によって2日に渡って培養した。CD34+細胞をCas9 RNP(1:1重量比のCas9蛋白質およびms-sgRNA)によってLonza 4DヌクレオフェクターおよびP3初代細胞キット(プログラムCA-137)を用いてエレクトロポレーションした。二元的ms-sgRNAによるエレクトロポレーションでは、等量の各ms-sgRNAを追加した。細胞は分析まで37℃で培養した。
ゲノムDNAをエレクトロポレーションの2日後の細胞からprepGEM DNA抽出キット(ZyGEM)を用いて抽出した。目当てのゲノム領域をPCRによって増幅した。PCRアンプリコンをSangerシーケンシング(Genewiz)によって分析し、アレル改変頻度をtide.deskgen.comのワールドワイドウェブにおいて利用可能なTIDE(デコンポジションによるインデルのトラッキング)ソフトウェアを用いて計算した。
エレクトロポレーションの2日後に、500個のCD34+細胞を6ウェルプレート上の1.1mLのメチルセルロース(MethoCult H4034 Optimum、Stem Cell Technologies)にデュプリケートでプレーティングし、2週に渡って培養した。それから、コロニーをカウントし、StemVision(Stem Cell Technologies)を用いてスコア付けした。
ヒトCD33(P67.6)、CD123(9F5)、およびCLL1(REA431)に対する蛍光色素(flurochrome)コンジュゲート化抗体はそれぞれBiolegend、BD Biosciences、およびMiltenyi Biotecから購入した。全ての抗体はそれらのそれぞれのアイソタイプコントロールと共に試験した。細胞表面染色は、細胞を特異的抗体と30minに渡って氷上でヒトTruStain FcXの存在下においてインキュベーションすることによって行った。全ての染色について、死細胞をDAPI(Biolegend)染色によって分析から除外した。全てのサンプルはAttune NxTフローサイトメータ(ThermoFisher Scientific)およびFlowJoソフトウェア(TreeStar)によって取得および分析された。
フローサイトメトリーソーティングには、細胞を蛍光色素(flurochrome)コンジュゲート化抗体によって染色し、次にMoflow Astriosセルソーター(Beckman Coulter)によるソーティングをした。
CD33/CLL-1多重細胞傷害性実験に用いられた抗CD33 CAR-Tを例外として、CD33、CD123、およびCLL-1を標的化するために、第2世代CARを構築した。各CARは細胞外scFv抗原結合ドメインからなり、CD8αシグナルペプチド、CD8αヒンジおよび膜貫通領域、4-1BB共刺激ドメイン、およびCD3ξシグナル伝達ドメインを用いた。抗CD33 scFv配列はクローンP67.6(Mylotarg)から;抗CD123 scFv配列はクローン32716から;CLL-1 scFv配列はクローン1075.7から得た。抗CD33および抗CD123 CAR構築物はscFvの重から軽の向きを用い、抗CLL1 CAR構築物は軽から重の向きを用いる。重および軽鎖を(GGGS)3リンカー(配列番号63)によって接続した。各標的のCAR cDNA配列をpCDH-EF1α-MCS-T2A-GFP発現ベクターのマルチクローニング部位にサブクローニングし、レンチウイルスを製造者のプロトコール(System Biosciences)を踏襲して作出した。レンチウイルスは293TN細胞(System Biosciences)の一過的なトランスフェクションによってLipofectamine 3000(ThermoFisher)を用いて作出され得る。CAR構築物は、抗CD33 scFv(クローンMy96)の軽および重鎖からCD8αヒンジドメイン、ICOS膜貫通ドメイン、ICOSシグナル伝達ドメイン、4-1BBシグナル伝達ドメイン、およびCD3ξシグナル伝達ドメインをレンチウイルスプラスミドpHIV-Zsgreenにクローニングすることによって作出された。
