JP2017505104A - インビボにおける薬剤送達のための核酸ナノ構造体 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2013年11月8日に提出された米国仮特許出願第61/901,820号、2014年7月7日に提出された米国仮特許出願第62/021,256号、および2014年7月7日に提出された米国仮特許出願第62/021,257号の米国特許法第119条(e)の下での利益を主張し、これらのそれぞれの教示は、本明細書において参照によって組み込まれる。
政府の助成による研究
本発明は、米国国立衛生研究所(National Institutes of Health)によって与えられた助成金1 DP2 OD004641−01の下で、米国国立科学財団(National Science Foundation)によって与えられた助成金CCF−1317291の下で、および学際的大学研究イニシアチブ(Multidisciplinary University Research Initiative)、米国陸軍研究所(U.S.Army Research Office)によって与えられたW911NF−12−1−0420の下で、政府の助成によりなされた。政府は、本発明において一定の権利を有する。
発明の分野
本開示は、核酸ナノテクノロジーの分野に関する。本開示のいくつかの実施形態は、ポリアミンポリマーに連結された核酸ナノ構造体に関する。
核酸ナノ構造体は、たとえば医薬物質ビヒクルとしての生物医学的な適用において大きな可能性を有する。構造体は、生分解性であり、部位特異的に官能性をもたせることができ、アロステリックな立体構造的変化を受けるように操作することができ、標的分子および細胞との正確な相互作用を可能にする。現在、しかしながら、核酸ナノ構造体の生物医学的な適用は、生理学的条件下での核酸分解および構成的な不安定性により妨げられている。たとえば、癌ワクチン送達などのようなワクチン送達のための核酸ナノ構造体の使用は、特に問題である。癌ワクチンは、腫瘍関連抗原を認識するヘルパーTリンパ球および細胞傷害性Tリンパ球の増殖を駆動するように、樹状細胞(DC)を活性化することによって腫瘍退縮を促す。腫瘍の免疫抑制性の微小環境を克服するために、有効なワクチンは、DCおよびT細胞の持続性で効力のある誘発をもたらさなければならない。単純な抗原のみでは、多くの完全な病原体とは対照的に、とりわけ、活発な細胞性免疫応答に必要とされるTh1応答を生成するための、頑健な(robust)または特異的な樹状細胞活性化を引き起こさないことが多い。したがって、いくつかのワクチンまたはワクチン送達ビヒクルは、頑健なまたは特異的なDC活性化を引き起こす特性を持つものまたは他の薬剤と共に、生成されるまたは製剤される。核酸分解および構成的な不安定性により、ワクチンとしてのまたはワクチン送達ビヒクルとしての核酸ナノ構造体の使用は、それらがDCおよびT細胞の持続性で効力のある誘発を生成することができないので、制限されてきた。
本開示は、いくつかの実施形態では、中でも低塩環境の副作用からナノ構造体を「保護する」ポリアミンポリマーに連結された核酸ナノ構造体を提供する。いくつかの実施形態では、核酸ナノ構造体がまた、ポリ(エチレンイミン)(PEI)およびポリエチレングリコール(PEG)コポリマー(「PEI−PEGコポリマー)にも連結されている。本発明のいくつかの実施形態は、核酸ナノ構造体の構造の完全性を、ポリアミンポリマーまたはポリアミンポリマーおよびPEI−PEGコポリマーの組み合わせに構造体を連結することによって、生理学的条件(たとえば低塩条件を含む)下でさえ維持することができるという驚くべき発見に少なくとも部分的に基づく。予想外にも、核酸ナノ構造体がポリアミンポリマーにより「亜飽和される」場合(いくつかの実施形態ではポリアミンポリマーおよびPEI−PEGコポリマーの組み合わせにより)、ナノ構造体の構成は、より安定性となり、核酸は、ポリアミンポリマーなしのナノ構造体に比べて、ヌクレアーゼ分解に対してより抵抗性となる。ポリアミンポリマーの飽和の程度またはその代わりにナノ構造体に対するポリアミンポリマーの比は、ナノ構造体安定性に影響を与える。いくつかの実施形態では、ポリアミンポリマーおよびPEI−PEGコポリマーの飽和の程度またはその代わりにナノ構造体に対するポリアミンポリマーおよびPEI−PEGコポリマーの比が、ナノ構造体安定性に影響を与える。
それぞれのR1が、独立して、水素、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるヘテロアルキル、任意選択で置換されるヘテロアルケニル、任意選択で置換されるヘテロアルキニル、任意選択で置換されるカルボシクリル(carbocyclyl)、任意選択で置換されるヘテロシクリル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるヘテロアリール、−C(=O)RA、−C(=O)ORA、−C(=O)N(RA)2、もしくは窒素保護基でありまたは
R1が、式
それぞれのR2が、独立して、任意選択で置換されるアルキレン、任意選択で置換されるアルケニレン、任意選択で置換されるアルキニレン、任意選択で置換されるヘテロアルキレン、任意選択で置換されるヘテロアルケニレン、任意選択で置換されるヘテロアルキニレン、任意選択で置換されるカルボシクリレン、任意選択で置換されるヘテロシクリレン、任意選択で置換されるアリーレン、および任意選択で置換されるヘテロアリーレンのいずれか1つもしくは組み合わせから選択されるリンカーであり、
それぞれのRzが、独立して、水素、−N(RA)2、−ORA、−SRA、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるヘテロアルキル、任意選択で置換されるヘテロアルケニル、任意選択で置換されるヘテロアルキニル、任意選択で置換されるカルボシクリル、任意選択で置換されるヘテロシクリル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるヘテロアリール、窒素原子に付加される場合、窒素保護基、酸素原子に付加される場合、酸素保護基、または硫黄原子に付加される場合、硫黄保護基であり、
それぞれのRAが、独立して、水素、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるヘテロアルキル、任意選択で置換されるヘテロアルケニル、任意選択で置換されるヘテロアルキニル、任意選択で置換されるカルボシクリル、任意選択で置換されるヘテロシクリル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるヘテロアリール、窒素原子に付加される場合、窒素保護基、酸素原子に付加される場合、酸素保護基、もしくは硫黄原子に付加される場合、硫黄保護基でありまたは窒素原子に付加される2つのRA基が、任意選択で置換される複素環式環もしくは任意選択で置換されるヘテロアリール環を形成するようにつながれ、
nが、1および100,000を含む1〜100,000の整数であり、
mが、1および100,000を含む1〜100,000の整数である。
