JP2020534269A - Nkg2d、cd16、およびc型レクチン様分子−1(cll−1)に結合するタンパク質 - Google Patents
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-
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- C07K—PEPTIDES
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Abstract
Description
本出願は、2017年9月14日に出願された米国仮特許出願番号第62/558,510号に基づく利益および優先権を主張する。
本出願は、ASCIIフォーマットで電子提出された配列表を含み、その全体は、参照により本明細書に組み込まれている。前記ASCIIコピーは2018年9月11日に作成され、DFY−041WO_SL.txtという名称であり、89,993バイトのサイズである。
本発明は、NKG2D、CD16、および腫瘍関連抗原、C型レクチン様分子−1(CLL−1)に結合する多重特異性結合タンパク質に関する。
がんは、この疾患を処置するための文献に報告されている十分な研究努力および科学進歩にもかかわらず、重大な健康問題であり続けている。最も頻繁に診断されるがんの中には、前立腺がん、乳がん、肺がんおよび結腸直腸がんが含まれる。前立腺がんは、男性におけるがんの最も一般的な形態である。乳がんは依然として女性における主要な死因である。血液および骨髄のがんはまた、頻繁に診断されるがんのタイプであり、多発性骨髄腫、白血病、およびリンパ腫が挙げられる。これらのがんに対する現在の処置選択肢は、すべての患者に効果的というわけではなく、および/または実質的な有害副作用を有する可能性がある。他のタイプのがんもまた、既存の治療選択肢を使用して処置することは依然として難題である。
C型レクチンドメインファミリー12メンバーA遺伝子は、C型レクチン/C型レクチン様ドメイン(CTL/CTLD)スーパーファミリーのメンバーをコードする。このファミリーのメンバーは、共通するタンパク質折りたたみを共に有し、多様な機能(例えば、細胞接着、細胞間シグナル伝達、糖タンパク質ターンオーバー、ならびに炎症および免疫応答における役割)を有する。この遺伝子によってコードされるタンパク質は、顆粒球および単球機能の負の調節因子である。MICLまたはCLEC12Aとしても公知のヒトC型レクチン様分子−1(CLL−1)は、II型膜貫通糖タンパク質であり、免疫調節に関与するC型レクチン様レセプターの大きなファミリーのメンバーである。CLL−1/CLEC12Aは、急性骨髄性白血病患者のうちの90%超において、白血病幹細胞上で過剰発現されるが、正常な造血細胞上では過剰発現されない。本発明は、CLL−1/CLEC12Aに結合する多重特異性結合タンパク質、およびがんの処置における上記タンパク質の使用を提供する。
本発明は、腫瘍関連抗原CLEC12Aに、ならびにナチュラルキラー細胞上のNKG2DレセプターおよびCD16レセプターに結合する多重特異性結合タンパク質を提供する。かかるタンパク質は、2種類以上のNK活性化受容体と会合することができ、天然リガンドのNKG2Dへの結合を遮断し得る。ある特定の実施形態では、タンパク質は、ヒトにおいてNK細胞を刺激し得、げっ歯動物およびカニクイザルなどの他の種においてNK細胞を刺激し得る。本発明の様々な態様および実施形態を以下にさらに詳細に記載する。
本発明は、がん細胞上のCLEC12A、ならびにナチュラルキラー細胞上のNKG2D受容体およびCD16受容体に結合して、ナチュラルキラー細胞を活性化する多重特異性結合タンパク質、かかる多重特異性結合タンパク質を含む医薬組成物、ならびにがんの処置などの目的のためのかかる多重特異性タンパク質および医薬組成物を使用する治療方法を提供する。本発明の様々な態様を複数のセクションに分けて以下に記述する。しかしながら、1つの特定のセクションに記載される本発明の態様は、いずれかの特定のセクションに限定されるものではない。
本発明は、ナチュラルキラー細胞におけるNKG2D受容体およびCD16受容体、ならびに腫瘍関連抗原CLEC12Aに結合する多重特異性結合タンパク質を提供する。多重特異性結合タンパク質は、本明細書に記載の医薬組成物および治療方法において有用である。ナチュラルキラー細胞のNKG2D受容体およびCD16受容体に多重特異性結合タンパク質が結合すると、腫瘍関連抗原CLEC12Aを発現する腫瘍細胞の破壊に向けてのナチュラルキラー細胞の活性が増強される。腫瘍関連抗原発現細胞に多重特異性結合タンパク質が結合すると、がん細胞をナチュラルキラー細胞に近接させるため、ナチュラルキラー細胞によるがん細胞の直接的および間接的な破壊が容易になる。一部の例示的な多重特異性結合タンパク質のさらなる記載を、以下に提供する。
