JP2015536938A - 二重特異性T細胞エンゲージャー(BiTEs)のための配合物 - Google Patents
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Abstract
Description
用語「抗体」は、本明細書中で使用される場合、ジスルフィド結合により互いに連結される2つの重鎖(H)ポリペプチド鎖および2つの軽鎖(L)ポリペプチド鎖をそれぞれが含む様々な免疫グロブリン分子を示す。それぞれの重鎖が、可変領域(VH)と、定常領域とからなり、そしてまた、定常領域は3つのドメイン(CH1、CH2およびCH3)からなる。軽鎖のそれぞれが可変領域(VL)および定常領域(CL)から構成される。軽鎖および重鎖の両方の可変領域(VHおよびVL)はさらに、それぞれの場合において、3つの超可変性の抗体結合部位(CDR1〜CDR3)と、これらのCDRの間における合計で4つの保存された領域(FR1〜FR4)とに細かく分けられる。
本発明の1つの実施形態は、ポリペプチド、TRISおよびリン酸塩を含む液体医薬組成物を含み、前記ポリペプチドは2つのscFv抗体結合ドメインを含み、第1のscFv結合ドメインはヒトCD3イプシロンに結合することができる。
示差走査蛍光測定法(DSF)を使用して、最小分子量を有するPSMA-BiTE1タンパク質ドメインの平均融解点(Tm1)を種々の緩衝液系において測定した。平均融解点は、様々な緩衝液系における試験されたタンパク質の安定性の尺度である;Tm値が大きいほど、タンパク質の安定性もまた大きくなる。タンパク質の熱安定性が大きいほど、安定な医薬配合物を製造するためのその好適性が良好である。
PSMA-BiTE1分子は、試験されたすべての緩衝液系において撹拌ストレス試験の後で凝集物を形成した。凝集したPSMA-BiTE1分子がT細胞活性化をもたらす効率は予測可能または制御可能でないか、あるいは、限定された程度に予測可能または制御可能であるにすぎない。したがって、凝集物形成が撹拌ストレスまたは剪断力の作用から生じることを妨げる安定剤を見出すことが必須であった。撹拌ストレス試験において、様々な非イオン性界面活性剤(例えば、ポリソルベート80またはポリソルベート20)がPSMA-BiTE1分子を安定化し、かつ、凝集を妨げ得ることが明らかになった。0.01%〜0.04%(質量/体積)の間での界面活性剤濃度が安定化のために十分であった(表3〜表7を参照のこと)。
PSMA-BiTE1配合物の濃縮時におけるPSMA-BiTE1凝集物の割合における増大を、非イオン性界面活性剤を加えることによって防止することができなかった。
偶然にも、様々なアミノ酸およびそれらの誘導体がとりわけ、PSMA-BiTE1単量体をより高濃度で安定化することに対する試験に含まれた。アミノ酸およびその誘導体は無機塩でなく、したがって、薬学的に安全であるとして分類される。これらの物質のいくつか(例えば、リシン)が驚くべきことに、濃縮時および濃縮後におけるPSMA-BiTE1分子の安定性に対する正の影響を示した(表4)。
二量体形成に対するpHの影響を調べるために、pH6.0を有する配合物を製造した。この配合物は、pH7.3における配合物の二量体割合と同程度であった二量体割合を示した。そのうえ、二量体の割合はまた、撹拌ストレスの期間中も安定していた。このことが、濁りがないことから明らかであった(表5)。pH6.0の正の影響を好適な安定剤および配合物についてのさらなる探索のために使用した。
さらなる実験において、リン酸塩との組合せでの添加物(例えば、アルギニン、TEAまたはTRISなど)によるPSMA-BiTE1分子の安定性における増大に関する、可能性のある相乗効果を調べた。0.8%のPSMA-BiTE1二量体の最も低い割合が、50mMのNa2HPO4および100mMのTRISの、pH6.0での緩衝剤組合せの場合に生じた。この配合物はまた、撹拌ストレスの後で十分に安定であった。このことが、溶液の濁りがないことから認識可能であった(表6)。TRISの安定化効果は驚くべきものであった。なぜならば、アルギニンまたはTEAの添加では、アルギニンまたはTEAはともに、タンパク質の場合におけるそれらの安定化効果(すなわち、凝集減少効果)について知られているが、安定化効果がPSMA-BiTE1分子の場合には何らなかったからである。