核酸(たとえばDNA)は、たとえばサイズが数メガダルトンの三次元ナノ構造体として製造することができる。DNAナノ構造体製造のそのような1つの方法は、DNA origamiと呼ばれ、これは、任意のあらかじめ定められた形状およびサイズの三次元核酸構造体を生成するステップを含む(たとえば国際公開第2013148186 A1号を参照されたい)。核酸ナノ構造体は、特にそれらが生分解性であり、部位特異的な方式で官能性をもたせることができ、アロステリックな立体構造的変化を受けるように操作することができ、標的分子および細胞との正確な相互作用を可能にするので、生物医学的な適用において大きな可能性を有する。
核酸ナノ構造体
本明細書において使用される「核酸ナノ構造体」は、二次元(2D)または三次元(3D)形状を形成する(たとえば自己組織化する)核酸を指す(たとえば、本明細書において参照によって組み込まれるW.M.Shih,C.Lin,Curr.Opin.Struct.Biol.20,276(2010)において概説される)。ナノ構造体は、任意の核酸フォールディングまたはハイブリダイゼーション方法論を使用して形成されてもよい。そのような1つの方法論は、DNA origamiである(たとえば、本明細書において参照によって組み込まれるRothmund,P.W.K.Nature 440(7082):297-302(2006)を参照されたい)。DNA origamiアプローチでは、ナノ構造体は、より長い「スキャフォールド」核酸鎖のフォールディングによって、それぞれがスキャフォールド鎖内の2つ以上の非隣接領域にハイブリダイズする複数のより短い「ステープル(staple)」オリゴヌクレオチドへのそのハイブリダイゼーションを通して生成される。いくつかの実施形態では、スキャフォールド鎖が、長さが少なくとも100ヌクレオチドである。いくつかの実施形態では、スキャフォールド鎖が、長さが少なくとも500、少なくとも1000、少なくとも2000、少なくとも3000、少なくとも4000、少なくとも5000、少なくとも6000、少なくとも7000、または少なくとも8000ヌクレオチドである。スキャフォールド鎖は、天然に存在してもよいまたは天然に存在しなくてもよい。ステープル鎖は、長さが典型的に100未満のヌクレオチドであるが、しかしながら、それらは、適用に依存してかつスキャフォールド鎖の長さに依存して、より長くてもより短くてもよい。いくつかの実施形態では、ステープル鎖が、長さが15〜100ヌクレオチドであってもよい。いくつかの実施形態では、ステープル鎖が、長さが25〜50ヌクレオチドである。
核酸ナノカプセル
「核酸ナノカプセル」は、「シェル」と呼ばれる、外部表面および薬剤のカプセル化のための内部コンパートメントを有する核酸ナノ構造体を指す。「核酸ナノ構造体」は、より広くは、上記に記載されるように、二次元(2D)または三次元(3D)形状を形成する(たとえば自己組織化する)核酸を指す(たとえば、W.M.Shih,C.Lin,Curr.Opin.Struct.Biol.20,276(2010)において概説される)。薬剤は、薬剤が、ナノ粒子のコンパートメント内にあり、ナノカプセルの内部表面に直接または間接的に連結されているまたはそうでなければコンパートメント内に含有されている場合、核酸ナノカプセルによって「カプセル化されている」と考えられる。すなわち、薬剤は、いくつかの実施形態では、ナノ構造体を形成する核酸によりインターカレートされるのではなく、核酸ナノ構造体によってカプセル化される。たとえば、ナノカプセルの構成に関して、薬剤は、ナノカプセルの核酸「壁」の中にインターカレートされるのではなく、ナノカプセルの内部表面に付加されてもよい(たとえばハンドル/反対のハンドルの立体構造を介して)。インターカレーションは、DNAの平面の塩基の間での非共有結合による薬剤の挿入を指す。ナノ構造体を形成する核酸によりインターカレートされた薬剤は、典型的に、周囲の環境から保護されるのではなく、暴露され、したがって、分解をより受けやすい。
保護コーティング
本開示の態様は、たとえば、マグネシウムおよび/またはカルシウムが枯渇し、ヌクレアーゼ活性がある生理学的条件下で、分解からナノカプセルを保護するポリアミンポリマー(たとえばポリリシンポリマー)ならびに/またはカチオンポリ(エチレンイミン)およびポリエチレングリコールのコポリマー(「PEI−PEGコポリマー」と呼ばれる)により「コーティングされた」核酸ナノカプセルを提供する。核酸ナノ構造体は、一般に、静電反発力を中和し、かつそれによってそれらの形状を安定化するために、10mM以下のマグネシウムイオン(Mg2+)を典型的に必要とする。したがって、そのような構造体は、生物学的バッファー(たとえば、生理学的レベルのMg2+(たとえば0.6mM)およびCa2+(たとえば1.2mM)を含有するバッファー)では不良な構造の完全性を示す。さらに、10%ウシ胎児血清(それは生物医学的な適用では典型的に使用される)を含有する、新たに調製された細胞培地におけるDNアーゼIの活性は、核酸ナノ構造体の急速な分解を引き起こす。核酸ナノカプセルの構造の完全性は、静電反発力を中和し、ヌクレアーゼ分解に対する核酸抵抗性を増強し、それによってナノカプセルの形状を安定化する正に荷電しているポリアミンポリマー(たとえばポリリシンペプチド)および/またはPEI−PEGコポリマーにナノカプセルを連結することによって、生理学的条件(たとえば低塩条件を含む)下でさえ維持することができる。
ポリアミンポリマー
本発明のポリアミンポリマーは、一般に、カチオンポリマーであり、これは、いかなる特定の理論によっても拘束されないが、核酸の負に荷電しているリン酸骨格を覆うために使用されてもよく、それによって、核酸ヘリックスの厳重なパッキングを促し、ナノ構造体の形状を安定化し、ヌクレアーゼ分解を遅らせる。本明細書において使用される「ポリアミンポリマー」は、2つ以上の第一級アミン基を有する化合物を包含する。ポリアミンポリマーはまた、第二級(たとえばR2NH)および第三級(たとえばR3N)アミンを有する化合物をも包含する。第二級および第三級アミンは、第一級アミンと同様の方法でプロトン化され、核酸骨格におけるリン酸と静電気的に相互作用してもよい。ポリアミンポリマーはまた、ポリカチオンポリマーをも包含する。ポリアミンポリマーは、いくつかの実施形態では、存在する、いくつかの実施形態では規則的な間隔で存在するカチオンを含む。
(i)K−X−(K−X−)n−KもしくはX−(K−X−)n、K−X−(K−X−)nもしくはX−(K−X−)n−K;
(ii)K−X−X−(K−X−X−)n−KもしくはX−X−(K−X−X−)nもしくはK−X−X−(K−X−X−)nもしくはX−X−(K−X−X−)n−K;または
(iii)K−X−X−X−(K−X−X−X−)n−KもしくはX−X−X−(K−X−X−X)nもしくはK−X−X−X−(K−X−X−X−)nもしくはX−X−X−(K−X−X−X)n−K。
PEI−PEGポリマー
カチオンポリ(エチレンイミン)(PEI)およびポリエチレングリコール(PEG)のコポリマーは、本明細書において企図される。ポリアミンポリマーと組み合わせたPEI−PEGコポリマーが、いくつかの実施形態では、核酸の負に荷電しているリン酸骨格を覆い、それによって、核酸ヘリックスの厳重なパッキングを促し、ナノ構造体の形状を安定化し、ヌクレアーゼ分解を遅らせるために使用されてもよい。カチオンとして、PEG−PEIコポリマーは、静電気(たとえば非共有結合)相互作用によって核酸に結合する。したがって、いくつかの実施形態では、本明細書において提供されるPEG−PEIコポリマーが、核酸ナノ構造体に非共有結合で連結されている(たとえば静電的相互作用を介して)。他の実施形態では、しかしながら、PEG−PEIコポリマーが、核酸ナノ構造体に共有結合で連結されてもよい。
