JP2014059210A - Nptnとs100a8の結合の阻害を指標とする細胞増殖抑制剤のスクリーニング方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】S100A8の新規受容体を標的とする慢性炎症抑制剤又は癌転移抑制剤のスクリーニング方法の提供。
【解決手段】本発明は、細胞増殖抑制剤の候補物質がNPTNとS100A8との結合を有意に阻害する場合に、当該候補物質が細胞増殖抑制剤として評価する、細胞増殖抑制剤のスクリーニング方法、を提供する。
【選択図】なし
【解決手段】本発明は、細胞増殖抑制剤の候補物質がNPTNとS100A8との結合を有意に阻害する場合に、当該候補物質が細胞増殖抑制剤として評価する、細胞増殖抑制剤のスクリーニング方法、を提供する。
【選択図】なし
Description
本発明は、S100ファミリーに属するタンパク質であるS100A8の新規受容体であるニューロプラスチン(NPTN)、特にNPTNβを標的とする細胞増殖抑制剤のスクリーニング方法を提供する。
過剰増殖や乾癬においてアップレギュレーションされるタンパク質としてS100A8及びS100A9が知られる。S100A8及びS100A9は、20を超えるメンバーから構成されるEF−ハンド型カルシウム結合ドメインを有するS100タンパク質ファミリーに属する(非特許文献1:Marenholz I et al., Biochem Biophys Res Commun (2004) 322:1111-1122)。どちらのタンパク質も好中球、活性化単球、及びマクロファージによって分泌され、それらの細胞の化学走性分子として機能し、炎症性細胞の漸増に関する正のフィードバックループに関与する(非特許文献2:Roth J et al., Trends Immunol (2003) 24:155-158)。S100A8及びS100A9陽性骨髄細胞は、炎症領域内に浸潤する最初の細胞である(非特許文献3:Odink K et al., Nature (1987) 330:80-82)。慢性関節リウマチ(非特許文献4:Liao H et al., Arthritis Rheum (2004) 50:3792-3803)、多発性硬化症(非特許文献5:Bogumil T et al., Neurosci Lett (1998) 247:195-197)、クローン病(非特許文献6:Lugering N, et al., Digestion (1995) 56:406-414)、及び結合組織疾患(非特許文献7:Kuruto R, et al., J Biochem (Tokyo) (1990) 108:650-653)を含む多数のヒト炎症性疾患で高いS100A8及びS100A9血清レベルが観察されている。従って、S100A8及びS100A9は、炎症の誘導及び伝播に重要な役割を担うと考えられている。
上皮細胞中でS100A8と100A9が果たす生物学的機能について、本発明者は以前、外因性S100A8とS100A9が複合体(S100A8/A9)(別名:カルプロテクチン)を形成することで正常表皮角化細胞(NHEK)を刺激して乾癬性病変などにおいて発現亢進される炎症性サイトカインを産生させ、さらにS100A8/A9誘導性サイトカインがNHEK中でのS100A8及びS100A9の産生及び分泌を刺激することを明らかにした(非特許文献8:J Cell Biochem. 2007 Nov 28, Epub ahead of print)。さらに、S100A8/A9自体がNHEKの増殖を増強することも見出した。これらの結果は、主要メディエーターとしてS100A8/A9が関与するNHEKの増殖と炎症の正のフィードバック機構の存在を明らかにした。即ち、S100A8/A9が炎症性サイトカインの産生を誘導して炎症性疾患を惹起し、その炎症が細胞増殖を誘導し、さらには細胞増殖が炎症を誘導するといったスパイラルを形成し、増殖・炎症が連鎖する持続性皮膚炎症性疾患、例えばアトピー性皮膚炎や乾癬などの原因となることが示唆された。
S100A8/A9により引き起こされる慢性炎症の負のサイクル形成を阻止するためには、S100A8及びA9のレセプターの同定が必要と考えられる。これまでに、エンプリンがS100A9のレセプターであり、これらの結合を阻害することで、慢性炎症の抑制、更には癌の転移を抑制することが知られている(特許文献1)。しかしながら、S100A8のレセプターとして機能するタンパク質についてはこれまでに知られていない。
Biochem Biophys Res Commun (2004) 322:1111-1122
Trends Immunol (2003) 24:155-158
Nature (1987) 330:80-82
Arthritis Rheum (2004) 50:3792-3803
Neurosci Lett (1998) 247:195-197
Digestion (1995) 56:406-414
