JP2004143168A - 重水素化シクロスポリンアナログおよび免疫調節剤としてのそれらの使用 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】シクロスポリン誘導体を、シクロスポリンA(CsA)分子の以下による化学的および同位体置換により生成する:(1)アミノ酸1の化学的置換および必要に応じて重水素置換;および(2)アミノ酸1、4、9のような、シクロスポリンA分子の代謝の鍵となる部位における重水素置換。最も活性な本誘導体は、化学的および重水素置換の両方を有する。シクロスポリン誘導体を生成する方法、および開示されるシクロスポリン誘導体を用いて毒性の減少した免疫抑制を産生する方法を提供する。
【選択図】なし
Description
本出願は、1997年10月8日に提出された米国仮出願番号第60/061,360号の一部継続である(これはその全体において信頼されそして援用される)。
本発明のシクロスポリン誘導体が開示され、これは、天然に生じる、および他の現在公知であるシクロスポリンおよびシクロスポリン誘導体に勝る、向上した有効性および減少した毒性を有する。本発明のシクロスポリン誘導体は、シクロスポリンA(CsA)分子の以下による化学的および同位体置換により生成される:
1.アミノ酸1の化学的置換および必要に応じて重水素置換;および
2.アミノ酸1、4、9のような、シクロスポリンA分子の代謝の鍵となる部位における重水素置換。
本発明の最も活性な誘導体は、化学的および重水素置換の両方を有するものだった。
シクロスポリンA−シクロフィリンA複合体
CsAは、上記で記載されるように、シクロフィリンβバレルと結合する。13個のCyP A残基が、CsA結合部位を定義する。これらの残基は、Arg55、Phe60、Met61、Gln63、Gly72、Ala101、Asn102、Ala103、Gln111、Phe113、Trp121、Leu122、His126である。最も大きい側鎖の動きは、Arg55に対する1.3A、ならびにPhe60、Gln63、およびTrp121に対する0.7Aまでである。CyP AとCsAとの間に4個の直接の水素結合が存在する。CsAの残基4、5、6、7、8は、溶媒中へ突き出ており、そしてエフェクタータンパク質、カルシニュリンの結合に関与すると考えられる(Pflugl,G.、Kallen,J.、Schirmer,T.、Jansonius,J.N.、Zurini,M.G.M.、およびWalkinshaw,M.D.(1993)Nature 361、91〜94)。
CsA−CyP A複合体は、ヘテロ二量体タンパク質セリン/トレオニンホスファターゼまたはカルシニュリンのホスファターゼ活性を阻害する(Liu,J.、Farmer,J.D.、Lane,W.S.、Friedman,J.、Weissman,I.、およびSchreiber,S.L.(1991)Cell 66、807〜15;Swanson,S.K.、Born,T.、Zydowsky,C.D.、Cho,H.、Chang,H.Y.、およびWalsh,C.T.(1992)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89、3686〜90)。CyP Aは、約10nMの親和性でCsAと結合する。次いで、複合体はカルシニュリンに提示される(Liu,J.、Farmer,J.D.、Lane,W.S.、Friedman,J.、Weissman,I.、およびSchreiber,S.L.(1991)Cell 66、807〜15)。
シクロスポリンは、肝臓、小腸、および腎臓で、30個より多い代謝産物へ代謝される。13種の代謝産物および2種の第II期代謝産物の構造が同定され、そして少なくとも23種のさらなる代謝産物がHPLCにより単離され、そしてそれらの構造が質量分析により特徴付けされてきた。シクロスポリンの第I期代謝に含まれる反応は、ヒドロキシル化、脱メチル化、ならびにアミノ酸1における酸化および環化である。いくつかの臨床研究および報告は、シクロスポリン代謝産物の血液濃度と、神経−または腎臓毒性との間の関連を示した。インビトロ実験は、代謝産物が明らかにCsAよりも免疫抑制性が少なく、そしてより毒性が高いことを示唆する。
