JP2005514912A - 乳がんに関連する核酸およびポリペプチドならびにその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
イン(バード(Burd)およびドレイファス(Dreyfuss) 1994;シオミ(Siomi)およびドレイファス(Dreyfuss) 1997)および核移行因子2様(NTF2様(NTF2‐like))ドメイン(スヤマ(Suyama)ら、2000年)を含むことが示された。G3BP中のRRMについて提示された構造は、他でも報告されている(ケネディ(Kennedy)ら、1997)。G3BPは酸リッチドメイン(acid‐rich domain)およびRGGドメインも含むが、これらのドメインはたいていRRMタイプのRNA結合タンパク質の補助ドメインと考えられている(バード(Burd)およびドレイファス(Dreyfuss) 1994年;シオミ(Siomi)およびドレイファス(Dreyfuss) 1997年)。これらの構造モチーフは、G3BP−1がc−myc転写物の切断因子としてインビトロで作用することによりRNA代謝に関与するとみなされた最近の発見と一致している(ギャロウジ(Gallouzi)ら 1998年)。
は、大きな進歩が達成されており、このことはこの疾患による死亡率の著しい減少に反映されている(クレボフスキー(Chlebowski)、2002年)。しかしながら、乳がんは未だに、1999年にオーストラリアで診断されたがんの26%を占めており、1996年には、9556例の新たな症例が診断され、2619人が死亡している((AIHW)、1999年)。この疾患をより良好に管理するための付加的で重要なインプットは、乳がんを発症するリスクを有する女性の割合(10%)を予測可能とする遺伝的素因マーカーBRCA1及び2(総説:ナサンソン(Nathanson)ら、2001年)の特性解析であった。現在利用可能な補助療法(プリッチャード(Pritchard)、2002年)の選択肢の減少とその使用に関連するリスクとを考慮すると、この疾患の初期段階にあり、かつ/または比較的高い遺伝的リスクを有するヒトでのこの疾患の進展を予防することができる新規な方策が緊急に必要とされている。
NTF2様ドメインは、G3BP−2のNTF2様ドメインであることが好ましい。
NTF2様ドメインは、配列番号(SEQ ID NO):5に記載されているアミノ酸残基1〜146によりコードされることが好ましく、ここでアミノ酸残基1は開始メチオニン(M)である。
好ましくは、前記動物はヒトである。
(i)KLPNFGFVV[配列番号:1];
(ii)IMFRGVRL[配列番号:2]および
(iii)SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]
からなる群から選択される。
(a)KLPNFGFVV[配列番号:1];
(b)IMFRGVRL[配列番号:2]および
(c)SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]
からなる群から選択される単離G3BP−2タンパク質断片を提供する。
別の形態では、単離核酸は配列番号:4に記載されている配列のヌクレオチド239〜676を含む。
第8の態様では、本発明は、G3BP−2と他のタンパク質との結合を阻止または妨害するためにアンタゴニストを使用することに関する。
別の形態では、該アンタゴニストはG3BP−2のNTF2様ドメインの模倣物質(mimetic)である。
該アンタゴニストは、タンパク質であってもよい。
1形態では、タンパク質はSrcホモロジー3(SH3)ドメインを含む。
該アンタゴニストは、非ペプチド化合物であってもよい。
第9の態様では、本発明は、G3BP−2タンパク質、その断片、相同体、変異体または誘導体と予め接触させた単離抗原提示細胞を提供するが、ここで接触とは、抗原提示細胞をG3BP−2タンパク質、その断片、相同体、変異体または誘導体でパルス処理または装荷(load)することを含む。
第9および第10の態様の、断片、相同体、変異体および誘導体を含めた前記G3BP−2タンパク質は、配列番号:5に記載のアミノ酸配列を含むことが好ましい。
およびIMFRGVRL[配列番号:2からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むことが好ましい。
単離リンパ球は、細胞傷害性Tリンパ球であることが好ましい。
その断片、相同体、変異体および誘導体を含めたタンパク質であって配列番号:5に記載のアミノ酸配列を含むタンパク質に対して、リンパ球がG3BP−2抗原特異的であることが好ましい。
第12の態様では、本発明は、前記態様のいずれか1態様に記載のタンパク質、核酸または単離細胞からなる群から選択される少なくとも1種の活性物質を含有する薬剤組成物を提供する。
第14の態様では、本発明は、G3BP−2と他のタンパク質との結合を阻止または妨害する活性物質を、動物または単離細胞に投与する工程を含む、細胞増殖を変調する方法を提供する。
第15の態様では、本発明は、試料中の1つまたは複数の候補がG3BP−2のNTF2様ドメインと結合するかどうかを決定する工程を含む、G3BP−2と結合する分子を単離する方法を提供する。
アンタゴニストは、タンパク質または非タンパク質分子であってもよい。
第16の態様では、本発明は、哺乳動物の乳がんを診断する方法であって、該哺乳動物から得られた試験試料中のG3BP−2タンパク質の発現と参照試料中のG3BP−2とを比較する工程を含み、試験試料でのG3BP−2の発現が参照試料とは異なる場合に、該哺乳動物が乳がんを有する可能性が高いと診断することを特徴とする方法を提供する。
該抗体は、配列番号:5に記載のアミノ酸配列を含む、その断片、相同体、変異体および誘導体を含めたG3BP−2タンパク質に結合することが可能である。
G3BP−2断片は、NTF2様ドメインを含んでもよい。
第17の態様では、本発明は、哺乳動物から得られた試験試料中で、G3BP−2核酸またはその断片を検出する工程を含む、該哺乳動物での乳がんを診断する方法を提供する。
哺乳動物はヒトであることが好ましい。
第18の態様では、本発明は乳がんに対して哺乳動物を免疫化する方法であって、前記哺乳動物に、
(1)G3BP−2タンパク質;
(2)(1)の断片、相同体、変異体または誘導体;
(3)G3BP−2核酸;
(4)(3)の断片、相同体、変異体または誘導体;
(5)予め(1)または(2)と接触させた単離抗原提示細胞;および
(6)予め(3)または(4)の核酸でトランスフェクションした単離抗原提示細胞
からなる群から選択される少なくとも1種の活性物質を含む免疫原性剤を投与する工程を含む方法を提供する。
G3BP−2タンパク質断片は、KLPNFGFVV[配列番号:1]およびIMFRGVRL[配列番号:2]からなる群から選択することが好ましい。
哺乳動物はヒトであることが好ましい。
本発明の前記態様による単離タンパク質および核酸ならびに方法は、乳がんの治療的処置または予防的処置ならびにその診断で使用することができる。下記でさらに詳述するように、G3BP−2と他のタンパク質または内在性結合相手との相互作用の妨害により、腫瘍の増殖を阻害することができる。
別途定義しないかぎり、本明細書中で使用される技術用語および科学用語はすべて、本発明が属する技術分野の通常の専門家に一般的に理解される意味を有する。本願明細書に記載されている方法および材料と同様または等価な任意の方法および材料を、本発明の実施または試験に使用することができるが、好ましい方法および材料を記載する。本発明のために、次の用語を、下記で定義する。
(ポリペプチドまたはタンパク質)
「ポリペプチド」は「タンパク質」をも意味し、どちらの用語も、当技術分野でよく理解されるように、天然および/または非天然アミノ酸を含むアミノ酸ポリマーを指す。例えば、G3BP−2はタンパク質ともポリペプチドともいうことができる。「タンパク質」は、ペプチド、ポリペプチドまたはこれらの断片を指し得る。「G3BP−2」タンパク質は、特定のアイソフォームに言及しない限り、G3BP−2aおよびG3BP−2b
および他のすべてのアイソフォームを含めたG3BP−2アイソフォームを包含する。
1実施形態では、「断片」とは、前記ポリペプチドの100%未満だが少なくとも20%、好ましくは少なくとも30%、さらに好ましくは少なくとも80%、さらにいっそう好ましくは少なくとも90%を構成するアミノ酸配列を含む。
NTF2様ドメインは、アミノ酸残基1〜146について示している配列番号:5に記載されており、ここでアミノ酸残基1は開始メチオニン(M)である。
とであるが、ポリペプチドの活性の性質を変えることなく、いくつかのアミノ酸を、ほぼ類似の特性を有する他のアミノ酸に代えることが可能である(保存的置換)。ポリペプチドの保存的置換の例は、表1(図12)に従い実施することが可能である。
個々の核酸とポリペプチドとの配列の関係を記載するために本願明細書中で使用される用語には、「比較ウィンドウ」、「配列同一性」、「配列同一率」および「実質的同一性」が含まれる。個々の核酸/ポリペプチドはそれぞれ、(1)該核酸/ポリペプチドにより共有される、完全な核酸/ポリペプチド配列のうちの唯一または複数の部分、ならびに(2)核酸/ポリペプチド間で異なる1つまたは複数の部分を含みうるので、配列比較は通常、配列類似性の局所領域を同定および比較するために「比較ウィンドウ」上で配列を比較することにより行う。「比較ウィンドウ」とは、参照配列と比較される通常少なくとも6個の連続残基からなる概念的なセグメントのことである。比較ウィンドウは、個々の配列を最適に整列させた状態で、参照配列(付加または欠失がない)に比較して約20%またはそれ未満の付加または欠失(すなわち、ギャップ)を有してよい。比較ウィンドウの位置を決めるための配列の最適な整列は、コンピュータを用いたアルゴリズム(例えば、本願明細書に援用される、WebAngis GCGにより提供されるECLUSTALWおよびBESTFIT、2D Angis、GCGならびにGeneDocの各プログラム)の実行によって、または、検証および選択される様々な方法のいずれかによりもたらされる最良の整列(すなわち、比較ウィンドウについての相同性を最も高くする)により実施可能である。
Centre))で提供されている。
BLASTファミリーを参照することも可能である。
