JP2016535060A - 細胞傷害性t細胞応答の修飾物質 - Google Patents
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Abstract
Description
(i)化合物感覚受容体と選択的に結合する;かつ/もしくは
(ii)化合物感覚受容体の発現を選択的に変化させる、
遺伝物質をコードする遺伝物質であるか、またはそれを含んでもよい。
(a)好ましくは以下のものからなる群より選択される嗅覚受容体:
(i)味覚受容体、特に味覚受容体2型(TAS2R)、特に味覚受容体2型メンバー3(TAS2R3)、
(ii)ファミリー1、2または51の嗅覚受容体、特にファミリー1サブファミリーFの嗅覚受容体(OR1F)、特にファミリー1サブファミリーFメンバー1の嗅覚受容体(OR1F1)、ファミリー2サブファミリーJの嗅覚受容体(OR2J)、特にファミリー2サブファミリーJメンバー2の嗅覚受容体(OR2J2)、またはファミリー51サブファミリーEの嗅覚受容体(OR51E)、特にファミリー51サブファミリーEメンバー2の嗅覚受容体(OR51E2)、および
(iii)鋤鼻受容体、好ましくは鋤鼻1、特に鋤鼻1受容体4(VN1R4);
(iv)フェロモン受容体;ならびに
(b)オプシン、特にオプシン3(OPN3)
からなる群より選択される。
(i)感覚受容体の発現を低下させる化合物、好ましくは、前記感覚受容体をコードするmRNAに対して相補的な干渉RNA、特に低分子干渉リボ核酸(siRNA)または低分子ヘアピン型RNA(shRNA)、および
(ii)前記感覚受容体に対するT細胞結合活性を妨げる化合物、特に抗体または感覚受容体結合性断片である前記化合物、
からなる群より選択される。
(i)感覚受容体をコードする遺伝物質、
(ii)前記感覚受容体の発現を増強する化合物、および
(iii)CTLを妨げる表面ポリペプチドをT細胞と架橋させる化合物、特に架橋性抗体または抗体断片、
からなる群より選択される。
(a)好ましくは以下のものからなる群より選択される嗅覚受容体:
(i)味覚受容体、特に味覚受容体2型(TAS2R)、特に味覚受容体2型メンバー3(TAS2R3)、
(ii)ファミリー1、2または51の嗅覚受容体、特にファミリー1サブファミリーFの嗅覚受容体(OR1F)、特にファミリー1サブファミリーFメンバー1の嗅覚受容体(OR1F1)、ファミリー2サブファミリーJの嗅覚受容体(OR2J)、特にファミリー2サブファミリーJメンバー2の嗅覚受容体(OR2J2)、またはファミリー51サブファミリーEの嗅覚受容体(OR51E)、特にファミリー51サブファミリーEメンバー2の嗅覚受容体(OR51E2)、および
(iii)鋤鼻受容体、好ましくは鋤鼻1、特に鋤鼻1受容体4(VN1R4);
(iv)フェロモン受容体;ならびに
(b)オプシン、特にオプシン3(OPN3)
からなる群より選択される。
(i)CTL応答に対する抵抗性に関して試験しようとする細胞を提供する段階、
(ii)前記細胞の表面にある少なくとも1種の感覚受容体の量を決定する段階、および
(iii)感覚受容体の前記量を、感覚受容体をその表面に持たない同等の細胞、および/またはCTL応答に対する高度の抵抗性が生じるような量をその表面に有する同等の細胞の標準値と比較する段階、
を含む方法に関する。
(a)好ましくは以下のものからなる群より選択される嗅覚受容体:
(i)味覚受容体、特に味覚受容体2型(TAS2R)、特に味覚受容体2型メンバー3(TAS2R3)、
(ii)ファミリー1、2または51の嗅覚受容体、特にファミリー1サブファミリーFの嗅覚受容体(OR1F)、特にファミリー1サブファミリーFメンバー1の嗅覚受容体(OR1F1)、ファミリー2サブファミリーJの嗅覚受容体(OR2J)、特にファミリー2サブファミリーJメンバー2の嗅覚受容体(OR2J2)、またはファミリー51サブファミリーEの嗅覚受容体(OR51E)、特にファミリー51サブファミリーEメンバー2の嗅覚受容体(OR51E2)、および