免疫調節の異常性は、全身性紅斑性狼瘡、慢性リウマチ性関節炎、1型真性糖尿病、炎症性腸疾患、胆汁閉鎖肝硬変、ブドウ膜炎、多発硬化症、および他の疾患(例えば、クローン病、潰瘍性大腸炎、水疱性天疱瘡、類肉腫症、乾癬、魚鱗癬、およびグレーブス眼症など)を含む、広範な種類の自己免疫および慢性炎症疾患に存在することが示されてきた。これらの状態のそれぞれの下にある病因は非常に異なるものであり得るが、それらは、種々の自己抗体および自己反応性リンパ球の出現を共通して有する。そのような自己反応性は、部分的に、その下で通常の免疫系が作動する恒常性制御の損失のためであり得る。
(1)異常肝臓機能;
(2)多毛症;
(3)歯肉肥大;
(4)ふるえ;
(5)神経毒;
(6)知覚過敏;および
(7)胃腸の不快感。
米国特許第4,108,985号(Rueggerらに、1978年8月22日に発行、表題「ジヒドロシクロスポリンC」)は、シクロスポリンCの水素化により生成され得るジヒドロシクロスポリンCを開示している。
本発明は、シクロスポリンAおよび関連シクロスポリンの、化学的置換および重水素化アナログに関する。
1.シクロスポリンA誘導体、もしくはその薬学的に受容可能な塩:ここで、1、3、および9、またはそれらの組み合わせからなる群から選択されるアミノ酸位置における、1個以上の水素原子は重水素原子で置換されており、そしてここで該シクロスポリンA誘導体は必要に応じて、アミノ酸9位において化学的に置換される。
Rは:
(i)重水素;
(ii)1〜16個の炭素原子の飽和または不飽和の直鎖または分岐脂肪族炭素鎖であって、そして必要に応じて、1個以上の、重水素原子、あるいは該炭素鎖のエステル、ケトン、またはアルコールを含み、そして必要に応じて、ハロゲン、ニトロ、アミノ、アミド、芳香族、および複素環式から選択される置換基を1個以上含む;
(iii)1個以上の重水素原子を含む芳香族または複素環式基;または
(iv)メチル基、であり;そして
X、Y、およびZは水素または重水素であるが、ただしRがメチル、エチル、フェニル、または−CH2OHである場合、X、Y、およびZのうち少なくとも1個は重水素であり;そしてここでR’はOHまたはアセテートまたは他のエステルであるか、あるいはOであって、そしてアミノ酸1の二重結合に隣接する炭素と一緒に複素環式環を形成する。
Rは:
(i)重水素;
(ii)1〜16個の炭素原子の飽和または不飽和の直鎖または分岐脂肪族炭素鎖であって、そして必要に応じて、1個以上の重水素原子を含み、そして必要に応じて、ハロゲン、ニトロ、アミノ、アミド、芳香族、および複素環式から選択される置換基を1個以上含む;または
(iii)1個以上の重水素原子を含む芳香族または複素環式基、であり;
X、Y、およびZは水素または重水素であり;そして
R’はOHまたはアセテートまたは他のエステルであるか、あるいはOであって、そしてアミノ酸1の二重結合に隣接する炭素と一緒に複素環式環を形成し、ただし、Rが重水素原子を含まない場合は、X、Y、およびZのうちの少なくとも1個は重水素である。
ここで、Rは:
(i)重水素;または
(ii)1〜16個の炭素原子の飽和または不飽和の直鎖または分岐脂肪族炭素鎖であって、そして必要に応じて、1個以上の重水素原子を含み、そして必要に応じて、ハロゲン、ニトロ、アミノ、あるいはアミドから選択される置換基を1個以上含む;
X、Y、およびZは水素または重水素であり;そして
R’はOHまたはアセテートであり、ただし、Rが重水素原子を含まない場合は、X、Y、およびZのうちの少なくとも1個は重水素である。
X、Y、およびZは、水素であり;そして
R’は、OHである。
Rは、水素、必要に応じてニトロ、アミノ、およびアミドから選択される置換基を1個以上含む、2〜16個の炭素原子の不飽和の直鎖または分岐脂肪族炭素鎖であり;そして
R’は、OHであるか、あるいはOであって、そしてアミノ酸1の二重結合に隣接する炭素と一緒に複素環式環を形成する。
該方法は、式(2):
該方法は、式(I)の化合物(ここでR’はアセテートである)を炭酸カリウムで処理する工程を包含する、方法。
Rは:
(i)重水素;
(ii)1〜16個の炭素原子の飽和または不飽和の、置換または無置換の直鎖または分岐の脂肪族炭素鎖;あるいは
(iii)1個以上の重水素原子を含む芳香族または複素環式基であり;
X、Y、およびZは水素または重水素であり;そして
R’は、OHまたはアセトキシもしくは他のエステルであるか、あるいはOであって、そしてアミノ酸1の二重結合に隣接する炭素と一緒に複素環式環を形成し、但し
