JP2009533453A - 甲状腺ホルモン類似体、アンタゴニストおよびそれらの製剤のためのナノ粒子およびポリマー製剤 - Google Patents

Abstract

被験体における血管新生を促進または阻害するために有効な量のポリマーナノ粒子系の甲状腺ホルモンアゴニスト、その部分アゴニストまたはアンタゴニストを投与することを含む、血管新生に関連した状態を有する被験体の治療方法を開示する。ポリマー形の甲状腺ホルモンまたは甲状腺ホルモン類似体の組成物も開示する。本発明の方法によって治療可能な状態の例は、本明細書中で提供しており、閉塞性血管疾患、冠疾患、勃起機能不全、心筋梗塞、虚血、卒中、末梢動脈血管疾患、脳血管性、四肢虚血および創傷を挙げることができる。

Description

発明の分野
本発明は、ナノ粒子およびポリマーコンジュゲート形の甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体およびそれらの誘導体に関する。そうした化合物およびそれらを含有する医薬組成物の使用方法も開示する。本発明は、そうした化合物の調製方法、ならびに持続放出性で長期残留性の眼科用製剤およびその調製プロセスにも関する。

発明の背景
甲状腺ホルモン、例えば、Ｌ−チロキシン（Ｔ４）および３，５，３’−トリヨード−Ｌ−チロニン（Ｔ３）およびそれらの誘導体、例えばＧＣ−１、ＤＩＴＰＡ、ＴＥＴＲＡＣおよびＴＲＩＡＣは、脊椎動物の種々の組織における多数の異なる生理プロセスを調節する。甲状腺ホルモンの作用の多くが甲状腺ホルモン受容体（「ＴＲ」）によって媒介されることは、以前から知られていた。甲状腺ホルモン（Ｌ−チロキシン、Ｔ４；Ｔ３）の新規細胞表面受容体は、インテグリンαＶβ３で説明されている。この受容体は、そのインテグリンのＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）認識部位にまたはその近くに存在する。αＶβ３受容体は、核甲状腺ホルモン受容体（ＴＲ）のホモログではないが、この細胞表面受容体の活性化は、創傷治癒のヒト皮膚線維芽細胞単層モデルにおけるインビトロでのホルモンおよび線維芽細胞移動について最近報告された血管新生促進作用をはじめとする、多数の核媒介事象を生じさせる。

テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）は、Ｔ_４の脱アミノ化類似体であり、これは、インテグリンに対してアゴニスト活性を有さないが、インテグリンによるＴ_４とＴ_３の結合、およびαＶβ３に対するアゴニスト甲状腺ホルモン類似体の血管新生促進作用を阻害する。甲状腺ホルモンの血管新生作用の阻害は、ニワトリ漿尿膜（ＣＡＭ）モデルにおいて、およびヒト皮膚微小血管内皮細胞（ＨＤＭＥＣ）を含む血管出芽モデルにおいて証明されている。甲状腺ホルモンが不在の場合、ＴＥＴＲＡＣは、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ、ＦＧＦ２）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）および他の血管新生促進性ペプチドの血管新生活性を遮断する。ＴＥＴＲＡＣは、ＣＡＭおよびＨＤＭＥＣモデルにおいて有効である。ＴＥＴＲＡＣのこの阻害作用は、血管新生促進性ペプチド作用に関係のあるＲＧＤ認識部位に対するその影響を反映していると考えられる。

甲状腺ホルモンが主として細胞核外で作用し得るという根拠は、Ｔ３またはＴ２へのミトコンドリアの応答に関する研究、細胞膜でのこのホルモンの迅速に開始さえる効果、および細胞質タンパク質に対する作用から来ている。インテグリンαＶβ３上の甲状腺ホルモンの原形質膜受容体についての最近の説明は、Ｎａ＋／Ｈ＋交互輸送機構などの膜イオンポンプに対するホルモンの効果への何らかの識見をもたらし、血管新生および一定の腫瘍細胞の増殖などの重要な細胞または組織プロセスの根底にある膜甲状腺ホルモン受容体と核事象の接点の説明に至った。

甲状腺ホルモンの循環レベルは比較的安定しており、従って、新生血管形成に対するまたは細胞増殖に対するまたは膜イオンチャネルに対する甲状腺ホルモンの膜で開始される作用−ならびに、勿論、上で述べたＴＲにより媒介されるホルモンの遺伝子発現効果−は、「基礎活性」、すなわち無損傷器官におけるこれらのプロセスの設定点、の一因になると考えることができる。甲状腺ホルモンの膜受容体によって媒介される細胞事象の可能性ある臨床有用性は、新生血管形成または腫瘍細胞増殖の関連でのそうした効果（単数または複数）の阻害に存するだろう。実際、本発明者らは、ヨードチロニンの膜受容体をテトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）（その受容体に対するアゴニスト活性を有さないホルモン結合性阻害剤類似体）で遮断することにより、インビトロでの神経膠腫細胞およびヒト乳癌細胞の増殖を阻止することができることを証明した。ＴＥＴＲＡＣは、甲状腺ホルモンの作用へのインテグリン受容体の関与をスクリーニングするために有用なプローブである。

インテグリンαＶβ３は、そのタンパク質のＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）認識部位付近で甲状腺ホルモンに結合し、このＲＧＤ部位は、インテグリンを、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）タンパク質、例えばビトロネクチン、フィブロネクチンおよびラミニン、に連結させるタンパク質−タンパク質相互作用に関与する。標準的なニワトリ血管アッセイにおいて、またはヒト内皮細胞を用いて出芽アッセイにおいてモニターされる血管新生の複雑なプロセスも、細胞表面インテグリン受容体で開始される。このホルモン依存性プロセスには、ＭＡＰＫ活性化と、血管新生に対する甲状腺ホルモンの効果の下流媒介因子である塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ；ＦＧＦ２）の生成とが必要である。ＴＥＴＲＡＣは、Ｔ４およびＴ３のこの作用を遮断し、ＲＧＤペプチドおよびＲＧＤペプチドを模倣する小分子も同じである。例えば創傷治癒の際、甲状腺ホルモン類似体の局所適用で望ましい新生血管形成を促進することができる、または腫瘍増殖を支援するものなどの望ましくない血管新生をＴＥＴＲＡＣである程度、弱めることができる可能性がある。

甲状腺ホルモンは、一定の腫瘍細胞系統のインビトロでの増殖を刺激することもできる。マウス神経膠腫細胞系統は、インテグリン受容体で開始されるおよびＭＡＰＫ依存性であるメカニズムによって生理濃度のＴ４に応答して増殖することが証明された。臨床的推論であり得るものでは、軽度甲状腺機能低下をプロピルチオウラシルによって誘導した高度進行型多形成神経膠芽細胞腫（ＧＢＭ）を有する患者の前向き調査が、甲状腺機能正常の対照患者にまさる生存に対する重要な恩恵を示した。本発明者らは、ヒト乳癌細胞ＭＣＦ−７がＴ４に反応して増殖し、そのメカニズムがＴＥＴＲＡＣによって阻害されたことを、２００４年に報告した。Ｃｒｉｓｔｏｆａｎｉｌｌｉらによる最近の後ろ向き（ｒｅｔｒｏｓｐｅｃｔｉｖｅ）臨床分析は、乳癌を発現した甲状腺機能低下症の女性が、対応する甲状腺機能正常対照より晩年にそうなり、ならびに診断時に対照より低浸潤性で小さな病変を有したことを示した。このように、脳腫瘍と乳癌の両方のインビトロモデルに対する甲状腺ホルモンの栄養効果は、臨床的支持を有するようである。

インテグリンαＶβ３で開始されることが知られており、ＭＡＰＫによるホルモンシグナルの伝達を必要とする、甲状腺ホルモンの細胞または組織作用を下に要約する。前記インテグリンは、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）タンパク質から細胞内部に（外側−中）または細胞質および細胞内小器官からＥＣＭ（内側−外）にシグナルを接続する、シグナル伝達タンパク質である。Ｌ−チロキシン（Ｔ４）または３，５，３’−トリヨード−Ｌ−チロニン（Ｔ３）のヘテロ二量体αＶβ３への結合は、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰＫ；ＥＲＫ１／２）の活性化を生じさせる。活性化されたＭＡＰＫ（ホスホＭＡＰＫ、ｐＭＡＰＫ）は、細胞核にトランスロケーションし、そこでトランスアクチベータータンパク質、例えば、甲状腺ホルモン受容体−β１（ＴＲβ１）、エストロゲン受容体−α（ＥＲα）または転写のシグナルトランスデューサーおよびアクチベーター−１α（ＳＴＡＴ１α）、をリン酸化する。その結果として転写される遺伝子には、塩基性線維芽細胞増殖因子（（ｂＦＧＦ）、これは、甲状腺ホルモン誘導血管新生を媒介する）および腫瘍細胞の細胞分裂にとって重要な他の増殖因子などがある。

インテグリンに対するＴ４およびＴ３の作用を阻害するテトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）の能力を下に図示する；ＴＥＴＲＡＣは、インテグリン受容体へのヨードチロニンの結合を遮断する。ここでインテグリンと上皮増殖因子受容体（ＥＧＦＲ）の間のクロストークも示す。細胞表面における甲状腺ホルモンの存在は、ＥＧＦＲがＥＧＦとＴＧＦ−α（ＥＧＦＲに結合する別の増殖因子）を区別することができるように、ＥＧＦＲの機能を改変する。

従って、細胞表面受容体に結合することができるが、その細胞に侵入することができない甲状腺ホルモン類似体が、当該技術分野において必要とされている。前述の再処方されたホルモン類似体は、そのホルモンの細胞内作用を発現しないであろうし、従って、循環血流に吸収されたとしても全身性甲状腺ホルモン類似体作用を有さないであろう。

発明の概要
本発明は、甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体、それらのポリマー形およびナノ粒子形が、細胞膜レベルで作用し、ならびに核甲状腺ホルモン効果とは無関係な血管新生促進特性を有するという発見に、一部、基づく。従って、これらの甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形およびナノ粒子を使用して、様々な疾患を治療することができる。同様に、本発明は、甲状腺ホルモン類似体アンタゴニストが、そうした類似体の血管新生促進効果を阻害し、これらも様々な疾患の治療に使用することができるという発見にも基づく。

従って、１つの態様において、本発明は、血管新生の促進に有効な量のポリマー形の甲状腺ホルモンまたはその類似体をその必要がある被験体に投与することによる、血管新生を促進することによって治療可能な状態を治療するための方法を特徴とする。そうした血管新生を促進することによって治療可能な状態の例は、本明細書中で提供しており、閉塞性血管疾患、冠疾患、勃起機能不全、心筋梗塞、虚血、卒中、末梢動脈血管疾患、脳血管性、四肢虚血および創傷を挙げることができる。

甲状腺ホルモン類似体の例も本明細書中で提供しており、トリヨードチロニン（Ｔ３）
、レボチロキシン（Ｔ４）、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−メチル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−エチル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−トリフェニル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−プロピル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−イソプロピル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−ｔ−ブチル、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）、または３，５−ジヨードサイロプロピオン酸（ＤＩＴＰＡ）、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、およびトリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）を挙げることができる。追加の類似体は、図２０の表Ａ〜Ｄにある。これらの類似体を、ポリビニルアルコール、アクリル酸エチレンコポリマー、ポリ乳酸、またはアガロースにコンジュゲートさせることができる。このコンジュゲーションは、使用されるポリマーに依存して、共有結合または非共有結合による。

１つの実施形態において、甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体、またはそれらのポリマー形は、非経口、経口、直腸内もしくは局所的手段、またはこれらの組み合わせによって投与される。非経口投与方式としては、例えば、皮下、腹腔内、筋肉内または静脈内方式、例えばカテーテルによるもの、が挙げられる。局所投与方式としては、例えば、絆創膏（ｂａｎｄ−ａｉｄ）を挙げることができる。

もう１つの実施形態において、甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体、またはそれらのポリマー形は、微粒子、リポソームまたはポリマーに封入するまたは組み込むことができる。このポリマーとしては、例えば、ポリグリコリド、ポリラクチド、またはこれらのコポリマーを挙げることができる。前記リポソームまたは微粒子は、約２００ナノメートル未満のサイズを有し、１つ以上の非経口経路、または別の投与方式によって投与することができる。もう１つの実施形態において、前記リポソームまたは微粒子は、虚血組織を包囲する毛細血管床に配置することができ、またはカテーテルによって血管内部に適用することができる。

本発明の甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体、またはそれらのポリマー形は、１つ以上の生物活性物質とともに同時投与することもでき、該生物活性物質としては、例えば、増殖因子、血管拡張薬、血液凝固阻止薬、抗ウイルス薬、抗菌薬、抗炎症薬、免疫抑制剤、鎮痛薬、血管形成剤、もしくは細胞接着分子、またはこれらの組み合わせを挙げることができる。１つの実施形態において、前記甲状腺ホルモン類似体またはポリマー形は、１つ以上の生物活性物質の投与前または投与後にボーラス注射として投与される。

増殖因子としては、例えば、トランスフォーミング増殖因子α（「ＴＧＦα」）、トランスフォーミング増殖因子β（「ＴＧＦβ」）、塩基性線維芽細胞増殖因子、血管内皮増殖因子、上皮増殖因子、神経成長因子、血小板由来増殖因子、および血管透過性因子を挙げることができる。血管拡張薬としては、例えば、アデノシン、アデノシン誘導体、またはこれらの組み合わせを挙げることができる。血液凝固阻止薬としては、ヘパリン、ヘパリン誘導体、抗因子Ｘａ、アンチトロンビン、アスピリン、クロピドグレル（ｃｌｏｐｉｄｇｒｅｌ）、またはこれらの組み合わせが挙げられるが、それらに限定されない。

本発明のもう１つの態様において、医療器具を患者に挿入する前にその器具に本発明の甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体、またはそれらのポリマー形をコーティングすることによる、医療器具に沿ってまたは医療器具の周囲で血管新生を促進する方法を提供する。前記コーティング段階は、増殖因子、血管拡張薬、血液凝固阻止薬またはこれらの組み合わせなどの（しかし、これらに限定されない）１つ以上の生物活性物質でのその器具のコーティングをさらに含むことがある。本発明の甲状腺ホルモン類似体またはポリマー形をコーティングすることができる医療器具の例としては、ステント、カテーテル、カニューレまたは電極が挙げられる。

さらなる態様において、本発明は、血管新生の阻害に有効な量の抗血管新生剤をその必要がある被験体に投与することによる、血管新生を阻害することによって治療可能な状態を治療するための方法を提供する。血管新生を阻害することによって治療可能な状態の例としては、原発性または転移性腫瘍、糖尿病性網膜症および関連した状態が挙げられるが、これらに限定されない。本発明は、血管新生を阻害するために使用される抗血管新生剤の例も提供しており、それらとしては、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、トリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）、モノクローナル抗体ＬＭ６０９、ＸＴ １９９またはこれらの組み合わせが挙げられるが、それらに限定されない。こうした抗血管新生剤は、細胞表面で血管新生促進剤を阻害するように作用することができる。

もう１つの態様において、本発明は、一定の癌の主または補助的抗増殖治療に備えている。この治療が可能な癌性状態の例としては、多形性神経膠芽細胞腫、肺癌、非甲状腺性頭頚部癌、甲状腺癌、乳癌および卵巣癌が挙げられるが、これらに限定されない。本発明は、抗増殖作用のために使用される薬剤の例を提供しており、それらとしては、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、トリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）、モノクローナル抗体ＬＭ６０９、ＸＴ １９９９またはこれらの組み合わせが挙げられるが、それらに限定されない。これらの薬剤は、甲状腺ホルモンの細胞表面インテグリン受容体に対して癌細胞増殖を阻害するように作用する。

１つの実施形態において、前記抗血管新生剤は、非経口、経口、直腸内もしくは局所方式、またはこれらの組み合わせによって投与される。もう１つの実施形態において、前記抗血管新生剤は、１つ以上の抗血管新生療法または化学療法薬とともに同時投与することができる。

尚、さらなる態様において、本発明は、ポリマーにコンジュゲートしている甲状腺ホルモンおよび類似体を含む、組成物（すなわち、血管新生性薬剤）を提供する。このコンジュゲーションは、そのポリマーに依存して、共有結合による場合もあり、または非共有結合による場合もある。共有結合は、例えば、エステルまたは無水物結合によって生じ得る。本発明は、甲状腺ホルモン類似体の例も提供し、それらとしては、レボチロキシン（Ｔ４）、トリヨードチロニン（Ｔ３）、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）、または３，５−ジヨードサイロプロピオン酸（ＤＩＴＰＡ）が挙げられる。１つの実施形態において、前記ポリマーとしては、ポリビニルアルコール、アクリル酸エチレンコポリマー、ポリ乳酸、またはアガロースを挙げることができるが、これらに限定されない。

もう１つの態様において、本発明は、医薬的に許容される担体中の本発明の血管新生性薬剤を含む医薬製剤に備えている。１つの実施形態において、本医薬製剤は、１つ以上の医薬的に許容される賦形剤も含むことがある。

本発明の医薬製剤は、リポソーム、マイクロ粒子またはポリマーに封入するまたは組み込むことができる。このリポソームまたはマイクロ粒子は、２００ナノメートル未満のサイズを有する。本発明のいずれの医薬製剤も、非経口、経口、直腸内もしくは局所的手段、またはこれらの組み合わせによって投与することができる。もう１つの実施形態において、本医薬製剤は、その必要がある被験体に、増殖因子、血管拡張薬、血液凝固阻止薬またはこれらの組み合わせをはじめとする（しかし、これらに限定されない）１つ以上の生物活性物質とともに同時投与することができる。

他の態様において、本発明は、ニューロン機能の回復および神経細胞生存増進のための、ポリマー甲状腺ホルモン類似体および前記ホルモンを含有する医薬製剤の使用に関する。本発明のために、ニューロン機能は、胎児および出生後の期間の間に神経系を発達させる、ならびに成体動物の場合、損傷ニューロンの再生メカニズムの基礎であり、そのある程度の部分が変性し、再生できないときには中枢神経系の適応能力の基礎となる、総合的な生理的、生化学的および解剖学的メカニズムを意味すると解釈する。

従って、ニューロン機能を獲得するために、次のプロセスが発生する：除神経、神経再支配、シナプス発生、シナプス抑制、シナプス伸張、軸索の出芽、神経再生、損傷したものと置き換わる神経経路および回路の発生および構成。従って、本発明のポリマー甲状腺ホルモン類似体またはそれらの組み合わせで治療することに適する患者は、中枢神経系の変性病変（老人性痴呆、例えばアルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン舞踏病、小脳−脊髄副腎性白質ジストロフィー）、外傷、および脳虚血に罹患している患者である。

好ましい実施形態において、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症および脊髄損傷をはじめとする運動ニューロン欠損を治療するための本発明の方法は、ポリマー甲状腺ホルモン類似体またはその組み合わせを、投与することおよび増殖因子、神経成長因子、または他の血管新生促進因子もしくは神経新生因子との組み合わせで投与することを含む。脊髄損傷は、腫瘍、機械的損傷および化学的損傷に起因する損傷を包含する。筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症または脊髄損傷を有する哺乳動物において運動機能を回復させるために、この同じまたは類似の方法が考えられる。単独でまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせで上述のポリマー甲状腺ホルモン類似体のうちの１つを投与することにより、予防効果も得られる。こうした投与には、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症または脊髄損傷を有する、または有する危険がある哺乳動物において運動機能を保護する効果がある。また、本発明によると、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の投与により、黒質線状体経路の完全性が保たれる。

具体的には、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症または脊髄損傷を（発症前または発症後に）治療するための本発明の方法は、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の投与を含む。特に好ましい実施形態において、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体を少なくとも１つ含む、可溶性複合体である。

１つの態様において、本発明は、組成物、および治療的処置方法を特徴とし、該方法は、本明細書において定義するとおりの形態形成タンパク質（「単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体」）の治療有効量を、神経経路の維持（損傷した経路の修復またはそこへのさらな損傷の抑制を含む）に十分な時間および濃度で、哺乳動物に、神経経路に損傷を受け次第、またはそうした損傷を見越して、投与することを含む。

もう１つの態様において、本発明は、神経経路を維持するための組成物および治療的処置方法を特徴とする。こうした処置方法は、治療有効濃度の内在性甲状腺ホルモン類似体を刺激する化合物を、神経経路に損傷を受け次第、またはそうした損傷を見越して、哺乳動物に投与することを含む。これらの化合物を、本明細書では、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体と呼び、ならびに哺乳動物に投与したとき、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体を生産する、および／または単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体を分泌することを通常担うかまたはそれらをすることができる組織または器官に対して作用する物質、ならびに単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の内在性レベルを改変させる物質を含むと理解される。

特に、本発明は、神経損傷に対する身体の免疫および炎症反応に関連した組織破壊作用からニューロンを保護するための方法を提供する。本発明は、形質転換されていないニューロンに特有の形態へのニューロン起源の形質転換細胞の再分化を誘導することを含む、ニューロンをそれらの分化表現型を維持するように刺激するための方法も提供する。１つの実施形態において、本発明は、細胞接着分子、特に、神経細胞接着分子（「Ｎ−ＣＡＭ」）の生産を刺激するための手段を提供する。本発明は、損傷した樹状突起および軸索の再生をはじめとする、損傷したニューロンおよび神経経路の細胞修復を刺激するための方法、組成物および器具も提供する。加えて、本発明は、神経組織の状態を評価するため手段、ならびに単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体のレベルの変動をモニターすることによる、神経障害を検出およびモニターするための手段も提供する。

本発明の１つの態様において、本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、末梢神経系の損傷した神経経路を修復する際に有用である。特に、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、離断したまたは別様に損傷した神経線維をはじめとする損傷した神経経路の修復に有用である。具体的に言うと、本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、血管形成および髄鞘の再形成を含めて完全な軸索神経再生を刺激することができる。好ましくは、前記単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、損傷部位に、その単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体をその部位に維持することができる生体適合性、生体吸収性担体および、必要な場合には、切断されたニューロンの近位端から遠位端への軸索成長を指示する手段で供給される。例えば、軸索成長を指示する手段は、神経再生を長距離にわたって、例えば１０ｍｍよりも長く、誘導すべき場合に必要とされ得る。これらの機能を提供することができる多くの担体が考えられる。例えば、有用な担体としては、ラミニン、ヒアルロン酸もしくはコラーゲンまたは他の適する合成、生体適合性ポリマー材料（例えば、ポリ乳酸、ポリグリコール酸もしくはポリ酪酸および／またはこれらのコポリマー）を含む、本明細書に開示するとおり調製された実質的に不溶性の材料または粘稠溶液が挙げられる。好ましい担体は、例えばマウス肉腫細胞から得られた細胞外マトリックス組成物を含む。

特に好ましい実施形態において、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、損傷した経路の距離にわたって神経誘導チャネル内に配置される。このチャネルは、神経突起の保護カバーとしても、神経突起の成長を誘導するための物理的手段としても作用する。有用なチャネルは、修復すべき神経の裂け目に広がるために十分な寸法を有し、切断された神経末端の受け取りに適した開口部を有する、生体適合性膜（これは構造的には管状であり得る）を含む。この膜は、任意の生体適合性、無刺激性材料、例えば、シリコーンまたは生体適合性ポリマー、例えばポリエチレンもしくはポリエチレンビニルアセテートで製造することができる。ケーシングも、例えば、コラーゲン、ヒアルロン酸、ポリ乳酸、ポリ酪酸およびポリグリコール酸をはじめとする、生体適合性、生体吸収性ポリマーから成り得る。好ましい実施形態において、前記チャネルの外面は、実質的に不透過性である。

前記単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、生体適合性担体材料と会合した状態で前記チャネルに配置することができ、あるいは米国特許第５，０１１，４８６号に記載されているものなどのケーシングの内面に吸着させるまたは別様に会合させることができるが、但し、前記単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が切断された神経末端に接近できることを条件とする。

本発明のもう１つの態様において、本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、神経組織の最初の損傷への身体の免疫／炎症反応に関連した傷害に対する防御に有用である。こうした反応は、例えば、自己免疫機能不全、腫瘍性病変、感染、化学的もしくは機械的外傷、疾病に起因する、またはニューロンもしくは神経膠細胞への血流の断絶に起因する、または神経もしくは周囲物質への他の傷害に起因する神経組織への損傷の結果として起こり得る。例えば、塞栓性卒中の場合のような神経血液供給の閉塞の結果として起こる低酸素症または虚血−再潅流に起因する一次傷害は、免疫学的に関連があると考えられる。加えて、多数の原発性脳腫瘍に随伴する傷害の少なくとも一部も免疫学的に関係があるようである。単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の直接または全身適用は、神経損傷への免疫関連反応を軽減および／または抑制する。あるいは、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子の発生との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体のインビボでの、好ましくは損傷部位での、発現および／または分泌を刺激することができる薬剤の投与も用いることができる。外科手術または他の攻撃的臨床処置中のような、損傷を誘導しなければならない場合、その損傷の誘導前に、前記単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体または薬剤を供給して、危険な状態にある神経組織に神経保護をもたらすことができる。

一般に、本発明の方法および組成物において有用な単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、１つ以上の真核（例えば、哺乳動物）細胞、組織または器官の形態形成を誘導する二量体タンパク質である。組織形態形成は、成長中の脊椎動物胎児において発生するものなどの新規または再生組織形成を含む。少なくとも骨または神経組織の組織特異的形態形成を誘導する、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、特に興味深い。本明細書において定義する、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、フォールディングされたとき、甲状腺受容体を提示する細胞および組織において形態形成反応を惹起する二量体タンパク質を形成する、一対のポリペプチドを含む。すなわち、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、一般に、形態形成許容環境において次のものすべてを含む事象のカスケードを誘導する：前駆細胞の増殖の刺激；前駆細胞の分化の刺激；ならびに分化細胞の増殖および維持の支援。「前駆」細胞は、それらのゲノムレパートリーと、形態形成を誘導するその許容環境の組織特異性とに依存して１つ以上の特定のタイプの分化細胞に分化する能力がある、コミットメントされていない（ｕｎｃｏｍｍｉｔｔｅｄ）細胞である。具体例としての前駆細胞は、造血幹細胞、間葉幹細胞、表皮基底細胞、神経堤細胞などである。さらに、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、老化または休止に関連した表現型および／または組織機能喪失の発生を遅らせるまたは緩和することができる。尚、さらに、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、それらの代謝特性および／または機能特性、例えば分泌特性の発現をはじめとする、分化細胞タイプの表現型の発現を刺激することができる。加えて、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、適切な条件下で、コミットメントされた細胞（例えば、骨芽細胞、神経芽細胞など）の再分化を誘導することができる。上で述べたように、少なくとも骨もしくは神経組織の増殖および／もしくは分化を誘導する、ならびに／または神経組織の増殖、維持および／もしくは機能特性を支援する、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が、ここでは特に興味深い。

哺乳動物の特定の組織に供給されたとき、組織特異的形態形成を誘導する、またはその組織の正常な分化および増殖状態を維持する、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、特に興味深い。好ましい実施形態において、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、神経、目、骨、軟骨、骨髄、靭帯、歯の象牙質、歯周組織、肝臓、腎臓、肺、心臓または胃腸内層などの（しかし、これらに限定されない）脊椎動物（例えば、鳥類または哺乳類）体組織の形成を誘導する。好ましい方法は、胚組織の発生に関連して、または出生後組織における無菌、非瘢痕性創傷部位で行うことができる。

本発明の他の態様は、例えばアルツハイマー病などの神経変性疾患のイメージングおよび診断のための、甲状腺ホルモン類似体およびそれらのポリマーを使用する組成物および方法を含む。例えば、１つの態様において、本発明は、被験体にインビボで投与されたとき、ターゲット部位に対する高い特異性を有するＴ４類似体を特徴とする。好ましいＴ４類似体は、少なくとも４：１のターゲット対非ターゲット比を示し、インビボで安定であり、ならびに投与後１時間以内にターゲットに実質的に集中する。もう１つの態様において、本発明は、単一光子放射（「ＳＰＥＣＴ」）を用いるガンマ線イメージングのためのテクネチウム、インジウムのために、およびＭＲＩイメージングのための造影剤とともに、Ｔ４類似体に取り付けたリンカーから成る医薬組成物を特徴とする。加えて、ＴＴＲに結合するハロゲン化類似体は、アミロイド線維の形成を阻害することができ、それ故、アルツハイマー病の予防および治療に利用することができる。こうした化合物は、陽電子放射断層撮影（「ＰＥＴ」）イメージング法に伴って使用することもできる。

他の態様において、本発明は、細胞表面受容体をインテグリンαＶβ３またはアミノ酸配列Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（「ＲＧＤ」）を含有する他の細胞表面受容体の周りに密集させる増殖因子および他のポリペプチドの作用を修飾する組成物および方法も含む。修飾することができるポリペプチドとしては、例えば、インスリン、インスリン様成長因子、上皮増殖因子、およびインターフェロン−γが挙げられる。

本発明の１つ以上の実施形態の詳細は、下の付随する説明に示した。本明細書に記載するものと同様または等価の任意の方法および材料を本発明の実施または試験の際に用いることができるが、好ましい方法および材料を、今、説明する。本発明の他の特徴、目的および利点は、その説明およびクレームから明らかになるだろう。本明細書および添付のクレームにおいて、その文脈が明らかに別様に命じていない限り、単数形は、複数形を包含する。別様に定義していない限り、本明細書において用いるすべての専門および科学用語は、本発明が属する技術分野の通常の技術者によって一般に理解されているのと同じ意味を有する。本明細書に引用するすべての特許および出版物は、それら全体が参考として援用される。

発明の詳細な説明
細胞表面で作用する甲状腺ホルモン分子の新規クラスを本明細書で開示し、これを「サイロ−インテグリン分子」と呼ぶ。これらの分子は、細胞表面の受容体を選択的に活性化する。甲状腺ホルモンは、血管新生促進性であって、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰＫ／ＥＲＫ１／２）および線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ２）依存性であるメカニズムによって作用する。

腫瘍細胞に対するこのホルモンの効果は、インテグリンａＶｂ３上の新規細胞表面受容体によって媒介される。甲状腺ホルモンが、細胞の原形質膜に局在するこの受容体によって作用するという本発明者らの最近の発見は、ポリマーにコンジュゲートした甲状腺ホルモン類似体およびナノ粒子の甲状腺ホルモン類似体がその細胞表面受容体に結合できるが、細胞に侵入することはできないという発見につながった。

細胞内に出入りできず、それ故、その活動がインテグリン受容体に限定されるに違いない、ナノ粒子甲状腺ホルモン類似体およびそれらのポリマーコンジュゲートは、本発明の範囲内である。前記ナノ粒子ホルモン類似体は、ポリリシルグリコール酸（ＰＬＧＡ）誘導体、エステルまたはより安定なエーテル結合型製剤のいずれか、である。アガロース−Ｔ４は、本発明者らがインテグリン受容体に対して十分に活性であることを証明したナノ粒子モデルである。この再処方されたホルモン類似体は、このホルモンの細胞内作用を発現せず、それ故、循環血流に吸収されたとしても全身性甲状腺ホルモン類似体作用を有さないであろう。

従って、本発明の分子は、前記受容体を選択的に活性化することができる。この受容体が活性化されると、タンパク質媒介因子の一連の変化が発生し、その結果、核トランスアクチベータータンパク質（例えば、ＳＴＡＴタンパク質、ｐ５３、および核ホルモン受容体のスーパーファミリーのメンバー）の活性を修飾することができるシグナルを生ずる。

甲状腺ホルモンの非ゲノム性作用は、核Ｔ３受容体（ＴＲ）によるホルモンの核内結合とは無関係な作用である。これらの作用は、主として細胞表面で開始される。公知甲状腺ホルモン類似体を合成ポリマーにコンジュゲートさせることにより、細胞表面受容体に対して排他的に作用するが、内因性ホルモンがその細胞に依然として侵入し、ミトコンドリアに対してまたは直接核ＴＲに作用することができる、ホルモンの新規ファミリーを作る。コンジュゲートさせるホルモン類似体に依存して、血管新生または創傷治癒を支援することができ、または腫瘍細胞増殖および血管新生に対する作用に拮抗することができる。

本発明の範囲内の甲状腺ホルモンポリマーコンジュゲートおよびナノ粒子の製剤および使用は、下で詳細に説明する。

定義
便宜上、本明細書、実施例およびクレームにおいて用いる一定の用語をここに集める。特に定義されていなければ、ここで用いるすべての専門および科学用語は、本発明が属する技術分野における通常の技術者が一般に理解しているのと同じ意味を有する。

ここで用いる場合、用語「血管新生性薬剤」は、単独であろうと、別の物質との組み合わせであろうと、血管新生を促進または助長する任意の化合物または物質を包含する。例としては、Ｔ３、Ｔ４、Ｔ３またはＴ４−アガロース、Ｔ３、Ｔ４、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）またはＤＩＴＰＡのポリマー類似体が挙げられるが、これらに限定されない。対照的に、用語「抗血管新生剤」または「抗血管新生性薬剤」は、単独であろうと、別の物質との組み合わせであろうと、血管新生を阻害または防止する任意の化合物または物質を指す。例としては、ＴＥＲＡＣ、ＴＲＩＡＣ、ＸＴ １９９、およびｍＡｂ ＬＭ６０９が挙げられるが、これらに限定されない。

ここで用いる場合、用語「心筋虚血」は、心血管の容量減少に起因する心臓筋への血液供給不足と定義する。ここで用いる場合、用語「冠疾患」は、心筋機能と正常に機能するために十分な血流を供給する冠状血管の能力との不均等に起因する心臓機能の疾患／障害と定義する。本明細書に記載する組成物および方法で治療することができる具体例としての冠疾患／冠疾患に随伴する障害としては、心筋虚血、狭心症、冠動脈瘤、冠血栓、冠血管痙攣、冠動脈疾患、冠動脈性心疾患、冠閉塞および冠狭窄が挙げられる。

ここで用いる場合、「閉塞性末梢血管疾患」（末梢動脈閉塞性疾患としても知られている）は、腸骨動脈をはじめとする頚動脈または大腿動脈における血管疾患関与閉塞である。大腿動脈の閉塞は、疼痛および運動制限の原因となる。閉塞性末梢血管疾患に随伴する具体的な疾患は、結果的に足を切断することが多い、糖尿病患者を襲う糖尿病性足病変である。

ここで用いる場合、用語「血管の再生」、「血管新生」、「血管再建」および「側副血行増加」（またはその影響に対する語）は、同義とみなす。天然または合成物質に言及するときの用語「医薬的に許容される」は、その物質がそのはるかに大きな薬効にかんがみて許容される毒性効果を有することを意味し、一方、関連用語「生理的に許容される」は、その物質が比較的低い毒性を有することを意味する。用語「同時投与」は、２つ以上の薬物を、ほぼ同時にまたはそれらの効果がほぼ同時にもしくは実質的に重なって作動するように近い間隔で、次々に与えることを意味する。これの用語は、同時薬物投与ばかりでなく逐次的投与も包含する。

「医薬的に許容される塩」は、甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体の医薬的に許容される塩を指し、この塩は、当該技術分野において周知の様々な有機および無機対イオンから誘導され、単なる例としては、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、アンモニウム、テトラ−アルキルアンモニウムなどを含み、ならびにその分子が塩基性官能基を含有する場合、有機または無機酸の塩、例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、酒石酸塩、メシル酸塩、酢酸塩、マレイン酸塩、シュウ酸塩などを医薬的に許容される塩として使用することができる。この用語は、酸付加塩と塩基付加塩の両方を包含する。

「医薬的に許容される酸付加塩」は、それらの遊離塩基の生物学的有効性および特性を保持する塩であって、生物学的にまたは別様に望ましくないものでない、ならびに無機酸、例えば塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸など、および有機酸、例えば酢酸、プロピオン酸、ピバル酸、リンゴ酸、マロン酸、コハク酸、フマル酸、酒石酸、クエン酸、安息香酸、マンデル酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸、ｐ−トルエンスルホン酸、サリチル酸など、とで形成される塩を指す。本発明の化合物の特に好ましい塩は、一塩酸塩および二塩化物塩である。

「医薬的に許容される塩基付加塩」は、それらの遊離塩基の生物学的有効性および特性を保持する塩であって、生物学的にまたは別様に望ましくないものでない塩を指す。これらの塩は、無機塩基または有機塩基の遊離酸への付加から作製される。無機塩基から誘導される塩としては、ナトリウム、カリウム、リチウム、アンモニウム、カルシウム、マグネシウム、亜鉛、アルミニウム塩などが挙げられるが、これらに限定されない。好ましい無機塩基は、アンモニウム、ナトリウム、カリウム、カルシウムおよびマグネシウム塩である。有機塩基から誘導される塩としては、第一、第二および第三アミン、置換アミン（天然置換アミンを含む）、環状アミン、および塩基性イオン交換樹脂、例えばイソプロピルアミン、トリメチルアミン、ジエチルアミン、トリエチルアミン、トリプロピルアミン、エタノールアミン、２−ジメチルアミノエタノール、２−ジエチルアミノエタノール、トリメタミン、ジシクロヘキシルアミン、リシン、アルギニン、ヒスチジン、カフェイン、プロカイン、ヒドラバミン、コリン、ベタイン、エチレンジアミン、グルコサミン、メチルグルコサミン、テオブロミン、プリン、ピペラジン、ピペリジン、Ｎ−エチルピペリジン、ポリアミン樹脂などの塩が挙げられるが、これらに限定されない。特に好ましい有機塩基は、イソプロピルアミン、ジエチルアミン、エタノールアミン、トリメチルアミン、ジシクロヘキシルアミン、コリンおよびカフェインである。

「ウレイド」は、式−−Ｎ（Ｈ）−−Ｃ（Ｏ）−−ＮＨ_２のラジカルを指す。

置換アルキル基を含有するラジカルについて、それらに対す任意の置換がそのアルキル基の任意の炭素に対して発生し得ることは、上の定義および例から理解される。本発明の化合物またはそれらの医薬的に許容される塩は、それらの構造内に不斉炭素原子を有する場合がある。従って、本発明の化合物およびそれらの医薬的に許容される塩は、単一エナンチオマー、ジアステレオマー、ラセミ体、およびエナンチオマーとジアステレオマーの混合物であり得る。すべてのこうした単一エナンチオマー、ジアステレオマー、ラセミ体およびそれらの混合物は、本発明の範囲内であると解釈する。分かっている場合には、これらの化合物の一定の炭素原子の絶対配置を適切な絶対記述子ＲまたはＳによって示す。

光学活性出発原料および／もしくは中間体の使用により、または従来の分割技術、例えば酵素的分割もしくはキラルＨＰＬＣ、の使用により、別個のエナンチオマーを作製することができる。

ここで用いる場合、「増殖因子」または「神経形成因子」という語句は、ＣＮＳまたはＰＮＳの細胞に対して成長、増殖、分化または栄養効果を有するタンパク質、ペプチドまたは他の分子を指す。そうした因子は、増殖または分化を誘導するために使用することができ、それらとしては、例えば、細胞の表面の受容体に結合してその細胞に対して栄養または成長誘導効果を発揮する任意の分子を含む、ＣＮＳまたはＰＮＳの細胞を増殖させる任意の栄養因子を挙げることができる。好ましい因子としては、神経成長因子（「ＮＧＦ」）、上皮増殖因子（「ＥＧＦ」）、血小板由来増殖因子（「ＰＤＧＦ」）、インスリン様成長因子（「ＩＧＦ」）、酸性線維芽細胞増殖因子（「ａＦＧＦ」または「ＦＧＦ−１」）、塩基性線維芽細胞増殖因子（「ｂＦＧＦ」または「ＦＧＦ−２」）、ならびにトランスフォーミング増殖因子−アルファおよび−ベータ（「ＴＧＦ−α」および「ＴＧＦ−β」）が挙げられるが、これらに限定されない。

「被験体」は、生きている生物、例えば、ヒト、猿、雌牛（ｃｏｗ）、羊、馬、豚、畜ウシ（ｃａｔｔｌｅ）、山羊、犬、猫、マウス、ラット、それらからの培養細胞、およびそれらのトランスジェニック種を包含する。好ましい実施形態において、被験体はヒトである。治療すべき被験体への本発明の組成物の投与は、その被験体の状態を治療するために有効な投薬量でおよび期間にわたって、公知の手順を用いて行うことができる。治療効果を達成するために必要な治療化合物の有効量は、その被験体の年齢、性別および体重、ならびにその被験体における異物を処理するその治療化合物の能力などの因子に従って変わることがある。投薬レジメンは、最適な治療応答をもたらすように調整することができる。例えば、幾つかの分割用量を毎日投与してもよいし、または治療状況の緊急性により必要とされる場合には比例してその用量を減少させてもよい。

「投与」は、本発明の組成物がそれらの初期の機能を果す、例えば血管新生を促進する、ことができる投与経路を含む。治療すべき疾患または状態に依存して、非経口経路（例えば、静脈内、動脈内、筋肉内、皮下注射）、経口経路（例えば、食事）、局所経路、鼻経路、直腸経路、または徐放性マイクロキャリアによる経路をはじめとする（しかし、必ずしもこれらに限定されない）様々な投与経路が可能である。経口、非経口および静脈内投与が好ましい投与方式である。投与すべき化合物の製剤は、選択される投与経路によって変わるであろう（例えば、溶液、エマルジョン、ゲル、アガロース、カプセル）。投与すべき化合物を含む適切な組成物は、生理的に許容されるビヒクルまたは担体ならびに任意のアジュバントおよび保存薬中で調製することができる。溶液またはエマルジョンに適する担体としては、例えば、水性またはアルコール性／水性の溶液、エマルジョンまたは懸濁液（食塩水および緩衝媒体を含む）、滅菌水、クリーム、軟膏、ローション、油、ペーストおよび固体担体が挙げられる。非経口ビヒクルとしては、塩化ナトリウム溶液、リンガーデキストロース、デキストロースおよび塩化ナトリウム、乳酸加リンガー液または固定油を挙げることができる。静脈内ビヒクルは、様々な添加剤、保存薬、または流体、栄養素もしくは電解質補充液を含むことがある（例えば、一般に、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ，１６ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｍａｃｋ，Ｅｄ．（１９８０）を参照のこと）。

「有効量」は、その所期の機能を果すことができる、例えば、本明細書に記載するような血管新生関連疾患において血管新生を促進または阻害することができる、血管新生促進性または抗血管新生性化合物の量を包含する。前記有効量は、生物活性、年齢、体重、性別、全身の健康状態、治療すべき状態の重症度ならびに適切な薬物動態特性をはじめとする多数の因子に依存するであろう。例えば、活性物質の投薬量は、約０．０１ｍｇ／ｋｇ／日から約５００ｍｇ／ｋｇ／日、有利には約０．１ｍｇ／ｋｇ／日から約１００ｍｇ／ｋｇ／日であり得る。活性物質の治療有効量は、１回量または多数回用量で適切な経路によって投与することができる。さらに、活性物質の投薬量は、その治療または予防状況の緊急性により必要とされる場合には比例して増加または減少させてもよい。

「医薬的に許容される担体」は、本化合物の活性と適合性であり、被験体に生理的に許容される任意のおよびすべての溶媒、分散媒、コーティング、抗菌および抗真菌薬、等張および吸収遅延剤などを包含する。医薬的に許容される担体の一例は、緩衝正常食塩液（０．１５Ｍ ＮａＣｌ）である。医薬活性物質のためのこうした媒質および薬剤の使用は、当該技術分野において周知である。任意の従来の媒質または薬剤が本治療化合物と不相溶性である場合を除き、医薬投与に適する組成物におけるそれらの使用が考えられる。補助的活性化合物も本組成物に組み込むことができる。

「追加の成分」としては、次のうちの１つ以上が挙げられるが、それらに限定されない：賦形剤；界面活性剤；分散剤；不活性希釈剤；造粒および崩壊剤；結合剤；滑沢剤；甘味剤；矯味矯臭剤；着色剤；保存薬；生理的に分解可能な組成物、例えばゼラチン；水性ビヒクルおよび溶媒；油性ビヒクルおよび溶媒；懸濁化剤；分散または湿潤剤；乳化剤、粘滑剤；緩衝剤；塩；増粘剤；充填剤；乳化剤；抗酸化物質；抗生物質；抗真菌薬；安定剤；ならびに医薬的に許容される高分子または疎水性材料。本発明の医薬組成物に含めることができる他の「追加の成分」は、当該技術分野において公知であり、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓに記載されている。

サイロ−インテグリン分子
細胞表面受容体をインテグリンαＶβ３または他のＲＧＤ含有化合物の周りに密集させるポリペプチドの作用を修飾する際の甲状腺ホルモン、アガロースおよびポリマーコンジュゲーションの役割
細胞表面で作用する甲状腺ホルモン分子の新規クラスを本明細書で開示し、これを「サイロ−インテグリン分子」と呼ぶ。これらの分子は、インテグリンαＶβ３で説明されている甲状腺ホルモン（Ｌ−チロキシン、Ｔ４；Ｔ３）の細胞表面受容体を選択的に活性化する。これらの受容体は、このインテグリンのＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）認識部位にまたは付近に存在する。αＶβ３受容体は、核甲状腺ホルモン受容体（ＴＲ）のホモログではないが、この細胞表面受容体の活性化は、前記ホルモンの最近報告された血管新生促進作用および創傷治癒のヒト皮膚線維芽細胞単層モデルにおけるインビトロでの線維芽細胞移動をはじめとする多数の核媒介事象を生じさせる。

インテグリンαＶβ３は、アミノ酸配列Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（「ＲＧＤ」）を含有する幾つかの細胞外マトリックスタンパク質リガンドを有するヘテロ二量体原形質膜タンパク質である。精製インテグリンを使用して、本発明者らは、インテグリンαＶβ３がＴ４に結合すること、およびこの相互作用がαＶβ３アンタゴニストによって乱されることを発見した。放射リガンド結合研究により、精製αＶβ３は、高親和性（ＥＣ５０、３７１ｐＭ）でＴ４に結合すること、およびＴ３より優先的にＴ４に結合するようであることが判明した。これは、Ｔ３と比較して、Ｔ４によるＭＡＰＫ活性化および核移行ならびにホルモン誘導血管新生を証明する以前の報告と一致する。インテグリンαＶβ３アンタゴニストは、インテグリンへのＴ４の結合を阻害し、および重要なこととして、ＭＡＰＫシグナリングカスケードのＴ４による活性化を防止する。インテグリンαＶβ３アンタゴニストによる甲状腺ホルモンのＭＡＰＫ依存性血管新生促進作用の阻害とともに、そのインテグリンへのホルモン結合のこの機能的帰結−−ＭＡＰＫ活性化−−によって、本発明者らが、そのインテグリン上のヨードチロニン結合部位を受容体と説明することができる。３−ヨードチロナミン、甲状腺ホルモン誘導体、は、微量のアミン受容体（ＴＡＲ Ｉ）に結合するが、興味深いことにこの類似体の作用はＴ４およびＴ３のものと正反対であるとＳｃａｌａｎらによって、最近、証明されたことに留意しなければならない。

