JP2021532769A - Ctgf発現抑制用組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
前記多孔性シリカ粒子は、直径5nm未満の気孔を有するシリカ粒子を120℃〜180℃で24時間〜96時間膨張剤と反応させ、前記直径5nm未満の気孔を膨張させるステップと、前記気孔が膨張されたシリカ粒子を400℃以上の温度で3時間以上か焼するステップとを含んで製造され、
前記多孔性シリカ粒子の平均直径は100nm〜1,000nmであり、そのBET表面積は200m2/g〜700m2/gであり、そのg当たりの体積は0.7ml〜2.2mlであり、
前記多孔性シリカ粒子は、下記数式1の吸光度の比が1/2となるtが24以上である、CTGF遺伝子発現抑制用組成物。
[数式1]
At/A0
(式中、A0は、前記多孔性シリカ粒子1mg/mlの懸濁液5mlを直径50kDaの気孔を有する円筒状の透過膜に入れて測定した前記多孔性シリカ粒子の吸光度であり、
前記透過膜の外部には、前記透過膜と接し、前記懸濁液と同じ溶媒15mlが位置し、前記透過膜の内外部は37℃で60rpmで水平攪拌され、
前記懸濁液のpHは7.4であり、
Atは、前記A0の測定時からt時間経過後に測定した前記多孔性シリカ粒子の吸光度である。)
At/A0
(式中、A0は、前記多孔性シリカ粒子1mg/mlの懸濁液5mlを直径50kDaの気孔を有する円筒状の透過膜に入れて測定した多孔性シリカ粒子の吸光度であり、
前記透過膜の外部には、前記透過膜と接し、前記懸濁液と同じ溶媒15mlが位置し、前記透過膜の内外部は、37℃で60rpmで水平攪拌され、
前記懸濁液のpHは、7.4であり、
Atは、前記A0の測定時からt時間経過後に測定した多孔性シリカ粒子の吸光度である。)
1.実験材料
DegradaBALLとTAMRAが結合したDegradaBALLは、Lemonex,Inc.(ソウル、大韓民国)から提供された。細胞計数キット−8(Cell counting kit−8)は、Dojindo molecular technologies、Inc.(Maryland、USA)から購入した。TGF−βは、Peprotech(New Jersey、USA)から購入した。10%リン酸塩緩衝生理食塩水(PBS)、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)、胎児ウシ血清(FBS)、ロズウェルパーク記念研究所1640(RPMI 1640)、ペニシリン−ストレプトマイシン及び0.05%トリプシン−EDTAは、WelGene(大韓民国)から購入した。核酸分子は、いずれもLemonex(ソウル、大韓民国)により合成された。その配列及び本明細書で使用される核酸分子の配列を下記表1に示す。PCRプライマーは、いずれもCosmogenetech(ソウル、大韓民国)から購入した。抗マウスCTGF抗体は、Abcam(Cambridge、UK)から購入し、抗マウスコラーゲン1、3抗体は、Invitrogen(Carlsbad、CA、USA)から購入した。Trizol細胞溶解液は、Molecular Probes Invitrogen(Carlsbad、CA、USA)から購入した。PCR試薬は、いずれもTaKaRa Bio Inc.(Shiga、Japan)から購入した。すべての化学物質は、受領してそのまま使用した。なお、以下に示す表1において、「Target sequence」は「標的配列」を、「Position in gene sequence」は「遺伝子配列の位置」を、「GC content」は「GC含有量」を、「Sense strand」は「センス鎖」を、「Antisense strand」は「アンチセンス鎖」を、それぞれ意味する。
すべての動物実験は、大韓民国のソウル大学のIACUC(Institutional Animal Care and Use Committees)に準拠して行った。C57BL/6雄マウス(5週)は、ORIENT BIO社(城南市、大韓民国)から購入した。
A549及びHaCaT細胞を100μlの成長培地(50〜70%コンフルエント)を有する96ウェル培養プレートにウェル当たり10,000細胞の密度で接種した。細胞を血清含有培地で適切な濃度のDegradaBALLで処理し、37℃で24時間培養した。培養後、細胞を1xPBSで2回洗浄した後、10μlのCCK−8を含有した100μlの無血清培地を添加し、さらに1時間培養した。培養プレート内の各ウェルの光学密度を450nmの波長で測定した。三重項(deviation of triplicates)の平均及び標準偏差が計算され、プロットされた。