(a)Rが重水素原子を含まない場合、X、Y、およびZの少なくとも1個は、重水素であり、かつ/またはRは、不飽和の、直鎖または分岐の脂肪族炭素鎖であり、そして
(b)XまたはYの一方が重水素であり、かつZ、およびXまたはYの他方が水素である場合、Rがメチルではない、シクロスポリンA誘導体。
ここで:
Rは:
(i)重水素;または
(ii)飽和または不飽和の、置換または無置換の直鎖または分岐の脂肪族炭素鎖であり;
X、Y、およびZは水素または重水素であり;そして
R’はOHまたはアセトキシであり、ただし、
(a)Rが重水素原子を含まない場合は、X、Y、およびZのうちの少なくとも1個は重水素であり、かつ/またはRは、不飽和の、直鎖もしくは分岐の、2〜3個の炭素の脂肪族炭素鎖であり、そして
(b)XまたはYの一方が重水素であり、かつZ、およびXまたはYの他方が水素である場合、Rはメチルではない、シクロスポリンA誘導体。
X、Y、およびZが、独立して水素または重水素であり;そして
R’が、−OHまたはアセトキシである、項36に記載のシクロスポリンA誘導体。
X、Y、およびZが、独立して水素または重水素であり;そして
R’が、−OHまたはアセトキシである、項36に記載のシクロスポリンA誘導体。
Rが、−D、−CD3、−CH=CD−CD3、−CD=CD−CD3、−CH=CH−CH=CD−CD3、−CD=CH−CD=CD−CD3、−CH=CH−CH=CD2、−CD=CH−CD=CD2、−CH=CD2、−CD=CD2、−CH=CH2、−CH=CH−CD3、−CH=CH−CH3、−CH=CH−CH=CH−CH3、および−CH=CH−CH=CH2からなる群から選択されるメンバーであり;そして
R’が、OHまたはアセトキシである、シクロスポリンA誘導体。
ここで、
Rは、不飽和の、直鎖または分岐の、2〜3個の炭素の脂肪族炭素鎖であり、
該方法は、以下の工程:
(a)シクロスポリンAのβ−アルコールを保護し、それにより中間体アセチルシクロスポリンAを形成する工程;
(b)該アセチルシクロスポリンAを酸化して、中間体アセチルシクロスポリンAアルデヒドを生成する工程;
(c)該中間体アセチルシクロスポリンAアルデヒドを、構造式:
RCH=PPh3
を有し、式中Rが上記で定義したとおりであるリンイリドを用いて、ウィッティッヒ反応で処理して、アセチルシクロスポリンA誘導体を生成する工程;および
(d)該アセチルシクロスポリンA誘導体を、塩基を用いて加水分解する工程、
を包含する、方法。
ここで、
Rは、飽和または不飽和の、直鎖または分岐の、2〜3個の炭素の脂肪族炭素鎖であって、該炭素鎖は、1つ以上の重水素原子で置換されており、
該方法は、以下の工程:
(a)シクロスポリンAのβ−アルコールを保護して、それにより中間体アセチルシクロスポリンAを形成する工程;
(b)該アセチルシクロスポリンAを酸化して、中間体アセチルシクロスポリンAアルデヒドを生成する工程;
(c)該中間体アセチルシクロスポリンAアルデヒドを、構造式:
RCH=PPh3
を有し、式中Rが上記で定義したとおりであるリンイリドを用いて、ウィッティッヒ反応で処理して、アセチルシクロスポリンA誘導体を生成する工程;および
(d)該アセチルシクロスポリンA誘導体を、塩基を用いて加水分解する工程、
を包含する、方法。
ここで、
Rが、−D、−CD3、−CH=CD−CD3、−CD=CD−CD3、−CH=CH−CH=CD−CD3、−CD=CH−CD=CD−CD3、−CH=CH−CH=CD2、−CD=CH−CD=CD2、−CH=CD2、−CD=CD2、−CH=CH2、−CH=CH−CD3、−CH=CH−CH3、−CH=CH−CH=CH−CH3、および−CH=CH−CH=CH2からなる群から選択されるメンバーであり、
該方法は、以下の工程:
(a)シクロスポリンAのβ−アルコールを保護して、それにより中間体アセチルシクロスポリンAを形成する工程;
(b)該アセチルシクロスポリンAを酸化して、中間体アセチルシクロスポリンAアルデヒドを生成する工程;
(c)該中間体アセチルシクロスポリンAアルデヒドを、構造式:
RCH=PPh3
を有し、式中Rが上記で定義したとおりであるリンイリドを用いて、ウィッティッヒ反応で処理して、アセチルシクロスポリンA誘導体を生成する工程;および
(d)該アセチルシクロスポリンA誘導体を、塩基を用いて加水分解する工程、
を包含する、方法。