インテグリンの伝統的なリガンドは、タンパク質である。小分子、甲状腺ホルモンもインテグリンのリガンドでもあることは、新たな発見である。本発明は、レスベラトロール（多少のエストロゲン活性を有するポリフェノール）がインテグリンαＶβ３に結合し、甲状腺ホルモンのこの結合の結果として生ずるものとは異なる機能的細胞結果（アポトーシス）となることも開示する。Ｔ４が結合するインテグリンの部位は、そのヘテロ二量体インテグリンのＲＧＤ結合溝であるか、その付近である。しかし、αＶβ３は、そのタンパク質の別の場所でＴ４に結合することもあり得、ならびにＴＥＴＲＡＣによるまたはＲＧＤ含有ペプチドによるＲＧＤ認識部位の占有によって、Ｔ４結合部位が遮断されること、またはＴ４部位を利用できなくするインテグリン内の配座変化が生じることもあ得る。

従って、星状膠細胞のラミニン−インテグリン相互作用のＴ４による修飾は、インテグリンへのホルモンの結合の結果であり得る。それ故、細胞の外面で、甲状腺ホルモンは、ラミニンに加えて細胞外マトリックスタンパク質のインテグリンαＶβ３による配位に影響を及ぼし得るという可能性が存在する。

メカニズムの点で非ゲノム的であるＴ４の作用は、近年、十分に実証されている。多数のこれらの活性がＭＡＰＫによって媒介される。本発明者らは、プロテインキナーゼＣの活性化をはじめとする甲状腺ホルモンによるＭＡＰＫカスケードの活性化における初期段階が、ＧＴＰγＳおよび百日咳毒素に対して感受性であること（これは、甲状腺ホルモンの原形質膜受容体がＧタンパク感受性であることを示す）を証明した。インテグリンαＶβ３によって媒介される一定の細胞機能がＧタンパクにより修飾されることが他の者によって証明されていることに留意しなければならない。例えば、ＲＧＤ結合ドメインの部位特異的突然変異は、Ｇ_０を活性化するヌクレオチド受容体Ｐ２Ｙ２の能力を完全に破壊するが、Ｇ_ｑの活性化は影響を受けない。Ｗａｎｇらは、インテグリン会合タンパク質（ＩＡＰ／ＣＤ４７）が、ＭＡＰＫ活性化のＧ_ｉ媒介阻害により平滑筋細胞移動を誘導することを立証した。

インテグリンαＶβ３によるＴ４および他の類似体の結合を特定の細胞内シグナル伝達経路の活性化に結びつけることに加えて、本発明は、このインテグリンによるホルモンの配位が、ＭＡＰＫ依存性血管新生のＴ４による誘導にとって極めて重要であることも開示する。ＣＡＭモデルにおいて、Ｔ４治療の４８〜７２時間後に有意な血管成長が発生し、これは、Ｔ４の原形質膜効果が、複雑な転写変化を生じさせ得ることを示している。従って、このホルモンの非ゲノム性作用として開始されるもの−−細胞表面Ｔ４シグナルの伝達−−は、新生血管形成を生じさせる結果となるそのホルモンのゲノム性効果との接点を有する。甲状腺ホルモンの非ゲノム性作用とゲノム性作用の接点は、以前に記載されている（例えば、Ｔ４により細胞表面で開始され、そして結果的にコリプレッサータンパク質のＴＲによる放出およびコアクチベーターの動員を生じさせる、ＴＲβ１のＳｅｒ−１４２でのＭＡＰＫ依存性リン酸化）。本発明は、Ｔ４が、ＲＧＤペプチドによって開始されるＭＡＰＫ依存性メカニズムによるＣ−６神経膠細胞の増殖を刺激すること、および本発明者らがＲＧＤペプチドによって阻害可能であると現在既知のプロセスによって、甲状腺ホルモンが、ＭＣＦ−７細胞において核エストロゲン受容体（ＥＲα）のＭＡＰＫ媒介セリンリン酸化を生じさせることも開示する。幾つかの細胞系統におけるこれらの発見は、すべて、甲状腺ホルモンへの細胞の機能的応答への前記インテグリンの関与を支持している。

甲状腺ホルモンの膜受容体としてのαＶβ３の同定は、このインテグリンとこのホルモンの相互作用の臨床的有意性、および下流の血管新生という帰結を示す。例えば、αＶβ３は、多くの腫瘍において過剰発現され、この過剰発現は、腫瘍浸潤および増殖において１つの役割を果すようである。甲状腺ホルモンに比較的一定した循環レベルは、腫瘍関連血管新生を助長し得る。ここでおよび他の箇所でＣＡＭモデルにおけるＴ４の血管新生促進作用を立証することに加えて、本発明は、ヒト皮膚微小血管内皮細胞が甲状腺ホルモンに曝露されたときに新たな血管を形成することも開示する。腫瘍細胞の周囲へのαＶβ３アンタゴニストまたはＴＥＴＲＡＣの局所送達は、甲状腺ホルモン刺激血管新生を阻害し得る。ＴＥＴＲＡＣは、甲状腺ホルモンの生物活性の多くを欠くが、一定の細胞内に出入りする。ＴＥＴＲＡＣまたは特定のＲＧＤアンタゴニストの非免疫原性物質（アガロースまたはポリマー）への固着は、それらの化合物が原形質膜を横断する可能性を排除するが、本明細書において示すように、Ｔ４誘導血管新生を防止する能力を維持する。従って、本研究において使用したアガロース−Ｔ４は、特定の細胞効果を有するが、その細胞内に出入りしない、甲状腺ホルモン類似体の新規ファミリーの基本型である。

従って、本明細書における実施例は、インテグリンαＶβ３を、甲状腺ホルモン（Ｌ−チロキシン、Ｔ４）の細胞表面受容体と、および細胞内シグナリングカスケードのＴ４誘導活性化の開始部位と、認定する。αＶβ３は、放射性標識Ｔ４に高い親和性で解離不能に結合し；放射リガンド結合は、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、αＶβ３抗体によって、およびインテグリンＲＧＤ認識部位ペプチドによって置換される。ＣＶ−１細胞には、核甲状腺ホルモン受容体がないが、原形質膜αＶβ３を有し；生理濃度のＴ４でのこれらの細胞の処理は、ＭＡＰＫ経路を活性化する（ＴＥＴＲＡＣ、ＲＧＤペプチドおよびαＶβ３抗体によって阻害される効果）。そのインテグリンへのＴ４結合の阻害は、Ｔ４のＭＡＰＫ媒介血管新生促進作用も遮断する。ＭＡＰＫのＴ４誘導リン酸化は、αＶおよびβ３のｓｉＲＮＡノックダウンによって阻害される。これらの発見は、Ｔ４が、ＲＧＤ認識部位の近くでαＶβ３に結合することを示し、ならびにαＶβ３へのホルモンの結合が、生理的影響を有すること示す。

本発明の組成物は、甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体およびそれらのポリマー形が、細胞膜レベルで作用し、ならびに核甲状腺ホルモン効果とは無関係である血管新生促進特性を有するという発見に、一部、基づく。従って、これらの甲状腺ホルモン類似体およびポリマー形（すなわち、血管新生性薬剤）を使用して、様々な疾患を治療することができる。同様に、本発明は、甲状腺ホルモン類似体アンタゴニストが、そうした類似体の血管新生促進効果を阻害し、それらも様々な疾患の治療に使用することができるという発見にも基づく。それ故、これらの組成物および使用方法を下で詳細に説明する。

組成物
甲状腺ホルモン、その類似体、ポリマーコンジュゲーションならびに前記ホルモンおよびそれらの類似体のナノ粒子を含む、血管新生性薬剤および抗血管新生性薬剤を、本明細書において開示する。本開示組成物を血管新生を促進するために使用して、血管新生が有益である疾患を治療することができる。加えて、これらの甲状腺ホルモン、類似体およびポリマーコンジュゲーションの阻害を用いて血管新生を阻害して、そうした望ましくない血管新生に関連した疾患を治療することができる。ここで用いる場合、用語「血管新生性薬剤」は、単独であろうと、または別の物質との組み合わせであろうと、血管新生を促進または助長する任意の化合物または物質を包含する。

本発明の血管新生促進性薬剤は、甲状腺ホルモンアゴニストであり、単独での、またはポリマーとの共有結合性もしくは非共有結合性コンジュゲーション状態での、甲状腺ホルモン、類似体および誘導体を含む。例としては、Ｔ３、Ｔ４、Ｔ３またはＴ４−アガロース、Ｔ３，Ｔ４、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）またはＤＩＰＴＡのポリマー類似体が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の抗血管新生性薬剤は、単独での、またはポリマーとの共有結合性もしくは非共有結合性コンジュゲーション状態での、甲状腺ホルモンアンタゴニスト、類似体および誘導体を含む。こうした抗血管新生性甲状腺ホルモンアンタゴニストの例としては、ＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣ、ＸＴ １９９、およびｍＡｂ ＬＭ６０９が挙げられるが、これらに限定されない。

代表的な甲状腺ホルモンアゴニスト、アンタゴニスト、類似体および誘導体の例を下に示し、図２０、表Ａ〜Ｄにも示す。表Ａは、Ｔ２、Ｔ３、Ｔ４およびブロモ誘導体を示す。表Ｂは、アラニル側鎖修飾を示す。表Ｃは、ヒドロキシ基、ジフェニルエステル結合、およびＤ−配座を示す。表Ｄは、チロシン類似体を示す。代表化合物のうちの幾つかの式を下に図示する。

ポリマーコンジュゲーション
ポリマーコンジュゲーションを用いて、薬物の実行可能性を改善する。多くの新旧治療薬は十分に許容されるが、多くの化合物は、毒性を減少させるため、循環時間を増加させるため、または生体分布を変更するための先進創薬技術を必要としている。薬物の可能性を改善するための本発明者らの戦略は、水溶性ポリマーの利用である。様々な水溶性ポリマーが、生体内分布を変更すること、細胞取り込み方式を改善すること、生理学的障壁に対する透過性を変化させること、および身体によるクリアランス率を変更することが、証明されている。ターゲティングまたは持続放出効果を達成するために、薬物部を末端基として、骨格の一部として、またはそのポリマー鎖のペンダント基として含有する水溶性ポリマーを合成した。

本発明の代表組成物としては、ポリマーにコンジュゲートさせた甲状腺ホルモンまたはその類似体が挙げられる。ポリマーとのコンジュゲーションは、共有結合性連結による場合もあり、または非供給結合性連結による場合もある。好ましい実施形態では、前記ポリマーコンジュゲーションを、エステル結合または無水物結合によって行うことができる。ポリビニルアルコールを使用するエステル結合によるポリマーコンジュゲーションの例を図１７に示す。この調製では、市販のポリビニルアルコール（または関連コポリマー）を、酸塩化物形を含む甲状腺ホルモン類似体の酸塩化物での処理によってエステル化することができる。その塩酸塩をトリエチルアミンの添加によって中和して、塩酸トリエチルアミンを生じさせる。これは、異なる類似体についての甲状腺ホルモンエステルポリマー形が沈殿し次第、洗浄除去することができる。そのポリマーのエステル結合がインビボで加水分解を受けて、活性血管新生促進甲状腺ホルモン類似体を放出することができる。

アクリル酸エチレンコポリマーを使用する無水物結合によるポリマーコンジュゲーションの例を図１８に示す。これは、前のポリマー共有結合性コンジュゲーションに類似しているが、今回は、アクリル酸コポリマーの反応から誘導される無水物結合による。この無水物結合もインビボで加水分解を受けて、甲状腺ホルモン類似体を放出する。トリエチルアミンでの処理によってその塩酸塩の中和を遂行し、その後、沈殿したポリ無水物ポリマーの水での洗浄によって、塩酸トリエチルアミン副生成物を除去する。この反応は、甲状腺ホルモン類似体アクリル酸コポリマー＋トリエチルアミンの形成をもたらすであろう。インビボでの加水分解により、その甲状腺ホルモン類似体とアクリル酸エチレンコポリマーが経時的に放出されるであろう（この時間は、制御することができる）。

もう１つの代表的ポリマーコンジュゲーションとしては、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）にコンジュゲートさせた甲状腺ホルモンまたはその類似体が挙げられる。様々な薬物、タンパク質およびリポソームへのＰＥＧの取り付けが残留時間を改善し、毒性を減少させることは証明されている。ＰＥＧは、その鎖の末端のヒドロキシル基によって、および他の化学的方法によって、活性薬剤とカップリングさせることができる。しかし、ＰＥＧそれ自体は、１分子につき２つの活性薬剤に限定される。異なるアプローチでは、ＰＥＧの生体適合特性を保持するが、１分子につき非常に多数の結合点という付加的利点を有し、様々な用途に適するように合成設計することができる、ＰＥＧとアミノ酸のコポリマーを、新規生体材料として活用した。

様々な合成、天然および生体ポリマー由来の側基と有効な生体分解性骨格ポリマーを甲状腺ホルモン類似体にコンジュゲートさせることができる。ポリアルキルグリコール、ポリエステル、ポリ無水物、多糖類、およびポリアミノ酸をコンジュゲーションに利用することができる。下記は、コンジュゲートさせた甲状腺ホルモン類似体の代表例である。

天然、合成およびポリペプチドポリマー鎖からのポリマーコンジュゲート構造

ＰＥＧ系甲状腺化合物ポリマーコンジュゲート型送達システム

生体分解性および生体適合性ポリマーは、非加水分解性ポリマーコンジュゲートをはじめとする長期および短期送達ビヒクルのための有望な担体として指定されている。ＰＥＧおよびＰＥＯは、溶解度（簡単な担体様式）、分解時間、およびコンジュゲーションの容易さのために選択する、広範な分子量を有する最も一般的なヒドロキシ末端ポリマーである。膨潤させることができ、その結果、細胞内輸送中にタンパク質が付着または固着される機会を減少させることができる直鎖担体として、一方の末端が保護されたメトキシ−ＰＥＧも利用されるであろう。エチレンと酢酸ビニルの一定のコポリマー、すなわち、非常に良好な生体適合性、低い結晶性および疎水性を本質的に有するＥＶＡｃは、封入媒介薬物送達担体の理想的な候補である。

コンジュゲーションの目的のために、高い半減期および系内保持特性が立証されているポリマーが採用される。最も一般的で推奨されるものの中で、乳酸およびグリコール酸からの生体分解性ポリマーを使用することにする。Ｌ−ラクチドおよびＬ−リシンのコポリマーは、アミド結合形成のためにそのアミン官能基を利用できるので、有用であり、これは、すべての甲状腺成分の中のカルボキシル部分によって互いに連結される担体と輸送可能な甲状腺化合物のより長持ちする供給結合部位として役立つ。

セルロース、キチン、デキストラン、フィコール、ペクチン、カラゲナン（すべてのサブタイプ）およびアルギネートからの天然多糖類、ならびにそれらの半合成誘導体の一部は、その高い生体適合性、生物系のよく知られている分解産物（グルコースおよびフルクトースからの単糖類）、親水性、溶解度、ポリマーマトリックスのより長期的な安定性のためのタンパク質固定化／相互作用のため、理想的な担体である。これは、ポリマーマトリックスを経時的な分解からさらに保護するためのシェルを提供し、そのコンジュゲートの有効半減期の追加をもたらす。

血清アルブミン、コラーゲン、ゼラチンからのタンパク質およびポリペプチド、ならびにポリ−Ｌ−リシン、ポリ−Ｌ−アラニン、ポリ−Ｌ−セリンは、担体分子の生体分解性、生体適合性および適度の放出時間という利点を有する天然アミノ酸系薬物担体である。ポリ−Ｌ−セリンは、その種々の鎖誘導体、例えば、ポリセリンエステル、ポリセリンイミン、および特異的共有結合性コンジュゲーションに利用可能な部位を有する従来のポリセリンポリマー骨格のため、さらに興味深い。

メタクリレート誘導ポリマーからの合成ヒドロゲルは、生体組織とのそれらの類似性のため、生物医学的用途に用いられることが多い。最も広く用いられている合成ヒドロゲルは、アクリル酸、アクリルアミドおよび２−ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）のポリマーである。ポリＨＥＭＡは、安価であり、生体適合性であり、コンジュゲーションのために第一アルコール側鎖伸長官能基を利用することができ、ならびに眼、眼内および他の眼科用途に適し、そのため、これらは申し分のない薬物送達材料である。ｐＨＥＭＡは、細胞付着に対する免疫があり、ゼロ細胞運動（ｚｅｒｏ ｃｅｌｌ ｍｏｔｉｌｉｔｙ）をもたらし、そのため、これらは内部送達システムの理想的な候補である。

合成甲状腺類似体ＤＩＴＰＡコンジュゲーションライブラリ設計プログラムが、粗ＤＩＴＰＡコンジュゲート産物の開発で達成された。ＰＶＡおよびＰＥＧ親水性ポリマーカプリングは、ジシクロヘキシルカルボジイミドによって媒介されることもあり、ならびに親水性および疎水性の他のカップリング試薬によって媒介されることもある。以下は、本発明の範囲内のポリマーコンジュゲートのリストである（表９）。

表９：化学的クラス反応性および安定性データに基づく可能な調製のための指定ポリマーコンジュゲートのライブラリ

もう１つの代表的ポリマーコンジュゲーションとしては、ポリマーと非共有結合的にコンジュゲートしている状態の甲状腺ホルモンまたはその類似体が挙げられる。これは、図１９に詳細に示す。好ましい非共有結合性コンジュゲーションは、ポリ乳酸ポリマーへの甲状腺ホルモンまたはその類似体の捕捉である。ポリ乳酸ポリエステルポリマー（ＰＬＡ）は、インビボで乳酸モノマーへと加水分解され、これは、ヒトにおける薬物送達システムのためのビヒクルとして活用されている。甲状腺ホルモン類似体を化学結合によってポリマーに連結させる前の２つの共有結合法とは異なり、これは、甲状腺ホルモン類似体をＰＬＡポリマービーズに封入する非共有結合的方法である。この反応は、水中で甲状腺ホルモン類似体含有ＰＬＡビーズの形成をもたらすであろう。濾過および洗浄の結果、甲状腺ホルモン類似体含有ＰＬＡビースが形成され、これは、インビボで加水分解されると、制御されたレベルの甲状腺ホルモンと乳酸を生じさせる。

Ａ．ＴＲアゴニストまたはアンタゴニストとナノ粒子のポリマーコンジュゲート合成
ＴＲアゴニストまたはアンタゴニスト分子中には２つの官能基（カルボン酸およびヒドロキシル基）が存在する。ＴＲアゴニストまたはアンタゴニスト／ポリマーコンジュゲートを合成するための反応部位は、これら２つのうちのいずれかであり得る。本発明の範囲内の可能性のあるアゴニストおよびアンタゴニストを下の表に示す。２つの可能な合成経路を下に記載する：
１）内部フェニル環に対してα、βまたはγ位に位置するカルボン酸基を用いる。この酸基を活性化させ、その後、ヒドロキシルおよびアミノ基と反応させて、エステルおよびアミドを形成することができる。候補ポリマーとしては、ＰＶＡ、ＰＥＧ−ＮＨ_２、ポリ（リシン）および関連ポリマーが挙げられる。合成経路のスキームをスケッチ１Ａに示す。

２）外部フェニル基上に位置するヒドロキシル基をスケッチ２Ａに示す。

スケッチ１Ａ：カルボン酸基によるＴＲアゴニストまたはアンタゴニスト／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

スケッチ２Ａ：ヒドロキシル基によるＴＲアゴニストまたはアンタゴニスト／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

本発明の範囲内の代表的甲状腺アゴニスト（血管新生促進性）としては、Ｔ３、Ｔ４、ＤＩＴＰＡ、ＧＣ−１ならびにこれらの類似体および誘導体が挙げられる。実例となる実施形態を下に示す。

本発明の範囲内の代表的甲状腺アンタゴニスト（抗血管新生性）を下に示す。

Ｂ．Ｔ４およびそのナノ粒子のポリマーコンジュゲート合成
Ｔ４分子内には３つの官能基（１つのカルボン酸基、１つのアミン基および１つのヒドロキシル基）が存在する。

Ｔ４／ポリマーコンジュゲートを合成するための反応部位は、これら３つのうちのいずれか１つであり得る。

１）カルボン酸基を用いる。酸基を活性化し、ヒドロキシルおよびアミン基と反応させて、エステルおよびアミドを形成することができる。Ｔ４内のアミン基は反応性が高いため、コンジュゲーション反応前のそのアミン基を保護し、その後、脱保護を行わなければならない。そうしなければ、自己重合によりＴ４オリゴマーが形成されるであろう。候補ポリマーとしては、ＰＶＡ、ＰＥＧ−ＮＨ_２、ポリ（リシン）および関連ポリマーが挙げられる。合成経路のスキームをスケッチ１Ｂに示す。

２）アミン基を用いる。このアミン基は、活性化カルボン酸を有するまたはハロゲン基を有するポリマーと反応することができる。ポリマーが、大量の過剰な活性化酸基を有する場合、反応は直接遂行し得る。ポリ（メタクリル酸）およびポリ（アクリル酸）は、このようにして用いることができる。スキームをスケッチ２Ｂに示す。

３）ヒドロキシル基を用いる。反応性がより高いアミン基の存在のため、カルボン酸を有するポリマーとＴ４の直接反応は難しい。このアミン基は、反応前に保護し、コンジュゲーション反応後に脱保護しなければならない。一般的な保護基は、酢酸（Ａｃ）基またはＢＯＣ基であり得る。スキームをスケッチ３Ｂに示す。

スケッチ１Ｂ：カルボン酸基によるＴ４／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

スケッチ２Ｂ：アミン基によるＴ４／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

スケッチ３Ｂ：ヒドロキシル基によるＴ４／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

本明細書に記載するＴ４ポリマーコンジュゲート、ナノポリマーおよびナノ粒子は、動脈瘤、外科手術（歯科、血管または一般外科手術含む）、心臓発作（例えば、急性心筋梗塞）をはじめとする（しかし、これらに限定されない）様々な適応において、装置、例えば除細動器および他の手段、局所適用、例えば軟膏、クリーム、スプレーまたはシート（例えば、皮膚に当てるためのもの）を用いて送達するために使用することができ、または心筋梗塞、卒中もしくは末梢動脈疾患患者における持続局所送達のためにステントもしくは他の医療器具上に固定し、組織部位に移植して、数週間から数ヶ月にわたる長期期間にわたって側副動脈形成を達成することができる。

Ｃ．ＧＣ−１およびそのナノ粒子のポリマーコンジュゲートの合成
ＧＣ−１分子内には２つの官能基（１つのカルボン酸基および１つのヒドロキシル基）が存在する。ＧＣ−１／ポリマーコンジュゲートを合成するための反応部位は、これら２つのうちのいずれか１つであり得る。

１）カルボン酸基を用いる。酸基を活性化し、ヒドロキシルおよびアミン基と反応させて、エステルおよびアミドを形成することができる。候補ポリマーとしては、ＰＶＡ、ＰＥＧ−ＮＨ_２、ポリ（リシン）、ポリ（アルギニン）および関連ポリマーが挙げられる。合成経路のスキームをスケッチ１Ｃに示す。

２）ヒドロキシル基を用いる。スキームをスケッチ２Ｃに示す。

スケッチ１Ｃ：カルボン酸基によるＧＣ−１／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

スケッチ２Ｃ：ヒドロキシル基によるＧＣ−１／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

Ｄ．ＴＥＴＲＡＣおよびそのナノ粒子のポリマーコンジュゲート合成
ＴＥＴＲＡＣ分子内には２つの官能基（１つのカルボン酸基および１つのヒドロキシル基）が存在する。ＴＥＴＲＡＣ／ポリマーコンジュゲートの合成のための反応部位は、これら３つのうちのいずれか１つであり得る。

１）カルボン酸基を用いる。酸基を活性化し、ヒドロキシルおよびアミン基と反応させて、エステルおよびアミドを形成することができる。候補ポリマーとしては、ＰＶＡ、ＰＥＧ−ＮＨ_２、ポリ（リシン）および関連ポリマーが挙げられる。合成経路のスキームをスケッチ１Ｄに示す。

２）ヒドロキシル基を用いるスキームをスケッチ２Ｄに示す。

スケッチ１Ｄ：カルボン酸基によるＴＥＴＲＡＣ／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

スケッチ２Ｄ：ヒドロキシル基によるＴＥＴＲＡＣ／ポリマーコンジュゲート合成経路のスキーム

尚、さらに、本発明の組成物は、甲状腺ホルモン結合タンパク質トランスサイレチン（「ＴＴＲ」）およびレチノイン酸結合タンパク質（「ＲＢＰ」）に結合するレチノール（例えば、レチノイン酸（すなわち、ビタミンＡ））にコンジュゲートさせた甲状腺ホルモン類似体を含む。アミロイド斑の検出および抑制において使用するために、甲状腺ホルモン類似体を単独でまたはレチノイン酸との組み合わせでハロゲン化スチルベストロールにコンジュゲートさせることもできる。これらの類似体は、Ｔ４−ＴＴＲの有利な特性、すなわち、脳およびアミロイドに迅速に取り込まれ、そこに長期停留する特性と、フッ素−１８、ヨウ素−１２３、ヨウ素−１２４、ヨウ素−１３１、臭素−７５、臭−７６および臭素−８２をはじめとするＰＥＴイメージングのための一定の有用なハロゲン同位元素を含むハロゲン置換基とを併せ持つ。下記は、レチノールおよびハロゲン化スチルベストロールにコンジュゲートさせた甲状腺ホルモン類似体の代表例である。

Ｅ．レチノイン酸類似体

レチノイン酸とコンジュゲートさせた甲状腺ホルモン類似体

ナノ粒子
さらに、ナノスケールのサイズを有する有用な材料および構造を作るためにナノテクノロジーを用いることができる。生物活性物質に伴う１つの欠点は、脆弱性である。ナノスケール材料をそうした生物活性物質と併用して、その物質の耐久性を劇的に向上させることができ、その物質の局所的高濃度を作ることができ、および損失を最小限にすることにより費用を減少させることができる。従って、追加のポリマーコンジュゲーションとしては、甲状腺ホルモンおよびその類似体のナノ粒子製剤が挙げられる。そうした実施形態では、ナノポリマーおよびナノ粒子を甲状腺ホルモンおよびその類似体の局所送達のためのマトリックスとして使用することができる。これは、細胞および組織ターゲットへの時間制御送達を助長する。

本発明は、疎水性抗酸化物質、抗炎症薬および抗血管新生化合物を含有する、甲状腺ホルモン類似体のナノ粒子製剤を提供する。本発明は、捕捉された薬物の放出を制御することができるような徐放性で長期残留性の眼科用製剤およびその調製プロセスも提供する。

細胞内に出入りできず、それ故、その活動がインテグリン受容体に限定されるに違いない、ナノ粒子甲状腺ホルモン類似体（Ｔ_４、Ｔ３、ＧＣ−１、ＤＩＴＰＡおよびＴＥＴＲＡＣ）は、本発明の範囲内である。前記ナノ粒子ホルモン類似体は、ポリリシルグリコール酸（ＰＬＧＡ）誘導体、エステルまたはより安定なエーテル結合型製剤いずれか、であり得る。アガロース−Ｔ_４は、インテグリン受容体に対して十分に活性であることを本発明者らが証明した、ナノ粒子のモデルである。この再処方されたホルモン類似体は、そのホルモンの細胞内作用を発現しないであろうし、従って、循環血流に吸収されたとしても全身性甲状腺ホルモン類似体作用を有さないであろう。

ここで用いる場合、用語「ナノ粒子」は、直径約１ｎｍと約１０００ｎｍ未満の間の粒子を指す。適する実施形態において、本発明のナノ粒子の直径は、直径５００ｎｍ未満、およびさらに適切には、直径約２５０ｎｍ未満であろう。一定のそうした実施形態において、本発明のナノ粒子は、約１０ｎｍと約２００ｎｍの間、約３０ｎｍと約１００ｎｍの間、または約４０ｎｍと約８０ｎｍの間であろう。任意の数値を指すときにここで用いる場合の「約」は、述べられている値の±１０％の値を意味する（例えば、「約１００ｎｍ」は、９０ｎｍから１１０ｎｍ（両端の値を含む）の直径範囲を包含する）。

本発明に従って、多数の甲状腺ホルモン類似体またはポリマーコンジュゲートにコンジュゲートさせたナノ粒子を含む、ナノ粒子コンジュゲートを提供する。ナノ粒子の主成分であり得る甲状腺ホルモン類似体としては、Ｔ３、Ｔ４、ＤＩＴＰＡ、ＧＣ−１およびＴＥＴＲＡＣが挙げられるが、これらに限定されない。ナノ粒子形成において重要な要素は、甲状腺ホルモン分子とナノ粒子の間の連結架橋である。甲状腺ホルモン類似体は、甲状腺ホルモン類似体分子のアルコール部分によってエーテル（−Ｏ−）結合またはスルフヒドリル結合（−Ｓ−）によりナノ粒子にコンジュゲートされる。甲状腺ホルモン類似体分子のＣＯＯＨ部分によるコンジュゲーションよりアルコール部分によるコンジュゲーションのほうが大きな活性を有する。甲状腺ホルモン類似体、例えばＴ３およびＴ４、のＮＨ２基を保護基（Ｒ基）でブロックすることもできる。本発明の範囲内の適するＲ基としては、ＢＯＣ、アセチル、メチル、エチルまたはイソプロピルが挙げられる。未修飾のＴ４の場合、Ｒ＝Ｈ。加えて、甲状腺ホルモンが、ＮＨ_２に保護基を有するＴ４またはＴ３であるとき、Ｔ４またはＴ３のＮＨ_２の適する保護基としては、Ｎ−メチル、Ｎ−エチル、Ｎ−トリフェニル、Ｎ−プロピル、Ｎ−イソプロピル、Ｎ−ｔ−ブチルおよび他の官能基を挙げることができる。

ナノ粒子は、約１から＜１０００ｎｍの範囲の直径を有し得る。本発明のナノ粒子は、ナノ粒子１個あたり約１００個以下の甲状腺ホルモン類似体分子を有することができる。甲状腺ホルモン分子のナノ粒子あたりの比は、甲状腺ホルモン分子１個／ナノ粒子１個の比（１：１とも示す）から甲状腺ホルモン分子１００個／ナノ粒子１個に対する比（１００：１とも示す）までの範囲である。さらに好ましくは、この範囲は、１５：１〜３０：１の甲状腺ホルモン類似体分子／ナノ粒子、およびさらに好ましくは、２０：１〜２５：１の甲状腺ホルモン分子／ナノ粒子である。

本発明の範囲内の適するナノ粒子としては、Ｔ４、Ｔ３、ＤＩＴＰＡ、ＧＣ−１またはＴＥＴＲＡＣとコンジュゲートしたＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子が挙げられる。加えて、テモゾロミドをＰＬＧＡナノ粒子に封入することができる。ナノ粒子の主要な利点の１つは、多数の封入材料をすべて一緒に共封入する能力である。そのため、これらのＰＬＧＡナノ粒子は、Ｔ４、Ｔ３、ＤＩＴＰＡ、ＧＣ−１またはＴＥＴＲＡＣとテモゾロミドとをすべて一緒に共封入する非凡な素質も有する。さらに、ナノ粒子の表面の遊離−ＣＯＯＨ基の存在のため、これらのナノ粒子は、異なるターゲティング部分にコンジュゲートさせることができ、所望の部位に送達することができる。予備的研究において、本発明者らは、腫瘍特異的部位指向型送達用のナノ粒子に取り付けた特異的抗体を使用して、幾つかの細胞系統にターゲティングにすることができた。本発明の範囲内のナノ粒子の追加の実施形態としては、リン酸カルシウムを含有するナノ粒子にコンジュゲートさせたＴ４、Ｔ３、ＤＴＩＰＡ、ＧＣ−１またはＴＥＴＲＡＣコラーゲン；安定なエーテル結合によりモノまたはジＰＥＧＯＨとコンジュゲートしたＴ４、Ｔ３、ＤＴＩＰＡ、ＧＣ−１またはＴＥＴＲＡＣが挙げられる。

さらに、本ナノ粒子は、ナノ粒子の内部に甲状腺ホルモンアゴニスト、部分アゴニストまたはアンタゴニストを封入するか、化学的連結によってナノ粒子のセル表面に固定化する。本発明の範囲内のナノ粒子の代表的実施形態を下に図示する。

Ａ．ＴＲアゴニストおよびアンタゴニストのナノ粒子
エステル結合によりナノ粒子にコンジュゲートさせたＴＲアゴニストまたはアンタゴニスト

安定なエーテル結合によってモノまたはジＰＥＧＯＨとコンジュゲートしたＴＲアゴニストまたはアンタゴニスト

もう１つの適するナノ粒子の実施形態は、ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子にコンジュゲートしたＴＲアゴニストの作製である。空のナノ粒子を先ず作製する。そのナノ粒子を作製するためにアミノ−ＰＥＧ−ＰＬＧＡポリマーを選択する。エピクロロヒドリンを使用することにより、ＴＨ類似体を活性化する。このエポキシ活性化ＴＨアゴニストは、末端にアミノ基を有するＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子と容易に反応するであろう。

Ｂ．Ｔ４ナノ粒子
本発明のナノ粒子の範囲内のもう１つの適する実施形態としては、下に示すような、安定なエーテル結合によってモノまたはジＰＥＧ−ＯＨに固定化されたＴ４が挙げられる。

Ｃ．ＧＣ−１ナノ粒子
本発明の範囲内のナノ粒子の代表的な実施形態としては、下に示すような、エステル結合によってコンジュゲートさせたＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子へのＧＣ−１の封入も挙げられる。

本発明の範囲内のナノ粒子のもう１つの適する実施形態としては、下に示すような、安定なエーテル結合によってモノまたはジＰＥＧＯＨとコンジュゲートさせたＧＣ−１が挙げられる。

本発明の範囲内のナノ粒子のもう１つの適する実施形態としては、ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子にコンジュゲートさせたＧＣ−１が挙げられる。この場合、空のナノ粒子を先ず作製する。これらのナノ粒子を作製するためにアミノ−ＰＥＧ−ＰＬＧＡポリマーを選択する。エピクロロヒドリンを使用することによりＧＣ−１を活性化する。下に示すように、この活性化ＧＣ−１は、末端にアミノ基を有するＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子と容易に反応するであろう。

ナノ粒子に封入または固定化された追加のＧＣ−１類似体を下に示す。

ＧＣ−１の新たな類似体

Ｄ．ＴＥＴＲＡＣナノ粒子
本発明の範囲内の代表的なＴＥＴＲＡＣナノ粒子を下に示す。

ＰＶＡでコーティングされたＴＥＴＲＡＣドープＰＬＧＡナノ粒子を合成し、特性付けした。ナノ粒子の幾つかのセットをＴＥＴＲＡＣの最適な負荷について調査した。空のナノ粒子およびＴＥＴＲＡＣをドープしたナノ粒子のサイズおよびゼータ電位も調査した。Ｔｗｅｅｎ−８０でコーティングした、ＴＥＴＲＡＣをドープしたナノ粒子と空のナノ粒子の間にサイズおよびゼータ電位に関する有意差は見出されなかった。ＴＥＴＲＡＣをドープしたナノ粒子の場合、ナノ粒子の平均サイズがわずかに増加する（空のもの〜１７８ｎｍ、ＴＥＴＲＡＣをドープしたもの〜１９３ｎｍ）。ＨＰＬＣによってナノ粒子内部のＴＥＴＲＡＣの量を決定した。ＴＥＴＲＡＣの濃度は、５４０ｕｇ／（ナノ粒子１ｍＬ）であることが判明した。

ＰＬＧＡ／ＰＶＡ−ＴＥＴＲＡＣナノ粒子
安定剤としてポリビニルアルコール（ＰＶＡ）を使用してシングルエマルジョン法によりＴｗｅｅｎ８０でコーティングされたＰＬＧＡナノ粒子を作製した。動的光散乱を用いることにより、ナノ粒子のサイズを決定した。ＨＰＬＣを用いることにより、それらのナノ粒子に封入されたＴＥＴＲＡＣの量を決定した。

下記は、エステル結合によりナノ粒子にコンジュゲートさせたＴＥＴＲＡＣの追加の表示である。

下記は、安定なエーテル結合によるモノまたはジＰＥＧＯＨとのＴＥＴＲＡＣコンジュゲートの適する実施形態である。

Ｅ．Ｔ３ナノ粒子
もう１つの適する実施形態は、ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子にコンジュゲートさせたＴ３の作製である。このコンジュゲーションは、ＧＣ−１のコンジュゲーションに類似している。この場合のみ、酢酸（Ａｃ）基またはＢＯＣ基のいずれかを使用することにより、Ｔ３中に存在する高反応性アミンを先ずブロックする。その後、それをエピクロロヒドリンで活性化する。最後に、Ｔ３へのコンジュゲーション後、下に示すように、それを脱保護する。

酢酸（Ａｃ）またはＢＯＣでのアミン基の保護

Ｆ．ＤＩＴＰＡ
追加の安定なナノ粒子実施形態としては、下に示すようなＤＩＴＰＡが挙げられる。

ＤＩＴＰＡ−３，５−ヨウ素は、メチルまたはハロゲン基によって置換されている場合がある。

甲状腺ホルモン類似体の使用
本発明の甲状腺ホルモン類似体は、Ｔ３、Ｔ４、ＧＣ−１、ＤＩＴＰＡ、ＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣならびにそれらのコンジュゲートおよびナノ粒子である。Ｔ３、Ｔ４、ＧＣ−１およびＤＩＴＰＡならびにそれらのコンジュゲートおよびナノ粒子としてのものは、血管新生促進性であり、本明細書では甲状腺ホルモンアゴニストとも呼ぶ。ＴＥＴＲＡＣおよびＴＲＩＡＣならびにそれらのコンジュゲートおよびナノ粒子としてのものは、抗血管新生性および抗増殖性であり、本明細書では甲状腺ホルモンアンタゴニストとも呼ぶ。

本発明の甲状腺ホルモン類似体は、皮膚の疾患を治療するために使用することができる。これらの疾患としては、創傷治癒、非癌性皮膚状態および癌性皮膚状態が挙げられる。創傷治癒は、外科手術切開および外傷性損傷を包含する。未修飾のものとナノ粒子としてのもの両方のＴ３、Ｔ４、ＧＣ−１およびＤＩＴＰＡを創傷治癒に用いることができる。これらの甲状腺ホルモン類似体は、血管新生により、ならびに創傷領域への線維芽細胞および白血球移動を増進することにより作用する。加えて、修飾されたおよびナノ粒子としてのＴ４は、早期創傷治癒に適切な血小板凝集活性を有する。Ｔ３、Ｔ４、ＧＣ−１およびＤＩＴＰＡナノ粒子の作用は、細胞表面に限定される。それらは細胞に侵入しないので、局所適用部位からもれたとしても全身性副作用の発生は回避される。これらの細胞内全身性副作用の例としては、軽度甲状腺機能亢進状態および特に下垂体甲状腺刺激細胞での甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）放出の抑制が挙げられる。本発明の組成物、特にＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣおよび他の抗血管新生性および抗増殖性甲状腺ホルモン類似体（未修飾のものとナノ粒子またはポリマーコンジュゲートとしてのもの両方）によって治療することができる非癌性皮膚疾患としては、酒さ、血管腫、毛細血管拡張症、シバット多形皮膚萎縮症、および乾癬が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の組成物によって治療することができる癌性皮膚疾患の例は、基底細胞癌、皮膚の扁平上皮癌および黒色腫である。こうした目的で使用される組成物は、未修飾のものとナノ粒子またはポリマーコンジュゲートとしてのもの両方の、ＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣならびに他の抗血管新生性および抗増殖性甲状腺ホルモン類似体である。皮膚疾患には、本発明の組成物を、溶液、スプレー、ガーゼパットまたは合成シートに組み込んだものなどの局所皮膚適用品として投与することができる。

ＴＥＴＲＡＣ、ナノ粒子に封入または固定化されたＴＥＴＲＡＣおよび類似体をはじめとする本発明の組成物によって治療することができる非癌性皮膚疾患としては、酒さ、血管腫、毛細血管拡張症、多形皮膚萎縮症、乾癬が挙げられるが、これらに限定されない。皮膚疾患には、本発明の組成物を局所皮膚用品（例えば、溶液、スプレー、またはパッドもしくは他の合成シートに組み込んだもの）として投与することができる。

未修飾のものとナノ粒子またはポリマーコンジュゲートとしてのもの両方の、ＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣならびに他の抗増殖性および抗血管新生性甲状腺ホルモン類似体をはじめとする、本発明の甲状腺ホルモンは、皮膚に加えて、器官の癌を治療するために使用することともできる。これらの癌としては、神経膠腫および神経膠細胞芽腫、非甲状腺性頭頚部腫瘍、甲状腺癌、肺癌、乳癌および卵巣癌が挙げられるが、これらに限定されない。全身または局所投与される、ＴＥＴＲＡＣおよびＴＲＩＡＣナノ粒子またはポリマーコンジュゲートは、細胞の内部に出入りせず、もっぱら甲状腺ホルモンの細胞表面インテグリン受容体で作用する。本製剤のこの特質は、甲状腺機能亢進および下垂体甲状腺刺激細胞による甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）放出の抑制をはじめとする、未修飾のＴＥＴＲＡＣおよびＴＲＩＡＣの望ましくない甲状腺様副作用を排除する。ＴＥＴＲＡＣは、約２００〜２０００ｕｇ／日または約７００ｕｇ／ｍ^２以下の用量で投与することができる。

ＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣ、類似体、他の甲状腺アンタゴニスト、ならびにそれらのポリマーコンジュゲートおよびナノ粒子をはじめとする本発明の甲状腺ホルモン類似体は、神経膠腫、頭頚部癌、皮膚癌、肺癌、乳癌および甲状腺癌を含む（しかし、これらに限定されない）癌を治療するために使用することもできる。この実施形態において、ＴＥＴＲＡＣは、ナノ粒子とともにまたは無しで投与することができる。ＴＥＴＲＡＣナノ粒子は、細胞に侵入することができないので、甲状腺機能亢進の危険を低下させる。甲状腺癌の場合、ＴＥＴＲＡＣとＴＥＴＲＡＣナノ粒子の両方が同時投与されるか、ナノ粒子に封入されたおよび／または安定な化学結合によりナノ粒子表面に固定化されたＴＥＴＲＡＣが投与される。ＴＥＴＲＡＣまたはＴＥＴＲＡＣナノ粒子は、約０．００１から１０ｍｇ／ｋｇの用量で投与することができる。

ＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣ、類似体、甲状腺アンタゴニストならびにそれらのポリマーコンジュゲートおよびナノ粒子をはじめとする本発明の甲状腺ホルモン類似体は、糖尿病性網膜症および黄斑変性をはじめとする眼疾患を治療するために使用することもできる。未修飾の、ポリマーコンジュゲートとしての、またはナノ粒子としてのＴＥＴＲＡＣおよび類似体を全身的にまたは点眼剤として投与することができる。

Ｔ３、Ｔ４、ＧＣ−１、ＤＩＴＡＰならびにそれらのポリマーコンジュゲートおよびナノ粒子をはじめとする本発明の甲状腺ホルモン類似体は、冠動脈または頚動脈疾患、虚血性肢疾患、虚血性腸疾患を含むアテローム硬化症を治療するために使用することもできる。好ましい実施形態は、ポリＬ−アルギニンもしくはポリＬ−リシンを伴うＴ３、ＧＣ−１、ＤＩＴＰＡポリマー形、またはそれらのナノ粒子である。加えて、本発明の組成物は、生体分解性および非生体分解性ステントまたは他のマトリックスと併用することができる。

本発明の甲状腺ホルモン類似体は、細胞移動を伴う疾患、例えば、グリアニューロンを伴う疾患、および強化されたＮＧＦを伴う疾患を治療するために投与することもできる。加えて、本発明の甲状腺ホルモン類似体は、造血細胞および幹細胞関連疾患のために使用することができる。細胞がより早く再生するように、骨髄移植時にそれらを投与してもよい。本組成物は、１２５ヨウ素標識ＴＥＴＲＡＣナノ粒子を使用することによるアルツハイマー病のイメージングをはじめとする画像診断法のために使用することもできる。アルツハイマー斑は、ＴＥＴＲＡＣに結合するトランスサイレチンを有するので、これを早期検出に利用することができる。本発明の組成物は、除細動器と併用で、西ナイルおよびＨＩＶなどのウイルス因子の治療のために使用することができる。

血管新生の促進と抑制の両方における本組成物についての使用の詳細を下で詳細に説明する。

血管新生の促進
甲状腺ホルモン類似体、それらのポリマー形またはナノ粒子の血管新生促進効果は、ＭＡＰＫシグナル伝達経路の薬理学的阻害剤による前記ホルモン効果の減少のしやすさによって試験したところ、非ゲノム的な開始に依存する。こうした結果は、甲状腺ホルモンによるＭＡＰＫの活性化のもう１つの帰結が新たな血管の成長であることを示している。後者は、非ゲノム的に開始されるが、勿論、その結果の複雑なゲノム転写プログラムを必要とする。甲状腺ホルモンの周囲濃度は、比較的安定している。本発明者らが試験した時点で、ＣＡＭモデルは、甲状腺欠損状態であり、それ故、無損傷の生体を再生しない系と見なすことができる。

