DE19711114A1 - Kultursystem Mikrokapillare - Google Patents
Kultursystem MikrokapillareInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Kultursystem zur Modellierung von kapillären Gefäßen auf der
Grundlage poröser, mit biologischen Grenzflächen, wie Membranen oder Zellen,
besiedelter polymerer hohler Fasern in einem Kulturmedium. Das System eignet sich zur
Simulierung, körpereigener biologischer Vorgänge, wie Angiogenese, Entzündung oder
Metastasierung.
Es ist bekannt, daß sich körpereigene biologische Vorgänge, wie Angiogenese,
Entzündung oder Metastasierung auch in vitro an porösen, zweidimensionalen
Membranen untersuchen lassen (Snyderman, R., Science 213, 1981, 230-237). Diese
Membranen vermitteln die Zelladhäsion und ermöglichen eine Migration von biologischen
Substanzen und Zellen durch die Poren.
Die genannten biologischen Vorgänge treten im Körper in bzw. an dreidimensionalen
beströmten Gefäßen auf. Für eine korrekte Modellierung dieser Vorgänge ist deshalb auch
in vitro eine dreidimensionale Anordnung der Zellen (Williams, S., Lab. Invest 69, 1993,
491-493; Goto, F. u. a., Lab. Invest. 69, 1993, 508-517) sowie eine Beströmung (Lasky, L.,
Science 258, 1992, 964-969) notwendig. Derzeit ist jedoch kein in vitro Modell bekannt,
das eine dreidimensionale, beströmbare und gefäßähnliche Anordnung poröser
Membranen zum Inhalt hat.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, die Simulierung körpereigener biologischer
Vorgänge zu ermöglichen. Die Aufgabe wurde mit Hilfe kapillärer Gefäße gelöst, die aus
porösen, mit biologischen Grenzflächen besiedelten polymeren hohlen Fasern, dem
intrakapillären Raum, bestehen und die sich in einem Kulturraum, dem extrakapillären
Raum, befinden. Als Grenzflächen sind biologische Materialien, wie Membranen oder
Zellen eingesetzt worden. Erfindungsgemäß werden die zu modellierenden kapillären
Gefäße innen- und außenseitig von beweglichen Medien umgeben oder durchströmt. Die
Poren in den hohlen Fasern sind für Zellen, Viren oder biologische Substanzen
durchlässig.
Mit Hilfe der erfindungsgemäßen Fasern in dem Kultursystem ist es überraschenderweise
gelungen, körpereigene biologische Vorgänge, wie Angiogenese, Entzündung oder
Metastasierung zu simulieren.
Unter biologischen Grenzflächen werden solche Flächen verstanden, die aus einer oder
aus mehreren biologischen Substanzen gebildet werden, wie biologische Membranen oder
konfluente Zellmonolayer. Als biologische Substanzen werden Zellen und ihre
Bestandteile, Mikroorganismen und ihre Bestandteile oder Viren und ihre Bestandteile
bezeichnet, ferner Biomoleküle, wie Eiweiße, Lipide, Zucker und ihre biologischen
Zusammensetzungen, Glykoproteine, Glykolipide oder Lipoproteine und ihre in
biologischen Systemen erzeugten niedermolekularen Substanzen, wie Aminosäuren,
Fettsäuren oder Mono- und Oligosaccharide.
Mit dem erfindungsgemäßen Kultursystem ist ein Modell geschaffen worden, das die
Gefäß-Gewebcharakteristik widerspiegelt. Das Kultursystem besteht aus einer oder aus
mehreren porösen polymeren Kapillaren, Intrakapillärer Raum (IR) genannt, die in einem
zylindrischen Kulturraum, Extrakapillärer Raum (ER) genannt, eingebettet sind. Der IR
steht z. B. für ein kapilläres Blutgefäß, der ER modelliert das Gewebe. Das Kultursystem
gestattet damit eine dreidimensionale Anordnung von Zellen in einem intrakapillären und
extrakapillären Raum und wird so der räumlichen Anordnung von Zellen in vivo gerecht.