下記配合物の最小分子量を有するPSMA-BiTE1タンパク質ドメインの平均融解点(Tm1)を求めた。
一般に、BiTE分子は撹拌ストレスによって物理的に不安定化される。すなわち、BiTE分子は凝集物を形成する(この凝集物は動的光散乱(DLS)により検出することができる)。凝集物の形成が約0.2mg/mlの低いBiTE濃度でさえ生じる。対照的に、タンパク質含有量が0.2mg/ml未満である場合には、BiTE分子が容器壁にますます吸着する。
標準的な緩衝液系において、二量体および多量体の割合がPSMA-BiTE1分子の濃度とともに増大した。しかしながら、二量体および多量体は、治療使用のための配合物ではほんの限られた程度にしか許容され得ない。なぜならば、二量体および多量体は配合物および治療用タンパク質の有効性に影響し、かつ、望まれていない免疫学的影響を誘発する可能性があるからである。典型的には、二量体は、最大でも5%の値に制限されており、様々な試みが、できる限り前記値よりも低く保つために行われる。多量体および低分子量(LMW)フラグメントは同様に最小限に抑えなければならないか、または、全く存在してはならない。単量体/二量体比、同様にまた、多量体および低分子量フラグメントの割合が、サイズ排除クロマトグラフィー(SEC)を使用して測定される。
トレハロースおよびポリソルベートの添加は、SEC測定によって求められ得るように、二量体、多量体またはLMWフラグメントの増大した形成を引き起こしていない。
トレハロース二水和物およびポリソルベートの添加は、二量体、多量体またはLMWフラグメントの増大した形成を引き起こさなかった(表10)。
PSMA-BiTE1分子の貯蔵安定性を、貯蔵時間の関数としての二量体および/または多量体の割合における増大に基づいて求めることができる。これらの凝集物の割合における増大が急速であるほど、貯蔵安定性が低くなる。
PSMA-BiTE1分子の貯蔵安定性を、貯蔵時間の関数としての二量体および/または多量体の割合における増大に基づいて求めることができる。これらの凝集物の割合における増大が急速であるほど、貯蔵安定性が低くなる。
原理的に、PSMA-BiTE1分子は、TRIS、リン酸塩(この場合にはNa2HPO4)、トレハロースおよびポリソルベートを含有する選択された配合物において、pH5.0〜7.5の間のpH範囲で安定である。しかしながら、pH6を超えるpHでは、二量体の割合が剪断応力の後で増大する。
原理的に、PSMA-BiTE1分子は、TRIS、リン酸塩(この場合にはNa2HPO4)、トレハロース二水和物およびポリソルベートを含有する選択された配合物において、pH5.0〜7.5の間のpH範囲で安定である。しかしながら、pH6を超えるpHでは、二量体の割合(>2%)が剪断応力の後で増大する(表13)。
配合物における種々の緩衝液濃度に関する調査は、配合物における緩衝液濃度を変化させることができることを示した:20mM〜100mMのNa2HPO4および50mM〜200mMのTRISがpH6.0において、PSMA-BiTE1二量体の形成を最小限に抑えることに関して有用である。すべての組合せが濃縮および剪断応力の作用を許容する。
様々なポリソルベートが配合物中のPSMA-BiTE1分子を剪断応力に対して安定化することができる。しかしながら、最も良い結果がポリソルベート80により達成された。他の安定剤、例えば、Synperonic F68なども同様に、正の効果を有した。