(iii)鋤鼻受容体、好ましくは鋤鼻1、特に鋤鼻1受容体4(VN1R4);
(iv)フェロモン受容体;ならびに
(b)オプシン、特にオプシン3(OPN3)
からなる群より選択される。
(ii)CTL活性にとって典型的なポリペプチド、例えば1つもしくは複数のインターフェロン(IFN)、1つもしくは複数のインターロイキン(IL)および/または1つもしくは複数の腫瘍壊死因子(TNF)などの排出を決定し、その結果を該アンタゴニストによって処理していない同等の細胞およびCTLを含む試料のそれと比較すること。
(i)CTL応答を妨げる少なくとも1種の表面ポリペプチドを発現し、さらに生物発光を可能にするポリペプチド、特にルシフェラーゼも発現する細胞を提供する段階、
(ii)段階(i)の細胞を、関心対象の少なくとも1種の作用物質と接触させる段階、
(iii)段階(ii)から得られた細胞を、CTL、およびCTLの抗原受容体を段階(ii)の細胞の細胞表面分子と架橋させる作用物質とともにコインキュベートする段階、
(iv)段階(iii)から得られた生細胞を回収する段階、
(v)段階(iv)から得られた細胞のサイトゾルの生物発光を決定する段階、ならびに
(vi)少なくとも1種の作用物質と接触させた細胞の生物発光を、作用物質と接触させていない細胞、かつ/または1種もしくは複数の他の薬剤と接触させた陰性対照の細胞と比較する段階。
(a)好ましくは以下のものからなる群より選択される嗅覚受容体:
(i)味覚受容体、特に味覚受容体2型(TAS2R)、特に味覚受容体2型メンバー3(TAS2R3)、
(ii)ファミリー1、2または51の嗅覚受容体、特にファミリー1サブファミリーFの嗅覚受容体(OR1F)、特にファミリー1サブファミリーFメンバー1の嗅覚受容体(OR1F1)、ファミリー2サブファミリーJの嗅覚受容体(OR2J)、特にファミリー2サブファミリーJメンバー2の嗅覚受容体(OR2J2)、またはファミリー51サブファミリーEの嗅覚受容体(OR51E)、特にファミリー51サブファミリーEメンバー2の嗅覚受容体(OR51E2)、および
(iii)鋤鼻受容体、好ましくは鋤鼻1、特に鋤鼻1受容体4(VN1R4);
(iv)フェロモン受容体;ならびに
(b)オプシン、特にオプシン3(OPN3)
からなる群より選択される。
(i)感覚受容体の発現を低下させる作用物質、特に前記感覚受容体をコードするmRNAに対して相補的なsiRNA、および
(ii)前記感覚受容体に対するT細胞結合活性を妨げる作用物質、特に抗体または感覚受容体結合性断片である前記作用物質、
からなる群より選択される。
(i)感覚受容体をコードする遺伝物質、
(ii)前記感覚受容体の発現を増強する作用物質、および
(iii)CTLを妨げる表面ポリペプチドをT細胞と架橋させる作用物質、特に架橋性抗体または抗体断片、
からなる群より選択される。
材料および方法
細胞培養および試薬
MCF7、MDA-MB-231およびKS乳癌細胞はAmerican Type Cell Culture(Wesel, Germany)から取得し、10% FCSを含有するDMEM(Sigma, Germany)中で、5% CO2および37℃にて培養した。候補ポリペプチドが高度であるMCF7-C6乳癌細胞株は、FACS分取、および特異的mAb(Axxora, Lorrach, Germany)を用いる陽性MCF-7細胞の増大によって作製した。MCF7-Luc細胞株は、親細胞株にpEGFP-Lucプラスミド(Dr. Rudolph Hasse, LMU, Munichに寄贈いただいた)のエレクトロポレーションを行った上で、FACSで分取したGFP+クローンを550μg/mlの選択用抗生物質G418(Gibco, UK)を含有する培地中で培養することによって作製した。