Die porösen hohlen Fasern (Hohlfasermembranen) werden durch Modifikation unporöser
Polycarbonatfasern hergestellt. Dazu werden durch Bestrahlung mit I⁻, Cl⁻ und Br⁻-Ionen
Poren in die Fasern gebracht. Die Porendichte wird über die Bestrahlungsdauer gesteuert.
Durch Behandlung mit einer Ätzlösung erfolgt anschließend eine hydrolytische
Degradation der Polymerstränge, was zu einer definierten Erweiterung der Poren führt.
Der Porendurchmesser entspricht der linearen Funktion der Ätzzeit (Lück, H.B. u. a.,
Nuclear Instruments and Methods in Physics Research B50, 1990, 395-490).
Derart vorbereitete Fasern werden nach ihrer Besiedelung mit menschlichen oder
tierischen Zellen so in einem Kulturraum angeordnet, daß sie, wie Kapillaren des
Organismus, von Flüssigkeiten durchströmt werden können und ferner, daß die Konfluenz
des Monolayers mit Hilfe physikalischer Methoden meßbar ist. Die Kapillaren befinden sich
in einem Kulturraum, dem extrazellulären Raum (ER), der zum einen mit beliebigen Zellen
besiedelt und zum anderen optimal versorgt werden kann. Der extrazelluläre Raum stellt
einen Kulturraum dar, der mit Kulturmedium gefüllt ist. Intra- und extrazellulärer Raum (IR
und ER) können separat versorgt werden. Aus ihnen lassen sich auch separat Proben
entnehmen. Im extrazellulären Raum befinden sich Animpf-Ports für die lokale Applikation
von Mikromengen an Wirkstoffen. Durch den Einsatz von semisoliden Medien ist eine
verzögerte Ausbreitung der Wirkstoffe unter Bildung eines Konzentrationsgradienten an
dem Kapillargefäß gewährleistet.
Unter polymeren hohlen Fasern werden solche aus organischen synthetischen polymeren
Materialien verstanden, wie z. B. aus Polyalkenen bzw. -alkinen, wie Cupren, Poly
carbonaten bzw. anderen Polyestern, wie Polyethylentherephthalat, ferner Polyamiden,
Polyimiden oder Polysulfonen.
In einem erfindungsgemäßen Modell für ein kapilläres Blutgefäß in vitro wird eine polymere
hohle Faser, deren Wand Poren mit einem Durchmesser von 3 und mehr Mikrometern
aufweist, lumenseitig mit menschlichen oder tierischen Endothelzellen - vorzugsweise
isoliert aus aus Hautkapillaren oder aus der Nabelschnurvene - bis zum konfluenten
Monolayer (abgeschlossene Einzelschicht) besiedelt (Intrakapillärer Raum, IR). Davor wird
die polymere Hohlfasermembran zur Verbesserung der Besiedelungseigenschaften mit
Bestandteilen der extrazellulären Matrix, vorzugsweise mit Kollagen I oder Matrigel,
beschichtet.
In einem weiteren Modell sind Endothelzellen in einer porösen, mikroskopierbaren
Polycarbonat-Mikrokapillare dreidimensional angeordnet. Diese Kapillare stellt das
kapilläre Blutgefäß-Modell dar. Sie ist von einem Hohlzylinder (Kulturraum) umgeben, der
das Gewebe modelliert. Durch die Kapillarporen können Zellen migrieren. Damit lassen
sich an einem Endothelzellmonolayer die Metastasierung (Migration von Tumorzellen),
Angiogenese (Proliferation und Migration von Endothelzellen) und Entzündung (Migration
von Leukozyten) simulieren.