pH感受性
本開示の核酸ナノカプセルは、環境pHにおける変化に感受性である。核酸ナノカプセルは、それがpHにおける変化に応じて構造変化を受ける場合、pHに感受性であると考えられる。たとえば、本明細書において提供されるような核酸ナノカプセルの「開口」は、pH依存性である。図1Aは、本開示の核酸ナノカプセルの例証となる例を示す。ナノカプセルは、2つの円筒状の核酸ナノ構造体および2つの核酸「キャップ」(たとえば核酸の同心性の環)から組み立てられる(図1A(i))。1つの円筒状のナノ構造体は、「ハンドル」と呼ばれる、pH感受性の一本鎖核酸が並ぶ(図1A(iv)、上、ハンドルの位置を示す白色の点線)。他方の円筒状のナノ構造体は、「反対のハンドル」と呼ばれる、部分的に相補的の一本鎖核酸が並ぶ(図1A(iv)、下、反対のハンドルの位置を示す白色の点線)。したがって、2つの円筒状のナノ構造体の接触部分は、pH感受性の一本鎖核酸が並ぶ。6未満のpHを有する水性環境では、核酸ナノカプセルは、ナノカプセル(図1A(ii))を形成する2つのナノ構造体の間の接触部分に位置するpH感受性の核酸の二量体化/ハイブリダイゼーションにより「密封された」立体構造のままである(図1A(ii))。水性環境のpHが6未満まで減少する場合、核酸ナノカプセルは、「開口する」(たとえばその内部コンパートメントの内容物を放出させる)(図1A(iii))。ナノカプセルの開口は、pH感受性のハンドルおよび反対のハンドルの解離による。
使用
本開示の核酸ナノ構造体(たとえばナノカプセル)は、様々なインビトロにおけるおよびインビボにおける使用を有する。いくつかの実施形態では、インビボにおけるおよび/またはインビトロにおける使用に意図される薬剤(たとえば治療剤)を送達するためのスキャフォールド、ケージ、または多機能性キャリヤとして使用されてもよい。核酸ナノ構造体は、任意の適した送達方法によって、たとえば、静脈内にまたは経口的に送達されてもよい。本明細書において使用されるように、薬剤は、対象に利益(限定を伴うことなく、予防的なもしくは治療上の利益を含む)を提供するために使用することができるまたはインビボにおいて診断および/もしくは検出(たとえば画像化)に使用することができるまたはインビトロ設定において効果があるように使用されてもよい(たとえば組織もしくは器官培養、クリーンアッププロセス、およびその他同種のもの)任意の原子、分子、または化合物である。薬剤は、限定を伴うことなく、治療剤および/または診断剤であってもよい。いくつかの実施形態では、薬剤が、治療剤、予防剤、および/または診断剤である。いくつかの実施形態では、薬剤が、ターゲティング分子である。本明細書において記載される実施形態のいずれか1つとの使用のための薬剤の例は、下記に記載される。
低マグネシウムバッファーにおけるDNAナノ構造体の構造の完全性に対するスペルミンポリマーの効果を調査するために、DNAナノ構造体(図1に図式化)を、以下のように、スペルミンポリマーとインキュベートし、透析し、ゲル電気泳動法によって分析した。6mM Mg2++/−60マイクロモル(μM)スペルミンポリマーを補足した0.5×TEバッファー(5mM Tris、1mMエチレンジアミン四酢酸(EDTA)、pH7.4)中100μLの1ナノモル(nM)DNAナノ構造体を、18時間、0または0.6ミリモル(mM)Mg2+を含有する1Lの0.5×TEバッファーにおいて透析した。透析後、サンプルを、0.5×TBE(Tris/ボレート/EDTA)および11mM Mg2+のみから構成される2%アガロースゲルに添加した。図1に示されるように、顕著な差異は、コントロールおよびスペルミンインキュベートサンプルの間でゲルにおいて観察されなかったが、透過型電子顕微鏡法(TEM;2%ギ酸ウラニルにより染色)分析は、コントロール構造が、0および0.6mM Mg2+濃度の両方で変性したが、スペルミンポリマーとインキュベートしたナノ構造体が、0.6mM Mg2+を含有するバッファーにおいて構造の完全性を維持したことを示す。
実施例2
マグネシウムなしのバッファーにおけるDNAナノ構造体の構造の完全性に対するポリリシンポリマーの効果を調査するために、DNAナノ構造体を、以下のように、ポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、ゲル電気泳動法によって分析した。6mM Mg2++/−60μMポリリシンポリマー(K6=KKKKKK)を補足した0.5×TEバッファー中100μLの1nM DNAナノ構造体を、18時間、0 Mg2+を含有する1Lの1×PBS(10mM Na2HPO4、137mM NaCl、pH7.4)において透析した。透析後、サンプルを、0.5×TBEおよび11mM Mg2+のみから構成される2%アガロースゲルに添加した。図2に示されるように、顕著な差異は、コントロールおよびポリリシンポリマーインキュベートサンプルの間でゲルにおいて観察されなかったが、TEM分析は、コントロール構造が、0mM Mg2+濃度で完全に変性したが、ポリリシンポリマーとインキュベートした構造体が、構造の完全性を維持したことを示す。
実施例3
マグネシウムの存在下における様々な寸法のDNAナノ構造体の構造の完全性に対するポリリシンポリマーの効果を調査するために、様々な長さおよび直径のDNAナノ構造体(図3における代表的な概略図1〜4)を、以下のように、ポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、ゲル電気泳動法によって分析した。6mM Mg2++/−60μMポリリシン(KKKKKK=K6)を補足した0.5×TEバッファー中100μLの1nM DNAナノ構造体を、18時間、1Lの0.5×TEにおいて透析した。透析後、サンプルを、0.5×TBEおよび11mM Mg2+を含む2%アガロースゲルに添加した。図3において、破線は、ゲルにおけるネイキッドDNAスキャフォールドの移動性を示す。コントロールサンプルは、すべての場合において、透析に際して、フォールドせず、ネイキッドスキャフォールドになった。対照的に、ポリリシンによりコートした構造体は、それらの完全性および移動性を維持した。
実施例4
マグネシウムの非存在下における様々な寸法のDNAナノ構造体の構造の完全性に対するポリリシンポリマーの効果を調査するために、様々な長さおよび直径のDNAナノ構造体(図4における代表的な概略図1〜4)を、以下のように、ポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、ゲル電気泳動法によって分析した。6mM Mg2++/−60μMポリリシン(KKKKKK=K6)を補足した0.5×TEバッファー中100μLの1nM DNAナノ構造体を、18時間、1Lの0.5×TEにおいて透析した。透析後、サンプルを、Mg2+なしの0.5×TBEのみを含む2%アガロースゲルに添加した。図4に示されるように、ポリリシンポリマーによりコートしたナノ構造体だけが、このゲル上で移動性を示した。
実施例5