本願明細書中では、「配列同一性」との用語を、比較ウィンドウ上で配列が同一である程度を考慮しつつ、標準的なアルゴリズムによる適切な整列に関してヌクレオチドまたはアミノ酸の正確な一致の数を含むように、その最も広い意味で使用する。したがって、比較ウィンドウ上で最適に整列された2つの配列を比較し、両方の配列で同一の核酸塩基(例えば、A、T、C、G、U)が生じている位置の数を決定して一致した位置の数を得、その一致した位置の数を、比較ウィンドウ中の位置の総数(すなわち、ウィンドウサイズ)で除し、その結果に100を乗じて配列同一率を得ることにより、「配列同一率」を算出する。例えば、「配列同一性」は、DNASISコンピュータプログラム(ウィンドウズ(登録商標)用バージョン2.5、米国カリフォルニア州サウスサンフランシスコ所在の日立ソフトウェアエンジニアリング社(Hitachi Software Engineering Co.,Ltd.))により算出される「配列の一致率」を意味すると解してもよい。
1997年、Biotechniques、第23巻、第304頁に記載されているようなPCRを使用したランダム突然変異誘発が含まれる(引用文献はそれぞれ本願明細書に援用される)。PCRを使用したランダム突然変異誘発キット、例えばDiversify(登録商標)キット(クロンテック(Clontech))が市販されていることも特記する。
アルギニン残基のグアニジン基を、2,3−ブタンジオン、フェニルグリオキサルおよびグリオキサルなどの試薬を用いて複素環縮合産物を生じさせることにより修飾してもよい。
クシンイミドを用いた酸化により修飾してもよい。
ヒスチジン残基のイミダゾール環を、ジエチルピロカルボン酸塩を用いたN−カルボエトキシ化により、またはヨード酢酸誘導体を用いたアルキル化により修飾してもよい。
(i)1個又は複数の調節ヌクレオチド配列、例えばT7プロモーターに作動可能なように連結された本発明の組換え核酸を含む発現構築物を調製する工程と;
(ii)適切な宿主細胞、例えば、E.coli(大腸菌)に発現構築物をトランスフェクションまたは形質転換する工程と;
(iii)前記宿主細胞中でポリペプチドを発現させる工程と
を含む手順により調製することが可能である。
当業者は、市販のキット、例えば本願明細書に援用される、インビトロジェン社(Invitrogen Corporation)(米国カリフォルニア州カールズバッド(Carlsbad)所在)より入手可能な「ProBond(登録商標)Purification System」を使用して、組換えタンパク質を簡単に発現させて精製することが可能である。代替例として、例えば、本願明細書に援用されるサムブルック(Sambrook)らの「MOLECULAR CLONING.A Laboratory
Manual」(コールドスプリングハーバー出版、1989年)(特に第16章および第17章);本願明細書に援用される「CURRENT PROTOCOLS INMOLECULAR BIOLOGY」オースベル(Ausubel)ら編、(ジョンワイリーアンドサンズ社(John Wiley & Sons,Inc.)、1995−1999)(特に第10章および第16章);ならびに本願明細書に援用される「CURRENT PROTOCOLS IN PROTEIN SCIENCE」コリガン(Coligan)ら編、(ジョンワイリーアンドサンズ社、1995−1999)(特に第1、5、6および7章)に記載されているような標準的な分子生物学プロトコルを使用してもよい。
本願明細書で使用される「核酸」という用語は、一本鎖または二本鎖のmRNA、RNA、cRNAおよびDNAを意味しており、DNAには、cDNAおよびゲノムDNAが含まれる。
および組換え(非天然)核酸の両方が含まれる。例えば、ヒトまたはマウスから単離された核酸である。
核酸に関連する「本質的に〜から構成される」との用語は、その5’および/または3’に位置するヌクレオチドが90個以下である核酸に関する。核酸は、付加される核酸が60個未満であることが好ましく、さらに好ましくは、核酸は1〜30個のヌクレオチドからなる。
5’GGAGGCATGGTGCAGAAACCA[配列番号:12];および
5’CAGGAAAGGGAAGAGAGGGAG[配列番号:13]
HsaG3BP−2特異的プライマー:
5’GTCTTGGCAGTGGTACATTAT[配列番号:14];および
5’AGTTCACTTTGTCGTAGATAGTTTAAG[配列番号:15]。
「発現ベクター」は、プラスミドなどの自己複製する染色体外ベクターでも、宿主ゲノムに入り込むベクターでもよい。発現ベクターの例は、pRSET B(インビトロジェン社(Invitrogen Corp.))およびその誘導体である。
PTGにより誘導される。
上記のように、本発明のポリペプチドまたはポリペプチド相同体をコードする核酸を含有する発現構築物で形質転換された宿主細胞を培養することにより、本発明のポリペプチドを生じさせることが可能である。ポリペプチドの発現に適した条件は、発現ベクターおよび宿主細胞の選択に応じて変わることになる。例えば、所定の宿主細胞内でのポリペプチドの発現を成功または改善させるために、本発明のヌクレオチド配列を変更することが可能である。変更には、宿主細胞で優先されるコドン使用に応じてヌクレオチドを変えることが含まれる。代替例として、あるいは追加として、本発明のヌクレオチド配列を変更して宿主特異的なスプライシング部位を加えたり除いたりしてもよい。これらの変更は、当技術分野の専門家であれば確認することが可能である。
有用な原核宿主細胞は、細菌である。
典型的な細菌宿主細胞は、E.coli株である。
当業者は、例えば、本願明細書に援用されるサムブルック(Sambrook)らの「MOLECULAR CLONING.A Laboratory Manual」(コールドスプリングハーバー出版、1989年)(特に第16章および第17章);本願明細書に援用される「CURRENT PROTOCOLS INMOLECULAR BIOLOGY」オースベル(Ausubel)ら編、(ジョンワイリーアンドサンズ社(John Wiley & Sons,Inc.)、1995−1999)(特に第10章および第16章);ならびに本願明細書に援用される「CURRENT PROTOCOLS IN PROTEIN SCIENCE」コリガン(Coligan)ら編、(ジョンワイリーアンドサンズ社、1995−1999)(特に第1、5および6章)に記載されているような標準的なプロトコルを使用して、組換えポリペプチドを簡単に調製することが可能である。
別の実施形態では、核酸相同体は、本発明の核酸と少なくとも60%、好ましくは少なくとも70%、さらに好ましくは少なくとも80%、さらにいっそう好ましくは少なくとも90%の配列同一性を共有する。
(i)AとT;および
(ii)CとGである。
(i)AとU;および
(ii)CとGである。
(i)AとU;
(ii)AとT;および
(iii)GとCである。
本願明細書で使用する場合の「厳密度」とは、ハイブリダイゼーション時の温度およびイオン強度の条件、ならびにある種の有機溶剤および/または界面活性剤の有無のことで
ある。厳密度が高いほど、ハイブリダイズするヌクレオチド配列間で必要な相補性レベルが高くなる。
本願明細書における厳密度の低い条件としては、
(i)少なくとも約1%(v/v)から少なくとも約15%(v/v)までのホルムアミドと、少なくとも約1Mから少なくとも約2Mまでの塩で42℃でハイブリダイゼーション、および、少なくとも約1Mから少なくとも約2Mまでの塩で42℃で洗浄;ならびに
(ii)1%のウシ血清アルブミン(BSA)、1mMのEDTA、0.5MのNaHPO4(pH7.2)、7%のSDSで65℃でハイブリダイゼーション、および(i)2×SSC、0.1%のSDS;または(ii)0.5%のBSA、1mMのEDTA、40mMのNaHPO4(pH7.2)、5%のSDSで室温で洗浄
があり、包含される。
(i)少なくとも約16%(v/v)から少なくとも約30%(v/v)までのホルムアミドと、少なくとも約0.5Mから少なくとも約0.9Mまでの塩で42℃でハイブリダイゼーション、および少なくとも約0.5Mから少なくとも約0.9Mまでの塩で42℃で洗浄;ならびに
(ii)1%のウシ血清アルブミン(BSA)、1mMのEDTA、0.5MのNaHPO4(pH7.2)、7%のSDSで65℃でハイブリダイゼーション、および(a)2×SSC、0.1%のSDS;または(b)0.5%のBSA、1mMのEDTA、40mMのNaHPO4(pH7.2)、5%のSDSで42℃で洗浄
があり、包含される。
(i)少なくとも約31%(v/v)から少なくとも約50%(v/v)までのホルムアミドと、少なくとも約0.01Mから少なくとも約0.15Mまでの塩で42℃でハイブリダイゼーション、および少なくとも約0.01Mから少なくとも約0.15Mまでの塩で42℃で洗浄;
(ii)1%のBSA、1mMのEDTA、0.5MのNaHPO4(pH7.2)、7%のSDSで65℃でハイブリダイゼーション、および(a)0.1×SSC、0.1%のSDS;または(b)0.5%のBSA、1mMのEDTA、40mMのNaHPO4(pH7.2)、1%のSDSで65℃を上回る温度で約1時間の洗浄;ならびに
(iii)0.2×SSC、0.1%のSDSで、68℃以上で約20分間の洗浄
があり、包含される。
上記にかかわらず、厳密な条件は、本願明細書に援用される上記のオースベル(Ausubel)らの文献の2.9章および2.10章に記載されているように、当技術分野でよく知られている。専門家には当然のことであるが、様々な要因を操作してハイブリダイゼーションの特異性を最適化することが可能である。最終洗浄の厳密度を最適化することにより、高度なハイブリダイゼーションを確実にすることが可能である。
配列を同定し;ノーザンブロット法を使用して、相補的RNA配列を同定する。ドットブロット法およびスロットブロット法を使用して、相補的なDNA/DNA、DNA/RNAまたはRNA/RNAポリヌクレオチド配列を同定することが可能である。このような技法は、当技術分野の専門家にはよく知られており、本願明細書に援用される上記オースベル(Ausubel)らの文献の2.9.1頁〜2.9.20頁に記載されている。
cDNAまたはゲノムDNAライブラリ中の相補的核酸を同定する場合には、プラークまたはコロニーハイブリダイゼーションの手法を介するような別のブロット工程を使用する。この手法の他の典型的な例は、本願明細書に援用される上記のサムブルック(Sambrook)らの文献の第8〜12章に記載されている。
(i)適切な宿主、例えば、細菌種から核酸抽出物を得る工程と;
(ii)本発明のヌクレオチド配列の一部をそれぞれ含む、任意選択で縮重しているプライマーを作成する工程と;
(iii)前記のプライマーを使用して、核酸増幅技法により、前記の核酸抽出物から1種または複数の増幅生成物を増幅する工程。
生成物のことである。