イン・ビトロでのLEM−S401のCTGF遺伝子サイレンシング効率を証明するために、無血清培地のLEM−S401(12.5、25、50及び100nM)の500μlを、ウェル当たり25,000細胞のコンフルエントで接種したプレート内のA549及びHaCaT細胞に処理した。37℃の加湿された5%CO2培養器で6時間培養した後、無血清培養液を除去した。1xPBSで2回洗浄した後、血清含有細胞培地を入れ替えた。さらに6時間後、血清含有培養培地を除去し、1xPBSで洗浄した。血清を含有した培地でTGF−β(2ng/mL)500μlを細胞で処理し、CTGF誘導のために培養12時間後、Trizolを用いてs総RNAを抽出した。
すべてのイン・ビトロ及びイン・ビボで抽出したRNAは、以下の反応条件下で熱循環反応に用いられた。cDNAの合成:65℃で5分、42℃で2分、42℃で50分、70℃で15分間不活性化1サイクル、増幅過程:95℃で30秒、55℃で60秒、72℃で30秒の30サイクル。
LEM−S401(33mM)(FITC−接合siCTGF及びTAMRA−結合DegradaBALL)の30μlを7つの他の部位でマウスの皮膚に注射した。犠牲にした後、FOBI生体内イメージング機器(NeoScience Co.,Ltd.、ソウル市、大韓民国)を用いて、切除されたマウスの皮膚の蛍光画像を撮影した。得られた皮膚サンプルを4%PFA溶液に入れた。サンプルをパラフィンに包埋し、10μmの厚さに切断した。脱水過程の後、切片されたサンプルをDAPIで染色した。サンプルは20x対物レンズ(Olympus、Tokyo、Japan)が装着されたBX71顕微鏡により観察した。
マウスの皮膚に生検パンチ(4mm)を用いて傷を作成すようにパンチングした。時間が経過し、傷を明確に観察するために、黒いシルク糸を用いて、シリコン副木(外側15mm、内側8mm)を傷の周りに縫合した。1xPBSでLEM−S401(3mM)30μLを4日ごとに(4日、8日、12日)、傷の周りの4つの異なる部位に皮下注入した。傷はテガダーム(Tegaderm)と包帯を2日に一回ずつ交換して管理した。16日後、マウスを犠牲にした。
マウスの皮膚サンプルを24時間4℃で4%PFA溶液で培養した。その後、サンプルをパラフィンに包埋し、10μmの厚さで切片を作成した。切片化したサンプルを脱水させ、透過溶液(1xPBS中0.2%tween 20)でそれぞれ10分ずつ2回培養した。その後、サンプルを加湿された大気下でブロッキング溶液(5%正常ヤギ血清、1xPBS中0.2%tween 20)で45分間インキュベートした。サンプルを室温で3時間、加湿チャンバーで2%正常ヤギ血清およびPBS中の抗体の1:100希釈液を有する0.2%tween 20を含有する1次抗体溶液と共にインキュベートした。サンプルを透過溶液でそれぞれ10分間3回洗い、室温で2時間1xPBSで、2%正常ヤギ血清及び0.2%tween 20を含有する2次抗体希釈溶液と共に培養した。サンプルを透過溶液で洗浄し、DAPIで染色した。サンプルは20x対物レンズ(Olympus、Tokyo、Japan)が装着されたBX71顕微鏡により観察した。
9−1.多孔性シリカ粒子の製造
(1)多孔性シリカ粒子の製造
1)小気孔粒子の製造
2L丸底フラスコに蒸留水(DW)の960mlとMeOHの810mlを入れた。前記フラスコにCTABを7.88g入れた後、攪拌しながら1M NaOHの4.52mlを素早く入れた。10分間攪拌して均一な混合液を得た後、TMOSの2.6mlを入れた。6時間攪拌して均一に混合した後、24時間熟成し、反応液を得た。
その後、前記反応液を25℃で10分間8,000rpmで遠心分離して上澄み液を除去し、25℃で10分間8,000rpmで遠心分離し、エタノール及び蒸留水で交互に5回洗浄した。
その後、70℃のオーブンで乾燥し、1.5gの粉末状の小気孔多孔性シリカ粒子(気孔平均直径2nm、粒径200nm)を得た。
1.5gの小気孔多孔性シリカ粒子の粉末をエタノール10mlに添加して超音波分散し、水10ml、TMB(trimethyl benzene)10mlを添加して超音波分散し、分散液を得た。
その後、前記分散液をオートクレーブに入れて160℃、48時間反応させた。
反応は25℃で開始し、10℃/分の速度で昇温して行った。その後、オートクレーブ内で1〜10℃/分の速度で徐々に冷却した。
冷却した反応液を25℃で10分間8,000rpmで遠心分離して上澄み液を除去し、25℃で10分間8,000rpmで遠心分離し、エタノールおよび蒸留水で交互に5回洗浄した。
