Nothing Special   »   [go: up one dir, main page]

CN111304164A - 一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用 - Google Patents

一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN111304164A
CN111304164A CN201911208966.3A CN201911208966A CN111304164A CN 111304164 A CN111304164 A CN 111304164A CN 201911208966 A CN201911208966 A CN 201911208966A CN 111304164 A CN111304164 A CN 111304164A
Authority
CN
China
Prior art keywords
exosome
stem cell
adipose
preparation
derived
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201911208966.3A
Other languages
English (en)
Inventor
邵芬
郭贝贝
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hangzhou Baioujin Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Hangzhou Baioujin Biotechnology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hangzhou Baioujin Biotechnology Co ltd filed Critical Hangzhou Baioujin Biotechnology Co ltd
Priority to CN201911208966.3A priority Critical patent/CN111304164A/zh
Publication of CN111304164A publication Critical patent/CN111304164A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0652Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
    • C12N5/0662Stem cells
    • C12N5/0667Adipose-derived stem cells [ADSC]; Adipose stromal stem cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/96Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution
    • A61K8/99Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution from microorganisms other than algae or fungi, e.g. protozoa or bacteria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q19/00Preparations for care of the skin
    • A61Q19/08Anti-ageing preparations
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2800/00Properties of cosmetic compositions or active ingredients thereof or formulation aids used therein and process related aspects
    • A61K2800/80Process related aspects concerning the preparation of the cosmetic composition or the storage or application thereof
    • A61K2800/84Products or compounds obtained by lyophilisation, freeze-drying
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Gerontology & Geriatric Medicine (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Birds (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Cosmetics (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明涉及干细胞外泌体的制备方法技术领域,且公开了一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用,该脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用,制备的外泌体采用常规方法,对外泌体进行流式细胞仪分析,数据用Flow Software7.6.1软件分析,结果表明,外泌体中CD29,CD44,CD90及CD105均为阳性表达,阳性率分别为97.7%,89.3%,97.1%及84.6%,CD34及CD45为阴性表达,阴性率分别为97.7%和92.7%,提高了后期的使用,解决了美容制剂其修复受损和抗衰老的效果不理想,以及普遍存在稳定性不佳,生产成本偏高的问题,从而达到提高其修复受损和抗衰老的效果,提高稳定性和降低生产成本的目的。