適切な核酸増幅技法は専門家にはよく知られており、例えば本願明細書に援用される上記のオースベル(Ausubel)らの文献の第15章に記載されているようなPCR;例えば本願明細書に援用される米国特許第5,422,252号に記載されているような鎖置換増幅(strand displacement amplification;SDA);例えば本願明細書に援用されるリウ(Liu)ら、1996年、J.Am.Chem.Soc.第118巻、第1587頁と国際出願国際公開第92/01813号;およびリザルディ(Lizardi)とカプラン(Caplan)の国際出願国際公開第97/19193号に記載されているようなローリングサークル複製(RCR);例えば本願明細書に援用されるスークナナン(Sooknanan)ら、1994年、Biotechniques、第17巻、第1077頁に記載されているような核酸配列ベースの増幅(NASBA);例えば本願明細書に援用される国際出願国際公開第89/09385号に記載されているようなリガーゼ連鎖反応(LCR);ならびに、例えば本願明細書に援用されるタイアギ(Tyagi)ら、1996年、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、第93巻、第5395頁に記載されているようなQ−βレプリカーゼ増幅が含まれる。増幅は、本願明細書に開示されているプライマーを使用するPCRによることが好ましい。
G3BP−2タンパク質が、上皮組織および非増殖性組織に由来する乳がんで発見された。これは予期せぬ結果であったが、その理由の少なくとも一部は、発現が腫瘍に対して特異的であると思われることと、G3BP−2のアップレギュレーション(上方制御)は腫瘍の発生の初期に生じるようであることとは知られていなかったためである。G3BP−2は、研究された乳がんの約80%でアップレギュレーションされた。これは、家族性乳がんの15%(研究対象とした地方における比率)で突然変異していることが見出されたBrca1などの、乳がんの原因であると認識されている遺伝子に匹敵する。家族性乳がんは、乳がん全体の15〜30%を占めているにすぎず、このことは、Brca1が乳がん全体のわずか2〜5%の原因であることを意味している。
を、特にN末端のNTF2様ドメインに対して阻止するように設計された治療法は、がんの進行を制限する可能性がある。
本発明者らは以前に、RRM含有タンパク質についての一般的なPCRを用いるスクリーング(ケネディ(Kennedy)ら、1997年)におけるMmuG3BP−2(MMU65313)のクローニングについて報告している。RRM内のコンセンサス配列に対して設計された縮重プライマーを使用し(バーニー(Birney)ら、1993年)、かつ増幅したPCR生成物を使用して後期原条期マウス胚cDNAライブラリをスクリーニングして完全長cDNAを単離することにより、これを達成した。G3BP遺伝子間で保存されている配列相同性により、MmuGeBP−2のcDNAのコード領域を、ノーザン分析およびライブラリ・スクリーニングにおいてヒトG3BP−2およびMmuG3BP−1の両方を認識するための有効なツールとして使用することが可能である。本発明者らは、MmuG3BP−2のコード領域を使用して、後期原条期マウス胚cDNAライブラリおよび胎児ヒト脳cDNAライブラリからそれぞれMmuG3BP−1(MMAB1927)およびヒトG3BP−2(HsaG3BP−2)を単離およびクローニングした。Met開始コドン、オープンリーディングフレームおよび停止コドンを同定するために、該クローンを配列決定して分析した。HsaG3BP−2とMmuG3BP−2とのタンパク質配列比較(図3)により98.5%の同一性が示され、HsaG3BP−2とHsaG3BP−1(HS3251910)では65%の同一性が示され、HsaG3BP−1は、MmuG3BP−1と94.4%の配列同一性を共有している。図3では、アミノ酸は、一文字表記されており、10のブロックに分類されている。行の最後に位置する数字は、示されているタンパク質内でのアミノ酸の位置を示している。整列させた配列内のダッシュは、HsaG3BP−2aに対して保存されたアミノ酸を示しており、タンパク質間のアミノ酸の変化は、適切な置換により示されている。整列させたタンパク質内の空白は、互いに直線状に整列された状態を維持するために配列に挿入されたギャップを示している。四角の枠は、プロリンリッチ配列(PxxP)を示している。イタリック体の配列は、酸リッチドメインを示している。楕円の枠は、RGGドメインの成分を示しており、G3BP−1およびG3BP−2のRGGドメインが一致していないことを示している。下線および二重下線を付された配列はそれぞれ、RNP−2およびRNP−1を示している。
RRMの間の最も顕著な差異は、RNP−2コンセンサス配列中でのValからIleへの置換である(図3)。G3BPのRRMの構造は、他でも報告されている(ケネディ(Kennedy)ら、1997年)。加えて、G3BPは保存された酸リッチドメインおよびRGGドメイン(バーニー(Birney)ら、1993年)を有するが、これらはいずれもRNA結合タンパク質中で共通して見出される。G3BP−1とG3BP−2との間にはRGGドメイン構造に顕著な差異が存在し(図3参照)、このことがRNAターゲットへの特異性の違いをもたらしている可能性があることを特記すべきである。酸リッチドメインは、hnRNP Cおよびヌクレオリンなどの様々なRNA結合タンパク質に関連して見いだされるにも関わらず、このドメインの機能は不明なままであり、タンパク質−タンパク質相互作用に関与しているかもしれない。G3BP−1とG3BP−2タンパク質との間の最も重要な差異は、潜在的SH3ドメイン結合モチーフ(PxxP、ここでxは任意のアミノ酸を表す)の数にある(リー(Lee)ら、1996年)。G3BP−2aタンパク質は、酸リッチドメインとRRMドメインとの間に4個のPxxPモチーフからなるクラスターを有し、これに対してG3BP−2bはその相同領域中に5個有する(図3)。G3BP−2b中の余分なプロリンリッチPxxPモチーフは、G3BP−2aから33アミノ酸がスプライシングされることにより生じる。G3BP−2に多重PxxPクラスターが見いだされるのに対し、G3BP−1は同タンパク質の相同領域中にこのようなモチーフを1個しか含まない(図3)。さらに、G3BP−1およびG3BP−2のいずれもその非保存RGGドメイン内に保存PxxPモチーフ(PGGP)を有する(図3)。全体的には保存されていないタンパク質領域内に最小SH3ドメイン結合モチーフが特異的に保存されているということは、保持された機能の存在を示唆しているが、これはまだ解明されていない。G3BP間の潜在的SH3ドメイン結合モチーフの数における全般的な差異は、これらがインビボでSH3ドメインを含有する別個の相手に結合するか、または同じタンパク質に対して異なる親和性を有することを示している可能性がある。
MmuG3BP−2aおよび2bのcDNAは、サイズがそれぞれ58.2kDaおよび52kDaと予測されるタンパク質をコードする。組換え発現タンパク質はSDS−PAGEによる測定でそれぞれ68.5kDaおよび62kDaの見かけの分子量を有する。予測重量と見かけ重量との上記の差異は翻訳後修飾による重量の増加と一致し、HsaG3BP−1に関して報告された差異(予測重量52kDa、観察された見かけの重量68kDa)(パーカー(Parker)ら、1996年)と同様である。
G3BP−1とrasGAP120との相互作用については報告があり、G3BP−1はrasGAP120のSH3ドメインと特異的に相互作用し(パーカー(Parker)ら、1996年)、G3BPをrasGAP120シグナル伝達経路に関与させる(パズマン(Pazman)ら、2000年も参照のこと)。しかしながら、rasGAP120との間に観察された相互作用を担うG3BP内の領域は、完全には調査されていない。当初、この相互作用は、SH3ドメインと相互作用することが知られている(リー(Lee)ら、1996年)プロリンリッチモチーフを介して促進されるのであろうと推測されていた。G3BPとrasGAP120のSH3ドメインとの相互作用をさらにマッピングするために、いくつかのGST−G3BPペプチド融合物を発現させ(図4)、Hisタグを有するN末端rasGAP120ペプチドを用いたビーズ結合アッセイで探索した。G3BPペプチド構築物は、単離されたプロリンリッチモチーフを有するペプチドだけでなく単一または複数のドメインを含有する短縮タンパク質に相当するように設計した(図4)。アッセイでは、GST−G3BPペプチドをグルタチオンビーズに結合させ、His−タグを有するN末端rasGAP120を様々な構築物に加える。結合タンパク質をウェスタンブロット法に供し、抗His抗体で探索してHis−タグを有するras
GAP120を同定することにより、G3BPペプチドとrasGAP120のSH3ドメインとの特異的なタンパク質−タンパク質相互作用を検出する。その結果(図4)から示されるように、rasGAP120のSH3ドメインとの相互作用は、G3BPのN末端ドメイン内に含まれるNTF2様ドメインにマッピングされ、プロリンリッチモチーフにはマッピングされない。酸リッチドメイン、RRMまたはRGGリッチドメインを含めたG3BPの他のドメインとの相互作用は検出されなかった(図4)。
G3BP−1およびG3BP−2の配列から決定したアイソフォーム特異的な合成ペプチドに対して作製した抗体を使用して、成体マウス組織由来の全細胞溶解物のウェスタンブロットを探索した(図5)。図5のパネルAは抗G3BP−1ポリクローナル抗体で探索した組織を示し、これに対してパネルBは抗G3BP−2ポリクローナル抗体で探索した組織をコラージュのように構成したものを示している。肺、肝臓、腎臓、胃および結腸(データは示されていないが、膵臓および精巣も)を含めたいくつかの組織がG3BP−2の両アイソフォームを発現することが分かる(図5、パネルB)。脳、筋肉(少量のG3BP−2b発現が見られ、これはおそらく試料中に様々な細胞集団が存在することが原因である)および心臓を含めた他の組織は、G3BP−2aのみの発現に限られている(図5、パネルB中の上側のバンド)。小腸はMmuG3BP−2bのみを発現し(図5、パネルBの下側のバンド)、脾臓はいずれのタンパク質も検出可能なレベルでは発現しない。G3BP−1抗体の全般的な発現はG3BP−2の発現よりも少ないようだが、一部の組織は豊富なレベルのG3BP−1を発現し、それらには、肺、腎臓および結腸が含まれる。心臓、肝臓および脾臓も低レベルのG3BP−1を発現する。