低マグネシウムバッファーにおけるDNAナノ構造体のポリリシンポリマー誘発性の安定性を判断するために、様々な寸法のDNAナノ構造体(図5における代表的な概略図1〜4)を、ポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、TEMによって画像化した。6mM Mg2++/−60μMポリリシンポリマー(KKKKKK=K6)を補足した0.5×TEバッファー中100μLの1nM DNAナノ構造体を、18時間、1Lの0.5×TEバッファーにおいて透析した。図5は、2%ギ酸ウラニルにより染色した未加工のサンプルのTEM画像を示す。コントロールサンプルは、すべての場合において、透析に際して、フォールドせず、ネイキッドスキャフォールドになった。対照的に、ポリリシンポリマーによりコートした構造体は、それらの構造の完全性および移動性を維持した。
実施例6
DNAナノ構造体の構造の完全性に対するポリリシンポリマーおよびポリアルギニンポリマーの効果を比較するために、DNAナノ構造体(図6に図式化)を、以下のように、ポリリシンまたはポリアルギニンポリマーとインキュベートし、透析し、TEMによって画像化した。6mM Mg2+および60μMポリリシンポリマー(KKKKKK=K6)または60μMポリアルギニンポリマー(RRRRRR=R6)を補足した0.5×TEバッファー中100μLの1nM DNAナノ構造体を、18時間、1Lの1×PBSにおいて透析した。透析後、サンプルを、TEMによって画像化した。図6に示されるように、ポリリシンポリマーとインキュベートしたDNAナノ構造体は、ポリアルギニンポリマーとインキュベートしたものに比べて、それほど凝集せず、よい良好な構造の完全性を示した。
実施例7
DNAナノ構造体の構造の完全性に対する様々な長さのポリリシンポリマーの効果を比較するために、DNAナノ構造体(図7に図式化)を、以下のように、ポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、ゲル電気泳動法によって分析した。6mM Mg2+ならびに様々な長さの60μMポリリシンポリマー(たとえばK3、K4、K5、およびK6)を補足した0.5×TEバッファー中100μLの1nM DNAナノ構造体を、18時間、1Lの1×PBSにおいて透析した。透析後、サンプルを、0.5×TBEおよび11mM Mg2+のみを含む2%アガロースゲルに添加した。図7に示されるように、5つのリシン(K5)を有するポリリシンポリマーおよび6つのリシンK6を有するポリリシンポリマーによりコートした構造体は、より良好なフォールディングを示すゲル上でのわずかに速い移動性を示した。ナノ構造体はまた、TEMで画像化した場合、より高い構造の完全性をも示した(図示せず)。
実施例8
DNAナノ構造体の構造の完全性を維持するために必要とされるそれぞれのポリリシンポリマー濃度に対するポリリシンポリマーの長さの効果を比較するために、DNAナノ構造体(図8に図式化)を、以下のように、様々な長さおよび濃度のポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、TEMによって画像化した。6mM Mg2+ならびに様々な濃度の様々な長さのポリリシンポリマー(たとえばK5、K6、K7、K8、K9、K10、K11、およびK12)を補足した0.5×TEバッファー中100μLの1nM DNAナノ構造体を、18時間、1Lの1×PBSにおいて透析した。図8に示されるように、より低濃度のより長いポリリシンポリマーがDNAナノ構造体を安定化した。
実施例9
DNAナノ構造体の熱的安定性に関してポリリシンポリマーの長さの効果を比較するために、DNAナノ構造体(図9に図式化)を、以下のように、様々な長さのポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、様々な温度でインキュベートし、ゲル電気泳動法によって分析した。20μLのポリリシンポリマー(たとえばK6、K8、K11、K12)によりコートしたDNAナノ構造体を、18時間、1×PBSにおいて透析し、次いで、24時間、様々な温度(たとえば30℃、40℃、または50℃)でインキュベートした。次いで、サンプルを、Mg2+なしの0.5×TBEを含む2%アガロースゲルに添加した。図9は、DNAバンドの移動性の減少を示し、これは、ナノ構造体の変性を示す。移動性の減少は、K6について40℃で観察されたが、移動性における変化は、K12によりコートした構造体について50℃でさえ観察されなかった。したがって、より長いポリリシンポリマーは、より短いポリマーに比べて、熱的安定性の増強をもたらすように思われる。
実施例10
DNAナノ構造体のヌクレアーゼ安定性に関してポリリシンポリマーの効果を比較するために、DNAナノ構造体(図10に図式化)を、以下のように、ポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、様々な期間、新鮮な細胞培地中でインキュベートし、ゲル電気泳動法によって分析した。18時間、1×PBSの中に透析した、20μLのポリリシンポリマー(K6)によりコートしたDNAナノ構造体を、様々な期間、37℃で、10μLの新鮮な細胞培地(GIBCO(登録商標)RPMI−1640培地中10% FBS)とインキュベートした。次いで、サンプルを、0.5×TBEおよび11mM Mg2+を含む2%アガロースゲルに添加した。図10は、ゲルバンドの強度の減少を示し、これは、ヌクレアーゼによるDNAナノ構造体の分解を示す。コントロールサンプルは、インキュベーションの1時間以内に分解されたが、6つのリシン(K6)を有するポリリシンポリマーによりコートしたサンプルの構造の完全性は、新鮮な細胞培地との8時間のインキュベーションの間、維持された。
実施例11
新鮮な細胞培養培地におけるDNAナノ構造体のヌクレアーゼ安定性に関してポリリシンポリマー長さの効果を比較するために、DNAナノ構造体(図11に図式化)を、以下のように、様々な長さのポリリシンポリマーとインキュベートし、透析し、様々な期間、新鮮な細胞培地中でインキュベートし、ゲル電気泳動法によって分析した。18時間、1×PBSの中に透析した、20μLのポリリシンポリマー(たとえばK6、K8、K12)によりコートしたDNAナノ構造体を、様々な期間、37℃で、10μLの新鮮な細胞培地(GIBCO(登録商標)RPMI−1640培地中10%ウシ胎児血清(FBS))とインキュベートした。次いで、サンプルを、0.5×TBEおよび11mM Mg2+を含む2%アガロースゲルに添加した。図11は、ゲルバンドの強度の減少を示し、これは、ヌクレアーゼによるDNAナノ構造体の分解を示す。コントロールサンプルは、インキュベーションの1時間以内に分解されたが、12のリシンを有するポリリシンポリマー(K12)によりコートしたサンプルの構造の完全性は、新鮮な細胞培地との24時間のインキュベーションの間、維持された。血清とインキュベートしたナノ構造体のTEM画像は、完全なDNAナノ構造体を示した。より長いポリリシンポリマーは、新鮮な細胞培地においてDNAナノ構造体に対して、より高度な/より長い安定性を与えるように思われた。
実施例12
DNAナノ構造体を、PEI−PEGコポリマーによりコートした。図23Aは、PEI第一級アミンへのPEG−NHSカップリングのライゲーション手法を示す。反応条件は、PBS pH8および室温での一晩のインキュベーションとした。図23Aはまた、血清活性細胞培地において様々な期間、インキュベートした場合のDNAナノ構造体の安定性についてのアガロースゲル分析をも示す。図23Bは、骨髄由来樹状細胞(BMDC)におけるPEI−PEGコートDNAナノ構造体の取込みを示す。パネルは、30分間隔であり、細胞の内側へのCy5標識DNAナノ構造体の取込みを示す。
実施例13