Description

一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用
技术领域
本发明涉及干细胞外泌体的制备方法技术领域,具体为一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用。
背景技术
间充质干细胞是重要的种子细胞之一,具有自我更新和多向分化潜能,其遗传信息稳定,可通过较简单的方法大量提取。与其他间充质干细胞的来源相比,脂肪组织是来源更丰富、可消耗且容易获得的组织,因此,脂肪间充质干细胞逐渐成为干细胞研究的新宠,对脂肪间充质干细胞的研究也越来越多。但是,由于脂肪间充质干细胞储存条件较苛刻,运输不便,临床应用较困难。
外泌体是一种经细胞内体途径生成并释放到细胞外的囊性小泡,由磷脂双层膜包被,其内包裹脂质、蛋白质、核酸等多种生物活性物质,电镜下观察呈杯状,是参与细胞间物质转运与信息传递的重要角色。新近研究表明,外泌体在细胞间信号通讯中发挥要作用,具有免疫调节、促进血管再生、以及介导细胞增殖、分化、迁移、凋亡等功能,维持机体的正常生理状态与参与疾病进程。其中间充质干细胞来源外泌体具有来源细胞特性,能促进受损区域细胞自我修复与组织再生,恢复组织内稳态,加速创面修复等功能。
人脂肪间充质干细胞分泌的外泌体,其结构稳定,不易分解,为脂肪间充质干细胞在临床应用提供了新的可能性。
而传统的外泌体制备技术,包括超离、超滤、磁珠免疫、PEG沉淀法等,其制备的外泌体中CD29,CD44,CD90及CD105均为阳性表达,阳性率分别低于80%,CD34及CD45为阴性表达,阴性率分别低于90%,影响了后期的使用,而且现有许多美容制剂其修复受损和抗衰老的效果不理想。
发明内容
(一)解决的技术问题
针对现有技术的不足,本发明提供了一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用,解决了现有设备制备的外泌体中CD29,CD44,CD90及CD105均为阳性表达,阳性率分别低于70.1,CD34及CD45为阴性表达,阴性率分别低于90%,而且美容制剂其修复受损和抗衰老的效果不理想,以及普遍存在稳定性不佳,生产成本偏高等情况的问题。
(二)技术方案
本发明提供如下技术方案:一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用,所述制备方法至少包括如下步骤:
(1)对人脂肪间充质干细胞进行培养,培养阶段在细胞培养基中添加诱导剂;
(2)对培养后的干细胞进行预处理;
(3)在预处理后的培养基上清液中提取所述的人脂肪间充质干细胞源外泌体;
(4)外泌体制剂的制备。
优选的,所述外泌体为间充质干细胞分化而来。
优选的,所述间充质干细胞源为人脂肪间充质干细胞。
优选的,还包括一种人脂肪间充质干细胞的培养方法:
(1)取吸脂术后脂肪30mL,用含青霉素-链霉素双抗的PBS冲洗3遍,去除筋膜及红细胞后,加入30ml的0.075%Ⅰ型胶原酶[7-11],在37℃、150r/min的条件下,消化,40-45min;
(2)加入等体积含体积分数10%胎牛血清的 DMEM/F12培养基终止消化,15 000 r/min离心10min,去除上层油脂及中层清液,用5mL红细胞裂解液重悬,室温静置5 min,1000r/min离心5 min;
(3)去除上清液,用含体积分数15%胎牛血清的低糖DMEM培养基重悬, 70 μm细胞筛网过滤后,移入培养皿行原代培养,每隔三天换液,细胞浓度融合生长至70%-80%时,用体积分数0.25%胰蛋白酶消化后按1∶2传代培养;
(4)取3-6代细胞,细胞融合生长至70-80%时,换无血清培养基培养24-48h,收集细胞上清液,收集的细胞上清液保存于-80℃冰箱。
优选的,还包括一种人脂肪间充质干细胞外泌体的提取方法:
(1)在4℃、无菌条件下,将收集的上清液,300×g离心10min,去除死细胞和大的细胞碎片,2000×g离心10min,去除死细胞和细胞碎片;10000×g/min离心30min去除细胞碎片较大的囊泡;再用0.22μm针头滤器过滤,去除微泡及可能存在的凋亡小体;
(2)用20mL空针将上清液转移至超速离心管中,106×g离心70min,去除上清液,收集沉淀,得到粗提取的外泌体;
(3)106×g离心70min,去除清液,用100μLPBS溶解沉淀,得到较纯的外泌体。
优选的,包括一种人脂肪间充质干细胞外泌体的冻干粉美容制剂制备方法:
(1)取外泌体,加入10%的甘露醇,混匀后用0.22 μm针头滤器过滤,分装后放入-80 ℃冰箱10小时。然后再真空下进行冻干(-50℃,24h),得到人间充质干细胞外泌体冻干粉;
(2)称取外泌体冻干粉10mg,葡糖胺基葡聚糖15mg,透明质酸15mg,海藻糖10mg,溶解于100ml甘油中,混合搅拌至透明状,用0.22μm针头滤器过滤,即得到所述美容制剂。
(三)有益效果
与现有技术相比,本发明提供了一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用,具备以下有益效果:
(1)该脂肪来源干细胞外泌体的制备方法,制备的外泌体采用常规方法,对外泌体进行流式细胞仪分析,数据用Flow Software7.6.1软件分析,结果表明,外泌体中CD29, CD44,CD90及CD105均为阳性表达,阳性率分别为 97.7%,89.3%,97.1%及84.6%,CD34及CD45为阴性表达,阴性率分别为97.7%和92.7%,提高了后期的使用。
