ITTO20060883A1 - Procedimento e microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di un analita in un campione biologico - Google Patents
Procedimento e microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di un analita in un campione biologico Download PDFInfo
- Publication number
- ITTO20060883A1 ITTO20060883A1 IT000883A ITTO20060883A ITTO20060883A1 IT TO20060883 A1 ITTO20060883 A1 IT TO20060883A1 IT 000883 A IT000883 A IT 000883A IT TO20060883 A ITTO20060883 A IT TO20060883A IT TO20060883 A1 ITTO20060883 A1 IT TO20060883A1
- Authority
- IT
- Italy
- Prior art keywords
- nanocrystals
- process according
- fluorophore
- polymeric matrix
- film
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 47
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 title claims abstract description 28
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 title claims description 12
- 230000026683 transduction Effects 0.000 title claims description 10
- 238000010361 transduction Methods 0.000 title claims description 10
- 238000011002 quantification Methods 0.000 title claims description 7
- 239000002159 nanocrystal Substances 0.000 claims abstract description 47
- 230000008569 process Effects 0.000 claims abstract description 32
- 239000010408 film Substances 0.000 claims abstract description 24
- 230000003595 spectral effect Effects 0.000 claims abstract description 21
- 238000002866 fluorescence resonance energy transfer Methods 0.000 claims abstract description 20
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 claims abstract description 20
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims abstract description 18
- 239000012491 analyte Substances 0.000 claims abstract description 14
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims abstract description 9
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 claims abstract description 8
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims abstract description 7
- 239000004054 semiconductor nanocrystal Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000010409 thin film Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000000523 sample Substances 0.000 claims description 26
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 22
- 229920003229 poly(methyl methacrylate) Polymers 0.000 claims description 17
- 239000004926 polymethyl methacrylate Substances 0.000 claims description 17
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 12
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 claims description 8
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 claims description 7
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 claims description 7
- 238000012546 transfer Methods 0.000 claims description 7
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims description 5
- 239000011258 core-shell material Substances 0.000 claims description 5
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims description 5
- 239000003446 ligand Substances 0.000 claims description 4
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 claims description 3
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 claims 4
- 238000000576 coating method Methods 0.000 claims 4
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims 3
- 108091005461 Nucleic proteins Proteins 0.000 claims 1
- 230000001678 irradiating effect Effects 0.000 claims 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 abstract description 20
- 230000003993 interaction Effects 0.000 abstract description 17
- 239000003550 marker Substances 0.000 abstract description 7
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 7
- 229920006254 polymer film Polymers 0.000 abstract description 3
- 239000003068 molecular probe Substances 0.000 abstract 1
- 239000002861 polymer material Substances 0.000 abstract 1
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 20
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 17
- 239000004205 dimethyl polysiloxane Substances 0.000 description 14
- 229920000435 poly(dimethylsiloxane) Polymers 0.000 description 14
- 241000894007 species Species 0.000 description 14
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 13
- 239000000370 acceptor Substances 0.000 description 9
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 9
- 238000000018 DNA microarray Methods 0.000 description 8
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 description 6
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 6
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 5
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 5
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 5
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 5
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 5
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 5
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 4
- JLCPHMBAVCMARE-UHFFFAOYSA-N [3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-hydroxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methyl [5-(6-aminopurin-9-yl)-2-(hydroxymethyl)oxolan-3-yl] hydrogen phosphate Polymers Cc1cn(C2CC(OP(O)(=O)OCC3OC(CC3OP(O)(=O)OCC3OC(CC3O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)C(COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3CO)n3cnc4c(N)ncnc34)n3ccc(N)nc3=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3ccc(N)nc3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)O2)c(=O)[nH]c1=O JLCPHMBAVCMARE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- -1 antibodies Proteins 0.000 description 4
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 4
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 4
- 238000002161 passivation Methods 0.000 description 4
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 description 3
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 3
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 3
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 3
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 3
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 3
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 3
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 3
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 3
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 3
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 3
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 3
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 3
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 3
- 238000004528 spin coating Methods 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- GXVUZYLYWKWJIM-UHFFFAOYSA-N 2-(2-aminoethoxy)ethanamine Chemical compound NCCOCCN GXVUZYLYWKWJIM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000004544 DNA amplification Effects 0.000 description 2
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108010043121 Green Fluorescent Proteins Proteins 0.000 description 2
- 102000004144 Green Fluorescent Proteins Human genes 0.000 description 2
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 2
- 238000000862 absorption spectrum Methods 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 2
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 2
- 238000007098 aminolysis reaction Methods 0.000 description 2
- 238000004630 atomic force microscopy Methods 0.000 description 2
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 2
- UHYPYGJEEGLRJD-UHFFFAOYSA-N cadmium(2+);selenium(2-) Chemical compound [Se-2].[Cd+2] UHYPYGJEEGLRJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- MVPPADPHJFYWMZ-UHFFFAOYSA-N chlorobenzene Chemical compound ClC1=CC=CC=C1 MVPPADPHJFYWMZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 238000000151 deposition Methods 0.000 description 2
- 238000013461 design Methods 0.000 description 2
- 238000005530 etching Methods 0.000 description 2
- 238000007306 functionalization reaction Methods 0.000 description 2
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 2
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 2
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 2
- 125000002924 primary amino group Chemical group [H]N([H])* 0.000 description 2