図24Aは、TLR9活性化実験の図式的な概要を示す。DNA origami構造体に、様々な位置、たとえばナノカプセルの内部および/または外部においてCpG危険シグナルを添加した。未成熟樹状細胞をCpG添加ナノ構造体により刺激し、一晩成熟させた。TLR9をCpGによって刺激すると、IL12サイトカインが、生成され、分泌された。図24Bは、TLR9刺激を評価するためのIL12サイトカインELISAアッセイを示す。CpG危険シグナルをDNAナノ構造体の外側に置いた場合に、大きな活性化が観察された。しかしながら、保護コーティングが存在した場合、免疫原性の活性は、覆い隠された。これは、保護的なシェルがない場合でさえ、取込みおよびエンドソームが持続する時間的経過にわたってDNAナノ構造体の構造の完全性を実証する。
実施例14
図25Bは、生細胞におけるペプチド抗原放出の共焦点画像を示す。BMDCは、抗原カーゴを添加したDNAナノ構造体とインキュベートした。パネルは、15分間隔であり、取込みプロセスの間の最初の共存、その後に続く2つの経路の明確な分離を示し、抗原ペプチドは、細胞中に残り、細胞膜に移動し、ここで、抗原ペプチドは、MHC受容体上に提示され、DNAナノ構造体は、細胞から分泌される。
実施例15
図26Aは、フローサイトメトリーによる蛍光強度プロファイリングによって測定されるT細胞活性化アッセイの結果を示す。BMDCを、様々な用量の抗原−DNAナノ構造体またはコントロールとして抗原のみとインキュベートした。3日間のOT−1由来T細胞との共培養は、T細胞集団の刺激および分裂をもたらした。DNAナノ構造体による抗原の1nMの送達は、遊離抗原取込みに対して優れており、本明細書において提供される方法の長所および利点を実証した。
実施例16
この実施例の目的は、DNA origamiナノカプセルを構築し、どの構造的な特徴が樹状細胞への抗原および危険シグナルの効率的な送達にとって重要であるかを調査することである。ナノカプセルを一連のサイズ、カーゴ、および表面装飾により構築し、樹状細胞(DC)を刺激して、T細胞を活性化するこれらの粒子の能力を調査する。インビトロにおけるおよびインビボにおける活性化T細胞を最も強力に導くナノカプセルを、インビボにおける抗原特異的抗腫瘍免疫を誘発するそれらの能力について試験する。実施例17に記載される免疫学的アッセイを、この実施例に記載されるナノ粒子を試験するために使用する。
実施例17
この実施例の目的は、操作されたDNAナノカプセルが、T細胞を活性化するように樹状細胞(DC)を指示する能力を調査することである。DCは、Ag特異的なT細胞応答を開始し、コントロールする最も効力のある専門的な抗原提示細胞(APC)である。DCは、抗原を受容し、処理し、ナイーブT細胞に提示し、それらの増殖およびエフェクターT細胞への分化を刺激することができる。ここで、DC活性化、成熟、および抗原提示に対する操作されたナノカプセルの効果ならびにCD4+およびCD8+T細胞の活性化および分化を促すこれらのDCの能力を調査する。明確な免疫原性エピトープならびにそれぞれOVA257−264およびOVA323−339に対応するCD8+およびCD4+T細胞エピトープであるペプチドに対して特異的なT細胞受容体(TCR)を有するトランスジェニックOT1およびOT2マウスがあるので、十分に確立されたモデル抗原オバルブミン(OVA)を使用する(Barnden,M.J.,et al.Immunology and Cell Biology 76,34-40(1998);およびHogquist,K.A.,et al.Immunity 3,79-86(1995)。したがって、OT1 T細胞へのDCによるOT1ペプチドの提示は、OVA特異的CD8+T細胞の増殖および分化をもたらし、それに対して、OT2細胞へのOT2ペプチドの提示は、OVA特異的CD4+T細胞増殖および分化に至る。この実施例の1つの目標は、CTLおよびTh1および濾胞性ヘルパーT(Tfh)細胞が抗腫瘍性細胞溶解および抗体応答を促すので、これらの細胞型の生成および機能を増強する操作されたナノ粒子を提供することである。インビトロアッセイは、培養中のBMDCを活性化する、実施例16において記載されるナノカプセルの能力を試験するために、次いで、これらのBMDCがT細胞を活性化する能力を試験するために使用する。次に、活性化されたBMDCまたは活性化されたT細胞は、インビボにおいてそれらの機能性を確認するためにマウスの中に移す。次いで、最も有効なナノ粒子を、インビボにおいて直接送達し、T細胞の抗原特異的活性化について試験する。
実施例18
この実施例の目的は、腫瘍ワクチンとして操作されたナノカプセルの選択されたサブセットの効能を試験することである。ナノカプセルは、腫瘍移植の前または後にワクチン接種することによって予防および治療用ワクチンとして試験する。治療の効能は、B16 OVAメラノーマにおいて最初に判断し、次いで、Her2 neuおよび4T1乳癌モデルまで拡張する。結果を、従来のワクチン(たとえばCFAにおける標的ペプチド)と比較する。インビボにおける有効性についてアッセイするために、腫瘍成長および免疫浸潤物の組成をモニターし、腫瘍微小環境ならびに流入領域リンパ節および脾臓における抗原特異的なT細胞活性化、増殖、およびエフェクター機能を分析する。
材料および方法
DNAナノ構造体のフォールディング
一本鎖スキャフォールドDNAを、社内で標準的なプラスミド発現プロトコールを使用して調製した。ステープルDNA鎖は、Integrated DNA Technologyからのものとした。構造体を組み立てるために、非精製DNAステープル鎖を、6〜18mM MgCl2を補足した0.5×TEバッファー(5mM Tris、pH7.9、1mM EDTA)中10nMの濃度でスキャフォールドと10倍の過剰量で混合した。
アニーリング勾配
次いで、鎖混合物を、15分間にわたる65℃での変性ステップ、次いで、50℃から24℃までの24時間または72時間の直線的な冷却勾配によって、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)サーモサイクラーにおいてアニールした。アニーリングはまた、フォールドされている構造体に対して特異的な所与の温度で等温で行うこともできる。
画像処理
画像処理のために、3.5μLのアガロースゲル精製または非精製サンプルを、グロー放電カーボンコートTEMグリッド上に1分間吸着させた。次いで、グリッドは、25mM NaOHを含有する2%水性ギ酸ウラニル溶液を使用して20秒間染色した。画像処理は、80kVで作動させたJEOL JEM−1400顕微鏡を使用して実行した。
ポリリシンポリマーとのインキュベーション
ポリリシンペプチドは、Peptide 2.0からのものとした。それらを、0.5×TEバッファー(5mM Tris、pH7.9、10mM Mgを含有する1mM EDTA)において可溶化し、様々な濃度で等分し、−20℃で保存した。0.5×TEバッファー(5mM Tris、pH7.9、1mM EDTA、10mM Mg)中2nM濃度の100μLの精製DNAナノ構造体を、1時間、xnM量のポリリシン(xは、使用されるポリリシンの長さに依存する)とインキュベートした。次いで、サンプルは、Thermo Scientific(Slide-A-Lyzer)から購入したマイクロ透析ユニットに移した。透析ユニットを、1Lの0.5×TEバッファー(5mM Tris、pH7.9、1mM EDTA)中に置き、24時間透析した。透析バッファー中にマグネシウムはなかった。
動物モデルの選択.