ヒト初代T細胞を、製造者のプロトコール(Stem Cell Technologies)に従って抗CD4および抗CD8マイクロビーズを用いる磁性ビーズ分離によってLeuko Pak(Stem Cell Technologies)から単離した。精製されたCD4+およびCD8+T細胞を1:1混合し、抗CD3/CD28カップリングダイナビーズ(Thermo Fisher)を1:1のビーズ対細胞比で用いて活性化した。用いられたT細胞培養培地は、免疫細胞血清代替物、L-グルタミン、およびGlutaMAX(全てThermo Fisherから購入)、ならびに100IU/mLのIL-2(Peprotech)を補ったCTS Optimizer T細胞拡大培養培地であった。T細胞形質導入をポリブレン(Sigma)の存在下におけるスピノキュレーションによって活性化の24時間後に行った。CAR-T細胞は凍結保存に先立って9日に渡って培養した。全ての実験に先立って、T細胞を解凍し、37℃で4~6時間に渡って静置した。
負のコントロール細胞の生残に対して相対的に標的細胞の生残を比較することによって、標的細胞の細胞傷害性を測定した。CD33/CD123多重細胞傷害性アッセイでは、野生型およびCRISPR/Cas9編集MOLM-13細胞を標的細胞として用い、CD33/CLL-1多重細胞傷害性アッセイでは、野生型およびCRISPR/Cas9編集HL60細胞を標的細胞として用いた。野生型Raji細胞株(ATCC)を両方の実験について負のコントロールとして用いた。標的細胞および負のコントロール細胞をそれぞれCellTrace Violet(CTV)およびCFSE(Thermo Fisher)によって製造者の説明書に従って染色した。染色後に、標的細胞および負のコントロール細胞を1:1で混合した。
動員末梢血に由来する凍結CD34+HSPCを解凍し、Cas9およびsgRNAを含むリボ核蛋白質によるエレクトロポレーション前に72hに渡って培養した。サンプルは次の条件でエレクトロポレーションした:
i.)モック(Cas9のみ)、
ii.KO sgRNA(CD33 gRNA A)
インビトロの傷害性を決定するために、細胞をそれらの培養培地中のGOとインキュベーションし、生存可能な細胞数を経時的に定量した。下の表に示されている通り、CD33 gRNA Aによって作出されたCD33ノックアウト細胞は、全長CD33を発現する細胞(モック)よりもGO処置に対して抵抗性であった。CD33KO細胞で観察された50%の編集は分裂細胞では十分な保護と考えられる。
CD33を改変された細胞がGO処置後に濃縮されるかどうかをアッセイするために、CD34+HSPCを標準的なCas9/gRNA比の50%で編集した。細胞のバルク集団をGO処置に先立っておよびその後に分析した。図14Aに示されている通り、GO処置に先立って、TIDEによってアッセイすると、51%のgRNA Aによって改変された細胞(KO)であった。GO処置後には、CD33を改変された細胞は濃縮され、KO細胞のパーセンテージは80%まで増大した。このデータは、GO処置後にはCD33を改変された細胞の濃縮があるということを指示した。
GO処置に先立っておよびその後に、分化後の種々の日に、細胞集団を骨髄系分化について評価した。図14Bおよび14Cに示されている通り、CD33 gRNA Aによって作出されたCD33ノックアウト細胞は分化マーカーCD14の増大した発現を示したが、全長CD33を発現する細胞(モック)は分化しなかった。
動員末梢血CD34+HSC(mPB CD34+HSPC)の編集
gRNA(Synthego)を例1に記載されている通り設計した。mPB CD34+HSPCをFred Hutchinson Cancer Centerから購入し、製造者の説明書に従って解凍した。それから、これらの細胞を例1に記載されている通りCRISPR/Cas9によって編集した。CD33標的化ガイドRNA:gRNA A(配列番号1)、gRNA B(配列番号2)、gRNA O(CCTCACTAGACTTGACCCAC)(配列番号64)、およびヒトまたはマウスゲノム上のいずれかの領域を標的化しないように設計されたCD33を標的化しないコントロールgRNA(gCtrl)を用いた。