血管新生にニワトリ漿尿膜（ＣＡＭ）アッセイを利用できることにより、血管新生を定量するためのおよび新たな血管の成長の甲状腺ホルモンによる誘導に関与する可能性のあるメカニズムを研究するためのモデルが得られた。本出願は、ＦＧＦ２のＣＡＭモデルにおけるものと近似しており、最適下用量のＦＧＦ２の作用を強化することができる、Ｔ_４の血管新生促進効果を開示する。このホルモンの血管新生促進効果が、原形質膜で開始され、ＭＡＰＫシグナル伝達経路のＴ_４による活性化に依存することを、さらに開示する。上で提供したような、閉塞性末梢血管疾患および冠疾患、特に冠血管閉塞、ならびに末梢血管系および／または冠血管の閉塞に関連した疾患の治療方法を開示する。その必要がある患者において血管新生を促進する、および／または側副血管を動員するための組成物および方法も開示する。これらの組成物は、有効量の甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体を含む。これらの方法は、有効量の甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体を、低い日用量で、１週間以上にわたって、他の標準的な血管新生促進増殖因子、血管拡張薬、血液凝固阻止薬、血栓溶解薬または他の血管関連治療薬とともに同時投与することを含む。

血管新生を促進すると考えられている様々な増殖因子および化合物の血管新生活性を評価するためにＣＡＭアッセイを用いた。例えば、生理濃度のＴ_４は、このインビトロモデルにおいて血管新生促進性であり、モルベースでＦＧＦ２の活性を有することが明らかになった。ＰＴＵの存在は、Ｔ_４の効果を減少させず、これは、Ｔ_３を生成するためのＴ_４の脱ヨード化がこのモデルでは前提条件でないことを示していた。様々な甲状腺ホルモン類似体の血管新生促進効果の概要を下の表に列挙する。

このモデルにおける新たな血管の出現は数日を必要とし、これは、この甲状腺ホルモンの効果が、甲状腺ホルモン（ＴＲ）の核受容体とこのホルモンとの相互作用に完全に依存することを示していた。ＴＲとその天然リガンド、Ｔ_３との核内複合体形成を必要とするヨードチロニンの作用は、定義上、ゲノム性であり、結果として遺伝子発現を生じさせる。一方、このモデル系の−Ｔ_３、ＴＲの天然リガンド、ではなく−Ｔ_４への優先的応答は、血管新生が、Ｔ_４により原形質膜において非ゲノム的に開始され、結果として、遺伝子転写を必要とする作用を生じさせる可能性を高める。Ｔ_４の非ゲノム性作用は、広範に説明されており、通常、原形質膜で開始され、シグナル伝達経路によって媒介され得る。それらは、ヨードチロニンおよびＴＲの核内リガンドを必要とせず、遺伝子転写に干渉または遺伝子転写を修飾し得る。ステロイドの非ゲノム性作用も十分に説明されており、ステロイドまたは他の化合物のゲノム作用に干渉することが知られている。Ｔ_４およびＴＥＴＲＡＣを用いて、またはアガロース−Ｔ_４を用いて行われた実験は、Ｔ_４の血管新生促進効果が、原形質膜で開始される可能性が現実に非常に高いことを示した。ＴＥＴＲＡＣは、Ｔ_４の膜で開始される効果を遮断するが、それ自体は、シグナル伝達を活性化しない。従って、それは、甲状腺ホルモンの非ゲノム性作用のプローブである。アガロース−Ｔ_４は、細胞内部に出入りしないと考えられるが、このホルモンの可能性のある細胞表面開始作用のモデルを試験するために使用されている。ニワトリ漿尿膜（「ＣＡＭ」）モデルにおける甲状腺ホルモンの血管新生促進作用の調査は、既存の血管からの新たな血管の産生が、１０^−７Ｍ〜１０^−９ＭのＬ−チロキシン（Ｔ_４）または３，５，３’−トリヨード−Ｌ−チロニン（Ｔ_３）のいずれかにより２から３倍促進されたことを明示している。さらに興味深いことに、Ｔ_４−アガロース、細胞膜を横断しない甲状腺ホルモン類似体、は、Ｔ_３またはＴ_４で得られるものと同等の強力な血管新生促進効果を生じさせた。

一部で、本発明は、その必要がある被験体において血管新生を促進するための組成物および方法を提供する。血管新生を促進することによって治療できる状態としては、例えば、閉塞性末梢血管疾患および冠疾患、特に冠血管の閉塞、ならびに末梢血管系および／または冠血管の閉塞に関連した疾患、勃起機能不全、卒中、ならびに創傷が挙げられる。その必要がある患者において血管新生を促進するおよび／または副側血管を動員するための組成物および方法も開示する。これらの組成物は、有効量のポリマー形の甲状腺ホルモン類似体および誘導体ならびに有効量のアデノシンおよび／または一酸化窒素供与体を含む。これらの組成物は、１つ以上の賦形剤を場合によっては伴う生理的および医薬的に許容される担体中の血管新生に有効な量の甲状腺ホルモン様物質およびアデノシン誘導体を含む、滅菌注射用医薬製剤の形態であり得る。

心筋梗塞
急性心筋梗塞後の心不全の主な理由は、新たな血管の形成、すなわち血管新生、の不適当な応答である。甲状腺ホルモンおよびその類似体は、心不全の際に有益であり、冠血管新生を刺激する。一部で、本発明の方法は、梗塞時の甲状腺ホルモン類似体の単回治療薬の送達を含み、これは、心筋への直接注射によるか、または断続的に大動脈を結紮して一時的な等容性収縮を生じさせることによる血管新生および／または心室リモデリングを達成するための冠動脈注射のシミュレーションによる。

従って、１つの態様において、本発明は、血管新生の促進に有効な量のポリマー形の甲状腺ホルモンまたはその類似体をその必要がある被験体に投与することによる、血管新生の促進により閉塞性血管疾患、冠疾患、心筋梗塞、虚血、卒中、および／または末梢動脈疾患を治療するための方法を特徴とする。

ポリマー形の甲状腺ホルモン類似体の例も本明細書の中で提供しており、それらとしては、ポリビニルアルコール、アクリル酸エチレンコポリマー、ポリ乳酸、ポリＬ−アルギニン、ポリ−リシンにコンジュゲートさせたトリヨードチロニン（Ｔ３）、レボチロキシン（Ｔ４）、（ＧＣ−１）または３，５−ジヨードサイロプロピオン酸（ＤＩＴＰＡ）を挙げることができる。

前記方法は、有効量の甲状腺ホルモン様物質と有効量のアデノシンおよび／またはＮＯ供与体を低い日用量で１週間以上、同時投与することも含む。一方または両方の成分をカテーテルにより局所送達することができる。甲状腺ホルモン類似体および誘導体は、適切なサイズのナノ粒子にそれらの化合物を組み込むことにより、虚血組織周囲の毛細血管床にインビボで送達することができる。甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体は、適する抗体との共有結合性連結により、虚血組織にターゲティングすることができる。

前記方法は、心筋梗塞後に心機能を回復させるための治療として用いることができる。前記方法は、心筋虚血、または心臓以外の領域への不適当な血流（例えば、閉塞性末梢血管疾患（末梢動脈閉塞性疾患としても知られている）もしくは勃起機能不全を含む）に苦しんでいる冠動脈疾患患者において血流を改善するためにも用いることができる。

創傷治癒
インテグリン受容体で開始される、インビボでの創傷治癒に関係がある甲状腺ホルモンの作用は、血小板凝集、血管新生および線維芽細胞移入である。甲状腺ホルモンは、白血球の移入も増進させることができる。

創傷血管新生は、治癒の増殖期の重要部分である。大部分の表在性創傷以外のいずれの皮膚創傷の治癒も、血管新生なしには起こり得ない。いずれの損傷血管も修復を必要とするばかりでなく、治癒に必要な局所細胞活性増加には血流からの栄養の供給増加が必要である。さらに、血管の内層を形成する内皮細胞は、それら自体が形成体および治癒の調節因子として重要である。

従って、血管新生は、創傷治癒を支援するために新たな微小血管を生じさせる。これらの新たな血管は、臨床的には、損傷後４日までに創傷空間内で見えるようになる。血管内皮細胞、線維芽細胞、および平滑筋細胞はすべて、創傷肉芽形成を支援するように協調して増殖する。同時に、再び上皮形成が発生して、上皮カバーを再建する。創縁からのまたは毛包深部からの上皮細胞は、創傷を横断して移動し、肉芽組織および暫定的マトリックス上に定着する。表皮細胞増殖因子（ＫＧＦ）などの増殖因子がこのプロセスを媒介する。上皮形成の幾つかのモデル（スライディングセル対ローリングセル）が存在する。

甲状腺ホルモンは、代謝率を調節するので、甲状腺機能低下のために代謝速度が落ちると、創傷治癒速度も落ちる。従って、創傷治癒における局所塗布甲状腺ホルモン類似体またはポリマー形の役割は、創傷治癒能力が損なわれた糖尿病患者および非糖尿病患者において創傷治癒を促進する新規戦略に相当する。局所投与は、絆創膏への付着物の形態である場合もある。加えて、ナノポリマーおよびナノ粒子は、甲状腺ホルモンおよびその類似体の局所送達用のマトリックスとして使用することができる。これは、細胞および組織ターゲットへの時間制御送達を助長するであろう。

従って、本発明のもう１つの実施形態は、血管新生の促進に有効な量のポリマーまたはナノ粒子形の甲状腺ホルモンまたはその類似体をその必要がある被験体に投与することによる、血管新生の促進により創傷を治療する方法を特徴とする。詳細については、実施例９Ａおよび９Ｂを参照のこと。

ナノ粒子の場合、ＰＬＧＡ製剤としてのＴ_４は、ガーゼパッドまたは吸収もしくは合成フィルムによって外科手術性または外傷性創傷に局所適用されたとき、上で説明したメカニズムによって創傷治癒を増進するであろう。小さな皮膚創傷または擦過傷のために、誘導体化Ｔ_４をＯＴＣガーゼパッドまたはフィルムでの臨床使用に利用できるようにすることができる。

ＰＬＧＡ製剤としてのＴ_４は、ガーゼパッドまたは吸収もしくは合成フィルムによって皮膚潰瘍に局所適用されたとき、上で説明したメカニズムによって創傷治癒を増進するであろう。ナノ粒子Ｔ_３は、血小板凝集を生じさせないので、これらの用途にはあまり望ましくない。

追加の創傷治癒用途としては、生検後放射線誘導炎症に対する使用、内部出血を抑制するためのＧＩ管潰瘍形成に対する使用、抗凝結療法での歯科患者に対する抜歯後の使用をはじめとする、粘膜関連疾患に対する使用が挙げられる。これらの用途については、ナノ粒子またはポリマーコンジュゲートを用いることができる。

眼科用
本発明は、感熱性、粘膜接着性、および小さな粒径（１０＜１０００ｎｍ）を有する甲状腺ホルモン類似体の持続放出性で長期残留性の眼科用製剤にも関する。前記製剤は、疎水性または親水性甲状腺ホルモンアンタゴニストを有するランダムブロックコポリマーのミセル溶液を含む。本発明は、点眼剤または眼軟膏での異なる粒径および異なる表面電荷（陽性、陰性または中性）を有する前記製剤の作製プロセスも提供する。

大部分の眼病は、点眼剤または眼軟膏として投与される溶液の局所適用で治療される。眼科薬の局所送達で遭遇する主な問題の１つは、流涙および高い涙液ターンオーバーに起因する急速で大量の角膜前喪失である。点眼剤の滴下後、一般に、適用薬物の２〜３％未満は、角膜に浸透し、眼内組織に到達するが、滴下された用量の大部分は、多くの場合、結膜および鼻涙管によって全身吸収される。もう１つの制限は、目への吸収を制限する比較的不透過性の角膜バリアである。

従来の点眼剤に随伴する固有の問題のため、ヒドロゲル、マイクロおよびナノ粒子、リポソームならびにコラーゲンシールドなどの眼科投与用の新規薬物送達システムに向けて有意な努力がなされている。眼部薬物送達は、眼内のターゲット組織への薬物の送達の制御および最終的には最適化へのアプローチである。製剤努力の大部分は、角膜および結膜嚢内での薬物残留時間の延長によって眼薬の吸収を最大にすること、ならびにその送達系からの薬物放出を遅速させること、および視界をかすませる作用があるゲルを使用することなく角膜前薬物喪失を最小にすることを目指すものである。

眼科用製剤での大量のゲルの使用によるかすみ目および乏しい生物学的利用能の問題を克服するために、コロイド状担体はより良好な効果を有することが提案された。眼部送達用の薬物担体としてのナノ粒子は、リポソームより有効であることが判明し、リポソームのすべての肯定点に加えて、これらのナノ粒子は、非常に安定な実体であり、薬物の持続放出を調整することができる。

眼科薬のためのコポリマー材料の使用は、研究されており、コポリマーミセルの疎水性コアに疎水性薬物を組み込む試みは、特に注目に値する。これらの製剤の医薬的効能は、使用されるコポリマー材料および化合物の具体的な性質および特性に依存する。さらに、角膜表面での薬物のこの長い残留時間および持続放出は、他の生体適合性製剤では達成されていない。

ニューロン用
神経誘導に対する伝統的な知識とは対照的に、本発明は、血管新生を開始させ、維持するメカニズムが、神経新生の有効な促進因子および持続因子であるという予想外の発見に、一部、基づく。これらの方法および組成物は、例えば、外傷、損傷およびニューロン疾患における運動ニューロン損傷および神経障害の治療に有用である。本発明は、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでの様々な血管新生促進戦略の使用を開示する。血管新生促進因子としては、本明細書において説明するようなポリマー甲状腺ホルモン類似体が挙げられる。単独での、または当該技術分野において公知の他の血管新生促進増殖因子との、および神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体およびそのポリマーコンジュゲートを、最適な神経新生のために併用することができる。

死滅の危険があるニューロンの生存を増進すること、損傷したニューロンおよび神経経路の細胞修復を誘導すること、ならびにニューロンをそれらの分化表現型を維持するように刺激することを含む、哺乳動物において神経経路を維持するための治療的処置方法、組成物および器具を開示する。加えて、ポリマー甲状腺ホルモン類似体およびそれらの組み合わせを含有する組成物は、抗酸化物質および／または抗炎症薬の存在下で、ニューロン再生および保護を明示する。

本発明は、ニューロンの生存を増進し、神経経路を維持するための、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでの甲状腺ホルモン、類似体およびポリマーコンジュゲーションも提供する。本明細書に記載するように、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、ニューロンの生存を増進することができ、ニューロンのＣＡＭ発現を刺激することができ、分化ニューロンの表現型発現を維持することができ、神経起源の形質転換細胞の再分化を誘導することができ、および神経プロセスにおいて破断部、特に軸索内のギャップ、を覆う軸索成長を刺激することができる。モルフォゲンも、免疫関連神経組織損傷に随伴する組織破壊から保護する。最後に、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、哺乳動物において神経組織の生存度をモニターするための方法の一部として使用することができる。

本発明は、インビトロで機能性シナプス形成を推定するために１つの系を使用して、培養ラット皮質ニューロン間でのシナプス形成に対するポリマー甲状腺ホルモンの効果も提供する。１０−９Ｍのポリマー甲状腺ホルモン、３，５，３’−トリヨードチロニンまたはチロキシンへの曝露は、形成されるシナプスの数と相関する、細胞内カルシウム濃度の自然同期的周期的変動の周波数の増加を生じさせた。免疫細胞化学的および免疫ブロット分析によるシナプス小胞関連タンパク質シナプシンＩの検出により、チロキシンへの曝露がシナプス形成を助長することも確認された。アミオダロン（５’−脱ヨード酵素の阻害剤）またはアミトロース（除草薬）の存在は、チロキシンの存在下でのシナプス形成を阻害した。従って、本発明は、ポリマー甲状腺系を破壊することにより発達中のＣＮＳにおけるシナプス形成に干渉し得る種々雑多な化学種をスクリーニングするための有用なインビトロシステムも提供する。

一般的な手法として、本発明の方法は、神経組織傷害または神経障害の危険があるまたはそれらに苦しめられている任意の哺乳動物被験体の治療に適用することができる。本発明は、任意の霊長類、好ましくは高等霊長類、例えばヒトの治療に適する。しかし、加えて、本発明は、ヒトの友として養われている飼いならされた哺乳動物（例えば、犬、猫、馬）、有意な商品価値を有するもの（例えば、山羊、豚、羊、畜牛、競技用動物または役畜）、有意な科学的価値を有するもの（例えば、絶滅の危機に瀕している種の捕獲もしくは自由試料、または同系交配させたもしくは操作された動物系）、または別様に価値を有するものの治療に利用することができる。

本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、細胞生存、特に、死滅する危険のあるニューロン細胞の生存を増進する。例えば、完全分化ニューロンは、当該技術分野において公知の化学合成培地または低血清培地を使用して標準的な哺乳動物細胞培養条件下で培養すると、非有糸分裂性であり、インビトロで死滅する。例えば、Ｃｈａｒｎｅｓｓ，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６：３１６４−３１６９（１９８６）およびＦｒｅｅｓｅら，Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．５２１：２５４−２６４（１９９０）参照。しかし、非有糸分裂性ニューロン細胞の初代培養物を、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体で処理すると、これらの細胞の生存は、有意に増進される。例えば、標準的な手順を用いて、例えば、標準的な組織培養プロトコルを用いる黒質組織のパスツールピペットでの磨砕による溶解によって、成体ラットの脳の黒質から単離された線状体基底核の初代培養物を準備し、例えば、５０％ ＤＭＥＭ（ダルベッコの変性イーグル培地）、５０％ Ｆ−１２培地、ペニシリン／ストレプトマイシンを補足した熱不活性化ウマ血清および４ｇ／Ｌのグルコースを含有する、低血清培地中で増殖させた。標準培養条件下、無血清培地中で培養したとき、これらの細胞は、３週間までに有意な細胞死を被るであろう。細胞死は、細胞が接着したままでいることができないことによって、およびそれらの超微再構造特性の変化（例えば、クロマチン凝集およびオルガネラ崩壊）によって形態的に明示される。具体的に言うと、細胞は接着したままであり、生存可能な分化ニューロンの形態を維持し続ける。単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでの甲状腺類似体が不在の場合、大多数の培養細胞は解離し、細胞壊死を被る。

黒質の基底核の機能不全は、インビボではハンチントン舞踏病およびパーキンソン症候群に随伴する。本明細書において定義する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体のニューロン生存を増進する能力は、これらの単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が、例えば神経障害または化学的もしくは機械的外傷のためにインビボで死滅する危険があるニューロン細胞の生存を増進する療法の一部として有用であろう。本発明は、これらの単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が、ハンチントン舞踏病およびパーキンソン病をはじめとする、線状体基底核に影響を及ぼす神経障害を治療するための有用な治療薬に相当することをさらに提供する。臨床用途のために、本単独でまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでポリマー甲状腺ホルモン類似体を投与することができ、または、代替として、単独でまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでポリマー甲状腺ホルモン類似体−刺激剤を投与することができる。

本明細書に記載する甲状腺ホルモン化合物は、化学的外傷から神経組織を保護するためにも使用することもできる。本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体がニューロン細胞の生存を増進するならびに再分化細胞において細胞凝集および細胞−−細胞接着を誘導する能力は、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が、化学的外傷に起因する損傷から神経経路を保護することにより神経経路を維持する治療薬として有用であろうことを示す。特に、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、ニューロンの増殖および移動を阻害することならびに細胞−−細胞接着に干渉することが知られている毒素の作用からニューロン（発達中のニューロンを含む）を保護することができる。そうした毒素の例としては、エタノール；タバコの煙の中に存在する１つ以上の毒素；および様々なアヘン剤が挙げられる。発達中のニューロンに対するエタノールの毒性作用は、胎児アルコール症候群に現れる神経障害を誘導する。単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、グルタメートなどの興奮性アミノ酸に随伴する細胞傷害効果からニューロンを保護することもできる。

例えば、エタノールは、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体で処理したＮＧ１０８−１５細胞において誘導された細胞−−細胞接着効果を、これらの細胞に２５〜５０ｍＭの濃度で供給したとき阻害する。５〜１０ｍＭ（単一アルコール飲料の摂取後の成人における血中アルコール濃度）のエタノールによって最大阻害の半分を達成することができる。単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体によって誘導されるＮ−ＣＡＭレベルは、エタノールによる影響を受けないので、エタノールは、誘導ではなく細胞間のＣＡＭの同種親和性結合に干渉する可能性が高い。さらに、この阻害効果は、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の濃度に逆比例する。従って、エタノールなどの毒素への曝露による損傷の危険があるニューロン、特に、発達中のニューロンへの、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体あるいは単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体−刺激剤の投与は、その毒素の阻害効果に打ち勝つことにより、神経組織損傷からこれらの細胞を保護することができると予想される。本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、これらの毒素への曝露によって誘導された神経障害の結果として生ずる損傷神経経路を治療する療法においても有用である。

本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体のインビボ活性は、本明細書に記載するような動物モデルにおいても容易に利用することができる。適する動物、好ましくは、例えば遺伝的にまたは環境的に誘導された、神経組織損傷を示す動物、に、リン酸緩衝食塩水（ｐＨ７）などの適する治療用製剤中の有効量の単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体を脳内注射する。その単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、罹患ニューロン領域内に注射する。その後の時点で罹患組織を切除し、その組織を形態学的に、および／または適切なバイオマーカーの評価によって（例えば、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体あるいはＮ−ＣＡＭの局在定位によって；あるいは例えば、神経膠線維酸性タンパク質をマーカーとして使用して、ＣＮＳ神経栄養活性またはＣＮＳ組織損傷についての生化学的マーカーに対する用量依存的効果を測定することによって）評価する。投薬量およびインキュベーション時間は、試験する動物によって変わるであろう。種々の種についての適する投薬量範囲は、確立された動物モデルとの比較によって決定することができる。ラット脳穿刺モデルについての例示的プロトコルを下に提示する。

簡単に言うと、標準的な市場の供給業者から得た雄Ｌｏｎｇ Ｅｖａｎｓラットに麻酔し、頭部に外科手術の準備を施す。標準的な外科手術手順を用いて頭蓋冠を露出させ、その頭蓋冠をちょうど刺し通す０．０３５Ｋワイヤを使用してそれぞれの葉の中央に穴をあける。次に、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体（例えば、ＯＰ−１、２５ｍｇ）あるいはＰＢＳのいずれかを含有する２５ｍＬの溶液を、Ｈａｍｉｌｔｏｎ注射器によってそれらの穴のそれぞれに供給する。溶液は、表面の下約３ｍｍの深さに、下にある皮質、脳梁および海馬へと送達する。その後、皮膚を縫合し、動物を回復させる。

外科手術の３日後、断頭術によりラットを屠殺し、それらの脳を切出しのために処理する。神経膠線維酸性タンパク質（神経膠瘢痕化についてのマーカータンパク質）に免疫蛍光染色を施して瘢痕形成度を定性的に判定することにより、瘢痕組織形成を評価する。神経膠線維酸性タンパク質抗体は、例えばミズーリ州、セントルイスのＳｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．から、市販されている。切片を抗ＯＰ−１抗体でもプローブして、ＯＰ−１の存在を判定する。単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体で治療した動物の組織切片では、神経膠線維酸性タンパク質レベルの減少が予想され、これは、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が神経膠瘢痕形成を阻害し、神経再生を刺激する能力の証拠となる。

脳イメージング、診断、および神経変性疾患の療法
本発明は、例えばアルツハイマー病などの神経変性疾患の早期診断、予防および治療に有用な新規医薬品および放射性医薬品に関する。本発明は、生体系において特異的結合を有し、陽電子放射断層撮影（ＰＥＴ）、単一光子放射「ＳＰＥＣＴ」イメージング法、および磁気共鳴（ＭＲＩ）イメージング法に使用することができる、新規化合物も含む。Ｔ４および他の甲状腺ホルモン類似体が体内の局在リガンドに結合できることが、ＰＥＴ、ＳＰＥＣＴ、ＭＲＩおよび同様のイメージング法による前記リガンドのインサイチューイメージングのためのそうした化合物の利用を可能にする。原則として、結合が発生するのであればリガンドの性質について知る必要はなく、そうした結合は、対象となる細胞、臓器、組織または受容体のクラスに特異的なものである。

ＰＥＴイメージングは、陽電子放射性同位体で標識したトレーサー化合物を利用して遂行される（Ｇｏｏｄｍａｎ，Ｍ．Ｍ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｐｏｓｉｔｒｏｎ Ｅｍｉｓｓｉｏｎ Ｔｏｍｏｇｒａｐｈｙ，Ｍｏｓｂｙ Ｙｅａｒｂｏｏｋ，１９９２，Ｋ．Ｆ．Ｈｕｂｎｅｒら，Ｃｈａｐｔｅｒ １４）。大部分の生体材料に適する同位元素は、ほんの少数である。炭素同位体、^１１Ｃは、ＰＥＴに使用されているが、２０．５分というその短い半減期により、その有用性は、短時間で合成および精製できる化合物に、および前駆体^１１Ｃ出発原料を生成するサイクロトロンに近い設備に限られる。Ｎ^１３は、１０分の半減期を有し、Ｏ^１５は、さらに短い２分という半減期を有する。両方の放射は、^１１Ｃのものより高エネルギーである。それにもかかわらず、ＰＥＴ研究はこれらの同位体を用いて行われている（Ｈｕｂｎｅｒ，Ｋ．Ｆ．，ｉｎ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｐｏｓｉｔｒｏｎ Ｅｍｉｓｓｏｎ Ｔｏｍｏｇｒａｐｈｙ，Ｍｏｓｂｙ Ｙｅａｒ Ｂｏｏｋ，１９９２，Ｋ．Ｆ．Ｈｕｂｎｅｒら，Ｃｈａｐｔｅｒ ２）。さらに有用な同位体、^１８Ｆは、１１０分の半減期を有する。これは、放射性標識トレーサーへの組み込みに、精製に、ならびにヒトおよび動物被験体への投与に十分な時間を与える。加えて、サイクロトロンからより遠隔（半径約２００マイルまで）の施設が、^１８Ｆ標識化合物を使用できる。^１８Ｆの欠点は、天然生体材料と機能的同等性を有するフッ素化類似体の相対的不足、およびサイクロトロンで生成された出発原料を効率的に利用する合成方法を設計することの難しさである。そうした出発原料は、フッ化物イオンまたはフッ素ガスのいずれかであり得る。後者の場合、実際には二分子ガスの一方のフッ素原子のみが放射性核種であり、そのため、そのガスは、Ｆ−Ｆ^１８と表される。従って、出発原料としてＦ−Ｆ^１８を使用する反応は、出発原料としてＫ．Ｆ^１８を利用する反応の放射線核種発生量の二分の一しか有さない生成物をもたらす。一方、Ｆ^１８は、無担体求核置換反応を用いて高い比活性、理論的には１．７Ｃｉ／ｎｍｏｌで放射性医薬化合物に組み込むためにフッ化物イオンとしてキューリー量で作製することができる。Ｆ^１８のエネルギー放出は、０．６３５ＭｅＶであり、その結果、組織における比較的短い２．４ｍｍの平均陽電子範囲が生じ、これが高分解能ＰＥＴイメージングを可能にする。

ＳＰＥＣＴイメージングは、高エネルギー光子を放射する同位体トレーサー（ガンマ放射体）を用いる。有用な同位体の範囲は、ＰＥＴより大きいが、ＳＰＥＣＴのほうが低い三次元分解能を提供する。それにもかかわらず、ＳＰＥＣＴは、類似体の結合、局在およびクリアランス率についての臨床的に有意な情報を得るために幅広く用いられている。ＳＰＥＣＴイメージングに有用な同位体は、１３．３時間の半減期を有するＩ^１２３α−ガンマ放射体である。Ｉ^１２３で標識された化合物は、製造現場から約１０００マイルまで出荷することができ、または現場で合成するためにこの同位体それ自体を輸送することができる。この同位体の放射の８５パーセントは、現在用いられているＳＰＥＣＴ機器によって容易に測定される１５９ＫｅＶの光子である。本発明の化合物は、テクネチウムで標識することができる。テクネチウム−９９ｍは、ＳＰＥＣＴイメージングに有用な放射性核種であることが知られている。本発明のＴ４類似体を炭素数４〜６の炭素鎖（これは、飽和している場合もあり、または二重もしくは三重結合を有する場合もある）によってＴｃ−９９ｍ金属クラスターに連結させる。

ＰＥＴにおけるＦ^１８標識化合物の使用は、少数の類似体化合物に限られている。最も著名なものとして、Ｆ^１８−フルオロデオキシグルコースは、グルコース代謝の研究および脳の活動に随伴するグルコース取り込みの局在性の研究の際に幅広く使用されている。Ｆ^１８−Ｌ−フルオロドパおよび他のドーパミン受容体類似体も、ドーパミン受容体分布をマッピングする際に使用されている。

他のハロゲン同位体がＰＥＴもしくはＳＰＥＣＴイメージング、または従来のトレーサー標識付けに役立つ場合もある。これらとしては、使用可能な半減期および放射特性を有する^７５Ｂｒ、^７６Ｂｒ、^７７Ｂｒおよび^８２Ｂｒが挙げられる。一般に、記載する同位体を任意のハロゲン部分で置換するための化学的手段が存在する。従って、安定な同位体ハロゲン同族体を含めて、記載する化合物の任意のハロゲン化同族体の生化学的または物理的活性を今や当業者は利用することができる。アスタチンを他のハロゲン同位体の代わりに用いることもできる。例えば、^２１０Ａｔは、８．３時間の半減期を有するアルファ粒子を放射する。他の同位体も相当有用な半減期を有するアルファ粒子を放射する。従って、Ａｔ置換化合物は、脳治療に有用であり、この場合の結合は十分に脳特異的である。

非常に多くの研究により、悪性脳細胞への炭水化物およびアミノ酸の取り込み増加が立証されている。この蓄積は、そうした細胞の増殖およびタンパク質合成加速に関連している。グルコース類似体Ｆ^１８−２−フルオロ−２−デオキシ−Ｄ−グルコース（２ＦＤＧ）は、高悪性脳と正常な脳組織または良性増殖とを識別するために使用されている（ＤｉＣｈｉｒｏ，Ｇ．ら（１９８２）Ｎｅｕｒｏｌｏｇｙ（ＮＹ）３２：１３２３−１３２９）。しかし、フッ素−１８標識２−ＦＤＧは、正常組織への高い取り込みが脳の存在を隠す場合があるため、低等級（ｇｒａｄｅ）の脳の検出に選択される薬剤ではない。加えて、フッ素−１８標識２−ＦＤＧは、感染組織および膀胱、それぞれへの２−ＦＤＧ放射活性の高い取り込み量のため、肺脳と感染組織を識別するためのまたは卵巣癌を検出するための理想的な放射性医薬品ではない。炭素１１で標識された天然アミノ酸メチオニンも、悪性組織と正常組織を識別するために使用されている。しかし、これも正常組織への比較的高い取り込み量を有する。さらに、炭素１１の半減期は、たった２０分である。従って、Ｃ１１メチオニンは、長期間保管することができない。

脳脊髄液（「ＣＳＦ」）トランスサイレチン（「ＴＴＲ」）、ラットおよびヒトにおける主ＣＳＦチロキシン（Ｔ４）キャリヤータンパク質は、脈絡叢（「ＣＰ」）において合成される。ラットにおける^１２４Ｉ−Ｔ４の注射後、放射活性Ｔ４は、先ずＣＰに、次にＣＳＦに、そしてその後、脳に蓄積する（Ｃｈａｎｏｉｎｅ ＪＰ，Ｂｒａｖｅｒｍａｎ ＬＥ．Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｔｒａｎｓｔｈｙｒｅｔｉｎ ｉｎ ｔｈｅ ｔｒａｎｓｐｏｒｔ ｏｆ ｔｈｙｒｏｉｄ ｈｏｒｍｏｎｅ ｔｏ ｃｅｒｅｂｒｏｓｐｉｎａｌ ｆｌｕｉｄ ａｎｄ ｂｒａｉｎ．Ａｃｔａ Ｍｅｄ Ａｕｓｔｒｉａｃａ．１９９２；１９ Ｓｕｐｐｌ １：２５−８）。

本発明の化合物は、アミロイドタンパク質を有する身体の領域、特に脳領域についての実質的に改善されたＰＥＴイメージングをもたらす。生物活性化合物に組み込むことができる利用可能な陽電子放射性同位体のすべてが短い半減期を有する。従って、そうした標識化合物の実際の有用性は、その標識化合物をいかに早く合成できるか、ならびに最終生成物の合成収率および放射化学的純度に依存する。ＰＥＴイメージングを行う病院または研究所への同位体供給源、サイクロトロン施設、からの運送時間さえ限定される。有用な距離の粗計算は、半減期の分数当たり約２マイルである。それ故、２０．５分の半減期を有するＣ^１１は、供給源から半径約４０マイルに限定され、これに対してＦ^１８で標識した化合物は、半径約２００マイル以内で使用することができる。^１８Ｆ標識化合物のさらなる必要条件は、結合させる受容体またはターゲット分子に対して結合特異性を有すること、他のターゲットへの非特異的結合が有意に低くてターゲット結合と非ターゲット結合を識別できること、およびその標識が試験条件下で安定であって、その試験環境内の他の物質との交換を避けられることである。さらに特に、本発明の化合物は、所望のターゲットへの十分な結合を示すはずであり、その上、一切、同等の程度には、他の組織または細胞と結合できないはずである。

ＰＥＴイメージングのためのストリンジェントな必要条件に対する一部の解決は、ＳＰＥＣＴイメージングでのガンマ線放射性同位体の利用である。Ｉ^１２３は、ＳＰＥＣＴに一般に用いられている同位体マーカーであり、合成現場から１０００マイルを超える有効範囲のための１３時間の半減期を有する。本発明の化合物は、ＰＥＴイメージングの代案としてＳＰＥＣＴ分析で使用するためにＩ^１２３で迅速かつ効率的に標識することができる。さらに、同じ化合物をいずれの同位体ででも標識できるため、同じトレーサーを使用してＰＥＴおよびＳＰＥＣＴにより得られた結果を比較することが初めてできる。

脳結合の特異性も本発明のＩ置換化合物に有用性をたらす。こうした化合物は、ＳＰＥＣＴイメージングのために寿命の短かいＩ^１２３で標識することができ、または療法の経過のモニタリングなどの長期研究のためにより長い寿命のＩ^１２５で標識することができる。例示したものの代わりに他のヨウ素および臭素同位体を用いることもできる。

一般に、本発明の放射性イメージング剤は、放射性４−ハロベンジル誘導体とピペラジン誘導体を反応させることによって作製する。ＰＥＴイメージングにはＦ−１８標識４−フルオロベンジル誘導体が好ましい。４−フルオロ−^１８Ｆ−ベンジルハライドの一般的な作製方法は、Ｉｗａｔａら，Ａｐｐｌｉｅｄ Ｒａｄｉａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｉｓｏｔｏｐｅｓ（２０００），Ｖｏｌ．５２，ｐｐ．８７−９２に記載されている。

単一光子放射コンピュータ断増撮影（「ＳＰＥＣＴ」）には、^９９ｍＴｃ標識化合物が好ましい。これらの化合物の一般合成経路は、本発明の範囲内の非放射性ＴＨ類似体で開始し、それらを^９９ｍＴｃ結合性キレーター、例えばＮ_２Ｓ_２−キレーターと反応させる。前記キレーターの合成は、標準的な手順、例えば、Ａ．Ｍａｈｍｏｏｄら，Ａ Ｎ_２Ｓ_２−Ｔｅｔｒａｄｅｎｔａｔｅ Ｃｈｅｌａｔｅ ｆｏｒ Ｓｏｌｉｄ−Ｐｈａｓｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ：Ｔｅｃｈｎｅｔｉｕｍ，Ｒｈｅｎｉｕｍ ｉｎ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｎｕｃｌｅａｒ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ（１９９９），Ｖｏｌ．５，ｐ．７１、またはＺ．Ｐ．Ｚｈｕａｎｇら，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（１９９９），Ｖｏｌ．１０，ｐ．１５９に記載されている手順に従う。

前記キレーターのうちの１つを、本発明のＴＨ類似体の非放射性化合物の−−Ｎ（Ｒ^４）Ｒ^５基中の窒素に直接結合させるか、１から１０個の炭素原子を有するアルキルラジカルを含むリンカー部分によって結合させる。この場合、前記アルキルラジカルは、１から１０個の−−Ｃ（Ｏ）−−基、１から１０個の−−Ｃ（Ｏ）Ｎ（Ｒ）−−基、１から１０個の−−Ｎ（Ｒ）Ｃ（Ｏ）−−基、１から１０個の−−Ｎ（Ｒ）−−基、１から１０個の−−Ｎ（Ｒ）_２基、１から１０個のヒドロキシ基、１から１０個の−−Ｃ（Ｏ）ＯＲ−−基、１から１０個の酸素原子、１から１０個の硫黄原子、１から１０個の窒素原子、１から１０個のハロゲン原子、１から１０個のアリール基、および１から１０個の飽和または不飽和複素環を場合によっては含有し、ここでのＲは、水素またはアルキルである。好ましいリンカー部分は、−−Ｃ（Ｏ）−−ＣＨ_２−−Ｎ（Ｈ）−−である。

従って、本発明の化合物は、ＰＥＴおよびＳＰＥＣＴを使用する改善された脳イメージング法をもたらす。これらの方法は、適切な同位体で標識された画像生成量の本発明の化合物を被験体（実験および／または診断を目的として、ヒトであってもよいし、または動物であってもよい）に投与し、その後、Ｆ^１８もしくは他の陽電子放射体を用いる場合にはＰＥＴによって、またはＩ^１２３もしくは他のガンマ放射体を用いる場合にはＳＰＥＣＴによってその化合物の分布を測定することを必要とする。画像生成量は、スキャナーの検出感度およびノイズレベル、同位体の寿命、被験体の体の大きさおよび投与経路（前述の可変要素はすべて、過度の実験に訴えることなく当業者に公知の計算および測定法によって分かり、説明されるものの具体例である）を考慮に入れて、ＰＥＴまたはＳＰＥＣＴスキャナーにおいて画像を生じさせることが少なくともできる量である。

本発明の化合物をその構造内の任意の原子または原子の組み合わせの同位体で標識できることは、理解されるであろう。ここではＦ^１８、Ｉ^１２３およびＩ^１２５をＰＥＴ、ＳＰＥＣＴおよびトレーサー分析に特に有用なものであると強調したが、他のものの使用も考えられ、それらとしては、安定な同位元素同族体の生理または薬理特性から以下のものが挙げられ、それらは当業者には明らかであろう。

本発明は、Ｔｃ付加体によるテクネチウム（Ｔｃ）標識付けにも備えている。Ｔｃの同位体、特にＴｃ^９９ｍは、脳イメージングに用いられている。本発明は、脳イメージングに有用である、本発明の化合物のＴｃ錯化付加体を提供する。この付加体は、炭素数４〜６の炭素鎖（これは、飽和している場合もあり、または二重もしくは三重結合を有する場合もある）によって環状アミノ酸に連結されたＴｃ配位錯体である。二重結合が存在する場合、Ｅ（トランス）またはＺ（シス）異性体のいずれかを合成することができ、いずれの異性体を利用してもよい。同位体の有効寿命を最大にするための最終段階としての^９９ｍＴｃ同位体の組み込みについて、合成を説明する。

ここで報告する手順では、次の方法を用いた。^１８Ｆ−フッ化物は、９５％濃縮^１８Ｏ水を用い、１１ＭｅＶの陽子を有する^１８Ｏ（ｐ，ｎ）^１８Ｆ画分を使用して、Ｓｅｉｍｅｎｓサイクロトロンから製造した。すべての溶媒および化学種は、分析グレードであり、さらに精製せずに使用した。化合物の融点は、Ｂｕｃｈｉ ＳＰ装置を使用して毛管で決定した。薄層クロマトグラフィー分析（ＴＬＣ）は、アルミニウムにコーティングしたシリカゲルＧ ＰＦ−２５４の２５０ｍｍ厚の層（Ａｎａｌｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．から入手）を使用して行った。カラムクロマトグラフィーは、６０〜２００メッシュのシリカゲル（Ａｌｄｒｉｃｈ Ｃｏ．）を使用して行った。赤外スペクトル（ＩＲ）は、ＮａＣｌプレートを用いてＢｅｃｋｍａｎ １８Ａ分光光度計で記録した。プロトン核磁気共鳴スペクトル（１Ｈ ＮＭＲ）は、Ｎｉｃｏｌｅｔ高分解能装置を用いて３００ＭＨｚで得た。

もう１つの態様において、本発明は、ヒトにおけるアルツハイマー病の診断用の放射性医薬品を製造するための本発明の化合物の使用方法に関する。もう１つの態様において、本発明は、本発明の化合物の調製方法に関する。

本明細書に記載する本発明の化合物は、ＴＴＲに結合し、血液脳関門を通過する能力を有する、甲状腺ホルモン類似体またはＴＴＲ結合性リガンドである。従って、本化合物は、アルツハイマー病のイメージングのためのインビボ診断薬として適する。放射活性の検出は、ガンマカメラの使用によるか、陽電子放射断層撮影（ＰＥＴ）により、当該技術分野において周知の手順に従って行う。

好ましくは、本発明の化合物の遊離塩基または医薬的に許容される塩の形態、例えば、一塩化物もしくは二塩化物塩を生薬製剤において診断薬として使用する。本発明の化合物を含有する生薬製剤は、当該技術分野において公知のアジュバント、例えば、緩衝剤、塩化ナトリウム、乳酸、界面活性剤などを場合によっては含有する。使用前に滅菌条件下でその生薬製剤を濾過することにより滅菌することができる。

放射線量は、１回の適用につき１から１００ｍＣｉ、好ましくは５から３０ｍＣｉ、および最も好ましくは５から２０Ｃｉの範囲内にすべきである。本発明の範囲内のＴＨ組成物は、陽電子放射断層撮影（ＰＥＴ）において診断薬として使用することができる。

本発明の化合物は、任意の適する経路によって、好ましくは、そうした経路に適合する医薬組成物の形態で、および脳内でのＴＴＲとの結合に、およびそれによりガンマカメラまたはＰＥＴによる検出に有効な用量で投与することができる。一般に、その投与は、非経口的であり、例えば、静脈内、腹腔内、皮下、皮内または筋肉内投与である。静脈内投与が好ましい。従って、例えば、本発明は、許容される担体、例えば血清または生理食塩水、に溶解または懸濁させた造影剤の溶液を含む、非経口投与用組成物を提供する。

水性担体としては、水、アルコール性／水性溶液、食塩液、非経口ビヒクル、例えば塩化ナトリウム、リンガーデキストロースなどが挙げられる。非水性溶媒の例は、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、植物油、および注射用有機エステル、例えばオレイン酸エチルである。他の医薬的に許容される担体、非毒性賦形剤（塩、保存薬、緩衝剤などを含む）は、例えば、ＲＥＭＭＩＮＧＴＯＮ’Ｓ ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬ ＳＣＩＥＮＣＥＳ，１５．ｓｕｐ．ｔｈ Ｅｄ．Ｅａｓｔｏｎ：Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，ｐｐ．１４０５−１４１２および１４６１−１４８７（１９７５）、ならびにＴＨＥ ＮＡＴＩＯＮＡＬ ＦＯＲＭＵＬＡＲＹ ＸＩＶ．，１４．ｓｕｐ．ｔｈ Ｅｄ．Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ：Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ（１９７５）に記載されている。

本発明の医薬組成物は、水性媒質に−−生薬製剤では通例の添加剤と場合によっては併せた−−本発明の化合物を懸濁または溶解し、その後、場合によってはその懸濁液または溶液を滅菌することによる、それ自体が公知の方法で製造される。適する添加剤は、例えば、生理的に許容される緩衝剤（例えば、トロメタミンなど）、錯化剤の添加物（例えば、ジエチレントリアミン五酢酸）または−−必要な場合には−−電解質、例えば塩化ナトリウムまたは−−必要な場合には−−抗酸化物質、例えばアスコルビン酸などである
水または生理食塩液中の本発明の化合物の懸濁液または溶液が、腸への投与または他の目的に望ましい場合、生薬製剤での慣例として、それらを１つまたは幾つかの助剤（例えば、メチルセルロース、ラクトース、マンニトール）、および／または界面活性剤（例えば、レシチン、「Ｔｗｅｅｎ」、「Ｍｙｒｊ」）、および／または味を向上されるために矯味矯臭剤と混合する。

本組成物は、従来の周知滅菌技術によって滅菌することができ、または滅菌濾過することができる。得られた水溶液をそのまま使用するために包装してもよいし、または凍結乾燥してもよく、凍結乾燥した製品は、投与前に滅菌溶液と併せる。本組成物は、生理条件に近づけるために必要な場合には医薬的に許容される補助物質、例えば、ｐＨ調整および緩衝剤、等張性調整剤、湿潤剤など、例えば、酢酸ナトリウム、乳酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、モノステアリン酸ソルビタン、オレイン酸トリエタノールアミンなどを含有することがある。

放射性ハロゲンを有する本発明の化合物の場合、これらの化合物は、「ホットな（ｈｏｔ）」化合物、すなわち、化合物中の放射性ハロゲンを伴うものとして出荷することができ、例えば、生理的に許容される食塩液中のものを投与することができる。金属錯体の場合、これらの化合物は、「ｃｏｌｄ」化合物、すなわち、放射性イオンを伴わないものとして出荷することができ、その後、Ｔｃ発生器溶出物またはＲｅ発生器溶出物と混合することができる。

血管新生の阻害
もう１つの部分で、本発明は、その必要がある被験体において血管新生を阻害するための組成物および方法を提供する。血管新生を阻害することによって治療可能な状態としては、例えば、原発性または転移性腫瘍および糖尿病性網膜症が挙げられる。本組成物は、有効量のテトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、トリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）、モノクローナル抗体ＬＭ６０９、またはこれらの組み合わせを含むことができる。こうした抗血管新生剤は、細胞表面において血管新生促進剤を阻害するように作用することができる。これらの組成物は、１つ以上の賦形剤を場合によっては伴う生理的におよび医薬的に許容される担体中の抗血管新生有効量の抗血管新生性物質を含む、滅菌注射用医薬製剤の形態であり得る。

さらなる態様において、本発明は、血管新生を阻害するために有効な量の抗血管新生剤をその必要がある被験体に投与することによる、血管新生を阻害することにより治療可能な状態を治療するための方法を提供する。本発明の組成物は、頭頚部癌、神経膠腫、皮膚癌、肺癌、乳癌および甲状腺癌をはじめとする癌に随伴する血管新生を阻害するために使用することができる。ＴＥＴＲＡＣなどの甲状腺ホルモン類似体をポリマーコンジュゲートとして、またはナノ粒子として、投与することができる。