(2)该脂肪来源干细胞外泌体的应用,解决了美容制剂其修复受损和抗衰老的效果不理想,以及普遍存在稳定性不佳,生产成本偏高的问题,从而达到提高其修复受损和抗衰老的效果,提高稳定性和降低生产成本的目的。
具体实施方式
下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
实施例:一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用,所述制备方法至少包括如下步骤:
(1)对人脂肪间充质干细胞进行培养,培养阶段在细胞培养基中添加诱导剂;
(2)对培养后的干细胞进行预处理;
(3)在预处理后的培养基上清液中提取所述的人脂肪间充质干细胞源外泌体;
(4)外泌体制剂的制备。
进一步的,外泌体为间充质干细胞分化而来。
进一步的,所述间充质干细胞源为人脂肪间充质干细胞。
进一步的,还包括一种人脂肪间充质干细胞的培养方法:
(1)取吸脂术后脂肪30mL,用含青霉素-链霉素双抗的PBS冲洗3遍,去除筋膜及红细胞后,加入30ml的0.075%Ⅰ型胶原酶[7-11],在37℃、150r/min的条件下,消化,40-45min;
(2)加入等体积含体积分数10%胎牛血清的 DMEM/F12培养基终止消化,15 000 r/min离心10min,去除上层油脂及中层清液,用5mL红细胞裂解液重悬,室温静置5 min,1000r/min离心5 min;
(3)去除上清液,用含体积分数15%胎牛血清的低糖DMEM培养基重悬, 70 μm细胞筛网过滤后,移入培养皿行原代培养,每隔三天换液,细胞浓度融合生长至70%-80%时,用体积分数0.25%胰蛋白酶消化后按1∶2传代培养;
(4)取3-6代细胞,细胞融合生长至70-80%时,换无血清培养基培养24-48h,收集细胞上清液,收集的细胞上清液保存于-80℃冰箱。
进一步的,还包括一种人脂肪间充质干细胞外泌体的提取方法:
(1)在4℃、无菌条件下,将收集的上清液,300×g离心10min,去除死细胞和大的细胞碎片,2000×g离心10min,去除死细胞和细胞碎片;10000×g/min离心30min去除细胞碎片较大的囊泡;再用0.22μm针头滤器过滤,去除微泡及可能存在的凋亡小体;
(2)用20mL空针将上清液转移至超速离心管中,106×g离心70min,去除上清液,收集沉淀,得到粗提取的外泌体;
(3)106×g离心70min,去除清液,用100μLPBS溶解沉淀,得到较纯的外泌体。
一种人脂肪间充质干细胞外泌体的冻干粉美容制剂制备方法:
(1)取外泌体,加入10%的甘露醇,混匀后用0.22 μm针头滤器过滤,分装后放入-80℃冰箱10小时。然后再真空下进行冻干(-50℃,24h),得到人间充质干细胞外泌体冻干粉;
(2)称取外泌体冻干粉10mg,葡糖胺基葡聚糖15mg,透明质酸15mg,海藻糖10mg,溶解于100ml甘油中,混合搅拌至透明状,用0.22μm针头滤器过滤,即得到所述美容制剂。
综上所述,该脂肪来源干细胞外泌体的制备方法,制备的外泌体采用常规方法,对外泌体进行流式细胞仪分析,数据用Flow Software7.6.1软件分析,结果表明,外泌体中CD29, CD44,CD90及CD105均为阳性表达,阳性率分别为97.7%,89.3%,97.1%及84.6%,CD34及CD45为阴性表达,阴性率分别为97.7%和92.7%。
该脂肪来源干细胞外泌体的应用,解决了美容制剂其修复受损和抗衰老的效果不理想,以及普遍存在稳定性不佳,生产成本偏高的问题,从而达到提高其修复受损和抗衰老的效果,提高稳定性和降低生产成本的目的。
实验例1:通过实施例、超离、超滤、磁珠免疫和PEG沉淀法制备外泌体体,每种方法 制备各两份,每份均为10g。
阳性/% CD29 CD44 CD90 CD105
超离 85 80 84 76
超滤 80 73 81 76
磁珠免疫 84 75 83 72
PEG沉淀法 79 77 76 78
实施例 97.7 89.3 97.1 84.6
阴性/% CD34 CD45
超离 85 87
超滤 90 83
磁珠免疫 94 79
PEG沉淀法 89 80
实施例 97.7 92.7
判断方法:制备的外泌体采用常规方法,对外泌体进行流式细胞仪分析,数据用FlowSoftware7.6.1软件分析。
结构表明:制备的外泌体采用常规方法,对外泌体进行流式细胞仪分析,数据用Flow Software7.6.1软件分析,结果表明,外泌体中CD29, CD44,CD90及CD105均为阳性表达,阳性率分别为 97.7%,89.3%,97.1%及84.6%,CD34及CD45为阴性表达,阴性率分别为97.7%和92.7%,提高了后期的使用。
需要说明的是,术语“包括”、“包含”或者其任何其他变体意在涵盖非排他性的包含,从而使得包括一系列要素的过程、方法、物品或者设备不仅包括那些要素,而且还包括没有明确列出的其他要素,或者是还包括为这种过程、方法、物品或者设备所固有的要素。在没有更多限制的情况下,由语句“包括一个……”限定的要素,并不排除在包括所述要素的过程、方法、物品或者设备中还存在另外的相同要素。
尽管已经示出和描述了本发明的实施例,对于本领域的普通技术人员而言,可以理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实施例进行多种变化、修改、替换和变型,本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。