J Biochem (Tokyo) (1990) 108:650-653
J Cell Biochem. (2008) 104:453-464
Nature Cell Biol. (2006) 8(12): 1369-1375
Hum Genet (2002) 111:310-313
本発明は、S100A8の新規受容体を標的とする細胞増殖抑制剤のスクリーニング方法を提供する。
本発明者らは、このたび、エンプリンとの相同性に基づくデータベースサーチにより、S100A8の新規レセプターの候補タンパク質としてニューロプラスチン(NPTN)に着目した。NPTNは、2個の免疫グロブリン様ドメインを有するNPTNαと、3個の免疫グロブリン様ドメインを有するNPTNβのイソ型が存在することが知られているが、メラノーマ及びケラチナサイトにおける発現を調べたところ、いずれにおいてもNPTNβが主に発現していることが判明した。また、RAGE、エンプリン又はNPTNβとS100A8との結合試験において、NPTNβのみがS100A8と結合することが明らかとなった。S100A8によるケラチノサイト増殖促進には、NPTNが関与していることが示された。さらに、免疫染色の結果は、S100A8及びNPTNがメラノーマやアトピー性皮膚炎の病変皮膚で強発現しており、これらが同様の局在性を示すことが明らかとなった。
このように、本発明者らは、NPTN(特にNPTNβ)がS100A8のレセプターであること、そして、これらの間の結合を阻害することで細胞増殖が抑制されることを見出し、本発明を完成するに至った。
従って、本願は以下の発明を包含する:
(1) 細胞増殖抑制剤をスクリーニングする方法であって、細胞増殖抑制剤の候補物質の存在下でニューロプラスチン(NPTN)とS100A8とをインキュベートし、NPTNとS100A8との結合を阻害する物質を細胞増殖抑制剤として選定することを含んで成る、方法。
(2) 前記S100A8がS100A9と複合体を形成している、(1)に記載の方法。
(3) 前記NPTNがNPTNβである、(1)又は(2)に記載の方法。
(4) ニューロプラスチンβ(NPTNβ)とS100A8又は100A8/A9との結合を阻害する薬剤を含んで成る、細胞増殖抑制剤。
(5) 前記薬剤が、ヨモギ、カンゾウ、ニンジン、チャ、オウゴン及びローズマリーから成る群から選択される植物体又はその抽出物を一種又は二種以上含む、請求項4に記載の細胞増殖抑制剤。
(6) (4)又は(5)に記載の細胞増殖抑制剤が配合されたアトピー性皮膚炎、癌及び乾癬から選択される疾患を予防及び/又は治療するための医薬組成物。
(7) 細胞の異常増殖に関連する症状又は疾患を改善するための美容的及び/又は治療的方法であって、細胞の異常増殖に関連する症状又は疾患の予防及び/又は治療が必要な対象に対して、(4)又は(5)に記載の細胞異常増殖抑制剤を適用することを含む方法。
(8) アトピー性皮膚炎、癌及び乾癬から選択される疾患を予防及び/又は治療するための方法であって、該疾患の治療が必要な対象に対して、(4)又は(5)のいずれか1項に記載の細胞異常増殖抑制剤を適用することを含む方法。
(1) 細胞増殖抑制剤をスクリーニングする方法であって、細胞増殖抑制剤の候補物質の存在下でニューロプラスチン(NPTN)とS100A8とをインキュベートし、NPTNとS100A8との結合を阻害する物質を細胞増殖抑制剤として選定することを含んで成る、方法。
(2) 前記S100A8がS100A9と複合体を形成している、(1)に記載の方法。
(3) 前記NPTNがNPTNβである、(1)又は(2)に記載の方法。
(4) ニューロプラスチンβ(NPTNβ)とS100A8又は100A8/A9との結合を阻害する薬剤を含んで成る、細胞増殖抑制剤。
(5) 前記薬剤が、ヨモギ、カンゾウ、ニンジン、チャ、オウゴン及びローズマリーから成る群から選択される植物体又はその抽出物を一種又は二種以上含む、請求項4に記載の細胞増殖抑制剤。
(6) (4)又は(5)に記載の細胞増殖抑制剤が配合されたアトピー性皮膚炎、癌及び乾癬から選択される疾患を予防及び/又は治療するための医薬組成物。
(7) 細胞の異常増殖に関連する症状又は疾患を改善するための美容的及び/又は治療的方法であって、細胞の異常増殖に関連する症状又は疾患の予防及び/又は治療が必要な対象に対して、(4)又は(5)に記載の細胞異常増殖抑制剤を適用することを含む方法。
(8) アトピー性皮膚炎、癌及び乾癬から選択される疾患を予防及び/又は治療するための方法であって、該疾患の治療が必要な対象に対して、(4)又は(5)のいずれか1項に記載の細胞異常増殖抑制剤を適用することを含む方法。
本発明によれば、NPTN(特にNPTNβ)とS100A8との結合の阻害を指標とすることで、細胞増殖抑制剤の探索が可能になる。また、本発明のスクリーニング方法によって得られた細胞増殖抑制剤は、細胞異常増殖に関連する疾患、例えばアトピー性皮膚炎、癌又は乾癬の予防又は治療に有用となる。
ニューロプラスチン(NPTN)
