CN109265433B

CN109265433B - 从南山茶中提取木脂素类化合物的方法

Info

Publication number: CN109265433B
Application number: CN201811459494.4A
Authority: CN
Inventors: 曹清明; 胡丹丹; 袁欢; 段雨青; 周文化
Original assignee: Central South University of Forestry and Technology
Current assignee: Central South University of Forestry and Technology
Priority date: 2018-11-30
Filing date: 2018-11-30
Publication date: 2021-02-09
Anticipated expiration: 2038-11-30
Also published as: CN109265433A

Abstract

本发明提供了一种从南山茶中提取木脂素类化合物的方法。所述方法包括以下步骤:将南山茶饼用乙醇水溶液浸提得到提取液；将提取液减压蒸馏得浓缩液，用乙酸乙酯萃取浓缩液，得到萃取液，将萃取液减压蒸馏得到萃取浓缩液；将硅胶加入萃取浓缩液进行拌样，然后烘干得到处理样品；以硅胶为填料，干法上样进行柱层析，使用二氯甲烷‑甲醇体系进行梯度洗脱，分段收集洗脱液，经色谱分析，收集含有目标化合物的流份段；使用C18色谱柱、乙腈水溶液作为流动相，对流份段进行恒定洗脱，分段收集洗脱液，收集仅含有目标化合物的流份段，浓缩冻干得到目标化合物。本申请提供的方法首次从山茶属植物中有效提取出目标化合物，有利于南山茶的深度开发利用。

Description

从南山茶中提取木脂素类化合物的方法

技术领域

本发明涉及化合物提取领域，具体而言，涉及一种从南山茶中提取木脂素类化合物的方法。

背景技术

南山茶又名广宁红花油茶(Camellia semiserrata Chi.)，属于山茶科(Theaceae)山茶属(Camellia L.)植物，多年生乔木或灌木。南山茶主要分布在我国的广西东南部以及广东西部，它是油茶的一种重要栽培物种。经研究比较各类油茶发现，南山茶中的化学成分相对比较丰富。

木脂素是一类由苯丙素双分子聚合而成的天然成分，组成木脂素的单体有四种：桂皮酸(偶有桂皮醛)、桂皮醇、丙烯苯、烯丙苯。按基本碳架和缩合情况，木脂素可分为：简单木脂素、单环氧木脂素、木脂内酯、环木脂素、环木脂内酯、双环氧木脂素、联苯环辛烯型木脂素、新木脂素等。

木脂素存在于植物中，属于一种植物雌激素，具有清除体内自由基，抗氧化，抗肿瘤的作用。亚麻籽及芝麻中木脂素的含量较高，谷物类食物(如黑麦，小麦，燕麦，大麦等)，大豆和十字花科植物(如西兰花)和一些水果(如草莓)中也含木脂素。木脂素能结合雌激素受体，并干扰癌促效应。因此，可能对乳腺癌，前列腺癌和结肠癌等有防治作用。

分析南山茶中的有效活性物质，将木脂素类化合物从复杂多样的成分中分离提取出来，得到纯度较高的产品，对于南山茶的深度应用以及抗肿瘤事业的发展具有重要的作用。

有鉴于此，特提出本发明。

发明内容

本发明的目的在于提供一种从南山茶中提取木脂素类化合物的方法，所述方法能够快速有效的从南山茶中提取出纯度很高的目标化合物。

为了实现本发明的上述目的，特采用以下技术方案：

一种从南山茶中提取木脂素类化合物的方法，所述方法包括以下步骤:

A.将南山茶的茶饼用乙醇水溶液浸提，得到提取液；

B.将所述提取液减压蒸馏至无醇得到浓缩液，用乙酸乙酯萃取所述浓缩液，得到萃取液，将所述萃取液减压蒸馏至粘稠状得到萃取浓缩液；

C.以少量多次的方式将硅胶加入所述萃取浓缩液，进行拌样，然后烘干，得到处理样品；

D.以硅胶作为填料，干法上样进行柱层析，使用二氯甲烷-甲醇体系进行梯度洗脱，分段收集洗脱液，经薄层色谱分析和高效液相色谱分析，收集含有目标化合物的流份段；

E.使用C18色谱柱、乙腈水溶液作为流动相，对所述流份段进行恒定洗脱，分段收集洗脱液，经薄层色谱分析，收集仅含有目标化合物的流份段，浓缩冻干得到目标化合物A和目标化合物B，所述目标化合物A的结构式为：

所述目标化合物B的结构式为：

该方法通过浸提-浓缩-萃取-柱层析-色谱制备的程序，有效的将目标化合物进行分离提取，其中目标化合物A提取得率为72mg/kg以上，纯度高达98.9％以上；目标化合物B提取得率为276mg/kg以上，纯度高达97.2％以上。