その後70℃のオーブンで乾燥し、粉末状の多孔性シリカ粒子(気孔直径10〜15nm、粒径200nm)を得た。
前記2)で製造された多孔性シリカ粒子をガラスバイアル(vial)に入れて550℃で5時間加熱し、反応終了後、常温まで徐々に冷却して粒子を製造した。
気孔拡張時の反応条件を140℃、72時間に変更した以外は、前記9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
5倍大きな容器を使用し、各物質をいずれも5倍の容量で使用した以外は、実施例9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
小気孔粒子の製造時に蒸留水920ml、メタノール850mlを使用した以外は、9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
小気孔粒子の製造時に蒸留水800ml、メタノール1,010ml、CTAB 10.6gを使用した以外は、9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
小気孔粒子の製造時に蒸留水620ml、メタノール1,380ml、CTAB 7.88gを使用した以外は、9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
気孔拡張時にTMBを2.5ml使用した以外は、9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
気孔拡張時にTMBを4.5ml使用した以外は、9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
気孔拡張時にTMBを11ml使用した以外は、9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
気孔拡張時にTMBを12.5ml使用した以外は、9−1−(1)の方法と同様にして多孔性シリカ粒子を製造した。
1)小気孔粒子の製造
実施例9−1−(1)−1)の方法と同様にして小気孔粒子を製造した。
実施例9−1−(1)−2)の方法と同様にして小気孔粒子をTMBと反応させ、冷却し、遠心分離して上澄み液を除去した。その後、実施例9−1−(1)−2)と同じ条件で遠心分離し、エタノール及び蒸留水で交互に3回洗浄した。その後、実施例9−1−(1)−2)と同じ条件で乾燥し、粉末状の多孔性シリカ粒子(気孔直径10〜15nm、粒径200nm)を得た。
気孔が拡張された多孔性シリカ粒子0.8g〜1gを50mlのトルエンに分散した後、(3−アミノプロピル)トリエトキシシラン((3−aminopropyl)triethoxysilane)を5ml入れて120℃で還流したまま12時間加熱した。この過程では、前述の洗浄過程および乾燥過程を経た後、1mlのトリエチレングリコール(PEG3,2−[2−(2−methoxyethoxy)ethoxy] acetic acid)と、100mgのEDC(1−Ethyl−3−(3−dimethylaminopropyl)carbodiimide)と、200mgのN−ヒドロキシコハク酸イミド(N−Hydroxysuccinimide,NHS)を30mlのPBSに分散して常温で攪拌したまま12時間反応する。その後、生成物は、前記の洗浄及び乾燥過程を経る。
気孔内部に、前のステップの反応液が残っているため、気孔内部は改質されない。
表面改質された粒子粉末800mgを2M HCl/エタノール40mlに溶かし、12時間強く撹拌下で還流した。
その後、冷却された反応液を10分間8,000rpmで遠心分離して上澄み液を除去し、25℃で10分間8,000rpmで遠心分離し、エタノールおよび蒸留水で交互に5回洗浄した。
その後、70℃のオーブン中で乾燥して粉末状の多孔性シリカ粒子を得た。
i)後述する実施例9−2−(2)−1)の方法と同様にして気孔内部にプロピル基を導入した。
ii)後述する実施例9−2−(2)−2)の方法と同様にして気孔内部にオクチル基を導入した。
(1)陽電荷での帯電
1)粒径300nmの粒子
実施例9−1−(4)の多孔性シリカ粒子を(3−アミノプロピル)トリエトキシシラン((3−Aminopropyl)triethoxysilane,APTES)と反応させて、陽電荷に帯電させた。
具体的には、100mL丸底フラスコにおいて、100mgの多孔性シリカ粒子を10mLのトルエンに洗浄器(bath sonicator)で分散させた。その後、1mLのAPTESを添加し、400rpmで攪拌し、130℃で攪拌して12時間反応させた。