原形質膜において開始されるＴＥＴＲＡＣの細胞作用の性質：
甲状腺ホルモン、ＴＥＴＲＡＣ、の原形質膜受容体に対する作用は、新生血管形成の標準的アッセイ（ニワトリ漿尿膜、ヒト皮膚微小血管内皮細胞）において、Ｔ４およびＴ３の血管新生促進効果を阻害する。ＴＥＴＲＡＣは、インビトロでおよび一定のインビトロモデルにおいてヒトおよび動物癌細胞の増殖に対するアゴニスト甲状腺ホルモン類似体（Ｔ４、Ｔ３）の作用を遮断する。増殖がＴＥＴＲＡＣによって阻害されるヒト癌細胞モデルには、乳癌および肺癌などがある。動物腫瘍細胞には、神経膠腫／神経膠芽細胞腫などのヒト脳癌についてのモデルである神経膠腫細胞などがある。

アゴニスト甲状腺ホルモン類似体不在下で原形質膜において開始されるＴＥＴＲＡＣの作用：
インテグリン上のＲＧＤ部位への前記ホルモン受容体の近接が、Ｔ４およびＴ３などのホルモンアゴニスト不在下で、ポリペプチド内皮増殖因子、例えば血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）および塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）（しかし、これらに限定されない）の血管新生促進活性を遮断するＴＥＴＲＡＣの能力の根底にある。

神経膠腫および甲状腺癌細胞においてアポトーシスを誘導するためのＴＥＴＲＡＣ
下の図は、ＴＥＴＲＡＣが、Ｃ６神経膠腫細胞においておよび甲状腺癌細胞（ＢＨＰ２−７）においてアポトーシスを誘導できることを明示している。従って、ＴＥＴＲＡＣに曝露されたときの癌細胞の増殖低下の少なくとも一部は、プログラム細胞死（アポトーシス）である。任意の癌細胞の研究において増殖が遅くなった場合、その論点は、細胞周期停止モードで細胞が生存するか、またはそれらが死滅するかである。細胞死は、細胞周期停止より望ましい。

ウイルス因子のためのＴＥＴＲＡＣ
ＴＥＴＲＡＣは、西ナイルウイルスに対して使用することができる。細胞侵入がＲＧＤ結合部位経由でアルファｖベータ３インテグリンに依存する、西ナイルウイルスなどの一定のウイルス因子を、ＴＥＴＲＡＣで治療することができる。

ヒト肺癌のためのＴＥＴＲＡＣ
甲状腺ホルモン／ＴＥＴＲＡＣの効果は、小細胞と非小細胞両方のヒト肺癌細胞におけるエストロゲン受容体（ＥＲ）を必要とする。Ｌ−チロキシン（Ｔ４）および３，５，３’−トリヨード−Ｌ−チロニン（Ｔ３）は、小細胞および非小細胞ヒト肺癌系統の増殖を生じさせ、これは、エストロゲン受容体−アルファ（ＥＲアルファ）の腫瘍細胞における存在を必要とするメカニズムによって行われる。テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）は、Ｔ４およびＴ３の細胞作用へのインテグリンアルファＶベータ３上の甲状腺ホルモンの細胞表面受容体の関与についてのプローブである。遊離している、またはナノ粒子としての、ＴＥＴＲＡＣは、肺癌細胞に対するＴ４およびＴ３の増殖作用を遮断する。これは、インテグリンアルファＶベータ３上の甲状腺ホルモンの細胞表面受容体がＴ４およびＴ３の効果を媒介することを示している。本発明者らは、抗アルファＶおよび抗ベータ３ならびにＲＧＤペプチドで肺癌細胞に対するＴ４およびＴ３の増殖作用も遮断した。これらの観察は、肺癌細胞の増殖のＴ４およびＴ３による促進における甲状腺ホルモンのインテグリン受容体の役割をさらに支持する。

遊離している、またはナノ粒子としての、ＴＥＴＲＡＣは、ヒト肺癌の管理のための魅力的な新規戦略である。その抗増殖作用に加えて、遊離している、またはナノ粒子としての、ＴＥＴＲＡＣは、抗血管新生性であり、肺癌増殖を支援する新たな血管の成長を阻害する。従って、ＴＥＴＲＡＣは、肺腫瘍増殖の阻害に関連した少なくとも２つの別個の作用を有する。

ＴＥＴＲＡＣのナノ粒子製剤には、ポリリシルグリコール酸（ＰＬＧＡ）にまたはＴＥＴＲＡＣによる細胞への侵入を妨げるために十分なサイズのコラーゲンもしくは他の分子にエステルもしくはエーテル結合によって連結されているＴＥＴＲＡＣなどがある。これらの製剤は、インテグリンアルファＶベータ３上の甲状腺ホルモンの細胞表面受容体にＴＥＴＲＡＣの作用を限定する。

癌に関連した新たな血管の成長：
血管新生を阻害することによって治療可能な状態の例としては、神経膠腫および乳癌をはじめとする（しかし、これらに限定されない）原発性または転移性腫瘍が挙げられるが、これらに限定されない。こうした方法では、甲状腺ホルモン誘導血管新生効果を阻害する化合物を使用して血管新生を阻害する。そうした方法の詳細は、実施例１２において例証する。ＴＥＴＲＡＣなどの甲状腺ホルモンアンタゴニスト、類似体、ポリマーコンジュゲート、およびそれらのナノ粒子は、アンジオポエチン−２を阻害するための抗血管新生性薬剤としても使用することができる。アンジオポエチン−２は、腫瘍の周囲の血管を不安定にし、それらの血管をＶＥＧＦによる出芽の誘導をより受けやすくするので、この阻害は、癌に関連した新たな血管の成長の予防に役立ち得る。

糖尿病性網膜症：
血管新生を阻害することによって治療可能な状態の例としては、糖尿病性網膜症および関連状態が挙げられるが、これらに限定されない。こうした方法では、甲状腺ホルモン誘導血管新生効果を阻害する化合物を使用して血管新生を阻害する。そうした方法の詳細は、実施例８ＡおよびＢにおいて例証する。

（糖尿病ではなく）低酸素症によって誘導される増殖性網膜症が、アルファＶ（αＶ）インテグリン発現に依存することは公知である（Ｅ Ｃｈａｖａｋｉｓら，Ｄｉａｂｅｔｏｌｏｇｉａ ４５：２６２−２６７，２００２）。特定のインテグリンアルファＶベータ−３（αＶβ３）に対する甲状腺ホルモンの作用が、糖尿病性網膜症の発現の際に生じ得ることを本明細書において提案する。インテグリンαＶβ３は、本明細書では、甲状腺ホルモンの細胞表面受容体と定義する。甲状腺ホルモン、その類似体、およびポリマーコンジュゲーションは、この受容体を介して血管新生を誘導するように作用する。

皮膚科学−皮膚毛細血管拡大および血管腫のサイズを減少させるためのナノ粒子テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）：
ＴＥＴＲＡＣなどの甲状腺ホルモンアンタゴニスト、類似体、ポリマーコンジュゲート、およびそれらのナノ粒子は、非癌性皮膚疾患を治療するためにも使用することができる。誘導体化ＴＥＴＲＡＣのこの治療および／または美容作用は、その抗血管新生活性に基づく。皮膚毛細血管拡張症またはクモ状血管腫に軟膏またはクリームとして局所塗布された誘導体化ＴＥＴＲＡＣは、内因性（循環性）甲状腺ホルモンの、およびペプチド血管成長因子の内皮細胞に対する血管新生促進作用を妨害するであろう。ＰＬＧＡ誘導体としての局所塗布ホルモン類似体の全身作用は、極わずかであろう。軽度の毛細血管拡張症または血管腫の場合、誘導体化ＴＥＴＲＡＣをＯＴＣ製品での臨床使用に利用できるようにすることができる。

ＴＥＴＲＡＣは、甲状腺ホルモンの血小板凝集作用を妨害するので、ＴＥＴＲＡＣの塗布部位での外傷は、局所的に出血し得る。これは、既存の未治療毛細血管拡張症および血管腫に伴う危険である。しかし、こうした血管病変範囲に対するＴＥＴＲＡＣの塗布を首尾よく減少させることにより、局所斑状出血の危険は低下するであろう。

ナノ粒子にコンジュゲートさせた甲状腺アンタゴニストについてのさらなる皮膚科的局所用途としては、シバット多形皮膚萎縮症（顔面新生血管形成および拡張血管をもたらす太陽光線への長期曝露）、アクネまたは顔面酒さ、乾癬（単独でまたはビタミンＤ類似体との組み合わせで）、および皮膚癌が挙げられる。

入手可能な抗血管新生性薬剤は、ここでターゲットにする皮膚病変に使用するには高価すぎる。これらの薬剤は、局所吸収されないので、皮膚用途に適さないこともある。

治療および製剤の方法：
甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体は、その必要がある患者における血管新生を促進するための方法において使用することができる。この方法は、有効量の甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体を低い日用量で１週間以上、同時投与することを含む。前記方法は、心筋梗塞後に心臓機能を回復させる治療として用いることができる。前記方法は、心筋虚血または心臓以外の領域への不適当な血流（例えば、血流減少が問題となる末梢血管疾患、例えば末梢動脈閉塞性疾患）に苦しんでいる、冠動脈疾患患者において血流を改善のために用いることもできる。

本化合物は、その化合物を、経口投与、直腸内投与、局所投与または非経口投与（皮下投与、筋肉内投与および静脈内投与を含む）をはじめとする投与に付すために適する任意の医療上許容される手段によって、投与することができる。例えば、アデノシンは、非常に短い半減期を有する。このため、好ましくは、静脈内投与される。しかし、はるかに長い半減期を有し、他の手段によって投与することができるアデノシンＡ_２アゴニストが開発された。甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体は、例えば、静脈内投与、経口投与、局所投与、経鼻投与することができる。

一部の実施形態において、甲状腺ホルモン類似体、ポリマー形および誘導体は、異なる手段によって投与される。

血管新生の刺激に有効であるために必要な甲状腺ホルモン、その類似体、ポリマー形および誘導体の量は、勿論、治療を受ける個体によって変わるであろうし、最終的には医師の判断次第である。考慮すべき要因としては、治療を受ける患者の状態、使用される特定のアデノシンＡ_２受容体アゴニストの効力、その製剤の性質、およびその患者の体重が挙げられる。甲状腺ホルモン類似体またはそのポリマー形および誘導体の閉塞治療用量は、所望の効果をもたらす任意の用量である。

上に記載した化合物は、好ましくは、甲状腺ホルモン類似体またはそのポリマー形および誘導体を投与方式に許容される担体とともに含む製剤で投与される。当業者に一般に知られているような、所期の用途に適する活性成分を含有する任意の製剤または薬物送達系を使用することができる。経口投与、直腸内投与、局所投与または非経口投与（皮下投与、腹腔内投与、筋肉内投与および静脈内投与を含む）に適する、医薬的に許容される担体は、当業者に公知である。前記担体は、その製剤の他の成分と相溶性であり、その受容者に有害でないという意味で、医薬的に許容されるものでなければならない。

非経口投与に適する製剤としては、便利には、受容者の血液と好ましくは等張である活性化合物の滅菌水性調製品が挙げられる。従って、こうした製剤は、便利には、蒸留水、蒸留水中５％のデキストロース、または食塩水を含有し得る。有用な製剤としては、式（Ｉ）の化合物を含有する濃縮溶液または固体も挙げられ、これらを適切な溶媒で希釈すると、上の非経口投与に適する溶液が得られる。

それぞれが所定量の活性化合物を含有する個別単位、例えばカプセル、カシェ剤、錠剤もしくはロゼンジ、での；粉末もしくは顆粒としての；または水性液もしくは非水性液中の懸濁液もしくは溶液、例えば、シロップ、エリキシル、エマルジョンもしくはドラフトでの、腸への投与のために、化合物を不活性担体に添合する場合がある。適する担体は、デンプンまたは糖であり得、ならびに滑沢剤、矯味矯臭剤、結合剤および同じ性質の他の材料を含む場合がある。

錠剤は、１つ以上の補助成分を場合によっては用いて、圧縮または成形により製造することができる。圧縮錠剤は、補助成分、例えば結合剤、滑沢剤、不活性希釈剤、界面活性剤または分散剤と場合によっては混合された、易流動形態、例えば、粉末または顆粒の活性化合物を適する機械で圧縮することによって作製することができる。成形錠剤は、粉末活性化合物と任意の適する担体の混合物を適する機械で成形することによって製造することができる。

シロップまたは懸濁液は、糖、例えばスクロース、の濃縮水溶液に活性化合物を添加することによって製造することができ、該水溶液に任意の補助成分が添加される場合がある。そうした補助成分としては、矯味矯臭剤、糖の結晶化を遅らせるための薬剤、または任意の他の成分の溶解度を増大させるための薬剤、例えば多価アルコール、例えばグリセロールもしくはソルビトール、を挙げることができる。

直腸内投与用の製剤は、坐薬基剤用の従来の担体、例えば、カカオ脂またはＷｉｔｅｐｓｏｌ Ｓ５５（ドイツのＤｙｎａｍｉｔｅ Ｎｏｂｅｌ Ｃｈｅｍｉｃａｌの商標）を有する坐薬として提供することができる。

あるいは、本化合物は、リポソームまたはマイクロスフェア（またはマイクロ粒子）の中に入れて投与することができる。患者に投与するためのリポソームおよびマイクロスフェアの作製方法は、当業者に周知である。米国特許第４，７８９，７３４号（その内容は、本明細書に参考として援用される）には、リポソームに生体材料を封入するための方法が記載されている。本質的には、前記材料を水溶液に溶解し、適するリン脂質および脂質を、必要な場合には界面活性剤とともに添加し、必要に応じてその材料を透析または超音波処理する。公知方法の総説は、Ｇ．Ｇｒｅｇｏｒｉａｄｉｓ，Ｃｈａｐｔｅｒ １４，“Ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ，”Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，ｐｐ．２８７−３４１（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，１９７９）によって提供されている。

ポリマーおよびタンパク質から作られるマイクロスフェアは当業者に周知であり、これらは、胃腸管を通って直接血流に進むように作ることができる。あるいは、本化合物を組み込み、そのマイクロスフェアまたはマイクロスフェアの複合材を内植して、数日から数ヶ月にわたる期間にわたって徐放させることができる。例えば、米国特許第４，９０６，４７４号、同第４，９２５，６７３号および同第３，６２５，２１４号、ならびにＪｅｉｎ，ＴＩＰＳ １９：１５５−１５７（１９９８）参照（これらの内容は、本明細書に参考として援用される）。

１つの実施形態において、本甲状腺ホルモン類似体またはそのポリマー形、およびアデノシン誘導体を、静脈内投与後に毛細血管床に収容される適切なサイズを有するリポソームまたはマイクロ粒子の中に配合することができる。リポソームまたはマイクロ粒子が虚血組織を包囲する毛細血管床に収容されると、それらの薬剤をそれらが最も有効である部位に局所的に投与することができる。虚血組織へのターゲティングに適するリポソームは、例えば、「Ｌｉｐｏｓｏｍａｌ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｏｆ ｉｓｃｈｅｍｉｃ ｔｉｓｓｕｅ」と題するＢａｌｄｅｓｃｈｗｅｉｌｅｒの米国特許第５，５９３，６８８号（この内容は、本明細書に参考として援用される）に開示されているように、一般に約２００ナノメートル未満であり、典型的に単層小胞でもある。

好ましいマイクロ粒子は、生体分解性ポリマー、例えば、ポリグリコリド、ポリラクチドおよびそれらのコポリマーから作製されたものである。当業者は、所望の薬物放出速度および所望の投薬量をはじめとする様々な因子に依存して適する担体系を容易に決定することができる。

１つの実施形態において、前記製剤は、カテーテルにより血管内部に直接投与される。この投与は、例えば、カテーテルの穴を通して行うことができる。活性化合物が比較的長い半減期（およそ１日から１週間以上）を有する実施形態における製剤は、Ｈｕｂｂｅｌｌらの米国特許第５，４１０，０１６号に開示されているものなどの生体分解性ポリマーヒドロゲルに含めることができる。これらのポリマーヒドロゲルを組織腔内部に送達し、そのポリマーの分解につれて経時的に活性化合物を放出させることができる。所望される場合には、ポリマーヒドロゲルは、それらの中に分散された活性化合物を含むマイクロ粒子またはリポソームを有することができ、これは、活性化合物の制御放出のための別のメカニズムとなる。

前記製剤は、単位剤形で便利に提供することができ、薬学技術分野では周知の任意の方法によって作製することができる。すべての方法が、１つ以上の補助成分を構成する担体と活性化合物を会合させる段階を含む。一般に、前記製剤は、液体担体または微粉固体担体と活性化合物を均一かつ均質に会合させ、その後、必要な場合には、その生成物を所望の単位剤形に成形することによって作製される。

前記製剤は、追加の成分、例えば、様々な生物活性物質、例えば増殖因子（ＴＧＦ−ベータ、塩基性線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ２）、上皮増殖因子（ＥＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子アルファおよびベータ（ＴＧＦアルファおよびベータ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）および血管内皮増殖因子／血管透過性因子（ＶＥＧＦ／ＶＰＦ）を含む）、抗ウイルス薬、抗菌薬、抗炎症薬、免疫抑制剤、鎮痛薬、血管形成剤または細胞接着分子、を場合によっては含むことがある。

上述の成分に加えて、前記製剤は、医薬製剤の技術分野で利用されている１つ以上の任意の補助成分、例えば、希釈剤、緩衝剤、矯味矯臭剤、結合剤、界面活性剤、増粘剤、滑沢剤、懸濁化剤、保存薬（抗酸化物質を含む）などをさらに含むことがある。

製剤および治療方法
本発明の単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体インデューサー、あるいは単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体受容体のアゴニストは、利用する特定の単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストに適合した任意の経路によって投与することができる。従って、適宜、投与は、経口投与であってもよいし、または非経口投与（静脈内および腹腔内投与経路を含む）であってもよい。加えて、投与は、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストの定期的な注射による場合もあり、あるいは体外にあるレザバー（例えば、ｉ．ｖ．バッグ）または体内にあるレザバー（例えば、生体侵食性インプラント、または内植された、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体生産性細胞）から、静脈内または腹腔内投与によって、より継続的に行われる場合もある。

本発明の治療薬（すなわち、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサー、あるいは単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体受容体のアゴニスト）は、任意の適する手段により、直接（例えば、局所的に、例えば、組織位置への注射、内植または局所投与により）または全身的に（例えば、非経口的にまたは経口的に）個体に供給することができる。前記薬剤が、非経口的に、例えば、静脈内、皮下、分子内、眼科的、腹腔内、筋肉内、口腔内、直腸内、膣、眼窩内、脳内、頭蓋内、髄腔内、心室内、クモ膜下、槽内、嚢内、鼻腔内投与により、またはエーロゾル投与により、供給される場合、その薬剤は、好ましくは、水性または生理適合性の懸濁液または溶液の部分を含む。従って、この単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の担体またはビヒクルは、患者への所望の薬剤の送達に加えて、患者の電解質および／または容積バランスに別様に悪影響を及ぼさないように、生理的に許容されるものである。従って、前記薬剤のための液体媒質は、正常生理食塩液（例えば、９．８５％ ＮａＣｌ水溶液、０．１５Ｍ、ｐＨ７〜７．４）を含むことができる。

ポリマー甲状腺ホルモン類似体プロドメインを有する二量体の会合は、対応する成熟形より多く生理溶液に溶解することが一般にできる、ポリマー甲状腺ホルモン類似体のプロ形を生じさせる。

非経口投与に有用な溶液は、例えば、ＲＥＭＩＮＧＴＯＮ’Ｓ ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬ ＳＣＩＥＮＣＥＳ（Ｇｅｎｎａｒｏ，Ａ．，ｅｄ．），Ｍａｃｋ Ｐｕｂ．，１９９０に記載されている、製薬記述分野では周知の任意の方法によって、調製することができる。本発明の治療薬の製剤は、例えば、ポリアルキレングリコール、例えばポリエチレングリコール、植物由来の油、水素化ナフタレンなどを含む場合がある。直接投与するための製剤は、特に、所望の位置での薬剤の維持を助長するために高粘度のグリセロールおよび他の組成物を含む場合がある。例えば、ヒアルロン酸、コラーゲン、リン酸三カルシウム、ポリブチラート、ラクチドおよびグリコリドポリマーならびにラクチド／グリコリドコポリマーをはじめとする、生体適合性、好ましくは生体吸収性のポリマーは、インビボでの薬剤の放出を制御するために有用な賦形剤であり得る。これらの薬剤のための他の潜在的に有用な非経口送達システムとしては、エチレン−酢酸ビニルコポリマー粒子、浸透圧ポンプ、内植できる注入システム、およびリポソームが挙げられる。吸入投与のための製剤は、賦形剤として例えばラクトースを含有し、または例えばポリオキシエチレン−９−ラウリルエーテル、グリココレートおよびデオキシコレートを含有する水溶液である場合もあり、または点鼻剤の形態で投与するための油性溶液である場合もあり、または鼻腔内に適用するためのゲルとしての場合もある。非経口投与のための製剤は、口腔内投与のためにグリココレート、直腸内投与のためにメトキシサリチレート、または膣投与のためにクエン酸も含む場合がある。単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストと、無刺激賦形剤、例えば、室温で固体であり、体温で液体であるカカオ脂または他の組成物とを混合物によって、直腸内投与のための坐薬を作製することもできる。

皮膚表面への局所投与のための製剤は、皮膚科的に許容される担体、例えばローション、クリーム、軟膏または石鹸を用いて、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストを分散させることによって作製することができる。塗布を局在化し、除去を抑制するために、皮膚上に薄膜または層を形成することができる担体が、特に好ましい。体内組織表面への局所投与の場合、液体組織接着剤、または組織表面への吸着を増進することが知られている他の物質に薬剤を分散させてもよい。例えば、ヒドロキシプロピルセルロースまたはフィブリノゲン／トロンビン溶液を効果的に用いることができる。あるいは、組織コーティング溶液、例えばペクチン含有製剤を使用してもよい。

あるいは、本明細書に記載する薬剤は、経口投与することができる。治療薬としてのタンパク質の経口投与は、一般には実施されない。殆どのタンパク質は、血流に吸収され得る前に、哺乳動物の消化器系における消化酵素および酸によって容易に分解されるからである。しかし、本明細書に記載する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、酸安定性であり、プロテアーゼ耐性である（例えば、米国特許第４，９６８，５９０号参照）。加えて、ＯＰ−１が、乳腺抽出物、初乳および産後５７日目の母乳において同定された。さらに、乳腺抽出物から精製されたＯＰ−１は、形態形成活性であり、血流においても検出される。乳摂取による母性投与は、ＴＧＦ−βスーパーファミリータンパク質の天然送達経路であり得る。Ｌｅｔｔｅｒｉｏら，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６４：１９３６−１９３８（１９９４）には、ＴＧＦ−βがマウスの乳中に存在すること、および放射標識ＴＧＦ−βが乳幼児の胃腸膜によって吸収されることが報告されている。摂取された標識ＴＧＦ−βは、肺、心臓および肝臓をはじめとするその幼児の体組織において無損傷の形で迅速に出現する。最終的には、可溶性形態の単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、例えば、抗酸化物質または抗炎症薬を伴うまたは伴わない、成熟した単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体。これらの発見、ならびに下の実施例において開示するものは、経口および非経口投与が、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体を含む、ＴＧＦ−βスーパーファミリータンパク質を個体に投与するための実行可能な手段であることを示している。加えて、本明細書に記載する一定の単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の成熟形は、一般には貧溶解性であるが、乳（および乳腺抽出物および初乳）において見出される単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体は、おそらく、成熟、形態形成活性形と、発現される完全長ポリペプチド配列のプロドメインの一部もしくはすべてとその会合により、および／または１つ以上の乳成分との会合により、易溶解性である。従って、本明細書において提供する化合物は、インビトロまたはインビボでのそれらの溶解度を高めることができる分子と会合させることができる。

単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体をＣＮＳ障害用の治療薬として使用する場合、血液脳関門（血液中に存在する物質の、選択された範疇だが、すべてを有効に分離除去してそれらの脳への進入を防止する脳毛細血管壁構造）の克服という追加の問題に対処しなければならない。血液脳関門は、前記ポリマー甲状腺ホルモン類似体の脳への直接注入により、または嗅覚ニューロンによる取り込みおよび逆行性輸送に適する製剤の鼻腔内投与もしくは吸入により、容易に迂回することができる。あるいは、前記ポリマー甲状腺ホルモン類似体を、血液脳関門を横断するその輸送を増進するように修飾することができる。例えば、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体のトランケート形、または単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体−刺激剤が、最もうまくいくだろう。あるいは、本明細書において提供する単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストは、当業者に公知の標準的な手段を用いて、誘導体化することができ、または親油性部分に、もしくは脳血液関門を横断して能動輸送される物質にコンジュゲートさせることができる。例えば、Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｒｅｖｉｅｗ ７：３１４−３３０（１９８６）および米国特許第４，８０１，５７５号参照。

本明細書において提供する化合物は、前記単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストを所望の組織にターゲティングすることができる分子と会合させることもできる。例えば、所望の組織の細胞上の表面分子と特異的に相互作用する抗体、抗体フラグメントまたは他の結合性タンパク質を使用することができる。例えば、米国特許第５，０９１，５１３号に開示されている単鎖結合部位技術を用いて、有用なターゲティング分子を設計することができる。ターゲティング分子は、前記単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストと共有結合的にまたは非共有結合的に会合させることができる。

通常の当業者には理解されるであろうが、製剤された組成物は、治療有効量の前記単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストを含有する。すなわち、それらは、損傷した中枢または末梢神経系機能の検出可能な回復をその完全な回復に至るまで（その完全な回復を含む）刺激するために十分な時間、罹患神経系組織に適切な濃度を供給する量の薬剤を含有する。当業者には理解されるであろうが、これらの濃度は、選択される薬剤の生物学的効力、その特定の薬剤の化学的特性（例えば、疎水性）、１つ以上の賦形剤との混合物をはじめとするその製剤、投与経路、および活性成分が組織部位に直接投与されるのか、または全身投与されるのかを含む構想される治療法をはじめとする、多数の因子に依存して変わるであろう。投与される好ましい投薬量も、罹患または損傷組織の状態、およびその特定の哺乳動物の総合的健康状態などの可変要素に依存する可能性が高い。一般的な事柄として、抗酸化物質および／または抗炎症薬の存在下、０．００００１〜１０００ｍｇの単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の単回、１日１回、２週間に１回または週１回の投薬量で十分であり、０．０００１〜１００ｍｇが好ましく、０．００１から１０ｍｇはさらにいっそう好ましい。あるいは、０．０１〜１０００μｇ／ｋｇ（体重）、さらに好ましくは０．０１〜１０ｍｇ／ｋｇ（体重）の単回、１日１回、２週間に１回または週１回の投薬量を用いると有利であり得る。ナノ粒子は、ナノ粒子１個につき、そのナノ粒子に封入されたまたはそのナノ粒子の表面に化学結合によって固定化された甲状腺ホルモン分子を１個と１００個の間、含有する。前記ナノ粒子は、甲状腺ホルモン類似体と化学療法薬または他の公知血管新生促進もしくは抗血管新生剤とともに同時投与することができる。さらに、前記ナノ粒子は、内部に化学療法薬、血管新生促進剤または抗血管新生剤を含有し、甲状腺ホルモンは、そのナノ粒子の表面に化学結合によって固定化されている。前記ナノ粒子の表面は、安定な化学結合によってその表面に結合されたαＶβ３リガンドなどの部位指向性部分を含有する。本有効用量は、所望どおりに、またはその特定の状況下で適すると考えられるとおりに、１回量で、または多数（２以上）の分割用量で、投与することができる。ボーラス注射または拡散性輸液製剤を使用することもできる。反復または常習的注入の助長が望まれる場合には、半透性ステント（例えば、静脈内、腹腔内、槽内または嚢内）の内植が賢明であり得る。

本発明の単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体、インデューサーまたはアゴニストは、勿論、単独で投与してもよいし、または本明細書に記載する状態の治療に有益なことが知られている他の分子との組み合わせで投与してもよい。例えば、様々な周知増殖因子、ホルモン、酵素、治療組成物、抗生物質または他の生物活性剤も、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体とともに投与することができる。従って、様々な公知増殖因子、例えば、ＮＧＦ、ＥＧＦ、ＰＤＧＦ、ＩＧＦ、ＦＧＦ、ＴＧＦ−αおよびＴＧＦ−β、ならびに酵素、酵素阻害剤、抗酸化物質、抗炎症薬、フリーラジカル掃除剤（ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ａｇｅｎｔ）、抗生物質および／または化学誘引物質／走化性因子を、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体の製剤に含めることができる。

以下の実施例は、本発明の一定の実施形態をさらに例証するためのものであり、本発明の範囲を限定するためのものではない。

実施例１〜７
以下の材料および方法を実施例１〜７のために用いた。すべての試薬は、化学グレードであり、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．（ミズーリ州、セントルイス）から、またはＶＷＲ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ（ニュージャージー州、ブリッジポート）を通して購入した。酢酸コルチゾン、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）およびゼラチン溶液（ウシの皮膚からの２％タイプＢ）は、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．から購入した。ニワトリ受精卵は、Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、ＳＰＡＦＡＳ Ａｖｉａｎ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ ＆ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ（コネチカット州、ノース・フランクリン）から購入した。Ｔ４、３，５，３’−トリヨード−Ｌ−チロニン（Ｔ３）、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、Ｔ４−アガロース、６−Ｎ−プロピル−２−チオウラシル（ＰＴＵ）、ＲＧＤ含有ペプチド、およびＲＧＥ含有ペプチドは、Ｓｉｇｍａから入手し、ＰＤ ９８０５９は、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍから入手し、ならびにＣＧＰ４１２５１は、Ｎｏｖａｒｔｉｓ Ｐｈａｒｍａ（スイス、バーゼル）からの寄贈品であった。ポリクローナル抗ＦＧＦ２およびモノクローナル抗−β−アクチンは、Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙから入手し、ヒト組換えＦＧＦ２およびＶＥＧＦは、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎから入手した。リン酸化ＥＲＫ１／２に対するポリクローナル抗体は、Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓからのものであり、ヤギ抗ウサギＩｇＧは、ＤＡＫＯからのものであった。αＶβ３に対するモノクローナル抗体（ＳＣ７３ １２）およびα−チューブリンに対するモノクローナル抗体（Ｅ９）は、Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（カリフォルニア州、サンタクルーズ）から購入した。正常マウスＩｇＧおよびＨＲＰコンジュゲート化ヤギ抗ウサギ抗体Ｉｇは、Ｄａｋｏ Ｃｙｔｏｍａｔｉｏｎ（カリフォルニア州、カーピンテリア）から購入した。αＶβ３に対するモノクローナル抗体（ＬＭ６０９）およびαＶβ５に対するモノクローナル抗体（Ｐ１Ｆ６）、ならびに精製αＶβ３は、Ｃｈｅｍｉｃｏｎ（カリフォルニア州、テメキュラ）から購入した。Ｌ−［^１２５Ｉ］−Ｔ４（比放射能、１２５０μＣｉ／μｇ）は、Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（マサチューセッツ州、ボストン）から入手した。

血管新生の漿尿膜（ＣＡＭ）モデル：インビトロ
以前に記載された方法によって新生血管形成を調査した。９〜１２匹の日齢１０日のニワトリ胚をＳＰＡＦＡＳ（コネチカット州、プレストン）から購入し、３７℃、５５％相対湿度でインキュベートした。皮下注射針を使用して、気嚢を隠す殻に小さな穴をあけ、その卵の広い側面の、ろうそくの灯に透かして調べることによって特定した胚子被膜の無血管部分の直ぐ上に、第二の穴をあけた。第一の穴に陰圧をかけることにより、第二の穴の真下に仮の気嚢を作り、それによってＣＡＭを殻から分離させた。その脱落させたＣＡＭの上の殻から小型クラフト用といし車（Ｄｒｅｍｅｌ；Ｅｍｅｒｓｏｎ Ｅｌｅｃｔｒｉｃ Ｃｏ．の一部門）を使用して約１．０ｃｍ２の窓を切り取って、下にあるＣＡＭに直接接触できるようにした。ＦＧＦ２（１μｇ／ｍＬ）を標準血管新生促進性薬剤として使用して、日齢１０日の胚のＣＡＭに対して新たな血管分枝を誘導した。無菌条件下で、Ｎｏ．１濾紙の滅菌ディスク（Ｗｈａｔｍａｎ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ）を３ｍｇ／ｍＬの酢酸コルチゾンおよび１ｍｍｏｌ／ｍＬのＰＴＵで前処理し、空気乾燥させた。その後、甲状腺ホルモン、ホルモン類似体、ＦＧＦ２または対照溶媒、および阻害剤をそれらのディスクに塗布し、ディスクを乾燥させた。その後、それらのディスクをＰＢＳに懸濁させ、成長中のＣＡＭの上に配置した。３日のインキュベーションの初日に、Ｔ４またはＦＧＦ２で処理したフィルターを配置し、３０分後、指示どおり選択サンプルにＦＧＦ２に対する抗体を添加した。２４時間の時点で、フィルターディスクにより局所的にＣＡＭにＭＡＰＫカスケード阻害剤ＰＤ ９８０５９も添加した。

ＣＡＭ切片の顕微鏡分析：
３７℃、５５％相対湿度での３日間のインキュベーションの後、それぞれのフィルターディスクの直ぐ上のＣＡＭ組織を対照および処理したＣＡＭサンプルから切除した。組織をＰＢＳで３回洗浄し、３５ｍｍのペトリ皿（Ｎａｌｇｅ Ｎｕｎｃ）に入れ、ＳＶ６立体顕微鏡（Ｚｅｉｓｓ）のもとで５０倍で検査した。フィルターに曝露されたＣＡＭセクションのデジタル画像を、３ＣＣＤ（電荷結合素子）ビデオカメラシステム（株式会社東芝（Ｔｏｓｈｉｂａ））を使用して収集し、Ｉｍａｇｅ−Ｐｒｏソフトウェア（Ｍｅｄｉａ Ｃｙｂｅｒｎｅｔｉｃｓ）で解析した。それぞれのフィルターディスクに相当する円形領域内に入っている血管分枝点の数を数えた。それぞれのＣＡＭ組織標本において１つの画像を計数し、８〜１０個のＣＡＭ組織標本からの調査結果をそれぞれの処理条件（甲状腺ホルモンまたは類似体、ＦＧＦ２、ＦＧＦ２抗体、ＰＤ９８０５９）について解析した。加えて、それぞれの実験を３回行った。得られた血管新生指数は、サンプルのそれぞれのセットにおける新たな分枝点の平均値±ＳＥＭである。

ＦＧＦ２アッセイ：
１０％ウシ胎仔血清を補足したＭ１９９培地中でＥＣＶ３０４内皮細胞を培養した。ＥＣＶ３０４細胞（細胞数１０^６）を、一晩、完全培地中、０．２％ゲルコート２４ウエルプレートを用いて完全培地中で平板培養し、その後、無血清培地で細胞を洗浄し、指示どおりのＴ４またはＴ３で処理した。７２時間後、上清を回収し、市販のＥＬＩＳＡシステム（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して希釈せずにＦＧＦについてのアッセイを行った。

ＭＡＰＫ活性化：
０．２５％ホルモン欠乏血清１３を有するＭ１９９倍地中で２日間、ＥＣＶ３０４内皮細胞を培養した。その後、細胞をＴ４（１０^−７ｍｏｌ／Ｌ）で１５分から６時間処理した。追加実験では、細胞をＴ４もしくはＦＧＦ２で、またはＰＤ ９８０５９もしくはＣＧＰ４１２５１の存在下、Ｔ４で処理した。以前に報告した本発明者らの方法によってすべてのサンプルから核画分を準備し、ポリアクリルアミドゲル電気泳動によってタンパク質を分離し、リン酸化ＥＲＫ１／２に対する抗体での免疫ブロットのために膜に移した。核リン酸化ＥＲＫ１／２の出現は、Ｔ４によるこれらのＭＡＰＫアイソフォームの活性化を意味する。

逆転写−ポリメラーゼ連鎖反応：
１０ｃｍプレート内の集密ＥＣＶ３０４細胞をＴ４（１０^−７ｍｏｌ／Ｌ）で６から４８時間処理し、イソシアン酸グアニジウム（Ｂｉｏｔｅｃｘ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）を使用して全ＲＮＡを抽出した。Ａｃｃｅｓｓ ＲＴ−ＰＣＲシステム（Ｐｒｏｍｅｇａ）を使用して、ＲＮＡ（１μｇ）を逆転写−ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）に付した。４８℃で４５分間、全ＲＮＡをｃＤＮＡに逆転写し、その後、９４℃で２分間、変性させた。９４℃で３０秒間の変性、６０℃で６０秒間のアニーリング、および６８℃で１２０秒間の伸長を伴う、第二鎖合成およびＰＣＲ増幅を４０サイクル行い、すべてのサイクルの完了後に７分間、６８℃で最終伸長を行った。ＦＧＦ２のためのＰＣＲプライマーは、次のとおりであった：ＦＧＦ２センス鎖５’−ＴＧＧＴＡＴＧＴＧＧＣＡＣＴＧＡＡＡＣＧ−３’（配列番号：１）、アンチセンス鎖５’−ＣＴＣＡＡＴＧＡＣＣＴＧＧＣＧＡＡＧＡＣ−３’（配列番号：２）。そのＰＣＲ産物の長さは、７３４ｂｐであった。ＧＡＰＤＨのためのプライマーは、センス鎖５’−ＡＡＧＧＴＣＡＴＣＣＣＴＧＡＧＣＴＧＡＡＣＧ−３’（配列番号：３）およびアンチセンス鎖５’−ＧＧＧＴＧＴＣＧＣＴＧＴＴＧＡＡＧＴＣＡＧＡ−３’（配列番号：４）を含み、そのＰＣＲ産物の長さは、２１８ｂｐであった。ＲＴ−ＰＣＲの産物を１．５％アガロースゲルでの電気泳動によって分離し、臭化エチジウムで視覚化した。ＬａｂＩｍａｇｅソフトウェア（Ｋａｐｅｌａｎ）を使用して、前記ゲルのターゲット結合を定量し、［ＦＧＦ２／ＧＡＰＤＨ］×１０の値をそれぞれの時点について計算した。

統計解析：
実験群とそれぞれの対照群とを比較するために一元配置分散分析（ＡＮＯＶＡ）による統計解析を行い、ｐ＜０．０５に基づいて有意差を計算した。

マウスにおけるマトリゲルＦＧＦ_２または癌細胞系統インプラントにおけるインビボ血管新生：インビボマウス血管新生モデル：
マウスマトリゲルモデルは、以前に記載された方法（Ｇｒａｎｔら，１９９１；Ｏｋａｄａら，１９９５）に従って、および本発明者らの研究所において実現された（Ｐｏｗｅｌら，２０００）とおりに行う。簡単に言うと、増殖因子を含まないマトリゲル（マサチューセッツ州、ベッドフォードのＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を一晩、４℃で解凍し、氷の上に置く。マトリゲルのアリコートを冷却したポリプロピレン管に入れ、ＦＧＦ２、甲状腺ホルモン類似体または癌細胞（細胞数１×１０^６）をそのマトリゲルに添加する。食塩水、ＦＧＦ２、甲状腺ホルモン類似体または癌細胞とマトリゲルをマウスの腹部正中に皮下注射する。１４日目にそのマウスを屠殺し、凝固したゲルを切除し、新たな血管の存在について分析する。化合物Ａ〜Ｄを異なる用量で皮下注射する。０．５ｍＬの細胞溶解溶液（ミズーリ州、セントルイスのＳｉｇｍａ）が入っているマイクロ遠心チューブに対照および実験ゲルインプラントを入れ、乳棒で破壊する。その後、それらのチューブを一晩、４℃でインキュベートさせ、翌日、１，５００×ｇで１５分間、遠心分離する。細胞溶解産物の２００μＬアリコートをそれぞれのサンプルにつき１．３ｍＬのＤｒａｂｋｉｎ試薬溶液（ミズーリ州、セントルイスのＳｉｇｍａ）に添加する。その溶液を、分光光度計を用いて５４０ｎｍで分析する。光の吸収は、サンプルに含まれているヘモグロビンの量に比例する。

腫瘍増殖および転移−腫瘍インプラントのニワトリ漿尿膜（ＣＡＭ）モデル：
このプロトコルは、以前に記載された（Ｋｉｍら，２００１）とおりである。簡単に言うと、１×１０^７の腫瘍細胞をそれぞれのＣＡＭ（日齢７日の胚）の表面に置き、１週間インキュベートする。結果として生じた腫瘍を切除し、５０ｍｇフラグメントに切断する。これらのフラグメントを１群につき追加の１０のＣＡＭの上に置き、翌日、ＰＢＳに溶解した２５μＬの化合物（Ａ〜Ｄ）で局所的に処理する。７日後、卵から腫瘍を切除し、それぞれのＣＡＭについての腫瘍重量を決定する。図８は、ＣＡＭにおけるインビボ腫瘍増殖モデルに関与する段階を示す、概略的スケッチである。

癌細胞系統の腫瘍増殖速度、腫瘍血管新生、および腫瘍転移に対するＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣおよび甲状腺ホルモンアンタゴニストの効果を判定することができる。

腫瘍増殖および転移−マウスにおける腫瘍異種移植モデル：
このモデルは、Ｋｅｒｒら，２０００；Ｖａｎ Ｗａｅｓら、２０００；Ａｌｉら，２００１；およびＡｌｉら，２００１により本発明者らの出版物に記載されたとおりであり、それらのそれぞれは、その全体が本明細書に参考として援用される。異なる用量での、および異なる腫瘍タイプに対するＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣおよび他の甲状腺ホルモンアンタゴニストの抗癌効果を判定し、比較することができる。

腫瘍増殖および転移−転移の実験モデル：
このモデルは、本発明者らの最近の出版物（Ｍｏｕｓａ，２００２；Ａｍｉｒｋｈｏｓｒａｖｉら，２００３ａおよび２００３ｂ（これらのそれぞれは、その全体が本明細書に参考として援用される））に記載されているとおりである。簡単に言うと、１０％ウシ胎仔血清、ペニシリンおよびストレプトマイシン（ミズーリ州、セントルイスのＳｉｇｍａ）を補足したＲＰＭＩ １６４０（カリフォルニア州、カールズバッドのＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中で、Ｂ１６マウス悪性黒色腫細胞（メリーランド州、ロックヴィルのＡＴＣＣ）および他の癌系統を培養する。細胞を集密度７０％まで培養し、トリプシン−ＥＤＴＡ（Ｓｉｇｍａ）で回収し、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で２回洗浄する。実験的転移については細胞を細胞数２．０×１０^５／ｍＬの濃度でＰＢＳに再び懸濁させる。動物：この研究では、体重１８〜２１グラムのＣ５７／ＢＬ６マウス（インディアナ州、インディアナポリスのＨａｒｌａｎ）を用いる。すべての手順は、ＩＡＣＵＣおよび施設のガイドラインに従う。異なる用量での、および異なる腫瘍タイプに対するＴＥＴＲＡＣ、ＴＲＩＡＣおよび他の甲状腺ホルモンアンタゴニストの抗癌効力を判定し、比較することができる。

血管新生に対する甲状腺ホルモン類似体の効果：
Ｔ４は、ＣＡＭモデルにおいて血管新生指数の有意な増加（基底値より上の倍増）を誘導した。０．００１〜１．０μＭのＴ３または０．１〜１．０μＭのＴ４は、１μｇのＦＧＦ２による血管新生指数の２〜３倍増と比較して、血管新生指数の２〜２．５倍増を生じさせる最大効果を達成した（表１ならびに図１ａおよび１ｂ）。血管新生の促進に関するＴ４の効果（血管新生指数の２〜２．５倍増）は、Ｔ４からＴ３への転化を阻害するＰＴＵの存在下または不在下で達成された。Ｔ３それ自体（９１〜１００ｎＭで）が、ＣＡＭモデルにおいて強力な血管新生促進効果を誘導した。Ｔ４アガロースは、Ｔ４によって達成されるものに類似した血管新生促進効果を生じさせた。Ｔ４またはＴ４−アガロースのいずれの血管新生促進効果も、ＴＥＴＲＡＣまたはＴＲＩＡＣによって１００％遮断された。

最大下（ｓｕｂｍａｘｉｍａｌ）濃度のＴ_４によるＦＧＦ２の血管新生促進活性の増進：
最大下濃度のＴ４とＦＧＦ２の併用は、ＦＧＦ２またはＴ４いずれかの最大血管新生促進効果と同じレベルまでの血管新生指数の相加的増加を生じさせた（図２）。

ＣＡＭモデルにおけるＴ_４およびＦＧｆ２の血管新生促進作用に対するＭＡＰＫカスケード阻害剤の効果：
Ｔ４またはＦＧＦ２のいずれの血管新生促進効果も０．８〜８μｇのＰＤ ９８０５９によって完全に阻止された（図３）。

ＣＡＭモデルにおけるＴ_４およびＦＧｆ２の血管新生促進作用に対する特異的インテグリンαＶβ３アンタゴニストの効果：
Ｔ４またはＦＧＦ２のいずれの血管新生促進効果も１０μｇの特異的モノクローナル抗体ＬＭ６０９によって完全に遮断された（図４ａおよび４ｂ）。