优选地，所述步骤D中，所述梯度洗脱为：各洗脱段二氯甲烷-甲醇体系的体积比依次为20:1、8:1、5:1、3:1，每个体积比对应的洗脱段洗脱至洗脱液无色。

洗脱剂的选择、洗脱体系的确定，也是柱层析的关键，所要考虑的是被分离物的极性。在本申请中，先根据极性使用常见的洗脱剂进行试验，确定洗脱剂类型；然后进行洗脱梯度的确定，通过用不同浓度的二氯甲烷-甲醇体系进行薄层色谱分析，获得能够将样品点分离的比较好的梯度作为柱层析的洗脱梯度。

可选地，所述步骤D中，柱层析时，对层析柱进行加压处理；所述步骤D中，层析柱体积为1.25L，收集流份段时，以四分之一柱体积为一个收集单位，收集第22-23流份段。

加压处理主要是为了保证柱层析效率，优选气泵法进行加压处理。

选择合适的收集时机，对于将南山茶中复杂的成分进行有效分离、提高分离效率是十分重要的。流份段过宽会导致合并之后合并液内成分过多，需要多次分离才能获得提取物；流份段过窄会导致很难判断合并的时机，进而使得合并不恰当，要么得率过低，要么需要多次分析检测、分离才能获得目标提取物。优选地收集流份段的时机，可以最大程度的获得得率、纯度和提取效率的平衡。

优选地，所述乙腈水溶液的体积分数为18-22％。

通过对流动相的种类和比例的优选，可以将步骤D获得的流份段中的多种物质有效分开，便于后续收集，体高纯度和提取得率。而流动相的选择，是基于对流份段内的化合物的极性性质进行预判和分析，并通过试验来确定的。

更加优选地，步骤E中，所述C18色谱柱规格为C18ME，20×250mm，填料粒径为10微米；所述乙腈水溶液的体积分数为20％，流速为20mL/min，检测器参数为UV254nm。

进一步优选地，所述目标化合物A的收集时间为15-16min，所述目标化合物B的收集时间为24-28min。

合适的色谱柱和优选的操作参数，可以获得稳定的目标化合物流份段。其需要考虑的因素包括色谱柱的极性、填充物的粒径、流动相的极性和流速等参数，以及它们与目标化合物之间的关系。上述结果是在对以上因素充分认知的基础上，采用合理的实验手段获得的。

优选地，所述南山茶饼的制作方法为：将南山茶查过晾干、去壳，以物理压榨法脱去油脂后晾干，粉碎即可。

通过晾干、去壳、脱油脂的方法制得茶饼，可以有效的提高提取得率。

更加优选地，所述乙醇水溶液的体积分数为50-60％；所述浸提的方法为：料液比为1kg所述南山茶饼对应2-4L所述乙醇水溶液，在60-70℃条件下回流提取，过滤得到所述提取液。

料液比、浸提溶剂及其体积分数、浸提温度的选择，本质上是由目标提取物的性质决定的。

优选地，所述步骤C和D中使用的硅胶相同且粒径均为200-300目。

更加优选地，所述步骤C中，硅胶的加入量为：每3.5-4mL所述萃取浓缩液对应1g硅胶。

拌样参数控制、填料类型和粒径的选择，极大的影响着柱层析的结果。优化这些参数，可以尽可能的将目标提取物与非目标提取物分离开，以提高提取得率和纯度。

与现有技术相比，本发明的有益效果为：

(1)首次从山茶属植物中分离出了目标提取物；

(2)本申请提供的提取方法，适合于推广应用。

(3)提取得率高、纯度高。

附图说明

为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，以下将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。

图1为实施例1制备得到的目标化合物的高效液相色谱图；

图2为实施例1制备得到的目标化合物A的纯度测定图；

图3为实施例1制备得到的目标化合物B的纯度测定图；

图4为本申请制备得到的目标化合物A的质谱图；

图5为本申请制备得到的目标化合物A的H谱图；

图6为本申请制备得到的目标化合物A的C谱图；

图7为本申请制备得到的目标化合物A的H-H COSY谱图；

图8为本申请制备得到的目标化合物A的HSQC谱图；

图9为本申请制备得到的目标化合物A的HMBC谱图；

图10为本申请制备得到的目标化合物B的质谱图；

图11为本申请制备得到的目标化合物B的H谱图；

图12为本申请制备得到的目标化合物B的C谱图；

图13为本申请制备得到的目标化合物B的H-H COSY谱图；

图14为本申请制备得到的目标化合物B的HSQC谱图；

图15为本申请制备得到的目标化合物B的HMBC谱图。

具体实施方式

下面将结合实施例对本发明的实施方案进行详细描述，但是本领域技术人员将会理解，下列实施例仅用于说明本发明，而不应视为限制本发明的范围。实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市售购买获得的常规产品。