反応後、常温まで徐々に冷却し、10分間8,000rpmで遠心分離して上澄み液を除去し、25℃で10分間8,000rpmで遠心分離し、エタノールおよび蒸留水で交互に5回洗浄した。
その後、70℃のオーブン中で乾燥し、表面および気孔内部にアミノ基を有する粉末状の多孔性シリカ粒子を得た。
i)実施例9−1−(1)の多孔性シリカ粒子を(3−アミノプロピル)トリエトキシシラン((3−Aminopropyl)triethoxysilane,APTES)と反応させて陽電荷に帯電させ、APTESを0.4ml添加し、反応時間を3時間とした以外は、前記実施例9−2−(1)−1)の方法と同様にして改質した。
ii)実施例9−1−(9)の多孔性シリカ粒子を(3−アミノプロピル)トリエトキシシラン((3−Aminopropyl)triethoxysilane,APTES)と反応させて陽電荷に帯電させ、それ以外は、前記実施例9−2−(1)−1)の方法と同様にして改質した。
iii)実施例9−1−(10)の多孔性シリカ粒子を(3−アミノプロピル)トリエトキシシラン((3−Aminopropyl)triethoxysilane,APTES)と反応させて陽電荷に帯電させ、それ以外は、前記実施例9−2−(1)−1)の方法と同様にして改質した。
1)プロピル基
前記実施例9−1−(1)の多孔性シリカ粒子をトリメトキシ(プロピル)シラン(Trimethoxy(propyl)silane)と反応させて、表面および気孔内部にプロピル基を導入し、APTESの代わりにトリメトキシ(プロピル)シラン(Trimethoxy(propyl)silane)を0.35ml添加し、12時間反応させた以外は、前記実施例9−2−(1)の方法と同様にして改質した。
前記実施例9−1−(1)の多孔性シリカ粒子をトリメトキシ−n−オクチルシラン(Trimethoxy−n−octylsilane)と反応させて、表面および気孔内部にプロピル基を導入し、APTESの代わりにトリメトキシ−n−オクチルシラン(Trimethoxy−n−octylsilane)を0.5ml添加し、12時間反応させた以外は、前記実施例9−2−(1)の方法と同様にして改質した。
1)カルボキシル基
前記実施例9−1−(1)の多孔性シリカ粒子を無水コハク酸(succinic anhydride)と反応させて陰電荷に帯電させ、トルエンの代わりにDMSO(ジメチルスルホキシド)を使用し、APTESの代わりに80mgの無水コハク酸(succinic anhydride)を添加して24時間常温で攪拌し反応させ、洗浄時に蒸留水の代わりにDMSOを使用した以外は、前記実施例9−2−(1)−1)の方法と同様にして改質した。
APTESの代わりにMPTESの1.1mLを使用した以外は、前記実施例9−2−(1)−1)の方法と同様にして改質した。
前記実施例9−2−(3)−2)の多孔性シリカナノ粒子100mgを、1M硫酸水溶液1mLと30%過酸化水素水20mLに分散して常温で攪拌し、酸化反応を誘導してチオール基をスルホン酸基に酸化した。その後、前記実施例9−2−(1)−1)の方法と同様にして洗浄および乾燥した。
実施例9−2−(1)−2)−ii)の多孔性シリカ粒子10μgと50pmolの核酸分子を1xPBS条件下で混合した後、常温で30分間置いて積載した。
1.本発明の核酸分子のCTGF発現抑制の分析
前記実施例に基づいて製造された核酸分子(PNA、siRNAまたはdsRNA;前記表1を参照)のCTGFの発現抑制率を下記表2、3に示す。
2−1.粒子の形成及び気孔拡張の確認
実験方法の実施例9−1−(1)〜(3)の粒子の小気孔粒子、製造された多孔性シリカ粒子を顕微鏡で観察し、小気孔粒子が均一に生成されているか、気孔が十分に拡張されて多孔性シリカ粒子が均一に形成されているかを確認した(図28〜31)。
図28は、実施例9−1−(1)の多孔性シリカ粒子の写真、図29は、実施例9−1−(2)の多孔性シリカ粒子の写真であり、気孔が十分に拡張された球状の多孔性シリカ粒子が均一に生成されたことを確認することができる。
図30は、実施例9−1−(1)の小気孔粒子の写真、図31は、実施例9−1−(1)と9−1−(3)の小気孔粒子の比較写真であり、球状の小気孔粒子が均一に生成されたことを確認することができる。
実験方法の実施例9−1−(1)の小気孔粒子、実施例9−1−(1)、(7)、(8)、(10)の多孔性シリカ粒子の表面積と気孔体積を計算した。表面積は、ブルナウアー−エメット−テラー(Brunauer−Emmett−Teller)(BET)方法により計算し、気孔サイズの分布は、バーレット−ジョイナー−ハレンダ(Barrett−Joyner−Halenda)(BJH)方法により計算した。