配列番号101
配列番号103
本明細書に記載の多重特異性タンパク質は、NKG2D結合部位と、CD16結合部位と、腫瘍関連抗原CLEC12Aとを含む。一部の実施形態では、多重特異性タンパク質は、NK細胞などのNKG2Dおよび/またはCD16を発現する細胞に、ならびに腫瘍関連抗原CLEC12Aを発現する腫瘍細胞に同時に結合する。多重特異性タンパク質がNK細胞に結合すると、腫瘍細胞の破壊に向けてのNK細胞の活性が増強され得る。
本発明は、本明細書に記載の多重特異性結合タンパク質および/または本明細書に記載の医薬組成物を使用してがんを処置するための方法を提供する。その方法は、治療有効量の本明細書に記載の多重特異性結合タンパク質を、それを必要とする患者に投与することによって、CLEC12Aを発現する種々のがんを処置するために使用され得る。
本発明の別の態様は併用療法を提供する。本明細書に記載の多重特異性結合タンパク質は、がんを処置するためのさらなる治療剤と組み合わせて使用され得る。
本開示はまた、治療有効量の本明細書に記載のタンパク質を含有する医薬組成物を特徴とする。組成物は、種々の薬物送達系で使用されるように製剤化することができる。適切な製剤を作るために、1種または複数の生理学的に許容される賦形剤または担体を組成物に含めることもできる。本開示で使用される好適な製剤は、Remington’s Pharmaceutical Sciences、Mack Publishing Company、Philadelphia、Pa.、第17版、1985年に見出される。薬物送達のための方法に関する簡潔な概説については、例えば、Langer(Science、249巻:1527〜1533頁、1990年)を参照されたい。
NKG2D結合ドメインはNKG2Dに結合する
NKG2D結合ドメインは精製した組換えNKG2Dに結合する
ヒト、マウスまたはカニクイザルNKG2D細胞外ドメインの核酸配列を、ヒトIgG1 Fcドメインをコードする核酸配列と融合させ、発現させる哺乳動物細胞に導入した。精製後、NKG2D−Fc融合タンパク質をマイクロプレートのウェルに吸着させた。非特異的結合を防ぐためにウシ血清アルブミンでウェルを阻止した後、NKG2D結合ドメインを滴定し、NKG2D−Fc融合タンパク質を予め吸着させたウェルに添加した。一次抗体結合を、西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートし、Fc交差反応を回避するためにヒトカッパ軽鎖を特異的に認識する二次抗体を使用して検出した。西洋ワサビペルオキシダーゼに対する基質である3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン(TMB)をウェルに添加して結合シグナルを可視化し、その吸光度を450nMにて測定し、540nMにて補正した。NKG2D結合ドメインクローン、アイソタイプ対照または陽性対照(配列番号101〜104、またはeBioscienceにて入手可能な抗マウスNKG2DクローンMI−6およびCX−5から選択した重鎖および軽鎖可変ドメインを含む)を各ウェルに添加した。
EL4マウスリンパ腫細胞株を、ヒトまたはマウスのNKG2D−CD3ゼータシグナル伝達ドメインキメラ抗原受容体を発現するように工学操作した。NKG2D結合クローン、アイソタイプ対照または陽性対照を100nM濃度にて使用して、EL4細胞において発現した細胞外NKG2Dを染色した。フルオロフォアコンジュゲート抗ヒトIgG二次抗体を使用して抗体結合を検出した。細胞をフローサイトメトリーによって分析し、親EL4細胞と比較したNKG2D発現細胞の平均蛍光強度(MFI)を使用してバックグラウンドに対する倍率(FOB)を計算した。
NKG2D結合ドメインはNKG2Dへの天然リガンドの結合を阻止する
ULBP−6との競合