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 2
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 2
- 238000009736 wetting Methods 0.000 description 2
- 108091023037 Aptamer Proteins 0.000 description 1
- 229910004613 CdTe Inorganic materials 0.000 description 1
- ZYFVNVRFVHJEIU-UHFFFAOYSA-N PicoGreen Chemical compound CN(C)CCCN(CCCN(C)C)C1=CC(=CC2=[N+](C3=CC=CC=C3S2)C)C2=CC=CC=C2N1C1=CC=CC=C1 ZYFVNVRFVHJEIU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- 241000239226 Scorpiones Species 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 1
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 238000003491 array Methods 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 125000003636 chemical group Chemical group 0.000 description 1
- 238000007385 chemical modification Methods 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000004624 confocal microscopy Methods 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 229920001971 elastomer Polymers 0.000 description 1
- 239000000806 elastomer Substances 0.000 description 1
- 238000000609 electron-beam lithography Methods 0.000 description 1
- 238000004049 embossing Methods 0.000 description 1
- 238000000295 emission spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000007824 enzymatic assay Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 210000003608 fece Anatomy 0.000 description 1
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 1
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 238000003500 gene array Methods 0.000 description 1
- 102000054767 gene variant Human genes 0.000 description 1
- 238000011331 genomic analysis Methods 0.000 description 1
- 238000003205 genotyping method Methods 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 1
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 1
- 238000007834 ligase chain reaction Methods 0.000 description 1
- 238000007403 mPCR Methods 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 125000000956 methoxy group Chemical group [H]C([H])([H])O* 0.000 description 1
- 238000002493 microarray Methods 0.000 description 1
- 238000000465 moulding Methods 0.000 description 1
- 239000002547 new drug Substances 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000001668 nucleic acid synthesis Methods 0.000 description 1
- 239000013307 optical fiber Substances 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000002974 pharmacogenomic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011197 physicochemical method Methods 0.000 description 1
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000379 polymerizing effect Effects 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 238000002331 protein detection Methods 0.000 description 1
- 238000000575 proteomic method Methods 0.000 description 1
- 210000004915 pus Anatomy 0.000 description 1
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 1
- 239000010453 quartz Substances 0.000 description 1
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 238000011897 real-time detection Methods 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 238000003757 reverse transcription PCR Methods 0.000 description 1
- 210000003296 saliva Anatomy 0.000 description 1
- SBIBMFFZSBJNJF-UHFFFAOYSA-N selenium;zinc Chemical compound [Se]=[Zn] SBIBMFFZSBJNJF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- 230000019491 signal transduction Effects 0.000 description 1
- 239000010703 silicon Substances 0.000 description 1
- 229910052710 silicon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 239000012086 standard solution Substances 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 238000005382 thermal cycling Methods 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 230000002103 transcriptional effect Effects 0.000 description 1
- 238000009827 uniform distribution Methods 0.000 description 1
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 1
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6816—Hybridisation assays characterised by the detection means
- C12Q1/6818—Hybridisation assays characterised by the detection means involving interaction of two or more labels, e.g. resonant energy transfer
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B82—NANOTECHNOLOGY
- B82Y—SPECIFIC USES OR APPLICATIONS OF NANOSTRUCTURES; MEASUREMENT OR ANALYSIS OF NANOSTRUCTURES; MANUFACTURE OR TREATMENT OF NANOSTRUCTURES
- B82Y5/00—Nanobiotechnology or nanomedicine, e.g. protein engineering or drug delivery
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6816—Hybridisation assays characterised by the detection means
- C12Q1/6825—Nucleic acid detection involving sensors
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/536—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase
- G01N33/542—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase with steric inhibition or signal modification, e.g. fluorescent quenching
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Zoology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Nanotechnology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
DESCRIZIONE dell'invenzione industriale dal titolo: "Procedimento e microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di
un analita in un campione biologico"
Di: CONSIGLIO NAZIONALE DELLE RICERCHE - INFM I-
STITUTO NAZIONALE PER LA FISICA DELLA MATERIA,
nazionalità italiana, Corso F. Perrone, 24,
16152 GENOVA
FONDAZIONE ISTITUTO ITALIANO DI TECNOLOGIA,
nazionalità italiana, Via Sicilia, 194, 00187
ROMA
Inventori designati : Pier Paolo POMPA, Stefania SA-BELLA, Rosaria RINALDI, Roberto CINGOLANI , Franco
CALABI
Depositata il: 14 DICEMBRE 2006
★* ;;DESCRIZIONE ;La presente invenzione si riferisce ad un procedimento e ad un dispositivo per l'identificazione ;e/o quantificazione, particolarmente in tempo reale, di un analita, in particolare una biomolecola presente in un campione biologico e trova applica PR/cp zione particolarmente nel settore dell'analisi diagnostica (analisi genomiche/proteomiche) e nella produzione di bio-chip. ;Nell'ultimo decennio si è avuta una consìderevole proliferazione dei bio-chip e numerose sono le terminologie attualmente presenti ad indicarli (gene-chip, gene-array, DNA micro-array, protein chip, lah-on-a-chip) . Sostanzialmente, tali chip, sviluppati sia in formati semplici o integrati in dispositìvi/architetture più complesse, sono strutture planari di diverso materiale (comunemente vetro o plastica) sulle quali vengono immobilizzate (per modificazione chimica della superficie o per sintesi in aitu) (bio)molecole, quali DNA, proteine e cellule capaci di effettuare un riconoscimento selettivo di molecole target [Fan, 2006]. ;La tecnologìa dei bio-chip ha rivoluzionato la biologia molecolare, trovando ampio utilizzo per gli studi di espressione di geni e di proteine (genomica/proteomica) in diversi campi quali la diagnostica sperimentale e clinica, la scoperta di nuovi farmaci (hiomarkers discovery) e la farmacogenomica . ;In effetti, sono state sviluppate diverse tipologie di chip per una gamma molto ampia di applicazioni, quali saggi enzimatici [Hadd, 1997], saggi di immunochimica [Wang, 2001], analisi di riconoscimento di polimorfismi in varianti geniche [Dunn, 2000], sequenziamento di acidi nucleici [Scherer, 1999] ed anche chip per la realizzazione, su scale microvolumetriche, di reazioni di ligazione e di amplificazione del DNA (reazione di ligasi a catena [Cheng, 1996] e reazione polimerasica a catena, PCR [Kopp, 1998; Daniel, 1998]). ;In particolare, data l'elevata specificità nella reazione di ibridazione tra sequenze di oligonucleotidi (appaiamento selettivo A-T, G-C), i chip a DNA sono stati sviluppati in maniera più rapida rispetto ai chip a proteine. Il mercato di questi ultimi, infatti, sebbene di enorme interesse per il mondo scientifico, ha subito un rallentamento rispetto a quello preannunciato alla nascita di tale tecnologia, data la complessità delle interazioni che sono alla base del meccanismo di bio-ricognizione tra specie molecolari proteiche [Bodovitz, 2005] . ;In generale, in un chip, l'evento di ricognizione tra la (bio)molecola e la specie target deve essere tradotto in un