ほとんどのGPCRを標的とするゲノムワイドsiRNAライブラリーsiGENOME(Dharmacon, Thermo)のサブライブラリーを、RNAiスクリーニングのために用いた。このライブラリーは516個のsiRNAプールを含み、そのそれぞれが4種の合成siRNA二重鎖からなり、以前に記載された通りに調製されている(Gilbert et al., 2011)。公知の表現型を有する陽性siRNA対照および陰性siRNA対照、例えば、非標的指向性siRNA(Ambion)、細胞生存度に影響を及ぼす遺伝子を標的とするsiRNA(例えば、UBC、PLK-1)、またはCTL細胞傷害作用に影響を及ぼすことが公知であるもの(例えば、PD-L1)、ならびに免疫チェックポイント調節に関与する可能性のある遺伝子を標的とするさらなるsiRNA、例えばRCAS1(Han et al., 2007)およびGal-3(Peng et al., 2008)(すべてDharmaconによる)などを、スクリーニングの前に空のウェルに分配した。
RNAiスクリーニングによるプレートリーダーのデータは、R/BioconductorのcellHTS2パッケージ(Boutros et al., 2006)を用いて統計学的に分析した。手短に述べると、プレートベースの正規化を行い、cellHTS2に組み込まれた堅牢なz-スコア法を使用した。プレート内部での明らかな行効果(row effect)を補正するために、b-スコア正規化を必要に応じて使用した。スクリーニング1およびスクリーニング2に関しては、両方の条件、すなわちCTLの添加下およびCTLの非添加下によるスコアを、Rにおけるaroma.lightパッケージを用いて、互いに対してさらに分位正規化した。示差スコアは、CTLの非添加下の分位正規化スコアを、CTLの添加下で導き出されたスコアから差し引くことによって算出した。CTL媒介性細胞傷害作用を正の方向にモジュレートする遺伝子を堅牢に同定するため、かつ、異なる複数のドナー由来のCTLを使用すること、ならびに遺伝的に操作されたMCF7細胞ならびに非改変MCF7細胞を使用することによって導入される可能性のあるバイアスを回避するために、示差スコアによって評価したうちの上位150件の遺伝子を独立したスクリーニング1および2のために抽出し、候補リスト間で重なり合うものを決定した。siRNAによって明らかとなる生存度への影響ならびにルシフェラーゼ発現に対する影響を補正するための候補リストのフィルタリングは、重なり合う候補リストから、CTLの非添加下での残留性ルシフェラーゼ測定値から導き出されたスコアに基づく最下位の10遺伝子および最上位の25遺伝子を除外することによって行った。最後に、CellTiterGloに基づく生存度スクリーニング(スクリーニング3)においてスコア付けされた遺伝子を、候補リストから除外した(スコアが-1.5未満のもの、および1.5を上回るもの)。それにより、細胞内ATPレベルによって判定される、細胞生存度に全般的に影響を及ぼすsiRNAを除外できたと考えられる。
同定された候補遺伝子に関して、Ingenuity Pathways Analysis(IPA)ウェブアプリケーション(www.ingenuity.com)を用いて相互作用ネットワークを作成した。遺伝子記号の識別子をIPAにアップロードして、これらの遺伝子対象物間の直接的または間接的な相互作用に対するクエリーを、以下のパラメーターを用いて行った:「種=ヒト」および「信頼性=実験的に観察された」。遺伝子または遺伝子産物はノードとして表され、2つのノード間の生物学的関係は辺(線)として表される。辺はすべて、少なくとも1件の参考文献によって文献的に裏づけられているか、またはIngenuity Pathways Knowledge Baseに記録されている公式に認められた情報である。
ウエスタンブロット分析のための全細胞タンパク質抽出物は、以前に記載された通りに調製した。ウエスタンブロット用に用いた抗体は、抗候補ポリペプチドヒト抗体、抗ヒトPD-L1(R&D systems)、抗ヒトβ-アクチン(Abeam)であった。細胞ペレットからRNeasy Microキット(Qiagen, Hilden, Germany)を用いて全RNAを抽出し、QuantiTect逆転写キット(Qiagen)を製造元による指示の通りに用いて逆転写させた。PCR施行のためのプライマー配列:
クロム放出細胞傷害性アッセイのためには、腫瘍細胞をまず、上記のように、RNAiMaxトランスフェクション試薬を用いて、25m2培養フラスコ内で、記載のsiRNAによってトランスフェクトさせた。いくつかの実験では、候補ポリペプチドの過剰発現のために、TransIT-LT1トランスフェクション試薬(Mirus, Madison, USA)を製造元のプロトコールに従って用いて、MCF7細胞を、pCMV6-AC-His-候補ポリペプチドをコードするベクター(OriGene, Rockville, US)またはpCMV6-AC-His対照ベクターのいずれかによってトランスフェクトさせた。72時間後に、siRNAまたはプラスミドをトランスフェクトさせた細胞を採取し、洗浄した上で、200μlの51Cr/標的細胞106個(Perkins-Elmer, Germany)により、37℃で45分間かけて標識した。別の候補ポリペプチドの抗体遮断のためには、まず1×106個のMCF7-C6細胞を30ug/mlの遮断抗体とともに氷上で30分間インキュベートし、続いて洗浄した上で、クロムによって標識した。標識の後に、無細胞クロムを除去するために細胞を注意深く3回洗浄し、96ウェルプレート内で、3000個/ウェルの標的細胞を、T細胞とともに、T細胞-標的細胞比が1:1〜100:1となるように37℃で4時間共培養した。4時間後にプレートを遠心分離し、死細胞によって放出された放射能をγ線カウンター(Cobra counter Packard, Perkin Elmer, Rodgau, Germany)を用いて測定するために上清を採取した。本発明者らはまた、健常ドナー由来のポリクローナルCD8 T細胞も、乳癌細胞溶解の誘導のためのエフェクター細胞として用いた。この目的に向けて、健常ドナーのPBMCからCD8+ T細胞を単離し、上記の通りに抗CD3/抗CD28活性化ビーズを用いて活性化した。その後に、続いて、これらの活性化CD8 T細胞を、3000個/ウェルの放射標識標的細胞と、T細胞-標的細胞比が1:1〜100:1となるように、5μg/mlの抗CD3×抗EpCAM二重特異性抗体または抗CD3×抗CD19対照二重特異性抗体の存在下で4時間共培養した。自然放出に関する対照としては、標識細胞を培地のみとコインキュベートした;最大放出に関しては、細胞を、T細胞の代わりに10% Triton X-100とともにインキュベートした。続いて、比溶解率(%)を以下に提示した式によって算出した:
比溶解率(%)=(実験的放出-自然放出)/(最大放出-自然放出)×100
Tリンパ球からのIFN-γ、パーフォリンおよびグランザイムBの分泌を、ELISpotアッセイを製造元(Mabtech, Nacka Strand, Sweden)によって詳述されている通りに用いて決定した。手短に述べると、免疫抑制遺伝子の候補を、腫瘍細胞株において、特異的siRNAを用いて対照ノックダウンとともに阻害させた。siRNAトランスフェクションから48時間後に、ノックダウンさせた細胞を採取し、洗浄した上で、ELISpotウェル内で、サバイビン特異的T細胞とともに、エフェクターと標的の比が5:1となるようにして24時間共培養した。さらに、場合によっては、細胞を、さまざまな濃度のポリペプチド遮断抗体(Axxora)候補の存在下においても共培養した。IFN-γ、パーフォリンまたはグランザイムBのスポットを、酵素結合型イムノスポット(ELISPOT)ソフトウェア(Zeiss, Jena, GermanyまたはCTL Europe, Bonn, Germany)を用いて測定した。統計学的比較は、1群当たり3つの試験ウェルを用いて行った。いくつかの実験では、免疫応答の陽性対照として、腫瘍細胞株の代わりに、T2細胞に対して20μg/mlのHLA-A2拘束性ペプチドによるパルス刺激を用いた。