普通の水素の重水素置換、およびプロチオ(protio)代謝産物に対する重水素化基質は、生体系において著しい変化を生成し得る。同位体で変更された薬物は、広範に逸脱した薬理学的効果を示した。Pettersenらは、重水素化5,6−ベンジリデン−dl−L−アスコルビン酸(Zilascorb)による抗ガン効果の増加を見いだした[Anticancer Res.12、33(1992)]。
安定な同位体(例えば、重水素、13C、15N、18O)は、非放射性同位体であり、これらはそれぞれの原子の通常の豊富な同位体よりも1個余計に中性子を含む。重水素化化合物は、非重水素化親化合物の作用機構および代謝経路の評価により、化合物のインビボでの代謝結果を調査するための、薬学的調査において使用されてきた(Blakeら、J.Pharm.Sci.64、3、367〜391、1975)。そのような代謝研究は、患者に投与されるインビボ活性化合物、または親化合物から生成される代謝産物が毒性であるかまたは発ガン性であるかを実証するためのいずれかのため、安全で、効果的な、治療薬物の設計において重要である(Fosterら、Advances in Drug Research 第14巻、2〜36頁、Academic press、London、1985)。
本発明の化合物の調製のための出発物質は、シクロスポリンAである。本発明の化合物を調製するためのプロセスは、図3のスキームIにおいて示されるように例示される。式Iを持つ他の化合物が、以下に示される合成において適切な反応物および薬剤を置換することにより合成され得ることが、以下に描写される合成経路を総覧することで、当業者に容易に明らかになる。
室温で、撹拌したシクロスポリン1(1.01g、0.84mmol)の無水酢酸(20mL)溶液に、DMAP(150mg、1.23mmol、1.5当量)を加えた。一晩撹拌した後、混合物をEtOAc(50ml)および水(25ml)の間で分配した。次いで、分離したEtOAc層を水(50mL)およびブライン(50mL)で洗い、乾燥し(MgSO4)、そして溶媒を減圧除去して、粗生成物をガラス状の固体として得た。シリカのショートカラムでのフラッシュクロマトグラフィー(2% MeOH/DCM)による精製およびベンゼンからの凍結乾燥で、2を綿毛状の無色固体として得た(1.044g、0.84mmol、定量);
ジオキサンおよび水(5mL)の1:1混合液中の化合物2(289mg、0.23mmol)の溶液に、最初にメタ過ヨウ素酸ナトリウム(100mg、0.47mmol、2当量)を、次に四酸化オスミウムの溶液(5mL;250mLの溶媒中0.5gのOsO4)を加えた。2段階の後処理、フラッシュカラムクロマトグラフィーによる精製(石油エーテル中40%のアセトン)、およびベンゼンからの凍結乾燥で、化合物3を綿毛状の無色固体として得た(226mg、0.18mmol、80%);
方法A:0℃で、化合物3(315mg、0.26mmol)のTHF(5mL)溶液に、d5−エチルトリフェニルホスホニウムヨージドから調製した重水素−リンイリド(2.67mmol、約10当量)の溶液を加えた。後処理後、フラッシュカラムクロマトグラフィー(石油エーテル中、30%〜60%のアセトン)およびHPLC(水中60%〜65%のMeCN)による精製、次いでベンゼンからの凍結乾燥で、化合物4を綿毛状の無色固体として得た(153mg、0.12mmol、47%)。
方法B:Ar下−78℃で、撹拌した化合物3(287mg、0.23mmol)のTHF(5mL)溶液に、リンイリドの溶液(Ar下室温で、d5−エチルトリフェニルホスホニウムヨージド(480mg、1.13mmol、約5当量)のTHF(10mL)懸濁液に、ヘキサメチルジシリルアミドナトリウム(1.0M;2.25mL、2.25mmol、約10当量)を加えることにより形成した)を注意深く加えた。室温まで徐々に暖めながら2時間撹拌した後、反応混合物を0℃に冷却し、そして10%AcOH/THF(10mL)を加えることによりクエンチした。反応混合物を減圧濃縮し、そして水(20mL)およびEtOAc(20mL)の間で分配した。水層をさらにEtOAc(20mL)で抽出し、そして合わせた有機抽出物を、次いで1NのHCl(20mL)および水(20mL)で洗い、乾燥し(MgSO4)、そして溶媒を減圧除去して粗生成物を得た。フラッシュカラムクロマトグラフィーによる精製(石油エーテル中40%のアセトン)、およびベンゼンからの凍結乾燥で、化合物4dを綿毛状の無色固体として得た(84mg、67μmol、29%);