前記各粒子の顕微鏡写真は図32に、計算の結果は下記表4に示す。
実験方法の実施例9−1−(1)の多孔性シリカ粒子の生分解性を確認するために、37℃、SBF(pH7.4)における生分解の程度を0時間、120時間、360時間に顕微鏡で観察し、それを図33に示す。
これを参照すると、多孔性シリカ粒子が生分解され、360時間経過後はほぼすべてが分解されたことを確認することができる。
時間別に下記数式1による吸光度比を測定した。
At/A0
(式中、A0は、前記多孔性シリカ粒子1mg/mlの懸濁液5mlを直径50kDaの気孔を有する円筒状の透過膜に入れて測定した多孔性シリカ粒子の吸光度であり、
前記透過膜の外部には、前記透過膜と接し、前記懸濁液と同じ溶媒15mlが位置し、前記透過膜の内外部は、37℃で60rpmで水平攪拌され、
Atは、前記A0の測定時からt時間経過後に測定した多孔性シリカ粒子の吸光度である。)
その後、紫外・可視分光法(UV−vis spectroscopy)によって吸光度を測定し、λ=640nmで分析した。
実験方法の実施例9−1−(1)の多孔性シリカ粒子の吸光度比を前記方法に従って測定し、その結果を図35に示す。
これを参照すると、吸光度比が1/2となるtは約58時間であり、非常にゆっくりと分解されることが確認できた。
実験方法の実施例9−1−(1)、(5)、(6)の多孔性シリカ粒子の吸光度を前記数式1により測定し、その結果を図36に示す(懸濁液と溶媒としては、SBFを使用した。)。
これを参照すると、粒径の増加によってtが減少することが分かる。
実験方法の実施例9−1−(1)、(9)の多孔性シリカ粒子、そしてコントロールとして実験方法の実施例9−1−(1)の小気孔多孔性シリカ粒子の吸光度を前記数式1により測定した。その結果を図37に示す(懸濁液と溶媒としては、SBFを使用した。)。
これを参照すると、実施例の多孔性シリカ粒子は、コントロールに比べてtが非常に大きいことが確認できる。
実験方法の実施例9−1−(4)の多孔性シリカ粒子のpH別吸光度を測定した。吸光度は、SBFで、そしてpH2、5及び7.4のTrisで測定し、その結果を図38に示す。
これを参照すると、pH別にtの差はあるが、いずれも吸光度の比が1/2となるtは24以上であった。
実験方法の実施例9−2−(1)−1)の多孔性シリカ粒子の吸光度を測定し、その結果を図39に示す(懸濁液と溶媒としては、トリス(Tris,pH7.4)を使用した。)。
これを参照すると、陽電荷に帯電した粒子も吸光度の比が1/2となるtは24以上であった。
Cy5−siRNAをロードした多孔性シリカ粒子10μlをSBF(pH7.4、37℃)に再浮遊させ、気孔直径20kDaの透過膜(図40のチューブ)に入れた。
その後、透過チューブを1.5mlのSBFに浸漬した。
siRNAの放出は、37℃で60rpmで水平攪拌して行われた。
24時間の前には、0.5、1、2、4、8、12、24時間経過した時間に放出溶媒を回収した。その後は24時間間隔で0.5mlの放出溶媒を蛍光測定のために回収し、等量のSBFを添加した。
Cy5−siRNAの蛍光強度は、670nmの波長(λex=647nm)で測定し、siRNAの放出程度を測定した。その結果は図41に示す。
これを参照すると、siRNAが50%放出された時間は約48時間であることを確認することができる。
LEM−S401のターゲット遺伝子ノックダウン効率を測定するために、A549(ヒト肺癌非小細胞)細胞とHaCaT(ヒトケラチノサイト細胞)細胞を、siCTGFを担持したDegradaBALL(LEM−S401)で処理した。両細胞株は、いずれも機能的に活性なCTGF転写経路を持っているため、A549及びHaCaT細胞は線維症の研究でイン・ビトロモデル細胞として広く用いられている。まず、A549細胞を様々な濃度のLEM−S401(12.5、25、50及び100nM)で処理した後、CTGFの発現を誘導するために2ng/mLのTGF−βと共に培養した(図1)。以前の研究では、TGF−βがイン・ビトロでCTGFの発現を誘導することを示したことがあり、TGF−βをA549及びHaCaT細胞に処理することにより、CTGFの発現レベルが顕著に増加することを確認した(図17)。細胞株に対するLEM−S401の処理は、濃度依存的にCTGFのmRNA発現レベルを減少させた。一方、対照群(siCTGF only、scrambled siRNA及びvehicle(DegradaBALL)only)は、A549及びHaCaT細胞の両方において、CTGFのmRNAレベルに有意な差を示さなかった(図2、3)。この結果は、LEM−S401が細胞内へsiCTGFを効率的にトランスフェクション(transfection)させ、CTGF遺伝子のノックダウンを誘導することを示す。