実施例18における実験は、腫瘍細胞を同系免疫応答性マウスに皮下に移植した3つの移植可能なメラノーマおよび乳がん腫瘍モデルを用いる。移植可能な腫瘍モデルは、癌免疫療法のための有益な洞察を提供し、複雑さのために、検査することができる実験パラメーターの数が制限される遺伝子操作トランスジェニック腫瘍モデルと比較して、使用するのがより容易である。腫瘍細胞ワクチンの臨床開発に(Dranoff,G.Nat Rev Immunol 12,61-66(2012);Quezada,S.A.,et al.J Clin Invest 116,1935-1945(2006))ならびに免疫阻害経路遮断(たとえばCTLA−4およびPD−1に対する抗体)の結果を評価するために(Dranoff,G.Nat Rev Immunol 12,61-66(2012))、広範囲に使用されてきたB16メラノーマ細胞株を使用する。B16メラノーマモデルのトランスレーショナルな実用性は、進行型メラノーマを処置するための抗CTLA−4および抗PD−1抗体の最近のFDAの承認によって例証される。そのうえ、Her2/neu乳癌のトランスジェニックモデル由来の新規なHer2/neu乳癌細胞株(Black,C.M.,et al.Cancer Immunol Res 2,307-319(2014))を使用する。このHer2/neu細胞株は、同系Balb/cマウスへの移植と同時に腫瘍を形成し、TおよびB細胞応答の両方を誘起し、免疫療法に対して応答する。したがって、Her2/neu細胞株は、抗腫瘍液性およびCD8+T細胞応答に対する治療戦略の効果を研究するための価値のあるツールを提供する。4T−1乳癌細胞株もまた、この株がチェックポイント遮断および癌ワクチン接種に対して少なくとも部分的に感受性であるので、最も効力のあるワクチン戦略を試験するために使用する(Kim,K.et al.Proc Natl Acad Sci U SA 111,11774-11779(2014))。
定義
特定の官能基および化学用語の定義を、下記により詳細に記載する。化学元素は、元素周期表、CAS version、Handbook of Chemistry and Physics,75th Ed.、内表紙に従って同定され、特定の官能基は、そこに記載されるように、概して定義される。そのうえ、有機化学の一般的な原理ならびに特定の官能成分および反応性は、Organic Chemistry,Thomas Sorrell,University Science Books,Sausalito,1999;Smith and March March’s Advanced Organic Chemistry,5thEdition,John Wiley & Sons,Inc.,New York,2001;Larock,Comprehensive Organic Transformations,VCH Publishers,Inc.,New York,1989;およびCarruthers,Some Modern Methods of Organic Synthesis,3rd Edition,Cambridge University Press,Cambridge,1987において記載される。
または炭素原子上の2つのジェミナルな水素が、基=O、=S、=NN(Rbb)2、=NNRbbC(=O)Raa、=NNRbbC(=O)ORaa、=NNRbbS(=O)2Raa、=NRbb、もしくは=NORccと交換され、
Raaのそれぞれの事例が、C1〜10アルキル、C1〜10ペルハロアルキル、C2〜10アルケニル、C2〜10アルキニル、ヘテロC1〜10アルキル、ヘテロC2〜10アルケニル、ヘテロC2〜10アルキニル、C3〜10カルボシクリル、3〜14員ヘテロシクリル、C6〜14アリール、および5〜14員ヘテロアリールから独立して選択されまたは2つのRaa基が、つながれて、3〜14員ヘテロシクリルもしくは5〜14員ヘテロアリール環を形成し、それぞれのアルキル、アルケニル、アルキニル、ヘテロアルキル、ヘテロアルケニル、ヘテロアルキニル、カルボシクリル、ヘテロシクリル、アリール、およびヘテロアリールが、0、1、2、3、4、または5つのRdd基により独立して置換され、
Rbbのそれぞれの事例が、水素、−OH、−ORaa、−N(Rcc)2、−CN、−C(=O)Raa、−C(=O)N(Rcc)2、−CO2Raa、−SO2Raa、−C(=NRcc)ORaa、−C(=NRcc)N(Rcc)2、−SO2N(Rcc)2、−SO2Rcc、−SO2ORcc、−SORaa、−C(=S)N(Rcc)2、−C(=O)SRcc、−C(=S)SRcc、−P(=O)2Raa、−P(=O)(Raa)2、−P(=O)2N(Rcc)2、−P(=O)(NRcc)2、C1〜10アルキル、C1〜10ペルハロアルキル、C2〜10アルケニル、C2〜10アルキニル、ヘテロC1〜10アルキル、ヘテロC2〜10アルケニル、ヘテロC2〜10アルキニル、C3〜10カルボシクリル、3〜14員ヘテロシクリル、C6〜14アリール、および5〜14員ヘテロアリールから独立して選択されまたは2つのRbb基が、つながれて、3〜14員ヘテロシクリルもしくは5〜14員ヘテロアリール環を形成し、それぞれのアルキル、アルケニル、アルキニル、ヘテロアルキル、ヘテロアルケニル、ヘテロアルキニル、カルボシクリル、ヘテロシクリル、アリール、およびヘテロアリールが、0、1、2、3、4、または5つのRdd基により独立して置換され、
Rccのそれぞれの事例が、水素、C1〜10アルキル、C1〜10ペルハロアルキル、C2〜10アルケニル、C2〜10アルキニル、ヘテロC1〜10アルキル、ヘテロC2〜10アルケニル、ヘテロC2〜10アルキニル、C3〜10カルボシクリル、3〜14員ヘテロシクリル、C6〜14アリール、および5〜14員ヘテロアリールから独立して選択されまたは2つのRcc基が、つながれて、3〜14員ヘテロシクリルもしくは5〜14員ヘテロアリール環を形成し、それぞれのアルキル、アルケニル、アルキニル、ヘテロアルキル、ヘテロアルケニル、ヘテロアルキニル、カルボシクリル、ヘテロシクリル、アリール、およびヘテロアリールが、0、1、2、3、4、または5つのRdd基により独立して置換され、
Rddのそれぞれの事例が、ハロゲン、−CN、−NO2、−N3、−SO2H、−SO3H、−OH、−ORee、−ON(Rff)2、−N(Rff)2、−N(Rff)3 +X−、−N(ORee)Rff、−SH、−SRee、−SSRee、−C(=O)Ree、−CO2H、−CO2Ree、−OC(=O)Ree、−OCO2Ree、−C(=O)N(Rff)2、−OC(=O)N(Rff)2、−NRffC(=O)Ree、−NRffCO2Ree、−NRffC(=O)N(Rff)2、−C(=NRff)ORee、−OC(=NRff)Ree、−OC(=NRff)ORee、−C(=NRff)N(Rff)2、−OC(=NRff)N(Rff)2、−NRffC(=NRff)N(Rff)2、−NRffSO2Ree、−SO2N(Rff)2、−SO2Ree、−SO2ORee、−OSO2Ree、−S(=O)Ree、−Si(Ree)3、−OSi(Ree)3、−C(=S)N(Rff)2、−C(=O)SRee、−C(=S)SRee、−SC(=S)SRee、−P(=O)2Ree、−P(=O)(Ree)2、−OP(=O)(Ree)2、−OP(=O)(ORee)2、C1〜6アルキル、C1〜6ペルハロアルキル、C2〜6アルケニル、C2〜6アルキニル、ヘテロC1〜6アルキル、ヘテロC2〜6アルケニル、ヘテロC2〜6アルキニル、C3〜10カルボシクリル、3〜10員ヘテロシクリル、C6〜10アリール、5〜10員ヘテロアリールから独立して選択され、それぞれのアルキル、アルケニル、アルキニル、ヘテロアルキル、ヘテロアルケニル、ヘテロアルキニル、カルボシクリル、ヘテロシクリル、アリール、およびヘテロアリールが、0、1、2、3、4、もしくは5つのRgg基により独立して置換されまたは2つのジェミナルなRdd置換基が、つながれて、=Oもしくは=Sを形成することができ、
Reeのそれぞれの事例は、C1〜6アルキル、C1〜6ペルハロアルキル、C2〜6アルケニル、C2〜6アルキニル、ヘテロC1〜6アルキル、ヘテロC2〜6アルケニル、ヘテロC2〜6アルキニル、C3〜10カルボシクリル、C6〜10アリール、3〜10員ヘテロシクリル、および3〜10員ヘテロアリールから独立して選択され、それぞれのアルキル、アルケニル、アルキニル、ヘテロアルキル、ヘテロアルケニル、ヘテロアルキニル、カルボシクリル、ヘテロシクリル、アリール、およびヘテロアリールが、0、1、2、3、4、もしくは5つのRgg基により独立して置換され、
Rffのそれぞれの事例が、水素、C1〜6アルキル、C1〜6ペルハロアルキル、C2〜6アルケニル、C2〜6アルキニル、ヘテロC1〜6アルキル、ヘテロC2〜6アルケニル、ヘテロC2〜6アルキニル、C3〜10カルボシクリル、3〜10員ヘテロシクリル、C6〜10アリール、および5〜10員ヘテロアリールから独立して選択されまたは2つのRff基が、つながれて、3〜14員ヘテロシクリルもしくは5〜14員ヘテロアリール環を形成し、それぞれのアルキル、アルケニル、アルキニル、ヘテロアルキル、ヘテロアルケニル、ヘテロアルキニル、カルボシクリル、ヘテロシクリル、アリール、およびヘテロアリールが、0、1、2、3、4、または5つのRgg基により独立して置換され、