配合物(50mMのNa2HPO4、100mMのTRIS、pH6.0、4%(質量/体積)のトレハロース、0.04%(質量/体積)のポリソルベート80)を使用する場合、2mg/mlまでのPSMA-BiTE1濃度をもたらすことが可能である。より高いPSMA-BiTE1濃度では、二量体の割合が明確に増大する。しかしながら、許容できない値が、4mg/mlを超えるPSMA-BiTE濃度および剪断応力の作用の後でのみ測定される(約11.2mg/mlのPSMA-BiTE濃度における9.25%の二量体)。
配合物(50mMのNa2HPO4、100mMのTRIS、pH6.0、4%(質量/体積)のトレハロース二水和物、0.04%(質量/体積)のポリソルベート80)を使用した場合、2mg/mlまでのPSMA-BiTE1濃度をもたらすことが可能であった。より高いPSMA-BiTE1濃度では、二量体の割合が明確に増大した。しかしながら、許容できない値が、4mg/mlを超えるPSMA-BiTE濃度および剪断応力の作用の後でのみ測定された(約11.2mg/mlのPSMA-BiTE濃度における9.25%の二量体)。
PSMA-BiTE1組成物を完成させた後、PSMA-BiTE1組成物を凍結乾燥した。数多くの凍結乾燥装置がこの目的のために入手可能である(例えば、SP Scientificから得られるGenesis Super XL)。凍結乾燥が、物質を凍結し、続いて、氷を、液相を通過することなく昇華させることによって達成される。
PSMA-BiTE1分子を含有する組成物(表18a)を、2℃〜8℃および25℃/60%の相対湿度で12カ月までの期間にわたって凍結乾燥物として貯蔵した。3カ月後および12カ月後、溶液をそれぞれの場合において凍結乾燥物から再構成し、セルベースの活性アッセイで分析した。測定(Promegaから得られるCytoTox-Glo Cytotoxicity Assayによる)により、変化していない生物活性が、上記条件のもとでの6カ月および12カ月の両方の貯蔵の後で明らかにされた。
PSMA-BiTE1分子を含有する組成物(表18a)を、2℃〜8℃および25℃/60%の相対湿度で12カ月までの期間にわたって凍結乾燥物として貯蔵した。3カ月後および12カ月後、溶液をそれぞれの場合において凍結乾燥物から再構成し、とりわけセルベースの活性アッセイで分析した。測定(Promegaから得られるCytoTox-Glo Cytotoxicity Assayによる)により、変化しない生物活性、また、同様に、SECおよびCGEでの単量体の割合におけるほんのわずかな変化が、上記条件のもとでの3カ月および12カ月の両方の貯蔵の後で明らかにされた(表18b)。
組成物:2.17mg/mlのPSMA-BiTE1分子、50mMのNa2HPO4、100mMのTRIS、pH6.0、4%のトレハロース、0.04%のポリソルベート80
30個のバイアルを解凍する。6個のバイアルを「開始値」として使用する。それぞれの実験のために、6個のバイアルを使用する。すなわち、シリンジ/カニューレを使用して抜き取り、すべてを褐色ガラスまたはCryoTubeに注入する。
1.CryoTubeへのPSMA-BiTE1組成物の緩速注入(SyS Cryo)
2.褐色ガラスへのPSMA-BiTE1組成物の緩速注入(SyS Glass)
3.CryoTubeへのPSMA-BiTE1組成物の急速注入(SyR Cryo)
4.褐色ガラスへのPSMA-BiTE1組成物の急速注入(SyR Glass)
組成物:2.17mg/mlのPSMA-BiTE1分子、50mMのNa2HPO4、100mMのTRIS、pH6.0、4%のトレハロース二水和物、0.04%のポリソルベート80
1.CryoTubeへのPSMA-BiTE1組成物の緩速注入(SyS Cryo)
2.褐色ガラスへのPSMA-BiTE1組成物の緩速注入(SyS Glass)
3.CryoTubeへのPSMA-BiTE1組成物の急速注入(SyR Cryo)
4.褐色ガラスへのPSMA-BiTE1組成物の急速注入(SyR Glass)
単量体、二量体および多量体の割合をSECクロマトグラフィーによって測定した。