本実験では、LEM−S401は、A549及びHaCaT細胞においてLNPよりもCTGFノックダウン効果をより長く維持した。A549及びHaCaT細胞をLEM−S401(50nM)及びLNP(50nM)に担持されたsiCTGFで処理した後、TGF−β処理によってCTGFの発現を誘導した。A549細胞において、CTGFの下向き調節は、LEM−S401の処理後96時間まで持続された(CTGF発現レベル、72時間:26.3%、96時間:26.9%)。これに対して、LNPに担持されたsiCTGFのノックダウン効率は72時間、96時間の両方で高くなかった(CTGF発現レベル、72時間:46.4%、96時間:58.6%)。また、HaCaT細胞において、LEM−S401のノックダウン効率(CTGF発現レベル、72時間:34.3%、96時間:35.8%)は、LNPに担持されたsiCTGF(CTGF発現レベル、72時間:62.5%、96時間:78.8%)と比べて持続的で、優れていた(図4、5)。これをまとめると、LEM−S401は、細胞でLNPに担持されたsiCTGFに比べて、より長期間、ターゲットmRNAの発現レベルを抑制することが分かった。
次に、LEM−S401が生体内でCTGFの発現を下向き調節できるかを決定するための実験を行った。生体内での遺伝子ノックダウン効果を測定する前に、C57BL/6マウスにTAMRA−接合されたDegradaBALLに担持されたFITC−接合されたsiCTGFで構成された蛍光標識LEM−S401を注入し、担持されていない(自由)FITC−接合されたsiCTGFのみを皮下注入経路から注入して、LEM−S401と自由siCTGFの注入部位での持続時間を比較した。そして、切除されたマウスの皮膚と切片化された皮膚の蛍光画像解析は、注入後1,3,5日目に行った。FITC−siCTGFを担持したTAMRA−DegradaBALLの蛍光は、1日目に注入部位で強い発光を示した。そして、蛍光は時間の経過によって徐々に減少したが、注入後5日目まで注入部位での蛍光は維持された(図6)。このように時間の経過によって注入部位での蛍光が減少する傾向は、皮膚切片スライドの傾向による(図6)。一方、担持されていない自由FITC−siCTGFのみを注入したマウスから切除した皮膚や切片化した皮膚のスライドでは蛍光シグナルが観察されなかったが、これは自由siCTGFが体内で急速に分散してしまったり、非常に迅速な拡散を誘導する小さな断片に分解されることを暗示する(図7)。前記データは、自由siCTGFと比べて、LEM−S401の方が皮膚内で顕著に高い濃度レベルのsiCTGFを、少なくとも注入後3日目まで維持できることを示す。
Claims (23)
- 配列番号1の配列と10ヌクレオチド以上相補的な配列からなる核酸分子;を含むCTGF遺伝子発現抑制用組成物。
- 配列番号1の配列と16ヌクレオチド以上相補的な配列からなる核酸分子;を含む、請求項1に記載の組成物。
- 配列番号1の配列全体と相補的な配列からなる核酸分子;を含む、請求項1に記載の組成物。
- 前記核酸分子は、siRNA、dsRNA、PNAまたはmiRNAの1つの鎖(strand)をなすものである、請求項1に記載の組成物。
- 配列番号1の配列からなるセンスRNA及び配列番号2の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号3の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号52の配列からなるセンスRNA及び配列番号53の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号54の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号55の配列からなるセンスRNA及び配列番号56の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号57の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号58の配列からなるセンスRNA及び配列番号59の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号60の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