NPTNは、ストロマ細胞由来因子受容体1(SDFR1)又はストロマ細胞由来受容体1(SDR1)とも称され、1回膜貫通型の細胞表面タンパク質であり、神経細胞の分化や細胞接着に関係すると考えられているが、その機能についてはあまり知られていない。NPTNは、2個の免疫グロブリン様ドメインを有するNPTNαと、3個の免疫グロブリン様ドメインを有するNPTNβのイソ型が存在することが知られている。エンプリンと比較したNPTNβの構造を図1に示す。
NPTNは、ストロマ細胞由来因子受容体1(SDFR1)又はストロマ細胞由来受容体1(SDR1)とも称され、1回膜貫通型の細胞表面タンパク質であり、神経細胞の分化や細胞接着に関係すると考えられているが、その機能についてはあまり知られていない。NPTNは、2個の免疫グロブリン様ドメインを有するNPTNαと、3個の免疫グロブリン様ドメインを有するNPTNβのイソ型が存在することが知られている。エンプリンと比較したNPTNβの構造を図1に示す。
本発明のスクリーニング方法は、特に限定されるものではないが、候補物質の存在下NPTN(特にNPTNβ)とS100A8とをインキュベーションし、NPTNとS100A8タンパク質との結合を有意に阻害する候補薬剤を細胞増殖抑制剤として選択することからなる。その評価基準として、例えばNPTNとS100A8タンパク質との結合がコントロールを作用させた場合と比べ10%以上、又は20%以上、又は30%以上、又は50%以上、又は70%以上、又は100%阻害されていたなら慢性炎症又は癌転移を「有意に抑制する」、と判断してよい。
S100A8は、上述のとおりS100A9と複合体を形成していることがあり、この複合体がエンプリンと結合することもある。従って、S100A8/A9複合体を本発明のスクリーニングに用いてもよい。
なお、本発明者らは、このたび、エンプリン、NPTNα及びNPTNβがそれぞれ、ホモ及びヘテロダイマーを形成することを見出した。したがって、本発明のスクリーニングに用いられるNPTNは、ホモダイマーを形成していてもよく、あるいはエンプリン又はNPTNαもしくはNPTNβのいずれかとヘテロダイマーを形成していてもよい。
NPTN(特にNPTNβ)とS100A8との結合の阻害を検出する手段は特に限定されるわけではないが、ELISA法に基づきNPTNとS100A8(又はS100A8/A9)との結合における検量線を作製し、この結合を阻害する分子、すなわち吸光度の低下する分子を細胞増殖抑制剤の候補薬剤として検出することができる。良好な検出感度を確保する観点から、固体支持体に吸着される分子は、分子量が大きいNPTNが好ましい。
S100A8及びA9
S100A8及びA9のアミノ酸配列及びそれをコードするDNA配列は、例えばHum Genet (2002) 111:310-313(非特許文献10)に公開されている。本発明において使用できるS100A8及びA9は、通常ヒト由来の天然型、あるいは組み換えタンパク質であるが、活性を有すれば改変型、異種由来、もしくは非精製品を用いることができる。S100A8及びA9の組換タンパク質は、当業界で周知の方法に従い、例えば単離したまたはPCRにより合成したS100A8又はA9遺伝子 (cDNA) を例えばプラスミド、ウィルス等に挿入して発現ベクターを調製し、これを宿主細胞、例えば微生物、動物細胞又は植物細胞等の培養細胞に導入し、発現させることにより、大量調製することが可能である。
S100A8及びA9のアミノ酸配列及びそれをコードするDNA配列は、例えばHum Genet (2002) 111:310-313(非特許文献10)に公開されている。本発明において使用できるS100A8及びA9は、通常ヒト由来の天然型、あるいは組み換えタンパク質であるが、活性を有すれば改変型、異種由来、もしくは非精製品を用いることができる。S100A8及びA9の組換タンパク質は、当業界で周知の方法に従い、例えば単離したまたはPCRにより合成したS100A8又はA9遺伝子 (cDNA) を例えばプラスミド、ウィルス等に挿入して発現ベクターを調製し、これを宿主細胞、例えば微生物、動物細胞又は植物細胞等の培養細胞に導入し、発現させることにより、大量調製することが可能である。
S100A8は、水や培地、例えば表皮角化細胞の培養に適当な培地、例えば上記EpiLife(登録商標)培地に溶解し、本発明のスクリーニング系に添加する。添加量は、一概には規定できないが1ng/mlから1mg/ml程度、好ましくは10ng/mlから100μg/ml程度、より好ましくは100ng/mlから10μg/ml程度の濃度とする。S100A8又はS100A8/A9の添加は、好ましくは塩化カルシウムの存在下で行う。S100A8又はS100A8/A9の存在下でのインキュベーション時間、インキュベーション温度といった培養条件は特に制限されることはなく、好ましくは30〜37℃で1〜14時間、より好ましくは34〜37℃で2〜7時間、好ましくはCO25%の下でインキュベーションを行う。