Eine bevorzugte Ausgestaltung der Erfindung in Form einer Polycarbonatmatrix hat sich in
Tests der Cytotoxizität und Besiedelbarkeit als besonders geeignet für die Kultur von
Endothelzellen erwiesen. In diesem Modell wurden kollagengesättigte
Polycarbonatkapillaren konfluent mit primären Endothelzellen - gewonnen aus
Nabelschnurvenen - besiedelt.
Das erfindungsgemäße in vitro Modell wird durch Oberflächenbegasung mit Sauerstoff
versorgt und der Medien pH Wert durch Puffersysteme reguliert.
Das konzipierte in vitro Modell läßt sich als Entzündungsmodell einsetzen. Mit den
Entzündungsmediatoren IL1β und TNFα wird eine frühe akute Entzündung simuliert - wie
die migrierten Granulozyten und das Cytokinmuster belegen. Das Modell schließt dabei
Adhärenz, Migration (Diapedese) und Chemotaxis von Leukozyten, wichtige Schritte einer
in vivo ablaufenden Entzündung, ein.
Die Erfindung soll anhand von Ausführungsbeispielen näher erläutert werden.
Das Kultursystem Mikrokapillare besteht aus einem Hohlzylinder, in dem eine
Polymerkapillare eingeklebt ist. Der in der Kapillare eingeschlossene Raum wird als
Intrakapillärer Raum (intracapillary, IC) bezeichnet, der im Hohlzylinder eingeschlossene
Raum als Extrakapillärer Raum (extracapillary, EC).
Die Zugänge (Ports) zu IC und EC werden durch Luerstecker, einem in der Medizintechnik
gebräuchlichen Stecker-Buchsen-System aus Polypropylen, geschaffen. Sie sind über das
Luer-System mit Schläuchen verbindbar, so daß ein intrakapillärer Kreislauf und ein
extrakapillärer Kreislauf entsteht. Die Größe der Ports des EC werden so gewählt, daß
Mikroelektroden in den extrakapillären Raum integriert werden können. Durch die Ports
des EC können mit einer Pipette Volumina entnommen oder zudosiert werden. Dadurch ist
ein Füttern der Zellen und das Entnehmen selbst kleinster Volumina problemlos möglich.
Bei den in den Hohlzylinder eingeklebten Kapillaren handelt es sich um poröse
Polycarbonatkapillaren.
Es wurden Kapillaren von durchschnittlich 60 mm Länge verwendet. Daran wurden die
Maße des Hohlzylinders angepaßt:
Für den Hohlzylinder wurden 2 ml Pipetten aus Polyethylen verwendet. Diese sind leicht
und preiswert verfügbar, mikroskopierbar und biokompatibel.
Die Parameter des Kultursystems sind in der folgenden Tabelle zusammengefaßt:
Das Kultursystem Mikrokapillare wird in einem CO2-Inkubator betrieben, der mit einem
Gasgemisch aus Luft und 5% CO2 versorgt wird. Die Messung und Regelung der CO2-Kon
zentration in der Gasphase des Inkubators erfolgt über die Inkubatorregelung. Die
Luftfeuchtigkeit im Inkubator beträgt mehr als 90%. Die Temperatur wird durch die
Inkubatorregelung auf 37°C gehalten. Während der Besiedelung mit Endothelzellen wird
das Kultursystem nicht perfundiert.
Das Kultursystem wird durch Oberflächenbegasung mit Sauerstoff versorgt. Der im
Kultursystem vorherrschende pO2 wird mit der im EC integrierten faseroptischen
Sauerstoffsonde (MOPS) on-line erfaßt. Über eine R5232 Schnittstelle ist der MOPS mit
dem Prozeßrechner verbunden. Die Datenerfassung erfolgt mit einer Abtastrate von 1 min.
Eine Regelung des pO2 wird nicht vorgenommen.
Der pH-Wert wird nur über die Medienpufferung geführt. Dazu muß ein Puffersystem mit
hohem Pufferwert verwendet werden. Es wurde zuvor der Pufferwert verschiedener
Medienformulierungen mit den Pufferkomponenten Natriumhydrogenkarbonat und
HEPES bestimmt.