組換えヒトNKG2D−Fcタンパク質をマイクロプレートのウェルに吸着させ、非特異的結合を低減させるためにウシ血清アルブミンでウェルをブロッキングした。飽和濃度のULBP−6−His−ビオチンをウェルに添加し、続いてNKG2D結合ドメインクローンを添加した。2時間のインキュベーション後、ウェルを洗浄し、NKG2D−Fcでコーティングされたウェルに結合したままであったULBP−6−His−ビオチンを、西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートしたストレプトアビジンおよびTMB基質によって検出した。吸光度を450nMにて測定し、540nMにて補正した。バックグラウンドを差し引いた後、NKG2D−Fcタンパク質へのNKG2D結合ドメインの特異的結合を、ウェル中のNKG2D−Fcタンパク質への結合を遮断されたULBP−6−His−ビオチンのパーセンテージから計算した。陽性対照抗体(配列番号101〜104から選択される重鎖および軽鎖可変ドメインを含む)および種々のNKG2D結合ドメインは、NKG2DへのULBP−6の結合を遮断したが、アイソタイプ対照はULBP−6との競合をほとんど示さなかった(図8)。
ULBP−6配列は、配列番号108により表される。
組換えヒトMICA−Fcタンパク質をマイクロプレートのウェルに吸着させ、非特異的結合を低減させるためにウシ血清アルブミンでウェルを阻止した。NKG2D−Fc−ビオチンをウェルに添加し、続いてNKG2D結合ドメインを添加した。インキュベーションおよび洗浄後、MICA−Fcでコーティングされたウェルに結合したままであったNKG2D−Fc−ビオチンを、ストレプトアビジン−HRPおよびTMB基質を使用して検出した。吸光度を450nMにて測定し、540nMにて補正した。バックグラウンドを差し引いた後、NKG2D−Fcタンパク質へのNKG2D結合ドメインの特異的結合を、MICA−Fcでコーティングされたウェルへの結合を阻止されたNKG2D−Fc−ビオチンのパーセンテージから計算した。陽性対照抗体(配列番号101〜104から選択される重鎖および軽鎖可変ドメインを含む)および種々のNKG2D結合ドメインはNKG2DへのMICA結合を阻止したが、アイソタイプ対照はMICAとの競合をほとんど示さなかった(図9)。
組換えマウスRae−1デルタ−Fc(R&D Systemsから購入した)をマイクロプレートのウェルに吸着させ、非特異的結合を低減させるためにウェルをウシ血清アルブミンで阻止した。マウスNKG2D−Fc−ビオチンをウェルに添加し、続いてNKG2D結合ドメインを添加した。インキュベーションおよび洗浄後、Rae−1デルタ−Fcでコーティングされたウェルに結合したままであったNKG2D−Fc−ビオチンを、ストレプトアビジン−HRPおよびTMB基質を使用して検出した。吸光度を450nMにて測定し、540nMにて補正した。バックグラウンドを差し引いた後、NKG2D−Fcタンパク質へのNKG2D結合ドメインの特異的結合を、Rae−1デルタ−Fcでコーティングされたウェルへの結合を阻止されたNKG2D−Fc−ビオチンのパーセンテージから計算した。陽性対照抗体(配列番号101〜104、またはeBioscienceにて入手可能な抗マウスNKG2DクローンMI−6およびCX−5から選択される重鎖および軽鎖可変ドメインを含む)および種々のNKG2D−結合ドメインクローンはマウスNKG2DへのRae−1デルタ結合を阻止したが、アイソタイプ対照抗体はRae−1デルタとの競合をほとんど示さなかった(図10)。
NKG2D結合ドメインクローンはNKG2Dを活性化させる
CD3ゼータシグナル伝達ドメインをコードする核酸配列に、ヒトおよびマウスNKG2Dの核酸配列を融合させて、キメラ抗原受容体(CAR)構築物を得た。次に、ギブソンアセンブリを使用してNKG2D−CAR構築物をレトロウイルスベクターにクローニングし、レトロウイルス産生のためにexpi293細胞にトランスフェクトした。8μg/mLのポリブレンと共にNKG2D−CARを含有するウイルスにEL4細胞を感染させた。感染の24時間後、EL4細胞中のNKG2D−CARの発現レベルをフローサイトメトリーによって分析し、細胞表面で高レベルのNKG2D−CARを発現するクローンを選択した。
NKG2D結合ドメインはNK細胞を活性化させる
初代ヒトNK細胞