室温で、MeOH(5mL)および水(2.5mL)中の4d(84mg、67μmol)の攪拌溶液に、炭酸カリウム(99mg、0.72mmol、約10当量)を加えた。一晩撹拌した後、MeOHを減圧除去し、そして水性残渣をEtOAc(10mL)および5%クエン酸溶液(10mL)の間で分配した。次いで、EtOAc層を水(10mL)およびブライン(10mL)で洗い、乾燥し(MgSO4)、そして溶媒を減圧除去して粗生成物を得た。HPLC精製(水中60%〜65%のMeCN)およびベンゼンからの凍結乾燥で、化合物5dを綿毛状の無色固体として得た(59mg、49μmol、70%);
ベンゼン(3mL)中の化合物3(49mg、39.8μmol)および重水素化d3−アリルトリフェニルホスホニウムブロミド(311mg、812μmol、約20当量)の室温で激しく撹拌した混合物に、1NのNaOH(3mL)を加えた。撹拌を室温で5日間続け、その後2層を分離し、ベンゼン層を水(5mL)で洗い、乾燥し(MgSO4)、そして溶媒を減圧除去して粗生成物を得た。HPLC精製(水中20%〜60%のMeCN)およびベンゼンからの凍結乾燥で、化合物4gを綿毛状の無色固体として得た(23mg、18.3μmol、47%);
ベンゼン(3mL)中の化合物3(56mg、45.5μmol)および重水素化d4−クロチルトリフェニルホスホニウムブロミド(360mg、907μmol、約20当量)の室温で激しく撹拌した混合物に、1NのNaOH(3mL)を加えた。撹拌を室温で5日間続け、その後2層を分離し、ベンゼン層を水(5mL)で洗い、乾燥し(MgSO4)、そして溶媒を減圧除去して粗生成物を得た。HPLC精製(水中20%〜60%のMeCN)およびベンゼンからの凍結乾燥で、化合物4eを綿毛状の無色固体として得た(23mg、18.1μmol、40%);
MeOH(5mL)および水(1mL)中の化合物4g(20mg、15.9μmol)の室温で撹拌した溶液に、炭酸カリウム(30mg、217μmol)を加えた。一晩撹拌した後、反応混合物をEtOAc(10mL)および5%水性クエン酸(10mL)の間で分配した。水層をさらにEtOAc(5mL)で抽出し、次いで、合わせた有機層を5%クエン酸(10mL)およびブライン(10mL)で洗い、乾燥し(MgSO4)、そして溶媒を減圧除去して粗生成物を得た。HPLC精製(65%のMeCN)およびベンゼンからの凍結乾燥で、化合物5gを綿毛状の無色固体として得た(10mg、8.2μmol、52%);
メタノール(5mL)および水(1mL)中の4e(18mg、14.2μmol)の室温で撹拌した溶液に、炭酸カリウム(35mg、254μmol)を加えた。一晩撹拌した後、反応混合物をEtOAc(10mL)および5%水性クエン酸(10mL)の間で分配した。水層をさらにEtOAc(5mL)で抽出し、次いで、合わせた有機層を5%クエン酸(10mL)およびブライン(10mL)で洗い、乾燥し(MgSO4)、そして溶媒を減圧除去して粗生成物を得た。HPLC精製(65%のMeCN)およびベンゼンからの凍結乾燥で、化合物5eを綿毛状の無色固体として得た(10mg、8.1μmol、57%);
重水素化シクロスポリンアナログについて、以下に記載されるように免疫抑制活性を試験した。化合物5eおよび化合物5gは、親シクロスポリンよりも強力であった。カルシニュリン活性を、Frumanら(A Proc Natl Acad Sci USA、1992)により先に記載された方法の改変したものを使用してアッセイした。オカダ酸、ホスファターゼ1型および2型インヒビターの存在下、32P−標識19アミノ酸ペプチド基質を脱ホスホリル化する全血溶解物の能力についてそれらを評価した。バックグラウンドのホスファターゼ2C活性(CsAおよびオカダ酸耐活性)を測定し、そして各サンプルから減算した。このときアッセイを、過剰に加えられたCsAの存在下および非存在下で行った。残りのホスファターゼ活性を、カルシニュリン活性として解釈した。カルシニュリンアッセイの結果は、図5に表される。結果は、平均±平均の標準誤差として示される。結果を、CsA誘導体濃度(ug/L)対カルシニュリン阻害の割合としてプロットする。アッセイされた化合物の構造は、以下を含む:
混合リンパ球反応(MLR)アッセイを、シクロスポリンおよび化合物5eおよび化合物5gで行った。結果は図6に表され、そして4つの実験の平均としてプロットされ、これはシクロスポリンまたは誘導体の濃度対阻害割合を示す。
1. 2個の個体から血液を採取し(各20ml)、そしてFicoll−Paque(Pharmacia Biotech)を使用してリンパ球を単離する。
2. 2%酢酸(v/v)の1:10希釈で、リンパ球を計数する。
3. DMEM/20%FCS(v/v)中1×106細胞/mlで、10mlの各リンパ球集団(A+B)を調製する。
4. 96ウェルの滅菌組織培養プレート、平底(Sarstedt、cat#83.1835)をセットアップする。各ウェルに以下を加える:
5. 1ウェルのリンパ球集団Aあたり100μlに等分する。
6. 1ウェルのリンパ球集団Bあたり100μlに等分する。
7. 0、2.5、5、10、25、50、および100μg/LでDMEM中補助物なしで3つ作った薬物(CSAおよびCSA誘導体)を、1ウェルあたり20μlに等分する。
8. 増殖における薬物の効果を測定するために、プレートを、5%CO2雰囲気下37℃で5日間インキュベートする。
9. 6日目に、メチル−3H−チミジン(Amersham Life Science、cat#TRK 120)のDMEM中補助物なしの1:50希釈物を3.2ml調製する。1ウェルあたり30μlを加え、そして5%CO2雰囲気下37℃で18時間インキュベートする。
10. 7日目に、Cell−Harvestor(Skatron、cat#11019)を使用して、細胞をガラスマイクロファイバーフィルターGF/A(Whatman、cat#1820024)上に採取する。細胞を1.0mlの減菌蒸留水で3回洗う。
注:全ての手順を生物学的フローフード(biological flow hood)中滅菌技術を使用して行う。
11. フィルターを、シンチレーションバイアルに置き、そして1.5mlのSciniSafe Plus 50%シンチレーション液体(Fisher、cat#SX−25−5)を加える。
12. β線カウンター(Micromedic System Inc.、TAURUS Automatic Liquid Scintilation Counter)を使用して、リンパ球に組み込まれた放射活性の量を1.0分間測定する。
13. 各薬物について平均および標準偏差を計算し、そして結果を以下のように表す:
調製された本発明の他のシクロスポリン誘導体は、以下を含む:
開示されるシクロスポリン誘導体の、物理化学的、薬力学的、毒物学的、および薬物動態学的性質の決定は、標準的な化学的および生物学的アッセイを使用して、ならびに化学および薬理学/毒物学分野で公知の数学モデル化法の使用を通して成され得る。治療的有用性および投薬レジメンは、そのような技術の結果から、および適切な薬物動態および/または薬力学モデルの使用を通して推定され得る。
(1)カルボキシメチルセルロースナトリウム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、アルギニン酸ナトリウム、ポリビニルピロリドン、トラガカントゴム、およびアカシアゴムのような、懸濁剤;
(2)以下のものであり得る懸濁剤または湿潤剤:
(a)レシチンのような天然に生じるリン脂質、
(b)例えばポリオキシエチレンステアレートのような、アルキレンオキシドの脂肪酸との縮合生成物、
(c)例えばヘプタデカエチレンオキシセタノールのような、エチレンオキシドの長鎖脂肪族アルコールとの縮合生成物、
(d)ポリオキシエチレンソルビトールモノオレエートのような、エチレンオキシドの、脂肪酸およびヘキシトールから誘導される部分エステルとの縮合生成物、または
(e)例えばポリオキシエチレンソルビタンモノオレエートのような、エチレンオキシドの、脂肪酸およびヘキシトール無水物から誘導される部分エステルとの縮合生成物。
Claims (1)
- シクロスポリンA誘導体、もしくはその薬学的に受容可能な塩:ここで、1、3、および9、またはそれらの組み合わせからなる群から選択されるアミノ酸位置における、1個以上の水素原子は重水素原子で置換されており、そしてここで該シクロスポリンA誘導体は必要に応じて、アミノ酸1位において化学的に置換される。
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