JP2007535924A - ワクチン用アジュバントとしてのフラジェリンの使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、フラジェリン、及びワクチン接種用アジュバントとしてのその使用に向けられる。好ましくは、フラジェリンは膜結合型であり、それは哺乳類表面表示プラスミドｐＤｉｓｐｌａｙを用いることによって達成されうる。本発明をワクチン製剤に用いて、同じ個所に投与される任意の他の抗原に対する免疫を向上させることが可能である。抗原をフラジェリンと同じ構築体、又は同じ個所に与えられる任意の他の製剤で投与することが可能である。別法として、フラジェリンを使用して、特定個所に発現される抗原に対する免疫を刺激することが可能である。炎症に対するモデルを作成することを目的として、局所的な炎症を誘発するのにフラジェリンを使用することも可能である。

Description

抗原をコードする裸ＤＮＡコード抗原の送達により、適応免疫応答を誘発することが可能である^１。この方法は、規定の抗原に対して集中した免疫応答を誘発することができるという点において可能性を有し、調製が容易で安定性があるという点において有益性を有する。しかしながら、齧歯類と比較して、ＤＮＡのみを使用して^２−１５ヒト及びヒト以外の霊長類にワクチン接種をする成果に限界があることを考慮すると、ＤＮＡワクチン接種の免疫原性を高めることが依然として基本的な目標である。今日まで、これらのＤＮＡワクチン接種は、複合的なＤＮＡ−プライム、タンパク質／ウィルス−追加免疫療法と組み合わせなければ効果がないことが証明されてきた^{９、１２、１６}。ＤＮＡをベースとしたワクチン接種を改善するために、サイトカイン／ケモカインを発現するベクター、及び共刺激遺伝子が、「遺伝子アジュバント」として使用されてきた^１７。単一分子に基づく遺伝子アジュバントの使用は、特異的免疫細胞の活性化に的を絞ることができるという点において有利性を有するが、免疫系を病原菌と同程度に効果的に活性化させることができないという点において限界を有する。これらの限界により、ＤＮＡワクチン接種手法を用いて送達されるとより多面的な局所的炎症応答を誘発するＤＮＡコード分子を開発することが大いに必要とされている。当該分子を広範な抗原コードＤＮＡワクチンと併用して、ＤＮＡのみに基づくワクチンより調製及び保管により注意を要する混種追加免疫療法を必要とせずに強い適応免疫応答を誘発することが可能である。

鐘状受容体（ＴＬＲ）を介する先天免疫系の活性化は、免疫系を感作して、強い適応免疫応答を活性化させる効果的な方法である。一度活性化されると、ＴＬＲ発現細胞は、抗菌作動体分子、Ｉ型及びＩＩ型インターフェロン、サイトカイン、ケモカイン、共刺激分子、及び抗原発揮細胞（ＡＰＣ）による効果的なＴ及びＢ細胞感作を含む免疫系の多数の要素を活性化させる^１８。

ワクチン接種を通じて、理想的にはＴＬＲを活性化させる短寿命の炎症促進分子を局所的に生成させることが望まれる。これらは、次に、先天免疫系を活性化させ、主要な抗原に対する応答を増強する多数の因子及び応答の生成をもたらすことが可能である。残念なことに、ＴＬＲは毒性を有し^１９、（ＬＰＳ又はペプチドグリカン等の）微生物に特有の複雑な代謝経路の生成物であるか、又は（非メチル化ＣｐＧ ＤＮＡモチーフ等の）哺乳類のシステムによって生成することができないため、ＤＮＡワクチンにおけるアジュバントとしての使用には理想的ではない。

しかしながら、ポリペプチド・フラジェリン（ｆｌａｇｅｌｌｉｎ）は、ＴＬＲ５^２０を発現する細胞に対するアゴニストであるという知見によって、真核細胞はこの分子を生成できるという可能性が開かれた。重合して、細菌鞭毛の繊維を形成する単量体副単位タンパク質である（ＦｌｉＣと呼ばれる）サルモネラからのフェーズ１フラジェリンは、シスチン残基^２１を有さず、リシン残基^２２の翻訳後改変が限定的なポリペプチドである。それが広範囲に研究され、ＴＬＲ５と相互作用するフラジェリンの領域及び残基が最近確定された^２３。ＦｌｉＣは、ＴＬＲ５依存炎症誘発性サイトカイン生成、及び肺^２４、腸管上皮^{２５、２６}における多形核顆粒球補充を活性化させることが可能であり、腸病原性サルモネラ^２７の主要炎症誘発性決定因子である。それは、マウスマクロファージ^２８及び造骨細胞^２９を活性化させて、炎症メディエータを生成し、ヒト単球を活性化させて、ＴＮＦα^３０を生成すると共に、ヒト単球誘導樹状細胞（ＤＣ）に共刺激分子^３１を成熟させ、上方制御させて、ＩＦＮγ、ＩＬ−１０、ＩＬ−６、ＴＮＦα及びＩＬ−１２ｐ７０、そして低度のＩＬ−５及びＩＬ−１３^３２を生成することが可能である。これらの応答は、いずれもインビトロのＴｈ１型応答に向かう適応免疫を感作するためのバイアスであることを証明するものである。一時的に形質移入された哺乳類細胞の細胞質から生成・精製されたＦｌｉＣポリペプチドもＴＬＲ５発現細胞^３３を活性化させるが、それは、哺乳類細胞において、ＦｌｉＣが免疫刺激形態に発展することを示唆するものである。

ＤＮＡワクチン接種と併用されるより効率的な局所的炎症誘発方法を開発するために、哺乳類細胞がそれらの表面でＦｌｉＣを発現することを可能にする発現ベクターを作製した。インビトロでは、これらの構築体が形質移入された細胞は、ヒト単球を活性化させて、炎症性サイトカインＴＮＦαを生成させ、細菌から単離されたＬＰＳ及び組換えフラジェリンと同様に、ＣＤ８０及びＣＤ２５を上方制御することが可能であった。インビボでは、皮膚にＦｌｉＣ発現ベクターが与えられたマウスは、急性の部位特異的炎症応答を示し、特異的な抗原を発現するベクターと合わせると、抗原特異的抗体応答を顕著に増強させた。驚くべきことに、ＦｌｉＣ発現ベクターは、内皮送達されるＤＮＡコード可溶性抗原に対する応答では通常見られないある種の免疫応答を誘発することを示唆する、特異的抗原に対する細胞免疫をも観察した。

本発明は、ワクチン用遺伝子アジュバントとしてのフラジェリンの使用に向けられる。

本発明は、膜結合単量体として、又は可溶性単量体として発現されうる形態のフラジェリンをコードする核酸構築体フラジェリンからなる。フラジェリンアジュバントは、特異的免疫を誘発することが可能な任意の物質からなるワクチンと同じ個所に投与される。ワクチンは、病原体又は腫瘍細胞によって発現される遺伝子をコードする核酸として、又はタンパク質、ペプチド、又は弱毒化病原体若しくは腫瘍細胞として調合されうる。或いは、特定個所で発現された抗原に対する免疫を刺激するためにフラジェリンを使用することが可能である。例えば、フラジェリンを腫瘍に導入することによって、局所的な炎症を誘発させて、腫瘍又は局所的毒性に対する特異的免疫を活性化させることが可能である。サルモネラチフィムリオン（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｏｎ）、又は任意の他の生体発現相同遺伝子からフラジェリンに対する遺伝子を得ることが可能である。

相同とは、１つ又は複数のアミノ酸残基が、異なるアミノ酸残基に置換されるか、又は除去されるか、或いは１つ又は複数のアミノ酸残基が、野生型フラジェリン又はその活性断片若しくはフラクションと比較して、得られた生成物の活性を著しく変化させることなくフラジェリンの本来の配列に添加される、タンパク質フラジェリンを発現する遺伝子の類似体又は変異体であると理解する。当業者であれば、以下の例と同様にして活性を試験することが可能である。

好ましい実施形態において、任意の当該類似体又は変異体は、フラジェリンの配列と少なくとも４０％の同一性又は相同性を有する。より好ましくは、それに対して、少なくとも５０％、少なくとも６５％等の少なくとも６０％、少なくとも７５％等の少なくとも７０％、少なくとも８５％等の少なくとも８０％、もっとも好ましくは、少なくとも９５％等の少なくとも９０％の同一性又は相同性を有する。

補足図１：ＦｌｉＣ ＴｍのＯＲＦ

補足図２：ＦｌｉＣ Ｔｍ（−ｇｌｙ）のＯＲＦ

キメラポリペプチドの作製
哺乳類細胞の表面にＦｌｉＣを発現させるために、哺乳類発現ベクターｐＤｉｓｐｌａｙ（ｐＤｉｓｐ／ｆｌｉＣ−Ｔｍ）におけるＳ．チフィムリウム（ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）からのｆｌｉｃ遺伝子を含むベクターを作製した。ＰＣＲ生成物のコード領域は、Ｓ．チフィムリウムフェーズ１フラジェリンのＤＮＡ配列と同一であり、天然の終止コドンを変化させて、ヒトＰＤＧＦＲ膜貫通領域を含むベクターの領域へのリボソーム通読を可能にした。オープンリーディングフレームを含む断片を切り出し、さらなる実験で使用するために発現ベクターｐｃＤＮＡ３．１／ゼオ（＋）に移した。本明細書に記載されている主要ＯＲＦについては補足情報図１及び２を参照されたい。詳細な情報については「配列」の章を参照されたい。２９３ＦＴ細胞にｐｃＤＮＡ３．１／ｆｌｉＣ−Ｔｍ（ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ）発現ベクターを一時的に形質移入し、ウェスタンブロッティングにより細胞可溶化物を分析した。約６１ｋＤａの成熟ポリペプチド生成物を期待した。期待された処理前ポリペプチドの一次構造及び成熟ポリペプチドの発現の概略図をそれぞれ図１ａ及び１ｂに示す。抗ＨＡ標識（図１ｂ）及び抗ＦｌｉＣ抗体（図１ｃ）の双方を使用して、同一分子量のタンパク質を検出したが、７７ｋＤａでは期待されたサイズより大きく、８３ｋＤａでは帯域がより分散していた。