本発明の細胞増殖抑制剤は、S100A8又はS100A8/A9に起因する細胞の異常増殖関連疾患、例えばアトピー性皮膚炎、癌、又は乾癬などの予防、治療といった改善等に有効な医薬品又は化粧品として利用できる。
本発明のスクリーニング方法により得られた細胞増殖抑制剤として、ヨモギ、カンゾウ、ニンジン、チャ、オウゴン及びローズマリーから成る群から選択される植物体又はその抽出物が挙げられる。
ヨモギ(学名:Artemisia indica var. maximowiczii)は、日本や朝鮮半島などに分布するキク科の多年草であり、ヨモギの葉は止血作用を有する生薬として知られている。
カンゾウ(学名:Glycyrrhiza)は、地中海地方、小アジア、ロシア南部、中央アジア、中国北部、北アメリカなどに自生するマメ科の多年草であり、根は乾燥させたものは抗炎症作用を有する生薬として知られている。
ニンジンは、原産地は中国及び朝鮮半島を原産とするウコギ科の多年草であるオタネニンジン(学名:Panax ginseng C.A.Meyer)が好ましい。疲労回復や神経細胞活性化、免疫力の増強などの作用を有する生薬として知られている。
チャ(学名:Camellia sinensis)は、日本、中国を原産とするツバキ科ツバキ属の常緑樹であり、チャエキスは、抗酸化作用や抗菌作用を有することが知られている。
オウゴンは、ロシア、中国を原産とするシソ科タツナミソウ属のコガネバナ(学名:Scutellaria baicalensis Georgi)の根であり、鎮痒作用を有する生薬として知られている。
ローズマリー(学名:Rosmarinus officinalis)は、地中海沿岸地方原産で、シソ科に属する常緑性低木であり、ローズマリーエキスは、血行促進作用や抗酸化作用を有することが知られている。
カンゾウ(学名:Glycyrrhiza)は、地中海地方、小アジア、ロシア南部、中央アジア、中国北部、北アメリカなどに自生するマメ科の多年草であり、根は乾燥させたものは抗炎症作用を有する生薬として知られている。
ニンジンは、原産地は中国及び朝鮮半島を原産とするウコギ科の多年草であるオタネニンジン(学名:Panax ginseng C.A.Meyer)が好ましい。疲労回復や神経細胞活性化、免疫力の増強などの作用を有する生薬として知られている。
チャ(学名:Camellia sinensis)は、日本、中国を原産とするツバキ科ツバキ属の常緑樹であり、チャエキスは、抗酸化作用や抗菌作用を有することが知られている。
オウゴンは、ロシア、中国を原産とするシソ科タツナミソウ属のコガネバナ(学名:Scutellaria baicalensis Georgi)の根であり、鎮痒作用を有する生薬として知られている。
ローズマリー(学名:Rosmarinus officinalis)は、地中海沿岸地方原産で、シソ科に属する常緑性低木であり、ローズマリーエキスは、血行促進作用や抗酸化作用を有することが知られている。
これらの植物体又は抽出物のうち、特に、ヨモギエキスはNPTNβとS100A8との結合を有意に阻害することが確認されているため(図8A)、細胞増殖抑制剤の好ましい活性成分であることが予想される。ここで、本発明で使用する各植物の植物体又はその抽出物は、各々の植物体の各種部位(花、花穂、果皮、果実、茎、葉、枝、枝葉、幹、樹皮、根茎、根皮、根、種子又は全草など)をそのまま又は乾燥したものを粉砕して乾燥粉末としたもの、あるいはそのまま又は乾燥・粉砕後、溶媒で抽出したものである。
抽出物の場合、抽出に用いられる抽出溶媒は通常抽出に用いられる溶媒であれば何でもよく、特にメタノール、エタノールあるいは1,3−ブチレングリコール等のアルコール類、含水アルコール類、アセトン、酢酸エチルエステル等の有機溶媒を単独あるいは組み合わせて用いることができ、このうち特に、アルコール類、含水アルコール類が好ましく、特にメタノール、エタノール、1,3−ブチレングリコール、含水エタノールまたは含水1,3−ブチレングリコールが好ましい。また前記溶媒は、室温乃至溶媒の沸点以下の温度で用いることが好ましい。
抽出方法は特に制限されるものはないが、通常、常温から、常圧下での溶媒の沸点の範囲であれば良く、抽出後は濾過又はイオン交換樹脂を用い、吸着・脱色・精製して溶液状、ペースト状、ゲル状、粉末状とすれば良い。更に多くの場合は、そのままの状態で利用できるが、必要ならば、その効果に影響のない範囲で更に脱臭、脱色等の精製処理を加えても良く、脱臭・脱色等の精製処理手段としては、活性炭カラム等を用いれば良く、抽出物質により一般的に適用される通常の手段を任意に選択して行えば良い。
植物体の抽出部位として、ヨモギ及びチャの場合には葉が、カンゾウの場合には根及び茎が、ニンジン及びオウゴンの場合には根が、ローズマリーの場合には葉及び花が考えられるが、抽出部位はこれらに限定されない。