密度勾配遠心分離を使用し、ヒト末梢血バフィコートから末梢血単核細胞(PBMC)を単離した。磁気ビーズを用いたネガティブセレクションを使用してPBMCからNK細胞(CD3−CD56+)を単離した。単離されたNK細胞の純度は典型的には>95%であった。次に、単離されたNK細胞を、100ng/mLのIL−2を含有する培地中で24〜48時間にわたって培養した後、それらを、NKG2D結合ドメインを吸着させたマイクロプレートのウェルに移し、フルオロフォアコンジュゲート抗CD107a抗体、ブレフェルジン−A、およびモネンシンを含有する培地中で培養した。培養後、CD3、CD56、およびIFN−γに対するフルオロフォアコンジュゲート抗体を使用したフローサイトメトリーによってNK細胞をアッセイした。CD3−CD56+細胞におけるCD107aおよびIFN−γの染色を分析して、NK細胞の活性化を評価した。CD107a/IFN−γ二重陽性細胞の増加は、1つの受容体ではなく2つの活性化受容体の会合による、より良好なNK細胞の活性化を示す。NKG2D結合ドメインおよび陽性対照(例えば、配列番号101または配列番号103によって表される重鎖可変ドメイン、および配列番号102または配列番号104によって表される軽鎖可変ドメイン)は、アイソタイプ対照よりも高いパーセンテージのNK細胞がCD107a+およびIFN−γ+になることを示した(図13および図14は、NK細胞の調製のために異なるドナーのPBMCをそれぞれ使用した、2つの独立した実験のデータを表す)。
C57Bl/6マウスから脾臓を得、70μmのセルストレイナーを通して押しつぶして、単一細胞懸濁液を得た。細胞をペレット化し、ACK溶解緩衝液(Thermo Fisher Scientificから購入した、#A1049201;155mM塩化アンモニウム、10mM炭酸水素カリウム、0.01mM EDTA)に再懸濁して赤血球を除去した。残存する細胞を100ng/mLのhIL−2と共に72時間にわたって培養し、その後採取し、NK細胞単離のために用意した。次に、磁気ビーズを用いたネガティブディプリーション技術を使用し、典型的には>90%の純度で脾臓細胞からNK細胞(CD3−NK1.1+)を単離した。精製されたNK細胞を、100ng/mLのmIL−15を含有する培地中で48時間にわたって培養した後、NKG2D結合ドメインを吸着させたマイクロプレートのウェルに移し、フルオロフォアコンジュゲート抗CD107a抗体、ブレフェルジン−A、およびモネンシンを含有する培地中で培養した。NKG2D結合ドメインでコーティングされたウェルにおいて培養した後、CD3、NK1.1、およびIFN−γに対するフルオロフォアコンジュゲート抗体を使用したフローサイトメトリーによってNK細胞をアッセイした。CD3−NK1.1+細胞におけるCD107aおよびIFN−γの染色を分析して、NK細胞の活性化を評価した。CD107a/IFN−γ二重陽性細胞の増加は、1つの受容体ではなく2つの活性化受容体の会合による、より良好なNK細胞の活性化を示す。NKG2D結合ドメインおよび陽性対照(eBioscienceから入手可能な抗マウスNKG2DクローンMI−6およびCX−5から選択される)は、アイソタイプ対照よりも高いパーセンテージのNK細胞がCD107a+およびIFN−γ+になることを示した(図15および図16は、NK細胞の調製のために異なるマウスをそれぞれ使用した、2つの独立した実験のデータを表す)。
NKG2D結合ドメインは標的腫瘍細胞の細胞傷害性を可能にする
ヒトおよびマウス初代NK細胞活性化アッセイは、NKG2D結合ドメインとのインキュベーション後、NK細胞において細胞傷害性マーカーの増加を実証した。これが腫瘍細胞溶解の増加につながるかどうかに対処するために、各NKG2D結合ドメインが単一特異的抗体に発達する細胞ベースのアッセイを利用した。Fc領域を1つの標的化アームとして使用し、一方、Fab断片領域(NKG2D結合ドメイン)はNK細胞を活性化するための別の標的化アームとして働いた。ヒト起源であり、高レベルのFc受容体を発現するTHP−1細胞を腫瘍標的として使用し、Perkin Elmer DELFIA細胞傷害性キットを使用した。THP−1細胞をBATDA試薬で標識し、105/mLにて培養培地に再懸濁した。次に、標識したTHP−1細胞をNKG2D抗体と組み合わせ、マイクロタイタープレートのウェル中で37℃にて3時間、マウスNK細胞を単離した。インキュベーション後、20μlの培養上清を取り出し、200μlのユーロピウム溶液と混合し、暗所で15分間振盪しながらインキュベートした。時間分解蛍光モジュール(励起337nm、発光620nm)を備えたPheraStarプレートリーダーによって蛍光を経時的に測定し、キットの指示に従って特異的溶解を計算した。
NKG2D抗体は高い熱安定性を示す
NKG2D結合ドメインの融解温度を、示差走査型蛍光定量法を使用してアッセイした。外挿した見かけの融解温度は典型的なIgG1抗体と比較して高い(図18)。
NKG2DおよびCD16の架橋によるヒトNK細胞の相乗的活性化
初代ヒトNK細胞活性化アッセイ