ＣＡＭアッセイを用いて、様々な増殖因子ならびに血管新生の他のプロモーターまたは阻害剤の血管新生活性を評価した。本研究において、生理濃度でのＴ_４は、血管新生促進性であり、ＦＧＦ２のものと同等の活性を有することが判明した。ＰＴＵの存在は、Ｔ_４の効果を低下させなかった。これは、Ｔ_３を生成するためのＴ_４の脱ヨード化が、このモデルでの前提条件でなかったことを示している。このモデルでは新たな血管の成長の出現に数日必要であるので、本発明者らは、甲状腺ホルモンの効果は、甲状腺ホルモンの核受容体（ＴＲ）の相互作用に完全に依存すると想定した。ＴＲとその天然リガンド、Ｔ_３との核内複合体形成を必要とするヨードサイロニンの作用は、定義上、ゲノム性であり、遺伝子発現を生じさせる結果となる。一方、このモデル系のＴ_３（ＲＴの天然リガンド）ではなくＴ_４への優先的応答は、血管新生がＴ_４によって原形質膜で非ゲノム的に開始され、遺伝子転写に必要な作用を生じさせる結果となる可能性を高める。Ｔ_４の非ゲノム性作用は、幅広く記載されており、通常、原形質膜で開始され、シグナル伝達経路によって媒介され得る。それらは、ヨードサイロニンとＴＲの核内リガンド結合を必要としないが、遺伝子転写に干渉または遺伝子転写を調節し得る。ステロイドの非ゲノム性作用も十分に記載されており、ステロイドまたは他の化合物のゲノム性作用に干渉することが知られている。Ｔ_４およびＴＥＴＲＡＣでまたはアガロース−Ｔ_４で行った実験は、Ｔ_４の血管新生促進効果が、原形質膜で開始される可能性が現実に非常に高いことを示した。本発明者らは、ＴＥＴＲＡＣが、Ｔ_４の膜で開始される効果を遮断するが、それ自体はシグナル伝達経路を活性化しないことを、他の箇所で示した。従って、これは、甲状腺ホルモンの非ゲノム性作用についてのプローブである。アガロース−Ｔ_４は、細胞内部に出入しないと考えられ、本発明者らおよび他の研究者は、これを、可能性のある細胞表面で開始される前記ホルモンの作用のモデルを試験するために使用した。

これらの結果は、甲状腺ホルモンによるＭＡＰＫの活性化のもう１つの帰結が新たな血管の成長であることを示唆している。後者は、非ゲノム的に開始されるが、勿論、必従の複雑なゲノム転写プログラムを必要とする。

甲状腺ホルモンの周囲濃度は、比較的安定している。本発明者らが試験した時点で、ＣＡＭモデルは、甲状腺欠損状態であり、それ故、無損傷の生体を再生しない系と見なすことができる。本発明者らは、循環レベルのＴ_４が、様々な他の調節因子とともに、ＶＥＧＦおよびＦＧＦ２などの内因性血管新生因子への血管の感受性を調整する役割を果すことを提案する。

三次元血管新生アッセイ
フィブリンでコーティングされたマイクロキャリヤービーズを用いて培養したヒト皮膚微小血管内皮細胞（ＨＤＭＥＣ）のインビトロ三次元出芽血管新生：
集密ＨＤＭＥＣ（５〜１０継代）をゼラチンコートＣｙｔｏｄｅｘ−３ビーズとビーズ１個につき細胞４０個の比率で混合した。細胞およびビーズ（２４ウエルプレートの１ウエルにつき１５０〜２００個のビーズ）を５ｍＬ ＥＢＭ＋１５％正常ヒト血清で懸濁させ、最初の４時間は１時間ごとに穏やかに混合し、その後、ＣＯ_２インキュベーターの中で一晩、放置して培養した。次の日、１０ｍＬの新たなＥＢＭ＋５％ＨＳを添加し、その混合物をもう３時間培養した。実験前、ＥＣ−ビーズの培養を点検し、その後、、５００ｕＬのＰＢＳを２４ウエルプレートの壁に添加し、１００ｕＬのＥＣ−ビーズ培養溶液をそのＰＢＳに添加した。ビーズの数を数え、ＥＣ／ビーズの濃度を計算した。

血管新生因子または試験因子を有するまたは有さないＥＢＭ培地中のフィブリノゲン溶液（１ｍｇ／ｍＬ）を調製した。陽性対照には、５０ｎｇ／ｍＬ ＶＥＧＦ＋２５ｎｇ／ｍＬ ＦＧＦ２を使用した。ＥＣ−ビーズをＥＢＭ培地で２回洗浄し、それらのＥＣ−ビーズをフィブリノゲン溶液に添加した。実験は、それぞれの条件について三重反復で行った。ＥＣ−ビーズをフィブリノゲン溶液中で穏やかに混合し、２．５ｕＬのヒトトロンビン（０．０５Ｕ／ｕＬ）を１ｍＬのフィブリノゲン溶液に添加し、３００ｕＬを直ちに２４ウエルプレートのそれぞれのウエルに移した。そのフィブリノゲン溶液は、５〜１０分の間に重合する。２０分後、本発明者らは、ＥＢＭ＋２０％正常ヒト血清＋１０ｕｇ／ｍＬ アプロチニンを添加した。そのプレートをＣＯ_２インキュベーターの中でインキュベートした。ＨＤＭＥＣが、フィブリンゲルに侵入し、管を形成するには、約２４〜４８時間かかる。

ウシフィブリンゲルにおいてウシ肺動脈内皮細胞血管新生挙動を調査するために以前に設計されたマイクロキャリヤーインビトロ血管新生アッセイ［Ｎｅｈｌｓ ａｎｄ Ｄｒｅｎｃｋｈａｈｎ，１９９５ａ，ｂ］を、三次元ＥＣＭ環境でのヒト微小血管内皮細胞血管新生の研究用に改造した（図１および２）。簡単に言うと、以前に記載された［Ｆｅｎｇら，１９９９］とおり単離したヒトフィブリノゲンを１ｍｇ／ｍＬの濃度（ｐＨ７．４）でＭ１９９培地に溶解し、０．２２マイクロメートルフィルタによる濾過によって滅菌した。５Ｘ Ｍ１９９培地および蒸留水中で滅菌Ｖｉｔｒｏｇｅｎ １００を混合することによって、等張性１．５ｍｇ／ｍＬコラーゲン溶液を調製した。そのｐＨを１Ｎ ＮａＯＨによって７．４に調整した。一定の実験では、増殖因子およびＥＣＭタンパク質（例えば、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、ＰＤＧＦ−ＢＢ、血清、ゼラチンおよびフィブロネクチン）を前記フィブリノゲンまたはコラーゲン溶液に添加した。その後、約５００個のＥＣ−ビーズを１ｍｇ／ｍＬフィブリノゲンまたは１．５ｍｇ／ｍＬ コラーゲン溶液に添加した。その後、ＥＣ−ビーズ−コラーゲンまたはＥＣ−ビーズ−フィブリノゲン懸濁液（ＥＣ−ビーズ５００個／ｍＬ）を、２４ウエルプレートで、３００ｕＬ／ウエルで、平板培養した。ＥＣ−ビーズ−コラーゲン培養物を３７℃でインキュベートしてゲルを形成した。０．５Ｕ／ｍＬの最終濃度までトロンビンを添加すると、室温で５分未満にＥＣ−ビーズ培養物のゲル化が発生した。ゲル化後、１ｍＬの新たなアッセイ培地（ＨＤＭＥＣのための２０％正常ヒト血清を補足したＥＢＭ、または１０％ウシ胎仔血清を補足したＥＢＭ）をそれぞれのウエルに添加した。血管新生反応を目視でモニターし、ビデオ画像取り込みによって記録した。具体的に言うと、毛細血管出芽形成を観察し、Ｎｉｋｏｎ ＮＰ−２サーモスタットおよびＳｈｅｌｄｏｎ ＃２００４二酸化炭素フローミキサーを有するインキュベーターハウジングを装備したＮｉｋｏｎ Ｄｉａｐｈｏｔ−ＴＭＤ倒立顕微鏡（株式会社ニコン（Ｎｉｋｏｎ Ｉｎｃ．）；ニューヨーク州、メルヴィル）で記録した。Ｍａｃｉｎｔｏｓｈ Ｇ３コンピュータに連結されたＤａｇｅ−ＭＴＩ ＣＣＤ７２ＳビデオカメラおよびＳｏｎｙ １２”ＰＶＭ−１２２ビデオモニターから成るビデオシステムに前記顕微鏡をインターフェースで直接接続した。Ａｄｏｂｅ Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐを用いて様々な倍率で画像を取り込んだ。毛細血管出芽を有するＥＣ−ビーズの数およびパーセントを決定することにより、出芽血管新生に対する血管新生因子の効果を視覚的に定量した。三重反復ウエルのそれぞれについて１００個のビーズ（５から６のランダムな弱拡大視野）をそれぞれの実験条件について計数した。すべての実験は、少なくとも３回反復した。

細胞培養：
甲状腺ホルモンの核受容体がないアフリカミドリザル線維芽細胞系統、ＣＶ−１（バージニア州、マナッサスのＡＴＣＣ）を細胞数５０００／ｃｍ^２で平板培養し、１０％（ｖ／ｖ）熱不活化ＦＢＳ、１００Ｕ／ｍＬ ペニシリン、１００μｇ／ｍＬ ストレプトマイシンおよび２ｍＭ Ｌ−グルタミンを補足したＤＭＥＭ中で維持した。すべての培養試薬は、Ｉｎｖｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ（カリフォルニア州、カールズバッド）から購入した。培養物は、５％ＣＯ_２を有する３７℃加湿チャンバの中で維持した。培地を３日ごとに交換し、それらの細胞系統を集密度８０％で継代させた。実験処理のために、細胞を１０ｃｍ細胞培養皿（ニューヨーク州、コーニングのＣｏｒｎｉｎｇ Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）で平板培養し、２４時間、１０％ＦＢＳ含有培地中で放置して増殖させた。その後、それらの細胞をリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で２回すすぎ、ペニシリン、ストレプトマイシンおよびＨＥＰＥＳを補足した無血清ＤＭＥＭを供給した。無血清培地中での４８時間のインキュベーションの後、それらの細胞をビヒクル対照（０．４％ポリエチレングリコール［ｖ／ｖ］を有する０．００４ＮのＫＯＨの最終濃度）またはＴ４（１０^−７Ｍの最終濃度）で３０分間処理し、その後、培地を回収し、酵素イムノアッセイによって遊離Ｔ４レベルを決定した。１０^−７Ｍの全Ｔ４とともにインキュベートした培養物は、１０^−９から１０^−１０Ｍの遊離Ｔ４を有する。処理後、細胞を回収し、以前に記載されたとおり核タンパク質を準備した。

ｓｉＲＮＡでの一過性トランスフェクション：
ＣＶ−１細胞を１０ｃｍ皿で平板培養し（細胞数１５０，０００／皿）、１０％ＦＢＳを補足したＤＭＥＭ中で２４時間インキュベートした。それらの細胞をＯＰＴＩ−ＭＥＭ（テキサス州、オースチンのＡｍｂｉｏｎ）中ですすぎ、ｓｉＰＯＲＴ（Ａｍｂｉｏｎ）を製造業者の説示に従って使用して、αＶ、β３またはαＶとβ３両方に対するｓｉＲＮＡ（１００ｎＭの最終濃度）をトランスフェクトした。ＣＶ−１細胞の追加のセットにスクランブルｓｉＲＮＡをトランスフェクトして、陰性対照として役立てた。トランスフェクションの４時間後、７ｍＬの１０％ＦＢＳ含有培地をそれらの皿に添加し、培養物を一晩、インキュベートさせた。その後、それらの細胞をＰＢＳですすぎ、無血清ＤＭＥＭ中に４８時間置いた後、Ｔ４で処理した。

ＲＮＡ単離およびＲＴ−ＰＣＲ：
トランスフェクションの７２時間後、Ｑｉａｇｅｎ（カリフォルニア州、バレンシア）からのＲＮｅａｓｙキットを製造業者の説示どおりに使用して、細胞培養物から全ＲＮＡを抽出した。Ａｃｃｅｓｓ ＲＴ−ＰＣＲシステム（ウィスコンシン州、マジソンのＰｒｏｍｅｇａ）を製造業者の説示に従って使用して、２００ナノグラムの全ＲＮＡを逆転写した。プライマーは、出版物に記載されている種特異的配列に基づくものであった：αＶ（アクセッション番号ＮＭ−００２２１０）Ｆ−５’−ＴＧＧＧＡＴＴＧＴＧＧＡＡＧＧＡＧおよびＲ−５’−ＡＡＡＴＣＣＣＴＧＴＣＣＡＴＣＡＧＣＡＴ（３１９ｂｐ産物）、β３（ＮＭ０００２１２）Ｆ−５’−ＧＴＧＴＧＡＧＴＧＣＴＣＡＧＡＧＧＡＧおよびＲ−５’−ＣＴＧＡＣＴＣＡＡＴＣＴＣＧＴＣＡＣＧＧ（５１５ｂｐ産物）、ならびにＧＡＰＤＨ（ＡＦ２６１０８５）Ｆ−５’−ＧＴＣＡＧＴＧＧＴＧＧＡＣＣＴＧＡＣＣＴおよびＲ−５’− ＴＧＡＧＣＴＴＧＡＣＭＧＴＧＧＴＣＧ（２１２ｂｐ産物）。ＲＴ−ＰＣＲは、Ｆｌｅｘｉｇｅｎｅ ｔｈｅｒｍａｌ ｃｙｃｌｅｒ ｅｏｍ ＴＥＣＨＮＥ（ニュージャージー州、バーリントン）で行った。９５℃で２分間のインキュベーション後、以下の段階を２５サイクル行った：９４℃で１分間の変性、５７℃で１分間のアニーリングおよび６８℃で１分間の伸長を２５サイクル。それらのＰＣＲ産物を、臭化エチジウムで染色した１．８％（ｗ／ｖ）アガロースゲルで視覚化した。

ウエスタンブロット法：
核タンパク質のアリコート（１０μｇ／レーン）をＬａｅｍｍｌｉサンプル緩衝液と混合し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（１０％分解用ゲル）によって分離し、ニトロセルロース膜に移した。１％ Ｔｗｅｅｎ−２０（ＴＢＳＴ）を含有するＴｒｉｓ緩衝食塩水中の５％脱脂乳で３０分間ブロックした後、それらの膜を、５％の乳を含有するＴＢＳＴ中のリン酸化ｐ４４／４２ ＭＡＰキナーゼに対するモノクローナル抗体（マサチューセッツ州、バーバリーのＣｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）の１：１０００希釈物とともに一晩、４℃でインキュベートした。ＴＢＳＴ中での１０分の洗浄を３回行った後、それらの膜を、５％の乳を含有するＴＢＳＴ中のＤａｋｏＣｙｔｏｍａｔｉｏｎ（カリフォルニア州、カーピンテリア）からのＨＲＰコンジュゲート化ヤギ抗ウサギＩｇ（１：１０００希釈物）とともに、１時間、室温でインキュベートした。それらの膜をＴＢＳＴ中で５分間、３回洗浄し、化学発光（ＥＣＬ、Ａｍｅｒｓｈａｍ）によって免疫反応性タンパク質を検出した。ＶｅｒｓａＤｏｃ ５０００ Ｉｍａｇｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍ（カリフォルニア州、ハーキュリーズのＢｉｏ−Ｒａｄ）を使用して、バンド強度を決定した。

放射リガンド結合アッセイ：
２μｇの精製αＶβ３を指示濃度の試験化合物と混合し、３０分間、室温で、インキュベートさせた。その後、［^１２５Ｉ］−Ｔ４（２μＣｉ）を添加し、その混合物をさらに３０分、２０℃でインキュベートさせた。それらのサンプルをサンプル緩衝液（５０％グリセロール、０．１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ６．８、およびブロモフェノールブルー）と混合し、２４時間、４５ｍＡで、冷たくして５％塩基性非変性ゲルで泳動させた。その装置を分解し、ゲルを濾紙に載せ、プラスチックラップでラップし、フィルムに曝露した。ＶｅｒｓａＤｏｃ ５０００ Ｉｍａｇｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍを使用して、バンド強度を決定した。

ニワトリ漿尿膜（ＣＡＭ）アッセイ（αＶβ３研究）：
日齢１０日のニワトリの胚をＳＰＡＦＡＳ（コネチカット州、プレストン）から購入し、３７℃、５５％相対湿度でインキュベートした。皮下注射針を使用して、卵の尖っていないほうの端に小さな穴をあけ、その卵の広い側面の胚子被膜の無血管部分の直ぐ上に第二の穴をあけた。第一の穴に軽度の切開を施して気嚢をはずし、ＣＡＭを殻から落下させた。Ｄｒｅｍｅｌモデル・クラフトドリル（ウィスコンシン州、ラシーンのＤｒｅｍｅｌ）を使用して、その仮の気嚢の上の殻から約１．０ｃｍ^２の窓を切り取って、ＣＡＭに接触できるようにした。無菌条件下で、Ｎｏ．１濾紙の滅菌ディスク（ニュージャージー州、クリフトンのＷｈａｔｍａｎ）を３ｍｇ／ｍＬの酢酸コルチゾンおよび１ｍＭのプロピルチオウラシルで前処理し、空気乾燥させた。甲状腺ホルモン、対照溶媒、およびｍＡｂ ＬＭ６０９をそれらのディスクに塗布し、その後、乾燥させた。その後、それらのディスクをＰＢＳに懸濁させ、成長中のＣＡＭの上に配置した。３日のインキュベーションの後、フィルターディスクの真下のＣＡＭを切除し、ＰＢＳですすいだ。それぞれの膜を３５ｍｍペトリ皿に入れ、ＳＶ６立体顕微鏡のもとで５０倍で検査した。デジタル画像を取り込み、Ｉｍａｇｅ−Ｐｒｏソフトウェア（Ｍｅｄｉａｃｙｂｅｍｅｔｉｃｓ）で解析した。そのフィルターディスクに相当する円形領域内に入っている血管分枝点の数を数えた。８〜１０個のＣＡＭ組織標本のそれぞれから１つの画像を、それぞれの条件について計数し、加えて、それぞれの実験を３回行った。

（実施例１）
血管新生に対する甲状腺ホルモンの効果：
図１Ａにおいて見られ、図１Ｂに要約されているように、Ｌ−Ｔ４とＬ−Ｔ３の両方が、ＣＡＭアッセイにおいて血管新生を増進した。０．１μｍｏｌ／Ｌの培地中の生理的全濃度でのＴ４は、血管枝の形成を２．５倍増加させた（ｐ＜０．００１）。Ｔ３（１ｎｍｏｌ／Ｌ）も血管新生を２倍刺激した。細胞の５’−モノ脱ヨード酵素（５’−ｍｏｎｏｄｅｉｏｄｉｎａｓｅ）によるＴ４のＴ３への転化のため、Ｔ４が唯一有効であるという可能性は、脱ヨード酵素阻害剤ＰＴＵがＴ４によって生じる血管新生に対して効果を有さないという発見によって除外された。ＣＡＭモデルでは使用したすべてのフィルターディスクにＰＴＵを塗布した。それ故、Ｔ４およびＴ３は、増殖因子のアッセイについて以前に標準化されたＣＡＭモデルにおいて、新たな血管枝の形成を促進する。

（実施例２）
Ｔ４−アガロースおよびＴＥＴＲＡＣの効果：
本発明者らは、Ｔ４−アガロースが、Ｔ４と同様に原形質膜において開始される細胞シグナル伝達経路を刺激すること、ならびにＴ４の原形質膜への結合を阻害することが以前に知られている脱アミノ化ヨードチロニン類似体、ＴＥＴＲＡＣ、によって、Ｔ４およびＴ４−アガロースの作用が遮断されることを以前に証明した。ＣＡＭモデルにおいて、ＴＥＴＲＡＣ（０．１μｍｏｌ／Ｌ）の添加は、Ｔ４の作用を阻害した（図２Ａ）が、単独でのＴＥＴＲＡＣは、血管新生に対して効果を有さなかった（図２Ｃ）。０．１μｍｏｌ／Ｌのホルモン濃度で添加したＴ４−アガロースの作用は、ＣＡＭモデルにおいて、Ｔ４のものと同等であった（図２Ｂ）が、このＴ４−アガロースの効果もＴＥＴＲＡＣの作用によって阻害された（図２Ｂ；２Ｃに概要）。

（実施例３）
最大下濃度のＴ４によるＦＧＦ２の血管新生促進活性の増進：
血管新生は、ポリペプチド増殖因子の関与を通常は必要とする複雑なプロセスである。ＣＡＭアッセイには、血管成長の顕在化に少なくとも４８時間必要である。それ故、このモデルにおける甲状腺ホルモンの顕性原形質膜効果は、このホルモンへの複雑な転写応答を生じさせる可能性が高い。従って、本発明者らは、ＦＧＦ２がこのホルモン応答に関与するかどうか、およびこのホルモンが、生理レベル以下のこの増殖因子の効果を強化するかどうかを判定した。Ｔ４（０．０５μｍｏｌ／Ｌ）およびＦＧＦ２（０．５μｍｏｌ／Ｌ）は、個々に、血管新生を小規模に刺激した（図３）。この最大下濃度のＦＧＦの血管新生効果は、生理濃度以下のＴ４によって、１．０μｇのＦＧＦ２単独により生ずるレベルへと増進された。従って、最大下ホルモンおよび増殖因子濃度の効果は、相加的であるようである。血管新生に対する甲状腺ホルモン刺激におけるＦＧＦ２の役割をより正確に定義するために、ＦＧＦ２に対するポリクローナル抗体を、ＦＧＦ２またはＴ４のいずれかで処理したフィルターに添加し、７２時間後に血管新生を測定した。図４は、ＦＧＦ２によるまたは外因性ＦＧＦの不在下でＴ４による刺激を受けた血管新生をＦＧＦ２抗体が阻害したことを明示しており、これは、ＣＡＭアッセイにおけるＴ４の効果が、増加したＦＧＦ２発現によって媒介されたことを示唆している。対照ＩｇＧ抗体は、ＣＡＭアッセイにおいて刺激および阻害効果を有さなかった。

（実施例４）
甲状腺ホルモンによる内皮細胞からのＦＧＦ２放出の刺激：
Ｔ４（０．１μｍｏｌ／Ｌ）またはＴ３（０．０１μｍｏｌ／Ｌ）のいずれかで３日間処理したＥＣＶ３０４内皮細胞の培地中のＦＧＦ２のレベルを測定した。下の表において見られるように、Ｔ３は、前記倍地中のＦＧＦ２濃度を３．６倍刺激し、これに対して、Ｔ４は、１．４倍の増加を生じさせた。この発見は、少なくとも一部は、内皮細胞にとって利用可能な増殖因子の濃度を上昇させることによって、甲状腺ホルモンがＦＧＦ２の血管新生効果を増進させることができることを示している。

ＥＣＶ３０４内皮細胞からのＦＧＦ２の放出に対するＴ４およびＴ３の効果

^＊Ｐ＜０．００１、ＡＮＯＶＡによりＴ３処理サンプルと対照サンプルを比較；
^†Ｐ＜０．０５、ＡＮＯＶＡによりＴ４処理サンプルと対照サンプルを比較。

（実施例５）
甲状腺ホルモンおよびＦＧＦ２による血管新生の刺激におけるＥＲＫ１／２シグナル伝達経路の役割：
Ｔ４が細胞に対して非ゲノム性効果を発揮する経路は、ＭＡＰＫシグナル伝達カスケードであり、特に、ＥＲＫ１／２活性化に関するものである。本発明者らは、Ｔ４が上皮増殖因子によってＥＲＫ１／２活性化を増進させることを知っている。ＦＧＦ２発現の甲状腺ホルモンによる刺激におけるＭＡＰＫ経路の役割を、ＰＤ ９８０５９（２から２０μｍｏｌ／Ｌ）、チロシン−トレオニンキナーゼＭＡＰＫキナーゼ−１（ＭＥＫ１）およびＭＥＫ２）によるＥＲＫ１／２活性化の阻害剤、の使用によって調査した。表中のデータは、ＰＤ ９８０５９が、Ｔ４またはＴ３のいずれかで処理されたＥＣＶ３０４内皮細胞からのＦＧＦ２放出の増加を有効に遮断することを明示している。ＥＲＫ１／２阻害の並行試験をＣＡＭアッセイで行った。代表的結果を図５に示す。それぞれ生理濃度でのＴ３とＴ４の併用は、血管分枝を２．４倍増加させ、この効果は、３μｍｏｌ／ＬのＰＤ ９８０５９によって完全に遮断された（図５Ａ）。枝の形成に対するＦＧＦ２刺激（２．２倍）もＥＲＫ１／２活性化のこの阻害剤によって有効に遮断された（図５Ｂ）。従って、甲状腺ホルモンの血管新生促進効果は、原形質膜で開始し、ならびに内皮細胞からのＦＧＦ２放出を促進するためのＥＲＫ１／２経路の活性化を必要とする。ＥＲＫ１／２活性化は、さらに、ＦＧＦ２シグナルを伝達するためにおよび新たな血管の形成を生じさせるために必要である。

（実施例６）
ＭＡＰＫ活性化に対する甲状腺ホルモンおよびＦＧＦ２の作用：
ＥＲＫ１／２ ＭＡＰＫのリン酸化および核移行の刺激を、Ｔ４（１０^−７ｍｏｌ／Ｌ）で１５分から６時間処理したＥＣＶ３０４細胞において研究した。細胞核におけるリン酸化ＥＲＫ１／２の出現は、Ｔ４処理から１５分以内に発生し、３０分で最大レベルに達し、６時間でまだ顕性であった（図６Ａ）。このホルモンの効果は、ＰＤ ９８０５９によって阻害された（図６Ｂ）。この化合物はＭＡＰＫキナーゼによるＥＲＫ１／２のリン酸化を遮断するため、予測される結果であった。伝統的なプロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）−α、ＰＫＣ−β、およびＰＫＣ−γ阻害剤ＣＧＰ４１２５１も、本発明者らが他の細胞系統においてＴ４で観察したのと同様に、これらの細胞におけるＭＡＰＫ活性化に対するこのホルモンの効果を遮断した。甲状腺ホルモンは、幾つかのサイトカインおよび増殖因子、例えばインターフェロン−γ１３および表皮増殖因子、の作用を増進する。ＥＣＶ３０４細胞において、Ｔ４は、１５分の共インキュベーションにおいてＦＧＦ２によって生じたＭＡＰＫ活性化を増進した（図６Ｃ）。ＥＣＶ３０４細胞においてなされた観察をＣＡＭモデルに当てはめて、本発明者らは、このホルモンが血管新生を誘導する複雑なメカニズムが、ＦＧＦ２の内皮細胞放出、および血管新生に対する放出されたＦＧＦ２のオートクリン効果の増進を含むことを提案する。

（実施例７）
甲状腺ホルモンで処理したＥＣＶ３０４細胞におけるＲＴ−ＰＣＲ：
Ｔ４の血管新生促進作用のメカニズムに関する研究において取り組んだ最後の問題は、そのホルモンがＦＧＦ２遺伝子発現を誘導できるかどうかであった。内皮細胞をＴ４（１０^−７ｍｏｌ／Ｌ）で６から４８時間処理し、ＦＧＦ２およびＧＡＰＤＨ ＲＮＡのＲＴ−ＰＣＲに基づく推定（ｃＤＮＡ測定から推断；図７）を行った。ＧＡＰＤＨ含量について補正したＦＧＦ２ ｃＤＮＡの存在度の増加は、ホルモン処理から６時間までに顕性となり、４８時間までさらに増進された。

（実施例８Ａ）
（糖尿病または非糖尿病）マウスにおける網膜新生血管形成モデル：
網膜新生血管形成に対する試験品の薬理活性を評価するために、乳仔マウスを高酸素環境に７日間曝露し、回復させ、それによって網膜に対して新たな血管の形成を刺激する。試験品を評価して、網膜新生血管形成が抑制されたかどうかを判定する。網膜をヘマトキシリン−エオシン染色法で、および新生血管形成を明示する少なくとも１つの染色剤（通常はセレクチン染色剤）で検査する。他の染色剤（例えば、ＰＣＮＡ、ＰＡＳ、ＧＦＡＰ、血管新生のマーカーなど）を使用してもよい。このモデルの概要は、下記である：
動物モデル
・乳仔マウス（Ｐ７）およびそれらの母畜を７日間、超酸素化環境（７０〜８０％）に置く。

・Ｐ１２において、マウスをその酸素化環境から取り出し、正常環境に置く。

・マウスを５から７日間、回復させる。

・その後、マウスを屠殺し、目を回収する。

・目を、適宜、冷凍または固定する。

・目を適切な組織化学染色剤で染色する。

・目を適切な免疫組織化学染色剤で染色する。

・血液、血清または他の組織を回収することができる。

・目を、特に微小血管改変に関して、任意のおよびすべての観察所見について検査する。新生血管成長を半定量的に採点する。画像解析も利用可能である。

（実施例８Ｂ）
甲状腺ホルモンおよび糖尿病性網膜症：
Ｊ ｄｅ ｌａ Ｃｒｕｚら，Ｊ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ Ｅｘｐ Ｔｈｅｒ ２８０：４５４−４５９，１９９７に開示されているプロトコルを、ストレプトゾトシン（ＳＴＺ）によって誘導された実験的糖尿病および糖尿病性網膜症を有するラットへのＴＥＴＲＡＣの投与のために用いる。エンドポイントは、増殖性網膜症（血管新生）の出現のＴＥＴＲＡＣによる阻害である。

（実施例９Ａ）
甲状腺ホルモンおよび類似体の新規医薬ポリマー製剤を使用する創傷治癒および止血用治療薬：
本発明は、固定化甲状腺ホルモン類似体、好ましくはＴ４類似体、塩化カルシウムおよびコラーゲンを含む、新規創傷治癒および止血用治療薬も含む。この新規製剤は、静脈性出血と動脈性出血の両方を有意に制御し、出血時間を減少させ、フィブリン／血小板血栓を生じさせ、低レベルのコラーゲンの存在下で血小板誘導創傷治癒因子を持続的に放出し、安全である。こうした創傷治癒および止血用包帯剤の開発は、Ｃｏｍｂａｔ Ｃａｓｕａｌｔｙ Ｃａｒｅにおける短期および長期使用のために非常に価値があるはずである。コラーゲンおよび塩化カルシウムを含有するヒドロゲルまたは包帯剤での固定化Ｌ−チロキシン（Ｔ４）および球状六糖類の医薬製剤が最適であり得る。ヒドロゲルまたは包帯剤でのこの新規創傷治癒および止血用（ＷＨ製剤）治療薬は、殺菌剤の追加も含むことがある。

ポリマーにコンジュゲートさせたまたはアガロースに固定化されたＬ−チロキシンは、接着細胞表面受容体（インテグリンαＶβ３）の活性化による血管新生の強力な刺激を明示した（前記活性化が、細胞内シグナリング事象の活性化をもたらし、そしてまたそれが、様々な増殖因子生産のアップレギュレーションをもたらす）。加えて、固定化Ｔ４は、上皮細胞、線維芽細胞およびケラチン生成細胞の移動を誘導する。Ｔ３および他の類似体ではなく、固定化Ｔ４は、コラーゲンによって誘導される血小板凝集および分泌を増進させ、これは、被験体自身の血小板血栓の形成を促進するであろう。さらに、固定化Ｔ４は、白血球移動も促進し、これは、感染と戦うために非常に重要であり得る。従って、固体化Ｔ４は、身体が損傷血管を再生するためにより多くの化合物を利用できるように助けることができ、およびまた、創傷部位においてフリーラジカルを作る白血球の量を増加させた。フリーラジカルは、創傷からの潜在的病原菌の一掃に役立つ。

それ故、Ｔ３、ＤＩＰＴＡおよびＧＣ−１ではなく、Ｔ４またはＴ４−アガロース（１０〜１００ｎＭ）は、血小板凝集および分泌（脱顆粒化）の増進に有効である。従って、１０ｍＭの塩化カルシウムとの組み合わせでの、およびコラーゲンを伴うまたはコラーゲンを伴わない、Ｔ４（またはその類似体およびポリマーコンジュゲーション、例えば、Ｔ４−アガロース）が、創傷治癒に好ましい。図２３Ａ〜Ｅ参照。

トロンボエラストグラフィー：
トロンボエラストグラフィー（ＴＥＧ）は、１９４８年のＨａｒｔｅｒｔによるその開発以来、様々な病院環境で使用されてきた。ＴＥＧの原理は、血餅の物理的粘弾特性の測定に基づく。コンピュータートロンボエラストグラフィー（ＴＥＧ；Ｍｏｄｅｌ ３０００、イリノイ州、スコーキのＨａｅｍｏｓｃｏｐｅ）を使用し、表面間に１ｍｍの隙間を有する、振動プラスチック円筒形キュベット（「カップ」）と同軸吊下型固定ピストン（「ピン」）において、３７℃で血餅形成をモニターした。前記カップは、４．５秒ごとにいずれかの方向に振動し、サイクル中に１秒間の静止期間があり、結果として０．１Ｈｚの振動数および秒当たり０．１の最大剪断速度を生じる。前記ピンは、トルク変換器として動作する捩り針金によって吊り下げられている。血餅形成に伴って、フィブリン線維がカップをピンに物理的に連結させ、そして血餅の粘弾性による影響を受ける（そのピンに伝達される）と、そのカップの回転が、ＩＢＭ互換性パーソナルコンピューターおよびカスタマイズされたソフトウェア（イリノイ州、スコーキのＨａｅｍｏｓｃｏｐｅ Ｃｏｒｐ．）を使用してオンライン表示される。（そのカップの振動に関連した）そのピンが受けるトルクを、時間の関数としてプロットする。

血餅の最初の開始のための潜時（Ｒ）、約２０ｍｍの振幅の固定した血餅の堅固さが開始するまでの時間（ｋ）、角度によって測定される血餅発達の動態（α）、および血餅の最大振幅（ＭＡ）などの様々なパラメータを測定することによって、ＴＥＧは凝固を評価する。パラメータＡによって、ＭＡの任意の点でのトレーシングの幅が測定される。振幅Ａ（単位：ｍｍ）は、血餅の強度および弾性の関数である。ＴＥＧトレーシングでの振幅は、血餅の剛性の尺度である。血餅によって達成されるピーク強度または剪断弾性率（Ｇ）は、血餅の剛性の関数であり、ＴＥＧトレーシングの最大振幅（ＭＡ）から計算することができる。

以下のパラメータをＴＥＧトレーシングから測定した：
・Ｒ、反応時間（ゲル化時間）は、（約２ｍｍの振幅の測定可能な剛性を伴う）３次元フィブリンゲル網目構造の樹立前の潜時を表す。

・最大振幅（ＭＡ（単位：ｍｍ））は、血餅によって顕在化されるピーク剛性である。

・剪断弾性率または血餅強度（Ｇ、ダイン／ｃｍ^２）は、
Ｇ＝（５０００Ａ）／（１００−Ａ）
によって定義される。

血餅は、血管損傷部位での剪断応力に耐えなければならないので、血餅の堅固さは、インビボでの血栓形成および止血についての重要なパラメータである。血餅形成および退縮に関与する様々な因子（凝固活性化、トロンビン生成、フィブリン形成、血小板活性化、血小板−フィブリン相互作用、およびフィブリン重合）に対する種々の薬理的介入の効力を、ＴＥＧによって評価することができる。ヒト全血においてコンピュータＴＥＧによって測定された種々の血餅パラメータに対するエンドトキシン（０．６３ｕｇ）、Ｘａ（０．２５ｎＭ）、トロンビン（０．３ｍＵ）およびＴＦ（２５ｎｇ）の効果を表３に示す。

血液サンプリング：
Ｈｕｍａｎ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｏｆ Ｗｉｌｌｉａｍ Ｂｅａｕｍｏｎｔ Ｈｏｓｐｉｔａｌによって承認されたプロトコルのもとで、同意を得たボランティアから採血した。ツー・シリンジ法を用いて、２１ゲージ翼状針によってサンプルを採取し、最初の３ｍＬの血液を廃棄した。全血（ＷＢ）を、３．８％クエン酸三ナトリウムが入っているシリコーン処理済Ｖａｃｕｔａｉｎｅｒチューブ（ニュージャージー州、ラザフォードのＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）に、１：９（ｖ／ｖ）のクエン酸塩：全血比が維持されるように、回収した。採血から３時間以内にＴＥＧを行った。カルシウムを添加して１〜２．５ｍＭに戻し、その後、異なる刺激物質を添加した。使用した濃度での塩化カルシウム、それ自体は、血餅形成および血餅強度に対して最小の効果しか示さなかった。

血餅形成は、トロンビンによって誘導されるフィブリノゲンからのフィブリノペプチドＡの切断によって開始される。結果として生ずるフィブリンモノマーは、自然に重合してフィブリル・ストランドを形成し、これが、直線的に伸長し、分枝し、側方会合して、フィブリン線維の三次元網目構造を形成する。網目構造のユニークな特性は、変形剪断応力に耐えることができる硬質弾性固体として動作することである。この耐変形性は、弾性率−血餅強度の指数−によって測定することができる。血餅形成開始までの時間のみに基づく（プロトロンビン時間および部分的トロンボプラスチン時間のような）従来の凝固試験とは異なり、ＴＥＧは、定量的情報の獲得を可能にし、それによって、血餅により達成される最大強度の測定が可能となる。ＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａ受容体により、血小板は、フィブリン（フィブリノゲン）に結合し、血餅の粘弾特性を調節する。本発明者らの結果は、ＴＦ−ＴＥＧでの血餅強度が明確に血小板濃度の関数であることを明示し、血小板は、剪断下で血餅強度を〜８倍増大させた。異なる血小板ＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａアンタゴニスト（クラスＩ対クラスＩＩ）は、剪断下、ＴＦ−ＴＥＧを用いて、血小板−フィブリン媒介血餅強度を抑制する際にまったく異なる効力で動作した。

統計解析：
データは、平均±ＳＥＭとして表す。適用できるときには、スチューデントｔ検定またはＡＮＯＶＡを用いるペアまたはグループ分析によって、データを分析した。差は、Ｐ＜０．０５で有意と見なした。

ＴＥＧを用いるクエン酸塩添加ヒト全血における血餅動態に対する塩化カルシウム対組織因子の効果

データは、平均値±ＳＥＭを表す、ｎ＝４、^＊Ｐ＜０．０１。

インピーダンス技術を用いる全血における血小板凝集および脱顆粒化：
Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ ＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎからのＭｏｄｅｌ ５６０ Ｗｈｏｌｅ−Ｂｌｏｏｄ Ａｇｇｒｅｇｏｍｅｔｅｒおよび関連Ａｇｇｒｏ−Ｌｉｎｋ Ｓｏｆｔｗａｒｅを、この研究では用いた。２つの電極を希釈血の中に配置し、電気インパルスを一方から他方に送る。血小板が電極の周りに凝集すると、Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇは、抵抗のオームでの電気信号のインピーダンスを測定する。

血液サンプリング：
１７歳と２１歳の間の年齢の健常なドナーからの全血を、３．８％緩衝クエン酸ナトリウム（ニュージャージー州、ラザフォードのＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）が入っている４．５ミリリットルＶａｃｕｔａｉｎｅｒバイアルに毎日採取した。その血液は、血小板の寿命を延長するために揺動装置で保持した。実験は、瀉血から５時間以内に行った。

手順：対照については、５００マイクロリットルの全血、５００マイクロリットルの０．９％食塩水、および磁気攪拌棒を混合してキュベットに入れ、５分間、３７摂氏度に加熱した。閾値下凝集を５マイクロリットルの１〜２μｇ／ｍＬ コラーゲンで誘導し、それを血小板凝集計で６〜７分間測定した。コラーゲンによって誘導された凝集および分泌に対するＴ４、Ｔ４−アガロース対Ｔ３および他の甲状腺ホルモン類似体の効果を検定した。Ｉｎｇｅｒｍａｎ−Ｗｏｊｅｎｓｋｉ Ｃ，Ｓｍｉｔｈ ＪＢ，Ｓｉｌｖｅｒ ＭＪ．Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｌｅｃｔｒｉｃａｌ ａｇｇｒｅｇｏｍｅｔｒｙ：ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｗｉｔｈ ｏｐｔｉｃａｌ ａｇｇｒｅｇｏｍｅｔｒｙ，ｓｅｃｅｔｉｏｎ ｏｆ ＡＴＰ，ａｎｄ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｒａｄｉｏｌａｂｅｌｅｄｐｌａｔｅｌｅｔｓ．Ｊ Ｌａｂ Ｃｌｉｎ Ｍｅ．１９８３ Ｊａｎ；１０１（１）４４−５２。

細胞移動アッセイ：
Ｍｏｕｓａらの方法によって採血した血液からヒト顆粒球を単離し、以前に記載されたとおり細胞移動アッセイを行った（Ｃｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９（３）：１７９−１８７，１９９７における方法、およびＣｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ １９（３）：１８９−１９５，１９９７における方法）。簡単に言うと、８μｍの孔径を有するニューロプローブ９６ウエル使い捨て走化性チャンバを使用する。このチャンバは、ケモカイン、サイトカインまたは細胞外マトリックスタンパク質の勾配に向かう細胞移動を定量することができる。５μＬの試験薬、例えばフラボノイドまたは甲状腺ホルモン誘導体、が入っているプロピレンプレートに細胞懸濁液（４５μＬの２×１０^６）を添加し、１０分間、２２℃でインキュベートする。０．００１〜０．１μＭでのＴ３／Ｔ４（３３μＬ）を伴うまたは伴わないＩＬ８（０．１〜１００ｎｇ）を、使い捨て走化性チャンバの下方ウエルに添加し、その後、予め組み立てられたフィルターを使用してそのチャンバを組み立てる。２５μＬの細胞／試験薬懸濁液を上方フィルターウエルに添加し、その後、加湿細胞培養インキュベーターにおいて一晩（３７℃、５％ＣＯ２で２２時間）インキュベートする。その一晩のインキュベーションの後、移動しなかった細胞および過剰な培地を、１２チャネルピペットおよびセルスクレーパーを使用して穏やかに除去する。その後、フィルターをリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）中で２回洗浄し、ＰＢＳ緩衝液中の１％ホルムアルデヒドで固定する。移動した細胞の膜にＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（０．２％）を浸透させ、その後、ＰＢＳで２〜３回洗浄する。移動した細胞のアクチンフィラメントをローダミンファロイジン（１２．８ＩＵ／ｍＬ）で３０分間（２２℃）染色する。ローダミンファロイジンは、毎週、新しくし、４℃で光から保護して保存する場合は３日まで再利用する。Ｃｙｔｏｆｌｏｕｒ ＩＩマイクロフィルター蛍光計（５３０ 励起／５９０ 放射）を用いる蛍光検出によって、走化性を定量的に判定する。すべての細胞処理およびその後の洗浄は、独自に設計された処理／洗浄ステーション（Ｃｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９（３）：１７９−１８７，１９９７における方法）を使用して行う。この技術は、細胞移動の正確な定量を可能にし、アッセイ間およびアッセイ内のばらつきが最小の、再現性のある結果をもたらす。

細胞移動アッセイ：
これらのアッセイは、８μｍの孔径を有するＮｅｕｒｏｐｒｏｂｅ ９６ウエル使い捨て走化性チャンバを使用して行った。このチャンバは、ビトロネクチンまたはオステオポンチンのいずれかの勾配に向かう細胞移動を定量することができる。ＥＤＴＡ／トリプシン（０．０１％／０．０２５％）を使用し、標準化された方法に従って、培養細胞を取り出した。取り出した後、細胞を２回洗浄し、ＥＢＭ（内皮細胞基礎培地、Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ Ｉｎｃ．）に再び懸濁させた（２×１０^６／ｍＬ）。０．０１２５〜１００μｇ／ｍＬでのビトロネクチンまたはオステオポンチン（３３μＬ）を使い捨て走化性チャンバの下方ウエルに添加し、その後、予め組み立てられたフィルターを使用して組み立てた。異なる濃度の５μＬの試験薬が入っているポリプロピレンプレートに細胞懸濁液（４５μＬ）を添加し、１０分間、２２℃でインキュベートした。２５μＬの細胞／試験薬懸濁液を上方フィルターウエルに添加し、その後、加湿細胞培養インキュベーターにおいて一晩（３７℃で２２時間）インキュベートした。その一晩のインキュベーションの後、移動しなかった細胞および過剰な培地を、１２チャネルピペットおよびセルスクレーパーを使用して穏やかに除去した。その後、フィルターをＰＢＳ（Ｃａ^＋２およびＭｇ^＋２を含まない）中で２回洗浄し、１％ホルムアルデヒドで固定した。移動した細胞の膜にＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（０．２％）を浸透させ、ＰＢＳで２〜３回洗浄した。移動した細胞のアクチンフィラメントをローダミンファロイジン（１２．８ＩＵ／ｍＬ）で３０分間（２２℃）染色した。ローダミンファロイジンは、毎週、新しくし、４℃で光から保護して保存する場合は３日まで再利用した。Ｃｙｔｏｆｌｏｕｒ ＩＩ（５３０ 励起／５９０ 放射）を用いる蛍光検出によって、走化性を定量的に判定した。すべての細胞処理およびその後の洗浄は、独自に設計された処理／洗浄ステーションを使用して行った。このステーションは、それぞれが３０ｍＬ量の容積を有する、６つの個別試薬ユニットから成るものであった。個別ユニットに次の試薬のうちの１つを充填した：ＰＢＳ、ホルムアルデヒド、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、またはローダミン−ファロイジン。この技術を用いて、フィルターを適切な溶液に穏やかに浸漬し、こうして移動細胞の損失を最少にした。この技術は、細胞移動の最大定量を可能にし、アッセイ間およびアッセイ内のばらつきが最小の、再現性のある結果をもたらした。

細胞外マトリックスタンパク質ビトロネクチンへの移動

ＬＣ＝下方チャンバ、ＵＣ＝上方チャンバ
他の強力で特異的ａｖｂ３アゴニスト、例えばＬＣ６０９およびＳＭ２５６でも同様のデータが得られた。

（実施例９ｂ）
インビトロヒト上皮および線維芽細胞創傷治癒：
このインビトロ２次元創傷治癒法は、Ｍｏｈａｍｅｄ Ｓ，Ｎａｄｉｊｃｋａ Ｄ，Ｈａｎｓｏｎ，Ｖ．Ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ｃｉｍｅｔｉｄｉｎｅ ｉｎ ｖｉｔｒｏ．Ｄｒｕｇ Ｉｎｔｅｌｌ Ｃｌｉｎ Ｐｈａｒｍ ２０：９７３−９７５；１９８６（これは、その全体が本明細書に参考として援用される）に記載されているとおりである。加えて、本発明者らの研究室において既に確立されている３次元創傷治癒法を、この研究において利用する（下記参照）。データは、甲状腺ホルモンによる創傷治癒の強力な刺激を示している。

ヒト皮膚線維芽細胞のインビトロ３Ｄ創傷治癒アッセイ：
段階１：収縮コラーゲンゲルの調製：
１）２４ウエルプレートを３５０ｕＬの２％ＢＳＡで室温で２時間、コーティングする。