上記溶媒で抽出して得られた抽出物をそのまま、あるいは例えば凍結乾燥などにより濃縮したエキスを使用でき、また必要であれば吸着法、例えばイオン交換樹脂を用いて不純物を除去したものや、ポーラスポリマー(例えばアンバーライトXAD−2)のカラムにて吸着させた後、所望の溶媒で溶出し、さらに濃縮したものも使用することができる。
本発明の細胞増殖抑制剤は、前記植物体又はその抽出物の一種または二種以上からなるものであることが好ましいが、本発明の効果を損なわない範囲において、他の種々の成分を含有することができる。また、本発明の細胞増殖抑制剤は、その使用目的に合わせて用量、用法、剤型を適宜決定することが可能である。例えば、本発明の細胞増殖抑制剤の投与形態は、経口、非経口、外用等であってよい。剤型としては、例えば錠剤、粉剤、カプセル剤、顆粒剤、エキス剤、シロップ剤等の経口投与剤、又は注射剤、点滴剤、若しくは坐剤等の非経口投与剤軟膏、クリーム、乳液、ローション、パック、浴用剤等の外用剤を挙げることができる。
本発明の細胞増殖抑制剤の上記エキス成分の配合量は、用途に応じて適宜決定できるが、一般には阻害剤全量中、乾燥物として0.0001〜20.0質量%、好ましくは0.0001〜10.0質量%である。ヨモギエキス、カンゾウエキス、ニンジンエキス、チャエキス、オウゴンエキス及びローズマリーエキスは濃度依存的に細胞異常増殖を抑制することが考えられる。
また、細胞増殖抑制剤中には、上記薬剤以外に、例えば、通常の食品や医薬品に使用される賦形剤、防湿剤、防腐剤、強化剤、増粘剤、乳化剤、酸化防止剤、甘味料、酸味料、調味料、着色料、香料等、化粧品等に通常用いられる美白剤、保湿剤、油性成分、紫外線吸収剤、界面活性剤、増粘剤、アルコール類、粉末成分、色剤、水性成分、水、各種皮膚栄養剤等を必要に応じて適宜配合することができる。
さらに、本発明の細胞増殖抑制剤を皮膚外用剤として使用する場合、皮膚外用剤に慣用の助剤、例えばエデト酸二ナトリウム、エデト酸三ナトリウム、クエン酸ナトリウム、ポリリン酸ナトリウム、メタリン酸ナトリウム、グルコン酸等の金属封鎖剤、カフェイン、タンニン、ベラパミル、トラネキサム酸及びその誘導体、甘草抽出物、グラブリジン、カリンの果実の熱水抽出物、各種生薬、酢酸トコフェロール、グリチルリチン酸及びその誘導体またはその塩等の薬剤、ビタミンC、アスコルビン酸リン酸マグネシウム、アスコルビン酸グルコシド、アルブチン、コウジ酸等の美白剤、グルコース、フルクトース、マンノース、ショ糖、トレハロース等の糖類、レチノイン酸、レチノール、酢酸レチノール、パルミチン酸レチノール等のビタミンA類なども適宜配合することができる。
以下、具体例を挙げて、本発明を更に具体的に説明する。なお、本発明はこれにより限定されるものではない。
例1.メラノーマ及びケラチノサイトにおけるNPTNの相対発現
定量的PCRは、次のプライマー・セットを用いて行われた。
NPTN-panF: gtaagaatgccagcaacatggagt(配列番号1)
NPTN-panR: gccaactgacttgcaatacatagtgg(配列番号2)
NPTN-betaR: aggatgataatttcagccagaattccc(配列番号3)
NPTNαの定量には、NPTN−panFとNPTN−panR、NPTNβの定量には、NPTN−panFとNPTN−betaRを用いた。得られた値は、G3PDH(G3-F: GGTGAAGGTCGGAGTCAACGGATTTGGTCG(配列番号4), G3-R: TATTGGAACATGTAAACCATGTAGTTGAGG(配列番号5))の発現量をもとに補正して比較した。
用いたcDNAは、2種類のメラノーマ細胞株(SK-MEL-2, SK-MEL-5)、及び分化段階の異なるケラチノサイト(KC80%: 増殖期、KC100%: コンフルエント、KC-Ca: コンフルエント後、1.2 mM カルシウム添加し、さらに2日間培養、KC-Air: コンフルエント後空気暴露15分間、その後さらに2日間培養)から調製した。図2に示されるとおり、メラノーマ及びケラチノサイトのいずれにおいても、NPTNβが主に発現した。
定量的PCRは、次のプライマー・セットを用いて行われた。
NPTN-panF: gtaagaatgccagcaacatggagt(配列番号1)
NPTN-panR: gccaactgacttgcaatacatagtgg(配列番号2)
NPTN-betaR: aggatgataatttcagccagaattccc(配列番号3)
NPTNαの定量には、NPTN−panFとNPTN−panR、NPTNβの定量には、NPTN−panFとNPTN−betaRを用いた。得られた値は、G3PDH(G3-F: GGTGAAGGTCGGAGTCAACGGATTTGGTCG(配列番号4), G3-R: TATTGGAACATGTAAACCATGTAGTTGAGG(配列番号5))の発現量をもとに補正して比較した。