密度勾配遠心分離を使用し、ヒト末梢血バフィコートから末梢血単核細胞(PBMC)を単離した。ネガティブ磁気ビーズ(StemCell #17955)を使用してPBMCからNK細胞を精製した。NK細胞は、フローサイトメトリーによって決定して>90%のCD3−CD56+であった。次に、細胞を、活性化アッセイに使用する前に100ng/mLのhIL−2(Peprotech #200−02)を含有する培地中で48時間増やした。抗体を、100μlの滅菌PBS中で2μg/ml(抗CD16、Biolegend #302013)および5μg/mL(抗NKG2D、R&D #MAB139)の濃度にて4℃で一晩、96ウェル平底プレート上にコーティングし、続いてウェルを十分に洗浄して過剰の抗体を除去した。脱顆粒の評価のために、IL−2活性化NK細胞を、100ng/mLのヒトIL−2(hIL2)および1μg/mLのAPCコンジュゲート抗CD107a mAb(Biolegend #328619)を補充した培養培地に5×105個の細胞/mLにて再懸濁した。次に、1×105個の細胞/ウェルを、抗体をコーティングしたプレート上に添加した。タンパク質輸送阻害剤であるブレフェルジンA(BFA、Biolegend #420601)およびモネンシン(Biolegend #420701)を、それぞれ1:1000および1:270の最終希釈度にて添加した。蒔いた細胞を、37℃にて4時間にわたって5%CO2においてインキュベートした。IFN−γの細胞内染色のために、NK細胞を、抗CD3(Biolegend #300452)および抗CD56 mAb(Biolegend #318328)で標識し、続いて固定し、透過処理し、抗IFN−γ mAb(Biolegend #506507)で標識した。NK細胞を、生CD56+CD3−細胞においてゲーティングした後、フローサイトメトリーによってCD107aおよびIFN−γの発現について分析した。
標的細胞の三重特異性結合タンパク質(TriNKET)媒介性の細胞傷害性の増強
ヒトNKG2Dを発現した細胞へのTriNKET結合の評価:
CLEC12Aを発現するヒトがん細胞株を使用して、CLEC12Aを標的とするTriNKETの腫瘍抗原結合を評価した。ヒトAML細胞株U937およびSKM−1を使用して、CLEC12Aを発現する細胞へのTriNKETの結合を評価した。TriNKETまたはmAbを希釈し、それぞれの細胞と共にインキュベートした。フルオロフォアコンジュゲート抗ヒトIgG二次抗体を使用して、TriNKETの結合を検出した。フローサイトメトリーによって細胞を分析し、CLEC12Aを発現する細胞への結合MFIを、二次抗体対照に対して正規化して、バックグラウンド値に対する倍率を得た。
HL60、SKM−1、およびU937ヒトAML細胞株を、細胞表面において発現されるCLEC12Aに結合したTrINKETの内部移行を評価するために使用した。TriNKETまたはmAbを20μg/mLに希釈し、希釈物を使用して、細胞を染色した。CLEC12Aサンプルの表面染色を分けた後に、そのサンプルの2/3を37℃で一晩静置して、内部移行を促進し、他方のそのサンプルの1/3に結合した抗体を、フルオロフォアコンジュゲート抗ヒトIgG二次抗体を使用して検出した。二次抗体で染色した後に細胞を固定し、翌日に分析するために、4℃で一晩貯蔵した。37℃で2時間および20時間後、サンプルをインキュベーターから取り出し、細胞の表面に結合した抗体を、フルオロフォアコンジュゲート抗ヒトIgG二次抗体を使用して検出した。サンプルを固定し、全サンプルを同日に分析した。抗体またはTriNKETの内部移行を、以下のように計算した: %内部移行=(1−(サンプルMFI 24時間/ベースラインMFI)) × 100%。
密度勾配遠心分離を使用し、ヒト末梢血バフィコートからPBMCを単離した。単離したPBMCを洗浄し、NK細胞単離のために用意した。磁気ビーズを用いたネガティブ選択技術を使用してNK細胞を単離したところ、単離したNK細胞の純度は、典型的には>90% CD3−CD56+であった。単離したNK細胞を、一晩休止させた。休止NK細胞を、翌日の細胞傷害性アッセイにおいて使用した。