ライブラリクローンから得られた配列データを使用してG3BP−1およびG3BP−2特異的プライマーを設計し、引き続きこれらをGeneBridge(商品名)ハイブリダイゼーションパネル上で使用して上記遺伝子の染色体位置を決定した。G3BP−1は第5染色体のFB25D10から1.51cRにマッピングされ(ロッド値>3.0)、同遺伝子は5q33.1〜5q33.3の間に位置付けられた。G3BP−2は第4染色体のWI−5565から3.36cRにマッピングされ(ロッド値>3.0)、同遺伝子は4q12〜4q24の間に位置付けられた。続いてプラスミド由来人工染色体(PAC)ライブラリ(オーストラリア国マードック大学のピー.イオアノウ(P.Ioannou)博士提供)をスクリーニングし、単離されたクローンを使用して蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)を行った。FISHの結果から、これらの遺伝子の遺伝子位置を確認した。GeneBridgeハイブリダイゼーションパネルのスクリーニングおよびFISH分析に加えて、ヒトG3BP−1およびG3BP−2のcDNA配列を用いてNCBIデータベース(http://ncbi.nlm.nih.gov/genome/seq/ )のヒトゲノム配列をBLAST検索した。その結果、G3BP−1およびG3BP−2のいずれかに適合する複数の染色体が存在することが示され、このことは遺伝子重複または偽遺伝子を表している可能性がある。BLAST分析単独ではG3BPをマッピングするためには不十分であるが、FISHおよびGeneBridgeハイブリダイゼーションパネルの結果と組み合わせると、前記で示されたようなこれら遺伝子の染色体上の位置が確認された。
9年)およびホジキン病(アトキン(Atkin)、1998年)に関与している可能性が示唆されている。しかしながら、ヒト染色体のこれらの領域に関連しているヒトの病理にG3BPが関与していることを示唆する十分なデータは存在しない。
本発明は、単離されたG3BP−2ポリペプチド、その断片、変異体および誘導体に対する抗体にも関する。G3BP−2のペプチド断片は、本願明細書に記載されているようにアミノ酸配列SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]を含むことも可能である。本発明の抗体は、ポリクローナルでもモノクローナルでもよい。抗体製造、精製および使用に適したよく知られているプロトコルは例えば、いずれも本願明細書に援用される、コリガン(Coligan)ら、「CURRENT PROTOCOLS
IN IMMUNOLOGY」、ニューヨーク所在のジョンワイリーアンドサンズ(John Wiley & Sons)、1991−1994)の第2章およびハーロウ,イー.(Harlow,E.)およびレーン,ディー.(Lane,D.)「Antibodies:A Laboratory Manual」、コールドスプリングハーバー、コールドスプリングハーバー研究所、1988年)に見ることができる。
いる他の方法により、動物の適切な体液から抗体を精製することが可能である。抗体を精製するためのプロトコル例は、本願明細書に援用される上記のオースベル(Ausubel)らの第10.11節および第11.13節に示されている。
(模倣物質、アゴニストおよびアンタゴニスト)
G3BP−2が発がん経路と相互作用すること、細胞周期を調節すると思われる固有の特徴を有することから、G3BP−2により独自の治療可能性がもたらされる。特に重要なのは、意外にも複数の活性を担っているN−末端NTF2様ドメインである:
(1)NTF2様ドメインは、ran核膜孔タンパク質との相互作用を介して核局在化を、
(2)ユビキチンヒドロラーゼであるODE1との相互作用を介して既知のがん遺伝子NfκBの発現を、
(3)GAP120との相互作用を介してシグナル伝達を、
調節するようである。
本願明細書では、「模倣物質(ミメティクス)」との用語をタンパク質またはペプチドの特定の機能領域に似せて設計された分子に対して使用し、該用語は本願明細書の範囲内では、当技術分野でよく理解されている「アゴニスト」、「類似体」および「アンタゴニスト」との用語を含む。
G3BP−2と内在性標的ポリペプチドとのポリペプチド複合体の生成を妨害または阻止する模倣物質を人工的に設計することが可能であると考えられる。模倣物質は、G3BP−2のNTF2様ドメインと内在性標的ペプチド、例えばrasGAP120との複合体の生成を妨害または阻止することが好ましい。具体的には、SH3ドメインを含むアミノ酸配列[配列番号:6](NCBI 受入番号:P20936):
VRAILPY TKVPDTDEIS FLKGDMFIVH NELEDGWMWV TNLRTDEQGL IVEDLVEEVG REED
を有するrasGAP120のポリペプチド断片である。
ネストラー(Nestler)およびリウ(Liu)、1998年、Comb.Chem.High Throughput Screen.第1巻、第113頁およびキルクパトリック(Kirkpatrick)ら、1999年、Comb.Chem.High
Throughput Screen第2巻、第211頁に記載されているような方法により、コンビナトリアル・ライブラリを含めた合成化学ライブラリなどの分子ライブラリをスクリーニングすることにより、模倣物質を同定することが可能である。
本発明のさらなる特徴は、薬剤組成物中の活性物質としてポリペプチド、その断片、変異体または誘導体を使用することである。活性物質は、動物の免疫応答を誘発しうる「免疫原性剤」であってよい。免疫原性剤には、抗原を装荷または抗原でパルス処理されたタンパク質、核酸、ワクチンもしくは抗原提示細胞、またはこれらの組合せが含まれうる。抗原提示細胞と抗原、例えば、本発明のタンパク質、ポリペプチド、断片、変異体または誘導体とを接触させることにより、該抗原提示細胞に抗原を装荷または抗原でパルス処理することが可能である。例えば食作用、マイクロインジェクション、抱き込み(engulfing)等を含めた任意の適切な手段により、抗原提示細胞内に抗原を取り込むことが可能である。抗原を、任意の適切な担体、例えばラテックスビーズ、融合タンパク質、または当技術分野で一般に使用される何らかの他の輸送粒子と組み合わせることも可能である。抗原提示細胞は、例えば樹状細胞または免疫学の分野で知られている他の任意の抗原提示細胞であってよい。
適切には、薬剤組成物は、薬剤として許容可能な担体を含む。「薬剤として許容可能な担体、希釈剤または賦形剤」とは、全身投与の際に安全に使用することが可能な固体または液体の充填剤、希釈剤または封入物質を意味している。投与の特定経路に応じて、当技術分野でよく知られている様々な担体を使用することが可能である。これらの担体は、糖、でんぷん、セルロースおよびその誘導体、麦芽、ゼラチン、タルク、硫酸カルシウム、植物油、合成油、ポリオール、アルギン酸、リン酸緩衝液、乳化剤、等張性食塩水、発熱物質を含有しない水、を含む群から選択することが可能である。
前記の組成物を、本発明のポリペプチドおよび/または核酸またはその個々の断片を含む治療用または予防用ワクチンとして使用することが可能である。1実施形態では、ワクチンは前記の免疫原性剤を含有する。好ましくは、該ワクチンは乳がんを予防または治療する。
ワクチンおよび免疫原性剤は、当技術分野でよく知られているアジュバントを含有することも可能である。適切なアジュバントには、これらに限らないが、ヒトで使用するためのアジュバント、例えばSBAS2、SBAS4、QS21またはISCOMが含まれる。
、本願明細書に援用されるストッカー(Stocker)の米国特許第4,550,081号参照)を含めたウイルスベクターが含まれうる。生ワクチンが特に有利である。それというのも、これらは十分に長期の免疫を与えうる長期刺激をもたらすためである。
組換えワクシニアウイルスを調製して、本発明による核酸を発現させることが可能である。宿主に導入すると、組換えワクシニアウイルスは免疫原性剤を発現し、したがって宿主CTL応答をもたらす。例えば、本願明細書に援用される、免疫化プロトコルで有用なワクシニアベクターおよび方法が記載されている米国特許第4,722,848号を参照することが可能である。
本発明の核酸は、当技術分野で知られている「裸DNA」の形態のワクチンとして使用することが可能である。本願明細書に援用されるバリー,エム.(Barry,M.)ら(1995年、Nature第377巻:632−635頁)に例えば記載されているように、例えば本発明の発現ベクターを哺乳動物に導入してインビボでポリペプチドを産生することが可能であり、これに対して宿主は免疫応答を開始する。
「樹状細胞」(DC)は、動物において抗原特異的T細胞応答を開始しうる抗原提示細胞である。DCは、末梢血を含めた動物の体の様々な場所から単離することが可能である。DC前駆体をインビトロで増生および増殖させる方法は、例えば本願明細書に援用される米国特許第5,994,126号に記載されている。さらに、増殖性の樹状細胞前駆体から、培養物中で成熟樹状細胞を製造するための方法が記載されている。
本発明はさらに、本発明によるポリペプチド、変異体または誘導体の免疫活性を有する断片を同定する方法も対象としている。この方法は基本的に、ポリペプチド、変異体または誘導体の断片を作製すること、該断片を哺乳動物に投与すること、および該哺乳動物における免疫応答を検出することを含む。このような応答には、乳がんに対して防護効果をもたらしうる、NTF2様ドメインを含むG3BP−2、その変異体または誘導体と特異的に結合する因子の産生が含まれうる。
質断片を決定することが可能である。
さらに本発明は、生体試料中でG3BP−2を検出するためのキットも提供する。キットは、使用される試験方法の性質に応じて、上記の1種または複数の個々の薬剤を含む。これに関連して、キットは、本発明による1種または複数のポリペプチド、断片、変異体、誘導体、抗体、抗体断片または核酸を含有することも可能である。さらにキットは任意選択で、標識を検出するための適切な試薬、正および負の対照、洗浄液、希釈緩衝剤などを含むことも可能である。例えば、抗体をベースとする検出キットは、(i)本発明によるポリペプチドまたはその断片または変異体(正の対照として使用可能)、(ii)(i)のG3BP−2またはその断片に結合する本発明の抗体(好ましくはモノクローナル抗体)および(iii)標的(例えば試料中のG3BP−2)と(ii)の抗体とで生じる複合体を検出するための適切な手段を含むことが可能であり、検出手段には、例えば金コロイドが含まれうる。検出キット中での使用に適した抗体は、ウェスタンブロットおよび免疫組織化学に関連して本願明細書中に記載されたものを含む。
(PCRおよびサブクローニング)
1.1ユニットのTth Plus DNAポリメラーゼ断片(バイオテク・インターナショナル(Biotech International))および製造者(バイオテク・インターナショナル)供給の緩衝液にテンプレートDNA100ngとそれぞれ適切なプライマー50pmolを含めたものを使用して、プローブを増幅させるため、またはハイブリッドマッピングのためのPCR反応を実施した。サイクル条件は、94℃で1分間のDNAの変性、65℃で1分間のアニーリングおよび72℃で1分間の伸長反応を25サイクルとした。完全長G3BPまたはG3BPのNTF2様ドメインのいずれかを増幅するために使用可能なプライマーは以下のとおりである:
完全長ヒトG3BP−1は、プライマーG3BP−2metと共にG3BP−1stopを使用して増幅させ;完全長ヒトG3BP−2は、プライマーG3BP−2metと共にプライマーG3BP−2stopを使用して増幅させ;ヒトG3BP−1のNTF2様ドメインは、プライマーG3BP−1metと共にプライマーG3BP−1ntfを使用して増幅させ;かつヒトG3BP−1のNTF2様ドメインは、プライマーG3BP−2metと共にプライマーG3BP−2ntfを使用して増幅させる。
G3BP−1met atggtgatggagaagcctagtcccctgct
ggt[配列番号:16]
G3BP−2met atggttatggagaagcccagtccg[配列番号:17]
G3BP−2ntf atcaagttcaggctcagaatcacc[配列番号:18]
G3BP−1ntf ctgaggctcagtgacaaacccaac[配列番号:19]
G3BP−2stop gcttcagcgacgctgtcctgtgaagc[配列番号:20]
G3BP−1stop ctgccgtggcgcaagcccccttcc[配列番号:21]
(ライブラリスクリーニングおよびファージの単離)
プローブとして使用されるプラスミドの調製、ライブラリスクリーニングまたは配列決定を、サムブルックら、1989年(Sambrook et al.、1989)に記載されているように行った。後期原条期マウス胚cDNA(ケネディ(Kennedy)ら、1997年)および胎児ヒト脳(オーストラリアのアデレード大学のティー.コックス(T.Cox)博士の好意により提供されたcDNA)のライブラリを130mmプレート1枚あたり約25000pfuとなるように播き、21枚のプレートから2枚ずつフィルター(Hybond−N(登録商標)、アマシャム)を作成した。ライブラリのスクリーニングは、アマシャムのMegaprime(登録商標)DNAラベリングシステムを使用して製造者の指示に従って調製した放射性プローブを用いて、サムブルックら、1989年(Sambrook et al.1989)に記載されているように実施した。ハイブリダイゼーション条件は、50%ホルムアミド、5×SSC、20mMトリスHCl(pH7.6)、1×デンハルト(Denhardt)溶液および0.1%SDS、42℃であった。ハイブリダイズさせたフィルターを、0.2×SSC、0.1%SDS中、65℃で最低3×20分間洗浄した。精製されたプラークから得たcDNAをpBluescript(登録商標)SK(ストラタジーン(Stratagene))にサブクローニングした。
(バキュロウイルスを使用したサブクローニングおよびタンパク質の発現)
MmuG3BP−2aおよび2bをコードする完全長cDNAを、EagI(met 開始コドンから−85bp)およびAccI(停止コドンから+140bp)を使用してpBluescript(登録商標)から切除した後、クレノウ断片ポリメラーゼを使用して末端を平滑化した。これらのcDNAをSmaIで直線状にしたpBacPAK9(クロンテック(Clontech))にサブクローニングし、大腸菌DH5’αのコンピテント細胞中に形質転換した。この挿入物の向きを、PCRにより確認した。正しい向きに挿入物を有するプラスミドを、製造者の指示書(クロンテック#K1601−1)に従ってBsu36Iで消化されたBacPAK6ウイルス発現ベクターを用いてSpodoptera frugiperdaのIPLB−Sf21(Sf21)細胞にトランスフェクションした。組換えウイルスプラークを、Sf21細胞単層から選択し、PCRにより再度スクリーニングした。コードcDNAを有するウイルスをSf21細胞中で増殖させ、タンパク質の発現を確認するために全細胞溶解物をポリアクリルアミドゲル上で可視化した。
(融合タンパク質の構築物および発現)
G3BP−1およびG3BP−2aのN末端またはC末端のいずれかの配列を提示する
短縮されたcDNA(図2)を、GST融合細菌発現ベクター(pGex、ファルマシア(Pharmacia))にサブクローニングして、組換え融合タンパク質を発現させてビーズ結合アッセイ(下記参照)に使用しrasGAP120のSH3ドメインと相互作用するG3BPのサブドメインを同定できるようにした。組換え融合タンパク質の構築物を有するベクターで大腸菌DH5’のコンピテント細胞を形質転換し、IPTG誘導で発現させた。組換えタンパク質を回収するために、細胞を洗浄してPBS中に再懸濁させ、超音波で破砕して融合タンパク質を遊離させた。
グルタチオンカラム(ファルマシア)を、1×結合緩衝液A(50mMのHEPES(pH7.4)、100mMのNaCl、5mMのMgCl2、50mg/mlのBSA、1mMのDTT、1mMのPMFSおよびプロテアーゼ阻害剤(プロテアーゼ阻害剤カクテル、オーストラリア所在のロシュ・ダイアグノスティクス(Roche Diagnostics))中で4℃で一晩ブロッキングした。翌日、このカラムを結合緩衝液Aで2回洗浄した。GST単独またはGST融合タンパク質のいずれかを発現された細菌の溶解物を、2×結合緩衝液Aで1:1に希釈し、平衡化したGSTカラムに加え、このカラムを4℃で一晩穏やかに振盪させた。過剰なタンパク質を除去するために、カラムを1×結合緩衝液Aで2回洗浄した。rasGAP120タンパク質のHisタグを付加したN末端を有する細菌溶解物を、200mg/mlのBSAと0.1%Tweenとを含有する等容量の2×結合緩衝液Aと合わせた。非特異的なタンパク質−タンパク質相互作用を阻止するために使用される高濃度のBSAに加え、臭化エチジウムを添加して最終濃度25ng/mlとし、過剰な細菌ゲノムDNAおよび細菌RNAにより生じる非特異的相互作用を排除した。次いでこの混合物を、予め結合処理したGSTカラム(上記)に加え、4℃で2時間結合させた。次に該カラムを結合緩衝液B(50mMのHEPES(pH7.4)、200mMのNaCl、5mMのMgCl2、1mMのDTT、1mMのPMFSおよびプロテアーゼ阻害剤)で3回洗浄した。
上記のような、タンパク質と複合させたGSTビーズ1μlを、等容量の2×PAGEローディング色素に加え、95℃で5分間加熱し、7.5%ポリアクリルアミドゲルに装入して100Vで3時間泳動させた。該タンパク質をニトロセルロースにトランスファーし、抗His抗体(Tetra−His(登録商標)抗体、キアゲン(Qiagen))で探索した。GST単独と結合させたカラムを負の対照として使用し、カラムに結合したままの非特異的Hisタグ付加N末端rasGAP120がないことを保証した。GSTカラムが適切なGST−G3BPペプチドで飽和したことを保証するために、すべての実験を抗GSTで探索してカラムが「エサ(bait)」ペプチド(データは示さず)を含むことを確認した。
1.2〜2.0×106個/mlの細胞濃度のSf21細胞500mlに、タンパク質を発現させるためのcDNAを含有するバキュロウイルス(6.6×108〜1.6×109pfu/ml)60mlを感染させ、回転式(orbital)インキュベータ中28℃で4日間インキュベーションした。細胞をハーベストし、PBSを用いて4℃で2回洗浄し、HNTG細胞溶解緩衝液50ml中で30秒間のボルテックス処理と4℃で30
分間の穏やかな振盪とにより溶解し、4℃で9500rpm×10分遠心分離することにより清澄化した。NaClとTritonX‐100(登録商標)を含まないHNTG細胞溶解緩衝液(プロテアーゼ阻害剤を含む)を加えることにより最終塩濃度を30mM NaClに調節し、ヘパリンセファロース1mlあたりのタンパク質が15mgの濃度に予め平衡化したヘパリンセファロースCL−6B(ファルマシアバイオテク(Pharmacia biotech)#17−0467−01)と共に回転ミキサーを用いて4℃で一晩インキュベーションした。ゲルを50mMのHepes(pH7.5)、グリセロール10%中で洗浄し、カラム(ファルマシア XK−26)に充填した。このカラムを、ファルマシアのFPLCシステムを用いて流速0.83ml/分で120分かけて30mM〜1.0MのNaCl勾配に供した。試料を1.5mlずつ回収し、ポリアクリルアミドゲルで分離することによりMmuG3BPに関してアッセイし、クーマシーブルー染色または663抗体を使用するウェスタンブロット分析により可視化した。
(ポリクローナル抗体の製造)
内部ペプチド配列(SATPPPAEPASLPQEPPKPRV)に対して作製した抗血清から、G3BP−2に対するアフィニティ精製抗体を得た。G3BP−1に対して作製したポリクローナル抗体は、他所(パーカー(Parker)ら、1996年)に記載されており、モノクローナルG3BP−1抗体は市販されている(オーストラリア国シドニー所在のビーディーバイオサイエンシズ(BD Biosciences))。
ヒト組換えGST融合G3BP−1、G3BP−2a、G3BP−2bおよびG3BP−2a短縮体(truncations)への結合能力を試験することにより、G3BP−2抗体の特異性を評価した。ケネディ(Kennedy)らの文献(2001)に以前に記載されたように、LB/Amp寒天平板培地に、完全長G3BP−1、2aおよび2bのみならずG3BP−2aの4種の択一的短縮体(N1、N2、C1およびC2)を含有するpGEXベクター(アマシャムバイオサイエンシズ(Amersham Biosciences)のGST遺伝子融合システム)で形質転換した大腸菌を播種した。各平板培地から1個のコロニーを使用して、LB/Amp液体培地5mlに接種し、これを37℃で一晩インキュベートした。製造者(アマシャムバイオサイエンシズ)の指示に従い、IPTGで誘導した培養物から、グルタチオンセファロースアフィニティクロマトグラフィーによりGST融合タンパク質の単離を行った。グルタチオンで溶離させた後、溶液を5000rpmで5分間遠心し、上澄みをPBS中で透析した。
lipore))にトランスファーし、抗G3BP−2抗体と共にインキュベートした。ECLシステム(アマシャムバイオサイエンシズ)を使用して、HRPコンジュゲート抗ウサギ抗体によりタンパク質を可視化した。
ウェスタンブロットにより、ヒト細胞株でのG3BPの発現を調べた。細胞を、FCS10%を添加したDMEM中インビトロで維持し、トリプシン処理によりハーベストし、PBSで2回洗浄し、HNTG緩衝液(50mM Hepes(pH7.5)、150mM NaCl、1%TritonX‐100(登録商標)、10%グリセロール、1mM
MgCl2、1mM EGTA、1mM Na3VO4、10mM Na4P2O7、10mM NaF、1mM PMSFおよび1×哺乳動物プロテアーゼ阻害剤カクテル#P8340(オーストラリア国キャッスルヒル所在のシグマ(Sigma))中に再懸濁した。15000rpmで10分間遠心分離することにより細胞溶解物を清澄化し、ピアス(Pierce)のBCAタンパク質アッセイ(米国ロックフォード)を使用してタンパク質濃度を決定した。全部で75μgのタンパク質を8%SDS−PAGEにより分離し、上記の抗体を使用してウェスタン分析するためにイモビロン−P PVDF膜(オーストラリア国シドニー所在のミリポア)にトランスファーした。ECLシステム(オーストラリア国シドニー所在のアマシャムバイオサイエンシズ)を使用して、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)をコンジュゲートした抗ウサギまたはマウス抗体により、タンパク質を可視化した。