号61の配列からなるセンスRNA及び配列番号62の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号63の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号64の配列からなるセンスRNA及び配列番号65の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号66の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号67の配列からなるセンスRNA及び配列番号68の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号69の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号70の配列からなるセンスRNA及び配列番号71の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号72の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA;からなる群より選択される少なくとも一つのsiRNAまたはdsRNAを含む、請求項4に記載の組成物。
- 前記センスRNA及びアンチセンスRNA配列の3’末端にUUまたはdTdTの配列をさらに含むものである、請求項5に記載の組成物。
- 配列番号87〜99の配列からなる群より選択される一つの配列からなるPNAを少なくとも一つ含む、請求項4に記載の組成物。
- 前記PNAの少なくとも一つの末端に配列番号101〜113からなる群より選択される少なくとも一つの配列からなるペプチド;またはmPEG5000がさらに結合されたものである、請求項7に記載の組成物。
- 請求項1〜8のいずれか一項に記載の組成物を含む線維増殖性疾患の予防または治療用の薬学的組成物。
- 前記線維増殖性疾患は、肥厚性瘢痕、ケロイド、線維症、肺線維症、特発性肺線維症、肝線維症、腎線維症、嚢胞性線維症、骨髄線維症、後腹膜線維症、皮膚硬化症、糖尿病性網膜症、デュシェンヌ型筋ジストロフィー、放射−誘導線維症、心筋線維症、糖尿病性腎臓病、慢性腎不全症、慢性ウイルス性肝炎、胆道線維症、脂肪肝炎、アルコール性脂肪肝炎、非アルコール性脂肪肝炎、増殖性硝子体網膜症、筋骨格系の腫瘍、骨肉腫、横紋筋肉腫、膠芽腫、肺癌、卵巣癌、食道癌、大腸癌、膵臓癌、腎臓硬化症、サルコイドーシス、緑内障、黄斑変性、網膜下線維症、脈絡膜血管新生、硝子体網膜症、増殖性硝子体網膜症、糖尿病網膜症、角膜炎、翼状片、瞼裂斑、皮膚硬化症、子宮筋腫、全身硬化症、糸球体腎炎、ヒト免疫不全ウイルス腎症、急性呼吸困難症候群、慢性閉塞性肺疾患、レイノー病、関節リウマチ、多発性筋炎、血管狭窄症、歯周炎、および歯周齦からなる群より選択される少なくとも一つである、請求項9に記載の組成物。
- CTGF遺伝子の転写体の少なくとも一部に相補的に結合する核酸分子を担持した多孔性シリカ粒子;を含み、
前記多孔性シリカ粒子は、直径5nm未満の気孔を有するシリカ粒子を120℃〜180℃で24時間〜96時間膨張剤と反応させ、前記直径5nm未満の気孔を膨張させるステップと、前記気孔が膨張されたシリカ粒子を400℃以上の温度で3時間以上か焼するステップとを含んで製造され、
前記多孔性シリカ粒子の平均直径は100nm〜1,000nmであり、そのBET表面積は200m2/g〜700m2/gであり、そのg当たりの体積は0.7ml〜2.2mlであり、
前記多孔性シリカ粒子は、下記数式1の吸光度の比が1/2となるtが24以上である、CTGF遺伝子発現抑制用組成物。
[数式1]
At/A0
(式中、A0は、前記多孔性シリカ粒子1mg/mlの懸濁液5mlを直径50kDaの気孔を有する円筒状の透過膜に入れて測定した前記多孔性シリカ粒子の吸光度であり、
前記透過膜の外部には、前記透過膜と接し、前記懸濁液と同じ溶媒15mlが位置し、前記透過膜の内外部は37℃で60rpmで水平攪拌され、
前記懸濁液のpHは7.4であり、
Atは、前記A0の測定時からt時間経過後に測定した前記多孔性シリカ粒子の吸光度である。) - 前記多孔性シリカ粒子は、外部表面または気孔内部が中性のpHで陽電荷または無電荷を帯びるものである、請求項11に記載の組成物。
- 前記多孔性シリカ粒子は、親水性または疎水性の官能基を有するものである、請求項11に記載の組成物。
- 前記核酸分子は、配列番号1の配列と10ヌクレオチド以上相補的なものである、請求項11に記載の組成物。
