CN115820632B - 抑制ascc3表达的小干扰rna及其在抑制膀胱癌转移中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了抑制ASCC3表达的小干扰RNA及其在抑制膀胱癌中的应用,属于分子生物技术与基因工程领域。通过在细胞中转染该小干扰RNA,能调控和干扰ASCC3基因表达,降低细胞克隆形成能力,抑制细胞伤口愈合和侵袭;通过抑制ASCC3基因表达的小干扰RNA,可以降低ASCC3的表达,有效抑制膀胱癌细胞增殖、迁移和侵袭,为膀胱癌治疗提供了一个新的药物靶点,具备很高的实际临床应用的价值。
Description
技术领域
本发明涉及分子生物技术与基因工程领域,具体而言,涉及抑制ASCC3基因表达的小干扰RNA及其在抑制膀胱癌转移中的应用。
背景技术
膀胱癌是世界范围内的主要公共卫生问题,也是最具侵袭性的恶性肿瘤之一。尽管近年来已经取得了相当大的诊断和治疗进展,但由于转移和侵袭率高,膀胱癌患者的预后仍然很差。研究转移和侵袭相关基因对膀胱癌细胞增殖和转移的作用,对改善膀胱癌患者的预后都有重要理论意义和应用价值。有研究发现应用RNAi技术可以特异性地向哺乳动物和人类的细胞中导入小干扰RNA来降低靶基因的表达,进而引起靶蛋白的表达下降,达到高效特异性的基因治疗作用。然而如何应用RNAi技术来抑制ASCC3基因的表达还鲜有报道。
发明内容
本发明的目的在于提供了抑制ASCC3基因表达的小干扰RNA及其在抑制膀胱癌转移中的应用,本发明提供干扰ASCC3基因表达的小干扰RNA, 通过在细胞中转染该小干扰RNA, 能调控和干扰ASCC3基因表达,降低细胞克隆形成能力,抑制细胞伤口愈合和侵袭等。
具体的,本发明的技术方案如下:
本发明第一个方面公开了一种干扰ASCC3基因表达的小干扰RNA,所述小干扰RNA包括小干扰RNA1、小干扰RNA2和小干扰RNA3中的一种或任意组合;所述小干扰RNA1、RNA2和RNA3的核苷酸序列分别如SEQ ID NO. 1、SEQ ID NO. 2和SEQ ID NO. 3所示。
在本发明的一些优选实施例中,小干扰RNA1的碱基序列如SEQ ID NO.1所示,SEQID NO.1:5’ GCCTGACATGGAAGAAGATAA 3’。阴性对照序列为:3’ TTCTCCGAACGTGTCACGT5’(SEQ ID NO.4)。
小干扰RNA2的碱基序列如SEQ ID NO.2所示, SEQ ID NO.2 :5’GAAGAAGTGGCTGACTTAAAG 3’。阴性对照序列为: 3’ TTCTCCGAACGTGTCACGT5’ (SEQ IDNO.5)。
小干扰RNA3的碱基序列如SEQ ID NO.3所示,SEQ ID NO.3 :5’GCGATCTAAACTTCATGAACA 3’。 阴性对照序列为: 3’ TTCTCCGAACGTGTCACGT 5’ (SEQ IDNO.6)。
本发明第二个方面公开了上述的干扰ASCC3基因表达的小干扰RNA在干扰ASCC3基因表达中的应用。
本发明第三个方面公开了上述的干扰ASCC3基因表达的小干扰RNA具有如下应用:a)在制备降低细胞克隆形成能力产品中的应用;
b)在制备抑制细胞伤口愈合产品中的应用;
c)在制备抑制细胞侵袭相关基因表达产品中的应用。
本发明第四个方面公开了一种抑制ASCC3基因表达或用于抑制癌症转移的药物,所述药物包括权利要求1所述的小干扰RNA。
优选的,所述癌症为膀胱癌。
本发明第五个方面公开了上述的小干扰RNA在用于制备治疗用于抑制癌症转移中的应用。
本发明第六个方面公开了一种干扰ASCC3基因表达的方法,包括以下步骤:
S1:用不含血清的培养基稀释如权利要求1所述的干扰ASCC3基因表达的小干扰RNA,得到小干扰RNA溶液;用不含血清的培养基稀释脂质体,得到脂质体溶液;将所述小干扰RNA溶液和所述脂质体溶液混合,得到脂质体-小干扰RNA复合物溶液;
S2:在培养板中进行细胞培养,当细胞覆盖40%-60%的板底时,吸弃培养基,用无血清的DMEM培养基清洗;加入无血清培养基和所述脂质体-小干扰RNA复合物溶液培养转染;吸弃所述无血清培养基,加入含有胎牛血清的DMEM培养基培养;
S3:收集细胞并检测ASCC3基因表达。
优选的,在培养板中进行细胞培养时,所述细胞的密度为0.5×105-2×105个/mL。
优选的,将所述小干扰RNA溶液和所述脂质体溶液混合的时间为10-20min。
优选的,加入所述脂质体-小干扰RNA复合物溶液培养转染的时间为18-48h,转染温度为35-38℃。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
本发明发现了一种新的可用于抑制ASCC3基因表达的小干扰RNA,通过降低ASCC3的表达,可以有效抑制膀胱癌细胞增殖、迁移和侵袭,为膀胱癌治疗提供了一个新的药物靶点,具备很高的实际临床应用的价值。
附图说明
图1为本发明实施例中小干扰RNA对ASCC3基因表达影响的蛋白表达量结果示意图。
图2为本发明实施例中细胞克隆数的示意图。
图3为本发明实施例中细胞迁移和侵袭的示意图。
图4为本发明实施例中划痕实验的结果示意图。
图5为本发明实施例中流式细胞仪检测的结果示意图。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明的技术方案进行详细描述,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。
下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。本发明所用试剂和原料均市售可得。
实施例1
一、ASCC3小干扰片段的构建及其鉴定方法,包括:
1:细胞培养条件及培养基:膀胱癌5637细胞株用含 10%胎牛血清的 RPMI 1640(HyClone SH30809.01)培养在 5%CO2, 37℃的培养箱中。
2:细胞转染:按说明书将 RNAoligo 稀释成20uM溶液待用;将细胞消化后,铺在 6孔板中,当细胞密度汇合到 30-50%时进行转染;准备三个无菌1.5mL 的 EP 管,分别在三个 EP 管中加入 OPTI-MEM 200ul 和对应的siRNA-1、 siRNA-2、siRNA-3及阴性对照 RNA溶液 5μL, 快速涡旋 10s 使其完全混匀;再分别向3个EP 管中加入 6μL siRNA-Mate 转染试剂,室温静置 10min,使siRNA 和转染试剂形成转染复合物,再加入 6 孔板对应的孔中,轻晃摇匀;2天后,免疫印迹法验证敲低效率以及进行细胞功能实验。如图1所示。
3:免疫印迹实验证明ASCC3小干扰片段在蛋白水平的抗肿瘤效应
将si-control组,si-ASCC3组两组细胞吸去培养液后置于冰上。加入1ml 4℃预冷的PBS(0.01M pH7.2~7.3)。然后将六孔板置于冰上,用移液管反复清洗两次。按1ml裂解液加10μL PMSF(100 mM)摇匀置于冰上。在细胞培养板每个孔中加入150μL含PMSF的裂解液,然后于冰上裂解5 分钟之后,使用刮板来回刮细胞,使细胞充分裂解。
BCA 定量法测定蛋白含量,使用前面已经标记提取好的细胞蛋白,然后在4度离心机下离心,弃去下层沉淀后重新标记每管。从负20度冰箱拿出loading buffer,使其在室温融化,然后向每管标记好的细胞蛋白溶液加入loading buffer 50μL。提前使恒温干式煮蛋白机器加热至100度,将混匀的细胞蛋白溶液于恒温干式煮蛋白机器孵育10分钟使其变性。应用标准曲线计算待测样本的浓度,测量三次后取其平均值。