Claims (7)

1.一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法,其特征在于:所述制备方法至少包括如下步骤:
(1)对人脂肪间充质干细胞进行培养,培养阶段在细胞培养基中添加诱导剂;
(2)对培养后的干细胞进行预处理;
(3)在预处理后的培养基上清液中提取所述的人脂肪间充质干细胞源外泌体;
(4)外泌体制剂的制备。
2.根据权利要求1所述的一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法,其特征在于:所述外泌体为间充质干细胞分化而来。
3.根据权利要求1所述的一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法,其特征在于:所述间充质干细胞源为人脂肪间充质干细胞。
4.根据权利要求1所述的一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用,其特征在于,还包括一种人脂肪间充质干细胞的培养方法:
(1)取吸脂术后脂肪30mL,用含青霉素-链霉素双抗的PBS冲洗3遍,去除筋膜及红细胞后,加入30ml的0.075%Ⅰ型胶原酶[7-11],在37℃、150r/min的条件下,消化,40-45min;
(2)加入等体积含体积分数10%胎牛血清的 DMEM/F12培养基终止消化,15 000 r/min离心10min,去除上层油脂及中层清液,用5mL红细胞裂解液重悬,室温静置5 min,1000r/min离心5 min;
(3)去除上清液,用含体积分数15%胎牛血清的低糖DMEM培养基重悬,70μm细胞筛网过滤后,移入培养皿行原代培养,每隔三天换液,细胞浓度融合生长至70%-80%时,用体积分数0.25%胰蛋白酶消化后按1∶2传代培养;
(4)取3-6代细胞,细胞融合生长至70-80%时,换无血清培养基培养24-48h,收集细胞上清液,收集的细胞上清液保存于-80℃冰箱。
5.根据权利要求1所述的一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法,其特征在于,还包括一种人脂肪间充质干细胞外泌体的提取方法:
(1)在4℃、无菌条件下,将收集的上清液,300×g离心10min,去除死细胞和大的细胞碎片,2000×g离心10min,去除死细胞和细胞碎片;10000×g/min离心30min去除细胞碎片较大的囊泡;再用0.22μm针头滤器过滤,去除微泡及可能存在的凋亡小体;
(2)用20mL空针将上清液转移至超速离心管中,106×g离心70min,去除上清液,收集沉淀,得到粗提取的外泌体;
(3)106×g离心70min,去除清液,用100μLPBS溶解沉淀,得到较纯的外泌体。
6.根据权利要求1所述的一种脂肪来源干细胞外泌体的应用,其特征在于,包括一种人脂肪间充质干细胞外泌体的冻干粉美容制剂制备方法:
(1)取外泌体,加入10%的甘露醇,混匀后用0.22 μm针头滤器过滤,分装后放入-80℃冰箱10小时。
7.然后再真空下进行冻干(-50℃,24h),得到人间充质干细胞外泌体冻干粉;
(2)称取外泌体冻干粉10mg,葡糖胺基葡聚糖15mg,透明质酸15mg,海藻糖10mg,溶解于100ml甘油中,混合搅拌至透明状,用0.22μm针头滤器过滤,即得到所述美容制剂。
CN201911208966.3A 2019-11-30 2019-11-30 一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用 Pending CN111304164A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201911208966.3A CN111304164A (zh) 2019-11-30 2019-11-30 一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201911208966.3A CN111304164A (zh) 2019-11-30 2019-11-30 一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN111304164A true CN111304164A (zh) 2020-06-19