segnale rivelabile e misurabile. I trasduttori fisici che permettono la conversione del segnale possono essere di diverso tipo e si basano su differenti meccanismi di funzionamento: trasduzione ottica, elettrica, elettrochimica, o dispositivi sensibili a variazioni dì massa, di corrente o di frequenza [Wang, 2002; Murphy, 2006) . ;Nel vasto campo della biosensoristìca, i sensori ottici ricoprono però un ruolo cardine. La rivelazione ottica si basa essenzialmente sulla misura della fluorescenza che si sviluppa nel sito di bioriconoscimento in seguito all'evento di legame tra le specie interagenti (ad esempio tra oligonucleotidi complementari). Tipicamente, i formati più comuni di bio-chip prevedono che una delle due specie biomolecolari sia coniugata ad un marcatore fluorescente . ;I primi trasduttori ottici si avvalevano di schemi di rivelazione ottica abbastanza semplici: tipicamente, il segnale di fluorescenza derivava da un fluoroforo coniugato alla biomolecola target, e la rivelazione del segnale avveniva alla fine della reazione dì ibridazione (bio-riconoscimento). Tali approcci consentono una rivelazione puramente di tipo qualitativo, sulla presenza o meno della biomolecola target nella soluzione in esame (approccio on/off), ma non permettono di ottenere informazioni in real-time (di tipo quantitativo) sugli eventi di interazione degli analiti. ;Successivamente, sono stati sviluppati una serie di sistemi innovativi di rivelazione ottica, che consentissero una maggiore sensibilità e flessibilità dello schema di rivelazione. Per esempio, l'uso di fibre ottiche per la trasduzione del segnale ha trovato largo impiego, così come lo sviluppo di nuove strategie di detection (FRET, molecular beacons, TIRF, SPR, sonde fosforescenti, beads) o il design di nuovi marcatori fluorescenti (ad esempio il PicoGreen). ;Queste strategie, tuttavia, pur portando ad un notevole miglioramento nei limiti di rivelazione del segnale [Piunno, 1995; Ferguson, 1998], non consentono determinazioni quantitative delle biomolecole di interesse, soprattutto nei formati pianari, quali i micro-array, che prevedono l'immobilizzazione dì sonde specifiche per il bio-riconoscimento su un substrato solido. ;CN 1 358 867 descrive un dispositivo di tipo "gene chip" che impiega il fenomeno FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer) per la rivelazione di acidi nucleici, ove il fenomeno FRET è indotto dallo scambio risonante di energia tra un fluoroforo donore e un fluoroforo accettore, legati uno alla specie sonda e l'altro alla specie bersaglio. ;W02006/066977 descrive l'impiego della risonanza FRET per la rivelazione di proteine, in cui una proteina marcata, comprendente un marcatore donore di energia e almeno un gruppo accettore, suscettìbile di accettare energia dal marcatore donore mediante trasferimento di energia di Forster, è esposto a energia elettromagnetica incidente per eccitare il gruppo donore e misurare l'emissione di fluorescenza del donore. ;Uno scopo della presente invenzione è quello di fornire un procedimento e un nuovo dispositivo a trasduzione ottica, che utilizzano il fenomeno FRET, e che permettono di effettuare una misura quantitativa e in tempo reale della specie molecolare bersaglio. ;Uno scopo particolare dell'invenzione è rivolto alla possibilità di analizzare quantitativamente il processo di amplificazione di DNA (Polymera.se Chain Reaction, PCR), poiché tale tecnologia, nelle sue diverse modalità {reverse transcriptional, RT-PCR; multiplex PCR; real-time PCR [Speers, 2006; Wrong, 2005]), combinata ai nuovi metodi di sintesi automatizzata degli acidi nucleici, fornisce un importante mezzo di ricerca nella diagnostica ed è ampiamente utilizzata nella genotipizzazione e nell'espressione fenotipica di antigeni patogeni o virali [Cockerill, 2003; Domiati-Saad, 2006]. ;Il principio di funzionamento della real-time POR si basa tipicamente sulla misura di un marcatore fluorescente, il cui segnale aumenta in misura proporzionale alla quantità di DNA amplificato in ogni ciclo di reazione. Generalmente, si avvale di sonde opportunamente coniugate a molecole fluorescenti che presentano diversi meccanismi di funzionamento (SYBR Green, TaqMan, Molecolar Beacons, Scorpions, Sunrise) [Wrong, 2005]. ;Attualmente, sono presenti diversi esempi di real-time PCR su chip. La miniaturizzazione di questa tecnologia fornisce notevoli vantaggi quali una maggiore velocità dei cicli termici, una significativa riduzione nel consumo di reagenti e dei campioni biologici, la portabilità del microdipositivo e la naturale possibilità di utilizzo per applicazioni di diagnostica al punto di cura [Lee, 2003]. ;In vista degli scopi sopra citati, costituisce oggetto dell'invenzione un procedimento, un dispositivo e un'apparecchiatura come definiti nelle rivendicazioni che seguono. ;Ulteriori vantaggi e caratteristiche del procedimento e del dispositivo secondo l'invenzione risulteranno evidenti dalla descrizione che segue, effettuata con riferimento ai disegni annessi, in cui : ;la figura 1 è uno schema generale del dispositivo a trasduzione ottica secondo l'invenzione per analisi quantitative in tempo reale di biomolecole per genomica/proteomica; ;le figure 2A e 2B illustrano uno schema del dispositivo e del relativo sistema di rilevazione ottica per il monitoraggio in tempo reale di interazioni biomolecolari per analisi genomiche/proteomiche, in particolare riferito al caso in cui la biomolecola da analizzare è il DNA (reai-time PCR); in particolare la figura 2B illustra lo spettro di assorbimento dei nanocristalli (NCs) e del fluoroforo organico (Cy3), utilizzati nell'esempio di attuazione che segue con indicazione della lunghezza d'onda utilizzata per la radiazione di eccitazione e della lunghezza d'onda utilizzata per la rivelazione; ;la figura 3 è uno schema generale del microdispositivo secondo l'invenzione e del relativo sistema di rivelazione ottica per il monitoraggio in tempo reale di interazioni biomolecolari per analisi genomìche/proteomiche; ;la figura 4 è un'immagine di un prototipo di microreattore secondo l'invenzione; ;la figura 5 è la rappresentazione di una elettroforesi su gel di agarosio del plasmide pMPSV-RM1, amplificato in 5 μΐ di miscela di reazione di POR in un microreattore secondo l’invenzione; e ;la figura 6 è un diagramma che illustra il tipico andamento del segnale di fluorescenza nel microdispositivo secondo l'invenzione (secondo lo schema ottico di figura 2) per monitorare in tempo reale le interazioni biomolecolari per analisi genomiche/proteomiche, dove il segnale rilevato è quello del fluoroforo coniugato alla biomolecola di interesse in seguito all’interazione con il corrispondente sito di riconoscimento (eccitazione mediante FRET). ;Il dispositivo a trasduzione ottica oggetto dell'invenzione per la determinazione quantitativa di biomolecole in tempo reale, adattabile ad analisi genomiche e proteomiche, comprende una microcamera di reazione 1, destinata a ricevere una soluzione contenente il campione biologico includente l'analita o gli analìti A da rilevare; la microcamera di reazione comprende una parete 2, formata da un substrato solido rivestita, o almeno in parte rivestita, con un film sottile 3 di materiale polimerico (figura 1). ;In questo film sono uniformemente dispersi i nanocristallì fluorescenti NCs e alla sua superficie sono immobilizzate sonde specifiche S per gli analiti da determinare. ;Gli analiti A presenti nel campione biologico da rivelare e quantificare sono marcati direttamente (ad esempio per sìntesi nella microcamera) o indirettamente, con uno o più fluoroforì, opportunamente scelti. L'interazione specifica tra una biomolecola analita presente nel campione e le sonde immobilizzate sulla parete otticamente attiva della microcamera è rilevata tramite un processo di FRET tra NCs (che agiscono da donori) e i fluorofori legati alla biomolecola (che agiscono da accettori). ;Lo schema ottico è illustrato nelle figure 2A, 2B e 3, in cui sono riportati, rispettivamente, il caso in cui il dispositivo oggetto dell'invenzione è utilizzato per analisi di sequenze specifiche di acidi-nucleici (real-time