SDS-PAGE 电泳,将配胶使用的玻璃板清洗干净,然后验漏5分钟。按照一定比例配置10%的下层胶。然后使用移液枪灌胶,在此过程中注意不要有气泡,然后用乙醇进行封压,凝30分钟。用自来水轻轻洗去封压的乙醇,清洗不掉的使用吸水纸吸去乙醇,按照一定比例配置上层胶,然后使用移液枪注上层胶,此过程注意也不要有气泡,然后插梳子,凝30分钟。胶凝固之后取胶,注意动作要轻柔,防止板子碎裂,加少量水之后放入袋子中4℃冰箱保存备用,最好是现配现用。
电泳需要提前按照一定比例配置好电泳液(最好现配现用),后将SDS-PAGE胶放入电泳槽中,加足够的电泳液。用移液枪贴壁吸取样品,将si-control,si-ASCC3组两组样品吸出。使其每个孔道加入总量200μg的蛋白量,将移液枪调至相应体积的刻度,然后加样器针头插入样品中吸取蛋白至加样孔中缓慢加入样品。先把电压设置80V,开始跑胶,当把样品跑至分离胶后把电压增120V,电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳,进行转膜。
按照一定比例配置好转膜液,然后在加有转膜液的盘里放入转膜用的剪刀,刮板,夹子及海绵垫。然后准备好PVDF膜,将PVDF膜依次放入甲醇,ddH2O,转膜液中,滤纸浸入转膜液中。在夹子两面放入各放一张海绵垫,然后将两片滤纸再分别放在海绵垫上面。将板子放入转膜液中,然后使用刮板轻轻撬开两边的玻璃板,然后将上层胶除去不要,轻轻的将胶置于靠黑面的海绵垫上,注意动作一定要轻柔,防止胶破碎,然后将PVDF膜置于胶上,这时可以做好膜正面的标记,之后使PVDF膜和胶对齐,使用刮板轻轻擀去气泡。将夹子放入转膜槽中(转膜的时候会产热,使转膜槽放入冰盆中),使槽的黑面对着夹子的黑面,使槽的红面对着夹子的白面。使用300mA转90分钟。
将转好的PVDF膜(注意此时可以看到膜上的maker)移至含有牛奶的玻璃皿中,室温下在摇床上摇动封闭2h。TBST洗4次。每次5分钟。将膜按照所需要的目标蛋白所处位置剪切下来并做好标记,加入目标蛋白抗体,然后用封口膜封好之后在4℃过夜。第二天取出膜之后在室温下孵育1~2 h后,用TBST在室温下脱色摇床上洗3次,每次15分钟。同上方法准备目标蛋白ASCC3所对应的二抗放入膜中,β-tublin作内参,在室温下孵育2 h后,用TBST在室温下脱色摇床上洗3次,每次15 分钟,显影时将A液和B液两种试剂在离心管中等体积混合,注意避光。取适量显影液于显影仪台面上,将膜用镊子夹起来正反面充分和显影液接触,注意切角在左上,即正面朝上。
蛋白表达量的结果如图1所示,可以看出,与对照组比较,转染小干扰RNA1(siR1)、小干扰RNA2(siR2)和小干扰RNA3(siR3)的实验组的ASCC3蛋白的表达量都降低,从蛋白的相对表达量能清楚得看出, 转染小干扰RNA1的实验组对ASCC3蛋白表达的干扰最大,效果最好。因此可以将干扰ASCC3基因表达的小干扰RNA在干扰ASCC3基因表达中的应用。
具体序列如下:
小干扰RNA1的碱基序列如SEQ ID NO.1所示,SEQ ID NO.1:5’GCCTGACATGGAAGAAGATAA 3’。阴性对照序列为:3’ TTCTCCGAACGTGTCACGT5’(SEQ IDNO.4)。
小干扰RNA2的碱基序列如SEQ ID NO.2所示, SEQ ID NO.2 :5’GAAGAAGTGGCTGACTTAAAG 3’。阴性对照序列为: 3’ TTCTCCGAACGTGTCACGT5’ (SEQ IDNO.5)。