用いたcDNAは、2種類のメラノーマ細胞株(SK-MEL-2, SK-MEL-5)、及び分化段階の異なるケラチノサイト(KC80%: 増殖期、KC100%: コンフルエント、KC-Ca: コンフルエント後、1.2 mM カルシウム添加し、さらに2日間培養、KC-Air: コンフルエント後空気暴露15分間、その後さらに2日間培養)から調製した。図2に示されるとおり、メラノーマ及びケラチノサイトのいずれにおいても、NPTNβが主に発現した。
例2.NPTNsiRNAによるケラチナサイト増殖抑制
NPTNの発現抑制のために、RNAiMaxを用いて、NPTNsiRNA(Santaq Cruz Biotechnology, Inc, Neuroplastin siRNA (h): sc-90193)を、終濃度 20 nMとなるように増殖期の培養ケラチノサイトにトランスフェクションした。コントロールとして、ヒト遺伝子のいずれの部分とも相同性を有していないcontrol siRNA (Santa Cruz Biotechnology, Inc., sc-3707) を使用した。尚、トランスフェクションは、培養培地を増殖因子を含まない基礎培地に交換してから行った。トランスフェクションから24時間後にS100A8、S100A9、S100A8+A9(10 μg/ml)で増殖ケラチノサイトを刺激し、さらに24時間経過後にRNAを採取した。その結果、図3に示すとおり、NPTNsiRNAをトランスフェクションした場合、上記コントロールを用いた場合と比較して、ケラチノサイト増殖が有意に抑制された。
NPTNの発現抑制のために、RNAiMaxを用いて、NPTNsiRNA(Santaq Cruz Biotechnology, Inc, Neuroplastin siRNA (h): sc-90193)を、終濃度 20 nMとなるように増殖期の培養ケラチノサイトにトランスフェクションした。コントロールとして、ヒト遺伝子のいずれの部分とも相同性を有していないcontrol siRNA (Santa Cruz Biotechnology, Inc., sc-3707) を使用した。尚、トランスフェクションは、培養培地を増殖因子を含まない基礎培地に交換してから行った。トランスフェクションから24時間後にS100A8、S100A9、S100A8+A9(10 μg/ml)で増殖ケラチノサイトを刺激し、さらに24時間経過後にRNAを採取した。その結果、図3に示すとおり、NPTNsiRNAをトランスフェクションした場合、上記コントロールを用いた場合と比較して、ケラチノサイト増殖が有意に抑制された。
例3.S100タンパク質と受容体の結合
Mycタグをつけた各S100タンパク質(S100A4, S100A7, S100A8, S100A9, S100A11, S100B)cDNA、HAタグをつけたRAGEcDNA、NPTNcDNA、エンプリンcDNAを、CMVプロモーターを持つベクターに挿入して、発現コンストラクトを作製した。HEK293細胞に、上記のようにトランスフェクトし、48時間後、細胞抽出液を調製した。これらのサンプルをMyc抗体を用いて免疫沈降反応を行った。通常の方法により、ウェスタンブロットを行い、Myc抗体及びHA抗体を用いて検出した。結果を図4A及び図4Bに示す。
Mycタグをつけた各S100タンパク質(S100A4, S100A7, S100A8, S100A9, S100A11, S100B)cDNA、HAタグをつけたRAGEcDNA、NPTNcDNA、エンプリンcDNAを、CMVプロモーターを持つベクターに挿入して、発現コンストラクトを作製した。HEK293細胞に、上記のようにトランスフェクトし、48時間後、細胞抽出液を調製した。これらのサンプルをMyc抗体を用いて免疫沈降反応を行った。通常の方法により、ウェスタンブロットを行い、Myc抗体及びHA抗体を用いて検出した。結果を図4A及び図4Bに示す。
例4.表皮におけるS100A8とNPTNの局在
1)免疫染色
メラノーマの患者組織を、4%パラフォルムアルデヒドで固定後、パラフィンに包埋し、4μmの切片を作製した。キシレンで脱パラフィン後、イムノブロック(DSファーマバイオメディカル株式会社、Cat. No. KN001A)を用いて非特異的抗体の結合をブロックした上で、一次抗体(anti-S100A8抗体:SC8112, Santaq Cruz Biotechnology, Inc, 及び、Anti-Neuroplastin/SDFR1 (N-term), ACRIS Antibodies [メーカー型番]AP31309PU-N)と1時間37℃で反応させ、洗浄後、二次抗体(Molecular Probe社、Alexa Fluor 594 anti-rabbit, A-21207、Alexa Fluor 488、A-21467)と反応させ、蛍光顕微鏡(Olympus, BX51)で観察した。
同様に、アトピー性皮膚炎病変部からもバイオプシーを行い、上記と同様に染色し、S100A8とNPTNの局在を観察した。
その結果、S100A8及びNPTNは、メラノーマ組織及びアトピー性皮膚炎病変部組織上で同一局在を示した(図5A及び図5B)。