この目的を達成するために、再構成されたPSMA-BiTE1溶液を2つの希釈物および2つの温度(25℃&37℃)でPBSにおいて調べた。単量体、二量体および多量体ならびにフラグメント(LMW)の割合の測定をSECクロマトグラフィーによって行い、同様に、肉眼で見えない粒子(SVP)の測定をMFIによって行った。
PSMA-BiTE1凍結乾燥物を1.2mlのWFIにより再構成し、0.004%のポリソルベート80含有量に調節された0.9%濃度のNaCl溶液と混合した。これは、高度に希釈された溶液の生物活性における喪失を回避するために必要であった。この目的を達成するために、50mMのリン酸ナトリウム緩衝液(pH6.5)における1%濃度のポリソルベート80溶液を作製した。この溶液を市販の0.9%濃度のNaCl溶液(例えば、Baxer Viaflo 250ml)に加えて、0.004%の最終濃度を達成した。この溶液を使用して、0.05μg/mlから2000μg/mlにまで及ぶPSMA-BiTE1の希釈物を下記の段階で作製した:
・0.05μg/ml
・0.7μg/ml
・2μg/ml
・18μg/ml
・90μg/ml
・500μg/ml
・2000μg/ml
・0.05μg/ml:非希釈
・0.7μg/ml:1:50
・2μg/ml:1:200
・18μg/ml:1:1000
BiTE:PSMA-BiTE1分子
A:アッセイ
Ave:平均
T0値:時間0における値
18μg/ml:1:36
90μg/ml:1:180
500μg/ml:1:1000
2000μg/ml:1:4000
BiTE:PSMA-BiTE1分子
A:アッセイ
Ave:平均
T0値:時間0における値
50mMのNa2HPO4、100mMのTRIS、pH6.0、4%のトレハロース、0.04%のポリソルベート80の配合物を使用する場合、高い生物学的利用能を皮下投与後に達成することが可能である。PSMA-BiTE1分子の皮下の生物学的利用能が4頭のメスのカニクイザルで調べられる。投薬量が皮下投与のために45μg/kgであり、これを5および15μg/kg体重(BW)の静脈投与と比較する。2mg/mlのストック溶液を生理学的食塩水溶液により希釈する。静脈投与の注入時間が1時間であり、注入比率が1ml/kg BWである。選択された注射部位が浅静脈(小伏在静脈)である。皮下投与のために、試験溶液を0.15ml/kg BWで胸部側面領域に注射する。血中レベルを、ELISAアッセイを使用して調べる。この目的を達成するために、ECL技術を使用する。この方法の定量下限(LLOQ)が4μg/lである。
50mMのNa2HPO4、100mMのTRIS、pH6.0、4%のトレハロース二水和物、0.04%のポリソルベート80の配合物を使用する場合、66%の生物学的利用能を皮下投与後に達成することが可能である。PSMA-BiTE1分子の皮下の生物学的利用能を4頭のメスのカニクイザルで調べた。投薬量が皮下投与のために45μg/kgであり、これを5および15μg/kg体重(BW)の静脈投与と比較した。2mg/mlのストック溶液を生理学的食塩水溶液により希釈した。静脈投与の注入時間が1時間であり、注入比率が1ml/kg BWであった。選択された注射部位が浅静脈(小伏在静脈)であった。皮下投与のために、試験溶液を0.15ml/kg BWで胸部側面領域に注射した。血中レベルを、ELISAアッセイを使用して調べた。この目的を達成するために、ECL技術を使用した。この方法の定量下限(LLOQ)が4μg/lであった。
[PSMA-BiTE分子の製造]
BiTE分子、より具体的にはPSMA-BiTE分子を製造するための方法が、例えば、国際公開第2010037836(A2)号に記載される。
PSMA-BiTE1分子の(例えば、剪断応力の後での)安定性に関する測定を、7500 Fast Real-Time PCR System(Applied Biosystems)を使用して行った。種々のPSMA-BiTE1濃度物(0.15mg/ml〜0.005mg/mlの間)を96ウエルプレート(マイクロタイタープレート)において蛍光性色素(例えば、「Sypro(登録商標)Orange 5000」)と混合し、PCRシステム(7500 Fast Real-Time PCR System、Applied Biosystems)で測定した。温度を20℃から90℃に上げた。タンパク質の融解点を蛍光検出により確認した(これは、蛍光性色素がタンパク質の疎水性領域と反応するときに温度依存的様式で生じる)。