PCR) e il caso generale in cui si vuole effettuare la determinazione quantitativa di una biomolecola (proteine, ligandi ecc.) . ;Nel primo caso sono riportati in figura, a titolo di esempio non limitativo, gli specifici parametri ottici di fabbricazione impiegati nel microdispositivo . ;Lo schema sfrutta le peculiari caratteristiche foto-fisiche dei processi FRET: l'efficienza dell'interazione donore-accettore è fortemente dipendente dalla distanza (d) relativa fra le due specie (tipicamente è funzione di d<~6>), per cui si possono avere dei trasferimenti risonanti di energia di eccitazione, dai NCs ai fluorofori bersaglio, solo per distanze tipicamente inferiori ai 10 nanometri. ;Nello schema di rivelazione ottica integrata nel microdìsposìtivo, tali caratteristiche fotofisiche implicano il fatto che si possa ottenere un processo efficiente di trasferimento energetico dai NCs ai fluorofori legati alle molecole bersaglio solo nel momento in cui tali biomolecole abbiano interagito specificamente con la relativa sonda (a meno di un background trascurabile e costante nel tempo dovuto alle biomolecole che statisticamente si trovano in soluzione nella regione compresa entro i primi 10 nm dalla superficie del film polimerico . ;Sfruttando le particolari proprietà spettrali dei nanocristalli (essenzialmente lo spettro di assorbimento molto esteso; vedasi ad esempio lo spettro di figura 2B), è possibile monitorare le interazioni biomolecolarì di interesse utilizzando una radiazione di eccitazione a bassa lunghezza d'onda (tipicamente UV-blu, per esempio nella figura 2B è stata scelta λ = 400 nm), che va ad eccitare in maniera efficiente NCs dispersi nel film polimerico, ma non i fluorofori bersaglio, e raccogliendo il segnale di fluorescenza nella regione spettrale di emissione dei soli fluorofori legati agli analiti da determinare (per esempio, nella figura 2, intorno a 630-650 nm). ;Il punto fondamentale di tale approccio è che tutte le biomolecole libere in soluzione non vengono eccitate, non essendo in grado di assorbire direttamente la radiazione di eccitazione, e, dunque, danno un contributo nullo al segnale di fluorescenza che si va a rivelare. Questa caratteristica permette, dunque, di monitorare in maniera selettiva, in tempo reale, e in modo quantitativo, le interazioni biomolecolari con le sonde specifiche, e di conseguenza, di analizzare e quantificare le biomolecole di interesse genomico/proteomico. ;I nanocristalli utilizzati nell'ambito dell'invenzione, sono preferibilmente nanocristalli colloidali di semiconduttori, preferibilmente di tipo core-shell; ad esempio, possono essere utilizzati i nanocristalli core-shell di tipo CdSe/ZnS. Altri materiali che sono spesso utilizzati per formare il core, sono per esempio: ZnSe, CdS, CdTe. Ovviamente sono possibili un'ampia gamma di altri materiali . ;Si intende tuttavia che 1<1>invenzione non è da intendersi limitata ad una specifica scelta di nanocristalli fluorescenti. ;In una forma di attuazione dell'invenzione, il film sottile di materiale polimerico può comprendere due o più tipologie di nanocristalli fluorescenti, aventi diverse caratteristiche di assorbimento spettrale . ;I fluorofori legati alle biomolecole possono essere comuni fluorofori organici commerciali, o qualsiasi altro tipo di fluoroforo innovativo, inclusi NCs, oligotiofeni, GFPs (Green Fluorescent Proteine), beads, sistemi ibridi), purché abbiano le caratteristiche adatte per agire da efficienti specie accettori nei processi FRET da parte di NCs dispersi nella matrice polimerica (essenzialmente devono presentare un buon overlap spettrale con NCs utilizzati) . ;L'emissione dei fluorofori legati alle molecole bersaglio può spaziare in un ampio inteirvallo spettrale (dal blu all'infrarosso) , in funzione della specifica applicazione biomolecolare. ;Gli analiti compresi nel campione biologico da analizzare possono essere marcati con fluorofori diversi che emettono in regioni spettrali distinte; la possibilità di utilizzare differenti coppie NCsfluoroforo, come coppia donore-accettore, permette così di effettuare analisi in parallelo su diversi analiti (multi-plexing) . ;A questo scopo è sufficiente monitorare simultaneamente l'emissione dei differenti fluorofori, raccogliendo i diversi segnali in differenti finestre spettrali. ;Il procedimento secondo l'invenzione non è evidentemente limitato alla rivelazione e quantificazione di specifici analiti; gli analiti da determinare possono ad esempio comprendere molecole di DNA, proteine e ligandi suscettibili di essere marcati con uno o più fluorofori. ;Tali analiti (composti bersaglio) possono essere presenti in un campione biologico o anche non biologico, quali i campioni clinici estratti da sangue, urina, feci, saliva, pus, siero, tessuti, soluzioni di fermentazione o terreni di coltura. Gli analiti (composti bersaglio) possono preferibilmente essere isolati, purificati, scissi, copiati e/o amplificati, se necessario mediante metodi noti al tecnico del settore. ;Analogamente, le sonde specifiche, immobilizzate alla superficie del sottile film polimerico, possono comprendere sequenze specifiche di ssDNA, anticorpi, recettori, aptameri ecc. ;Il film otticamente attivo, integrato nel microdispositivo secondo l'invenzione, è preferibilmente realizzato a partire da una soluzione di NCs e di un polimero, preferibilmente un elastomero, che viene depositata sul substrato solido, preferibilmente mediante spin-coating o altre tecniche di deposizione in grado di garantire una distribuzione uniforme di NCs nella matrice polimerica; tipicamente, lo spessore del film polimerico varia da pochi nanometri a qualche decina di micron, ad esempio da 1 nm a 50 μπι; spessori preferiti sono dell'ordine da 10 a 100 nm . ;Il materiale polimerico utilizzato non deve essere otticamente attivo (in assenza di NCs deve presentare una fluorescenza intrinseca nulla o molto scarsa), essere trasparente nel campo spettrale che va dal vicino UV al visibile e all'infrarosso, e avere caratteristiche chimico-fisiche che permettano di disperdere in maniera uniforme NCs senza perturbarne in modo significativo le peculiari proprietà ottiche, e caratteristiche chimiche di superficie che consentano la funzionalizzazione chimica con molecole capaci di bio-ricognizione. ;In una forma di attuazione dell<1>invenzione sì può utilizzare un materiale polimerico con proprietà di resist elettronico (come ad esempio il PMMA) che permette di patternare la superficie otticamente attiva del dispositivo mediante tecniche litografiche . ;Il substrato che funge da supporto per la matrice polimerica non deve rispondere a particolari requisiti, se non quello di essere compatibile da un punto di vista fisico-chimico con il materiale polimerico utilizzato; ad esempio, si possono utilizzare silicio, silice, vetro, quarzo e materiale plastico . ;La camera di reazione può essere costituita da diversi materiali, ad esempio materiali polimerici o vetrosi, opportunamente funzionalizzati, passivati o meno, purché compatibili con la matrice polimerica integrata e con la soluzione contenente il campione ed i reagenti, che solitamente è una soluzione acquosa. ;La camera può essere prodotta mediante diverse tecniche, quali etching, embossing, moulding o qualsiasi altra tecnica di fabbricazione adatta. Nella camera di reazione può essere integrato un sistema idoneo di riscaldatori e/o raffreddatori, allo scopo di garantire il mantenimento di una temperatura controllata della soluzione presente nella camera, o la possibilità di effettuare degli specifici cicli termici in funzione della particolare applicazione . ;Un materiale attualmente preferito per la microcamera di reazione è il polidimetilsilossano (PDMS), che al momento è tra i materiali plastici di maggior utilizzo per la produzione di chip, sia in sistemi a sé stanti che integrati. Il PDMS presenta diversi vantaggi: è biologicamente inerte, non tossico, permeabile ai gas, poco costoso, aderisce facilmente ad altri materiali come vetro, polistirene e PMMA, fornendo così la possibilità di costruire sistemi ibridi costituiti da diversi materiali . ;Tuttavia, l'elevata idrofobicità