1)免疫染色
メラノーマの患者組織を、4%パラフォルムアルデヒドで固定後、パラフィンに包埋し、4μmの切片を作製した。キシレンで脱パラフィン後、イムノブロック(DSファーマバイオメディカル株式会社、Cat. No. KN001A)を用いて非特異的抗体の結合をブロックした上で、一次抗体(anti-S100A8抗体:SC8112, Santaq Cruz Biotechnology, Inc, 及び、Anti-Neuroplastin/SDFR1 (N-term), ACRIS Antibodies [メーカー型番]AP31309PU-N)と1時間37℃で反応させ、洗浄後、二次抗体(Molecular Probe社、Alexa Fluor 594 anti-rabbit, A-21207、Alexa Fluor 488、A-21467)と反応させ、蛍光顕微鏡(Olympus, BX51)で観察した。
同様に、アトピー性皮膚炎病変部からもバイオプシーを行い、上記と同様に染色し、S100A8とNPTNの局在を観察した。
その結果、S100A8及びNPTNは、メラノーマ組織及びアトピー性皮膚炎病変部組織上で同一局在を示した(図5A及び図5B)。
2)アトピー皮膚におけるS100A8とNPTNの相互作用の証明
S100A8とNPTNとが、単に結合しているだけでなく、実際に相互作用していることをPLA(Proximity Ligation Assay) 法により確認した。PLA法によれば、DNAプローブで標識された2種類の抗体を用い、蛍光色素をラベルした相補的DNAをハイブリダイズさせることで、それらのタンパク質が相互作用しているか否かを明らかにすることができる。PLA法は、通常の免疫染色と比較してはるかに高感度である。
Olink社のDuolink in situ PLAキットを用い、相互作用試験を行った。アトピー患者から得られた患部皮膚組織を、4% パラホルムアルデヒドで固定後、通常の方法でパラフィンに包埋した。4 μmで細切後、キシレン処理、エタノール処理を経てPBSにて洗浄し、ブロッキング後、一次抗体(抗S100A8 抗体:Calgranulin A [C-19、sc-8112][ Santa Cruz Biotechnology]、抗ニューロプラスチン抗体:AP31309PU-N [Acris Antibodies, Inc.])と4℃で一晩反応させた。PBSで洗浄後、PLAプローブ(anti-goat PLUS, anti-rabbit MINUS [OLINK Bioscience])と、37℃で2時間反応させた。
洗浄後、DNAプローブとハイブリダイゼーションを行い、TBS−Tで洗浄し、リガーゼを加えて37℃で15分インキュベートし、プローブを融合させた。ポリメラーゼを加え、37℃で90分インキュベートし、ライゲートしたDNAプローブの増幅を行った。Detection kit 613 (Olink社) を用いて蛍光色素をラベルし、顕微鏡観察を行った。その結果、S100A8とNPTNはアトピー性皮膚炎患部表皮の上層及び顆粒層付近で強い相互作用を有することが確認された(図6)。
S100A8とNPTNとが、単に結合しているだけでなく、実際に相互作用していることをPLA(Proximity Ligation Assay) 法により確認した。PLA法によれば、DNAプローブで標識された2種類の抗体を用い、蛍光色素をラベルした相補的DNAをハイブリダイズさせることで、それらのタンパク質が相互作用しているか否かを明らかにすることができる。PLA法は、通常の免疫染色と比較してはるかに高感度である。
Olink社のDuolink in situ PLAキットを用い、相互作用試験を行った。アトピー患者から得られた患部皮膚組織を、4% パラホルムアルデヒドで固定後、通常の方法でパラフィンに包埋した。4 μmで細切後、キシレン処理、エタノール処理を経てPBSにて洗浄し、ブロッキング後、一次抗体(抗S100A8 抗体:Calgranulin A [C-19、sc-8112][ Santa Cruz Biotechnology]、抗ニューロプラスチン抗体:AP31309PU-N [Acris Antibodies, Inc.])と4℃で一晩反応させた。PBSで洗浄後、PLAプローブ(anti-goat PLUS, anti-rabbit MINUS [OLINK Bioscience])と、37℃で2時間反応させた。
洗浄後、DNAプローブとハイブリダイゼーションを行い、TBS−Tで洗浄し、リガーゼを加えて37℃で15分インキュベートし、プローブを融合させた。ポリメラーゼを加え、37℃で90分インキュベートし、ライゲートしたDNAプローブの増幅を行った。Detection kit 613 (Olink社) を用いて蛍光色素をラベルし、顕微鏡観察を行った。その結果、S100A8とNPTNはアトピー性皮膚炎患部表皮の上層及び顆粒層付近で強い相互作用を有することが確認された(図6)。
例5.EPTNβ−S100A8 ELISA スクリーニング