抗体特異性および各種の細胞におけるG3BPの発現を評価するために、乳がん細胞株MDA−MB−435および子宮頚がん細胞株HeLaを溶解し、等量のタンパク質をSDS−PAGEにより分離した。試料を膜にトランスファーし、ウェスタンブロット法により分析した。市販のモノクローナルG3BP−1抗体(ビーディーバイオサイエンシズ)を使用してG3BP−1発現を評価し、ポリクローナルG3BP−2抗体(ケネディ(Kennedy)ら、2001年)を使用してこれらの細胞株でのG3BP−2の発現を調査した。図9のパネルAに示されているように、いずれの細胞系もかなりのレベルのG3BP−1(単一の顕著なバンドとして存在)およびG3BP−2(2つの別個のバンドとして存在し、2個の異なるアイソフォームを示している)を発現することは明らかである。同じ発現パターンが、不死化ヒト細胞株HEK293Tで見られた(データは示さず)。大きな交差反応性はないようであった。しかしながら、G3BP−1、2aおよび2bのアミノ酸配列に従った相対分子量と、PAGEにより決定された前記タンパク質の見かけの分子量との間には若干の変動があった。データに従えば、G3BP−2aはG3BP−1のすぐ上の地点に分離されるはずだが、実際にはG3BP−1のすぐ下の地点に分離されるようである。
(ウェスタンブロット法)
レムリ(Laemmli)の方法を使用してドデシル硫酸ナトリウム(SDS)−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(7.5%ゲル)でタンパク質を分画し、25mMトリス(pH8.3)、192mMグリシンおよび15%メタノールを含有するトランスファー用緩衝液を用いてバイオラッド(Bio−Rad)のトランスブロットセル中でポリニフッ化ビニリデン(PVDF)膜(ミリポア社(Millipore Corp.))上にトランスファーした。エレクトロブロッティングを、100ボルト、4℃で一晩実施した。このブロットを、10%スキムミルクを含有する20mMトリス−HCl(pH7.5)、150mM NaCl、0.1%Tween−20(登録商標)(ブロッキング溶液)中で室温で1時間インキュベートした後、ブロッキング溶液に含めた1次抗体、抗G3BP−1(1:500に希釈)または抗G3BP−2(1:4000に希釈)と共に4℃で一晩インキュベートした。該ブロットをブロッキング溶液中で10分間、3回洗浄した後、続いてホースラディッシュペルオキシダーゼとコンジュゲートしている抗ウサギ抗体(バイオラッド)をブロッキング溶液で1:10000に希釈した2次抗体中で、37℃で2時間インキュベーションした。
細胞および組織を、氷冷リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で2回洗浄し、50mM Hepes(pH7.5)、150mM NaCl、1%TritonX‐100(登録商標)、10%グリセロール、1mM MgCl2、1mM EGTA、ホスファターゼ阻害剤(1mM Na3VO4、10mM Na4P2O7及び10mM NaF)およびプロテアーゼ阻害剤(1ml当たり1μgのロイペプチン、1ml当たり1μgのトリプシン阻害剤、1μgのペプスタチンA、1ml当たり2μgのアプロチニン、1ml当たり10μgのベンズアミジン、1mMのフッ化フェニルメチルスルホニル、1ml当たり1μgのアンチパイン、1ml当たり1μgのキモスタチン)からなるHNTG溶解緩衝液中で、ドーンス(dounce)型ホモジナイザーを用いて可溶化またはホモジナイズした。15000rpmで10分間遠心分離することにより溶解物を清澄化し、バイオラッドのタンパク質アッセイ(#500−0001)を使用して、ブラッドフォードの色素結合手法によりタンパク質濃度を決定した。
免疫組織化学を使用して、G3BP−1およびG3BP−2発現の細胞特異性の程度を分析した。G3BP−2aおよびG3BP−2bに対してアイソフォーム特異抗体が作製されるまでは、免疫組織化学的にこれらのアイソフォームを区別することはできないが、一部の組織では、ウェスタンブロットデータ(本願明細書中に記載)と比較することにより、どちらの特異アイソフォームが発現されているかを決定することが可能である。
ようであり、G3BP−2はすべての細管(パネルG中、Tuと表示)で低レベルで発現される。G3BP−1もG3BP−2も、糸球体(パネルG中、Gmと表示)では発現されない。結腸(パネルCおよびH)では、G3BP−1が腸腺の周囲で発現、または間質細胞で発現されている可能性もあり、他方でG3BP−2が、腸腺(パネルHおよびI中、Igと表示)の管腔で発現されることを示している。G3BP−2は小腸の絨毛でも高レベルで発現されるが(図6、パネルI)、G3BP−1(図6、パネルD)は、陰性対照のバックグラウンドの染色を上回るレベルでは検出されなかった。ここでも胃(図6、パネルE)ではG3BP−1に関する検出可能な染色は観察されなかったが、G3BP−2(ウェスタンブロットデータからみるとおそらくG3BP−2bのみ)は、胃内腔の粘液分泌細胞(パネルJ中、Epと表示)および幽門腺(パネルJ中、Pgと表示)の内表面中で発現されるようである。免疫組織化学により調査された他の組織には、心臓、肝臓および脾臓が含まれる(データは図示せず)。心臓および肝臓は、概して低いレベルのG3BP−1およびG3BP−2の発現を示したが、脾臓はG3BP−2に関して陰性でG3BP−1については細胞特異的染色を示した。どのタイプの細胞が、脾臓内で観察されたG3BP−1発現性の島状物を構成しているのかは、さらに調べなければならない。
(PACの蛍光in situハイブリッド形成法)
蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)を、末梢のヒト中期染色体上で行った。BioNick(登録商標)ラベリングシステム(ライフテクノロジーズ(Life Technologies))を使用したニックトランスレーションにより、PAC DNAをビオチン14dATPで標識した。染色体の調製およびFISHの条件は、以前記載されたもの(ウィッキング(Wicking)ら、1995年)と同様であった。オリンパスのBH2蛍光顕微鏡を使用してスライドを分析した。
2種のHsaG3BP−1特異プライマー、5’GGAGGCATGGTGCAGAAACCA[配列番号:12]および5’CAGGAAAGGGAAGAGAGGGAG[配列番号:13]、ならびに2種のHsaG3BP−2特異プライマー、5’GTCTTGGCAGTGGTACATTAT[配列番号:14]および5’AGTTCACTTT
GTCGTAGATAGTTTAAG[配列番号:15]を使用して、ヒトゲノムDNAの特異的テンプレートを増幅し、続いてGenebridge4(商品名)ハイブリッドパネル上で使用して陽性のものを同定した。次いで、このデータを、ホワイトヘッド研究所/MIT ゲノムリサーチセンター(Center for Genome Research)(http://carbon.wi.mit.edu)を介して利用可能なオンラインマッピングソフトウェアにより処理した。
G3BP−2とその内在性の標的との結合を阻止または妨害するアンタゴニストは、乳がんの予防または治療において有用な可能性がある。アンタゴニストは、G3BP−2のNTF2様ドメインか、NTF2様ドメインに結合する内在性の標的のいずれかを模倣しうる。例えば、rasGAP120のSH3ドメインは、乳がんにおけるG3BP−2の活性を阻止するためのペプチドアンタゴニストとして使用することができるであろう。rasGAP120のSH3ドメインのアミノ酸配列は:
VRAILPY TKVPDTDEIS FLKGDMFIVH NELEDGWMWV TNLRTDEQGL IVEDLVEEVG REED[配列番号:6]
である。前記配列のNCBIアクセス番号はP20936である。アンタゴニストはポリペプチドでよいが、アンタゴニストとして作用しうる非ペプチド分子であってもよい。
個人の乳がんを診断するためにG3BP−2を使用することが可能である。1実施形態では、この方法は(i)哺乳動物から得られた試験試料をG3BP−2ポリペプチドの発現に関してアッセイする工程と;(ii)試験試料からのG3BP−2発現と、正常哺乳動物からの正常試料での発現とを比較する工程と;(iii)試験試料でのG3BP−2の発現が正常試料とは異なる場合に、該哺乳動物が乳がんを有する可能性が高いと診断する工程とを含みうる。「異なる」との用語は少なくとも、補助付き手段または補助無し手段により検出可能な差異を意味する。例えば、補助無し手段には、ウェスタンブロットでの「バンド」の濃さもしくは暗さ、またはELISAのウェルの色の濃さなどの相対的な見た目のタンパク質量の差異をヒトが視覚的に比較することが含まれる。補助付き手段には、例えば組織切片の抗体結合を評価するための顕微鏡、またはタンパク質量の差異を検出および測定することが可能な装置、例えばELISAプレートリーダーもしくはFACSの使用が含まれる。乳がんを診断する方法には、G3BP−2ポリペプチドまたはその断片に結合する抗体を使用して、試験試料中のG3BP−2ポリペプチドまたはその断片を検出する工程が含まれうる。例えば図7〜9で使用される本願明細書に記載の抗体は、診断キットにおいて役に立ち得る。抗体は、ポリクローナルまたはモノクローナル抗体であってよい。
(患者)
1981年から1990年の間にロイヤルブリスベーン病院(Royal Brisbane Hospital)の病理学部門(Department of Pathology)で診断を受けた59例の浸潤性乳がんをランダムに選択した。記録保管用のパラフィンブロックは、ロイヤルブリスベーン病院から倫理承認された被検物であり、すでに以前に上皮ムチンMUC1発現についての比較的大きな研究の一部として特性解析されている(マクガッキン(McGuckin)ら、1995年)。腫瘍の組織分類およびグレードの判定を、ブルーム(Bloom)およびリチャードソン(Richardson)のシステムのノッティンガム(Nottingham)による変法(エルストン(Elston)およびエリス(Ellis)、1990年)に従って行った。生化学的デキストランチャコール法により決定された結節の状態およびエストロゲン受容体(ER)の状態を含むデータを、臨床カルテおよび病理記録から得た。