PSMA-BiTE1分子の熱変性(thermal unfolding)温度(Tm)をDSCによって確認した。この目的のために、サンプルを20℃から105℃に加熱し、ポリペプチドの融解点を、熱量計を使用して確認した。GE Healthcareから得られるVP-DSC装置を使用した。
サンプルを温度制御チャンバー(MMM、FrioCell 200)において実験室用振とう機(IKA、HS 260)での撹拌によってストレス付加した。撹拌の決定的に重要な品質パラメーターを300rpmおよび20℃において24時間後に確認した。
PSMA-BiTE溶液の安定性を、溶液を暗い背景のもとで保持し、目に見える粒子または濁度について調べることによって剪断応力の後で目視検査した。撹拌ストレス試験の後での透明な溶液は、二量体および/または多量体の形成がほとんどないか、または全くないことを示しており、これに対して、溶液の目に見える濁度は、二量体および/または多量体の大きい割合と相関する。
動的光散乱は、溶解されたサンプルまたは懸濁されたサンプルに対するレーザーの散乱光を分析するための方法である。流体力学的半径を測定し、これにより、結果として、PSMA-BiTE1分子の凝集状態を推測することが可能になる。流体力学的半径を、Horiba LB 550(Retsch Technology)を使用して測定した。
タンパク質含有量を、Nanodrop 2000(Thermo Scientific)を使用して280nmにおいて分光法により測定した。すべてのサンプルを、対応するプラシーボ溶液または緩衝剤溶液に対して測定した。
この方法のために、電気化学的刺激の後で発光するSULFO-TAG(商標)標識を使用した。刺激を、いわゆるMULTI-ARRAYマイクロプレートの電極の表面で行った。発光を、検出器を使用しておよそ620nmにおいて測定した。
単量体および二量体、ならびに、同様に、低分子量(LMW)画分および高分子量(HMW)画分の割合を求めるために、サイズ排除クロマトグラフィーを、HPLCシステムを使用して行った。測定を、蛍光検出器を使用して行い、計算を面積百分率法によって行った。使用されるカラムは、タンパク質のSECのための標準的なカラムであり、例えば、Tosoh Biosep TSKゲルG3000 SWXL(5μm、300mm(長さ)×7.8mm(内径).)、または、同等物であった。
カニクイザルの血清におけるPSMA-BiTE1の濃度をELISAによって測定した。検出を電気化学発光によって行った。検出限界(LLOQ)が0.98μg/lであり、精度が3%〜28%であり、正確度が70%〜100%であった。
セルベースの細胞傷害性アッセイを、PSMA-BiTE1サンプルの相対的活性を求めるための常法的アッセイとして使用する。ヒト/カニクイザルのCD3陽性細胞およびヒト/カニクイザルのPSMA陽性細胞に対するPSMA-BiTE1の二重特異性結合のために、標的細胞のT細胞媒介溶解がT細胞(エフェクター細胞)の活性化の後で生じる。
(装置および材料)
1.クリーンベンチ
2.細胞培養インキュベーター
3.顕微鏡
4.細胞計数器、例えば、血球計数器
5.96ウエルU底プレート、透明(例えば、Greiner Bio-one)
6.96ウエル平底プレート、白色(例えば、Nunc、3058078)
7.細胞培養フラスコ
8.マルチプレート測定装置
(試薬)
1.エフェクター細胞、例えば、MC15
2.標的細胞、例えば、C4-2
3.0.4%トリパンブルー
4.ペニシリン−ストレプトマイシン
5.L-グルタミン(200mM)
6.インターロイキン2
7.培地−MC15:Advanced RPMI1640