Ｓ．チフィムリウムから単離された未変性フラジェリンの構造は十分に特徴付けられており^２１、グリコシル化されていない。しかしながら、多数の真核Ｎ−結合型グリコシル化部位が、ｆｌｉＣのコード配列において識別された。したがって、２９３ＦＴ細胞によって生成されたＦｌｉＣ−Ｔｍのより分子量の大きい生成物をＮ−結合型グリコシル化により生成させることが可能であった。これに対応するために、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ形質移入２９３ＦＴ細胞の全細胞質細胞可溶化物を、（Ｇｏｌｇｉ処理により見られる）複雑な炭水化物構造体ではなくて単純な炭水化物構造体（ＥＲに見られる高マンノース及びハイブリッド）を除去するＥｎｄｏ Ｈで処理した。Ｅｎｄｏ Ｈ処理により、７７ｋＤａのＦｌｉＣ−Ｔｍが６１ｋＤａの期待されたサイズにおいて移動したのに対して、より大きい８３ｋＤａのポリペプチドの現行特性は変化しなかった（図１ｄ）。

哺乳類細胞におけるＦｌｉＣのこれらの残基のＮ−結合型グリコシル化を防ぐために、ｆｌｉＣのコード配列を変化させた。Ａｓｎに対するグリコシル化結合には、Ａｓｎ自体を変化させるか、又はシグナル配列が必要であった。他のフラゲル化（ｆｌａｇｅｌｌａｔｅｄ）細菌のフラジェリン分子内の同様の個所に存在する想定アミノ酸残基を識別することにより変化を選択した（表１）。

これらの残基を変化させると、６１ｋＤａの期待されたサイズで移動するが、免疫刺激形態に発展するポリペプチドが生成されることが期待された。ｆｌｉＣ−Ｔｍのヌクレオチド配列を部位誘導変異誘発によって変化させ、得られた構築体をｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）と呼んだ。ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が形質移入された２９３ＦＴ細胞によって生成されたポリペプチドは、それぞれ６６／６９ｋＤａであった（図１ｄ）。これらの結果は、微生物からの所望のポリペプチドの真核性生成が困難でありうることを強調するものである。

ＦｌｉＣの細胞表面発現
発現構築体が形質移入された細胞が、その表面においてＦｌｉＣ−Ｔｍポリペプチドを発現するかどうかを判断するために、細胞を抗ＦｌｉＣ及び抗ＨＡ抗体で染色した後に、ＦＡＣＳ（登録商標）分析を行った。ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が形質移入された２９３ＦＴ細胞培養物は、アイソタイプ制御抗体ではなく、抗ＨＡエピトープ抗体（図２）で検出可能な細胞を含んでいた（データは示さない）。モック形質移入細胞（データは示さない）、又は空ベクターが形質移入された細胞（図２）は、バックグラウンド染色を与えた。ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が形質移入された細胞は、抗ＦｌｉＣ抗体によって検出可能なタンパク質をも発現した（図２）。ポリクローナル抗ＦｌｉＣ抗体を使用して、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）に対して染色陽性の同様又はより大きい割合の細胞を検出した。ＨｅＬａ細胞にもｐｆｌｉＣ−Ｔｍ、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）又は空ベクターを形質移入し、抗ＨＡ及び抗ＦｌｉＣ抗体を使用して同様の表面発現を観察した。

ＦｌｉＣを発現する細胞によるヒト単球の活性化
接着性強化ヒトＰＢＭＣ（単球）は、組換えＳ．チフィムリウムフラジェリンに応答して、炎症性因子を生成する^３０。Ｆｌｉｃ−Ｔｍをその表面に発現する細胞が、ヒト単球を活性化できるかどうかを調べるために、２９３ＦＴ細胞が形質移入されたｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を静止単球と共にインキュベートした。細胞に指定ベクターを形質移入し、ＦｌｉＣ−Ｔｍ又はＦｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）の表面発現を分析した。形質移入細胞の全培養物をＰＢＳで洗浄し、単球と混合し、１８時間インキュベートし、ＴＮＦα生成、及びＣＤ８０及びＣＤ２５の表面発現の変化について分析した。ＦｌｉＣ−Ｔｍ又はＦｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を発現する２９３ＦＴ細胞の培養物は、対照と比較して、単球にＣＤ８０及びＣＤ２５の細胞表面発現を上方制御させることが可能であった（図３）。誘発されたそれらの変化は、ＬＰＳ又は組換えＦｌｉＣポリペプチドによる処理の後に認められた変化と類似していた（図３ｃ）。ＦｌｉＣ−Ｔｍ又はｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）発現細胞もＴＮＦ−αの生成を誘発することが可能であった（図３ｄ）。また、形質移入２９３ＦＴ細胞の培養物の上清も単球上のＣＤ８０及びＣＤ２５レベルを上方制御することが可能であった（データは示さない）。サルモネラ誘導ＦｌｉＣに応答するＮＦ−ｋＢ活性化（ＴＬＲ活性化を示す）は、ＨｅＬａ細胞ではなく、２９３において発生し^３６、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現構築体による２９３ＦＴの形質移入は、単球を活性化できる２９３ＦＴ細胞からの不確定因子の生成をもたらす可能性を高めることが報告されている。この仮説を試験するために、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が形質移入されたＨｅＬａ細胞を使用して、形質移入及び細胞混合実験をも実施した。単球と混合したこれらの細胞もＦｌｉＣ−Ｔｍ又はＦｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を発現する２９３ＦＴと同様の単球活性化を誘発させることが可能であったが、空ベクターが形質移入された細胞を誘発させることができなかった（図３ｂ及びｄ）。形質移入ＨｅＬａ細胞の培養物の上清も単球を活性化させた（データは示さない）。２９３ＦＴ及びＨｅＬａ細胞は、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ２５及び抗ＨＬＡ−ＤＲによる染色に対して陰性であった（データは示さない）。

膜結合フラジェリンが単球の活性化を誘発するという我々の知見と、可溶性フラジェリンによる単球の活性化とを組み合わせると、可溶性フラジェリンを発現するベクターが形質移入された細胞によって活性化を誘発させることが可能であることがわかる。

フラジェリン発現ベクターは局所的急性炎症を誘発する
ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターがインビボで炎症応答を誘発することが可能であるかどうかを判断するために、遺伝子銃法を用いて、ｐｆｌｉＣＴｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）プラスミドをマウスに注射した。ベクターと呼ばれる空発現ベクター（ｐｃＤＮＡ３．１／ゼオ（＋））と共に、又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）と組み合わせて、ニワトリ卵アルブミン（ｐＯＶＡ）を含む試験ベクターを金ビーズに塗布した。マウスを免疫化し、指定日に死亡直後に各注射部位を撮影した（図４）。注射部位を周囲の皮膚と共に切開し、固定し、組織学的分析を行って、異なるＤＮＡ調製物でワクチン接種されたマウス間の局所的応答に差があるかどうかを判断した。

送達されたプラスミドの種類に対して導かれた応答の種類に明確な差があることが、注射部位の総体的形態によって明らかになった（図４ａ）。プラスミドｐＯＶＡ＋ベクターが注射されたマウスは、恐らく金粒子の付着による黄褐色の色合いによって主に特徴付けられるわずかな局所的反応を注射２日後に示した。対照的に、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が注射されたマウスは、注射部位の腫れ及び中枢性腫瘍形成によって特徴付けられる激しいが局所的な組織応答を生じた。注射７日後には、すべてのグループのマウスにおいて、皮膚は全体的に正常になっていた。

注射部位の組織学的分析により、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が注射されたマウスと比較して、ｐＯＶＡ＋ベクターが注射されたマウスの間には類似性と共に大きな差があることが明らかになった。注射後直ちに屠殺したマウスでは、表皮及び表皮下真皮に金粒子の分布が認められた（図４ｂ、ｃ及びｄ）。注射後１日及び２日目（図４ｂ〜４ｄ）には、ｐＯＶＡ＋ベクターが与えられたマウスは、表皮増殖が起こり、角層下膿疱形成が起こり、好中球性顆粒球（ＮＧ）の浸透により真皮の細胞密度が増加し、炎症反応が皮下脂肪に伸びるが、それを含まない。３日目には、炎症が消散したが、表面壊死性表皮層及び膿疱が注射部位から剥がれた。対照的に、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現プラスミドのいずれかと組み合わせたｐＯＶＡの注射は、皮下組織をも含み、皮筋層の表面部に伸び、それを含むより急速で重度の炎症反応をもたらした。１日目は、表皮壊死が中央の注射部で観察され、フィブリンで覆われた表皮剥離領域に顆粒球が密に浸透した。真皮及び皮下組織において、炎症反応は、皮下脂肪組織炎をもたらし、好中球性顆粒球が密に浸透していた。２日目（図４ｂ〜４ｄ）には、同様の観察がなされたが、加えて、充血が増加し、血管系に縁形成好中球が存在していた。３日目には、注射部位の側部が表皮増殖を示し、中央領域には、依然として特徴的な表皮膿疱形成があった。皮膚部における急性炎症反応は続いたが、幾分低減された。充血血管は目立たなくなっており、初期の癒傷の形跡があった。試験されたすべての動物において、表皮剥離領域に金粒子の凝集物が存在し、真皮にはビーズ凝集が見られた。７日目まで（図４）には、すべてのグループにおいて、顆粒層肥厚及び角膜増殖による表皮増殖の形跡が依然として存在したが、炎症反応は、ほとんど消散し、残留する金ビーズの多くは、皮膚凝集物内で凝集しているのが認められた。傷形成は、中央注射部位に見られたが、側部には見られなかった。