Rggのそれぞれの事例が、独立して、ハロゲン、−CN、−NO2、−N3、−SO2H、−SO3H、−OH、−OC1〜6アルキル、−ON(C1〜6アルキル)2、−N(C1〜6アルキル)2、−N(C1〜6アルキル)3 +X−、−NH(C1〜6アルキル)2 +X−、−NH2(C1〜6アルキル)+X−、−NH3 +X−、−N(OC1〜6アルキル)(C1〜6アルキル)、−N(OH)(C1〜6アルキル)、−NH(OH)、−SH、−SC1〜6アルキル、−SS(C1〜6アルキル)、−C(=O)(C1〜6アルキル)、−CO2H、−CO2(C1〜6アルキル)、−OC(=O)(C1〜6アルキル)、−OCO2(C1〜6アルキル)、−C(=O)NH2、−C(=O)N(C1〜6アルキル)2、−OC(=O)NH(C1〜6アルキル)、−NHC(=O)(C1〜6アルキル)、−N(C1〜6アルキル)C(=O)(C1〜6アルキル)、−NHCO2(C1〜6アルキル)、−NHC(=O)N(C1〜6アルキル)2、−NHC(=O)NH(C1〜6アルキル)、−NHC(=O)NH2、−C(=NH)O(C1〜6アルキル)、−OC(=NH)(C1〜6アルキル)、−OC(=NH)OC1〜6アルキル、−C(=NH)N(C1〜6アルキル)2、−C(=NH)NH(C1〜6アルキル)、−C(=NH)NH2、−OC(=NH)N(C1〜6アルキル)2、−OC(NH)NH(C1〜6アルキル)、−OC(NH)NH2、−NHC(NH)N(C1〜6アルキル)2、−NHC(=NH)NH2、−NHSO2(C1〜6アルキル)、−SO2N(C1〜6アルキル)2、−SO2NH(C1〜6アルキル)、−SO2NH2、−SO2C1〜6アルキル、−SO2OC1〜6アルキル、−OSO2C1〜6アルキル、−SOC1〜6アルキル、−Si(C1〜6アルキル)3、−OSi(C1〜6アルキル)3−C(=S)N(C1〜6アルキル)2、C(=S)NH(C1〜6アルキル)、C(=S)NH2、−C(=O)S(C1〜6アルキル)、−C(=S)SC1〜6アルキル、−SC(=S)SC1〜6アルキル、−P(=O)2(C1〜6アルキル)、−P(=O)(C1〜6アルキル)2、−OP(=O)(C1〜6アルキル)2、−OP(=O)(OC1〜6アルキル)2、C1〜6アルキル、C1〜6ペルハロアルキル、C2〜6アルケニル、C2〜6アルキニル、ヘテロC1〜6アルキル、ヘテロC2〜6アルケニル、ヘテロC2〜6アルキニル、C3〜10カルボシクリル、C6〜10アリール、3〜10員ヘテロシクリル、5〜10員ヘテロアリールでありまたは2つのジェミナルなRgg置換基が、つながれて、=Oもしくは=Sを形成することができ、X−が、対イオンである。
Claims (81)
- ポリアミンポリマーにより亜飽和された核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、デオキシリボ核酸(DNA)を含む、請求項1に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記DNAが、直鎖一本鎖プラスミドDNAである、請求項2に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記直鎖一本鎖プラスミドDNAが、直鎖一本鎖M13プラスミドDNAである、請求項3に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、三次元核酸ナノ構造体である、請求項1〜4のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、合理的にデザインされている、請求項1〜5のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、凝縮された核酸を含まない、請求項1〜6のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、環状プラスミドDNAを含まない、請求項1〜7のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、非コード核酸ナノ構造体である、請求項1〜8のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、カプセル化も脂質によるコートもされていない、請求項1〜9のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体のリン酸の95%未満が、ポリアミンポリマーのアミンに連結されている、請求項1〜10のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体のリン酸の90%未満が、ポリアミンポリマーのアミンに連結されている、請求項11に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体のリン酸の80%未満が、ポリアミンポリマーのアミンに連結されている、請求項12に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体のリン酸の70%未満が、ポリアミンポリマーのアミンに連結されている、請求項13に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体のリン酸の60%未満が、ポリアミンポリマーのアミンに連結されている、請求項14に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、アミノ酸を含む、請求項1〜15のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記アミノ酸が、アミン含有側鎖を含有する、請求項16に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記アミノ酸が、リシンを含む、請求項17に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、ペプチドを含む、請求項16〜18のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ペプチドが、少なくとも10%のリシンを含む、請求項19に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ペプチドが、少なくとも25%のリシンを含む、請求項20に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ペプチドが、少なくとも50%のリシンを含む、請求項21に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ペプチドが、少なくとも75%のリシンを含む、請求項22に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ペプチドが、少なくとも90%のリシンを含む、請求項23に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーのリシンが、少なくとも1つの非リシンアミノ酸によって互いに分離される、請求項18〜24のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーのリシンが、少なくとも2つの非リシンアミノ酸によって互いに分離される、請求項25に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーのリシンが、少なくとも3つの非リシンアミノ酸によって互いに分離される、請求項26に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、ポリリシンホモポリマーである、請求項1〜24のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、分岐である、請求項1〜28のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、4〜100のアミノ酸を含む、請求項16〜29のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、4〜75のアミノ酸を含む、請求項30に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、4〜50のアミノ酸を含む、請求項31に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、4〜25のアミノ酸を含む、請求項32に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、4〜15のアミノ酸を含む、請求項33に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、6つのアミノ酸を含む、請求項34に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、8つのアミノ酸を含む、請求項34に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、10のアミノ酸を含む、請求項34に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、12のアミノ酸を含む、請求項34に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記ポリアミンポリマーが、
前記核酸ナノ構造体に共有結合で付加された式(I)またはその薬学的に許容される塩および/もしくは四級塩の1つ以上の基
または前記核酸ナノ構造体と非共有結合した式(II)またはその薬学的に許容される塩および/もしくは四級の1つ以上の化合物を含み、
L1が、直接的な共有結合であるまたは任意選択で置換されるアルキレン、任意選択で置換されるアルケニレン、任意選択で置換されるアルキニレン、任意選択で置換されるヘテロアルキレン、任意選択で置換されるヘテロアルケニレン、任意選択で置換されるヘテロアルキニレン、任意選択で置換されるカルボシクリレン、任意選択で置換されるヘテロシクリレン、任意選択で置換されるアリーレン、および任意選択で置換されるヘテロアリーレンのいずれか1つもしくは組み合わせを含むリンカー基であり、
それぞれのR1が、独立して、水素、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるヘテロアルキル、任意選択で置換されるヘテロアルケニル、任意選択で置換されるヘテロアルキニル、任意選択で置換されるカルボシクリル(carbocyclyl)、任意選択で置換されるヘテロシクリル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるヘテロアリール、−C(=O)RA、−C(=O)ORA、−C(=O)N(RA)2、もしくは窒素保護基でありまたは
R1が、式