8.胎児ウシ血清(FCS)、例えば、Gibco 10270106
9.PBS、例えば、Gibco 20012
10.培地−C4-2:L-グルタミンを伴うPRMI1640、例えば、Gibco 11835063
11.検出試薬、例えば、CytoTox Glo、Promega G9291
(生育培地)
MC15細胞のための培地、例えば
900mlのAdvanced RPMI1640
+100mlのFCS
+10mlのペニシリン−ストレプトマイシン
+10mlのL-グルタミン(200mM)
+10μl〜20μlの[100U/ml〜200U/ml]インターロイキン2
C4-2細胞のための培地、例えば
900mlのL-グルタミン含有RPMI1640
+100mlのFCS
+10mlのペニシリン−ストレプトマイシン
(アッセイ培地)
アッセイ培地、例えば
900mlのL-グルタミン含有RPMI1640
+100mlのFCS
(MC15細胞培養の開始)
アッセイ用の細胞を液体窒素中で保った。細胞を37℃で急速解凍した。その後、細胞を15mlの冷培地に再懸濁し、10分間インキュベーションした。その後、細胞を、例えば、700gで7分間、遠心分離し、上清を捨て、ペレットを10mlの生育培地に再懸濁した。
細胞を、およそ3日間〜4日間、37℃および5%CO2でインキュベーションした。
(MC15の継代培養)
培養液から得られる生細胞のアリコートを計数する。
170gで7分間遠心分離する。
上清を捨て、ペレットを0.5×106細胞/ml〜1.5×106細胞/mlの濃度に生育培地により調節する。細胞は1週間あたり2回〜3回、継代しなければならない。
(C4-2細胞培養の開始)
アッセイ用の細胞を液体窒素中で保つ。細胞を37℃で急速解凍する。その後、細胞を20mlの培地に再懸濁する。その後、遠心分離を、例えば、700gで7分間行う。上清を捨て、ペレットを10mlの生育培地に再懸濁する。
細胞を、およそ3日間〜4日間、37℃および5%CO2でインキュベーションする。
(C4-2の継代培養)
培地をフラスコから取り出し、捨てる。
細胞層を10mlのPBSにより注意深くすすぐ。
2ml〜3mlのトリプシンを加え、細胞層が剥離するまで37℃でインキュベーションする(およそ5分〜15分)。
10mlの培地を加え、細胞を溶解する。
遠心分離を、例えば、170gで7分間行う。
上清を捨て、ペレットを10mlの生育培地に再懸濁し、細胞を計数し、細胞を好適な密度に培地により調節する。
細胞を、およそ3日間〜5日間、37℃および5%CO2でインキュベーションする。細胞は1週間につき1回〜2回、継代しなければならない。
(アッセイのための細胞の調製)
細胞を上記のように剥離させる。
エフェクター細胞(MC15)を2×10E6細胞/mlの濃度にアッセイ培地において調節する。
標的細胞(C4-2)を4×10E5細胞/mlの濃度にアッセイ培地において調節する。
等体積の標的細胞およびエフェクター細胞を1:1混合する(細胞混合物)。
(サンプル、アッセイコントロールおよび参照物質の調製)
サンプル、アッセイコントロールおよび参照物質(RF)を室温に平衡化し、十分に混合し、それらをすべて、同じ第1の濃度(V1;例えば、500ng/ml)にアッセイ培地により調節する。その後、連続希釈(例えば、1:6、n=7)を、最良適合の用量反応曲線を得るためにアッセイ培地を使用して行う。
(試験手順)
サンプル、アッセイコントロールおよび参照物質の添加
サンプル、アッセイコントロールおよび参照物質のアリコート(例えば、25μl)を96ウエル平底プレートの対応するウエルに移す。
細胞混合物(例えば、50μl)を96ウエル平底プレートの各ウエルに移す。
プレートを、例えば、400rpmで1分間、撹拌する。
プレートを37℃および5%CO2で16h〜24hインキュベーションする。
(細胞傷害性および相対的活性の決定)
(検出試薬の添加および測定)
試薬の希釈および添加、ならびに、同様に、その後の測定を、製造者(例えば、CytoTox-Glo、Promega)からの説明書に従って行う。