ＩＬ−２、ＩＬ−１２又はＧＭ−ＣＳＦの如き任意の他の遺伝子コードアジュバントを使用した場合に同様の応答が観察又は報告されていないため、この研究で観察されたこの炎症応答は、ＦｌｉＣ−Ｔｍの使用に特有なものであると思われる（我々独自の観察）^１７。プラスミド被覆金ビーズの存在と炎症の間に直接的な相関を確認したが、それは、ＤＮＡカーゴの付着がマウスにおける変化に関与していることを示唆するものである。この相関性は、炎症の存在、及び（以下に記載する）抗原に対する免疫応答の増強に発展するものでもある。

可溶性フラジェリンコードベクターを使用する遺伝子銃免疫化によっても同様の結果が期待される。我々の結果は、核酸をベースとしたワクチン接種のためのアジュバントとしてフラジェリンを使用できることを示すものである。フラジェリンは、膜結合分子又は可溶性分子として発現されうる。いずれの状況においても、組織に発現された抗原に対する免疫応答を増強する局所的炎症が誘発されることになる。

フラジェリン発現ベクターはＤＮＡワクチン接種を増強する
ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターがＤＮＡコード可溶性抗原（ＯＶＡ）に対する適応免疫応答を増強できるかどうかを判断するために、遺伝子銃法を用いて、マウスにワクチン接種した。図５ａに例示されている免疫化スケジュールに従って、ｐＯＶＡ＋ベクター、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）でマウスを免疫化した。指定日に血液を採取し、抗ＯＶＡ抗体の存在について血清を試験した。２１日目は、抗ＯＶＡＩｇＧ応答は検出不能であった（データは示さない）。６１日目に、抗ＯＶＡＩｇＧレベルを測定し、最終の追加免疫後に、抗ＯＶＡＩｇＧ、ＩｇＧ−アイソタイプ及びＩｇＡを測定した（図５ｄ及びｆ〜ｉ）。１回の追加免疫後は、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ及びｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）ワクチン接種マウスに抗ＯＶＡ全ＩｇＧ応答の増加が見られたが、ｐＯＶＡ＋ベクターが与えられたマウスには見られなかった（図５ｂ）。第２の追加免疫後は、抗ＯＶＡＩｇＧ−アイソタイプＩｇＧ１（図５ｆ）、ＩｇＧ２ｂ（図５ｇ）及びＩｇＧ２ｃ（図５ｈ）並びにＩｇＡ（図５ｉ）の増加を含めて、より高い抗ＯＶＡ全ＩｇＧ価が確認された。ｐＯＶＡ＋ベクターのみを受けたマウスでは、対応する抗体応答がわずかであるか、又は検出不能であった。

次いで、２１及び６１日目における末梢血液、並びに７４日目におけるマウスの脾臓における抗原特異的Ｔ細胞の存在についてリンパ球を試験した。２１日目のＰＢＭＣのＥＬＩＳＰＯＴ分析では、いずれのグループにおいても抗原特異的Ｔ細胞応答が検出できなかった（データは示さない）。しかしながら、６１日目の血液の分析により、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を受けたマウスには、Ｈ−２Ｋｂ制限ＯＶＡペプチドＳＩＩＮＦＥＫＬ（残基２５７〜２６４）に応答する循環ＩＦＮγ生成Ｔ細胞が存在するが、ｐＯＶＡ＋ベクターを受けたマウスには存在しないことが明らかになった（図５ｃ）。ＳＩＩＮＦＥＫＬ並びに全ＯＶＡに応答することができるＩＦＮγ生成Ｔ細胞の存在について、７４日目のマウスの脾臓を試験した（図５ｅ）。ＳＩＩＮＦＥＫＬ及び全ＯＶＡに応答して検出されたＩＦＮγのレベルは、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）でワクチン接種されたマウスの方が、ｐＯＶＡ＋Ｖｅｃｒｏｒのみを受けたマウスよりはるかに高かった。これらのマウス（ｐＯＶＡ＋ベクター）のＴ細胞は、対照ペプチド又はタンパク質に比べて、ペプチド又はポリペプチドに依然として応答しなかった。

可溶性抗原コードプラスミド（ｐＯＶＡ等）による未処理のマウスに対する遺伝子銃手法は、主に抗体生成に支配されるＴｈ２類似応答をもたらす^{３７、３８}。しかしながら、ｐＯＶＡと組み合わせてＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターの添加により誘発された免疫応答の分析により、いくつかの興味深い知見が明らかになった。ｐｆｌｉＣ−Ｔｍベクターをアジュバントとして使用した場合は、１回のＤＮＡ追加免疫化の後に抗ＯＶＡ抗体が現れたが、ｐＯＶＡ＋ベクターが与えられたグループには抗ＯＶＡ応答は見られなかった。ｐＯＶＡ＋ベクターが与えられたマウスにおいて抗ＯＶＡＩｇＧ応答が検出不能であるのは、免疫化の最中に使用されるプラスミドの量（０．５μｇ）が少なく、有意な追加免疫が不足していることに恐らく起因するものと考えていた。しかしながら、ｐＯＶＡ＋ベクターグループにおける第２の追加免疫後の抗ＯＶＡＩｇＧ応答の出現は、マウスがｐＯＶＡプラスミドを受けていたことを示唆する。ｐｆｉＣ−Ｔｍプラスミドが含まれていた場合に抗ＯＶＡＩｇＧ価が３回の記録にわたってより高くなっていたこと、及びＩｇＧアイソタイプの増加は、アジュバントとして作用するその能力を実証するものである。血清におけるＩｇＡの存在は、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現プラスミドが、粘膜抗体防御を導こうとするＤＮＡワクチン接種の有用な追加物でありうることを示唆する有望なサインでもある。

驚いたことには、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現プラスミドを我々のワクチン接種に含めると、抗体応答のみを導くことが証明されている抗原に対する細胞免疫応答を誘発することが可能であった^３８。排泄されたＯＶＡのレベルが低すぎるため、遺伝子銃ワクチン接種後にＣＴＬ応答を導くためにＭＨＣクラスＩ提示経路を充填することができないことが示された^３８。しかしながら、ここで、他の遺伝子銃研究と比較してより少量のプラスミド及びより少量の注射でワクチン接種を行ったが、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターを使用すると、抗原特異的ＭＨＣクラスＩ依存性Ｔ細胞応答を導くことが可能であった。

ＤＮＡの遺伝子銃送達は、ＤＮＡワクチンにおける免疫刺激性ＣｐＧモチーフに対して支配的なＴｈ２促進シグナルを誘発することが証明されている^３７。したがって、そのうちの１つのみが最適である^３９、ＦｌｉＣ−Ｔｍ ＯＲＦに見られる１３のＣｐＧモチーフ（データは示さない）が、この研究において見られたＴ細胞応答に寄与する可能性は低い。ＦｌｉＣがインビトロ（Ｔｈｌ）^３２において誘発することができる炎症因子のスペクトルは、インビボで局所的又は補充されたＡＰＣを「ライセンス」して、排泄されたＯＶＡに対するＣＤ８^＋Ｔ細胞応答を開始することができる方が可能性が高いといえる。実際、細胞外抗原に対するＣＤ８^＋Ｔ細胞応答を誘発する細菌生成物^{４０−４３}及びウィルス感染^４４の効果を調べる他のインビボシステムにおいて、交差感作が見られた。関与する分子メカニズムに関わらず、遺伝子銃ワクチン接種によるＦｌｉＣ−Ｔｍ発現プラスミドの送達は、対照の場合に比べてより低い免疫化の後のＤＮＡコード抗原に対する抗体応答の著しい増加ばかりでなく、ＭＨＣクラスＩ制限細胞免疫を誘発する応答の幅を拡大させる。これらの結果は、ＦｌｉＣ−Ｔｍは、インビボでＴｈ１類似応答を誘発すること、及びＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターと主要病原体抗原とを併用すると、効果的な保護的ワクチン接種を誘発しうることを示唆するものである。

ＦｌｉＣ−Ｔｍポリペプチド、及びそれを発現する細胞の運命を推定するのは興味深いことである。注射されたマウスの皮膚における好中球浸透物により生成されるセリンプロテアーゼによって、ＦｌｉＣ−Ｔｍを細胞の表面から開裂させることができる^４５。或いは、ＦｌｉＣ−Ｔｍを発現する細胞は、それらが誘発する局所的炎症のストレス効果、又は恐らくＴＬＲ５発現食細胞ＡＰＣによって除去されうる。いずれも場合も、ＦｌｉＣ−Ｔｍを発現するｐｆｌｉＣ−Ｔｍベクター又は細胞の受動的又は能動的な排除は、我々がここで確認した観察結果である炎症プロセスの消散をもたらすことになる。それは、見込まれる慢性炎症を回避する主要なステップでもある。