Family

ID=71148570

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201911208966.3A Pending CN111304164A (zh) 2019-11-30 2019-11-30 一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111304164A (zh)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111944747A (zh) * 2020-08-14 2020-11-17 福建医科大学附属协和医院 一种用于治疗心肌梗死的人脂肪间充质干细胞外泌体及其用途
CN111944748A (zh) * 2020-08-14 2020-11-17 福建医科大学附属协和医院 一种用于治疗心肌梗死的高表达il-10的人脂肪间充质干细胞外泌体及其用途
CN111944749A (zh) * 2020-08-14 2020-11-17 福建医科大学附属协和医院 一种用于治疗心肌梗死的人脂肪间充质干细胞外泌体的制备方法
CN113171411A (zh) * 2021-04-28 2021-07-27 奥启(深圳)创投科技有限公司 一种具有美白功能的含有脂肪干细胞外泌体的组合物
CN113662965A (zh) * 2021-06-11 2021-11-19 盛小伍 脂肪来源干细胞的应用和一种组织蛋白酶f抑制剂
WO2023169594A1 (zh) * 2022-03-08 2023-09-14 中山大学 血液来源的样品在制备囊泡中的应用
CN117771260A (zh) * 2024-02-07 2024-03-29 中国中医科学院中医基础理论研究所 一种脂肪间充质干细胞外泌体-淫羊藿苷载药系统、制备方法及应用

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103184191A (zh) * 2012-12-04 2013-07-03 东南大学 大鼠大网膜脂肪来源间充质干细胞的提取方法和专用培养基
CN104762260A (zh) * 2015-04-23 2015-07-08 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 脂肪间充质干细胞及其制剂的制备方法和用途
CN105219707A (zh) * 2015-11-17 2016-01-06 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种复苏脂肪间充质干细胞的方法
CN105267240A (zh) * 2014-12-16 2016-01-27 天津医科大学眼科医院 间充质干细胞来源的外泌体的用途
WO2018182356A1 (ko) * 2017-03-31 2018-10-04 (주)안트로젠 중간엽줄기세포 유래 고순도, 고농도 엑소좀을 포함하는 배양액 및 이의 제조방법
CN108721200A (zh) * 2018-06-07 2018-11-02 武汉赛云博生物科技有限公司 一种人间充质干细胞来源的外泌体美容制剂的制备方法及应用
CN109536440A (zh) * 2018-11-19 2019-03-29 深圳市第二人民医院 外泌体的提取方法
CN109880797A (zh) * 2019-04-08 2019-06-14 济南磐升生物技术有限公司 一种制备人脐带间充质干细胞外泌体的方法
CN110151679A (zh) * 2019-06-24 2019-08-23 广州远想生物科技有限公司 一种外泌体冻干粉及其制备方法与应用

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103184191A (zh) * 2012-12-04 2013-07-03 东南大学 大鼠大网膜脂肪来源间充质干细胞的提取方法和专用培养基
CN105267240A (zh) * 2014-12-16 2016-01-27 天津医科大学眼科医院 间充质干细胞来源的外泌体的用途
CN104762260A (zh) * 2015-04-23 2015-07-08 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 脂肪间充质干细胞及其制剂的制备方法和用途
CN105219707A (zh) * 2015-11-17 2016-01-06 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种复苏脂肪间充质干细胞的方法
WO2018182356A1 (ko) * 2017-03-31 2018-10-04 (주)안트로젠 중간엽줄기세포 유래 고순도, 고농도 엑소좀을 포함하는 배양액 및 이의 제조방법
CN108721200A (zh) * 2018-06-07 2018-11-02 武汉赛云博生物科技有限公司 一种人间充质干细胞来源的外泌体美容制剂的制备方法及应用
CN109536440A (zh) * 2018-11-19 2019-03-29 深圳市第二人民医院 外泌体的提取方法
CN109880797A (zh) * 2019-04-08 2019-06-14 济南磐升生物技术有限公司 一种制备人脐带间充质干细胞外泌体的方法
CN110151679A (zh) * 2019-06-24 2019-08-23 广州远想生物科技有限公司 一种外泌体冻干粉及其制备方法与应用