目的の標的を発現するヒトがん細胞株を培養物から採取し、HBSで洗浄し、BATDA試薬(Perkin Elmer、AD0116)で標識するために、106細胞/mLにて成長培地に再懸濁した。標的細胞を標識するために製造業者の指示に従った。標識後、細胞をHBSで3回洗浄し、培養培地に0.5×105 細胞/mLにて再懸濁した。バックグラウンドウェルを調製するために、標識した細胞のアリコートをとっておき、その細胞を培地からスピンアウトした。その培地100μlを、三連でウェルへと注意深く添加して、ペレット化した細胞が乱れるのを回避した。BATDA標識細胞100μlを、96ウェルプレートの各ウェルに添加した。ウェルを、標的細胞からの自発的放出のために保全し、1% Triton−Xの添加による標的細胞の溶解のために調製した。目的の腫瘍標的に対するモノクローナル抗体またはTriNKETを、培養培地で希釈し、希釈したmAbまたはTriNKET50μlを、各ウェルに添加した。休止NK細胞を培養物から採取し、洗浄し、望ましいエフェクター対標的細胞比に応じて、培養培地中1.0×105〜2.0×106細胞/mLで再懸濁した。NK細胞50μlを、そのプレートの各ウェルに添加して、合計200μl培養容積にした。そのプレートを、アッセイを展開する前に、37℃、5% CO2で2〜3時間にわたってインキュベートした。
本明細書で参照される特許文献および科学論文の各々の開示全体は、すべての目的のために参照により組み込まれる。
本発明は、その精神または本質的な特徴から逸脱せずに他の特定の形態で実現されてもよい。したがって、前述の実施形態は、本明細書で記載している本発明を限定するのではなく、すべての点で例示的であると見なされるべきである。したがって、本発明の範囲は、前述の記載によってではなく、添付の特許請求の範囲によって示され、特許請求の範囲の等価の意味および範囲内に入るすべての変更はその中に包含されることが意図される。
Claims (48)
- (a)NKG2Dに結合する第1の抗原結合部位と
(b)CLL−1/CLEC12Aに結合する第2の抗原結合部位と
(c)CD16に結合するに十分な抗体Fcドメインもしくはその一部分、またはCD16に結合する第3の抗原結合部位と
を含むタンパク質。 - 前記第1の抗原結合部位は、ヒト、非ヒト霊長類またはげっ歯動物のNKG2Dに結合する、請求項1に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、重鎖可変ドメインおよび軽鎖可変ドメインを含む、請求項1または2に記載のタンパク質。
- 前記重鎖可変ドメインおよび前記軽鎖可変ドメインは、同じポリペプチド上に存在する、請求項3に記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位は、重鎖可変ドメインおよび軽鎖可変ドメインを含む、請求項3または4に記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位の前記重鎖可変ドメインおよび前記軽鎖可変ドメインは、同じポリペプチド上に存在する、請求項5に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位の前記軽鎖可変ドメインは、前記第2の抗原結合部位の前記軽鎖可変ドメインのアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列を有する、請求項5または6に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号1、配列番号41、配列番号49、配列番号57、配列番号59、配列番号61、配列番号69、配列番号77、配列番号85、および配列番号93から選択されるアミノ酸配列と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインを含む、先行する請求項のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号41と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号42と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号49と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号50と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号57と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号58と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号59と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号60と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号61と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号62と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号69と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号70と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。前