抗原性挿入を含む鞭毛を発現する細菌が実験システムにおいてワクチンとして使用され^４６、また、組換えフラジェリンが、ＣＤ４Ｔ細胞応答を誘発するためにペプチド抗原と併用された^３３。しかしながら、現在では、これらの手法の実用的な利用は、見込まれる汚染による、又は完全な弱毒か細菌の存在による分子調製物の不均質な特性により制限されている。哺乳類細胞がその表面にフラジェリンを発現することを可能にするＤＮＡ発現ベクターの使用は、調製の容易さ、望ましくない炎症促進分子による染色を除去する能力、及び安定性等のワクチン接種効果に対する特異的な利点を有する。

フラジェリンを、免疫応答を誘発する任意の抗原と共に、アジュバントとして使用することが可能である。当該抗原の例は、腫瘍又は病原体、タンパク質、ウィルス粒子の如き完全病原体、細菌、寄生虫、腫瘍細胞、又は細胞内病原体に感染した細胞からのＤＮＡ又はＲＮＡコード抗原である。それらに対して免疫が生成される抗原を発現する組織又は細胞にフラジェリンを導入することも可能である。当該組織の例は、腫瘍又は感染部位である。別法として、フラジェリンを使用して、接種部位に位置する細胞に対して毒性をもたらす局所的炎症を誘発することが可能である。この手法は、腫瘍に対して、且つ恐らくは自己免疫疾患に対して特に有用である。

局所的炎症を誘発するフラジェリンの能力を利用して、炎症又は慢性炎症に対する動物モデルを作成することも可能である。これは、組織特異的プロモータの下でフラジェリンを遺伝子組換え動物に導入することによってなされる。誘発性プロモータを使用することには、いくつかの利点がある。抗炎症薬、炎症経路の阻害剤、又は炎症に関与するメカニズムの研究を含む炎症の研究に遺伝子組換え動物モデルを用いることが可能である。

膜結合フラジェリン単量体を使用することによりいくつかの利点が提供され、例えば、フラジェリンが発現される組織に対する炎症応答を制限することにより、全身炎症応答、及び他の組織における組織損傷の如き悪影響のリスクを制限し、潜在的に例えば自己免疫をもたらすことが可能である。膜結合フラジェリンの発現は、腫瘍、又はそれに対する免疫が必要とされる任意の遺伝子を発現する組織の如き特定の組織に対する炎症応答を標的とする能力をも高める。それは、耐性発生、不十分な免疫応答、又はさらには毒性作用をもたらしうる、免疫系の過剰刺激のリスクを低減することもできる。

ほぼ同用量のプラスミド抗原核酸と共に、少なくとも０．５μｇ、例えば０．５から１０μｇ、好ましくは０．５から６μｇの用量のフラジェリンプラスミド核酸を含む遺伝子銃組成物でフラジェリンを投与することができる。アジュバント及び抗原核酸を、異なる又は同じプラスミドにおける同一の組成物における個別の組成物で、又は一緒に投与することができる。投与物を１日当たり１から３回投与することができる。

配列
ここに用いられる受入番号は、ＧｅｎＢａｎｋ＃１Ｄ１３６８９、及びＳ．チフィムリウムフェーズ１フラジェリンＦｌｉＣに対するスイス−プロットリンクＰ０６１７９とした。

最初がＦｌｉＣ ＴｍのＯＲＦで、次がＦｌｉＣ Ｔｍ（−ｇｌｙ）である。

商用ベクターｐＤｉｓｐｌａｙ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ））に見いだされるリーダー、ＨＡ標識、ｍｙｃ標識及びＰＤＧＦＲ膜貫通配列との遺伝子融合としてのｆｌｉＣ（Ｓ．チフィムリウム；ＧｅｎＢａｎｋ受入番号Ｄ１３６８９）からのＦｌｉＣ Ｔｍ想定完全ヌクレオチド及びアミノ酸配列。

機能的領域として確定された想定ポリペプチド。

下線領域：ｐＤｉｓｐｌａｙによってコードされた領域。

灰色領域：Ｉｇｋ−リーダー配列。

マゼンタ色領域：ＨＡ標識。

青色領域：ｆｌｉＣ。

緑色領域：ＰＤＧＦＲ−膜貫通領域。

商用ベクターｐＤｉｓｐｌａｙ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ））に見いだされるリーダー、ＨＡ標識、ｍｙｃ標識及びＰＤＧＦＲ膜貫通配列との遺伝子融合としてのｆｌｉＣ（Ｓ．チフィムリウム；ＧｅｎＢａｎｋ受入番号Ｄ１３６８９）からのＦｌｉＣ Ｔｍ（−ｇｌｙ）想定完全ヌクレオチド及びアミノ酸配列。ｆｌｉＣ ＯＲＦが変更された結果、Ｄ１３６８９に対して６つの想定アミノ酸が異なっている。

下線領域：ｐＤｉｓｐｌａｙによってコードされた領域。
灰色領域：Ｉｇｋ−リーダー配列。

マゼンタ領域：ＨＡ標識。

青色領域：ｆｌｉＣ。

緑色領域：ＰＤＧＦＲ膜貫通領域。

赤色領域残査：ｆｌｉＣから変更された配列（括弧で示されている）。

図の後にベクターマップを示す。

開示された特定の実施形態に関して本発明を説明するが、具体的に記載されていないが、添付の請求項の範囲に含まれる他の実施形態、変更又は組合せを当業者なら理解することができる。

本明細書に引用されているすべての参考文献は、そのすべてが参照により本明細書に組み込まれている。

本明細書に用いられている「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」という表現は、記載の項目を含むが、それらに限定されないものと理解されるべきである。

次に、以下の非限定的な実施例により本発明を説明する。

哺乳類細胞の表面にフラジェリンを発現することが可能である
細胞培養及び細胞系統
５から１０％の熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＣＳ）、２ｍＭのＬ−グルタミン（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））、１００Ｕ／ｍｌのペニシリン及び１００μｇ／ｍｌストレプトマイシン（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））、５０μＭのベータルメルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ（米国ミズーリ州Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ））及び１００ｍＭのＨＥＰＥＳ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））が添加されたＲＰＭＩ１６４０（２９３ＦＴ）又はＤＭＥＭ（ＨｅＬａ）培地（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））中ですべての細胞系統を成長させた。２９３ＦＴ細胞をＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎから入手し、実験に使用しないときは、５００μｇ／ｍｌのジェネチシン（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））が添加された上記培地中で成長させた。ＨｅＬａをアメリカンタイプカルチャコレクションから入手した。

ｆｌｉＣ及び発現ベクターアセンブリーの複製
サルモネラエンテリカ血清型チフィムリウム（病原菌株ＡＴＣＣ１４０２８）の一昼夜培養物をゲノムＤＮＡ源として使用して、ｆｌｉＣ（フェーズ−１フラジェリン、セロタイプＨｉ）を複製した。３７℃にてＬＢ中で成長させた５０μｌの液体の一昼夜培養物を５０μｌのＴＥと混合し、９５℃で１５分間加熱し、マイクロ遠心分離にて高速で遠心分離させた。２μｌの上清を熱循環させた。１ｍＭのｄＮＴＰ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））、２μＭのＭｇＣｌ、１ＸＰＣＲ緩衝剤（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））、２Ｕ ＴＡＱ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（米国メリーランド州Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ））、及び全体積が５０μｌの各プライマー２０μＭずつの存在下でＰＣＲを実施した。Ｓ．チフィムリウムＤＮＡを９６℃／分、５４℃／分、７２℃／１．５分で３０分間にわたって加温循環させた。使用したｆｌｉＣプライマー対は、ＤＮＡ制限酵素ＢｇｉＬＬ及びＳｍａＩを使用して認識及び切断が可能な塩基対をコードする配列を含むキメラプライマーであった。正方向プライマー（ｆｌｉＣ５’−ＢｇｌＩＩ）は、５’−ＧＧＡＡＧＡＴＣＴＡＴＧＧＣＡＣＡＡＧＴＣＡＴＴＡＡＴＡＣＡＡＡＣ−３’であり、逆方向プライマー（ｆｌｉＣ３’−ＳｍａＩ）は、５’−ＴＣＴＣＣＣＧＧＧＧＴＡＴＴＡＡＣＧＣＡＧＴＡＡＡＧＡＧＡＧＧＡＣ−３’であった。ｐＣＲ２．１（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ））を使用して、増幅ＤＮＡ生成物を捕捉し、適切な長さの挿入断片を含むプラスミドをＤＮＡ配列させた。捕捉されたｆｌｉＣ ＯＲＦを含むプラスミドをＢｇｌＩＩ、ＳｍａＩで消化し、得られた挿入断片を、やはりＢｇｌＩＩ及びＳｍａＩで消化された哺乳類表面表示プラスミドｐＤｉｓｐｌａｙ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ））に挿入した。製造元（Ｓｔｒａｔａｅｇｎｅ（米国カリフォルニア州Ｌａ Ｊｏｌｌａ））の説明通りにＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ（商標）部位誘導変異誘発キットを使用して、得られたプラスミドを部位誘導変異誘発させて、天然終止コドン（ｎｔ １７０６〜１７０８）を除去すると共に、終止コドンとｐＤｉｓｐｌａｙにコードされたものとの間の残基を改質する（接点の上方の残基は［ｆｌｉＣコードＬＳＬＬＲ］−ＡＶＰ−［ｐＤｉｓｐｌａｙコードＲＤＰＲＬ］）得られたプラスミドをｐＤｉｓｐ／ｆｌｉＣ−Ｔｍと命名した。ＡＡ １９、１０１、２００、３４６、４４６及び４６５におけるＮｅｔＮＧｌｙｃ １．０Ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎ Ｓｅｒｖｅｒ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｂｓ．ｄｔｕ．ｄｋ／ｓｅｒｖｉｃｅｓ／ＮｅｔＮＧｌｙｃ／）によって予測されたＮ結合繰り擦るか部位を破壊するように設計された単一アミノ酸（ＡＡ）変異を導入するために、ｐＤｉｓｐ／ｆｌｉＣ−Ｔｍを変化させた。ｆｌｉＣコード領域においてなされた変化を表Ｉに列記する。