- 前記核酸分子は、配列番号1の配列と16ヌクレオチド以上相補的なものである、請求項11に記載の組成物。
- 配列番号1の配列全体と相補的な配列からなる核酸分子;を含む、請求項11に記載の組成物。
- 前記核酸分子は、siRNA、dsRNA、PNAまたはmiRNAの1つの鎖(strand)をなすものである、請求項11に記載の組成物。
- 配列番号1の配列からなるセンスRNA及び配列番号2の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号3の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号52の配列からなるセンスRNA及び配列番号53の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号54の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号55の配列からなるセンスRNA及び配列番号56の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号57の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号58の配列からなるセンスRNA及び配列番号59の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号60の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号61の配列からなるセンスRNA及び配列番号62の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号63の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号64の配列からなるセンスRNA及び配列番号65の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号66の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号67の配列からなるセンスRNA及び配列番号68の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号69の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA、配列番号70の配列からなるセンスRNA及び配列番号71の配列からなるアンチセンスRNAからなるsiRNA、配列番号72の配列からなる鎖及びそれに相補的な鎖からなるdsRNA;からなる群より選択される少なくとも一つのsiRNAまたはdsRNAを含む、請求項17に記載の組成物。
- 前記センスRNA及びアンチセンスRNA配列の3’末端にUUまたはdTdTの配列をさらに含むものである、請求項18に記載の組成物。
- 配列番号87〜99の配列からなる群より選択される一つの配列からなるPNAを少なくとも一つ含む、請求項17に記載の組成物。
- 前記PNAの少なくとも一つの末端に配列番号101〜113からなる群より選択される少なくとも一つの配列からなるペプチド;またはmPEG5000がさらに結合されたものである、請求項20に記載の組成物。
- 請求項11〜21のいずれか一項に記載の組成物を含む線維増殖性疾患の予防または治療用の薬学的組成物。
- 前記線維増殖性疾患は、肥厚性瘢痕、ケロイド、線維症、肺線維症、特発性肺線維症、肝線維症、腎線維症、嚢胞性線維症、骨髄線維症、後腹膜線維症、皮膚硬化症、糖尿病性網膜症、デュシェンヌ型筋ジストロフィー、放射−誘導線維症、心筋線維症、糖尿病性腎臓病、慢性腎不全症、慢性ウイルス性肝炎、胆道線維症、脂肪肝炎、アルコール性脂肪肝炎、非アルコール性脂肪肝炎、増殖性硝子体網膜症、筋骨格系の腫瘍、骨肉腫、横紋筋肉腫、膠芽腫、肺癌、卵巣癌、食道癌、大腸癌、膵臓癌、腎臓硬化症、サルコイドーシス、緑内障、黄斑変性、網膜下線維症、脈絡膜血管新生、硝子体網膜症、増殖性硝子体網膜症、糖尿病網膜症、角膜炎、翼状片、瞼裂斑、皮膚硬化症、子宮筋腫、全身硬化症、糸球体腎炎、ヒト免疫不全ウイルス腎症、急性呼吸困難症候群、慢性閉塞性肺疾患、レイノー病、関節リウマチ、多発性筋炎、血管狭窄症、歯周炎、および歯周齦からなる群より選択される少なくとも一つである、請求項22に記載の組成物。
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