Das Kultursystem erlaubt eine Proliferation der Endothelzellen mit hoher Vitalität bis zur
überwiegend konfluenten Anordnung in einem dreidimensional ausgerichteten Monolayer.
Damit kann eine den Verhältnissen in vivo gerechte Anordnung der Zellen geschaffen
werden.
Der IC wird mit 1E5 Zellen/cm2 besiedelt. Das Rollen in der Besiedelungsvorrichtung
bewirkt eine gleichmäßige Adhäsion der Zellen. Solche Zelldichten werden von Zilla für ein
schnelles Erreichen der Konfluenz auf dreidimensionalen Matrizen empfohlen (Zilla, P., J.
Thorac. Cardiovasc. Surg. 101, 1991, 671-680).
Die Entzündung wird unter statischen Bedingungen simuliert. Dazu werden Cytokine lokal
in den mit Methylcellulose befüllten EC gegeben. Bezogen auf das Volumen des EC
werden Cytokinkonzentrationen von 10 U/ml IL1β und 100 U/ml TNFα eingesetzt.
Gleichzeitig wird der IC mit einer Granulozytensuspension der Zelldichte 5E6 Zellen/ml
gefüllt. Damit befinden sich zu Beginn des Versuches 6500 Leukozyten im IC.
Im Kultursystem Mikrokapillare können wie in vivo Konzentrationsgradienten bzw.
Druckgradienten zwischen dem IC und EC aufgebaut werden, so daß diffusiver
Stofftransport und Filtration bzw. Resorption simuliert werden können. Dabei steht jedoch
für den Transport von Flüssigkeiten nur die poröse Länge des IC zur Verfügung, da sonst
die Polycarbonatkapillare inpermeabel ist. Das Flächenverhältnis poröse/unporöse Fläche
auf der Innenseite des IC entspricht mit 1/103 ungefähr dem Anteil der interzellulären
Räume des Kapillarendothels, durch die in vivo der Stofftransport von hydrophilen
Substanzen und Wasser erfolgt (Thews, G. u. a.: Anatomie, Physiologie und
Pathophysiologie des Menschen, Wissenschaftliche Verlagsanstalt, Stuttgart, 1989).
Beispiel 3: Simulation einer Angiogenese.
Beispiel 4: Simulation einer Metastasierung.
Beispiel 5: Tierische Zellen.
Beispiel 6: Andere Polymere.
Claims (7)
1. Kultursystem zur Modellierung von kapillären Gefäßen, das aus porösen, mit
biologischen Grenzflächen besiedelten polymeren hohlen Fasern, dem intrakapillären
Raum, in einem Kulturraum, dem extrakapillären Raum, besteht.
2. Kultursystem nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Grenzflächen aus
biologischem Material, wie Membranen, Zellen, Mikroorganismen bzw. deren Bestandteilen
oder aus Biomolekülen, wie Eiweißen oder Lipiden, bestehen.
3. Kultursystem nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß die zu
modellierenden kapillären Gefäße innen- und außenseitig von beweglichen Medien
umgeben oder durchströmt werden.
4. Kultursystem nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Poren in den
hohlen Fasern für Zellen, Viren oder Biomoleküle durchlässig sind.
5. Kultursystem nach Anspruch 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß es zur Simulierung
körpereigener biologischer Vorgänge, wie Angiogenese, Entzündung oder Metastasierung
Verwendung findet.
6. Kultursystem nach Anspruch 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß die Porengröße in
den Fasern 3 bis 30 µm beträgt.
7. Kultursystem nach Anspruch 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß poröse Hohlfasern
aus Polycarbonat innen- oder/und außenseitig in einem Kulturmedium mit Endothelzellen
besiedelt werden und dieses System zur Simulierung biologischer Vorgänge Verwendung
findet.
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DE1997111114 DE19711114A1 (de) | 1997-03-05 | 1997-03-05 | Kultursystem Mikrokapillare |
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