e la scarsa reattività chimica dei gruppi esposti in superficie ne limitano l'utilizzo in molte applicazioni [Xiang, 2005]. Per migliorare le caratteristiche di idrofilìa della superficie, il PDMS può essere sottoposto a trattamenti di modifica superficiale mediante metodologie fisico-chimiche. ;A tal fine, il PDMS può essere trattato con plasma di ossigeno in condizioni sperimentali tali da ottenere una blanda modifica della superfìcie (idrolisi dei gruppi metossilici esposti) e non un vero e proprio etching. L'azione del plasma dì ossigeno risulta efficace, consentendo di ottenere tipici valori di angolo di contatto misurati in seguito al trattamento molto bassi, dell'ordine di 12,5° 6,25°. ;Allo scopo di migliorare la stabilità nel tempo di tale trattamento ed evitare che le superfici di PDMS così trattate ritornino a presentare caratteristiche idrofobiche in tempi brevi (ad esempio per tempi superiori alle 24 ore), possono essere effettuate procedure di passivazione della superficie. Una procedura preferita di passivazione è un trattamento con soluzione acida di di-ammino-PEG che consente dì ottenere buone caratteristiche di bagnabilità per tempi superiori a due settimane. ;La funzionalizzazione della superficie del film sottile otticamente attivo può essere realizzata mediante tecniche convenzionali note per la preparazione di bio-chip. In generale, sono possibili reazioni di idrolisi o di amminolisì dei gruppi metossilici liberi esposti ed attivazione dei gruppi risultanti con gruppi chimici reattivi (mono e/o bi-linker) per le (bio)molecole, come ad esempio oligonucleotidi , proteine e peptidi, con le quali si vuole funzionalizzare la superficie stessa. ;Uno dei metodi preferiti è la fissazione di molecole biologiche come proteine, peptidi o sequenze dì acidi nucleici mediante legame chimico con gruppi amminici presenti sulla superficie otticamente attiva, legati a mono-lìnkers attivanti quali la glutaraldeide. ;L'inserimento di gruppi amminici (che legano a loro volta i gruppi attivati sulla superficie) alle estremità terminali della catena di acidi nucleici è facilmente ottenuta mediante sintesi utilizzando nucleotidi amminati. ;Si intende che le molecole sonda possono essere legate alla superficie otticamente attiva secondo una disposizione a matrice, secondo le tecnologie di per sé note per la produzione di bio-chip. ;Esempio di attuazione ;Un prototipo di microreattore per la rivelazione ottica in tempo reale di analisi genomiche/proteomiche è stato realizzato utilizzando PDMS come materiale per la microcamera. Per migliorare le caratteristiche di idrofilìa della superficie, il PDMS è stato inizialmente trattato con plasma di ossigeno, come precedentemente indicato, per ottenere una blanda modifica della superficie con idrolisi dei gruppi metossilici esposti. ;Inoltre, per incrementare la stabilità del tempo del trattamento, si sono effettuate procedure di passivazione della superficie con l'impiego di soluzioni acide di di-ammino-PEG. Tale procedura è risultata di successo ed il dispositivo presentava buone caratteristiche di bagnabilità per più di due settimane . ;Il microreattore dì PDMS è stato realizzato versando una soluzione di PDMS ed agente polimerizzante, in opportuni rapporti di concentrazione, in stampi circolari metallici, le cui dimensioni impartiscono forma e spessore costanti al microreattore. In seguito a polimerizzazione della soluzione, effettuata in forno a 140°C per 30 minuti, la microcamera di PDMS è stata rimossa dalla forma metallica e raffreddata. ;Sono state ottenute microcamere con dimensioni idonee per volumi da 50 μ:^ fino a 5 \iL·,· un tipico prototipo di microcamera è illustrato nella figura 4 . ;E<1>stata inoltre investigata la possibilità di ottenere sistemi ibridi, costituiti da diversi materiali polimerici e si è realizzato un microreattore di PDMS con un fondo costituito da uno strato di PMMA funzionaiizzato secondo le procedure descritte nel seguito. Si sono anche realizzate diverse lamine di PDMS, al fine di chiudere l'intero sistema e prevenire così l'evaporazione di solventi, fenomeno quest'ultimo molto importante da controllare nei processi di PCR. ;Per la realizzazione del prototipo, si è scelto il PMMA come matrice polimerica per disperdere i nanocristalli , in quanto soddisfacente alle caratteristiche chimico-fisiche precedentemente enunciate. Come supporto della matrice polimerica, inizialmente si sono utilizzati diversi substrati (vetro, silice e PDMS) e per ognuno di questi si sono studiate le caratteristiche di compatibilità chimico-fisica con una soluzione di PMMA, in seguito a deposizione mediante spin-coating. Si sono preparati campioni di PMMA senza e con nanocristalli col loidali di semiconduttori (campioni standard e campioni otticamente attivi) ed il film ottenuto è stato caratterizzato mediante profìlometro, microscopia a forza atomica (AFM) e microscopia confocale. ;Le caratterizzazioni effettuate hanno evidenziato che il film polimerico ottenuto presentava ottime proprietà di uniformità. Inoltre, dall'analisi degli spettri di emissione di NCs, è emerso che questi ultimi erano dispersi in maniera omogenea all'interno del film e che presentano caratteristiche spettrali identiche a quelle misurate in soluzioni standard di NCs appena sintetizzati. ;In particolare, nello specifico esempio di attuazione, lo spessore dello strato di PMMA in cui sono stati dispersi NCs è stato ottimizzato a circa 40-50 nm, poiché i segnali di fluorescenza misurati in questo caso sono sufficientemente intensi per una rivelazione ottimale. ;Come precedentemente indicato, si intende che è possibile utilizzare film con spessori differenti, per cui la scelta dello spessore del film otticamente attivo non è particolarmente critica. Nel caso specifico, sono stati utilizzati NCs di tipo core-shell di CdSe/ZnS, che emettono a 530 nm; film polimerici con medesime caratteristiche ottiche e di uniformità sono stati ottenuti anche con NCs di differente dimensione, che emettono dal blu al vicino infrarosso. ;NCs sono stati dispersi in una soluzione di PMMA-950K (tipicamente con concentrazioni finali in clorobenzene = 1,9 x 10<s>M) . La soluzione dispersa così ottenuta è stata depositata sul substrato mediante spin-coating (parametri tipici: 3000 g per 40 secondi) e successivamente è stata indotta la polimerizzazione del PMMA per riscaldamento su piastra a 180°C per 2 minuti. ;Nell'esempio qui riportato di microdispositivo per determinazioni quantitative di sequenze di oligonucleotidì (real-time PCR), il film di PMMA, reso otticamente attivo da NCs in esso dispersi, è stato funzionalizzato per amminolisi con un monostrato di gruppi amminicì primari . Tali gruppi sono stati coniugati con oligonucleotidi con funzionalità ammìno terminale mediante un linker, quale la glutaraldeide . ;ssDNA immobilizzati sul PMMA costituiscono gli elementi di bio-riconoscìmento di DNA bersaglio complementari che rappresentano il prodotto risultante dalla reazione di amplificazione a catena Successivamente, si è passati alla rivelazione in real-time dell<1>evento di ibridazione tra le due specie (ssDNA immobilizzato e DNA bersaglio). ;Il DNA bersaglio era marcato con fluoroforo organico commerciale (Cy3), che presenta forte overlap spettrale con i NCs utilizzati e permette di effettuare la rivelazione ottica dell'interazione oltre i 600 nm (regione in cui NCs selezionati non emettono) . ;La rivelazione ottica è stata quindi effettuata mediante la misura del segnale di fluorescenza del marcatore Cy3 presente sul DNA bersaglio amplificato (secondo lo schema generale riportato nella figura 2A) in seguito all'interazione con ssDNA (sonde complementari immobilizzate, come prima descritto, sul film di PMMA otticamente attivo). ;Il segnale di fluorescenza del Cy3 deriva dall'eccitazione del microreattore a bassa lunghezza d'onda, specificatamente X *= 400 nm, che eccita selettivamente ed efficientemente NCs, ma non i fluorofori coniugati alle biomolecole libere in soluzione, e successivo trasferimento di energia (FRET) da NCs presenti nel PMMA al fluoroforo coniugato al DNA bersaglio (che ha interagito col DNA sonda).