それぞれのR2が、独立して、任意選択で置換されるアルキレン、任意選択で置換されるアルケニレン、任意選択で置換されるアルキニレン、任意選択で置換されるヘテロアルキレン、任意選択で置換されるヘテロアルケニレン、任意選択で置換されるヘテロアルキニレン、任意選択で置換されるカルボシクリレン、任意選択で置換されるヘテロシクリレン、任意選択で置換されるアリーレン、および任意選択で置換されるヘテロアリーレンのいずれか1つもしくは組み合わせから選択されるリンカーであり、
それぞれのRzが、独立して、水素、−N(RA)2、−ORA、−SRA、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるヘテロアルキル、任意選択で置換されるヘテロアルケニル、任意選択で置換されるヘテロアルキニル、任意選択で置換されるカルボシクリル、任意選択で置換されるヘテロシクリル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるヘテロアリール、窒素原子に付加される場合、窒素保護基、酸素原子に付加される場合、酸素保護基、または硫黄原子に付加される場合、硫黄保護基であり、
それぞれのRAが、独立して、水素、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるヘテロアルキル、任意選択で置換されるヘテロアルケニル、任意選択で置換されるヘテロアルキニル、任意選択で置換されるカルボシクリル、任意選択で置換されるヘテロシクリル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるヘテロアリール、窒素原子に付加される場合、窒素保護基、酸素原子に付加される場合、酸素保護基、または硫黄原子に付加される場合、硫黄保護基でありまたは窒素原子に付加される2つのRA基が、任意選択で置換される複素環式環もしくは任意選択で置換されるヘテロアリール環を形成するようにつながれ、nが、1および100,000を含む1〜100,000の整数であり、mが、1および100,000を含む1〜100,000の整数である、請求項1〜27または29〜38いずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。 - L2が、任意選択で置換されたアルキレン、任意選択で置換されるアルケニレン、または任意選択で置換されるアルキニレンである、請求項39に記載の核酸ナノ構造体。
- L2が、式−(CH2)p−の任意選択で置換されるアルキレンであり、pが、1および10を含む1〜10の整数である、請求項40に記載の核酸ナノ構造体。
- L2が、−C(RA)−C(=O)−である、請求項39に記載の核酸ナノ構造体。
- −C(RA)−C(=O)−のRAが、任意選択で置換されるアルキルである、請求項42に記載の核酸ナノ構造体。
- 請求項1〜43、49、および50のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体ならびに
10mM未満のマグネシウム(Mg2+)を含む溶液
を含む核酸組成物。 - 前記溶液が、0.1mM〜0.9mMのマグネシウム(Mg2+)を含む、請求項44に記載の核酸組成物。
- 前記溶液が、0.6mM(Mg2+)を含む、請求項44または45に記載の核酸組成物。
- 前記溶液が、0.5mM〜1.5mMのカルシウム(Ca2+)をさらに含む、請求項44〜46のいずれか一項に記載の核酸組成物。
- 前記溶液が、0.9mM Ca2+をさらに含む、請求項47に記載の核酸組成物。
- ポリ(エチレンイミン)−ポリエチレングリコール(PEI−PEG)コポリマーをさらに含む、請求項1〜43のいずれか一項に記載の核酸ナノ構造体。
- 前記核酸ナノ構造体が、PEI−PEGコポリマーにより亜飽和されている、請求項49に記載の核酸ナノ構造体。
- pH感受性の接触部分によって第2の核酸ナノ構造体に連結された第1の核酸ナノ構造体および
前記第2の核酸ナノ構造体への前記第1の核酸ナノ構造体の連結によって形成される内部コンパートメント
を含む核酸ナノカプセル。 - 前記第1の核酸ナノ構造体が、pH感受性の一本鎖核酸ハンドルを含み、前記第2の核酸ナノ構造体が、前記pH感受性のハンドルに部分的に相補的な一本鎖核酸の反対のハンドルを含み、前記第1の核酸ナノ構造体が、前記反対のハンドルへの前記pH感受性のハンドルのハイブリダイゼーションによって前記第2の核酸ナノ構造体に連結されている、請求項51に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記pH感受性のハンドルが、配列番号1の配列を含む、請求項52に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記反対のハンドルが、配列番号2または配列番号3の配列を含む、請求項52または53に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記ナノカプセルが、2つの末端部を有し、前記ナノカプセルのそれぞれの末端部が、直径が10nm未満の開口を有する、請求項51〜54のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記ナノカプセルのそれぞれの末端部が、直径が2nm〜10nmの開口を有する、請求項55に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記ナノカプセルの内部表面および/または外部表面に連結された薬剤をさらに含む、請求項51〜56のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記ナノカプセルの内部表面および/または外部表面に連結された少なくとも2つの薬剤をさらに含む、請求項57に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記薬剤が、相補的な一本鎖核酸のハイブリダイゼーションによってナノカプセルの内部表面および/または外部表面に連結されている、請求項56または57に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記薬剤が、部分的に相補的なpH感受性のハンドルおよび反対のハンドルのハイブリダイゼーションによってナノカプセルの内部表面および/または外部表面に結合される、請求項59に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記薬剤が、外部表面に連結されたターゲティング分子である、請求項57〜60のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記ターゲティング分子が、抗体、抗体断片、またはリガンドである、請求項61に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記薬剤が、治療剤、予防剤、診断剤、および/またはアジュバントである、請求項57〜60のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記薬剤が、抗原である、請求項57〜60のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記抗原が、ペプチド抗原である、請求項64に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記薬剤が、アジュバントである、請求項57〜60のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記アジュバントが、CpGオリゴヌクレオチドである、請求項66に記載の核酸ナノカプセル。
- ポリアミンポリマーおよび/またはカチオンポリ(エチレンイミン)およびポリエチレングリコールのコポリマーをさらに含む、請求項51〜67のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記ナノカプセルが、ポリアミンポリマーならびに/またはカチオンポリ(エチレンイミン)およびポリエチレングリコールのコポリマーにより亜飽和されている、請求項68に記載の核酸ナノカプセル。
- 前記第1の核酸ナノ構造体および/または前記第2の核酸ナノ構造体が、円筒の形態をしている、請求項51〜69のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセル。
- 請求項51〜70のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセルを含む組成物。
- 送達ビヒクルをさらに含む、請求項71に記載の組成物。
- 前記送達ビヒクルが、ポリマーゲルである、請求項72に記載の組成物。
- 請求項51〜70のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセルまたは請求項71〜73のいずれか一項に記載の組成物を対象に投与するステップを含む方法。
- 請求項51〜70のいずれか一項に記載の核酸ナノカプセルを細胞に送達するステップを含む方法。
- pH感受性の一本鎖核酸ハンドルを含む第1の核酸ナノ構造体および
前記pH感受性のハンドルに部分的に相補的な一本鎖核酸の反対のハンドルを含む第2の核酸ナノ構造体を含むキットであって、
6を超えるpHを有する水溶液において、前記第1の核酸ナノ構造体が、前記反対のハンドルへの前記pH感受性のハンドルのハイブリダイゼーションによって前記第2の核酸ナノ構造体に付加され、それによって、内側のコンパートメントを有する核酸ナノカプセルを形成するキット。 - 6を超えるpHを有する水溶液をさらに含む、請求項76に記載のキット。
- 前記第1および第2の核酸ナノ構造体が、pH感受性のハンドルを含む、請求項76または77に記載のキット。
- 前記pH感受性のハンドルが、配列番号1の配列を含む、請求項76〜78のいずれか一項に記載のキット。
- 前記pH感受性のハンドルに部分的に相補的である反対のハンドルに連結された薬剤をさらに含む、請求項78または79に記載のキット。
- pH感受性のハンドルおよび前記pH感受性のハンドルに部分的に相補的である反対のハンドルに連結された薬剤をさらに含む、請求項76または77に記載のキット。
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