腫瘍とT細胞とのコインキュベーション実験による細胞培養上清中のサイトカインレベルは、2レーザー式フローサイトメーターを用いる分析物定量のために抗体とカップリングさせた蛍光性ビーズを使用する、Bio-plexサイトカインアッセイを用いて決定した。手短に述べると、MCF7細胞を、ポリペプチド候補特異的siRNAまたは対照siRNAによって48時間トランスフェクトさせた上で採取し、96ウェルプレート内で、104個のサバイビン特異的T細胞とともに、1:5の比で、37℃でさらに24時間共培養した。1群当たり3つの試験ウェルをこの検討に用いた。インキュベーション後にプレートを遠心分離し、培養上清100μlを各試験ウェルから収集して、1000×g、4℃で15分間遠心分離した。清澄な上清を収集し、Bio-Plex Proアッセイキットを製造元(Biorad, Germany)による記載の通りに用いて、そのままサイトカイン測定に用いた。データは、Bio-Plex Managerソフトウェア・バージョン6.0を用いて分析した。
MCF7細胞を、上記の通りの対照siRNAまたは特異的siRNAのいずれかによってトランスフェクトさせた。72時間後に細胞を採取し、96ウェルプレートの1ウェル当たりに、100μlのサイトカイン非含有X-vivo 20培地中にある8×104個の細胞をプレーティングした。これに対して、100μlのX-vivo培地中に懸濁させた2×106個のサバイビン特異的T細胞を添加した。ポリペプチド遮断のためには、siRNAトランスフェクションの代わりに、KS細胞を非処理のままとするか、または30μg/mlの抗候補ポリペプチドmAbによって氷上で30分間前処理した後に、注意深く洗浄した。T細胞受容体複合体分析のためには腫瘍とT細胞を5分間共培養し、ホスホ-STAT分析のためには2時間共培養した。コインキュベーション後に細胞を採取し、洗浄した上で溶解させた。総タンパク質濃度を測定し、BSAタンパク質アッセイキット(Thermo scientific, Rockford、U.S.)を用いて測定し、これをリンタンパク質検出の前に、7-plex T細胞受容体シグナル伝達リンタンパク質キットまたはホスホ-STAT 5-plexキット(Millipore, Billerica、U.S.)のいずれかを製造元による指示の通りに用いて、すべての試料に対して正規化した。測定はLuminex100 Bio-Plex System(Luminex, Austin, U.S.)を用いて行い、データのすべてをBio-Rad Bio-Plex Managerソフトウェア・バージョン4.1.1(BioRad Life Science Research, Hercules, U.S.)を用いて分析した。
6〜8週齡の雌性NOD/SCIDマウス(系統NOD/NCrCrl-Prkdcscid)をCharles River(Sulzfeld, Germany)から入手し、SPF条件下で飼育した。マウスに対して、50μLのマトリゲル基底膜マトリックス(BD Biosciences)中にある2×106個のKS乳癌細胞を、右側腹部の皮下に移植した。腫瘍が直径6〜8mm(腫瘍移植からおよそ18日間後)に達した時点で、マウスに対して、5×106個のサバイビン特異的CTL(クローン:SK-1)/PBS 100μlを静脈内に2回移入した。加えて、マウスには、50μg〜200μgの抗候補ポリペプチドまたはアイソタイプmAbの腹腔内注射を週2回毎に4回〜7回行った。腫瘍増殖は、式 体積=(長さ×幅2×π/6)に従って週2回ずつ評価した。
試験群と対照群との差は、両側スチューデントt検定を用いて分析した。いずれの統計学的検定においても、P値が0.05以下であれば、影響は統計学的に有意と見なした。
細胞傷害性Tリンパ球(CTL)による細胞死滅を阻害する腫瘍関連遺伝子を同定する目的で、本発明者らは、以下ではLuc-CTLアッセイと称するルシフェラーゼベースの読み取りアッセイを適合化させた(図1A)。このアッセイのために、本発明者らは、安定なトランスフェクションによってルシフェラーゼ発現性MCF7乳癌細胞株(MCF7luc)を樹立したほか、さまざまな腫瘍細胞株の迅速スクリーニングが将来可能になるように、MCF7細胞の一過性ルシフェラーゼトランスフェクションも行った。