In tal caso, il segnale di fluorescenza rivela-
27
to aumenta in funzione del numero crescente di cieli di amplificazione del DNA (cicli POR), come si può osservare dal segnale misurato in real-time per 1 'amplificazione del plasmide pMPSV-RMl (figura 6). Dalla curva ottenuta è possibile ricavare informazioni quantitative sulle sequenze di DNA di interesse .
In sommario, il procedimento ed il dispositivo secondo l'invenzione presentano le seguenti caratteristiche innovative e vantaggi:
secondo lo schema ottico generale innovativo, l'elemento otticamente attivo (il film polimerico) è parte integrante del dispositivo e non è un fluoroforo che viene coniugato alle biomolecole o all'elemento di bio-riconoscimento;
1<1>applicabilità del sistema è molto ampia: va dalla real-time POR (senza però dipendere dal progetto di sequenze specifiche di oligonucleotidi, tipo i molecular beacons; può essere utilizzato, in principio, per rivelare qualsiasi sequenza di DNA) alla rivelazione di una classe molto ampia di interazioni biomolecolari in ambito genomico/proteomico: determinazioni quantitative di proteine, ligandì, ecc.;
il dispositivo ed il procedimento secondo l'in-
28
venzione hanno ottime caratteristiche di efficienza e sensibilità:
ì) l'efficienza del segnale di trasduzione ottica è dato dal fatto che l'eccitazione del fluoroforo mediante processi FRET avviene non per singola interazione donore-accettore, ma attraverso interazioni multiple tra i vari NCs dispersi nel polimero (prossimi al sito di bio-riconoscimento) ed il fluoroforo accettore coniugato alla biomolecola bersaglio; inoltre, è ampiamente dimostrato in letteratura che NCs colloidali sono ottime specie donorì (in termini di efficienza) nei processi FRET; ii) l'alta sensibilità del procedimento e del dispositivo deriva dal fatto che, in combinazione all'ottenimento di segnali di fluorescenza abbastanza alti dalle biomolecole bersaglio, il segnale di background (rumore) è praticamente nullo, grazie al fatto che la radiazione di eccitazione non è in grado di eccitare alcuna specie nella camera di reazione (con emissione nella finestra spettrale di rivelazione) se non le biomolecole bersaglio che hanno interagito specificamente con il sito di bioriconoscimento;
il procedimento ed il dispositivo hanno la possibilità di analizzare singole specie biomolecola-
29
ri, ma anche di effettuare determinazioni quantitative in parallelo mediante approcci del tipo multiplexing (scegliendo n coppie NCs-fluorofori come specie donore-accettore in processi FRET, è possibile monitorare n specie biomolecolari di interesse, utilizzando una singola lunghezza d'onda d'eccitazione e raccogliendo l'emissione in differenti regioni spettrali).
Inoltre, nel momento in cui si utilizza come materiale polimerico per realizzare il film otticamente attivo del dispositivo un materiale con proprietà dì resist elettronico (tipo PMMA), è possibile patternare il film mediante tecniche litografiche (per esempio e-beam litography), con risoluzioni fino a pochi nanometri.
Tale approccio consente dunque di ottenere, con grande precisione ed altissima risoluzione, matrici di pixel (ogni pixel è un differente elemento dì trasduzione ottica) per analisi quantitative di biomolecole in parallelo.
30
reattore ottenuto per applicazioni di real-time PCR, si è effettuata dapprima l'amplificazione mediante PCR di un plasmide di interesse (pMPSV-RMl) a diversi volumi di reazione {25, 12, 6 e 3 μ!>). In questo caso, il microreattore è stato trattato preliminarmente con diverse procedure di passivazione {per esempio con soluzioni di BSA) e la rivelazione è stata effettuata al punto terminale della reazione con elettroforesi su gel di agarosio.
I risultati mostrano che la PCR avviene nel microreattore anche a volumi minimi di reazione (figura 5).
Nella figura 5, le bande luminose nelle corsie 3 e 5 corrispondono al DNA amplificato, le cui dimensioni sono paragonabili a quelle del marcatore di riferimento di 250 bp:
linea 1: markers;
linea 2 : campione standard in microreattore senza DNA templato;
linea 3: campione in microreattore con DNA templato;
linea 4: campione standard in provetta convenzionale senza DNA templato;
linea 5: campione in provetta tradizionale con DNA templato.