phCMV−FSRTMベクター(Genlantis, San Diego, CA) に、膜貫通ドメイン及び、細胞内ドメインを欠損させた、Hisタグつき、ソリュブル・ニューロプラスチン(sol-NPTN, 1-338AA)を挿入し、HEK293細胞に導入した。48時間後、細胞抽出液を調製し、ニッケルカラムにより、sol−NPTNを精製した。sol−NPTN(PBS100 ml中2 μg/ml)を96−ウェルプレートの各ウェルに分注し、4℃で一晩放置し、sol−NPTNを固相化した。5%BSAでブロッキング後、250ng/mlの100A8及び披見物質を添加し(全100 μl)、37℃、1時間インキュベートし、PBS−Tweenで4回洗浄後、ウサギ抗S100A8抗体と37℃、1時間反応させた。洗浄後、HRP-conjugated anti-Rabbit Fab (GE Healthcare)と37℃、1時間反応させた後、TMB Peroxydase EIA substrate kit (Bio-Rad)を用いて発色させ、630nmで測定した。結合阻害は、S100A8のみ添加した場合の吸光度を100%として、これ以下の場合を阻害活性の持つと判定した。その結果、ヨモギエキス、カンゾウエキス、ニンジンエキス、チャエキス、オウゴンエキス及びローズマリーエキスに強い阻害活性が示された(図7A及び図7B)。
phCMV−FSRTMベクター(Genlantis, San Diego, CA) に、膜貫通ドメイン及び、細胞内ドメインを欠損させた、Hisタグつき、ソリュブル・ニューロプラスチン(sol-NPTN, 1-338AA)を挿入し、HEK293細胞に導入した。48時間後、細胞抽出液を調製し、ニッケルカラムにより、sol−NPTNを精製した。sol−NPTN(PBS100 ml中2 μg/ml)を96−ウェルプレートの各ウェルに分注し、4℃で一晩放置し、sol−NPTNを固相化した。5%BSAでブロッキング後、250ng/mlの100A8及び披見物質を添加し(全100 μl)、37℃、1時間インキュベートし、PBS−Tweenで4回洗浄後、ウサギ抗S100A8抗体と37℃、1時間反応させた。洗浄後、HRP-conjugated anti-Rabbit Fab (GE Healthcare)と37℃、1時間反応させた後、TMB Peroxydase EIA substrate kit (Bio-Rad)を用いて発色させ、630nmで測定した。結合阻害は、S100A8のみ添加した場合の吸光度を100%として、これ以下の場合を阻害活性の持つと判定した。その結果、ヨモギエキス、カンゾウエキス、ニンジンエキス、チャエキス、オウゴンエキス及びローズマリーエキスに強い阻害活性が示された(図7A及び図7B)。
Claims (6)
- 細胞増殖抑制剤をスクリーニングする方法であって、細胞増殖抑制剤の候補物質の存在下でニューロプラスチン(NPTN)とS100A8とをインキュベートし、NPTNとS100A8との結合を阻害する物質を細胞増殖抑制剤として選定することを含んで成る、方法。
- 前記S100A8がS100A9と複合体を形成している、請求項1に記載の方法。
- 前記NPTNがNPTNβである、請求項1又は2に記載の方法。
- ニューロプラスチンβ(NPTNβ)とS100A8又は100A8/A9との結合を阻害する薬剤を含んで成る、細胞増殖抑制剤。
- 前記薬剤が、ヨモギ、カンゾウ、ニンジン、チャ、オウゴン及びローズマリーから成る群から選択される植物体又はその抽出物を一種又は二種以上含む、請求項4に記載の細胞増殖抑制剤。
- 請求項4又は5に記載の細胞増殖抑制剤が配合されたアトピー性皮膚炎、癌及び乾癬から選択される疾患を予防及び/又は治療するための医薬組成物。
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JP2016056175A (ja) * | 2014-09-10 | 2016-04-21 | 株式会社東洋新薬 | 黒生姜含有PPARγ発現促進組成物 |
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WO2007043869A1 (en) * | 2005-10-12 | 2007-04-19 | Erasmus University Medical Center Rotterdam | Method to diagnose or screen for inflammatory diseases |
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2013
- 2013-09-18 WO PCT/JP2013/075191 patent/WO2014046143A1/ja active Application Filing
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