２）集密度８０％のＮＨＤＦ（正常ヒト皮膚線維芽細胞、５〜９継代）をトリプシン処理し、増殖培地で中和し、遠心分離し、ＰＢＳで１回洗浄する。

３）コラーゲン−細胞混合物を調製し、穏やかに、常に氷上で混合する：
保存溶液 最終濃度
５×ＤＭＥＣ １×ＤＭＥＭ
３ｍｇ／ｍＬ ビトロゲン ２ｍｇ／ｍＬ
ｄｄＨ２Ｏ 最適
ＮＨＤＦ 細胞数２×１０〜５／ｍＬ
ＦＢＳ １％ 。

４）２４ウエルプレートから２％ＢＳＡを吸引し、コラーゲン−細胞混合物３５０ｕＬ／ウエルを添加し、３７℃のＣＯ２インキュベーターにおいてそのプレートをインキュベートする。

５）１時間後、ＤＭＥＭ＋５％ＦＢＳ培地 ０．５ｍＬ／ウエルを添加し、１０ｕＬ チップを使用し、それぞれのウエルの縁からコラーゲンゲルを剥離させ、その後、２日間、インキュベートする。線維芽細胞がコラーゲンゲルを収縮させるだろう。

段階２：３Ｄフィブリン創傷血餅の作製および負傷者へのコラーゲン培養物の埋め込み
１）試験試薬を伴うまたは伴わないフィブリノゲン溶液（１ｍｇ／ｍＬ）を調製する。エッペンドルフチューブのそれぞれのウエルに３５０ｕＬのフィブリノゲン溶液。
保存溶液 最終濃度
５×ＤＭＥＣ １×ＤＭＥＭ
フィブリノゲン １ｍｇ／ｍＬ
ｄｄＨ２Ｏ 最適
試験試薬 最適濃度
ＦＢＳ １％または５％
２）はさみでそれぞれの収縮コラーゲンゲルを中央から切り取る。そのゲルをＰＢＳで洗浄し、２４ウエルプレートのそれぞれのウエルの中心にそのゲルを移す。

３）１．５ｕＬのヒトトロンビン（０．２５Ｕ／ｕＬ）をそれぞれのチューブに添加し、十分に混合し、その後、その溶液をコラーゲンゲルの周囲に添加する。その溶液は、１０分間で重合するであろう。２０分後、試験薬を伴うまたは伴わないＤＭＥＭ＋１％（または５％）ＦＢＳ、４５０ｕＬ／ウエルを添加し、そのプレートを３７℃のＣＯ２インキュベーターにおいて５日以下の間インキュベートする。各日、写真を撮る。

糖尿病ラットにおけるインビトロ創傷治癒：
糖尿病ラットにおける緊急切開創傷モデルを使用して、甲状腺ホルモン類似体およびそのコンジュゲート形の効果を検定する。創傷閉鎖速度、破断強度分析および組織学を第３〜２１日に定期的に行う。

方法：
この研究では、動物（マウスおよびラット）に２つの小さな刺創をつける−一方の創傷にＷＨを塗布し、他方は対照として食塩溶液で覆った。でなければ、創傷を放置して、自然治癒させる。

それらの動物を負傷させた５日後に安楽死させる。治療した創傷および未治療の創傷の端から、小面積の皮膚−１から１．５ミリメートル−を切除する。

創傷閉鎖および創傷閉鎖までの時間を判定する。加えて、創傷の肉芽組織におけるテネイシン（結合組織の構築に役立つタンパク質）のレベルを判定する。肉芽組織（すなわち、創傷が治癒するにつれて新たな毛細血管および結合組織を通常は形成する、粗い、ピンクがかった組織）の質も判定する。

材料および方法：
慢性肉芽創は、当該技術分野において周知の方法によって作ることができる。体重３００から３５０グラムの雄Ｓｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙラットを、使用前、１週間、本発明者らの施設に馴化させる。腹腔内ネンブタール麻酔（３５ｍｇ／ｋｇ）のもと、ラットの背の毛を剃り、脱毛する。動物たちを個々にケージに入れ、餌および水を自由に与える。すべての実験は、Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｖｅｔｅｒａｎｓ Ａｆｆａｉｒｓ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃｅｎｔｅｒ（ニューヨーク州、オールバニー）のＡｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ ａｎｄ Ｕｓｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅのガイドラインに従って行った。

ヒト慢性肉芽創との比較でのこの創傷の組織学的特性付けは、以前に行われている。次に、６４匹のラットを８つの治療群（ｎ＝８／群）に分ける。第５、９、１２、１５および１８日に動物をビヒクル（ビヒクル対照）の局所塗布で治療する。このビヒクル対照は、Ｌ−チロキシンのコンジュゲーションで使用される、アガロース（第１群）またはポリマー形（第２群）であり得る。１０μｇの球状六糖類および１０ｍＭの塩化カルシウムの存在下の１、１０、１００μｇ／ｃｍ^２のＴ４−アガロース（第３〜５群）またはＴ４−ポリマー（第６〜８群）を第５、９、１２、１５および１８日に局所塗布して、創傷を治療した。すべての創傷を露出した状態にしておく。４８時間ごとに創傷の輪郭をアセテートシートにトレースし、コンピューターデジタル面積測定を用いて面積計算を行うことができる。

その後、第１９日に創傷の頭側、中央および尾側の末端から肉芽組織の３つの全層横断ストリップを採取し、１０パーセント緩衝ホルマリンで固定する。それぞれの検体から横断切片（５μｍ）を取り、ヘマトキシリンおよびエオシンで染色する。肉芽組織の厚さは、接眼マイクロメーターで弱視野で推定することができる。肉芽組織の表在炎症層の直ぐ下は、強拡大視野によって検査する。肉芽組織のそれぞれのストリップから、５つの隣接する強拡大視野の写真を撮り、コードする。その後、これらのコマの拡大ポイントを盲検式で組織分析に用いる。線維芽細胞、「円形」細胞（マクロファージ、リンパ球および好中球）、および毛細血管を計数する。加えて、それぞれの切片の細胞充実度を１（減少した細胞数）から５（高細胞性）のスケールで充実度について採点する。

統計解析：
連続面積測定値を時間に対してプロットした。それぞれの動物のデータについて、Ｇｏｍｐｅｒｔｚ方程式を当てはめる（典型的に、ｒ２＝０．８５）。この曲線を使用して、創傷半減期を推定することができる。生命表分析およびＷｉｌｃｏｘｏｎ順位検定を用いて、群間比較を行う。これらの統計解析は、パーソナルコンピューターでＳＡＳ（ＳＡＳ／ＳＴＡＴ Ｇｕｉｄｅ ｆｏｒ Ｐｅｒｓｏｎａｌ Ｃｏｍｐｕｔｅｒｓ，Ｖｅｒｓｉｏｎ ６ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃａｒｙ Ｎｏｒｔｈ Ｃａｒｏｌｉｎａ，１９８７，ｐ１０２８）およびＢＭＤＰ（ＢＭＤＰ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｍａｎｕａｌ，Ｌｏｓ Ａｎｇｅｌｅｓ，ＢＭＤＰ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．１９８８）パッケージを使用して行う。

異なる治療群の細胞数をプールし、一元配置分散分析を用いて分析する。群間差の事後分析は、Ｔｕｋｅｙ検定（すべてペアでの多重比較検定）を用いて行うことができ、ｐ＜０．０５を有意と見なす。Ｓｉｇｍａ Ｓｔａｔ統計用ソフトウェア（カリフォルニア州、コルテマデラのＪａｎｄｅｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）をデータ解析に用いる。

（実施例１０）
心筋梗塞の齧歯動物モデル：
心筋梗塞の冠動脈結紮モデルを用いて、ラットにおける心臓機能を調査する。ラットを最初にキシラジンおよびケタミンで麻酔し、適切な麻酔が達成された後、気管に挿管し、陽圧換気を開始する。その動物を仰臥位にし、その四肢をゆるくテープで留め、胸骨正中切開を行う。心臓をそっと肱置し、左前下行冠動脈の周囲に６−Ｏ糸を堅く結ぶ。心臓を迅速に胸部に戻し、開胸切開部を３−Ｏ巾着縫合で閉じ、その後、結節縫合または外科手術用クリップで皮膚を閉じる。動物を温度調節加温パッドに載せ、回復する間、綿密に観察する。必要な場合には、酸素補充および心肺蘇生術を施す。回復後、ラットを動物管理施設に戻す。ラットにおけるこうした冠動脈結紮は、大きな前壁心筋梗塞を生じさせる。この手順の４８時間死亡率は、５０％もの高さであり得、この手順によって生じる梗塞のサイズは可変的である。これらの考慮事項に基づいて、実験に先立ち、下で論じる甲状腺ホルモン送達の２つのモデルを比較できるように大きな梗塞を有する１６〜２０匹のラットを得るには、約４００匹のラットが必要である。

無損傷動物における甲状腺ホルモンの全身送達が、冠動脈結紮前または後に薬効（心エコー検査および血行動態測定によって評価される血行動態異常の程度、ならびに梗塞サイズの減少を含む）をもたらすことを証明するために、これらの実験を計画する。転帰測定は、梗塞後３週間の時点で行う。一部のラットは、梗塞を有さない場合があり、または小さな梗塞しか生じないが、これらのラットは、正常な心エコー図および正常な血行動態（左心室拡張周期圧＜８ｍｍＨｇ）によって特定することができる。

甲状腺ホルモン送達：
２つの送達アプローチがある。第一の場合、甲状腺ホルモンを梗塞周囲心筋に直接注射する。正常心筋と虚血心筋との区分は、緊急開胸縫合中に容易に特定できるので、このアプローチは、血管新生効果を検出するために十分なホルモン送達をもたらす。

第一のモデルは、冠動脈バイパス術を受ける患者に有用であり、１回の局所注射が血管新生を誘導するという原理の証明となるが、第二のモデルを用いる、より広いアプローチも、用いることができる。第二のモデルでは、心筋梗塞誘導前に麻酔されたラットの左心室に頚動脈経由で逆行性カテーテルを配置する。あるいは、大動脈の大動脈弁の直ぐ上の直接穿刺を行う。次に、冠血管の起始部の上の大動脈を数秒間、突然閉鎖させ、それにより等容性収縮を生じさせることにより、甲状腺ホルモンの冠血管内注射をシミュレートする。その後、大動脈狭窄直後に甲状腺ホルモンを左心室または大動脈に注射する。結果として生ずる等容性収縮は、下方の冠血管に血液を進ませて、全心筋に甲状腺ホルモンを潅流させる。この手順は、効果が得られるまで必要に応じて何度も行うことができる。注射数は、使用される用量および新たな血管の形成に依存する。

心エコー検査法：
麻酔していないラットにおいて２ＤおよびＭモードの心エコー図を得るための方法を開発した。左心室の寸法、気嚢、壁厚および壁運動の再現可能な信頼できる測定を行うことができる。甲状腺ホルモン投与に関して偏りを無くすために盲検式で測定を行う。

血行動態：
左心室障害度を判定するために、血行動態測定を用いる。ラットをイソフルランで麻酔する。右前首に沿った切開により、右頚動脈および右頚静脈を単離し、圧力変換カテーテル（Ｍｉｌｌａｒ、ＳＰＲ−６１２、１．２Ｆｒ）を挿入する。その後、以下の測定を行う：心拍数、収縮期および拡張期ＢＰ、平均動脈圧、左心室収縮期および拡張終期圧、ならびに＋および−ｄＰ／ｄｔ。左心室拡張終期圧は特に有用であり、その漸増的上昇は、心筋障害度と相関する。

梗塞サイズ：
ＴＴＣ法を用いて梗塞サイズの測定のためにラットを屠殺する。

体型測定：
梗塞領域、梗塞周囲領域、および梗塞に対向するスペアの心筋（通常は後壁）における微小血管密度［微小血管数／ｍｍ^２］を測定する。Ｉｍａｇｅ Ａｎａｌｙｓｉｓソフトウェアを用いて、それぞれのラットから、横切開筋細胞に関する７〜１０の顕微鏡強拡大視野［×４００］をデジタル記録する。盲検調査員が微小血管を計数する。微小循環は、三次細動脈を除く、直径１５０μメートル以下の血管群と定義され、これは、細動脈と細静脈の間で組織を調達する。左心室の肥大の差を補正するため 、体重について補正した左心室重量で微小血管密度を割る。擬似手術を行ったラットの心筋を対照として役立てる。

（実施例１１）
Ｔ４またはＦＧＦ２の血管新生促進効果に対するαＶβ３アンタゴニストの効果：
αＶβ３阻害剤ＬＭ６０９は、ＣＡＭモデルにおいて、ＦＧＦ２またはＴ４によって誘導された血管新生促進効果の両方を、１０マイクログラムで、完全に阻害した（図１６）。

（実施例１２）
癌に関連した新たな血管の成長の阻害：
ヒト乳癌細胞（ＭＣＦ−７）のインプラントを施したＳＣＩＤマウスへのテトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）の投与のために、Ｊ．Ｂｅｎｎｅｔｔ，Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９：２２１１−２２１５，２００２に開示されているプロトコルを用いる。ＴＥＴＲＡＣを飲用水で供給して、そのマウスモデルにおけるホルモン類似体の循環レベルを１０^−６Ｍに上昇させる。エンドポイントは、内植された腫瘍の周囲の血管新生に対するＴＥＴＲＡＣの阻害作用である。

（実施例１３）
インビトロ三次元微小血管内皮出芽モデルにおける閾値下レベルのＶＥＧＦおよびＦＧＦ２に対する甲状腺ホルモンおよびその類似体の血管新生促進効果：
Ｔ_３、Ｔ_４、Ｔ_４−アガロースまたは線維芽増殖因子２（ＦＧＦ２）のいずれかと血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）は、インビトロ三次元微小血管内皮出芽モデルにおいて同等の血管新生促進作用を生じた。甲状腺ホルモンの血管新生促進効果は、ＰＤ ９８０５９（マイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰＫ；ＥＲＫ１／２）シグナル伝達カスケードの阻害剤）によって遮断された。加えて、特定のαＶβ３インテグリンアンタゴニスト（ＸＴ１９９）は、甲状腺ホルモン類似体またはＴ_４−アガロースに対する血管新生促進効果を阻害した。データは、甲状腺ホルモン類似体ＴＥＴＲＡＣが甲状腺類似体の血管新生促進応答を阻害することも明示した。従って、試験した甲状腺ホルモン類似体は、血管新生促進性であり、その作用は、原形質膜で開始され、αＶβ３インテグリン受容体を必要とし、ＭＡＰＫ依存性である。

本発明は、インビトロ三次元微小血管内皮細胞出芽モデルにおける閾値下レベルのＶＥＧＦおよびＦＧＦ２に対するＴ_３、Ｔ_４またはＴ_４−アガロースの血管新生促進効果を記載する。本発明は、このホルモン効果が、内皮細胞原形質膜で開始され、αＶβ３インテグリンおよびＥＲＫ１／２シグナル伝達経路の活性化によって媒介される証拠も提供する。

三次元出芽アッセイにおける低濃度のＶＥＧＦおよびＦＧＦ２の血管新生活性のＴ_３、Ｔ_４またはＴ_４−アガロースの増進を実証した。１０^−７〜１０^−８ＭでのＴ_３、Ｔ_４、または１０^−７Ｍの全ホルモン濃度でのＴ_４−アガロースは、このインビトロモデルにおいて、血管新生促進活性の点で、最大濃度のＶＥＧＦおよびＦＧＦ２の効果と同等であった。ラット心臓における新たな血管の成長が、高用量のＴ_４による心筋肥大の誘導に付随して発生したと報告されているが、甲状腺ホルモンは、血管新生因子と見なされていない。本実施例は、生理濃度でのホルモンが心臓以外の環境ででも血管新生促進性であることを確立する。

Ｔ_４−アガロースは、Ｔ_４の効果を再現した。甲状腺ホルモンのこの誘導体は、細胞内部に出入りしないと考えられ、本発明者らの研究所では、可能性のある細胞表面で開始されるヨードチロニン作用についてのホルモン作用モデルを調査するためにそれを用いた。さらに、Ｔ_４およびＴＥＴＲＡＣで行った実験も、このモデルにおけるＴ_４の作用が原形質膜で開始されたことを支持した。ＴＥＴＲＡＣは、膜で開始されるＴ_４の効果を遮断する。

甲状腺ホルモンは、ＭＡＰＫ（ＥＲＫ１／２）シグナル伝達経路を非ゲノム的に活性化するので、このホルモンの血管新生に対する作用は、ＭＡＰＫによって媒介され得る。ＣＭＡモデルに添加したとき、ＭＡＰＫカスケードの阻害剤、ＰＤ ９８０５９は、Ｔ_４の血管新生促進作用を阻害した。この結果は、ＦＧＦ２生成に対するＴ_４の効果の上流の甲状腺ホルモンシグナル伝達に対する作用と矛盾しないが、ＦＧＦ２もＭＡＰＫ依存性メカニズムによって作用することも知られている。Ｔ_４およびＦＧＦ２は、内皮細胞におけるＥＲＫ１／２のリン酸化および核移行を独自に生じさせ、最大下用量で用いると、協力してさらにＥＲＫ１／２の活性化を増進させる。血管新生のホルモン刺激のＭＡＰＫ依存性成分のみが、排他的に、血管成長に対するＦＧＦ２の作用に関係する可能性を調査するために、ＰＤ ９８０５９の存在下でのＴ_４に応じての細胞のＦＧＦ２放出を測定した。後者の薬剤は、そのホルモンによって誘導される増殖因子濃度増加を遮断し、ならびにＭＡＰＫ活性化が、内皮細胞からのＦＧＦ２放出に対するＴ_４の作用および結果として生ずるＦＧＦ２の血管新生に対する効果に関与すること示した。

血管新生に対する甲状腺ホルモンの効果：
０．００１〜０．０１μＭでのＴ_４、Ｔ_３、またはＴ_４−アガロースは、血管新生に対する有意な（Ｐ＜０．０１）刺激を生じさせた。下の表を参照のこと。これにより、ＦＧＦ２（５０ｎｇ／ｍＬ）＋ＶＥＧＦ（２５ｎｇ／ｍＬ）の血管新生促進効力と同等であることが証明される。

三次元ヒト微小血管内皮出芽アッセイにおける増殖因子、甲状腺ホルモンおよび類似体のインビトロ血管新生促進効果

データ（平均±ＳＤ）は、３回の実験から得た。閾値下レベルのＦＧＦ２（１．２５ｎｇ／ｍＬ）＋ＶＥＧＦ（２．５ｎｇ／ｍＬ）で細胞を前処理した。
データは、平均±ＳＤを表す、ｎ＝３、^＊ＡＮＯＶＡによりＰ＜０．０１、処理したものと対照とを比較。

甲状腺血管新生促進作用に対するＴＥＴＲＡＣの効果：
Ｔ_３は、原形質膜で開始される細胞シグナル伝達経路を刺激する。これらの血管新生促進作用は、Ｔ_４の原形質膜への結合を阻害することが知られている脱アミノ化ヨードチロニン類似体、ＴＥＴＲＡＣ、によって遮断される。ＴＥＴＲＡＣ（０．１μＭ）の添加は、Ｔ_３、Ｔ_４、またはＴ_４−アガロースの血管新生促進作用を阻害した（表５〜７）。これは、微小血管内皮細胞移動の数および血管長の抑制によって証明される（表５〜７）。

甲状腺ホルモンによる血管新生の刺激におけるＥＲＫ１／２シグナル伝達経路の役割：
ＥＲＫ１／２阻害の並行試験を三次元微小血管出芽アッセイにおいて行った。０．０１〜０．１μＭでの甲状腺ホルモンおよび類似体は、管長および移動細胞数を有意に減少させ、この効果は、ＰＤ ９８０５９によって有意に（Ｐ＜０．０１）遮断された（表５〜７）。これは、微小血管内皮細胞移動数および血管長の抑制によって示される（表５〜７）。

甲状腺ホルモンによる血管新生の刺激におけるインテグリンαＶβ３の役割：
閾値下レベルのＶＥＧＦおよびＦＧＦ２の存在下で０．０１〜０．１μＭのＴ_３、Ｔ_４、またはＴ_４−アガロースによって媒介される血管新生促進は、αＶβ３インテグリンアンタゴニストＸＴ１９９によって有意に（Ｐ＜０．０１）遮断された（表５〜７）。これは、微小血管内皮細胞移動数および血管長の抑制によって示される。下の表を参照のこと。

このように、甲状腺ホルモンおよびその類似体の血管新生促進効果は、原形質膜αＶβ３インテグリンで始まり、ＥＲＫ１／２の活性化を必要とする。

三次元ヒト微小血管内皮出芽アッセイにおける甲状腺ホルモンＴ_３の血管新生促進メカニズム

ヒト皮膚微小血管内皮細胞（ＨＤＭＶＣ）を使用した。ＦＧＦ２（１．２５ｎｇ／ｍＬ）＋ＶＥＧＦ（２．５ｎｇ／ｍＬ）で細胞を前処理した。第３日に、４および１０倍で画像を撮った。データは、平均±ＳＤを表す、ｎ＝３、^＊Ｐ＜０．０１。

三次元ヒト微小血管内皮出芽アッセイにおける甲状腺ホルモンＴ_４の血管新生促進メカニズ

ヒト皮膚微小血管内皮細胞（ＨＤＭＶＣ）を使用した。ＦＧＦ２（１．２５ｎｇ／ｍＬ）＋ＶＥＧＦ（２．５ｎｇ／ｍＬ）で細胞を前処理した。第３日に、４および１０倍で画像を撮った。データは、平均±ＳＤを表す、ｎ＝３、^＊Ｐ＜０．０１。

三次元ヒト微小血管内皮出芽アッセイにおける甲状腺ホルモンＴ_４−アガロースの血管新生促進メカニズム

ヒト皮膚微小血管内皮細胞（ＨＤＭＶＣ）を使用した。ＦＧＦ２（１．２５ｎｇ／ｍＬ）＋ＶＥＧＦ（２．５ｎｇ／ｍＬ）で細胞を前処理した。第３日に、４および１０倍で画像を撮った。データは、平均±ＳＤを表す、ｎ＝３、^＊Ｐ＜０．０１。

（実施例１４）
血管脳関門を横断するポリマー甲状腺類似体輸送を評価するためのインビトロでの方法
選択された単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が血液脳関門を横断する可能性が高いその能力を評価するためのインビトロでの方法を下で説明する。モデルおよびプロトコルの詳細な説明は、Ａｕｄｕｓら，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ ５０７：９−１８（１９８７）（この開示は、本明細書に参考として援用される）によって提供されている。

簡単に言うと、新鮮なウシの脳の大脳灰白質から微小血管内皮細胞を単離する。脳は、地元の屠殺場から入手し、抗生物質を含有する氷冷最少必須培地（「ＭＥＭ」）に入れて研究所に輸送される。滅菌条件下、標準的な切開手順を用いて、大きな表面の血管および髄膜を除去する。皮質灰白質を吸引により除去し、その後、約１ｍｍの立方体に刻む。その後、その刻んだ灰白質を振盪水浴において０．５％ディスパーゼ（インディアナ州、インディアナポリスのＢＭＢ）とともに３時間、３７℃でインキュベートする。３時間の消化の後、その混合物を遠心分離（１０００×ｇ、１０分間）によって濃縮し、その後、１３％デキストランに再び懸濁させ、１０分間、５８００×ｇで遠心分離する。上清の脂肪、細胞溶解産物およびミエリンを捨て、その粗微小血管ペレットを１ｍｇ／ｍＬのコラーゲン／ディスパーゼに再び懸濁させ、振盪水浴において５時間、３７℃でインキュベートする。５時間の消化の後、事前に評価された５０％Ｐｅｒｃｏｌｌ勾配にその微小血管懸濁液を適用し、１０分間、１０００×ｇで遠心分離する。精製内皮細胞を含有するバンド（その勾配の最高位から二番目のバンド）を除去し、培養培地（例えば、５０％ＭＥＭ／５０％Ｆ−１２栄養混合物）で２回洗浄する。後で使用するために、２０％ＤＭＳＯおよび１０％ウマ血清を含有する培地中で細胞を冷凍する（−８０℃）。

単離後、ラットコラーゲンおよびフィブロネクチンをコーティングされている培養皿または孔径５〜１２ｍｍのポリカーボネートフィルターで、約５×１０^５の細胞／ｃｍ^２を平板培養する。細胞接種から１０〜１２日後、細胞単層を顕微鏡により集密度について検査する。

これらの細胞の形態学的、組織化学的および生化学的特性についての特性付けは、これらの細胞が、脳血液関門の顕著な特徴の多くを有することを示した。これらの特徴としては、密な細胞間結合、膜開窓がないこと、低レベルの飲作用活性、ならびにガンマ−グルタミルトランスペプチダーゼ、アルカリホスファターゼおよび第ＶＩＩＩ因子抗原活性の存在が挙げられる。

前記培養細胞は、分極結合または輸送についてのモデルが必要とされる様々な実験において使用することができる。マルチウエルプレートで細胞を平板培養することにより、大分子と小分子の両方の受容体および非受容体結合を行うことができる。経内皮細胞フラックス測定を行うために、細胞を多孔質ポリカーボネート膜フィルター（例えば、カリフォルニア州、プレザントンのＮｕｃｌｅｏｐｏｒｅからのもの）上で増殖させる。大孔径フィルター（５〜１２ｍｍ）を使用して、フィルターが分子フラックスに対する速度制限バリアになる可能性を回避する。これらの大孔径フィルターの使用は、フィルターの下での細胞増殖を許さず、細胞単層の目視検査を可能にする。

細胞が集密に達したら、それらを並列拡散セル装置（例えば、ニュージャージー州、ソマービルのＣｒｏｗｎ Ｇｌａｓｓからのもの）内に配置する。フラックス測定のために、拡散セルのドナーチャンバに試験物質をパルスし、その後、パルス後、様々な時点で、分析のためにレシーバーチャンバからアリコートを取り出す。放射性標識または蛍光標識物質により、分子フラックスの信頼できる定量が可能となる。スクロースまたはインスリンなどの輸送不能な試験物質の添加によって単層の完全性を同時に測定し、少なくとも４回の実験判定を評価して、統計的有意性を確保する。

（実施例１５）
外傷性損傷モデル
液体衝撃脳損傷モデルを用いて、単独でのまたは神経成長因子もしくは他の神経新生因子との組み合わせでのポリマー甲状腺ホルモン類似体が有意な外傷性脳損傷後に中枢神経機能を回復させる能力を評価した。

Ｉ．液体衝撃脳損傷手順
この研究で用いた動物は、体重２５０〜３００グラムの雄Ｓｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙラット（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ）であった。液体衝撃脳損傷のための基本的な外科的準備は、以前に記載されている。Ｄｉｅｔｒｉｃｈら，Ａｃｔａ Ｎｅｕｒｏｐａｔｈｏｌ．８７：２５０−２５８（１９９４）（これは、本明細書に参考として援用される）。簡単に言うと、３％ハロタンと３０％酸素とバランスの亜酸化窒素とでラットを麻酔した。気管挿管を行い、ラットを定位フレームに配置した。その後、４．８ｍｍの開頭を行って、右頭頂皮質をプレグマの３．８ｍｍ後方および正中線の２．５ｍｍ外側に重ねた。傷害チューブを露出した硬膜の上に配置し、接着剤で接着する。その後、歯科用アクリル樹脂をその傷害チューブの周囲に注入し、その後、その傷害チューブにジェルフォームスポンジで栓をした。頭皮を縫合して閉じ、その動物を元のケースに戻し、一晩、回復させた。

翌日、本質的にはＤｉｘｏｎら，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．６７：１１０−１１９（１９８７）およびＣｌｉｆｔｏｎら，Ｊ．Ｃｅｒｅｂ．Ｂｌｏｏｄ Ｆｌｏｗ Ｍｅｔａｂ．１１：１１４−１２１（１９９１）によって記載されたとおりに、液体衝撃脳損傷を生じさせた。液体衝撃装置は、ラットの頭蓋に合わせた変換器ハウジングおよび傷害スクリューが取り付けられている食塩水充填プレキシグラスシリンダーから成るものであった。その金属スクリューを、挿管される麻酔されたラット（７０％亜酸化窒素、１．５％ハロタンおよび３０％酸素）のプラスチック傷害チューブにしっかりと接続し、そのピストンに衝突する振り子の降下によって損傷を誘導した。ラットは、１．６から１．９ａｔｍの範囲の軽度から中等度の頭部損傷を受けた。右側頭筋に挿入したサーミスタプローブで脳温度を直接モニターし、３７〜３７．５℃で維持した。そのモニター期間の前および全体を通して直腸温度も測定し、３７℃で維持した。

行動試験：
３つの標準的機能／行動試験を用いて、脳損傷後の感覚運動および反射機能を評価した。これらの試験は、Ｂｅｄｅｒｓｏｎら，（１９８６）Ｓｔｒｏｋｅ １７：４７２−４７６；ＤｅＲｙｃｋら，（１９９２）Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．５７３：４４−６０；Ｍａｒｋｇｒａｆら，（１９９２）Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．５７５：２３８−２４６；およびＡｌｅｘｉｓら，（１９９５）Ｓｔｒｏｋｅ ２６：２３３８−２３４６をはじめとする文献において十分に説明されている。

Ａ．前肢配置試験（Ｆｏｒｅｌｉｍｂ Ｐｌａｃｉｎｇ Ｔｅｓｔ）
３つの異なる刺激（視覚、触覚および固有受容）に対する前肢配置測定して、感覚運動統合を評価した。ＤｅＲｙｃｋら，Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．５７３：４４−６０（１９９２）。視覚的配置サブ試験については、研究者がその動物を立位で保持し、テーブル上面に近づけた。テーブルに肢を正常に置けば「０」とスコアを付け、遅れて置けば（＜２秒）「１」とスコアを付け、置かないか、非常に遅れて置けば（＞２秒）、「２」とスコアを付ける。最初に、動物を前方に持って行き、その後、再び、動物を横からテーブルに持って行って、独立したスコアを得る（肢当たりの最大スコア＝４；それぞれの場合、数が大きいほど、大きな欠損を示す）。触覚的配置サブ試験については、テーブル上面を見ることができず、ひげでテーブル上面に触ることができないように、動物を保持する。最初に動物を前方に持って行き、その後、横からテーブルに持って行って、前肢の背をテーブル上面に軽く触らせる。配置を、各回、上のとおりスコアを付ける（肢当たりの最大スコア＝４）。固有受容配置サブ試験については、動物を前方にしか持って行かず、より大きな圧力を前肢の背にかける。配置は、上のとおりスコアを付ける（肢当たりの最大スコア＝２）。最後に、テーブル上面によるひげ刺激に応じて前肢を置き直す動物の能力を試験した（肢当たりの最大スコア＝２）。その後、サブスコアを足して、肢当たりの合計前肢配置スコアを得た（範囲＝０〜１２）。

Ｂ．梁バランス試験
梁バランスは、運動皮質傷害に敏感に反応する。このタスクを利用して、ラットに狭い梁上で着実にバランスをとるように命じることにより総前庭運動機能を評価した。Ｆｅｅｎｅｙら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２１７：８５５−８５７（１９８２）；Ｇｏｌｄｓｔｅｉｎら，Ｂｅｈａｖ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．１０４：３１８−３２５（１９９０）。この試験には、基礎データを得るために、外科手術２４時間前に３回の６０秒訓練試行が必要であった。その装置は、テーブル表面の上１フィートに吊下げられた長さ１０インチ、幅３／４インチの梁から成るものであった。ラットは、梁の上に置かれ、すべての肢を用いてその梁の上で安定した姿勢を６０秒間維持しなければならなかった。１のスコアは正常であり、６のスコアは動物が梁の上で自分自身を支えることができないことを示す、１から６の範囲にわたるＣｌｉｆｏｎら，Ｊ．Ｃｅｒｅｂ Ｂｌｏｏｄ Ｆｌｏｗ Ｍｅｔａｂ．１１：Ｉ１１４−１２１（１９９１）の測定尺度で、動物の動作を評価した。

Ｃ．梁歩行試験
これは、後肢の機能を特に調査する感覚運動統合についての試験である。試験装置および評価手順は、Ｆｅｅｎｅｙら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２１７：８５５−８５７（１９８２）からアレンジした。長さ４フィート、幅１インチの梁を、薄暗い照明の部屋の床上３フィートに吊下げた。その梁の向う端に、狭い入場路のある暗色のゴールの箱があった。梁に沿って等距離に４個の３インチ金属ねじを、その梁の中心からそむけて置いた。白色雑音発生器および明るい光源が、梁を渡ってゴール箱の入るように動物を誘導した。ゴール箱に到達するまでのラットの潜時（秒で）および梁を渡るときの後肢の動作（１から７の評価測定尺度に基づく）を記録した。７のスコアは、正常に梁を歩き、足を２回ひっかけたことを示し、１のスコアは、ラットが８０秒未満で梁を渡ることができなかったことを示す。それぞれのラットは、このタスクを習得し、３回の連続試行で正常な動作（７のスコア）を達成するために、外科手術前に３日間、訓練を受けた。外科手術の２４時間前に３回のベースライン試行データを収集し、その後、３回の試験試行を毎日記録した。各日の潜時およびスコアの平均値をコンピュータ処理した。

（実施例１６）
Ｔ４は、αＶβ３インテグリンのリガンドである
Ｔ４がαＶβ３インテグリンのリガンドであるかどうかを判定するために、２μｇの市販精製タンパク質を［^１２５Ｉ］Ｔ４とともにインキュベートし、その混合物を非変性ポリアクリルアミドゲルで泳動させた。αＶβ３は、放射性標識Ｔ４に結合する。この反応は、［^１２５Ｉ］Ｔ４インキュベーション前にαＶβ３に添加した非標識Ｔ４によって、濃度依存的様式で、競合的に破壊された（図２４）。非標識Ｔ４の添加は、放射性標識リガンドへのインテグリンの結合を、合計１０^−７Ｍ（３×１０^−１０Ｍ 遊離Ｔ４）の全Ｔ４濃度で１３％、合計１０^−６Ｍ（１．６×１０^−９Ｍ 遊離）で５８％減少させ、結合の阻害は、１０^−５Ｍの非標識Ｔ４で最大であった。非線形回帰を用いて、αＶβ３と遊離Ｔ４の相互作用は、３３３ｐＭのＫｄおよび３７１ｐＭのＥＣ_５０を有すると判定した。非標識Ｔ３は、αＶβ３への［^１２５Ｉ］Ｔ４の結合を置換する点ではあまり有効でなく、１０^−４Ｍの全Ｔ３でシグナルを２８％減少させた。

（実施例１７）
αＶβ３へのＴ４の結合は、ＴＥＴＲＡＣ、ＲＧＤペプチドおよびインテグリン抗体によって遮断させる
本発明者らは、細胞表面で活性化されるＴ４刺激シグナリング経路が、原形質膜へのＴ４の結合を防止することが知られているヨードチロニン類似体ＴＥＴＲＡＣによって阻害され得ることを以前に証明した。本発明者らの放射リガンド結合アッセイにおいて、１０^−８ＭのＴＥＴＲＡＣは、精製αＶβ３への［^１２５Ｉ］Ｔ４の結合に対して効果を有さなかったが、Ｔ４とαＶβ３の会合は、１０^−７ＭのＴＥＴＲＡＣの存在下で３８％、および１０^−５ＭのＴＥＴＲＡＣの存在下で９０％減少された（図２５）。この相互作用の特異性を判定するために、αＶβ３上の細胞外マトリックス結合部位に結合するＲＧＤペプチドと、アスパラギン酸残基ではなくグルタミン酸残基を有し、それ故、αＶβ３に結合しないＲＧＥペプチドとを、そのインテグリンとの結合からＴ４をはずす試みに加えた。ＲＧＥペプチドではなく、ＲＧＤペプチドの適用は、［^１２５Ｉ］Ｔ４とαＶβ３の相互作用を用量依存的に減少させる（図２５）。

Ｔ４とαＶβ３の相互作用をさらに特性付けするために、αＶβ３またはαＶβ５に対する抗体を、［^１２５Ｉ］Ｔ４の添加前に、精製αＶβ３に添加した。１μｇ／ｍＬのαＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９の添加は、そのインテグリンとＴ４との複合体形成を、未処理対照サンプルと比較して、５２％減少させた。ＬＭ６０９の量を２μｇ、４μｇ、および８μｇ／ｍＬに増やすと、バンド強度は、それぞれ、６４％、６３％および８１％減少した（図２６）。別のαＶβ３モノクローナル抗体、ＳＣ７３１２、をそのインテグリンとともにインキュベートしたとき、同様の結果が得られた。ＳＣ７３１２は、αＶβ３に結合するＴ４の能力を、１μｇ／ｍＬの抗体の存在で２０％、２μｇで４６％、４μｇで４７％、および８μｇ／ｍＬの抗体が存在したとき５９％減少させた。αＶおよびβ３に対するモノクローナル抗体とのインキュベーションは、独立して、αＶβ３への［^１２５Ｉ］Ｔ４の結合に影響を及ぼさなかった。これは、その会合が、αＶβ３のヘテロ二量体複合体から生じる結合ポケットを必要とし、いずれかのモノマー上の特定の領域を必ずしも必要としないことを示唆している。バンド強度の減少が、抗体によるαＶβ３の特異的認識に起因したことを評価するために、［^１２５Ｉ］Ｔ４の添加前に、精製αＶβ３をαＶβ５に対するモノクローナル抗体（Ｐ１Ｆ６）またはマウスＩｇＧとともにインキュベートした。これらはいずれも、そのインテグリンと放射リガンドとの複合体形成に影響を及ぼさなかった（図２６）。

（実施例１８）
Ｔ４刺激ＭＡＰＫ活性化は、ホルモン結合の阻害剤およびインテグリンαＶβ３の阻害剤によって遮断される
生理レベルのＴ４（１０^−７Ｍ 全ホルモン濃度、１０^−１０Ｍ 遊離ホルモン）で３０分、処理したＣＶ−１細胞において、リン酸化ＭＡＰＫ（ｐＥＲＫ１／２）の核移行を研究した。本発明者らが以前に報告した結果と一致して、Ｔ４は、ＣＶ−１細胞においてリン酸化ＭＡＰＫの核蓄積を３０分以内に誘導した（図２７）。ＣＶ−１細胞と指示濃度のαＶβ３アンタゴニストとの１６時間のプレインキュベーションは、ＭＡＰＫ活性化およびトランスロケーションを誘導するＴ４の能力を減少させた。１０^−８および１０^−７ＭでのＲＧＤペプチドの適用は、ＭＡＰＫ活性化に対して最少の効果しか有さなかった。しかし、１０^−６ＭのＲＧＤペプチドは、ＭＡＰＫリン酸化を、対照培養物と比較して６２％減少させ、培養培地中に１０^−５ＭのＲＧＤ（８５％減少）および１０^−４ＭのＲＧＤ（８７％減少）が存在したとき、活性化が最大に減少された。培養培地への非特異的ＲＧＥペプチドの添加は、ＣＶ−１細胞において、Ｔ４処理後、ＭＡＰＫリン酸化および核移行に対して効果を有さなかった。

原形質膜へのＴ４の結合を防止するＴＥＴＲＡＣは、Ｔ４誘導ＭＡＰＫ活性化の有効な阻害剤である。１０^−６Ｍの濃度でＴ４とともに存在すると、ＴＥＴＲＡＣは、Ｔ４単独で処理した培養物と比較して、ＭＡＰＫリン酸化およびトランスロケーションを８６％減少させた（図２７）。この阻害は、Ｔ４の適用前に１６時間、その培養培地に１０^−４ＭのＴＥＴＲＡＣを添加したとき、９７％に増加した。Ｔ４での刺激の１６時間前のその培養培地へのαＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９の添加も、Ｔ４誘導ＭＡＰＫ活性化を減少させた。培養培地のｍＬ当たり０．０１および０．００１μｇでのＬＭ６０９は、Ｔ４処理後のＭＡＰＫ活性化に影響を及ぼさなかった。その培養培地中の抗体の濃度を０．１、１および１０μｇ／ｍＬに増加させると、それらの細胞の核画分において見出されるリン酸化ＭＡＰＫのレベルが、Ｔ４単独で処理した細胞と比較して、それぞれ、２９％、８０％および８８％減少した。

ＣＶ−１細胞に、αＶ、β３、またはαＶとβ３の両方に対するｓｉＲＮＡを一過的にトランスフェクトし、１６時間、回復させた後、無血清培地に入れた。３０分間のＴ４での処理後、細胞を回収し、核タンパク質またはＲＮＡのいずれかを抽出した。図２８Ａは、ターゲットインテグリンサブユニットに対するそれぞれのｓｉＲＮＡの特異性を明示している。αＶ ｓｉＲＮＡまたはαＶとβ３両方のｓｉＲＮＡのいずれかでトランスフェクトされたＣＶ−１は、減少したαＶサブユニットＲＴ−ＰＣＲ産物を示したが、細胞をβ３に特異的なｓｉＲＮＡでトランスフェクトしたとき、または外因性ｓｉＲＮＡが不在の状態でトランスフェクション試薬に曝露したとき、αＶ ｍＲＮＡ発現に差はなかった。同様に、β３ ｓｉＲＮＡでトランスフェクトした細胞は、減少したレベルのβ３ ｍＲＮＡを有したが、比較的不変のレベルのαＶ ｓｉＲＮＡを有した。３０分間のＴ４の添加は、ｓｉＲＮＡを細胞にトランスフェクトさせたにもかかわらず、αＶおよびβ３のいずれについてもｍＲＮＡレベルを改変しなかった。

活性化ＭＡＰＫレベルを、個々にまたは組み合わせでαＶおよびβ３に対するｓｉＲＮＡをトランスフェクトしたＣＶ−１細胞において、ウエスタンブロットにより測定した（図２８Ｂ）。スクランブル陰性対照ｓｉＲＮＡで処理したＣＶ−Ｉ細胞は、平行細胞系統と比較して、有意に上昇したレベルのＴ４誘導活性化ＭＡＰＫを有した。単独のトランスフェクション試薬に曝露した細胞は、トランスフェクトされていないＣＶ−１細胞と同様のＭＡＰＫリン酸化レベルおよびパターンを提示する。単独または組み合わせでのαＶ ｓｉＲＮＡまたはβ３ ｓｉＲＮＡをＣＶ−１細胞にトランスフェクトしたとき、ビヒクル処理培養物におけるリン酸化ＭＡＰＫレベルは上昇したが、活性化ＭＡＰＫレベルのさらなる上昇を誘導するＴ４の能力は阻害された。

（実施例１９）
ホルモン誘導血管新生は、αＶβ３に対する抗体によって遮断される
血管新生は、ＣＡＭアッセイにおいて、生理濃度のＴ４の適用により刺激される（図２９Ａ、および図２９Ｂに概要）。ＣＡＭフィルターディスク上に置いた１０^−７ＭのＴ４は、ＰＢＳで処理した膜と比較して、血管枝の形成を２．３倍誘導した（Ｐ＜０．００１）。Ｔ３へのＴ４の転化を防止するプロピルチオウラシルは、Ｔ４によって生じる血管新生に対して効果を有さない。αＶβ３に対するモノクローナル抗体、ＬＭ６０９（１０μｇ／フィルターディスク）の添加は、Ｔ４への血管新生促進応答を阻害した。

（実施例２０）
ＴＥＴＲＡＣナノ粒子製剤の作製および使用−ＰＬＧＡ
ＴＥＴＲＡＣが封入されているポリ（乳酸−ｃｏ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）ナノ粒子を、シングルエマルジョン法によって作製した。１ｍＬのアセトン中で３０ｍｇのＰＬＧＡと１．６ｍｇのＴＥＴＲＡＣを混合することにより、ＰＬＧＡとＴＥＴＲＡＣの均質溶液を得た。ＰＬＧＡナノ粒子は、安定剤の存在を用いて（ポリビニルアルコールを安定剤として使用した）または用いずに作製した。ＰＬＧＡとＴＥＴＲＡＣの両方を含有するこの溶液の１００ｕＬを１０ｍＬの脱イオン水に添加し、２時間それを攪拌した。安定剤を用いるナノ粒子の合成については、１００ｕＬの上述の溶液を、１％ＰＶＡ溶液に、攪拌しながら１滴ずつ添加した。それらのナノ粒子を、透析によって、すなわち約１２時間、適切な透析膜を使用することによって精製した。安定剤の添加は、水溶液中のナノ粒子に単分散性および安定性をもたらす。

ｂ−ＦＧＦ誘導血管新生のＣＡＭモデルにおける研究は、下に示すように、遊離ＴＥＴＲＡＣおよびＴＥＴＲＡＣ−ＰＬＧＡナノ粒子についての強力な抗血管新生効果を明示した。

ＣＡＭモデルにおけるＴＥＴＲＡＣおよびＴＥＴＲＡＣ−ＰＬＧＡナノ粒子の抗血管新生

（実施例２１）
ＴＥＴＲＡＣとテモゾロミドが共封入されているＰＬＧＡナノ粒子の作製
もう１つの適するナノ粒子としては、ＴＥＴＲＡＣとテモゾロミドが共封入されているＰＬＧＡナノ粒子が挙げられる。これらのナノ粒子の主な利点の１つは、多数の封入材料をすべて一緒にその中に共封入する能力である。

ＴＥＴＲＡＣとテモゾロミドが共封入されているＰＬＧＡナノ粒子の作製についてのスキーム

（実施例２２）
リン酸カルシウムを含有するＴ４コラーゲンコンジュゲート化ナノ粒子
コラーゲン−ヒドロキシアパタイトナノ粒子は、油中水型エマルジョン法を用いることによって作製することができる。その後、カルボジイミドの化学作用を用いることにより、それらのナノ粒子をチロキシン（Ｔ４）にコンジュゲートさせることができる。

コラーゲンナノ粒子内からの放出動態は、最初の２時間の間の４０％の放出と２０時間にわたる持続的徐放を明示した。Ｔ４は、下に示すように９９％を超える安定性でそのナノ粒子の外側に固定化された。創傷治癒用の製剤は、局所製剤の場合、コラーゲンナノ粒子上に、およびコラーゲンナノ粒子の内側のまたは外側に配置することもできるリン酸カルシウムナノ粒子上に固定化されたＴ４を含有する。

Ｃ１８カラムで溶離したＴ４−コラーゲンナノ粒子サンプルのクロマトグラムおよびスペクトル、ＤＷＬ：２２５ｎｍ。
Ａ：水で５０μＭに希釈したＴ４標準物質；Ｂ：水で希釈し、その後、３００ＫＤ膜によって濾過した、Ｔ４−コラーゲンナノ粒子。