ｐＤｉｓｐ／ｆｌｉＣ−ＴｍにおけるｆｌｉＣ遺伝子の部位誘導変異誘発を実施して、所望のＡＡ変化（ＤＮＡ配列によって確認される）をもたらした。得られたプラスミドをｐＤｉｓｐ／ｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）と命名した。ＥｃｏＲＩ／ＸｈｏＩ断片上に存在するｆｌｉＣ−Ｔｍ及びｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を除去し、さらなる試験に向けてｐｃＤＮＡ３．１／ゼオ（＋）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ））に挿入した。ＯＶＡのオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）を含むＨｉｎｄＩＩＩ断片をｐＢｌｕｅＲＩＰ／Ｏｖａ（Ｃ．Ｍ．Ｊｏｎｅｓからの寄付）から除去し、ｐｃＤＮＡ３．１／ゼオ（＋）（ｐｃＤＮＡ３．１／ＯＶＡ）に複製したが、それはｐＯＶＡと呼ばれる。

細胞形質移入、タンパク質発現、ＳＤＳ−ＰＡＧ及びウェスタンブロッティング
製造元の説明書に従って、ＧｅｎｅＰＯＲＴＥＲ ２形質移入試薬（Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ（米国カリフォルニア州Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ））を使用して、２９３ＦＴ細胞における一時的形質移入を行った。ＦｕＧＥＮＥ（商標）６（Ｒｏｃｈｅ（米国インジアナ州Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ））を使用して、ＨｅＬａ細胞における一時的形質移入を行った。形質移入に使用するＤＮＡは、Ｑｉａｇｅｎ ＥｎｄｏＦｒｅｅ Ｐｌａｓｉｍｉｄ Ｍａｘｉ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｖａｌｅｎｃｉａ））を使用して調製された。すべてのインビトロ実験に使用する２９３ＦＴ及びＨｅＬａ細胞にそれぞれ２μｇ及び３μｇのＤＮＡを形質移入した。形質移入から２日後に、非接着性細胞を除去し、接着性細胞を穏やかな反復ピペット採取によって回収し、ＰＢＳで洗浄し、溶解させた。細胞質タンパク質を遠心分離で単離し、ＢＣＡタンパク質検定キット（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ（米国イリノイ州Ｒｏｃｋｆｏｒｄ））を使用して定量した後に、１５μｇのタンパク質を１０％ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル上で分離し、説明通りにウェスタンブロッティングにより分析した^５０。抗ＨＡ標識抗体ＨＡ１．１（１：１０００；Ｃｏｖａｎｃｅ（米国バージニア州Ｃｕｍｂｅｒｌａｎｄ）を使用することによってＨＡ標識タンパク質を検出し、ヒツジ抗マウスＩｇＧ抗体（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ（米国イリノイ州Ｒｏｃｋｆｏｒｄ））及びルネサンスケミルミネッセンス試薬（ＮＥＮ（商標）Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ Ｉｎｃ．（米国マサチューセッツ州Ｂｏｓｔｏｎ））を使用してタンパク質−抗体複合体を視覚化した。また、Ｓ．チフィムリウムのセロタイプ（抗Ｈｉ、ここでは抗ＦｌｉＣと呼ぶ）（Ｓｔａｔｅ Ｓｅｒｕｍ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ（デンマークＣｏｐｅｎｈａｇｅｎ））を臨床的に検出するのに使用されるポリクローナルウサギ抗血清（１：５００）によるウェスタンブロッティングをタンパク質に対して施し、ＨＲＰ−結合ブタ抗ウサギＩｇＧ（１：１０００；ＤＡＫＯ（デンマークＧｌｏｓｔｒｕｐ））を使用してタンパク質−抗体複合体を視覚化した後に、増強化学発光検出を行った。

ＦｌｉＣの細胞表面発現
発現構築体が形質移入された細胞は、その表面にＦｌｉＣ−Ｔｍポリペプチドを発現させるかどうかを判断するために、細胞を抗ＦｌｉＣ及び抗ＨＡ抗体で染色された後に、ＦＡＣＳ（登録商標）分析を行った。２９３ＦＴ及びＨｅＬａ細胞の細胞表面に発現したＦｌｉＣ−Ｔｍを、ＨＡ１．１（１：１００）を使用し、次いでＦＩＴＣ結合ラット抗マウスＩＧＧ１／ｋ（１：１００；ＰｈａｒＭｉｎｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｓａｎ Ｊｏｓｅ））又はポリクローナルウサギ抗ＦｌｉＣ（１：１００；Ｓｔａｔｅ Ｓｅｒｕｍ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ（デンマークＣｏｐｅｎｈａｇｅｎ））を使用し、次いでＦＩＴＣ結合ブタ抗ウサギＩｇ（１：１００；ＤＡＫＯ（デンマークＧｌｏｓｔｒｕｐ））を使用して検出した。簡潔に、細胞を再懸濁させ、氷上で３０分間染色し、４℃にて１％ＦＣＳを含むＰＢＳで洗浄した。必要に応じて細胞を第２の抗体で染色した。４色ＦＡＣＳｃａｎ（商標）流動細胞計（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｃｙｔｏｍｅｔｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ（米国カリフォルニア州Ｓａｎ Ｊｏｓｅ））を使用して分析を行うまで、細胞を氷上に維持した。ＣｅｌｌＱｕｅｓｔプログラム（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ（米国カリフォルニア州Ｓａｎ Ｊｏｓｅ））を使用してデータを処理した。ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｕＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が形質移入された２９３ＦＴ細胞培養物は、抗ＨＡエピトープ抗体（図２）で検出可能であるが、アイソタイプ対照抗体で検出可能でない細胞を含んでいた（データは示さない）。モック形質移入細胞（データは示さない）、又は空ベクターが形質移入された細胞（図２）は、背景染色を与えた。ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が形質移入された細胞は、抗ＦｌｉＣ抗体で検出可能なタンパク質をも発現した（図２）。ポリクローナル抗ＦｌｉＣ抗体を使用して、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）に対して染色陽性の細胞の割合を検出した。また、ＨｅＬａ細胞にｐｆｌｉＣ−Ｔｍ、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）又は空ベクターを形質移入し、抗ＨＡ及び抗ＦｌｉＣ抗体を使用して同様の表面発現を観察した。

フラジェリン発現細胞は単球を活性化する
上述したように、形質移入細胞の表面にフラジェリンを発現することが可能である。フラジェリンを発現する細胞を使用して、ヒト単球を活性化した。アレルギーのないヒトボランティアから単球活性化ヒトＰＢＭＣが得られた。末梢血液を健康なボランティアから採取し、Ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（Ａｘｉｓ−Ｓｈｉｅｌｄ（ノルウェーＯｓｌｏ））に対する遠心分離により軟膜調製物からＰＢＭＣを単離した。低速遠心分離を用いて、ＰＢＭＣをＰＢＳにより３回洗浄して、血小板を除去し、２ｍＭのＬ−グルタミンが補充されたＲＰＭＩ１６４０培地に再懸濁した。５×１０^６ＰＢＭＣ／ｍｌ／ウェルを２４ウェルプレート（Ｆａｌｃｏｎ）に仕込み、次いで３７℃，５％ＣＯ_２の雰囲気で２時間インキュベートした。緩やかな洗浄により非接着性細胞を除去し、５％のＦＣＳ、１００ｍＭのＨＥＰＥＳ、２ｍＭのＬ−グルタミン、ペニシリン／ストレプトマイシン及び５０μＭのベータメルカプトエタノールを含む、ＲＰＭＩ１６４０を１ｍｌ残りの細胞に添加し、一晩インキュベートした。２９３ＦＴ又はＨｅＬａ細胞を上記のように形質移入し、２日後に接着性細胞を除去し、接着性細胞を穏やかなピペット採取で回収し、トリパンブルーで染色し、計数した。その後、接着性強化ＰＢＭＣ（単球）をＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ（米国ミズーリ州Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ））及び組換えＦｌｉＣポリペプチド（Ａｌｅｘｉｓ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ（ドイツＧｒｕｎｂｅｒｇ））で活性化させ、或いは５×１０^４形質移入２９３ＦＴ又は形質移入ＨｅＬａ細胞と混合し、１８時間インキュベートさせた。次いで、全細胞を染色し、フローサイトメトリーを分析した。ヒト単球をＦＩＴＣ結合マウスＩｇＧ１、抗ヒトＣＤ８０（１：１００）、ＰＥ結合マウスＩｇＧ１、抗ＣＤ２５（１：１００）、ＰｅｒＣｐ結合マウスＩｇＧ２ａ抗ＨＬＡ−ＤＲ（１：１００；すべてＰｈａｒＭｉｎｇｅｎ（米国カリフォルニア州Ｓａｎ Ｊｏｓｅ）から入手）により氷上で３０分間染色し、洗浄した。すべての細胞を染色し、ＦＡＣＳｃａｎ（商標）により分析した。調べた単球ＣＤ８０及びＣＤ２５レベルをＨＬＡ−ＤＲ陽性群について制御した。

細胞培養上清及びマウス血清についてＥＬＩＳＡを実施した。サイトカインに対する試験を行うために、刺激後に単球培養物から上清を回収し、−２０℃で冷凍した。製造元の説明書（Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ（米国ミネソタ州Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ））に従って、Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ（登録商標）免疫検定を用いて、資料を２回ずつ試験して、ＴＮＦαの存在を調べた。