6から8週齢である雌NSGマウス(JAX)が2~7日に渡って順化することを許した。順化後に、マウスをX線照射装置による175cGy全身照射を用いて照射した。これを検討の第0日と見なした。4~10時間において、照射後に、マウスに、gRNA A、gRNA B、もしくはgRNA Oによって編集されたCD33KO、またはgCtrlによって編集されたコントロール細胞を生着させた(n=15)。凍結保存された細胞を解凍し、BioRad TC-20自動セルカウンターを用いてカウントした。解凍バイアルの生存可能な細胞数を定量し、これを用いてマウスへの生着のためのトータル細胞数を調製した(第12表)。マウスに100μL体積中の1×106の編集された細胞の単一の静脈注射を与えた。体重および臨床観察を4つの群の各マウスについて毎週1回記録した。
生着後の第8週に、hCD33(図17A)、hCD45(図17B)、hCD14(図17C)、およびhCD11b(図18D)を発現するμL当たりの細胞のトータル数を、gRNA A(A)、gRNA B(B)、もしくはgRNA O(O)どちらかによって編集されたCD33KO mPB CD34+HSPC細胞を受け取ったマウス、またはコントロールgRNAによって編集された細胞(コントロール、gCtrl)を受け取ったマウスにおいて定量した。図17Aに示されている通り、CD33KO細胞(X軸上に図示されている通りgRNA:O、A、またはBによって編集された)を受け取ったマウスはコントロール細胞と比較して非常に少数のhCD33+細胞(μL当たり≧5細胞)を有した。それらがどの編集された細胞を生着させられたのかにかかわらず、hCD45+細胞、hCD14+、およびCD11b+細胞数は全てのマウスにおいて同等であった。これらの結果は、マウスの血液中のgRNA AまたはgRNA Bによって編集されたCD33KO細胞の首尾良い生着を指示した。
生着後の第16週に、hCD45+細胞のパーセンテージ(図24A)およびhCD33+細胞のパーセンテージ(図24B)を、コントロール細胞またはCD33KO細胞(X軸上に図示されている通りgRNA:O、A、もしくはBによって編集された)を生着させたマウスの骨髄において定量した。hCD45+細胞のパーセンテージはコントロールおよびCD33KO群において同等であり、有核骨髄細胞頻度の喪失がないことを指示した。hCD33+細胞のパーセンテージはCD33KO群ではコントロール群と比較して有意に低く、これらの群における有核血液細胞からのCD33の喪失を指示した。これらのデータはNSGマウスの骨髄におけるCD33KO HSCの長期存続をもまた実証している。
生着後の第16週に、hCD45+細胞のパーセンテージ(図29A)およびhCD33+細胞のパーセンテージ(図29B)を、コントロール細胞またはCD33KO細胞(X軸上に図示されている通りgRNA:O、A、もしくはBによって編集された)を生着させたマウスの脾臓においてもまた定量した。hCD45+細胞のパーセンテージはコントロールおよびCD33KO群において同等であった。hCD33+細胞のパーセンテージはコントロール群と比較してCD33KO群では有意に低かった。これらのデータはNSGマウスの脾臓におけるCD33KO HSCの長期存続をもまた実証している。
生着後の第16週に、hCD11b+細胞(図30A(血液)、31A(骨髄))、hCD33+CD11b+好中球細胞(図30B(血液)、31B(骨髄))、およびCD33KO由来の好中球(hCD33-Cd11b+)(図30C(血液)31C(骨髄)のパーセンテージを、コントロール細胞またはCD33KO細胞(X軸上に図示されている通りgRNA:O、A、もしくはBによって編集された)を生着させたマウスの血液および骨髄において定量した。CD33KO由来の好中球(hCD33-CD11b+)が、CD33KO細胞を生着させたマウスの血液および骨髄において観察された。さらに、CD33KO細胞を生着させたマウスにおけるCD33KO由来の好中球(hCD33-CD11b+)集団は、NSGマウスの血液および骨髄両方において、生着後の第16週のコントロール細胞を生着させたマウスで観察されたhCD33+CD11b+好中球集団の集団と同等のままであった。