Ｃ１８カラムで溶離したＴ４−コラーゲンナノ粒子サンプルのクロマトグラムおよびスペクトル、ＤＷＬ：２２５ｎｍ。
Ａ：０．５ＭのＮａＯＨで５０μＭに希釈したＴ４標準物質；Ｂ：０．５ＭのＮａＯＨとともに２時間インキュベートし、その後、３００ＫＤ膜によって濾過した、Ｔ４−コラーゲンナノ粒子。

（実施例２３）
ＧＣ−１封入ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子の作製
ＧＣ−１が封入されているＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子をシングルエマルジョン法によって作製する。ＤＭＳＯ中のＰＥＧ−ＰＬＧＡの溶液を調製する（例えば、８０ｍｇ／ｍＬ）。もう１つのＧＣ−１の溶液を、別途、ＤＭＳＯ中で調製する（例えば、１５ｇ／ｍＬ）。さて、等量の両溶液を混合する（ＰＥＧ−ＰＬＧＡおよびＧＣ−１）。さて、この溶液の１００ｕＬを、１％ＰＶＡ（ポリビニルアルコール）溶液に、定常的に攪拌しながら添加する。４時間後、ＧＣ−１が封入されているナノ粒子を含有する全溶液を透析に付して、不純物を除去する。

ＧＣ−１封入ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子の作製についての概略図

（実施例２４）
ＧＣ−１またはＴ３封入ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子の作製
ＧＣ−１またはＴ３が封入されているＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子は、シングルエマルジョン法によって作製する。ＤＭＳＯ中のＰＥＧ−ＰＬＧＡの溶液を調製する（例えば、８０ｍｇ／ｍＬ）。もう１つのＧＣ−１またはＴ３の溶液を、別途、ＤＭＳＯ中で調製する（例えば、１５ｇ／ｍＬ）。その後、等量の両溶液を混合する（ＰＥＧ−ＰＬＧＡおよびＧＣ−１またはＴ３）。この溶液の１００ｕＬを、１％ＰＶＡ（ポリビニルアルコール）溶液に、定常的に攪拌しながら添加する。４時間後、ＧＣ−１またはＴ３が封入されているナノ粒子を含有する全溶液を透析に付して、不純物を除去する。

Ｔ３封入ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子の作製についての概略図

細胞へのＴＥＴＲＡＣの進入を防ぎ、その活動を原形質膜インテグリン受容体に制限する。

捕捉のために使用する疎水性薬物は、溶液形態であるか、粉末形態であり、その薬物を溶解するために使用する溶媒は、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、ジクロロメタン、酢酸エチル、エタノールから選択する。

ブロックコポリマーミセルは、粘膜接着性および感熱性ポリマー成分で構成され、点滴されると、ムチン膜に浸透し、その膜の孔に接着し、体温で、より疎水性になって、より早く薬物を放出する。

本発明のミセルのランダムブロックコポリマーは、Ｎ，Ｎ’−メチレンビスアクリルアミド（ＭＢＡ）の存在下でビニルピロリドン（ＶＰ）、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡＡＭ）およびアクリル酸（ＡＡ）などのモノマーを混合し、過硫酸アンモニウムを触媒として使用するラジカル重合によりその混合物を重合することによって、調製することができる。そのポリマー鎖の疎水性部分は、ミセル内に埋まったままであり（これは、薬物の溶解に役立つ）、カルボン酸などの親水性部分は、ミセル表面の外側に伸びている。水溶液にミセルを分散させた透明な溶液は、はるかに有効に患者の目に滴下することができ、ミセル内に封入された薬物の持続放出が、その薬物の治療効果を向上させる。

上述の１つ以上の薬物をブロックコポリマーミセルに組み込むために、下で説明する様々な方法を単独で用いてもよいし、または併用してもよい。

（ｉ）攪拌：ブロックコポリマーの水溶液に薬物を添加し、２から２４時間攪拌して、薬物を含有するミセルを得る。

（ｉｉ）加熱：薬物とブロックコポリマーの水溶液とを混合し、３０℃から８０℃で５分間から２、３時間攪拌し、その後、攪拌しながら室温に冷却して、薬物を含有するミセルを得る。

（ｉｉｉ）超音波処理：薬物とブロックコポリマーの水溶液との混合物を１０分から３０分間、超音波処理に付し、その後、室温で攪拌して、薬物を含有するミセルを得る。

（ｉｖ）溶媒蒸発：薬物をクロロホルムなどの有機溶媒に溶解し、ミセルの水溶液に添加する。その後、ゆっくりと攪拌しながら溶媒を蒸発させ、その後、濾過して遊離薬物を除去する。

（ｖ）透析：ポリマーミセル溶液を薬物の有機溶液に添加し、その混合物を緩衝溶液、そしてその後、水に対して透析する。

ブロックコポリマーのミセル溶液は、水性媒質に両親媒性モノマーを溶解してミセルを得、架橋剤、活性化剤および開始剤の水溶液を前記ミセルに添加し、不活性ガスの存在下、３０℃〜４０℃で、ミセルの重合が完了するまで前記混合物を重合することによって調製する。

精製段階は、透析によって行う。透析を２〜１２時間行って、水性相中の未反応モノマーおよび遊離疎水性化合物（単数または複数）を、もしあれば、除去する。疎水性薬物は、重合時に本発明のポリマーミセルに組み込むことができ、この場合、薬物を水溶液中のモノマーのミセルに溶解し、その薬物の存在下で重合を行う。ミセルの疎水性コアに保持される薬物は、制御された様式で、長期間にわたって角膜表面に放出されるので、本発明のこの組成物は、従来の製剤技術ではできない、または非粘膜接着性ミセルを使用してではできない薬物の製剤に適する。

（実施例２５）
眼用のナノ粒子製剤の設計
最初の実験では、異なるポリマーに基づく３つの異なる種類のナノ粒子製剤を作製する。表面電荷、サイズおよび粘膜接着性などの異なる変量を有するこれらのナノ粒子の効力を調査する。ＴＥＴＲＡＣは、これらのナノ粒子製剤のすべてに封入する。概して、異なる比率のＮ−イソプロピルアクリルアミド、塩酸Ｎ−３−アミノプロピルメタクリルアミド、およびアクリル酸を伴う、ＰＬＧＡ、キトサンおよび特注コポリマーのナノ粒子を合成する。目標は、ＴＥＴＲＡＣにより眼球動態を向上させるための種々のナノ製剤の設計である。本発明者らは、２つの異なる選択肢を規定する（ナノ粒子が角膜上に留まり、ＴＥＴＲＡＣを送達する選択肢と、もう１つの選択肢は、角膜を越えてのナノ取り込みを増加させることである）。ナノ材料のサイズおよび表面電荷ならびに性質を調整して、ＴＥＴＲＡＣの最適な点眼剤製剤を獲得する。

異なる種類のＴＥＴＲＡＣ封入ナノ粒子の合成およびそれらの表面修飾を示す概略図

ＮＩＰＡＡＭ：Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（感熱性ポリマー）
ＡＰＭＡＨ：塩酸Ｎ−３−アミノプロピルメタクリルアミド（表面電荷の操作）
ＡＡ：アクリル酸（粘膜接着特性を誘導するため）。

ナノ粒子の分析：
ＰＲＩによって開発された原法に基づき、ＴＥＴＲＡＣナノ粒子に特異的な改良ＨＰＬＣ分析法を開発する。ナノ粒子の内部のＴＥＴＲＡＣの間接的定量のための分析法の開発も計画に載せる。１つのセットから、ナノ粒子の全量の半分を５０％アセトン中で崩壊させ、ＨＰＬＣにより遊離ＴＥＴＲＡＣと封入ＴＥＴＲＡＣの総量について直接分析する。一方、前記ナノ粒子の残りの半分を１００ＫＤ遠心フィルター膜装置によって濾過し、濾液をＨＰＬＣにより遊離ＴＥＴＲＡＣの総量について分析する。従って、２つの分析におけるＴＥＴＲＡＣの量の差が、ナノ粒子の内部のＴＥＴＲＡＣの量を表す。

サンプル作製プロトコルをナノ粒子のそれぞれの種類について検定し、それに応じて調整しなければならない。

インビトロ放出動態：
放出動態を研究するために、既知量のＴＥＴＲＡＣ封入ナノ粒子製剤を所望の媒質に懸濁させ、そこでの放出動態を研究する。その溶液をマイクロ遠心チューブに５００ｕＬアリコートとして分配する。所定の時間間隔で、上で示したようにその溶液を遠心フィルター膜装置（カットオフ１００ＫＤ）によって濾過して、遊離ＴＥＴＲＡＣと負荷ナノ粒子とを分離する。遊離ＴＥＴＲＡＣの濃度をＨＰＬＣによって判定する。

式中、［ＴＥＴＲＡＣ］_ｆ，ｔは、時間ｔでの濾液中のＴＥＴＲＡＣの濃度であり、および［ＴＥＴＲＡＣ］_０は、封入されているＴＥＴＲＡＣの総量である。

インビボ実験
ナノ粒子を伴わない薬物の対照と比較してニュージーランド白ウサギの目におけるナノ粒子製剤の効力を試験するために、予備的インビボ実験を行う。適用の手順、眼房水の回収法などは、動物プロトコルにおいて詳細に説明する。それぞれの目の残りの部分は、取っておき、可能性のある将来の分析のために−８０℃で冷凍保存する。

２匹のウサギからの４つの目をそれぞれの製剤のために、それぞれの試験時点（ｎ＝４）で使用する。眼房水サンプルは、薬物の局所投与後３０および９０分の時点で回収し、この場合、２匹の動物は、それぞれの時点で屠殺する。これには、この試験コースの間に少なくとも４０匹のウサギを屠殺する必要がある。

回収した眼房水からのサンプルを、必要な場合には、分析のときまで−８０℃で冷凍しておく。

すべてのサンプルをＨＰＬＣによって分析する。ナノ粒子中のＴＥＴＲＡＣについての新規特異的分析方法を、遊離ＴＥＴＲＡＣと封入ＴＥＴＲＡＣの両方の分析に用いる。それら２つの形態のＴＥＴＲＡＣを研究するために、前に説明したような１００ＫＤフィルターによる眼房水の濾過を用いる。

インビボ放出動態からの結果に依存して、３つの製剤をＩＩ相のために選択する。それぞれの製剤について１つのパイロットバッチを作製する。これらの選択された製剤の特性および安定性をさらに研究する。

（実施例２６）
ＴＥＴＲＡＣおよび類似体を含有するナノ粒子の作製：
ＰＫおよび毒性研究のための懸濁製剤を以下の手順で製造する：
１．５０ｍｇのＴＥＴＲＡＣを量り取り、１０ｍＬの０．５％ＣＭＣ（カルボキシメチルセルロース）に添加する。

２．ＴＥＴＲＡＣが懸濁するまで十分に混合する。

３．使用前に混合する。

静脈内投与のために製造し、使用したもう１つの製剤は、下で略述する手順を用いて製造した：
１．２００ｍｇのＴＥＴＲＡＣを１．０ｍＬのＤＭＳＯに溶解する。

２．１．０ｍＬのＴｗｅｅｎ ８０を添加し、５分間攪拌する。すべてのＴｗｅｅｎ ８０が溶解したことを確認する。

３．１０ｍＬのＰＢＳを（攪拌しながら）１滴ずつ添加する。

４．１．０Ｍの二塩基性リン酸ナトリウムを使用して（攪拌しながらゆっくりと添加する）、そのｐＨを７．４に調整する。

５．２０ｍＬまでの十分な量、ＰＢＳを用いる
６．ＰＢＳ中で５ｍｇ／ｍＬに希釈する（１：１希釈）。

（実施例２７）
動的光散乱実験による粒径の測定：
透析により、すなわち約１２時間、適切な透析膜を使用することにより、ナノ粒子を精製した。安定剤の添加により、水溶液中のナノ粒子に単分散性および安定性をもたらす。ゼータサイズ分析装置を使用して、サイズ分布およびゼータ電位を判定した。

１．ＴＥＴＲＡＣにコンジュゲートしているＰＬＧＡナノ粒子の大きなバッチを合成し、それをＲｏｓｗｅｌｌ ｐａｒｋに送る。ナノ粒子のＺ平均は、約２０９ｎｍである。

（実施例２８）
テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）による血管新生の阻害：
脱アミノ化甲状腺ホルモン類似体、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）は、新規、低価格抗血管新生性薬剤であり、その活性は、甲状腺ホルモン受容体とインテグリンαＶβ３上のＲＧＤ認識部位との相互作用を意味することを提案する。

この研究は、ＶＥＧＦおよびＦＧＦ２によって誘導される血管新生に対するＴＥＴＲＡＣの効果を調査するために計画した。ＶＥＧＦおよびＦＧＦ２による血管新生の誘導は、内皮細胞上のインテグリンαＶβ３へのこれらの増殖因子の結合を必要とする。そうした結合は、インテグリン上のリガンドタンパク質特異的ドメインと、αＶβ３および幾つかの他のインテグリンのタンパク質リガンドを遺伝子的に識別するＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）認識部位とを必要とする。ＲＧＤペプチドは、Ｔ_４およびＴ_３の血管新生促進作用を遮断もし、これは、ＲＧＤ認識部位とインテグリンαＶβ３上の甲状腺ホルモン−ＴＥＴＲＡＣ受容体部位とが互いに近くにあることを示唆している。理論による拘束を受けないが、ＲＧＤ認識部位とαＶβ３上のホルモン−ＴＥＴＲＡＣ結合部位とが近接しているため、ＴＥＴＲＡＣは、甲状腺ホルモンが不在の状態で抗血管新生性である。すなわち、甲状腺ホルモン受容体部位の閉塞は、ＲＧＤ部位でインテグリンと相互作用するＶＥＧＦおよびＦＧＦ２の能力を改変し得る。

材料および方法
試薬
Ｔ_４（ＨＰＬＣにより純度≧９８％）、Ｔ_３、ＴＥＴＲＡＣ、酢酸コルチゾン、およびプロピルチオウラシル（ＰＴＵ）は、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｃｏｒｐ．（ミズーリ州、セントルイス）から購入した。ＦＧＦ２およびＶＥＧＦは、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．（カルフォルニア州、カールズバッド）から購入した。マトリゲルは、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ（カリフォルニア州、サンホゼ）から購入した。

細胞培養
ヒト皮膚微小血管内皮細胞（ＨＭＶＥＣ−ｄ；カリフォルニア州、サンディエゴのＣｌｏｎｅｔｉｃｓ）を、タイプＩコラーゲン（１ｍｇ／ｍＬ）でコーティングした培養フラスコで増殖させ、ウシ脳抽出物（１２μｇ／ｍＬ）、組換ヒト上皮増殖因子（１０ｎｇ／ｍＬ）、１０％（容量／容量）熱不活化ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）、ヒドロコルチゾン（１μｇ／ｍＬ）、１００Ｕ／ｍＬ ペニシリン、１００μｇ／ｍＬ ストレプトマイシンおよび２ｍＭ Ｌ−グルタミンを補足した内皮増殖培地−２（ＥＧＭ−２ＭＶ；Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）中で維持した。すべての培養添加剤は、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎから購入した。培養物は、５％ＣＯ_２を有する３７℃加湿チャンバ内で維持した。培地は３日ごとに交換し、細胞系統は、集密度８０％で継代させた。

ニワトリ漿尿膜アッセイ（ニワトリＣＡＭアッセイ）
日齢１０日のニワトリの胚をＳＰＡＦＡＳ（コネチカット州、プレストン）から購入し、３７℃、５５％相対湿度でインキュベートした。ニワトリＣＡＭアッセイは、前に記載したとおりに行った。簡単に言うと、皮下注射針を使用して、卵の尖っていないほうの端に小さな穴をあけ、その卵の広い側面の胚子被膜の無血管部分の直ぐ上に第二の穴をあけた。第一の穴に軽度の切開を施して気嚢をはずし、ＣＡＭを殻から落下させた。Ｄｒｅｍｅｌモデル・クラフトドリル（ウィスコンシン州、ラシーンのＤｒｅｍｅｌ）を使用して、その仮の気嚢の上の殻から約１．０ｃｍ^２の窓を切り取って、ＣＡＭに接触できるようにした。無菌条件下で、Ｎｏ．１濾紙の滅菌ディスク（ニュージャージー州、クリフトンのＷｈａｔｍａｎ）を３ｍｇ／ｍＬの酢酸コルチゾンおよび１ｍＭのプロピルチオウラシルで前処理し、空気乾燥させた。甲状腺ホルモン、対照溶媒、および実験治療薬をそれらのディスクに塗布し、その後、乾燥させた。その後、それらのディスクをＰＢＳに懸濁させ、成長中のＣＡＭの上に配置した。３日のインキュベーションの後、フィルターディスクの真下のＣＡＭを切除し、ＰＢＳですすいだ。それぞれの膜を３５ｍｍペトリ皿に入れ、ＳＶ６立体顕微鏡のもとで５０倍で検査した。デジタル画像を取り込み、Ｉｍａｇｅ−Ｐｒｏソフトウェア（メリーランド州、シルバースプリングのＭｅｄｉａ Ｃｙｂｅｒｎｅｔｉｃｓ）で解析した。そのフィルターディスクに相当する円形領域内に入っている血管分枝点の数を数えた。

インビトロ出芽アッセイ
集密ＨＭＶＥＣ−ｄ細胞（５〜１０継代）を、ゼラチンコートＣｔｏｄｅｘ−３ビーズ（Ｓｉｇｍａ）と、ビーズ１個につき４０個の細胞の比率で混合した。細胞およびビーズ（２４ウエルプレートの１ウエルにつき１５０〜２００個のビーズ）を５ｍＬの基本培地（ＥＢＭ）＋１５％（容量／容量）正常ヒト血清（ＨＳ）に懸濁させ、４時間、室温で穏やかに混合し、その後、一晩、３７℃のＣＯ_２インキュベーターでインキュベートした。培養物を１０ｍＬの新たなＥＢＭ＋１５％ＨＳで３時間処理した。１００μＬのＨＭＶＥＣ／ビーズの培養物を５００μＬのリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）と混合し、２４ウエルプレートの１つのウエルに入れた。ビーズ数／ウエルを数え、ビーズ濃度／ＥＣを計算した。

前に説明したとおり単離したヒトフィブリノゲンをＥＢＭに１ｍｇ／ｍＬの濃度（ｐＨ７．４）で溶解し、滅菌濾過し、試験すべき血管新生因子を補足した。ＶＥＧＦ（３０ｎｇ／ｍＬ）＋ＦＧＦ２（２５ｎｇ／ｍＬ）を陽性対照として使用した。そのＨＭＶＥＣ／ビーズの培養物をＥＢＭ培地で２回洗浄し、フィブリノゲン溶液に添加した。それらの培養物を穏やかに混合し、２．５μＬのヒトトロンビン（０．０５Ｕ／μＬ）を添加し、３００μＬの培地を２４ウエルのそれぞれのウエルに移し、２０分間、インキュベートさせた。ＥＢＭ＋２０％正常ＨＳおよび１０μｇ／ｍＬ アプロチニンを添加し、そのプレートをＣＯ_２インキュベーターで４８時間インキュベートした。それぞれの条件について三重反復で実験を行った。

毛細血管出芽形成を観察し、Ｎｉｋｏｎ ＮＰ−２サーモスタットおよびＳｈｅｌｄｏｎ ＃２００４ 二酸化炭素フローミキサーを有するインキュベーターハウジングを装備したＮｉｋｏｎ Ｄｉａｐｈｏｔ−ＴＭＤ倒立顕微鏡（株式会社ニコン；米国、ニューヨーク州、メルヴィル）で記録した。Ｍａｃｉｎｔｏｓｈ Ｇ３コンピュータに連結されたＤａｇｅ−ＭＴＩ ＣＣＤ−７２５ＳビデオカメラおよびＳｏｎｓ １２”ＰＶＭ−１２Ｚビデオモニターから成るビデオシステムに前記顕微鏡をインターフェースで直接接続した。Ａｄｏｂｅ Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐを用いて様々な倍率で画像を取り込んだ。毛細血管出芽を有するＢＣ−ビーズの数およびパーセントを決定することにより、出芽血管新生に対する血管新生促進因子の効果を視覚的に定量した。三重反復ウエルのそれぞれに関して１００個のビーズ（５から６のランダムな弱拡大視野）を、それぞれの実験条件について計数した。すべての実験は、少なくとも３回反復した。

実時間逆転写−ポリメラーゼ連鎖反応
Ａｍｂｉｏｎ Ａｑｕｅｏｕｓ ｋｉｔ（テキサス州、オースチン）を使用して全ＲＮＡを単離した。単離したＲＮＡの質および量をＢｉｏ−Ｒａｄ Ｅｘｐｅｒｉｏｎ自動電気泳動システム（カリフォルニア州、ハーキュリーズ）によって判定した。Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＲＴ−ｆｏｒ−ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ；カリフォルニア州、マウンテンビュー）を使用して、１μｇの全ＲＮＡを逆転写した。２μＬ ｃＤＮＡ、１０μＬ Ｓｙｂｅｒｇｒｅｅｎ ｍａｓｔｅｒ ｍｉｘ（Ｑｉａｇｅｎ；カリフォルニア州、バレンシア）および０．５μＬの２０μＭ 遺伝子特異的プライマーを混合することにより、Ｃｅｐｈｅｉｄ Ｓｍａｒｔ Ｃｙｃｌｅｒ（カリフォルニア州、サニーヴェール）を使用してＰＣＲを行った。サンプルを２０分間、２５℃でインキュベートし、９５℃で３０秒および６０℃で９０秒の３５のＰＣＲサイクル（二段階ＰＣＲ）で増幅した。半対数増幅プロット（サイクル数に対する蛍光の対数増加）から閾値サイクル値（Ｃ_ｔ）を決定した。増幅の最後に溶融曲線を加えることにより、および２％アガロースゲルでＰＣＲ産物を泳動し、ビーズを配列決定することにより、それらのＰＣＲ産物の特異性およびサイズを検査した。すべての値をシクロフィリンＡに正規化した。ＰＣＲプライマーは、次のとおりであった：Ａｎｇｉｏ−１，５’−ＧＣＡＡＣＴＧＧＡＧＣＴＧＡＴＧＧＡＣＡＣＡ−３’（センス）および５’−ＣＡＴＣＴＧＣＡＣＡＧＴＣＴＣＴＡＡＡＴＧＧＴ−３’（アンチセンス）、アンプリコン１１６ｂｐ；Ａｎｇｉｏ−２、５’−ＴＧＧＧＡＴＴＴＧＧＴＡＡＣＣＣＴＴＣＡ−３’（センス）および５’−ＧＴＡＡＧＣＣＴＣＡＴＴＣＣＣＴＴＣＣＣ−３’（アンチセンス）、アンプリコン１２２ｂｐ；インテグリンα_ｖ、５’−ＴＴＧＴＴＧＣＴＡＣＴＧＧＣＴＧＴＴＴＴＧ−３’（センス）および５’−ＴＣＣＣＴＴＴＣＴＴＧＴＴＣＴＴＣＴＴＧＡＧ−３’（アンチセンス）、アンプリコン８９ｂｐ；インテグリンβ_３、５’−ＧＴＧＡＣＣＴＧＡＡＧＧＡＧＡＡＴＣＴＧＣ−３’（センス）および５’−ＴＴＣＴＴＣＧＡＡＴＣＡＴＣＴＧＧＣＣ−３’（アンチセンス）、アンプリコン１８４ｂｐ；ならびにシクロフィリンＡ、５’−ＣＣＣＡＣＣＧＴＧＴＴＣＴＴＣＧＡＣＡＴ−３’（センス）および５’−ＣＣＡＧＴＧＣＴＣＡＧＡＧＣＡＣＧＡＡＡ−３’（アンチセンス）、アンプリコン１１６ｂｐ。

マイクロアレイ分析：
ＧｅｎｅＣｈｉｐ Ｅｘｐｒｅｓｓｏｎ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ Ｍａｎｕａｌ（カリフォルニア州、サンタクララのＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘ）に従って、ＨＭＶＥＣ−ｄ細胞からの１０マイクログラムの全ＲＮＡを増幅し、ビオチン標識した。フラグメント化ｃＲＮＡに、ヒト遺伝子チップＵ１３３ ＰＬＵＳ ２（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ）をハイブリダイズし、チップを洗浄し、ストレプタビジンＲ−フィコエリトリン（オレゴン州、ユージーンのＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）で染色した。そのチップをスキャンし、データをＭｉｃｒｏａｒｒａｙ Ｓｕｉｔｅ ａｎｄ Ｄａｔａ Ｍｉｎｉｎｇ Ｔｏｏｌ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ）で解析した。

ホルモン刺激血管新生のＴＥＴＲＡＣ阻害：
ＣＡＭアッセイにおいて生理濃度のＦＧＦ２、ＶＥＧＦおよびＴ３の適用により血管新生を刺激する。下に示すように、ＣＡＭフィルターディスク上に配置したＦＧＦ２（１μｇ／ｍＬ）は、ＰＢＳ処理膜と比較して、血管枝形成を２．４倍（Ｐ＜０．００１）誘導した。ＴＥＴＲＡＣ（７５ｎｇ／フィルターディスク）の添加は、ＦＧＦ２への血管新生促進応答を阻害したが、単独でのＴＥＴＲＡＣは、血管新生に対して効果を有さなかった。

ＦＧＦ２刺激血管新生の最大阻害を見つけるために、ＴＥＴＲＡＣ用量応答曲線を実行した。下に示すように、７５ｎｇ／フィルターディスクおよび１００ｎｇ／フィルターディスクは、血管新生をそれぞれ５７％および５９％阻害した。ＴＥＴＲＡＣ濃度を１μｇ／フィルターディスクに上昇させると、ＦＧＦ２刺激血管新生は７４％阻害された。最大阻害は、ＴＥＴＲＡＣ濃度をさらに３μｇ／フィルターディスクに上昇させたときに観察され、これは５μｇ／フィルターディクスで維持された。

下に示すように、ＴＥＴＲＡＣは、ＶＥＧＦおよびＴ３の血管新生促進効果をそれぞれ５２％および６６％阻害する。

管形成のＴＥＴＲＡＣ阻害：
ＨＭＶＥＣ−ｄ細胞をマトリゲル上で２４時間培養し、漸増量のＴＥＴＲＡＣの存在下または不在下、ＶＥＧＦ（５０ｎｇ／ｍＬ）で刺激した。ＴＥＴＲＡＣは、下に示すとおり、接合部の数の減少および管の数の減少ならびに総細管長の減少によって明示されるように、ＶＥＧＦによって誘導される管形成を阻害した。

この効果は、以下の写真に描写されている：

管接合部の数は、３２．０±９．６（０μＭのＴＥＴＲＡＣ）から、１μＭ、２．５μＭおよび１０μＭのＴＥＴＲＡＣで、それぞれ、１８．０±１．５、４．７±１．８および３．０±２．５に減少した。同様に、管の数は、２１２．３±２１．３（０μＭのＴＥＴＲＡＣ）から１８０．０±４．０（１μＭのＴＥＴＲＡＣ）、１５０．０±８．１（２．５μＭのＴＥＴＲＡＣ）および８１．３±２４．８（１０μＭのＴＥＴＲＡＣ）に減少した。総管長も用量依存的に減少し、７０％という管長最大減少が１０μＭで観察され、２５μＭおよび５０μＭのＴＥＴＲＡＣで維持された（データは示さない）。

インテグリンαＶおよびβ３ならびにアンジオポエチン−２のｍＲＮＡ発現は、ＴＥＴＲＡＣによって減少される：
ＨＭＶＥＣ−ｄ細胞をマトリゲル上で増殖させ、ＴＥＴＲＡＣを伴うまたは伴わないＶＥＧＦ（５０ｎｇ／ｍＬ）で、２時間、刺激した。メッセンジャーＲＮＡを単離し、下に示すように、実時間ＲＴ−ＰＣＲをインテグリンαＶおよびβ３について行った。

ＴＥＴＲＡＣは、インテグリンαＶとインテグリンβ３両方のｍＲＮＡ発現を用量依存式で阻害した。αＶ ｍＲＮＡレベルは、ＶＥＧＦ処理細胞において０．１１４９±０．０１２４の相対蛍光単位（ＲＦＵ）から、１μＭのＴＥＴＲＡＣでの処理後、０．０６１８±０．００９２７ ＲＦＵに減少し、３μＭのＴＥＴＲＡＣでの処理後、さらに減少した。その発現が、インテグリンαＶよりはるかに低いインテグリンβ３の発現は、インテグリンαＶと同様にＴＥＴＲＡＣで処理した後、減少した。ＶＥＧＦ処理細胞は、０．０２２９±０．００２６ ＲＦＵのβ３を発現した。発現は、１μＭおよび３μＭのＴＥＴＲＡＣで、それぞれ、０．０１６０±０．００１３および０．０１５９±０．００１６ ＲＦＵに減少した。アンジオポエチン−１およびアンジオポエチン−２の実時間ＲＴ−ＰＣＲを行い、下に示すように、ＴＥＴＲＡＣは用量依存的にアンジオポエチン−２のｍＲＮＡ発現を阻害し、アンジオポエチン−１のｍＲＮＡレベルに影響を及ぼさないことが判明した。

加えて、ＴＥＴＲＡＣおよびＶＥＧＦとの一晩のＨＭＶＥＣ−ｄ細胞のインキュベーションは、アンジオポエチン−１およびアンジオポエチン−２の発現をさらに改変しなかった（データは示さない）。

マイクロアレイ分析
ＶＥＧＦ刺激血管新生のＴＥＴＲＡＣ阻害の可能性のあるメカニズムをさらに特定するために、ＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘからのＨｕｍａｎ Ｕ１３３ Ｐｌｕｓ ２．０アレイを使用してマイクロアレイ分析を行った。ＨＤＭＥＣ細胞を５０ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦとともに２４時間、ＴＥＴＲＡＣ（３ｕＭ）を伴いまたは伴わずにインキュベートした。Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ ＧｅｎｅＣｈｉｐ分析の結果は、３つの異なるアンジオポエチン様転写産物がＨＭＶＥＣ−ｄ細胞において差別的に発現されることを示した。下に示すように、アンジオポエチン様１（ＡＮＧＰＴＬ−１、プローブセットＩＤ＃２３１７７３）発現は、ＶＥＧＦ処理後に５．９倍増加された。この刺激による発現増加は、細胞をＴＥＴＲＡＣおよびＶＥＧＦで共処理した場合、ベースラインレベルより下に減少された。アンジオポエチン様２（ＡＮＧＰＴＬ−２、プローブセットＩＤ＃２３９０３９）発現は、ＶＥＧＦ処理後、未処理対照と比較して１．６倍増加された。ＴＥＴＲＡＣの添加は、このＡＮＧＰＴＬ−２の発現をほぼベースラインレベルに減少させた。興味深いことに、アンジオポエチン様３（ＡＮＧＰＴＬ−３、プローブセットＩＤ＃２３１６８４）発現は、ＶＥＧＦでのＨＭＶＥＣ−ｄ細胞の処理による影響を受けなかった。しかし、ＴＥＴＲＡＣは、ＡＮＧＰＴＬ−３の発現を、未処理対照とＶＥＧＦ処理サンプルの両方と比較して１．９分の１に減少させた。これらのデータは、ＴＥＴＲＡＣが血管新生の刺激に必要なターゲット遺伝子の発現を阻害し得ることを、さらに示唆している。

マトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）は、血管新生に明瞭に関係している。合成ＭＭＰ阻害剤と内因性ＭＭＰ阻害剤の両方が、インビトロモデルおよびインビボモデル両方において血管新生を妨げる。本発明者らは、マイクロアレイを用いて、ＴＥＴＲＡＣを伴うおよび伴わないＶＥＧＦ処理後のＭＭＰ発現の変化を調査した。ＶＥＧＦで処理したＨＭＶＥＣ−ｄ細胞は、ＭＭＰ−１５の発現の５．１倍の増加およびＭＭＰ−１９の発現の２．９倍の増加を有する。下に示すように、細胞をＴＥＴＲＡＣ（３μＭ）とともに共処理すると、ＭＭＰ−１５およびＭＭＰ−１９の発現は、それぞれ、３．２分の１および８．７分の１に減少する。興味深いことに、ＭＭＰ−２４発現は、ＶＥＧＦ処理によってわずかにしか減少しないが、ＴＥＴＲＡＣの追加によってさらに低下される。ＭＭＰファミリーの幾つかのメンバーの強力な阻害剤であるメタロプロテイナーゼ組織阻害剤３（ＴＩＭＰ−３）の発現は、ＶＥＧＦおよびＴＥＴＲＡＣでの処理後、ＶＥＧＦで処理したＨＭＶＥＣ−ｄ細胞と比較して、５．４倍増加された。これは、ＶＥＧＦ刺激血管新生に対するＴＥＴＲＡＣ阻害のメカニズムが、ＴＩＭＰ発現の増加によって調節され、そしてまたそれが、血管新生中に発生する細胞骨格再構成におけるＭＭＰの役割を妨げることを示差している。

最近、主として癌の場での補助的使用のために、抗血管新生性化合物に大きな臨床的関心が寄せられている。上で論証したように、甲状腺ホルモンの原形質膜受容体に向けられた小分子、ＴＥＴＲＡＣ、は、強力な抗血管新生活性を有する。ＴＥＴＲＡＣは、細胞表面で開始される甲状腺ホルモン作用のアンタゴニストであるが、甲状腺ホルモン不在下でのＴＥＴＲＡＣがニワトリおよびヒト内皮細胞アッセイにおいてＶＥＧＦおよびＦＧＦ２の血管新生活性を阻害することが、今般、明らかになった。従って、ＴＥＴＲＡＣは、内皮細胞において血管新生性ＶＥＧＦおよびＦＧＦ２シグナルを伝達するインテグリンをターゲティングする望ましい資質を有するが、一定の腫瘍細胞（ヒトエストロゲン受容体（ＥＲ）陽性乳癌ＭＣＦ−７細胞、および神経膠芽細胞腫のマウス神経膠腫細胞モデルを含む）の増殖に対する生理濃度の甲状腺ホルモンの栄養作用を阻害もする。

いずれの理論による拘束を受けないが、甲状腺ホルモンは細胞または分子レベルで腫瘍に対する幾つかの効果を有すると推測される。これらの効果としては、腫瘍細胞に対する直接的な増殖効果、転移を支持し得る癌細胞の移動に対する直接的な効果、および血管新生促進作用による腫瘍増殖の間接的な支持が挙げられる。癌の場において、抗甲状腺ホルモン薬として作用する、非修飾ＴＥＴＲＡＣおよびＴＲＩＡＣ、またはナノ粒子もしくはポリマーコンジュゲートとして修飾されたものを治療に応用することができる。

マウス神経膠腫細胞の頭蓋内インプラントのマウスモデルへのＴＥＴＲＡＣの投与で、最近、生存に対する有意な恩恵が得られた（Ｒ．Ａ．Ｆｅｎｓｔｅｒｍａｋｅｒ、Ｍ．Ｃｉｅｓｉｅｌｓｋｉ，Ｆ．Ｄａｖｉｓ、およびＰ．Ｊ．Ｄａｖｉｓ、未発表の観察）。加えて、最近の前向き臨床研究は、甲状腺ホルモンが多形性神経膠芽細胞腫（ＧＢＭ）の増殖因子であること、およびＧＢＭ患者の軽度甲状腺機能低下には生存に対する実質的な恩恵があることを示している。Ｍ．Ｄ．Ａｎｄｅｒｓｏｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｃｅｎｔｅｒでの甲状腺機能低下患者における乳癌経験の後向き分析により、甲状腺機能低下が、乳癌の危険を低下させ、これが甲状腺低下症の女性において発生したとき、さほど浸潤性でない病変を随伴することが証明された。いずれの理論による拘束を受けるつもりはないが、腫瘍細胞に対する直接的な増殖効果と血管新生による腫瘍増殖の間接的な支持という甲状腺ホルモンの２つの効果が見られると思われる。これら２つのタイプの癌の場において、ＴＥＴＲＡＣを治療に応用することができる。

（実施例２９）
新規Ｔ_４／ポリマーコンジュゲートおよびＴ_４／ナノ粒子コンジュゲート：
甲状腺は、２つの基本的に異なるタイプのホルモンの源である。ヨードチロニンホルモンとしては、チロキシン（Ｔ_４）および３，５，３’−トリヨードチロニン（Ｔ_３）が挙げられる。これらは、正常な成長および発育に必須であり、エネルギー代謝において重要な役割を果す。これらの甲状腺ホルモンは、チロシンから最終的に得られる芳香族アミノ酸である。これらは、Ｌ−ＤＯＰＡおよび５−ヒドロキシトリプトファン（それぞれ、神経伝達物質ドーパミンおよびセロトニン（５−ヒドロキシトリプタミン）の生合成前駆体）に、化学的におよび生合成的に類似している。Ｔ_４およびＴ_３の化学構造ならびにそれらの生合成類似体を下に示す。

Ｔ_３もしくはＴ_４のいずれかとポリマーのコンジュゲーション、またはナノ粒子でのＴ_３もしくはＴ_４の固定化は、そのコンジュゲートに核膜を横断させない直径を有する粒子を生じさせるであろう。従って、望ましくないゲノム効果を一切伴わずに、Ｔ_３またはＴ_４の細胞表面活性のみを得ることができる。

Ｔ_３とＴ_４の両方が、ポリマーコンジュゲートを形成するように反応することができる、３つの官能基（１つのカルボン酸基、１つのアミン基および１つのヒドロキシル基）を有する。Ｔ_３またはＴ_４／ポリマーコンジュゲートを合成するための反応部位は、以下のいずれであってもよい（説明のためにＴ_４を用いる）：
１）カルボン酸基：この酸基は、エステルまたはアミドを形成するように反応することができる。Ｔ_４におけるアミノ基の高い反応性のため、これは、コンジュゲーション反応前に保護し、その後、脱保護しなければならない。そうしなければ、自己重合によりＴ_４オリゴマーが形成される。候補ポリマーとしては、ＰＶＡ、ＰＥＧ−ＮＨ_２、ポリ（リシン）および関連ポリマーが挙げられる。

２）アミン基：アミン基は、カルボン酸官能基またはハロゲン基を有するポリマーと反応することができる。そのポリマーが、大量の活性酸基を有する場合、反応は直接遂行し得る。ポリ（メチルアクリル酸）およびポリ（アクリル酸）は、このようにして用いることができる。

３）ヒドロキシル基：より高い反応性アミノ基の存在のため、カルボン酸を含有するポリマーとＴ_４の直接反応は難しい。このアミノ基は、反応前に保護し、コンジュゲーション反応後に脱保護しなければならない。一般的な保護基は、無水酢酸（Ａｃ_２Ｏ）、Ｎ−メチル、Ｎ−エチル、Ｎ−トリフェニルまたはジ−ｔ−ブチルジカーボネート（ＢＯＣ_２Ｏ）基であり得る。

以下の実施形態のそれぞれに、Ｔ_４の代わりにＴ_３を用いることができる。

Ｌ−Ｔ_４のアミノ基の保護
Ｌ−Ｔ_４のアミノ基の保護は、無水酢酸（Ａｃ_２Ｏ）、ジ−ｔ−ブチルジカーボネート（ＢＯＣ_２Ｏ）および無水酪酸（Ｂｕ_２Ｏ）を保護因子として使用して、または任意の適する長い脂肪族基を使用して、行うことができる。長い脂肪族基、塩化パルミトイル、を使用する合成スキームの一例を、以下の合成スキームに示す。

ジ−ｔ−ブチルジカーボネート（ＢＯＣ_２Ｏ）および無水酪酸（Ｂｕ_２Ｏ）を使用するＬ−Ｔ_４のアミノ基の保護（Ｔ_４−ＢＯＣ）のスキームを下に示す。

Ｌ−Ｔ_４は、市販のＬ−Ｔ_４のフェノールおよび両性イオン形の反応性と比較されるアミノ基の反応性を考慮して、選択的に保護した。これは、極性溶媒（ＤＭＡまたはＤＭＦ）中、等モル量の製品、無機塩基（Ｎａ_２ＣＯ_３）または有機塩基（ＴＥＡ）を使用して行った。下に示す以下の反応条件下で、化合物ＰＲＩＡＢ１、ＰＲＩＡＢ４およびＰＲＩＡＢ５を合成した。

試験のために分析的に純粋なサンプルを得るための一般手順を下に示す（一例としてＰＲＩＡＢ１を用いる）：
２−［（ｔ−ブトキシカルボニル）アミノ］−３−［４−（４−ヒドロキシ−３，５−ジヨードフェノキシ）−３，５−ジイソフェニル］プロパン酸（ＰＲＩＡＢ１）。

白色固体；収率５０％；再結晶溶媒：ＡｃＯＥｔ；Ｒｆ＝０．７９（ＤＣＭ／ＭｅＯＨ ５／５）；融点＝２１２℃；ＩＲ（ν ｃｍ^−１）：３４０７．４１（ＮＨ）；１７０１．６５（ＣＯ）；１６６０．４９（ＣＯ；

上で説明したのと同様の方法で、ＰＲＩＡＢ２、ＰＲＩＡＢ６およびＰＲＩＡＢ１２（下に示す）も合成し、脱保護し、純度について試験した。

これらの新規Ｎ−置換基（Ｎ−メチル、Ｎ−エチルまたはＮ−トリフェニル）は、ＣＡＭモデルにおいて、下の表に示すように、ｂ−ＦＧＦまたはＬ−Ｔ４のものと同等の血管新生促進効力を示した。

血管新生のＣＡＭモデルにおけるＬ−Ｔ４類似体ＰＲＩＡＢ２、ＰＲＩＡＢ６、ＰＲＩＡＢ１２の効果

Ｔ_４−ＢＯＣの活性化
Ｔ_４−ＢＯＣは、エピクロロヒドリンまたは他の適する活性化剤（例えば、エピブロモヒドリン）を使用して活性化することができる。例えば、活性化Ｔ_４−ＢＯＣ中間体の合成スキームを下に示す。

新規Ｔ_４／ポリマーコンジュゲートの合成：
ＰＶＡ、ＰＥＧ、ポリリシン、ポリアルギニンをはじめとする（しかし、これらに限定されない）種々のポリマーに、活性化Ｔ_４−ＢＯＣをコンジュゲートさせることができる。分解中に肝臓においてＴ_４およびＴ_３がそれぞれグルクロン酸およびスルホン酸とコンジュゲートするので、フェノールのヒドロキシル基によるポリマーへのＴ_４のコンジュゲーションが望ましいであろう。例えば、ポリリシンへの活性化Ｔ_４−ＢＯＣのコンジュゲーションの合成スキームを下に示す。

ポリアルギニンへのＴ４−Ｂｏｃのコンジュゲーションの合成スキームを下に示す。

無水酢酸（Ａｃ_２Ｏ）またはジ−ｔ−ブチルジカーボネート（ＢＯＣ_２Ｏ）を使用するＴ_４の保護、脱保護、およびその後のＰＢＡまたはＰＥＧへのコンジュゲーションを示すスキームを下に示す。

Ｔ_４が封入されたナノ粒子の作製
コンジュゲーション、例えばＰＥＧへのコンジュゲーション、の後、そのＴ_４／ＰＥＧコンジュゲートは、通常の当業者に公知の任意の方法によるナノ粒子での固定化に用いることができる。例えば、限定ではないが、Ｎ−保護Ｔ_４が封入されているＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子は、次の（および下に図示する）ようなシングルエマルジョン法によって作製する。ＰＥＧ−ＰＬＧＡおよびＮ−保護Ｔ_４を別々にＤＭＳＯ中で作製し（例えば、８０ｍｇ／ｍＬのＰＥＧ−ＰＬＧＡおよび１５ｍｇ／ｍＬのＮ−保護Ｔ_４）、その後、等量で混合する。この溶液の１００μＬを、定常的に攪拌しながら、１％ＰＶＡ（ポリビニルアルコール）溶液に添加する。４時間後、Ｔ_４が封入されているナノ粒子を含有する全溶液を透析に付して、不純物を除去する。

Ｔ_４コンジュゲート化ＰＥＧ−ＰＬＧＡナノ粒子の作製
Ｔ_４／ＰＥＧコンジュゲートは、通常の当業者に公知の適するコンジュゲーション法を用いるナノ粒子へのコンジュゲーションによってナノ粒子で固定化するために用いることができる。実例となる例として、下のスキームに示すように、先ず、Ｔ_４中に存在する高反応性アミノ基を、無水酢酸（Ａｃ_２Ｏ）またはジ−ｔ−ブチルジカーボネート（ＢＯＣ_２Ｏ）のいずれかを使用することによりブロックし、その後、エピクロロヒドリンで活性化し、ナノ粒子にコンジュゲートさせる。

薬理試験
上で説明したようなＰＲＩＡＢ１、ＰＲＩＡＢ４およびＰＲＩＡＢ５を、コンジュゲーション前に、ニワトリ漿尿膜（ＣＡＭ）アッセイを用いて試験した。ＰＲＩＡＢ１についての結果をここに提示する。

試験の結果は驚くべきものであった。試験結果は、保護されたＴ_４類似体による明確な血管新生促進作用を示し、最も嵩高い保護基が最もわずかな活性を示した。アミド結合の形成のため、それらの分子の第二級窒素が有する自由な片方の電子が、カルボニル基のほうに移動させられ、これがそのアミンを非求核性にする（カルボニル基によるアミンの不活性化を下に示す）。それにもかかわらず、それは、尚、塩基性である。

アミンを塩基性および求核性にする、（嵩高さが異なる）保護アミノ基を有するように設計した新規類似体を下に示す：

Ｔ_４類似体およびそれらのナノ粒子対応品に対するこのおよび将来の調査の結果は、新規血管形成の刺激に対するＴ_４の非ゲノム性作用の知識を増す上での主要な段階を意味する。肯定的な場合、アルキル化Ｔ_４類似体の結果は、非常に多数の新規生物学的アッセイの着手につながり得る。これらの結果は、新規二重ＴＲ−αＶβ_３アゴニストまたはアンタゴニストの設計に寄与し得る。