形質移入細胞の培養物をＰＢＳで洗浄し、次いで単球と混合し、１８時間インキュベートし、分析して、ＴＮＦα生成、及びＣＤ８０及びＣＤ２５の表面発現の変化を調べた。ＦｌｉＣ−Ｔｍ又はＦｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を発現する２９３ＦＴ細胞の培養物は、対照と比較して、単球にＣＤ８０及びＣＤ２５の細胞表面発現を上方制御させることが可能であった（図３ａ）。誘発された変化は、ＬＰＳ又は組換えＦｌｉＣポリペプチドで処理した後に見られたものと類似していた（図３ｃ）。ＦｌｉＣ−Ｔｍ又はＦｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）発現細胞もＴＮＦα生成を誘発することが可能であった（図３ｄ）。また、形質移入２９３ＦＴ細胞の培養物の上清も単球上のＣＤ８０及びＣＤ２５レベルを上方制御することが可能であった（データは示さない）。サルモネラ誘導ＦｌｉＣに応答するＮＦ−ｋＢ活性化（ＴＬＲ活性化を表す）は、２９３細胞で生じるが、ＨｅＬａ細胞^３４では生じないことが報告されており、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現構築体による２９３ＦＴ細胞の形質移入は、単球を活性化することができる２９３ＦＴ細胞からの不確定因子の生成をもたらす可能性を高めるものである。この仮説を試験するために、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が形質移入されたＨｅＬａ細胞を使用して、形質移入及び細胞混合実験をも実施した。単球と混合されたこれらの細胞もＦｌｉＣ−Ｔｍ又はＦｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を発現する２９３ＦＴ細胞と類似した単球活性化を誘発することが可能であったが、空ベクターが形質移入された細胞はそうではなかった（図３ｂ及びｄ）。形質移入ＨｅＬａ細胞の培養物の上清も単球を活性化させた（データは示さない）。２９３ＦＴ及びＨｅＬａ細胞は、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ２５及び抗ＨＬＡ−ＤＲによる染色に対して陰性であった（データは示さない）。

フラジェリンによる遺伝子ワクチン接種は局所的炎症をもたらす
Ｃ５７ＢＬ／６ＪマウスをＣｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ（ドイツＳｕｌｚｆｅｌｄ）から入手し、スウェーデン感染病管理研究所（Ｓｔｏｃｋｈｏｌｍ）にある動物施設において、特定の病原体が存在しない標準的な条件下で飼育した。すべての手順は、研究所及び国家のガイドラインに基づいて実施された。６から１０週齢のマウスの集団を実験に使用した。製造元（ＢｉｏＲａｄ（米国カリフォルニア州Ｈｅｒｃｕｌｅｓ）による説明通りにＨｅｌｉｏｓ遺伝子銃システムを使用してマウスにワクチン接種した。簡潔に、０．５ｍｇの金粒子に０．５μｇの各プラスミドＤＮＡを塗布し、それを用いて送達管を被覆した。ワクチン接種に使用するＤＮＡは、Ｑｕｉａｇｅｎ ＥｎｄｏＦｒｅｅ Ｐｌａｓｍｉｄ Ｍａｘｉ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して調製された。ＤＮＡ１ｍｇ当たりのエンドトキシンは以下の通りであった。ｐｃＤＮＡ３．１／ＯＶＡ（≦５．５×１０^−４ＥＵ／μｇＤＮＡ）、ｐｃＤＮＡ３．１／ゼオ（＋）（≦３．６２５×１０^−５ＥＵ／μｇＤＮＡ）、ｐｃＤＮＡ３．１／ｆｌｉＣ−Ｔｍ（≦２．９×１０^−５ＥＵ／μｇＤＮＡ）及びｐｃＤＮＡ３．１／ｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）（３．２５×１０^−５ＥＵ／μｇＤＮＡ）。製造元の説明書（Ｂｉｏ Ｗｈｉｔｔａｋｅｒ Ｉｎｃ．（米国メリーランド州Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ）に従ってＬＡＬキットを使用して、エンドトキシン単位を求めた。ビーズ被覆送達管からＴＥによりプラスミドを溶出させた後に、プラスミド変換、単離、及び細菌コロニーから単離されたプラスミドのＤＮＡ制限酵素分析を行うことによって、金ビーズへのＤＮＡの結合を制御した（データは示さない）。マウスの腹部の皮膚を剥ぎ、遺伝子銃のスペーサを腹部に対して直接保持し、５００ｐｓｉのヘリウム圧力で装置を放電させた。ｐＯｖＡ＋ｐｃＤＮＡ３．１／ゼオ（＋）、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が注射された６匹のマウスのグループの注射部位を０、１、２、３及び７日目に観察した。６匹のマウスのこれら３つのグループの観察結果に基づいて、７匹のマウスの３つのグループに同じＤＮＡ調製物を注射し、各グループの１匹のマウスを０及び７日目に屠殺した。各グループの２匹のマウスを注射後１、２及び３日目に屠殺した。注射されたマウスのこの第２のシリーズから単離された試料に対して病理組織学的検査を行った。生検試料を採取する前に、デジタルカメラ（４．０メガ画素）を使用してマウスを撮影し、次いで注射部位の腹壁を有する皮膚を回収した。試料を４％の中性緩衝ホルマリン溶液に一晩保存した後に、７０％ＥｔＯＨに浸漬した。注射部位に隣接した領域を含むように試料をトリミングし、パラフィンに埋め込み、分割し、標準プロトコルに従ってヘモリシン及びエオシン（Ｈ＆Ｅ）で染色した。染色試料を光学顕微鏡で分析し、１０、２０及び４０倍の倍率で撮影した。注射部位の総体的形態は、送達されたプラスミドの種類に対して、導かれた応答に明確な差があることを明らかにしていた（図４ａ）。プラスミドｐＯＶＡ＋ベクターが注射されたマウスは、主に、恐らくは金粒子の付着による黄褐色の色合いによって特徴付けられるわずかな局所的反応を注射後２日目に示した。対照的に、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が注射されたマウスは、注射部位の腫れ及び中心的潰瘍によって特徴付けられる激しいが、局所的な組織反応を生じていた。注射後７日目に、マウスのすべてのグループにおいて皮膚が総体的に正常になっていた。

注射部位の組織学的分析により、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）が注射されたマウスと比較して、ｐＯＶＡ＋ベクターが注射されたマウスの間には類似性のみならず大きな差があることが明らかになった。注射後すぐに屠殺されたマウスでは、表皮又は表皮下真皮に金粒子の分布が認められた（図４ｂ、ｃ及びｄ）。注射後１日及び２日目（図４ｂ〜４ｄ）には、ｐＯＶＡ＋ベクターが与えられたマウスは、表皮増殖が起こり、角層下膿疱形成が起こり、好中球性顆粒球（ＮＧ）の浸透により真皮の細胞密度が増加し、炎症反応が皮下脂肪に伸びるが、それを含まない。３日目には、炎症が消散したが、表面壊死性表皮層及び膿疱が注射部位から剥がれた。対照的に、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現プラスミドのいずれかと組み合わせたｐＯＶＡの注射は、皮下組織をも含み、皮筋の表面部に伸び、それを含むより急速で重度の炎症反応をもたらした。１日目は、表皮壊死が中央の注射部で観察され、フィブリンで覆われた裸出領域に顆粒球が密に浸透した。真皮及び皮下組織において、炎症反応は、皮下脂肪組織炎をもたらし、好中球性顆粒球が密に浸透していた。２日目（図４ｂ〜４ｄ）には、同様の観察がなされたが、加えて、充血が増加し、血管系に縁形成好中球が存在していた。３日目には、注射部位の側部が表皮増殖を示し、中央領域には、依然として特徴的な表皮膿疱形成があった。皮膚部における急性炎症反応は続いたが、幾分低減された。充血血管は目立たなくなっており、初期の癒傷の形跡があった。試験されたすべての動物において、剥離表皮領域に金粒子の凝集物が存在し、真皮にはビーズ凝集が見られた。７日目まで（図４）には、すべてのグループにおいて、顆粒層肥厚及び角膜増殖による表皮増殖の形跡が依然として存在したが、炎症反応は、ほとんど消散し、残留する金ビーズの多くは、皮膚凝集物内で凝集しているのが認められた。傷形成は、中央注射部位に見られたが、側部には見られなかった。

遺伝子アジュバントとしてのフラジェリンの使用は細胞及び体液免疫応答を高める
ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターがＤＮＡコード可溶性抗原（ＯＶＡ）に対する適応免疫応答を増強できるかどうかを判断するために、遺伝子銃法を用いて、マウスにワクチン接種した。図５ａに例示されている免疫化スケジュールに従って、上記のようにｐＯＶＡ＋ベクター、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）でマウスを免疫化した。指定日に血液を採取し、抗ＯＶＡ抗体の存在について血清を試験した。