スクリーニングおよび候補同定の過程の妥当性を調べる目的で、本発明者らは次に、上記の方法によって同定され、選択された候補遺伝子の免疫調節能力を機能の点での妥当性に関して検討した。この目的に向けて、本発明者らは、本発明者らのスクリーニングにおいて相対的に下位から中間位までに順位付けられた2つの候補遺伝子を選択した(図2Cおよび2D)。
候補ポリペプチドとしての感覚受容体を対象とするsiRNAを用いるスクリーニングを、上記の方法によって行った。
以下に本発明者らは、腫瘍における免疫抵抗性を助長する新たな癌関連免疫チェックポイント分子を包括的に同定するためのハイスループットスクリーニング戦略について報告する。
TAS2R3およびOR51E2が腫瘍細胞上の免疫調節リガンドであり、それらの阻害が腫瘍特異的T細胞の抗腫瘍活性を増大させると考えられ、かつそれ故にそれらが抗癌免疫療法の有望な標的であるという初期の知見を裏づけるために、そのほかの実験も実施した。実験の概要は以下に示す通りである。
HTPスクリーニングのために用いたTAS2R3 siRNAプールはデコンボルーションされ、このことからsiRNA s3およびs4が、十分に確立され、かつ臨床的意義のある免疫チェックポイント分子であるPDL1およびRCAS1のノックダウンによって達成されるものと同等なルシフェラーゼ活性の有意な低下によって示されるように、ルシフェラーゼトランスフェクトMCF7乳癌標的細胞のT細胞媒介性溶解を有意に増加させることが実証された(図5A)。対照的に、これらのsiRNAは、T細胞の非存在下ではルシフェラーゼトランスフェクトMCF7乳癌細胞の生存度に影響を及ぼさず(図5B)、一方、細胞生存のために必須であるユビキチン(ubc)のノックダウンは細胞生存度を強く低下させたことから、これをアッセイ系の内部陽性対照とした。もう1つの内部対照としては、MCF7細胞におけるルシフェラーゼ(fluc)のノックダウンを用いた。
TAS2R3を用いた妥当性検証実験と同様に、本発明者らはHTPスクリーニングのために用いるOR51E2 siRNAプールをデコンボルーションし、プール中のすべてのsiRNAが、十分に確立され、かつ臨床的意義のある免疫チェックポイント分子であるPDL1およびRCAS1のノックダウンによって達成されるものと同等なルシフェラーゼ活性の有意な低下によって示されるように、ルシフェラーゼトランスフェクトMCF7乳癌標的細胞のT細胞媒介性溶解を有意に増加させることを実証した(図10A)。対照的に、これらのsiRNAは、T細胞の非存在下ではルシフェラーゼトランスフェクトMCF7乳癌細胞の生存度に影響を及ぼさず(図10B)、一方、細胞生存のために必須であるユビキチン(ubc)のノックダウンは細胞生存度を強く低下させたことから、これをアッセイ系の内部陽性対照とした。もう1つの内部対照としては、MCF7細胞におけるルシフェラーゼ(fluc)のノックダウンを用いた。
Claims (15)
- 病的な細胞性細胞傷害性T細胞(CTL)応答と関連のある疾患を治療または予防するための方法に用いるための、感覚受容体と選択的に結合するかまたは感覚受容体の発現を選択的に変化させる化合物であって、好ましくは疾患が、新生物、特に癌、自己免疫疾患、感染症および移植片対宿主病からなる群より選択される、化合物。
- 感覚受容体が細胞表面に局在する受容体であり、好ましくは該感覚受容体が、
(a)好ましくは以下のものからなる群より選択される嗅覚受容体:
(i)味覚受容体、特に味覚受容体2型(TAS2R)、特に味覚受容体2型メンバー3(TAS2R3)、
(ii)ファミリー1、2または51の嗅覚受容体、特にファミリー1サブファミリーFの嗅覚受容体(OR1F)、特にファミリー1サブファミリーFメンバー1の嗅覚受容体(OR1F1)、ファミリー2サブファミリーJの嗅覚受容体(OR2J)、特にファミリー2サブファミリーJメンバー2の嗅覚受容体(OR2J2)、またはファミリー51サブファミリーEの嗅覚受容体(OR51E)、特にファミリー51サブファミリーEメンバー2の嗅覚受容体(OR51E2)、および