BIBLIOGRAFIA
1) Bodovìtz S., Joos T., Bachmann J., DDT, 2005, 10 (4), 283-287
2) Cheng J, Shoffner MA, Mitchelson KR, et al. J. Chrom . A 1996, 732 (1): 151-158
3) Cockerill F. R. Arch. Pathos. Lab. Med. 2003, 127, 1112-1120
4) Daniel JH, Igbal S, Millington RB, et al. Sensore and Actuators a-Physical, 1998, 71 (1-2): 81-88
5) Domiati-Saad R., Scheuermann R.,H. Clinica Chimica Acta, 2006, 363, 197-205
6) Dunn WC, Jacobson SC, Waters LC, et al. Anal. Biochem. 2000, 277 (1): 157-160
7) Fan J-B., Chee M. S., Gunderson K.L. Nature Review Genetica, 2006, 7, 632-644
8) Ferguson, J. A., Boles, T. C., Adams, C. P., Walt, D. R. Nature Biotech., 1996, 14 (13): 1681-1684
9) Hadd AG, Raymond DE, Halliwell JW, et al. Anal. Chem. 1997, 69 (17): 3407-3412
10) Kopp MU, de Mello AJ, Manz A. Science 1998, 280 (5366) : 1046-1048
11) Lee J.Y., Kim, J.J., Park, T.H. Biotechnology and Bioprocess Engineering 2003, 8, 213-220
31
12) Murphy L. Current Opinion in Chemical Biology, 2006, 10, 177-184
13) Patel S. et al, 2006, Biomaterials , 27, 2890-2897
14) Piunno Pae, Krull Uj, Hudson Rhe, et al. Analytical Chemistry 1995 67 (15): 2635-2643
15) Scherer JR, Kheterpal I, Radhakrishnan A, et al. 1999, Electrophoresis 20 (7): 1508-1517
16) Speers D. J. Clin Biochem., 2006, 27, 39-51 17) Thiel, A., Frutos, A., Jordan, C., Corn, R. , Smith, L. Anal. Chem. 1997, 69, 4984-4956
18) Wang J. Nucleic Acid Research, 2002, 28, 16, 3011-3016
19) Wang J., Ibanez A, Chatrathi M.P., Escarpa A., Anal . Chem. 2001, 73,5323-5327
20) Watts, H., Yeung, D., Parkers, H. 1994, Anal. Chem. 67, 4283-4289
21) Wrong M. , L., Mediano J.,F. BioTechniqnes , 2005, 39, 75-85
22) Xiang Q., Xu, B-, Fu, R., Li, D., Biomedicai Microdevices , 2005, 7:4, 273-279
32
Claims (19)
- RIVENDICAZIONI 1. Procedimento per l'identificazione e/o quantificazione di un analita bersaglio presente in un campione, particolarmente un campione biologico, comprendente l'operazione di porre a contatto detto analita bersaglio legato ad un fluoroforo con una molecola sonda immobilizzata su di un supporto, per permettere un legame specifico tra detto analita bersaglio e detta molecola sonda, caratterizzato dal fatto che detta molecola sonda è fissata sulla superficie di un supporto rivestito con una pellicola comprendente una matrice polimerica, in cui sono dispersi nanocristalli fluorescenti, suscettibili di indurre un fenomeno di trasferimento risonante di energia (FRET) con detto fluoroforo e comprendente inoltre le operazioni di irradiare detta pellicola di rivestimento del supporto con una radiazione di lunghezza d'onda tale da eccitare selettivamente i nanocristalli, ma non il fluoroforo legato a detto analita bersaglio e rivelare il segnale di fluorescenza nella regione spettrale di emissione del solo fluoroforo legato all'analita bersaglio .
- 2. Procedimento secondo la rivendicazione 1, caratterizzato dal fatto che detta matrice polimerica 33 è formata da un materiale polimerico non otticamente attivo e trasparente nel campo spettrale che va dal vicino UV all'infrarosso.
- 3. Procedimento secondo le rivendicazioni 1 o 2, caratterizzato dal fatto che detta matrice polimerica è formata da un materiale polimerico con proprietà di resìst elettronico.
- 4 . Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 3, caratterizzato dal fatto che detta matrice polimerica comprende polimetìlmetacrilato (PMMA).
- 5. Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 4, caratterizzato dal fatto che detti nanocristalli fluorescenti comprendono nanocrìstalli colloidali di semiconduttore.
- 6 . Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 5, caratterizzato dal fatto che detti nanocristalli sono di tipo core-shell.
- 7. Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 6, caratterizzato dal fatto che detto fluoroforo presenta overlap spettrale con detti nanocristalli .
- 8. Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni precedenti, caratterizzato dal fatto che detta pellicola polimerica comprende due o più ti- 34 pologie di nanocristalli aventi distinte caratteristiche spettrali di emissione fluorescente.
- 9. Procedimento secondo la rivendicazione 8, caratterizzato dal fatto che il campione sottoposto ad analisi comprende analiti bersaglio marcati con una pluralità di fluorofori che emettono in regioni spettrali distinte ed in cui detta pellicola di rivestimento comprende una corrispondente pluralità di tipologie di nanocristalli fluorescenti, scelti in modo tale per cui ciascuna tipologia di nanocristalli è suscettibile di indurre un fenomeno di trasferimento risonante di energia (FRET) con un rispettivo fluoroforo.
- 10. Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni precedenti, caratterizzato dal fatto che detto analita bersaglio è scelto tra una molecola di acido nucleico, proteine e ligandi.
- 11. Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni precedenti, per il monitoraggio in tempo reale di un processo di amplificazione di acidi nucleici, in cui l'analita bersaglio è un acido nucleico in corso di amplificazione.
- 12. Procedimento secondo una qualsiasi delle rivendicazioni precedenti, caratterizzato dal fatto che sulla superficie di detta pellicola di rivestimento è immobilizzata una pluralità di molecole sonda, disposte secondo una matrice predeterminata.
- 13. Microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di un analita bersaglio in un campione, particolarmente un campione biologico, caratterizzato dal fatto che comprende una camera di reazione, atta a ricevere una soluzione comprendente un campione biologico includente analiti bersaglio legati ad un fluoroforo, una pellicola sottile associata ad una parete di detta camera comprendente una matrice polimerica includente nanocristalli fluorescenti dispersi in detta matrice, detti nanocristalli essendo suscettibili di indurre un fenomeno di trasferimento risonante di energia (FRET) con detti fluorofori ed una pluralità di molecole sonda fissate a detta pellicola di rivestimento.
- 14. Microdispositivo secondo la rivendicazione 13, caratterizzato dal fatto che detta matrice polimerica è formata da un materiale polimerico non otticamente attivo e trasparente nel campo spettrale che va dal vicino UV all'infrarosso.
- 15. Microdispositivo secondo le rivendicazioni 13 o 14, caratterizzato dal fatto che detta matrice polimerica è formata da un polimero con proprietà dì 36 resist elettronico.
- 16. Microdisposìtivo secondo la rivendicazione 15, caratterizzato dal fatto che detta matrice polimerica è formata da polimetilmetacrilato (PMMA).
- 17. Microdispositivo secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 13 a 16, caratterizzato dal fatto che in detta matrice polimerica sono dispersi nanocristalli colloidali di semiconduttore, preferibilmente di tipo core-shell.
- 18. Microdispositivo secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 13 a 17, caratterizzato dal fatto che in detta matrice polimerica sono disperse due o più tipologie di nanocristalli fluorescenti aventi distinte caratteristiche di emissione spettrale.