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111944747A (zh) * 2020-08-14 2020-11-17 福建医科大学附属协和医院 一种用于治疗心肌梗死的人脂肪间充质干细胞外泌体及其用途
CN111944748A (zh) * 2020-08-14 2020-11-17 福建医科大学附属协和医院 一种用于治疗心肌梗死的高表达il-10的人脂肪间充质干细胞外泌体及其用途
CN111944749A (zh) * 2020-08-14 2020-11-17 福建医科大学附属协和医院 一种用于治疗心肌梗死的人脂肪间充质干细胞外泌体的制备方法
CN113171411A (zh) * 2021-04-28 2021-07-27 奥启(深圳)创投科技有限公司 一种具有美白功能的含有脂肪干细胞外泌体的组合物
CN113662965A (zh) * 2021-06-11 2021-11-19 盛小伍 脂肪来源干细胞的应用和一种组织蛋白酶f抑制剂
WO2023169594A1 (zh) * 2022-03-08 2023-09-14 中山大学 血液来源的样品在制备囊泡中的应用
CN117771260A (zh) * 2024-02-07 2024-03-29 中国中医科学院中医基础理论研究所 一种脂肪间充质干细胞外泌体-淫羊藿苷载药系统、制备方法及应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN111304164A (zh) 一种脂肪来源干细胞外泌体的制备方法和应用
Wang et al. Functional engineered human cardiac patches prepared from nature's platform improve heart function after acute myocardial infarction
JP5371445B2 (ja) 脂肪組織由来細胞を培養する方法及びその使用
CN110540956B (zh) 由胎盘间充质干细胞简易制备细胞因子的方法
CN102876630B (zh) 一种高效分离和扩增人脐带血间充质干细胞的方法
Saleh et al. Turning round: multipotent stromal cells, a three-dimensional revolution?
US20170304366A1 (en) Composition containing mesenchymal stem cell-hydrogel and method for producing the composition
US20110217385A1 (en) Method for extracting mesenchymal stem cell from human or animal embryo and for extracting the secretion product thereof
Xiao et al. Extracellular matrix from human umbilical cord-derived mesenchymal stem cells as a scaffold for peripheral nerve regeneration
CN107254443B (zh) 一种促进骨髓间充质干细胞向神经元分化的诱导培养基和诱导方法
US20220325247A1 (en) METHOD FOR PROMOTING GROWTH OF PARIETAL DECIDUAL BASALIS-MESENCHYMAL STEM CELLS (PDB-MSCs)
WO2012068710A1 (zh) 从微量人脂肪组织提取间充质干细胞及规模化培养的方法
Baghalishahi et al. Cardiac extracellular matrix hydrogel together with or without inducer cocktail improves human adipose tissue-derived stem cells differentiation into cardiomyocyte–like cells
CN111826345A (zh) 一种人脐带间充质干细胞源外泌体制剂
Zhang et al. Comparison of beneficial factors for corneal wound-healing of rat mesenchymal stem cells and corneal limbal stem cells on the xenogeneic acellular corneal matrix in vitro
CN114540298A (zh) 一种干细胞无血清培养基及其制备方法
CN111840646B (zh) 一种胸部脂肪填充用干细胞组合物及其应用
CN1778905B (zh) 一种脂肪间充质干细胞的分离培养方法及其应用
Lu et al. The in vitro differentiation of GDNF gene-engineered amniotic fluid-derived stem cells into renal tubular epithelial-like cells
Xie et al. Construction of engineered corpus cavernosum with primary mesenchymal stem cells in vitro
CN109897815B (zh) 一种无需包被的脂肪内皮祖细胞的高效分离和培养方法
CN106606512B (zh) 一种用于治疗心肌梗死的混合细胞制剂及制备方法与应用
WO2006134951A1 (ja) 脂肪由来幹細胞の長期培養増殖法
CN101760445B (zh) 自体骨髓间充质干细胞的扩增方法
Esposito et al. Culture conditions allow selection of different mesenchymal progenitors from adult mouse bone marrow

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20200619