また、第16週には、血液中のhCD123+細胞のパーセンテージ(図32A)、ならびに骨髄中のhCD123+細胞のパーセンテージ(図32B、左)および骨髄中のhCD10+細胞のパーセンテージ(図32B、右)を、コントロール細胞またはCD33KO細胞(X軸上に図示されている通りgRNA:O、A、もしくはBによって編集された)を生着させたマウスにおいて定量した。これらのデータは、骨髄系およびリンパ系前駆細胞のレベルがコントロールおよびCD33KO群の血液および骨髄では第16週において同等であったということを示している。
一緒にすると、これらのデータは、gRNA AまたはBによって編集されたCD33KO mPB CD34+HSPCが首尾良い生着をもたらし、造血組織、具体的には血液、骨髄、および脾臓における長期存続を実証したということを指示している。加えて、同等のレベルのヒトCD45+細胞ならびに骨髄系およびリンパ系細胞集団が、コントロール細胞またはgRNA AもしくはBによって編集されたCD33KO mPB CD34+HSPCを生着させたマウスにおいて観察された。最後に、アンプリコンseq分析は、gRNA AまたはBによって編集されたCD33KO mPB CD34+HSPCを生着させた全てのマウスにおいて、オンターゲット編集の第16週における存続を実証した。
当業者は、本明細書に記載される例示的な態様の多くの同等物を認識するか、またはせいぜい慣例的な実験作業を用いて確かめる能力があるであろう。本開示の範囲は上の記載に限定されることを意図されない。
Claims (22)
- 標的化ドメインが配列番号10の配列を含む、標的化ドメインを含むgRNA。
- 標的化ドメインが配列番号9の配列を含む、標的化ドメインを含むgRNA。
- 標的化ドメインが配列番号11の配列を含む、標的化ドメインを含むgRNA。
- 標的化ドメインが配列番号12の配列を含む、標的化ドメインを含むgRNA。
- 第1の相補性ドメイン、連結ドメイン、第1の相補性ドメインに対して相補的である第2の相補性ドメイン、および近位ドメインを含む、請求項1~4のいずれか1項に記載のgRNA。
- シングルガイドRNA(sgRNA)である、請求項1~5のいずれか1項に記載のgRNA。
- 1つ以上の2’O-メチルヌクレオチドを含む、請求項1~6のいずれか1項に記載のgRNA。
- 1つ以上のホスホロチオエートまたはチオPACE連結部を含む、請求項1~7のいずれか1項に記載のgRNA。
- (i)造血幹細胞または前駆細胞を提供することと、
(ii)細胞に(a)請求項1~4dのいずれか1項に記載のgRNA;および(b)gRNAに結合するCas9分子を導入することと、
を含み、
それによって、遺伝子操作された細胞を生成する、
遺伝子操作された細胞を生成する方法。 - Cas分子が、SpCas9エンドヌクレアーゼ、SaCas9エンドヌクレアーゼ、またはCpf1エンドヌクレアーゼを含む、請求項9に記載の方法。
- (i)および(ii)が予め形成されたリボ核蛋白質複合体として細胞に導入される、請求項9または10に記載の方法。
- リボ核蛋白質複合体がエレクトロポレーションによって細胞に導入される、請求項11に記載の方法。
- 請求項9~12のいずれか1項に記載の方法によって生成される、遺伝子操作された造血幹細胞または前駆細胞。
- 請求項13に記載の複数の遺伝子操作された造血幹細胞または前駆細胞を含む、細胞集団。
- さらに、1つ以上の操作されていないCD33遺伝子を含む1つ以上の細胞を含む、請求項14に記載の細胞集団。
- 野生型カウンターパート細胞集団によって発現されるCD33の20%未満を発現する、請求項14または15に記載の細胞集団。
- 造血幹細胞および造血前駆細胞の両方を含む、請求項14~16のいずれか1項に記載の細胞集団。
- さらに、CD33以外の系列特異的細胞表面抗原をコードする遺伝子に第2の変異を含む、請求項14~17のいずれか1項に記載の細胞集団。
- CD33以外の系列特異的細胞表面抗原をコードする遺伝子がCLL-1またはCD123である、請求項18に記載の細胞集団。
- それを必要とする対象に請求項14~19のいずれか1項に記載の細胞集団を投与することを含む、方法。
- 対象が造血悪性物を有する、請求項20に記載の方法。
- さらに、CD33を標的化する有効量の薬剤を対象に投与することを含み、薬剤がCD33に結合する抗原結合断片を含む、請求項20または21に記載の方法。
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