マウス抗ＯＶＡ抗体の存在を以下のようにして検出した。９６ウェルＥＬＩＳＡプレート（Ｃｏｓｔａｒ検定プレート；Ｃｏｓｔａｒ（米国ニューヨーク州Ｃｏｒｎｉｎｇ））に、ＰＢＳに溶解させた１０μｇ／ｍｌの精製チキンＯＶＡ（Ｓｉｇｍａ（米国ミズーリ州Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ）を４℃で一晩塗布した。プレートを２回洗浄し（ＰＢＳ／０．１％、Ｔｗｅｅｎ−２０）、室温にて１時間ＰＢＳ／１％ＦＣＳでブロックした。血清試料を、すべてのＩｇＧ試験については１：１０００、ＩｇＡ試験については１：１０から開始して、ＰＢＳ／１％ＦＣＳで１：２に希釈し、２回ずつＯＶＡ塗布プレートに添加した後に、４℃で一晩インキュベートした。全ての希釈物は消滅まで滴定した。ウェルを３回洗浄し、ＨＲＰ−ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ）（１：５０００；Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、ＨＲＰ−ウサギ抗マウスＩｇＧ１（１：３，０００；Ｃａｌｔａｇ（米国カリフォルニア州Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ））、ＨＲＰ−ウサギ抗マウスＩｇＧ２ｂ（１：２０００；Ｃａｌｔａｇ（米国カリフォルニア州Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ））、ＨＲＰ−ウサギ抗マウスＩｇＧ２ｃ（１：４０００；Ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ（米国アラバマ州Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ））、又はＨＲＰ−ヤギ抗マウスＩｇＡ（１：１０００；Ｓｉｇｍａ（米国ミズーリ州Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ））をウェルに添加し、室温にて２時間インキュベートした。ウェルを５回洗浄し、１００μｌの増強Ｋ−Ｂｌｕｅ（登録商標）ＴＭＢ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（ＨＲＰカラー基体溶液；Ｎｅｏｇｅｎ Ｃｏ．（米国ケンタッキー州Ｌｅｘｉｎｇｔｏｎ）を添加した。同じ二次検出物を有するプレートを同じ時間にわたってインキュベートし、１ＭのＨＣｌを添加することによって基体反応を停止した。Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ Ｇｅｎｅｓｉｓ ＥＬＩＳＡプレートリーダー（Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ（スウェーデンＳｔｏｃｋｈｏｌｍ））を使用してプレートを分析した。

２１日目は、抗ＯＶＡＩｇＧ応答は検出不能であった（データは示さない）。６１日目に、抗ＯＶＡＩｇＧレベルを測定し、最終の追加免疫後に、抗ＯＶＡＩｇＧ、ＩｇＧ−アイソタイプ及びＩｇＡを測定した（図５ｄ及びｆ〜ｉ）。１回の追加免疫後は、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ及びｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）ワクチン接種マウスに抗ＯＶＡ全ＩｇＧ応答の増加が見られたが、ｐＯＶＡ＋ベクターが与えられたマウスには見られなかった（図５ｂ）。第２の追加免疫後は、抗ＯＶＡＩｇＧ−アイソタイプＩｇＧ１（図５ｆ）、ＩｇＧ２ｂ（図５ｇ）及びＩｇＧ２ｃ（図５ｈ）並びにＩｇＡ（図５ｉ）の増加を含めて、より高い抗ＯＶＡ全ＩｇＧ価が確認された。ｐＯＶＡ＋ベクターのみを受けたマウスでは、対応する抗体応答がわずかであるか、又は検出不能であった。

各グループのマウスからマウスＰＢＭＣを確保し、商用ＩＦＮ−γキット（ＭａｂＴｅｃｈ（スウェーデンＳｔｏｃｋｈｏｌｍ））を使用して、実質的に記載されている通りに^５１、一次免疫化後２１日目、及びＩＦＮ−γＥＬＩＳＰＯＴによる追加免疫化後３１日目に分析した。以下に記載される抗原を使用して、ＰＢＭＣにより抗原再刺激を２回ずつ行った。商用ＩＦＮ−γＥＬＩＳＰＯＴシステム（ＭａｂＴｅｃｈ（スウェーデンＳｔｏｃｋｈｏｌｍ））を使用して、脾細胞分析も行った。簡潔に、フィコール勾配（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒａｍｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ（米国ニュージャージ州Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ））を用いて、ＰＢＭＣ又は脾細胞を分析し、９６ウェルＥＬＩＳＰＯＴプレート（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ ＭＡＩＰＮ４５１０）に２０００００個／ウェルずつ３回に分けて移した。全ＯＶＡ（５μＭ、Ｓｉｇｍａ（米国ミズーリ州Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ））、Ｈ−２Ｋ^ｂＯＶＡ誘導ペプチドＳＩＩＮＦＥＫＬ（５μＭ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｈｙｂｒｉｄ（ドイツＤｒｅｉｅｉｃｈ））、ＨＩＶ−１外皮タンパク質ｒｇｐ１６０（１μｇ毎ウェル（ＭｉｃｒｏＧｅｎｅＳｙｓ［現Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉｅｎｃｅ（米国コネチカット州Ｍｅｒｉｄｅｎ）］））及びＨ−２Ｋ^ｂ免疫優性ＬＣＭＶペプチドＧＰ３３（ＫＡＶＹＮＦＡＴＭ）（５μＭ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｈｙｂｒｉｄ（ドイツＤｒｅｉｅｉｃｈ））を使用してインビトロ再刺激を行った。細胞の反応性をコンカナバリンＡで確認した。ＡＩＤ ＥＬＩＳＰＯＴリーダー（Ａｕｔｏｉｍｍｕｎ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｋａ（ドイツＳｔｒａｓｓｂｅｒｇ））によって、２４時間後にスポット形成細胞（ＳＦＣ）を定量した。Ｅｘｃｅｌソフトウェアによりスチューデントｔ検定を用いて統計分析を実施した。

次いで、２１及び６１日目における末梢血液、並びに７４日目におけるマウスの脾臓における抗原特異的Ｔ細胞の存在についてリンパ球を試験した。２１日目のＰＢＭＣのＥＬＩＳＰＯＴ分析では、いずれのグループにおいても抗原特異的Ｔ細胞応答が検出できなかった（データは示さない）。しかしながら、６１日目の血液の分析により、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）を受けたマウスには、Ｈ−２Ｋ^ｂ制限ＯＶＡペプチドＳＩＩＮＦＥＫＬ（残基２５７〜２６４）に応答する循環ＩＦＮγ生成Ｔ細胞が存在するが、ｐＯＶＡ＋ベクターを受けたマウスには存在しないことが明らかになった（図５ｃ）。ＳＩＩＮＦＥＫＬ並びに全ＯＶＡに応答することができるＩＦＮγ生成Ｔ細胞の存在について、７４日目のマウスの脾臓を試験した（図５ｅ）。ＳＩＩＮＦＥＫＬ及び全ＯＶＡに応答して検出されたＩＦＮγのレベルは、ｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ又はｐＯＶＡ＋ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）でワクチン接種されたマウスの方が、ｐＯＶＡ＋Ｖｅｃｒｏｒのみを受けたマウスよりはるかに高かった。これらのマウス（ｐＯＶＡ＋ベクター）のＴ細胞は、対照ペプチド又はタンパク質に比べて、ペプチド又はポリペプチドに依然として応答しなかった。