（実施例３０）
冠、頚動脈または末梢組織における側副枝再生：
実験的四肢虚血モデル：
本研究は、ウサギ（月齢８〜１２ヶ月）の３つの主要な群を用いて行った：ａ）対照群としての役割を果す虚血、未治療群、およびｂ）Ｌ−Ｔ４類似体を受ける虚血群、およびｃ）ＤＩＴＰＡ類似体を受ける虚血群。動物が水および餌を自由に入手できるようにし、それらを２２℃の周囲温度および１２時間の昼／夜サイクルで別々のケージに収容した。外科手術の直後、ウサギに単回ｉ．ｍ．量のテトラサイクリンを注射した。甲状腺類似体を負荷ｓ．ｃ．用量（１ｍｇ／動物）として与え、その後、その薬物を毎日経口投与した（１ｍｇ／動物）。

甲状腺類似体の使用がインビボで血管新生を刺激するおよび側副血管発生を増加させる可能性を調査するために、本発明者らは、後肢虚血のウサギモデルを用いた。簡単に言うと、麻酔（ケタミン１０ｍｇ／ｋｇおよびキシラジン２．５ｇ／ｋｇの混合物、ｉ．ｍ．）した状態のウサギを、鼠径靭帯から下に膝蓋骨にまさに近接する点まで縦に切開した。この切開により、大腿動脈をその全長に沿って切除する。大腿動脈のすべての枝（下腹壁動脈、大腿深動脈、外側回旋動脈および浅腹壁動脈を含む）を切除する。膝窩動脈および伏在動脈の広範な切開の後、外腸骨動脈の結紮および前に挙げたすべての動脈の結紮を行った。この後、外腸骨動脈の枝などのその近位起点から、遠位に、潜在動脈と膝窩動脈になるために二叉に分かれる点まで、大腿動脈を完全に切除した。従って、遠位の四肢への血液供給は、同側内腸骨動脈に源を発する側副動脈に依存する。内腿から筋肉サンプルを取った。

血管造影：
手術および治療の１ヶ月後に、虚血四肢における側副血管の発生を大動脈血管造影によって評価した。血管造影は、研究期間の最後に行い、注入は、大動脈に導入したカテーテルによって行った。造影剤（５ｍＬのＩｓｏｖｕｅ−３７０）の動脈内注入。異なる群からの虚血四肢の画像を記録した。

血管写像後、動物を屠殺し、血液サンプルを採取し、後肢筋肉から組織切片を作製し、後の免疫染色のためにパラフィンに包埋した。

免疫組織化学的研究：
ＣＤ３１の発現：
パラフィン包埋切片を脱パラフィンし、再水和し、１０分間、マイクロウェーブおよびクエン酸緩衝液、ｐＨ６．１を使用する抗原回復に付した。その後、Ｔｒｉｓ緩衝食塩水で１：１０００希釈したＣＤ３１モノクローナルマウス抗ヒト（ＤＡＫＯ）とともにそれらの切片をインキュベートした。この抗体は、内皮細胞を強力に標識するものであり、毛細血管の判定における良いマーカーである。ＤＡＢを用い、その後、対比染色を用いて、抗原−抗体複合体を視覚化した。

毛細血管密度の評定：
ＣＤ３１の陽性染色によって特定された毛細血管を、治療レジメンを知らない一人の観察者が、４０倍の対物レンズのもとで計数した（筋肉線維当たりの毛細血管の平均数）。組織切片から合計１０個の異なる視野をランダムに選択し、毛細血管の数を数え、毛細血管／筋肉線維の比率を計算することによって毛細血管密度を決定した。

他の実施形態
本発明を、その詳細な説明に関連して説明したが、上述の説明は例証を目的とするものであり、本発明の範囲を限定するものではなく、本発明は、添付のクレームの範囲によって規定される。他の態様、利点、および変形は、後続のクレームの範囲内である。

ニワトリＣＡＭアッセイにおいて定量した血管新生に対するＬ−Ｔ４およびＬ−Ｔ３の効果。Ａ，対照サンプルは、ＰＢＳに、追加のサンプルは、１ｎＭのＴ３または０．１μｍｏｌ／ＬのＴ４に、３日間、曝露した。３回の実験からのこれらの代表画像において、両方のホルモンが血管分枝を増加させた。Ｂ，それぞれが９回のＣＡＭアッセイを含む３回の実験から得られた、実験期間中に既存の血管から形成された新たな枝の平均値±ＳＥＭの作表。示されている濃度で、Ｔ３およびＴ４は、同様の効果を生じた（枝の形成に関して、それぞれ、１．９倍および２．５倍増加）。^＊＊一元配置ＡＮＯＶＡによりＰ＜０．００１、ホルモン処理ＣＡＭサンプルとＰＢＳ処理ＣＡＭサンプルを比較。 ＴＥＴＲＡＣは、Ｔ４およびアガロースに連結されたＴ４（Ｔ４−ａｇ）による血管新生の刺激を阻害する。Ａ，血管枝形成の２．５倍増加が、０．１μｍｏｌ／ＬのＴ４に３日間曝露した代表ＣＡＭ試料において見られた。３回の同様の実験において、２．３倍の増加があった。このホルモンのこの効果は、ＴＥＴＲＡＣ（０．１μｍｏｌ／Ｌ）、Ｔ４．１３の原形質膜作用を阻害することが以前に証明されたＴ４類似体、によって阻害される。ＴＥＴＲＡＣ単独では、血管新生を刺激しない（Ｃ）．Ｂ，Ｔ４−ａｇ（０．１μｍｏｌ／Ｌ）は、血管新生を２．３倍（３回の実験で２．９倍）刺激する；ＴＥＴＲＡＣによっても阻止される効果。Ｃ，ＣＡＭアッセイにおいてＴＥＴＲＡＣ、Ｔ４−ａｇおよびＴ４の作用を調査する３回の実験の結果の要約。３回の実験のそれぞれにおける各実験条件につき１０の画像からデータ（平均値±ＳＥＭ）を得た。^＊＊ＡＮＯＶＡによりＰ＜０．００１、Ｔ４処理サンプルおよびＴ４−アガロース処理サンプルとＰＢＳ処理サンプルとを比較。 ＦＧＦ２およびＴ４の血管新生促進効果の比較。最大下濃度でのＴ４（０．０５μｇ／Ｌ）およびＦＧＦ２（０．５μｍｏｌ／Ｌ）のタンデム効果は、ＣＡＭアッセイにおいて相加的であり、ＦＧＦ２（Ｔ４不在下での１μｇ／Ｌ）で見られた血管新生のレベルに等しい。Ｂ，Ａの場合と同様にＣＡＭアッセイにおいてＦＧＦ２およびＴ４の作用を調査した３回の実験からの結果の要約（平均値±ＳＥＭ）。^＊Ｐ＜０．０５；^＊＊Ｐ＜０．００１、３回の実験で処理サンプルの結果とＰＢＳ処理対照サンプルの結果を比較。 Ｔ４または外因性ＦＧＦ２によって生じた血管新生に対する抗ＦＧＦ２の効果。Ａ，ＦＧＦ２は、３回の実験でＣＡＭモデルにおいて血管新生を２倍増加させた；ＦＧＦ２に対する抗体（ａｂ）（８μｇ）により遮断される効果。Ｔ４も血管新生を１．５倍刺激し、この効果もＦＧＦ２抗体によって阻止される。これは、このＣＡＭモデルにおける甲状腺ホルモンの作用が、ＦＧＦ２のオートクリン／パラクリン作用によって媒介されることを示している。なぜなら、このＣＡＭモデルにおいて、Ｔ４およびＴ３は、細胞からＦＧＦ２を放出させるからである（表１）。本発明者らは、このＣＡＭアッセイにおいて非特異的ＩｇＧ抗体が血管新生に対して効果がないことを以前に証明した。Ｂ，ＦＧＦ２またはＴ４の存在下でのＦＧＦ２−ａｂの作用を研究した３回のＣＡＭ実験からの結果の要約。^＊Ｐ＜０．０１；^＊＊Ｐ＜０．００１、血管新生に対する甲状腺ホルモンおよびＦＧＦ２の効果ならびにＦＧＦ２に対する抗体の存在下でのこれらの効果の喪失を研究する３回の実験における有意な効果を示す。 Ｔ４、Ｔ３およびＦＧＦ２によって誘導された血管新生に対するＰＤ ９８０５９、ＭＡＰＫ（ＥＲＫ１／２）シグナル伝達カスケード阻害剤、の効果。Ａ，同時にＴ４（０．１μｍｏｌ／Ｌ）とＴ３（１ｎｍｏｌ／Ｌ）両方によって刺激された血管新生は、ＰＤ ９８０５９（３μｍｏｌ／Ｌ）によって完全に阻害される。Ｂ，ＦＧＦ２（１μｇ／ｍＬ）によって誘導された血管新生もＰＤ ９８０５９によって阻害される。これは、この増殖因子の作用もＥＲＫ１／２経路の活性化に依存することを示す。Ｔ４が細胞膜でその血管新生促進効果を開始することを示すＴ４−アガロース（Ｔ４−ａｇ）およびＴＥＴＲＡＣ（図２）を伴う実験に関連して、ＡおよびＢに示す結果は、甲状腺ホルモンの血管新生促進作用においてＭＡＰＫが果す２つの役割と一致する：ＥＲＫ１／２は、ＦＧＦ２生成をもたらすこのホルモンの初期シグナルを伝達し、および血管新生に対するＦＧＦ２の二次的作用を伝達する。Ｃ，ＣＡＭモデルにおけるＴ４およびＦＧＦ２の作用に対するＰＤ９８０５９の効果を示す、ＡおよびＢによって表される、３回の実験の要約。^＊Ｐ＜０．０１；^＊＊Ｐ＜０．００１、３回の実験からのデータに対するＡＮＯＶＡの結果を示す。 Ｔ４およびＦＧＦ２は、ＥＣＶ３０４内皮細胞におけるＭＡＰＫを活性化する。０．２５％ホルモン枯渇血清を有するＭ１９９培地中で細胞を準備し、Ｔ４（０．１μｍｏｌ／Ｌ）で１５分から６時間処理した。前に説明したように、細胞を回収し、核画分を準備した。ゲル電気泳動によって分離した核タンパク質を、リン酸化ＭＡＰＫに対する抗体（ｐＥＲＫ１およびｐＥＲＫ２、それぞれ、４４および４２ｋＤａ）で免疫ブロットし、その後、発光検出システムに連結した二次抗体で免疫ブロットした。核画分のβ−アクチン免疫ブロットは、この図のそれぞれの部分におけるゲル負荷量についての対照として役立つ。それぞれの免疫ブロットは、３回の実験の代表である。Ａ，Ｔ４は、ＥＣＶ３０４細胞においてＥＲＫ１／２のリン酸化および核移行を増加させる。この効果は、６時間以上、存続するが、３０分間が最も効果的である。Ｂ，ＥＣＶ３０４細胞をＥＲＫ１／２活性化阻害剤ＰＤ ９８０５９（ＰＤ；３０μｍｏｌ／Ｌ）またはＰＫＣ阻害剤 ＣＧＰ４１２５１（ＣＧＰ；１００ｎｍｏｌ／Ｌ）で３０分間処理し、その後、示されているとおりの細胞サンプルに１０^−７ＭのＴ４を１５分間添加した。核を回収した。この代表実験は、Ｔ４によるＥＲＫ１／２のリン酸化（活性化）の増加を示し（レーン４）、これは両方の阻害剤によって阻害される（レーン５および６）。このことは、ＰＫＣ活性が、内皮細胞におけるＴ４によるＭＡＰＫ活性化の必要条件であることを示唆している。Ｃ，ＥＣＶ３０４細胞をＴ４（１０^−７ｍｏｌ／Ｌ）もしくはＦＧＦ２（１０ｎｇ／Ｌ）のいずれかまたは両方の物質で１５分間処理した。この図は、ホルモンまたは増殖因子いずれかで処理した核におけるｐＥＲＫ１／２の蓄積、および両方の物質を一緒に用いて増進された核内ＰＥＲＫ１／２蓄積を示す。 Ｔ４は、ＥＣＶ３０４内皮細胞におけるＦＧＦ２ ｃＤＮＡの蓄積を増加させる。細胞を６から４８時間、Ｔ４（１０^−７ｍｏｌ／Ｌ）およびＦＧＦ２で処理し、それぞれの細胞アリコートからＧＡＰＤＨ ｃＤＮＡを単離した。ＦＧＦ２ ｃＤＮＡのレベル（上のブロットに示す）をＧＡＰＤＨ ｃＤＮＡ含量の変動について補正した（下のブロットに示す）。修正したＦＧＦ２レベルを下にグラフで示す（平均値±平均値のＳＥ；ｎ＝２実験）。すべての時間点で、Ｔ４で処理した細胞から抽出したＲＮＡ中のＦＧＦ２転写産物の存在度が増加した。^＊Ｐ＜０．０５；^＊＊Ｐ＜０．０１、対照値に対するそれぞれの時間点での値のＡＮＯＶＡによる比較を示す。 第７日ニワトリ胚腫瘍増殖モデル。腫瘍インプラントのニワトリ漿尿膜（ＣＡＭ）モデルの図解。 Ｔ４は、３Ｄ創傷治癒を刺激する。本明細書中で説明した３Ｄ創傷治癒アッセイによる、Ｔ４および対照に曝露したヒト皮膚線維芽細胞の写真。 Ｔ４は、創傷治癒を用量依存的増進する、第３日。グラフが示すとおり、Ｔ４は、０．１μＭと１．０μＭの間の濃度で創傷治癒を用量依存的に増進させる（移出細胞によって測定）。これと同じ増進は、１．０μＭと３．０μＭの間のＴ４濃度では見られない。 精製インテグリンへの^{Ｉ−１２５}−Ｔ_４結合に対する非標識Ｔ_４およびＴ_３の効果。非標識Ｔ_４（１０^−４Ｍから１０^−１１Ｍ）またはＴ_３（１０^−４Ｍから１０^−８Ｍ）を精製αＶβ３インテグリン（２μｇ／サンプル）に添加し、３０分間、室温でインキュベートさせた。２マイクロキュリーのＩ−１２５標識Ｔ_４をそれぞれのサンプルに添加した。それらのサンプルを２０分間、室温でインキュベートし、負荷染料と混合し、５％非変性ゲルを用いて、２４時間、４℃で、４５ｍÅで泳動した。電気泳動後、それらのゲルをプラスチックラップでラッピングし、フィルムに曝露した。精製αＶβ３に結合する^{Ｉ−１２５}−Ｔ_４は、１０^−１１Ｍから１０^−７Ｍの範囲の非標識Ｔ_４による影響を受けないが、１０^−６Ｍの濃度での非標識Ｔ_４には用量依存的に競り負ける。このインテグリンに結合するホットなＴ_４は、１０^−４Ｍの非標識Ｔ_４によってほぼ完全に置換される。Ｔ_３は、αＶβ３に結合するＴ_４に競り勝つ点ではあまり有効でなく、１０^−６Ｍ、１０^−５Ｍ、１０^−４ＭのＴ_３で、それぞれ、１１％、１６％および２８％シグナルを減少させる。 ＴＥＴＲＡＣおよびＲＧＤ含有ペプチドは、精製αＶβ３に結合するＴ_４に競り勝つが、ＲＧＥ含有ペプチドは競り負ける。Ａ）精製αＶβ３へのＴＥＴＲＡＣ添加は、このインテグリンへの^{Ｉ−１２５}−標識Ｔ_４結合を用量依存的に減少させる。１０^−８ＭのＴＥＴＲＡＣは、そのインテグリンに結合するホットなＴ_４に競り勝つ点では有効でない。Ｔ_４とαＶβ３の会合は、１０^−７ＭのＴＥＴＲＡＣの存在下で３８％、および１０^−５ＭのＴＥＴＲＡＣの存在下では９０％減少された。ＲＧＤペプチドの１０^−５Ｍでの添加は、αＶβ３に結合するＴ_４に競り勝った。ＲＧＤペプチドの対照としての１０^−５Ｍおよび１０^−４ＭのＲＧＥペプチドの適用は、精製αＶβ３へのホットなＴ_４結合を減少させることができなかった。Ｂ）パネルＡからのＴＥＴＲＡＣおよびＲＧＤデータのグラフ表示。データ点は、３回の独立した実験の平均値±Ｓ．Ｄ．として示されている。 αＶβ３に結合するＴ_４に対するモノクローナル抗体ＬＭ６０９の効果。Ａ）ＬＭ６０９を示されている濃度でαＶβ３に添加した。１サンプルにつき１μｇのＬＭ６０９は、このインテグリンへの^{Ｉ−１２５}−標識Ｔ_４結合を５２％減少させる。このインテグリンへのＴ_４結合に対する最大阻害は、ＬＭ６０９の濃度が１サンプルにつき２μｇであるときに達成され、８μｇという高い抗体濃度ででも維持される。抗体特異性についての対照として、１０μｇ／サンプルのＣｏｘ−２ ｍＡＢおよび１０μｇ／サンプルのマウスＩｇＧを、Ｔ_４とのインキュベーションの前にαＶβ３に添加した。Ｂ）パネルＡからのデータのグラフ表示。データ点は、３回の独立した実験の平均値±Ｓ．Ｄ．として示されている。 Ｔ_４誘導ＭＡＰＫ活性化に対するＲＧＤ、ＲＧＥ、ＴＥＴＲＡＣおよびｍＡＢ ＬＭ６０９の効果。Ａ）ＣＶ−１細胞（集密度５０〜７０％）を３０分間、１０^−７ＭのＴ_４（１０^−７Ｍの総濃度、１０^−１０Ｍの遊離濃度）で処理した。選択されたサンプルを、Ｔ_４添加前に、１６時間、示されている濃度のＲＧＤ含有ペプチド、ＲＧＥ含有ペプチド、ＴＥＴＲＡＣ、またはＬＭ６０９のいずれかで処理した。核タンパク質をＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離し、抗ホスホＭＡＰＫ（ｐＥＲＫ１／２）抗体で免疫ブロットした。ｐＥＲＫ１／２の核内蓄積は、１０^−６Ｍ以上のＲＧＤペプチドで処理したサンプルでは減少されるが、１０^−４ＭのＲＧＥで処理したサンプルでは有意には改変されない。ｐＥＲＫ１／２の蓄積は、１０^−６ＭのＴＥＴＲＡＣで処理したＣＶ１細胞では７６％減少され、一方、１０^−５Ｍ以上の濃度のＴＥＴＲＡＣは、ｐＥＲＫ１／２の核内蓄積を未処理対照サンプルと同様のレベルに減少させる。αＶβ３に対するモノクローナル抗体ＬＭ６０９は、ＣＶ１培養物に１μｇ／ｍＬの濃度で適用すると、その核内の活性化ＭＡＰＫの蓄積を減少させる。Ｂ）パネルＡに示したＲＧＤ、ＲＧＥおよびＴＥＴＲＡＣについてのデータのグラフ表示。データ点は、３回の独立した実験の平均値±Ｓ．Ｄ．として示されている。 Ｔ_４誘導ＭＡＰＫ活性化に対するαＶおよびβ３へのｓｉＲＮＡの効果。ＣＶ１細胞のαＶ、β３、またはαＶとβ３両方に対するｓｉＲＮＡ（最終濃度１００ｎＭ）をトランスフェクトした。トランスフェクションの２日後、それらの細胞を１０^−７ＭのＴ_４で処理した。Ａ）それぞれのトランスフェクション群から単離したＲＮＡからＲＴ−ＰＣＲを行って、それぞれのｓｉＲＮＡの特異性および機能性を評価した。Ｂ）それぞれのトランスフェクションから核タンパク質を単離し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥに付した。 ＣＡＭモデルにおけるＴ_４刺激血管新生に対するαＶβ３ ｍＡＢ（ＬＭ６０９）の阻害効果。Ａ）サンプルをＰＢＳ、Ｔ_４（０．１μＭ）、またはＴ_４と１０ｍｇ／ｍＬのＬＭ６０９に３日間曝露した。Ｔ_４によって刺激された血管新生は、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９の添加によって実質的に阻害される。Ｂ）実験期間中に既存の血管から形成された新たな枝の平均値±ＳＥＭの作表。データは、それぞれの処理群が９つのサンプルを含む、３回の独立した実験から得た。Ｃ、Ｄ）Ｔ４またはＦＧＦ２によって刺激された血管新生も、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９またはＸＴ １９９によって阻害される。 ＣＡＭモデルにおけるＴ_４刺激血管新生に対するαＶβ３ ｍＡＢ（ＬＭ６０９）の阻害効果。Ａ）サンプルをＰＢＳ、Ｔ_４（０．１μＭ）、またはＴ_４と１０ｍｇ／ｍＬのＬＭ６０９に３日間曝露した。Ｔ_４によって刺激された血管新生は、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９の添加によって実質的に阻害される。Ｂ）実験期間中に既存の血管から形成された新たな枝の平均値±ＳＥＭの作表。データは、それぞれの処理群が９つのサンプルを含む、３回の独立した実験から得た。Ｃ、Ｄ）Ｔ４またはＦＧＦ２によって刺激された血管新生も、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９またはＸＴ １９９によって阻害される。 ＣＡＭモデルにおけるＴ_４刺激血管新生に対するαＶβ３ ｍＡＢ（ＬＭ６０９）の阻害効果。Ａ）サンプルをＰＢＳ、Ｔ_４（０．１μＭ）、またはＴ_４と１０ｍｇ／ｍＬのＬＭ６０９に３日間曝露した。Ｔ_４によって刺激された血管新生は、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９の添加によって実質的に阻害される。Ｂ）実験期間中に既存の血管から形成された新たな枝の平均値±ＳＥＭの作表。データは、それぞれの処理群が９つのサンプルを含む、３回の独立した実験から得た。Ｃ、Ｄ）Ｔ４またはＦＧＦ２によって刺激された血管新生も、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９またはＸＴ １９９によって阻害される。 ＣＡＭモデルにおけるＴ_４刺激血管新生に対するαＶβ３ ｍＡＢ（ＬＭ６０９）の阻害効果。Ａ）サンプルをＰＢＳ、Ｔ_４（０．１μＭ）、またはＴ_４と１０ｍｇ／ｍＬのＬＭ６０９に３日間曝露した。Ｔ_４によって刺激された血管新生は、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９の添加によって実質的に阻害される。Ｂ）実験期間中に既存の血管から形成された新たな枝の平均値±ＳＥＭの作表。データは、それぞれの処理群が９つのサンプルを含む、３回の独立した実験から得た。Ｃ、Ｄ）Ｔ４またはＦＧＦ２によって刺激された血管新生も、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９またはＸＴ １９９によって阻害される。 甲状腺ホルモン類似体のポリマー組成物−ポリビニルアルコールを使用するエステル結合によるポリマーコンジュゲーション。この調製では、市販のポリビニルアルコール（または関連コポリマー）を、甲状腺ホルモンの酸塩化物、すなわち酸塩化物形、での処理により、エステル化することができる。その塩酸塩をトリエチルアミンの添加によって中和して、塩酸トリエチルアミンを得る。これは、異なる類似体についての甲状腺ホルモンエステルポリマー形が沈殿し次第、洗浄除去することができる。このポリマーへのエステル結合がインビボで加水分解を受けて、活性血管新生促進甲状腺ホルモン類似体を放出することができる。 甲状腺ホルモン類似体のポリマー組成物−アクリル酸エチレンコポリマーを使用する無水物結合によるポリマーコンジュゲーション。これは、前のポリマー共有結合コンジュゲーションに類似しているが、今回は、アクリル酸コポリマーの反応から誘導される無水物結合による。この無水物結合もインビボで加水分解を受けて、甲状腺ホルモン類似体を放出する。トリエチルアミンでの処理によってその塩酸塩の中和を遂行し、その後、沈殿したポリ無水物ポリマーの水での洗浄によって、塩酸トリエチルアミン副生成物を除去する。この反応は、甲状腺ホルモン類似体アクリル酸コポリマー＋トリエチルアミンの形成をもたらすであろう。インビボでの加水分解により、その甲状腺ホルモン類似体とアクリル酸エチレンコポリマーが経時的に放出されるであろう（この時間は、制御することができる）。 甲状腺ホルモン類似体のポリマー組成物−ポリ乳酸ポリマー内への捕捉。ポリ乳酸ポリエステルポリマー（ＰＬＡ）は、インビボで乳酸モノマーへと加水分解され、これは、ヒトにおける薬物送達システムのためのビヒクルとして活用されている。甲状腺ホルモン類似体を化学結合によってポリマーに連結させる前の２つの共有結合法とは異なり、これは、甲状腺ホルモン類似体をＰＬＡポリマービーズに封入する、非共有結合的方法である。この反応は、水中で甲状腺ホルモン類似体含有ＰＬＡビーズの形成をもたらすであろう。濾過および洗浄により、甲状腺ホルモン類似体含有ＰＬＡビースが形成され、これは、インビボで加水分解されると、制御されたレベルの甲状腺ホルモンと乳酸を生じさせる。 様々なポリマーとのコンジュゲーションが可能な甲状腺ホルモン類似体。Ａ〜Ｄは、本発明の甲状腺ホルモン類似体のポリマー形を作るためにコンジュゲートさせることができる様々な甲状腺ホルモン類似体を獲得するために必要な置換を示すものである。 様々なポリマーとのコンジュゲーションが可能な甲状腺ホルモン類似体。Ａ〜Ｄは、本発明の甲状腺ホルモン類似体のポリマー形を作るためにコンジュゲートさせることができる様々な甲状腺ホルモン類似体を獲得するために必要な置換を示すものである。 様々なポリマーとのコンジュゲーションが可能な甲状腺ホルモン類似体。Ａ〜Ｄは、本発明の甲状腺ホルモン類似体のポリマー形を作るためにコンジュゲートさせることができる様々な甲状腺ホルモン類似体を獲得するために必要な置換を示すものである。 様々なポリマーとのコンジュゲーションが可能な甲状腺ホルモン類似体。Ａ〜Ｄは、本発明の甲状腺ホルモン類似体のポリマー形を作るためにコンジュゲートさせることができる様々な甲状腺ホルモン類似体を獲得するために必要な置換を示すものである。 インビトロ３−Ｄ血管新生アッセイ。図２１は、フィブリンコートビーズ上のヒト微小血管内皮についての三次元インビトロ出芽アッセイのプロトコルおよび図解である。 ３−ＤフィブリンにおけるＨＯＭＥＣのインビトロ出芽血管新生。図２２は、異なる倍率での三次元でのヒト微小血管内皮細胞出芽の図解である。 低レベルのコラーゲンの存在下での血小板由来創傷治癒因子の放出。 低レベルのコラーゲンの存在下での血小板由来創傷治癒因子の放出。 低レベルのコラーゲンの存在下での血小板由来創傷治癒因子の放出。 低レベルのコラーゲンの存在下での血小板由来創傷治癒因子の放出。 低レベルのコラーゲンの存在下での血小板由来創傷治癒因子の放出。 非標識Ｔ４およびＴ３は、精製インテグリンからの［^１２５Ｉ］−Ｔ４を置換する。非標識Ｔ４（１０^−１１Ｍから１０^−４Ｍ）またはＴ３（１０^−８Ｍから１０^−４Ｍ）を、［^１２５Ｉ］−Ｔ４の添加前に、精製αＶβ３インテグリン（２μｇ／サンプル）に添加した。（ａ）精製αＶβ３に結合する［^１２５Ｉ］−Ｔ４は、１０^−１１Ｍから１０^−７Ｍの範囲での非標識Ｔ４の影響を受けなかったが、１０^−６Ｍ以上の濃度での非標識Ｔ４によって濃度依存的に置換された。Ｔ３は、αＶβ３に結合するＴ４を置換する点ではあまり有効でなかった。（ｂ）Ｔ４およびＴ３データのグラフ表示は、３回の独立した実験の平均値±Ｓ．Ｄ．を示す。 ＴＥＴＲＡＣおよびＲＧＤ含有ペプチドは、精製αＶβ３に結合するＴ４を置換するが、ＲＧＥ含有ペプチドは置換しない。（ａ）精製αＶβ３とｔａｔｒａｃまたはＲＧＤ含有ペプチドとのプレインキュベーションは、このインテグリンと［^１２５Ｉ］−Ｔ４との相互作用を用量依存的に減少させた。ＲＧＤペプチドの対照としての１０^−５Ｍおよび１０^−４ＭのＲＧＥペプチドの適用は、精製αＶβ３に結合する標識Ｔ４を減少させなかった。（ｂ）ＴＥＴＲＡＣおよびＲＧＤデータのグラフ表示は、３回の独立した実験からの結果の平均値±Ｓ．Ｄ．を示す。 インテグリン抗体は、αＶβ３へのＴ４結合を阻害する。抗体ＬＭ６０９およびＳＣ７３１２を、［^１２５Ｉ］−Ｔ４添加の３０分前に、示されている濃度（μｇ／ｍＬ）でαＶβ３に添加した。このインテグリンへのＴ４結合の最大阻害は、ＬＭ６０９の濃度が２μｇ／ｍＬであったときに達成され、８μｇ／ｍＬという高い抗体濃度ででも維持された。ＳＣ７３１２は、２μｇ／ｍＬの抗体／サンプルでαＶβ３へのＴ４結合を４６％減少させ、８μｇ／ｍＬの抗体が存在したときに５８％減少させた。抗体特異性についての対照として、１０μｇ／ｍＬの抗αＶβ３ ｍＡｂ（Ｐ１Ｆ６）および１０μｇ／ｍＬのマウスＩｇＧを、Ｔ４とのインキュベーションの前にαＶβ３に添加した。このグラフは、３回の独立した実験からのデータの平均値±Ｓ．Ｄ．を示す。 Ｔ４誘導ＭＡＰＫ活性化に対するＲＧＤおよびＲＧＥペプチド、ＴＥＴＲＡＣならびにｍＡｂ ＬＭ６０９の効果。（ａ）ｐＥＲＫ１／２の核内蓄積は、１０^−６Ｍ以上のＲＧＤペプチドで処理したサンプルでは減少されたが、１０^−４Ｍ以下のＲＧＥで処理したサンプルでは有意には改変されなかった。１０^−５ＭのＴＥＴＲＡＣおよびＴ４で処理したＣＶ−１細胞におけるｐＥＲＫ１／２の蓄積は、未処理対照サンプルにおいて観察されたレベルと同様であった。ＬＭ６０９、αＶβ３に対するモノクローナル抗体、は、１μｇ／ｍＬの濃度でＣＶ−１培養物に適用したとき、その核内の活性化ＭＡＰＫの蓄積を減少させた。（ｂ）このグラフは、３回の独立した実験からのデータの平均値±Ｓ．Ｄ．を示す。α−チューブリン抗体での免疫ブロットをゲル負荷対照として含む。 Ｔ４誘導ＭＡＰＫ活性化に対するαＶおよびβ３へのｓｉＲＮＡの効果。ＣＶ−１細胞に、αＶ、β３、αＶとβ３の両方に対するｓｉＲＮＡ（最終濃度１００ｎＭ）をトランスフェクトした。トランスフェクションの２日後、それらの細胞を１０^−７ＭのＴ４またはビヒクル対照で３０分間処理した。（ａ）それぞれのトランスフェクション群から単離したＲＮＡを用いてＲＴ−ＰＣＲを行って、それぞれのｓｉＲＮＡの特異性および機能性を評価した。（ｂ）トランスフェトされた細胞のそれぞれのセットから核タンパク質を単離し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥに付し、Ｔ４での処理の存在下または不在下でｐＥＲＫ１／２についてプローブした。親細胞において、およびスクランブルｓｉＲＮＡで処理したものにおいて、Ｔ４でのｐＥＲＫ１／２の核内蓄積は明らかであった。αＶまたはβ３に対するｓｉＲＮＡで処理した細胞は、Ｔ４不在下ではｐＥＲＫ１／２の増加を示し、Ｔ４で処理すると減少を示した。αＶおよびβ３ ｓｉＲＮＡを含有する細胞は、Ｔ４処理に対して反応しなかった。 ＣＡＭモデルにおけるＴ４刺激血管新生に対するαＶβ３ ｍＡｂ（ＬＭ６０９）の阻害効果。ＰＢＳ、Ｔ４（１０^−７Ｍ）、またはＴ４と１０μｇ／ｍＬのＬＭ６０９で３日間処理したフィルターディスクにＣＡＭを曝露した。（ａ）Ｔ４により刺激された血管新生は、αＶβ３モノクローナル抗体ＬＭ６０９の添加によって実質的に阻害された。（ｂ）実験期間中に既存の血管から形成された新たな枝の平均値±ＳＥＭの作表を示す。^＊＊＊Ｐ＜０．００１、３回の独立した実験（それぞれ、１治療群につき９つの画像を含む）におけるＴ４／ＬＭ６０９処理サンプルの結果とＴ４処理サンプルの結果の比較。一元配置ＡＮＯＶＡによる統計解析を行った。

Claims (50)

1. １０ｎｍと１０００ｎｍの間の粒径を有する、多数の甲状腺ホルモン類似体にコンジュゲートしているナノ粒子を含み、該甲状腺ホルモン類似体が、該ナノ粒子に、該甲状腺ホルモン類似体のアルコール部分を架橋するエーテル（−Ｏ−）または硫黄（−Ｓ−）結合およびナノ粒子コンジュゲーションによって結合している、ナノ粒子コンジュゲート。
2. 前記甲状腺ホルモンまたは類似体が、ポリビニルアルコール、アクリル酸エチレンコポリマー、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリ乳酸、ポリグリコリド、ポリラクチド、アガロース、ＰＥＯ、ｍ−ＰＥＧ、ＰＶＡ、ＰＬＬＡ、ＰＧＡ、ポリＬ−リシン、ヒト血清アルブミン、セルロース誘導体、カルボメトキシ／エチル／ヒドロキシプロピル、ヒアルロン酸、葉酸架橋シクロデキストリン／デキストラン、サルコシン／アミノ酸が一定の間隔に配置されたポリマー、アルギネート／カラゲナン、ペクチン／キトサン、デキストラン、コラーゲン、ポリアミン、ポリアニリン、ポリアラニン、ポリトリプトファンおよびポリチロシンから成る群より選択されるメンバーにコンジュゲートしている、請求項１に記載のナノ粒子。
3. 前記甲状腺ホルモン類似体が、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、トリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）、レボチロキシン（Ｔ４）、トリヨードチロニン（Ｔ３）、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）、３，５−ジヨードサイロプロピオン酸（ＤＩＴＰＡ）、またはＮＨ２部分に保護基を有するＴ４もしくはＴ３、あるいはこれらの組み合わせである、請求項１に記載のナノ粒子。
4. Ｎ−メチル、Ｎ−エチル、Ｎ−トリフェニル、Ｎ−プロピル、Ｎ−イソプロピル、Ｎ−ｔ−ブチル、および他の官能基から成る群より選択される、請求項３に記載の保護基。
5. ナノ粒子１個につき１個と１００個の間の甲状腺ホルモン分子を有する、請求項１に記載のナノ粒子。
6. ナノ粒子１個につき１５個と３０個の間の甲状腺ホルモン分子を有する、請求項５に記載のナノ粒子。
7. ナノ粒子１個につき２０個と２５個の間の甲状腺ホルモン分子を有する、請求項６に記載のナノ粒子。
8. ポリマーにコンジュゲートしている甲状腺ホルモンまたはその類似体を含む、血管新生促進性または抗血管新生性ポリマーコンジュゲートであって、血管新生性薬剤または抗血管新生性薬剤が、インテグリンαＶβ３上の甲状腺ホルモンの細胞表面受容体に結合している、血管新生促進性または抗血管新生性ポリマーコンジュゲート。
9. 前記ポリマーが、ポリビニルアルコール、アクリル酸エチレンコポリマー、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリ乳酸、ポリグリコリド、ポリラクチド、アガロース、ＰＥＯ、ｍ−ＰＥＧ、ＰＶＡ、ＰＬＬＡ、ＰＧＡ、ポリＬ−リシン、ヒト血清アルブミン、セルロース誘導体、カルボメトキシ／エチル／ヒドロキシプロピル、ヒアルロン酸、葉酸架橋シクロデキストリン／デキストラン、サルコシン／アミノ酸が一定の間隔に配置されたポリマー、アルギネート／カラゲナン、ペクチン／キトサン、デキストラン、コラーゲン、ポリアミン、ポリアニリン、ポリアラニン、ポリトリプトファンおよびポリチロシンから成る群より選択されるメンバーである、請求項８に記載の血管新生促進性薬剤または抗血管新生性薬剤。
10. 前記甲状腺ホルモン類似体が、レボチロキシン（Ｔ４）、トリヨードチロニン（Ｔ３）、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）、および３，５−ジヨードサイロプロピオン酸（ＤＩＴＰＡ）から成る群より選択される、請求項９に記載の血管新生促進性薬剤。
11. 前記甲状腺ホルモン類似体が、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、トリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）、および他の甲状腺アンタゴニストまたは部分アゴニスト類似体から成る群より選択される、請求項９に記載の抗血管新生性薬剤。
12. 前記ナノ粒子の内部に前記甲状腺ホルモンを封入する工程、または該ナノ粒子の細胞表面に該甲状腺ホルモン類似体を化学的連結によって固定化する工程を含む、請求項１に記載のナノ粒子を作製するためのプロセス。
13. 医薬的に許容される担体中の請求項１に記載のナノ粒子コンジュゲートを含む医薬製剤。
14. １つ以上の医薬的に許容される賦形剤をさらに含む、請求項１３に記載の医薬製剤。
15. 投与の非経口様式、経口様式、直腸様式もしくは局所様式、またはこれらの組み合わせを有する、請求項１３に記載の医薬製剤。
16. 前記甲状腺ホルモンまたは類似体が、ポリビニルアルコール、アクリル酸エチレンコポリマー、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリ乳酸、ポリグリコリド、ポリラクチド、アガロース、ＰＥＯ、ｍ−ＰＥＧ、ＰＶＡ、ＰＬＬＡ、ＰＧＡ、ポリＬ−リシン、ヒト血清アルブミン、セルロース誘導体、カルボメトキシ／エチル／ヒドロキシプロピル、ヒアルロン酸、葉酸架橋シクロデキストリン／デキストラン、サルコシン／アミノ酸が一定の間隔に配置されたポリマー、アルギネート／カラゲナン、ペクチン／キトサン、デキストラン、コラーゲン、ポリアミン、ポリアニリン、ポリアラニン、ポリトリプトファンおよびポリチロシンから成る群より選択されるメンバーにコンジュゲートしている、請求項１３に記載の医薬製剤。
17. 前記甲状腺ホルモン類似体が、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、トリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）、甲状腺ホルモン部分アゴニストまたはアンタゴニスト、レボチロキシン（Ｔ４）、トリヨードチロニン（Ｔ３）、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−メチル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−エチル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−トリフェニル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−プロピル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−イソプロピル、Ｔ４またはＴ３ Ｎ−ｔ−ブチル、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）、および３，５−ジヨードサイロプロピオン酸（ＤＩＴＰＡ）から成る群より選択される、請求項１３に記載の医薬製剤。
18. 前記ナノ粒子が、ナノ粒子１個につき１個と１００個の間の甲状腺ホルモン類似体を含有し、該甲状腺ホルモンが、封入されているか、化学結合によって該ナノ粒子表面に固定化されている、請求項１３に記載の医薬製剤。
19. 前記ナノ粒子が、化学療法薬、または他の公知の血管新生促進剤もしくは抗血管新生剤と一緒に前記甲状腺ホルモンを共封入する、請求項１８に記載の医薬製剤。
20. 前記ナノ粒子が、内部に前記化学療法薬、血管新生促進剤または抗血管新生剤を含み、および前記甲状腺ホルモンが、安定な化学結合によって該ナノ粒子の表面に固定化されている、請求項１９に記載の医薬製剤。
21. 前記ナノ粒子の表面が、安定な化学結合によって該表面に結合されたアルファｖベータ３リガンドなどの部位指向部分を含有する、請求項１８または１９に記載の医薬製剤。
22. 治療の必要がある被験体に、該被験体における血管新生を促進するために有効な量の請求項１に記載の甲状腺ホルモンナノ粒子または請求項７に記載のポリマーコンジュゲートまたは請求項１３に記載の医薬製剤を投与することを含む、血管新生を促進することによって治療可能な状態を治療する方法。
23. 前記血管新生を促進することによって治療可能な状態が、閉塞性血管疾患、冠疾患、脳血管性、勃起機能不全、心筋梗塞、虚血、卒中、末梢動脈血管疾患、四肢虚血、および創傷治癒から成る群より選択される、請求項２２に記載の方法。
24. 患者に医療器具を挿入する前に、該器具に甲状腺ホルモン、甲状腺ホルモン類似体、それらのポリマー形またはナノ粒子形をコーティングすることを含む、該医療器具に沿ってまたは該医療器具の周囲で血管新生を促進する、請求項２２に記載の方法。
25. 前記医療器具が、ステント、カテーテル、カニューレまたは電極である、請求項２４に記載の方法。
26. 請求項１に記載のナノ粒子、または請求項７に記載のポリマーコンジュゲート、または請求項１３に記載の医薬製剤において使用される前記甲状腺ホルモン類似体が、レボチロキシン（Ｔ４）、トリヨードチロニン（Ｔ３）、３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ酢酸（ＧＣ−１）および３，５−ジヨードサイロプロピオン酸（ＤＩＴＰＡ）ならびにこれらの組み合わせから成る群より選択される、請求項２２に記載の方法。
27. 治療の必要がある被験体に、該被験体における血管新生を阻害するために有効な量の請求項１に記載の甲状腺ホルモンナノ粒子または請求項７に記載のポリマーコンジュゲートまたは請求項１３に記載の医薬製剤を投与することを含む、血管新生を阻害することによって治療可能な状態を治療するための方法。
28. 前記血管新生を阻害することによって治療可能な状態が、原発性または転移性腫瘍、神経膠腫、乳癌、甲状腺癌、他の癌タイプ、炎症性疾患、糖尿病性網膜症、非癌性皮膚疾患、および黄斑変性から成る群より選択される、請求項２７に記載の方法。
29. 前記治療可能な状態が、甲状腺癌であり、ＴＥＴＲＡＣとＴＥＴＲＡＣナノ粒子コンジュゲートの組み合わせが投与される、請求項２８に記載の方法。
30. 請求項１に記載のナノ粒子、または請求項７に記載のポリマーコンジュゲート、または請求項１３に記載の医薬製剤において使用される前記甲状腺ホルモン類似体が、テトラヨードサイロ酢酸（ＴＥＴＲＡＣ）、トリヨードサイロ酢酸（ＴＲＩＡＣ）、甲状腺ホルモンアンタゴニストおよびこれらの組み合わせから成る群より選択される、請求項２８に記載の方法。
31. 疎水性化合物（Ｘ）単独または親水性化合物（Ｙ）をそれぞれＺ_１、Ｚ_２、Ｚ_３、Ｚ_４およびこれらの組み合わせから成る群より選択される少なくとも１つのコポリマーとともに含有するシングルまたはダブルエマルジョンを含む、持続放出性で長期残留性の眼科用製剤。
32. ＸおよびＹが、疎水特性または親水特性を有する甲状腺ホルモン類似体である、請求項３１に記載の製剤。
33. Ｚ_１が、前記コポリマーの安定なナノ粒子特性をもたらし、該コポリマーが、ＰＬＧＡである、請求項３１に記載の製剤。
34. Ｚ_２が、前記コポリマーの熱感受特性をもたらし、該コポリマーが、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡＡＭ）である、請求項３１に記載の製剤。
35. Ｚ_３が、前記コポリマーに粘膜接着特性およびｐＨ感受特性をもたらすモノマーであり、該コポリマーが、前記ナノ粒子の中に捕捉されたアクリレート系モノマーと少なくとも１つの疎水性薬物である、請求項３１に記載の製剤。
36. Ｚ_４が、粘膜接着剤であり、該粘膜接着剤が、キトサン、アクリル酸由来のアクリレート、メチルメタクリレートおよび他の粘膜接着剤から成る群より選択される、請求項３１に記載の製剤。
37. 前記疎水性薬物が、溶液または粉末形態である、請求項３１に記載の製剤。
38. 前記疎水性薬物を含有するシングルエマルジョンが、直径１０ｎｍ＜１０００ｎｍの範囲のサイズを有する重合シングルエマルジョンまたはミセルである、請求項３１に記載の製剤。
39. 前記コポリマーが、両親媒性モノマーから作られたブロックコポリマーであり、生体適合性および非抗原性材料である、請求項３１に記載の製剤。
40. 疎水性化合物（Ｘ）単独または親水性化合物（Ｙ）をそれぞれＺ_１、Ｚ_２、Ｚ_３、Ｚ_４およびこれらの組み合わせから成る群より選択される少なくとも１つのコポリマーとともに含有するシングルまたはダブルエマルジョンを含む持続放出性で長期残留性の眼科用製剤を製造する方法。
41. 前記疎水性薬物が、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、酢酸エチル、エタノールおよび他の透析可能な溶媒から成る群より選択される溶媒に溶解される、請求項４０に記載の方法。
42. 前記エマルジョンが、ヒドロゲル製剤と目に対する刺激を減少させるそのコポリマーの熱感受特性とを有するモノマーを含み、該モノマーが、ビニル化合物である、請求項４０に記載の方法。
43. 前記ビニル化合物が、ビニルピロリドン、ビニルアルコール、塩化ビニルおよび酢酸ビニルから成る群より選択される、請求項４２に記載の方法。
44. 前記コポリマーが、生体適合性で非抗原性の材料であるブロックコポリマーである、請求項４０に記載の方法。
45. Ｚが、そのコポリマーに粘膜接着特性およびｐＨ感受特性をもたらすモノマーであり、該モノマーが、アクリレート系モノマーである、請求項４０に記載の方法。
46. 前記エマルジョンを攪拌、加熱、超音波処理し、溶媒を蒸発させ、および／または透析を行って、ブロックコポリマーミセルの疎水性コアに前記疎水性薬物を物理的に組み込み、混合物を形成し、ならびに該混合物を精製して、持続放出性で長期残留性の眼科用製剤を回収する、請求項３０に記載の方法。
47. 前記透析が、水性相における未反応モノマーおよび遊離薬物をもしあれば除去するために、２〜２４時間行われる、請求項４０に記載の方法。
48. 前記製剤が重合される、請求項４０に記載のプロセス。
49. 前記重合が行われる温度が、２０℃から８０℃の間の範囲である、請求項４８に記載の方法。
50. 請求項３１に記載の眼科用製剤を含む点眼剤または眼軟膏を患者に投与することを含む、疎水性薬物の眼科的に送達するための方法。

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