(iii)鋤鼻受容体、好ましくは鋤鼻1、特に鋤鼻1受容体4(VN1R4);
(iv)フェロモン受容体;ならびに
(b)オプシン、特にオプシン3(OPN3)
からなる群より選択される、請求項1記載の使用のための化合物。 - 特に新生物、特に癌に罹患した患者における活性化CTLに対する免疫応答を増強し、好ましくは、
CTL応答を妨げる表面受容体の局所表面濃度および/もしくはT細胞結合活性を低下させ;かつ/または
(i)感覚受容体の発現を低下させる化合物、好ましくは、該感覚受容体をコードするmRNAに対して相補的な干渉RNA、特に低分子干渉リボ核酸(siRNA)もしくは低分子ヘアピン型RNA(shRNA)、および
(ii)特に抗体もしくは感覚受容体結合性断片である、該感覚受容体に対するT細胞結合活性を妨げる化合物
からなる群より選択される、請求項1または2記載の使用のための化合物。 - 特に自己免疫疾患および/または移植片対宿主病に罹患した患者において、活性化CTLに対する免疫応答を抑制し、好ましくは、
CTL応答を妨げる表面受容体の量および/もしくはT細胞結合活性が増強され;かつ/または
(i)感覚受容体をコードする遺伝物質、
(ii)該感覚受容体の発現を増強する化合物、および
(iii)CTLを妨げる表面ポリペプチドをT細胞と架橋させる化合物、特に架橋性抗体または抗体断片
からなる群より選択される、請求項1〜2のいずれか記載の使用のための化合物。 - 1つまたは複数のさらなる免疫調節化合物と組み合わせて用いられる、請求項1〜4のいずれか一項記載の使用のための化合物。
- 患者におけるCTL応答に対する細胞抵抗性を診断するための方法に用いるための感覚受容体を検出するための手段。
- 感覚受容体と選択的に結合する少なくとも1種の化合物を含み、好ましくは該化合物が標識されており、特に蛍光性に標識され、造影剤によって標識され、スピン標識され、かつ/または放射性に標識されており、特に該化合物が抗体またはその感覚受容体結合性断片である、請求項6記載の使用のための手段。
- 感覚受容体が細胞表面に局在する受容体であり、好ましくは該感覚受容体が、
(a)好ましくは以下のものからなる群より選択される嗅覚受容体:
(i)味覚受容体、特に味覚受容体2型(TAS2R)、特に味覚受容体2型メンバー3(TAS2R3)、
(ii)ファミリー1、2または51の嗅覚受容体、特にファミリー1サブファミリーFの嗅覚受容体(OR1F)、特にファミリー1サブファミリーFメンバー1の嗅覚受容体(OR1F1)、ファミリー2サブファミリーJの嗅覚受容体(OR2J)、特にファミリー2サブファミリーJメンバー2の嗅覚受容体(OR2J2)、またはファミリー51サブファミリーEの嗅覚受容体(OR51E)、特にファミリー51サブファミリーEメンバー2の嗅覚受容体(OR51E2)、および
(iii)鋤鼻受容体、好ましくは鋤鼻1、特に鋤鼻1受容体4(VN1R4);
(iv)フェロモン受容体;ならびに
(b)オプシン、特にオプシン3(OPN3)
からなる群より選択される、請求項6または7記載の使用のための手段。 - 患者が新生物、自己免疫疾患、感染症および/または移植片対宿主病に罹患しており、特に該患者が新生物に罹患しており、特に該新生物が癌である、請求項6〜8のいずれか一項記載の使用のための手段。
- インビトロでCTL応答に対する細胞の抵抗性を判定するための方法であって、
(i)CTL応答に対する抵抗性に関して試験しようとする細胞を提供する段階、
(ii)該細胞の表面にある少なくとも1種の感覚受容体の量を決定する段階、および
(iii)該感覚受容体の該量を、該感覚受容体をその表面に持たない同等の細胞の、および/またはCTL応答に対する高度の抵抗性が生じるような量をその表面に有する同等の細胞の標準値と比較する段階
を含む、方法。 - 段階(ii)が、
細胞を、