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号77と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号78と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号85と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号86と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号93と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号94と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号101と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号102と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、配列番号103と少なくとも90%同一の重鎖可変ドメインと、配列番号104と少なくとも90%同一の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1の抗原結合部位は、単一ドメイン抗体である、請求項1または2に記載のタンパク質。
- 前記単一ドメイン抗体は、VHH断片またはVNAR断片である、請求項20に記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位は、重鎖可変ドメインおよび軽鎖可変ドメインを含む、請求項1〜2または20〜21のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位の前記重鎖可変ドメインおよび前記軽鎖可変ドメインは、同じポリペプチド上に存在する、請求項22に記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位は、単一ドメイン抗体である、請求項1〜4または8〜19のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位は、VHH断片またはVNAR断片である、請求項24に記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位は、CLEC12Aに結合し、前記第2の抗原結合部位の前記重鎖可変ドメインは、配列番号115と少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含み、前記第2の抗原結合部位の前記軽鎖可変ドメインは、配列番号119と少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含む、請求項1〜25のいずれかに記載のタンパク質。
- 前記第2の抗原結合部位の前記重鎖可変ドメインは、
配列番号116のアミノ酸配列と同一の重鎖CDR1配列と、
配列番号117のアミノ酸配列と同一の重鎖CDR2配列と、
配列番号118のアミノ酸配列と同一の重鎖CDR3配列と
を含むアミノ酸配列を含む、請求項26に記載のタンパク質。 - 前記第2の抗原結合部位の前記軽鎖可変ドメインは、
配列番号120のアミノ酸配列と同一の軽鎖CDR1配列と、
配列番号121のアミノ酸配列と同一の軽鎖CDR2配列と、
配列番号122のアミノ酸配列と同一の軽鎖CDR3配列と、
を含むアミノ酸配列を含む、請求項27に記載のタンパク質。 - 前記タンパク質は、CD16に結合するに十分な抗体Fcドメインの一部分を含み、前記抗体Fcドメインは、ヒンジおよびCH2ドメインを含む、請求項1〜28のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記抗体Fcドメインは、ヒトIgG1抗体のヒンジおよびCH2ドメインを含む、請求項29に記載のタンパク質。