乳房腫瘍切片(3〜4μm)を接着スライドに付着させて37℃で一晩乾燥させた。標準的なプロトコルを使用して、切片のワックスを除去し、アルコール濃度の勾配を脱イオン水まで低下させることにより再水和させた。G3BP−1に関して染色しようとする切片は、1mMのEDTA(pH8.0)中120℃で20分間オートクレーブすることにより、熱処理による抗原性賦活化に供した。G3BP−2用の試料は、0.1Mのトリス−HCl(pH9.0〜9.2)中マイクロ波をかけて5分間沸騰させ、これを新鮮なト
リス−HCl緩衝液を用いて繰り返すことにより、熱処理による抗原性賦活化に供した。すべての切片を室温まで冷却させ(20〜30分)、次いでpH7.4のトリス緩衝生理食塩水(TBS)中で洗浄した。1.0%H2O2、0.1%NaN3を含むTBS中で切片を10分間インキュベートすることにより、内在性ペルオキシダーゼ活性を阻害した。切片をTBS中で洗浄し、続いて4%脱脂スキムミルク粉末を含むTBS中で15分間インキュベートした。切片をTBS中で切片を軽くすすぎ、次いで10%正常ヤギ血清(NGS)と共に加湿室中で20分間インキュベートした。過剰な正常血清を静かに除き、室温で一晩1次抗体(または陰性対照としてTBS)と反応させた。切片をTBS中で洗浄し、次いで2次抗体(デンマーク国グロストルップ(Glostrup)所在のDAKO社のEnVision(登録商標)キット)と共に45分間インキュベートした。切片をTBS中で洗浄し、基質としてH2O2を用いて3,3−ジアミノベンジジン(DAB)中で発色させた。切片を流水(水道水)で穏やかに洗浄し、次いでマイヤーヘマトキシリン中で軽く対比染色し、濃度を段階的に上げたアルコールを用いて脱水し、キシレン中で不純物を除去し、DPX封入剤に封入した。
G3BP−2発現の測定に加えて、G3BP−1の発現についても、図8に示すように免疫組織化学により24例の乳がんについて調べた。このうち、22例の切片は浸潤性腺管がん(IDC)であり、2例は、浸潤性小葉がん(ILC)であった。核を青色に染色するヘマトキシリンですべての切片を対比染色し、ホースラディッシュペルオキシダーゼを使用して、茶色の染色として見られるようにG3BP−1の発現を視覚化した(図8、パネルA〜C参照)。ほとんどの正常細胞が細胞質で検出可能な程度のG3BP−1発現を示した(図8、パネルC参照)。2例の正常腺管(ND)が図8のパネルCで見られ、G3BP−1の細胞質での発現は、明確な茶色の染色として見られるように明らかである。G3BP−1染色は、図8のパネルAおよびBに示されているIDC切片でも明らかだが、隣接する結合組織(CT)は、検出可能なレベルではG3BP−1を発現しない。図8のパネルAおよびBの腫瘍細胞は、図8のパネルCの正常腺管で見られるG3BP−1の発現と比較して、細胞質中でより高いレベルのG3BP−1を発現するようである。
BP−2の発現はない。
興味深いことに、G3BP−2は核へと往復することが可能であり、その動きは細胞周期に依存しているようである(図8P〜8T参照)。血清飢餓による休止細胞中ではG3
BP−2は細胞質に局在しているが(図8P);G0期から細胞が開放されると2時間以内にG3BP−2の核内への移動が見られ(図8Q〜8T)、5時間目にはほぼ全部が核内にあるようである(図8R)。この後、G3BPは両方のコンパートメントでも見ることが可能であり、このことは核と細胞質との間を往復することと一致する(図8Sおよび8T)。
血清欠乏法(トビー(Tobey)ら、1988年)を使用して、NIH3T3細胞の細胞周期同調を実施した。NIH3T3細胞を、10%FCS中サブコンフルエントな条件でカバーガラス上に播種した。24時間後に細胞をPBSで3回洗浄し、無血清培地を該培養物に添加して24時間放置した。次いで無血清培地を、10%FCSを含む培地と交換した。血清飢餓の間と、血清刺激の後2、5、9および12時間目に、カバーガラスを培地から外した。次いで、カバーガラスを、G3BP−2の発現を調査する免疫蛍光法のために処理した。
NIH3T3細胞をカバーガラス上で成長させ、上記のように処理し、PBSで3×2分間洗浄して室温で一晩乾燥させた。細胞を、100%冷アセトンを用いて5分間固定し、放置して乾燥させ、次いでPBSで3×5分間カバーグラスを洗浄することにより再水和した。次に0.1%TritonX‐100(登録商標)を含むPBS中でカバーガラスを5分間インキュベートすることにより、細胞の透過性を高めた。次いで、カバーガラスをPBSで3×5分間洗浄することにより、前記界面活性剤を除去した。PBSで適切な濃度に希釈した1次抗体と反応させて4℃で一晩放置した。翌朝、1%正常ヤギ血清(NGS)/1%ウシ血清アルブミン(BSA)を含むPBS中で、カバーガラスを3×5分間洗浄した。次いで、2次抗体と反応させて室温で1時間インキュベートした。2次抗体は、FITCまたはローダミンいずれかの蛍光タグとコンジュゲートした抗ウサギIgG抗体(米国ユージーン所在のモレキュラープローブス(Molecular Probes))であり、0.1%のTritonX‐100(登録商標)を含むPBSで製造者の指定の希釈率に希釈した。次いで、カバーガラスを、0.1%のTritonX‐100(登録商標)を含むPBS中で2×5分間、その後PBS中で2×5分間洗浄した。最後に、カバーガラスを50%グリセリン/50%PBSを用いてスライド上にマウントし、マニキュア液で密封した。オリンパスのProvis AX−70を使用して画像化し、ScionImage1.62フレーム取込みソフトウェアを使用してDAGE−MTI CCDカメラでデジタル形式で取り込んだ。Adobe Photoshop5画像処理ソフトウェアを使用して画像を分析した(アドビシステムズインコーポレイテッド(Adobe systems incorporated)、イーストマンコダック社(Eastman Kodak Company)、1996年)。
本発明は、動物において乳がんを予防または治療するための薬剤組成物および方法を提供する。薬物組成物は、予めG3BP−2ポリペプチド、その断片、相同体または誘導体と接触させることにより抗原を装荷またはパルス処理した単離抗原提示細胞を含む。単離
抗原提示細胞は、樹状細胞療法を受ける患者から単離された樹状細胞であることが好ましい。抗原提示細胞は、樹状細胞前駆体であってもよい。抗原提示細胞を、抗原装荷の前または後にインビトロで培養して、増殖または細胞数を増加させてもよい。抗原提示細胞にG3BP−2ポリペプチド、その断片、相同体または誘導体を装荷する代わりに、またはそれに加えて、抗原提示細胞を、G3BP−2ポリペプチド、その断片、相同体または誘導体をコードする核酸でトランスフェクションすることも可能である。核酸は、DNAまたはRNAであってよい。
(G3BP−2および乳がんのための新規免疫療法)
腫瘍負荷(tumor load)が最小であること、および免疫系による介入の理想的なターゲットであることから、免疫による予防は、乳がんにとって非常に魅力的な療法である。免疫学的予防療法のために最も有望な戦略の1つは、免疫応答の開始(ハート(Hart)、1997年)および先天免疫と適応免疫との活発な連携(クラーク(Clark)ら、2000年)を担う樹状細胞(DC)、すなわち免疫系の最も強力な抗原提示細胞(APC)の使用に基づく。研究者により、健康および疾患におけるDCの重要な役割が研究され(ホー(Ho)ら、2001年)、そのAPCとしての能力を最適化するメカニズムが構築された(ホー(Ho)ら、2002年)。細胞傷害性Tリンパ球(CTL)応答を誘発するDCの有効な能力を、様々な腫瘍を治療するために利用することは成功している(総説:ロペス(Lopez)およびハート(Hart)、2002年)。さらに、血液から大量のDCを得ることが可能であることは証明されている(ロペス(Lopez)ら、2002年)。この非常に有望な研究分野はまだ、一般的な形で適用される前の決め手を待っている。
れ、90%を超える乳がん患者で過剰発現される(ハッデン(Hadden)、1999年)。Her2/neuは、乳がん患者の20〜30%で過剰発現される上皮成長因子受容体に相同な膜貫通型糖タンパク質である(ワン(Wang)ら、2001年)。この分子は疾患の侵攻性に関連があり、予後不良の指標である。このタンパク質に対する細胞性および液性の両方の免疫応答が患者で検出されている(ワン(Wang)およびハン(Hung)、2001年)。加えて、他の悪性疾患と共通のTAA、例えば、MAGE1及び3(黒色腫抗原)が、乳がんのそれぞれ20%および26%で発現される(マシノ(Mashino)ら、2001年;オッテ(Otte)ら、2001年;ルッソ(Russo)ら、1995年)。最後に、炭水化物抗原globo H(ギレフスキー(Gilewski)ら、2001年)などの新規の抗原が最近は出現しており、これらは現在評価されているところである。利用可能なTAA候補のいずれも、乳がんの最適なTAAに関する前記の基準を満たしていない。しかしながら、本発明の研究者らの最近のデータは、G3BPタンパク質が優れたTAA候補に相当することを示している。
G3BP−2タンパク質は、G3BP−2aおよび/またはG3BP−2bタンパク質を含むことが好ましい。
G3BP−2タンパク質断片は、KLPNFGFVV[配列番号:1]およびIMFRGEVRL[配列番号:2]からなる群から選択することが好ましい。
G3BP−1およびG3BP−2の配列から決定したアイソフォーム特異的な合成ペプチドに対して作製した抗体を使用して、成体マウス組織由来の全細胞溶解物のウェスタンブロットを探索した(図5)。図5のパネルAは抗G3BP−1ポリクローナル抗体で探索した組織を示し、これに対してパネルBは抗G3BP−2ポリクローナル抗体で探索した組織をコラージュのように構成したものを示している。肺、肝臓、腎臓、胃および結腸(データは示されていないが、膵臓および精巣も)を含めたいくつかの組織がG3BP−2の両アイソフォームを発現することが分かる(図5、パネルB)。脳、筋肉(少量のG3BP−2b発現が見られ、これはおそらく試料中に様々な細胞集団が存在することが原因である)および心臓を含めた他の組織は、G3BP−2aのみの発現に限られている(図5、パネルB中の上側のバンド)。小腸はMmuG3BP−2bのみを発現し(図5、パネルBの下側のバンド)、脾臓はいずれのタンパク質も検出可能なレベルでは発現しない。G3BP−1の全般的な発現はG3BP−2の発現よりも少ないようだが、一部の組織は豊富なレベルのG3BP−1を発現し、それらには、肺、腎臓および結腸が含まれる。心臓、肝臓および脾臓も低レベルのG3BP−1を発現する。
(PCRおよびサブクローニング)