キメラポリペプチド、ポリペプチド発現、及び部位誘導変異誘発によるＦｌｉＣ−Ｔｍグリコシル化の低減の概略図である。（ａ）ｆｌｉＣ−Ｔｍによってコードされた想定ポリペプチドの一次構造。ｋはＥＲ転位に対する真核リーダーシグナル配列を示し、ＨＡはＨＡエピトープを示し、ｆｌｉＣは完全フラジェリンＯＲＦを示し、ＰＤＧＦ−Ｔｍは血小板誘導成長因子受容体膜貫通領域を示す。細胞質細胞可溶化物で検出された組換え融合タンパク質が示されている。（ｂ）抗ＨＡエピトープ抗体、又は（ｃ）抗ＦｌｉＣ抗体を使用して検出された指定発現構築体（ｐｃＤＮＡ３．１／Ｚｅｏ（＋）−ベース）が形質移入された２９３ＦＴ細胞からの細胞質抽出物の変性ＳＤＳ−ＰＡＧＥ。Ｓ．チフィムリウムの渦巻状一昼夜培養物からの培養上清を抗ＦｌｉＣ抗体に対する陽性対照として使用した。（ｄ）組換え融合タンパク質の検出、及び細胞質抽出物におけるそれらのグリコシル化。ＦｌｉＣ−Ｔｍの無変化種のグリコシル化、Ｅｎｄｏ Ｈを使用したＦｌｉＣ−Ｔｍの脱グリコシル化、及び部位誘導変異誘発後のＦｌｉＣ−Ｔｍ（ＦｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ））のグリコシル化低減種の生成を示すウェスタンブロット。 ＦｌｉＣ−Ｔｍの細胞表面発現を示す。 一時的に形質移入された細胞に対して、抗ＨＡエピトープ、抗ＦｌｉＣ又はアイソタイプ制御抗体（示さない）を使用したフローサイトメトリーを行った。２９３ＦＴ形質移入体（抗ＨＡエピトープ又は抗ＦｌｉＣ染色）；ｐｃＤＮＡ３．１／ゼオシン（＋）（ベクター）、充填ヒストグラム；ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ、（−）；ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）（・・・・・）。陽性細胞の割合が、マーカ領域の上方に示されている。抗ＨＡエピトープ抗体で染色された２９３ＦＴ細胞は、６つの独立した実験、及び３つの独立した実験による抗ＦｌｉＣを代表する。 ＦｌｉＣ−Ｔｍを発現する細胞によるヒト単球の活性化を示す。 ２９３ＦＴ又はＨｅＬａ細胞を示されている通りに形質移入した。２日後、上清及び細胞を回収し、細胞を計数した。上清又は生きた細胞を静止状態の単球と混合し、１８時間後に、全細胞及び培養上清を回収した。全細胞をＣＤ８０及びＣＤ２５について染色し、ＴＮＦαの存在について上清を試験した。２９３ＦＴ細胞（ａ）、ＨｅＬａ細胞（ｂ）、又は示された濃度のＬＰＳ若しくは組換えＦｌｉＣポリペプチド（ｃ）と共にインキュベートされた単球によるＣＤ８０、ＣＤ２５発現をフローサイトメトリーにより測定した。単球を、ｐｃＤＮＡ３．１／ゼオ（＋）（ベクター）（充填ヒストグラム）；ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−）、ｐｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）（・・・・・）が形質移入された２９３ＦＴ又はＨｅＬａ細胞と混合した。陽性細胞の割合は、マーカ領域の上方に示されている。細胞混合の実験及びシミュレーションの単球による排泄ＴＮＦα発現をＥＬＩＳＡ（ｄ）による生成について検定した。２９３ＦＴ及びＨｅＬａ細胞ＣＤ８０及びＣＤ２５データは、独立したＰＢＭＣ供与体を使用する４つの独立した実験を代表する。ＴＮＦα発現は、２９３ＦＴ又はＨｅＬａ細胞を用いる２つの独立した実験を代表する。プラスミド形質移入又はモック形質移入２９３ＦＴ若しくはＨｅＬａ細胞の培養物から直接採取された上清にはＴＮＦα生成が認められなかった（データは示さない）。 ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターが急性の局所的炎症を誘発することを示す。 指定されたＤＮＡ（プラスミド毎に０．５μｇ）を一度注射してから０、２及び７日後における、注射部位の総体的形態、及びＨ＆Ｅ染色後の部位の組織学的分析を示す。注射部位、及びその近傍の観察図（ａ）。腹膜筋肉から上皮層（ｂ）までの同一皮膚試料の拡大図（ｂ）。上方真皮及び上皮層における変化に集中した同一部分の拡大図（ｃ）。カラム内の同一部分からの陰影領域を表す拡大図からのより小さい採取部分（ｄ）。１日目及び３日目からのデータは、補足図１としてオンラインで入手可能である。注射部位に隣接する分析領域は、正常な皮膚との違いがないことを示していた（データは示さない）。 ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現は、ＤＮＡワクチン接種を強化することを示す。（ａ）免疫化及び試料単離タイムライン。（ｂ）感作から６１日後における抗ＯＶＡ全ＩｇＧ応答。（ｃ）６１日目におけるＭＨＣクラスＩ制限ＯＶＡペプチドＳＩＩＮＦＥＫＬに対する蓄積末梢血液Ｔ細胞応答のＥＬＩＳＰＯＴ分析。（ｄ）感作から７４日後における抗ＯＶＡ全ＩｇＧ応答。（ｅ）ＳＩＩＮＦＥＫＬ及び全ＯＶＡポリペプチドに対する脾臓Ｔ細胞応答のＥＬＩＳＰＯＴ分析。感作後７４日後における（ｆ）抗ＯＶＡ ＩｇＧ１、（ｇ）Ｉｇ２ｂ、（ｈ）ＩｇＧ２ｃ及び（ｉ）ＩｇＡ応答。全領域からＩｇＡ応答が認められる。マウスの血清試料におけるＯＶＡ特異的抗体の濃度は、免疫前血清試料の値の平均＋３つの標準偏差（ＩｇＧ）又は２つの標準偏差（ＩｇＡ）（検定に対する決定切捨値）以上の光学密度を与える試料の最終希釈度の逆数で表される。切捨値以上の吸光度は、正数であると見なされた。 ＥＬＩＳＰＯＴデータは、抗原刺激細胞から非刺激細胞を引いた算定幾何学平均値で表される。所定の抗原に対する切捨値は、未処置の動物についての集団幾何学平均値＋２つの標準偏差として計算された。＊及び＊＊は、それぞれＰ＜０．０５及びＰ＜０．０１として定められる、ＦｌｉＣ−Ｔｍ発現ベクターを伴わないｐＯＶＡ免疫化に対する大きな応答差を表す。 ｐｃＤＮＡ３．１／ゼオｆｌｉＣ−Ｔｍ（−ｇｌｙ）のベクターマップを示す。

Claims (27)

1. ＤＮＡワクチンの免疫を向上させるためのフラジェリン遺伝子若しくは相同遺伝子又はその断片の使用。
2. 細胞ワクチンに対する免疫を向上させるための請求項１記載の遺伝子によりコードされたフラジェリン又はその断片の使用。
3. フラジェリンは、膜結合として又は可溶性単量体として発現される、請求項１又は２に記載の使用。
4. フラジェリンに対する遺伝子は、サルモネラ菌、赤痢菌、大腸菌、百日咳菌、レジオネラ菌、ブルクホルデリア菌、シュードモナス菌、ヘリコバクター菌、セラチア属、桿菌、ビブリオ菌、コーロバクター属、リステリア属、クロストリジウム属、ボレリア属、Ｅグループに属するフラジェリンを発現する他の生体、Ｆグループに属するフラジェリンを発現する生体、又は相同フラジェリン遺伝子を発現するその他の生体のいずれかから得られる、請求項１〜３のいずれか一項に記載の使用。
5. フラジェリンは、免疫応答を導くことができる抗原をコードする核酸構築体によってコードされる、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
6. フラジェリンは、ワクチンと同じ局所で接種された別の構築体によってコードされる、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
7. ワクチンは、病原体又は腫瘍細胞によって発現された遺伝子又はタンパク質若しくはペプチドをコードする核酸からなる、請求項５記載の使用。
8. ワクチンは、弱毒化病原体又は腫瘍細胞からなる、請求項５記載の使用。
9. ワクチンは、特異的免疫を導くことができる任意の他の物質からなる、請求項５記載の使用。
10. 腫瘍細胞又は自己免疫疾患に関与する細胞を殺す目的で局所的炎症及び局所的毒性作用を誘発するためのフラジェリンの使用。
11. フラジェリンは、炎症を誘発すべき細胞又は組織において膜結合単量体として発現され、それによって、局所的炎症の誘発は、組織における細胞に対する特異的免疫の活性化を生じさせる、又は特異的免疫は、別の位置における同様の細胞の死滅を生じさせる、或いは、局所的炎症は、組織内に位置する細胞を死滅させる局所的毒性を生じさせる、請求項１０記載の使用。
12. フラジェリンは、可溶性単量体として発現される、請求項１０記載の使用。
13. フラジェリンに対する遺伝子は、サルモネラ菌、赤痢菌、大腸菌、百日咳菌、レジオネラ菌、ブルクホルデリア菌、シュードモナス菌、ヘリコバクター菌、セラチア属、桿菌、ビブリオ菌、コーロバクター属、リステリア属、クロストリジウム属、ボレリア属、Ｅグループに属するフラジェリンを発現する他の生体、Ｆグループに属するフラジェリンを発現する生体、又は相同フラジェリン遺伝子を発現するその他の生体のいずれかから得られる、請求項１０記載の使用。
14. 炎症のモデルとしての１つ又は複数の組織でフラジェリンを発現する動物モデル。
15. フラジェリンは誘発性プロモータの下で発現される請求項１４記載の動物モデル。
16. 前記炎症のモデルは、抗炎症薬の効果を研究するために使用される、請求項１４記載の動物モデル。
17. 免疫応答を刺激することを目的とする膜結合フラジェリンの発現のための哺乳類表面表示プラスミドｐディスプレイ（Ｄｉｓｐｌａｙ）の使用。
18. 免疫応答を刺激することを目的とする膜結合フラジェリンの発現のための任意のプラスミド又はベクターの使用。
19. 免疫応答を導くことができる少なくとも１つの抗原をコードする核酸、及びフラジェリン又は相同タンパク質、或いはフラジェリンの細断片、又はＤＮＡワクチン接種における免疫に対する効果が向上した相同タンパク質をコードする核酸を含む、核酸。
20. フラジェリンを可溶性又は膜結合単量体として発現する請求項１９記載の核酸。
21. フラジェリン又は相同タンパク質、或いはその細断片をコードする核酸は、サルモネラ菌、赤痢菌、大腸菌、百日咳菌、レジオネラ菌、ブルクホルデリア菌、シュードモナス菌、ヘリコバクター菌、セラチア属、桿菌、ビブリオ菌、コーロバクター属、リステリア属、クロストリジウム属、ボレリア属、Ｅグループに属するフラジェリンを発現する他の生体、Ｆグループに属するフラジェリンを発現する生体、又は相同フラジェリン遺伝子を発現するその他の生体のいずれかから得られる、請求項１９又は２０に記載の核酸。
22. 免疫応答を導くことができる少なくとも１つの抗原をコードする核酸は、病原体又は腫瘍細胞によって発現される遺伝子をコードする、請求項１９〜２１のいずれか一項に記載の核酸。
23. 請求項１９〜２２のいずれか一項に記載の核酸を含む哺乳類発現ベクター。
24. 請求項２３記載の発現ベクターが形質移入された細胞。
25. ＤＮＡワクチン接種における免疫を向上させるための請求項１９〜２２のいずれか一項に記載の核酸又は対応するタンパク質若しくはペプチドの使用。
26. ＤＮＡワクチン接種における免疫を向上させるための医薬組成物の製造のための、フラジェリン遺伝子、その断片、フラジェリン若しくは相同体又はその断片、フラジェリン遺伝子若しくはその断片を含むベクター、或いはフラジェリン遺伝子若しくはその断片又は請求項１〜１３及び１７〜２５のいずれか一項に記載の核酸が形質移入された細胞の使用。
27. フラジェリン遺伝子、その断片、フラジェリン若しくは相同体又はその断片、フラジェリン遺伝子若しくはその断片を含むベクター、或いはフラジェリン遺伝子若しくはその断片又は請求項１〜１３及び１７〜２５のいずれか一項に記載の核酸が形質移入された細胞が、免疫向上をもたらすのに十分な量で哺乳類に投与される、哺乳類のＤＮＡワクチン接種における免疫を向上させるための方法。

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