- 前記Fcドメインは、ヒトIgG1抗体のアミノ酸234〜332と少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含む、請求項29または30に記載のタンパク質。
- 前記Fcドメインは、ヒトIgG1のFcドメインと少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含み、Q347、Y349、L351、S354、E356、E357、K360、Q362、S364、T366、L368、K370、N390、K392、T394、D399、S400、D401、F405、Y407、K409、T411、K439からなる群より選択される1つまたは複数の位置において異なる、請求項29〜31のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 先行する請求項のいずれか1項に記載のタンパク質および薬学的に許容される担体を含む製剤。
- 請求項1〜32のいずれか1項に記載のタンパク質を発現する1または複数の核酸を含む細胞。
- 請求項1〜32のいずれか1項に記載のタンパク質に、腫瘍細胞およびナチュラルキラー細胞を曝露する工程を包含する、腫瘍細胞死を直接的におよび/または間接的に増強する方法。
- 請求項1〜32のいずれか1項に記載のタンパク質または請求項33に記載の製剤を、患者に投与することを包含する、がんを処置する方法。
- 前記がんは、急性骨髄性白血病(AML)、骨髄異形成症候群(MDS)、急性リンパ芽球性白血病(ALL)、骨髄増殖性腫瘍(MPN)、リンパ腫、非ホジキンリンパ腫、および古典的ホジキンリンパ腫からなる群より選択される、請求項36に記載の方法。
- 前記AMLは、急性未分化型骨髄芽球性白血病、急性最小分化型骨髄芽球性白血病、急性分化型骨髄芽球性白血病、急性前骨髄球性白血病(APL)、急性骨髄単球性白血病、好酸球増加症を伴う急性骨髄単球性白血病、急性単球性白血病、急性赤芽球性白血病、急性巨核芽球性白血病(AMKL)、急性好塩基球性白血病、線維症を伴う急性汎骨髄症、および芽球性形質細胞様樹状細胞腫瘍(BPDCN)から選択される、請求項37に記載の方法。
- 前記AMLは、前記AML白血病幹細胞(LSC)上のCLL−1の発現によって特徴づけられる、請求項37または38に記載の方法。
- 前記LSCは、CD34、CD38、CD123、TIM3、CD25、CD32、およびCD96から選択される膜マーカーをさらに発現する、請求項39に記載の方法。
- 前記AMLは、微小残存病変(MRD)である、請求項37〜40のいずれか1項に記載の方法。
- 前記MRDは、FLT3−ITD((Fms様チロシンキナーゼ3)−遺伝子内縦列重複(ITD))、NPM1(ヌクレオホスミン1)、DNMT3A(DNAメチルトランスフェラーゼ遺伝子DNMT3A)、およびIDH(イソクエン酸デヒドロゲナーゼ1および2(IDH1およびIDH2))から選択される変異の存在または非存在によって特徴づけられる、請求項41に記載の方法。
- 前記MDSは、多血球系異形成を伴うMDS(MDS−MLD)、単一血球系異形成を伴うMDS(MDS−SLD)、環状鉄芽球を伴うMDS(MDS−RS)、芽球増加を伴うMDS(MDS−EB)、単独del(5q)を伴うMDS、および分類不能型MDS(MDS−U)から選択される、請求項37に記載の方法。
- 前記MDSは、原発性MDSまたは二次性MDSである、請求項37に記載の方法。
- 前記ALLは、B細胞急性リンパ芽球性白血病(B−ALL)およびT細胞急性リンパ芽球性白血病(T−ALL)から選択される、請求項37に記載の方法。
- 前記MPNは、真性赤血球増加症、本態性血小板血症(ET)、および骨髄線維症から選択される、請求項37に記載の方法。
- 前記非ホジキンリンパ腫は、B細胞リンパ腫およびT細胞リンパ腫から選択される、請求項37に記載の方法。
- 前記リンパ腫は、慢性リンパ球性白血病(CLL)、リンパ芽球性リンパ腫(LPL)、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、バーキットリンパ腫(BL)、原発性縦隔大細胞型B細胞リンパ腫(PMBL)、濾胞性リンパ腫、マントル細胞リンパ腫、ヘアリー細胞白血病、形質細胞骨髄腫(PCM)または多発性骨髄腫(MM)、成熟T/NK細胞腫瘍、および組織球腫瘍から選択される、請求項37に記載の方法。
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