- 19. Apparecchiatura per l'identificazione e/o quantificazione di un analìta bersaglio presente in un campione biologico, comprendente un microdispositìvo a trasduzione ottica secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 13 a 18 e comprendente inoltre una sorgente di radiazione, atta ad emettere una radiazione con una lunghezza d'onda tale da eccitare selettivamente detti nanocristalli e mezzi di rivelazione del segnale di fluorescenza emesso nella regione spettrale di emissione dei fluorofori legati agli analiti bersaglio. 37
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IT000883A ITTO20060883A1 (it) | 2006-12-14 | 2006-12-14 | Procedimento e microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di un analita in un campione biologico |
US12/518,816 US20090305291A1 (en) | 2006-12-14 | 2007-12-14 | method and a microdevice for the identification and/or quantification of an analyte in a biological sample |
AT07849492T ATE556029T1 (de) | 2006-12-14 | 2007-12-14 | Verfahren und mikrovorrichtung zur identifizierung und/oder quantifizierung eines analyten in einer biologischen probe |
EP07849492A EP2122352B1 (en) | 2006-12-14 | 2007-12-14 | A method and a microdevice for the identification and/or quantification of an analyte in a biological sample |
PCT/IB2007/055112 WO2008072209A2 (en) | 2006-12-14 | 2007-12-14 | Method and microdevice to identify and/or quantify analytes in biological samples |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IT000883A ITTO20060883A1 (it) | 2006-12-14 | 2006-12-14 | Procedimento e microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di un analita in un campione biologico |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ITTO20060883A1 true ITTO20060883A1 (it) | 2008-06-15 |
Family
ID=39327118
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
IT000883A ITTO20060883A1 (it) | 2006-12-14 | 2006-12-14 | Procedimento e microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di un analita in un campione biologico |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US20090305291A1 (it) |
EP (1) | EP2122352B1 (it) |
AT (1) | ATE556029T1 (it) |
IT (1) | ITTO20060883A1 (it) |
WO (1) | WO2008072209A2 (it) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP3370060B1 (en) * | 2008-10-21 | 2023-06-07 | ChemoMetec A/S | Apparatus and method for illuminating a sample |
JP5697129B2 (ja) * | 2010-03-24 | 2015-04-08 | 国立大学法人埼玉大学 | Fretを利用した酵素活性測定基質及びその製造方法 |
US10184935B2 (en) * | 2010-04-05 | 2019-01-22 | University Of Massachusetts | Quantum dot-based optical sensors for rapid detection and quantitative analysis of biomolecules and biological materials |
US20140178875A1 (en) * | 2012-10-09 | 2014-06-26 | Advandx, Inc. | Devices, Compositions and Methods Pertaining To Microscopic Analysis Of Microorganisms and Other Analytes of Interest |
US12042281B2 (en) * | 2019-07-17 | 2024-07-23 | Terumo Cardiovascular Systems Corporation | Fluorescent nanomaterial sensors and related methods |
DE102019219531A1 (de) * | 2019-12-13 | 2021-06-17 | Robert Bosch Gmbh | Verfahren zur Durchführung einer Amplifikationsreaktion in einer mikrofluidischen Vorrichtung |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1200114C (zh) | 2001-12-27 | 2005-05-04 | 上海交通大学 | 荧光共振能量转移寡核苷酸微阵列的核酸检测方法 |
EA007652B1 (ru) * | 2002-06-20 | 2006-12-29 | Дзе Риджентс Оф Дзе Юниверсити Оф Калифорния | Способ обнаружения и анализа полинуклеотидов с помощью светособирающих полихромофоров |
US20040121337A1 (en) * | 2002-12-19 | 2004-06-24 | Nomadics, Inc. | Luminescent polymers and methods of use thereof |
EP1839058A1 (en) | 2004-12-24 | 2007-10-03 | Leiden University | Novel use of fluorescence resonance energy transfer |
US20090186419A1 (en) * | 2005-12-19 | 2009-07-23 | Agency For Science ,Technology And Research | Luminescent Metal Oxide Films |
-
2006
- 2006-12-14 IT IT000883A patent/ITTO20060883A1/it unknown
-
2007
- 2007-12-14 AT AT07849492T patent/ATE556029T1/de active
- 2007-12-14 US US12/518,816 patent/US20090305291A1/en not_active Abandoned
- 2007-12-14 EP EP07849492A patent/EP2122352B1/en not_active Not-in-force
- 2007-12-14 WO PCT/IB2007/055112 patent/WO2008072209A2/en active Application Filing
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2008072209A2 (en) | 2008-06-19 |
EP2122352A2 (en) | 2009-11-25 |
WO2008072209A3 (en) | 2008-08-21 |
US20090305291A1 (en) | 2009-12-10 |
ATE556029T1 (de) | 2012-05-15 |
EP2122352B1 (en) | 2012-05-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Rödiger et al. | Nucleic acid detection based on the use of microbeads: a review | |
D’Agata et al. | Surface plasmon resonance imaging for nucleic acid detection | |
Phillips et al. | Recent advances in surface plasmon resonance based techniques for bioanalysis | |
Scarano et al. | Surface plasmon resonance imaging for affinity-based biosensors | |
JP6757316B2 (ja) | ナノ構造のアレイを使用するポリマーの効率的光学分析 | |
Usha et al. | Attomolar analyte sensing techniques (AttoSens): a review on a decade of progress on chemical and biosensing nanoplatforms | |
Li et al. | Detection of single-molecule DNA hybridization using enzymatic amplification in an array of femtoliter-sized reaction vessels | |
Liu et al. | Multiplex analysis on a single porous hydrogel bead with encoded SERS nanotags | |
Salva et al. | Methods for immobilizing receptors in microfluidic devices: A review | |
Cretich et al. | Interferometric silicon biochips for label and label‐free DNA and protein microarrays | |
ITTO20060883A1 (it) | Procedimento e microdispositivo a trasduzione ottica per l'identificazione e/o quantificazione di un analita in un campione biologico | |
Hosseini et al. | Perspectives and trends in advanced DNA biosensors for the recognition of single nucleotide polymorphisms | |
WO2017031393A1 (en) | Patterned plasmonic nanoparticle arrays for multiplexed, microfluidic biosensing assays | |
Krizkova et al. | Nanotechnologies in protein microarrays | |
D'Agata et al. | Exploiting the design of surface plasmon resonance interfaces for better diagnostics: A perspective review | |
Parmin et al. | Biosensor recognizes the receptor molecules | |
Wang et al. | Molecular-electromechanical system for unamplified detection of trace analytes in biofluids | |
Schmidt et al. | Rolling circle amplification tailored for plasmonic biosensors: from ensemble to single-molecule detection | |
Saikrishnan et al. | A cellulose-based bioassay for the colorimetric detection of pathogen DNA | |
Qiao et al. | Oil-encapsulated nanodroplet array for bio-molecular detection | |
Li et al. | Sensitive and label-free detection of DNA by surface plasmon resonance | |
US11091803B2 (en) | Nucleic acid quantification method | |
Schmidt et al. | Sandwich Immuno-RCA Assay with Single Molecule Counting Readout: The Importance of Biointerface Design | |
Zhou et al. | State-of-the-art strategies of surface plasmon resonance biosensors in clinical analysis: A comprehensive review | |
Sabella et al. | Real-time PCR in a plastic chip based on solid state FRET |