1.1ユニットのTth Plus DNAポリメラーゼ断片(バイオテク・インターナショナル(Biotech International))および製造者(バイオテク・インターナショナル)供給の緩衝液にテンプレートDNA100ngとそれぞれ適切なプライマー50pmolを含めたものを使用して、プローブを増幅させるため、またはハイブリッドマッピングのためのPCR反応を実施した。サイクル条件は、94℃で1分間のDNAの変性、65℃で1分間のアニーリングおよび72℃で1分間の伸長反応を25サイクルとした。完全長G3BPまたはG3BPのNTF2様ドメインのいずれかを増幅するために使用可能なプライマーは以下のとおりである:
完全長ヒトG3BP−1は、プライマーG3BP−2metと共にG3BP−1stopを使用して増幅させ;完全長ヒトG3BP−2は、プライマーG3BP−2metと共にプライマーG3BP−2stopを使用して増幅させ;ヒトG3BP−1のNTF2様ドメインは、プライマーG3BP−1metと共にプライマーG3BP−1ntfを使用して増幅させ;かつヒトG3BP−2のNTF2様ドメインは、プライマーG3BP−2metと共にプライマーG3BP−2ntfを使用して増幅させる。
NTF2様ドメインは、配列番号(SEQ ID NO):22に記載されているアミノ酸残基1〜146によりコードされることが好ましい。
(i)KLPNFGFVV[配列番号:1];
(ii)IMFRGEVRL[配列番号:2]および
(iii)SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]
からなる群から選択される。
(a)KLPNFGFVV[配列番号:1];
(b)IMFRGEVRL[配列番号:2]および
(c)SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]
からなる群から選択される単離G3BP−2タンパク質断片を提供する。
TF2様ドメインを含むタンパク質をコードし、ここで、前記NTF2様ドメインはアミノ酸残基1〜146によりコードされ、アミノ酸残基1は開始メチオニン(M)である。
別の形態では、単離核酸は配列番号:23に記載されているヌクレオチド配列を含む。
Claims (53)
- NTF2様ドメインを含み、該NTF2様ドメインを介して他のタンパク質に結合可能な単離タンパク質であって、完全長G3BP−1タンパク質でも、完全長G3BP−2タンパク質でもない単離タンパク質。
- NTF2様ドメインがG3BP−2のNTF2様ドメインである、請求項1に記載の単離タンパク質。
- 前記他のタンパク質が、ran核膜孔ポリペプチド、ユビキチンヒドロラーゼおよびGAP120からなる群から選択される、請求項1に記載の単離タンパク質。
- ユビキチンヒドロラーゼがODE1である請求項3に記載の単離タンパク質。
- NTF2様ドメインが配列番号:5に記載されているアミノ酸残基1〜146によりコードされ、アミノ酸残基1が開始メチオニン(M)である、請求項1に記載の単離タンパク質。
- NTF2様ドメインを有するタンパク質と、ran核膜孔ポリペプチド、ユビキチンヒドロラーゼおよびGAP120からなる群から選択される他のタンパク質とを含む、単離タンパク質複合体。
- 動物において免疫応答を誘発可能な、その断片、相同体、変異体または誘導体を含めた単離G3BP−2タンパク質。
- 前記動物がヒトである、請求項7に記載の単離G3BP−2タンパク質。
- (i)KLPNFGFVV[配列番号:1]、
(ii)IMFRGVRL[配列番号:2]、および
(iii)SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]
からなる群から選択される、請求項7に記載の単離G3BP−2タンパク質。 - (i)KLPNFGFVV[配列番号:1]、
(ii)IMFRGVRL[配列番号:2]、および
(iii)SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]
からなる群から選択される、単離G3BP−2タンパク質断片。 - 前記単離タンパク質の断片、相同体、変異体および誘導体を含めた請求項1に記載のタンパク質をコードする単離核酸。
- 配列番号:5に記載されているNTF2様ドメインを含むタンパク質をコードする請求項11に記載の単離核酸であって、前記NTF2様ドメインがアミノ酸残基1〜146で構成され、アミノ酸残基1が開始メチオニン(M)であることを特徴とする単離核酸。
- 配列番号:4に記載されている配列のヌクレオチド239〜676を含む、請求項11に記載の単離核酸。
- 請求項10に記載のG3BP−2タンパク質断片をコードする単離核酸。
- 請求項11または請求項14に記載の核酸を含む発現ベクター。
- G3BP−2と他のタンパク質との結合を阻止または妨害するためのアンタゴニストの使用。
- 前記アンタゴニストがG3BP−2のNTF2様ドメインと前記他のタンパク質との結合を阻止または妨害することを特徴とする、請求項16に記載のアンタゴニストの使用。
- 前記アンタゴニストがG3BP−2のNTF2様ドメインの模倣物質であることを特徴とする、請求項16に記載のアンタゴニストの使用。
- 前記アンタゴニストがNTF2様ドメインに結合することを特徴とする、請求項16に記載のアンタゴニストの使用。
- 前記アンタゴニストがタンパク質であることを特徴とする、請求項16に記載のアンタゴニストの使用。
- 前記タンパク質がSrcホモロジー3(SH3)ドメインを含むことを特徴とする、請求項20に記載のアンタゴニストの使用。
- 前記タンパク質が配列番号:6に記載のアミノ酸配列を含むことを特徴とする、請求項21に記載のアンタゴニストの使用。
- 前記アンタゴニストが非ペプチド化合物であることを特徴とする、請求項16に記載のアンタゴニストの使用。
- G3BP−2タンパク質、その断片、相同体、変異体または誘導体と予め接触させた単離抗原提示細胞。
- その断片、相同体、変異体または誘導体を含めたG3BP−2タンパク質をコードする核酸でトランスフェクションされている単離抗原提示細胞。
- 前記細胞が樹状細胞である、請求項24または請求項25に記載の単離抗原提示細胞。
- その断片、相同体、変異体および誘導体を含めた前記G3BP−2タンパク質が配列番号:5に記載のアミノ酸配列を含む、請求項24または請求項25に記載の単離抗原提示細胞。
- 前記G3BP−2断片が、KLPNFGFVV[配列番号:1]およびIMFRGVRL[配列番号:2]からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項24または請求項25に記載の単離抗原提示細胞。
- G3BP−2抗原特異的な単離リンパ球。
- 前記単離リンパ球が細胞傷害性Tリンパ球である、請求項29に記載の単離リンパ球。
- 前記G3BP−2抗原が、その断片、相同体、変異体および誘導体を含めたタンパク質であり、配列番号:5に記載のアミノ酸配列を含む、請求項29に記載の単離リンパ球。
- 前記G3BP−2タンパク質断片が配列番号:1または配列番号:2に記載のアミノ酸配列を含む、請求項29に記載の単離リンパ球。
- 請求項1、7、10のいずれか1項に記載のタンパク質、請求項11、14、15のいずれか1項に記載の核酸、または請求項24、25、29のいずれか1項に記載の単離抗原提示細胞またはリンパ球からなる群から選択される少なくとも1種の活性物質を含有する、薬剤組成物。
- 哺乳動物において乳がんを予防または治療する方法であって、請求項1、7、10のいずれか1項に記載のタンパク質;請求項11、14、15のいずれか1項に記載の核酸、G3BP−2のNTF2様ドメインの模倣物質;G3BP−2のNTF2様ドメインと他のタンパク質との結合を阻止または妨害するアンタゴニスト;または請求項24、25、29のいずれか1項に記載の単離細胞からなる群から選択される少なくとも1種の活性物質を含有する薬剤組成物を前記哺乳動物に投与する工程を含む方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項34に記載の方法。
- G3BP−2と他のタンパク質との結合を阻止または妨害する活性物質を、動物または単離細胞に投与する工程を含む、細胞増殖を変調する方法。
- 前記動物がヒトである、請求項36に記載の方法。
- 試料中の1つまたは複数の候補がG3BP−2のNTF2様ドメインと結合するかどうかを決定する工程を含む、G3BP−2と結合する分子を単離する方法。
- 前記分子がアンタゴニストである、請求項38に記載の方法。
- 前記アンタゴニストがタンパク質または非タンパク質分子である、請求項39に記載の方法。
- 哺乳動物の乳がんを診断する方法であって、該哺乳動物から得られた試験試料中のG3BP−2タンパク質の発現と参照試料中のG3BP−2とを比較する工程を含み、試験試料中のG3BP−2の発現が参照試料とは異なる場合に、該哺乳動物が乳がんを有する可能性が高いと診断することを特徴とする方法。
- 抗体を使用してG3BP−2タンパク質の発現を検出する、請求項41に記載の方法。
- その断片、相同体、変異体および誘導体を含めたG3BP−2タンパク質であって配列番号:5に記載のアミノ酸配列を含むタンパク質に、前記抗体が結合する、請求項42に記載の方法。
- 前記G3BP−2断片がNTF2様ドメインを含む、請求項43に記載の方法。
- 前記抗体が、アミノ酸配列SATPPPAEPASLPQEPPKPRV[配列番号:3]を含むG3BP−2タンパク質断片に結合する、請求項42に記載の方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項41に記載の方法。
- 前記試験試料が乳房組織である、請求項47に記載の方法。
- 哺乳動物から得られた試験試料中のG3BP−2核酸またはその断片を検出する工程を含む、該哺乳動物の乳がんを診断する方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項47に記載の方法。
- 乳がんに対して哺乳動物を免疫化する方法であって、前記哺乳動物に、
(1)G3BP−2タンパク質;
(2)(1)の断片、相同体、変異体または誘導体;
(3)G3BP−2核酸;
(4)(3)の断片、相同体、変異体または誘導体;
(5)予め(1)または(2)と接触させた単離抗原提示細胞;および
(6)予め(3)または(4)の核酸でトランスフェクションした単離抗原提示細胞
からなる群から選択される少なくとも1種の活性物質を含む免疫原性剤を投与する工程を含む方法。 - 前記G3BP−2タンパク質断片が、KLPNFGFVV[配列番号:1]およびIMFRGVRL[配列番号:2]からなる群から選択される、請求項50に記載の方法。
- 前記抗原提示細胞が樹状細胞である、請求項50に記載の方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項50に記載の方法。
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