(a)少なくとも1種の感覚受容体と選択的に結合する少なくとも1種の化合物であって、好ましくは標識されており、特に蛍光性に標識され、造影剤によって標識され、スピン標識され、かつ/もしくは放射性に標識されており、特に抗体またはその感覚受容体結合性断片である、化合物;ならびに/または
(b)少なくとも1種の感覚受容体の少なくとも1種のアンタゴニストであって、特に該感覚受容体に対して相補的な干渉RNA、特に低分子干渉リボ核酸(siRNA)もしくは低分子ヘアピン型RNA(shRNA)である、アンタゴニスト
と接触させること、
少なくとも1種のアンタゴニストと接触させた細胞を少なくとも1種のCTLとともにコインキュベートし、その後にCTL活性を決定することであって、好ましくは以下のうち1つによってCTL活性を決定する、こと:
(i)少なくとも1種のCTLとともにコインキュベートした細胞の生存度を決定し、かつ該生存度を、該アンタゴニストによって処理していない同等の細胞およびCTLを含む試料のそれと比較すること、または
(ii)CTL活性にとって典型的なポリペプチド、例えば1つもしくは複数のインターフェロン(IFN)、1つもしくは複数のインターロイキン(IL)および/または1つもしくは複数の腫瘍壊死因子(TNF)などの排出を決定し、かつ結果を該アンタゴニストによって処理していない同等の細胞およびCTLを含む試料のそれと比較すること
を含む、請求項10記載の方法。 - CTLに対する細胞の応答に影響を及ぼす作用物質を同定するための方法であって、
(i)CTL応答を妨げる少なくとも1種の表面ポリペプチド、特に感覚受容体を発現し、かつさらに生物発光を可能にするポリペプチド、特にルシフェラーゼも発現する細胞を提供する段階、
(ii)段階(i)の細胞を、関心対象の少なくとも1種の作用物質と接触させる段階、
(iii)段階(ii)から得られた細胞を、CTL、およびCTLの抗原受容体を段階(ii)の細胞の細胞表面分子と架橋させる作用物質とともにコインキュベートする段階、
(iv)段階(iii)から得られた生細胞を回収する段階、
(v)段階(iv)から得られた細胞のサイトゾルの生物発光を決定する段階、ならびに
(vi)少なくとも1種の作用物質と接触させた細胞の生物発光を、作用物質と接触させていない、かつ/または1種もしくは複数の他の薬剤と接触させた陰性対照の細胞と比較する段階
を含む、方法。 - 感覚受容体が、
(a)好ましくは以下のものからなる群より選択される嗅覚受容体:
(i)味覚受容体、特に味覚受容体2型(TAS2R)、特に味覚受容体2型メンバー3(TAS2R3)、
(ii)ファミリー1、2または51の嗅覚受容体、特にファミリー1サブファミリーFの嗅覚受容体(OR1F)、特にファミリー1サブファミリーFメンバー1の嗅覚受容体(OR1F1)、ファミリー2サブファミリーJの嗅覚受容体(OR2J)、特にファミリー2サブファミリーJメンバー2の嗅覚受容体(OR2J2)、またはファミリー51サブファミリーEの嗅覚受容体(OR51E)、特にファミリー51サブファミリーEメンバー2の嗅覚受容体(OR51E2)、および
(iii)鋤鼻受容体、好ましくは鋤鼻1、特に鋤鼻1受容体4(VN1R4);
(iv)フェロモン受容体;ならびに
(b)オプシン、特にオプシン3(OPN3)
からなる群より選択される、請求項10〜12のいずれか一項記載の方法。 - CTLが、予備活性化CD8+ T細胞、特にCD3特異的抗体および/またはCD28特異的抗体を通じてのT細胞受容体(TCR)刺激によって予備活性化されたCD8+ T細胞である、請求項12または13記載の方法。
- 作用物質が、典型的には細胞表面に局在し、かつ/または細胞シグナル伝達に関与するポリペプチドをコードするメッセンジャーリボ核酸(mRNA)に対して相補的な干渉RNA、特に低分子干渉リボ核酸(siRNA)または低分子ヘアピン型RNA(shRNA)である、請求項12〜14のいずれか一項記載の方法。
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