ウエルあたり15μlの試薬を加える。
プレートを、例えば、400rpmで1分間、撹拌する。
室温でおよそ15分間インキュベーションする。
発光を、好適なマルチプレート測定装置を使用して測定する。
(評価)
(最良適合曲線)
それぞれの濃度における平均測定値を、サンプル、アッセイコントロールおよび参照物質の反復試験物について求める。
用量応答曲線を、サンプル、アッセイコントロールおよび参照物質のそれぞれの系列について描く。この目的のために、平均測定値を、BAY2010112の最終濃度(例えば、500000pg/ml〜1.79pg/ml)に対してプロットする。
好適な最良適合曲線を、サンプル、アッセイコントロールおよび参照物質の濃度レベルの平均測定値により当てはめる。
(相対的活性(決定))
サンプルと参照物質との活性比を求め、記録する。統計学的ソフトウエアを使用することができる。
(判定)
参照物質と比較されるサンプルの相対的活性は仕様書に対応しなければならない。
本方法は欧州薬局方(Ph. Eur.、2.2.25、280nmにおけるUV-VIS分光法)に従って行われ、他の分子の濃度を求めるためにもまた好適である。
e=A/c×d、式中、
A=好適な波長(この場合には280nm)における吸光度(または吸収、ただし、光散乱は無視する)
c=濃度(mol/l)
d=経路長(mm)。
タンパク質濃度[mol/l]=A×V/e×d、式中、
A=280nmにおける吸収
d=セル長(cm)(標準セル、1.00cm)
V=試験溶液の希釈度
e=280nmにおけるPSMA-BiTE1の吸光係数=111315M-1×cm-1。
Claims (14)
- ポリペプチド、TRISおよびリン酸塩を含む液体医薬組成物であって、前記ポリペプチドが、配列番号8に示されるアミノ酸配列を含み、前記組成物が、
前記ポリペプチドを0.5μg/ml〜3.0mg/mlの濃度で含有すること、
100mMのTRISおよび50mMのリン酸塩を含有すること、
そのpHが約6.0であること、ならびに
0.04%のポリソルベート80を含有すること
を特徴とする液体医薬組成物。 - リオプロテクタント(lyoprotectant)をさらに含有することを特徴とする、請求項1に記載の組成物。
- 2%〜10%のリオプロテクタントを含有することを特徴とする、請求項2に記載の組成物。
- 前記リオプロテクタントがトレハロースまたはトレハロース二水和物であることを特徴とする、請求項2または3に記載の組成物。
- 約4%のトレハロース二水和物をさらに含有することを特徴とする、請求項1に記載の組成物。
- 前記ポリペプチドを2mg/mlの濃度で含有することを特徴とする、請求項1から5のいずれか一項に記載の組成物。
- 請求項1から6のいずれか一項に記載の液体組成物を凍結乾燥することによって得ることができる固体混合物。
- 請求項7に記載される凍結乾燥された固体混合物を好適な液体媒体に溶解することによって再構成されることを特徴とする液体医薬組成物。
- 前記組成物の皮下投与の後における前記ポリペプチドの生物学的利用能が60%超であることを特徴とする、請求項1から8のいずれか一項に記載の組成物。
- 治療方法において使用するための請求項1から9のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記組成物の非経口投与を含む治療方法において使用するための請求項1から10のいずれか一項に記載の組成物。
- 前立腺の過剰増殖性疾患を治療的に処置するための方法において使用するための請求項1から11のいずれか一項に記載の組成物。
- 前立腺の過剰増殖性疾患を治療的に処置するための方法において使用するための請求項1から12のいずれか一項に記載の組成物であって、前記方法が前記組成物の皮下投与を含むものである、組成物。
- 請求項1から13のいずれか一項に記載の組成物を含有するシリンジ。
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