小干扰RNA3的碱基序列如SEQ ID NO.3所示,SEQ ID NO.3 :5’GCGATCTAAACTTCATGAACA 3’。 阴性对照序列为: 3’ TTCTCCGAACGTGTCACGT 5’ (SEQ IDNO.6)。
二、ASCC3小干扰片段抑制膀胱癌转移和侵袭的检测细胞学实验
1:克隆形成实验证明ASCC3小干扰片段细胞水平的抗肿瘤效应
将500个细胞/孔的细胞悬液放入6cm的培养皿中。在37℃孵箱中用3ml培养液培养细胞。培养细胞培养2周后,用PBS溶液温和地洗涤,福尔马林固定,0.1%结晶紫染色,测定克隆形成率。如图2所示。
结果表明,ASCC3小干扰RNA干扰的实验组与NC组相比,细胞克隆数显著降低(p<0.05), 表明ASCC3能够促进膀胱癌5637细胞株克隆形成, 即通过小干扰RNA1转染膀胱癌5637细胞株干扰ASCC3基因, 能抑制细胞的克隆形成。
三、Transwell分析实验证明ASCC3小干扰片段细胞水平的抗肿瘤效应
先准备 24 孔板,将小室移至 24 孔板内;细胞侵袭实验,基质胶需要提前一天从-20℃放入 4℃冰箱,24 孔板、枪头、小室都需要提前预冷,所有操作都需在冰上进行;将转染后的细胞从 6 孔板中消化下来,离心后,弃去上清,留细胞沉淀;加入 1ml PBS 重悬,离心;再加入 1ml PBS 重悬,离心,弃上清;加入少些基培重悬,然后取 200μL 体积内含 5× 105个细胞,置于孔径为 8μm 的 Transwell 室中,进行或不进行 Matrigel 处理,并在下部隔室中装入 1640 含 10%FBS(胎牛血清) 的培养基 500μL。温育 24 小时后,移去上腔室细胞悬液,用 4%多聚甲醛将下腔室膜上的细胞固定 30min,然后用结晶紫染色5min。用显微镜随机选择 5 个视野来计数迁移或侵袭细胞。如图3所示。
结果表明,ASCC3小干扰RNA干扰的实验组与NC组相比,迁移和侵袭的细胞数显著降低(p<0.05),表明ASCC3能够促进膀胱癌5637细胞株迁移和侵袭,即通过小干扰RNA1转染膀胱癌5637细胞株干扰ASCC3基因,能抑制细胞的迁移和侵袭。
四、划痕实验证明ASCC3小干扰片段在细胞水平的抗肿瘤效应
每组细胞接种于约90%融合的6孔板中。用一个200μL 的吸管尖端划痕制造了对称的伤口。用PBS洗涤两次后,用无血清DMEM培养液孵育24h。分别于拔除伤口后0h和24h拍摄移行照片。如图4所示。
流式细胞仪检测,用 PBS 重悬洗涤 3 次,离心,弃掉 PBS,用 70%乙醇重悬,置于-20°C 固定至少 24 小时。检测前,离心收集的细胞,弃乙醇,用 PBS洗涤 3 次,并用含1% Triton X-100 的 PBS,4°C 通透,每管 200 μL。后加入RNase A,避光 4°C 反应,每管300-400 μL。加入 200μL PI 染色剂,避光 4°C 染色 20 min,每管 200 μL,流式细胞仪检测。如图5所示。
综上所述,本发明实施例提供的抑制ASCC3基因表达的小干扰RNA及其应用于靶向药物,通过小干扰RNA抑制ASCC3基因表达,能调控细胞活力、细胞增殖,抑制细胞迁移和侵袭等,对临床开发膀胱癌靶向药物具有较好的应用前景。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
Claims (1)
1.一种干扰ASCC3基因表达的小干扰RNA具有如下应用:
a)在制备降低膀胱癌细胞克隆形成能力产品中的应用;
b)在制备抑制膀胱癌细胞侵袭产品中的应用;
c)在制备抑制膀胱癌细胞转移产品中的应用;
所述小干扰RNA的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
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