需要说明的是，本申请实施例使用柱体积为1.25L的层析柱，即，BV＝1.25L。

实施例1

将南山茶果晾干，去壳，以物理压榨法脱去油脂后将茶饼晾干，并适当粉碎，即得到南山茶饼。以60％乙醇水溶液于70℃加热回流提取3次，每次2h，料液比为1:3.5(m/v)，然后对得到的提取液进行过滤、合并。

合并后的滤液减压浓缩至无醇旋出，得浓缩液。取浓缩液2L，以等体积的乙酸乙酯反复萃取多次，直至上层萃取液颜色变浅，合并萃取液，减压浓缩至粘稠状，得乙酸乙酯萃取部位的萃取浓缩液150mL。

取上述萃取浓缩液150mL于蒸发皿中，以少量多次的方式加入200目硅胶，共计40g，进行拌样。搅拌均匀后于50℃烘干，得到处理样品。

对该处理样品进行硅胶柱层析处理：取200目硅胶500g作为柱层析的填料，以干法上样，并以泵对柱子进行加压处理。以不同浓度的二氯甲烷-甲醇体系进行薄层色谱分析，选择能够将样品点分离得比较好的梯度作为硅胶柱层析的洗脱梯度。经过分析，最终确定二氯甲烷-甲醇体系的洗脱配比依次为20:1，8:1，5:1，3:1，每个体积比对应的洗脱段洗脱至洗脱液无色。以已确定梯度的二氯甲烷-甲醇体系进行梯度洗脱。同时以约1/4BV为单位收集洗脱液，分别按顺序编号为1、2、3……124、125，将收集到的洗脱液进行薄层色谱检测和高效液相色谱检测，根据检测结果合并收集编号22-23的含有目标化合物的流份段。此步骤中高效液相色谱检测的条件为：色谱仪：Waters 2996高效液相色谱仪(配备Waters2996Photodiode Array Detector检测器)；色谱柱：Unitary C18，4.6mm×250mm，5μm；流动相A为甲醇，B为0.1％甲酸-水；流速为1mL/min。其中，流动相A和B的比例在0-32分钟内自1:9至8:2变化，32-40分钟为1:9。

使用LC3000型高效液相色谱仪、C18ME(20×250mm，10μm)色谱柱、乙腈：水＝20:80作为流动相；控制流速20mL/min、检测器UV254nm，对上述流份段进行恒定洗脱，经薄层色谱分析(流动相为二氯甲烷：甲醇＝5:1)确定目标化合物的收集时机，分段收集洗脱液，目标化合物A的收集时间为15-16min，目标化合物B的收集时间为24-28min，浓缩冻干得到目标化合物。进行高效液相色谱测定得到的液相色谱图，如图1所示，其中，峰3、5分别为目标化合物A、B。

实施例2

将南山茶果晾干，去壳，以物理压榨法脱去油脂后将茶饼晾干，并适当粉碎，即得到南山茶饼。以50％乙醇水溶液于60℃加热回流提取3次，每次2h，料液比为1:4(m/v)，然后对得到的提取液进行过滤、合并。

合并后的滤液减压浓缩至无醇旋出，得浓缩液。取浓缩液2L，以等体积的乙酸乙酯反复萃取多次，直至上层萃取液颜色变浅，合并萃取液，减压浓缩至粘稠状，得到乙酸乙酯萃取部位的萃取浓缩液150mL。

取上述萃取浓缩液150mL于蒸发皿中，以少量多次的方式加入300目硅胶，共计37.5g，进行拌样。搅拌均匀后于50℃烘干，得到处理样品。

对该处理样品进行硅胶柱层析处理：取300目硅胶500g作为柱层析的填料，以干法上样，并以泵对柱子进行加压处理。二氯甲烷-甲醇体系的洗脱配比依次为20:1，8:1，5:1，3:1，每个体积比对应的洗脱段洗脱至洗脱液无色。以已确定梯度的二氯甲烷-甲醇体系进行梯度洗脱。同时以约1/4BV为单位收集洗脱液，分别按顺序编号为1、2、3……124、125，将收集到的洗脱液进行薄层色谱检测和高效液相色谱检测，根据检测结果合并收集编号22-23的含有目标化合物的流份段。此步骤中，高效液相色谱检测的条件同实施例1所列。

使用LC3000型高效液相色谱仪、C18ME(20×250mm，10μm)色谱柱、乙腈：水＝18:82作为流动相；控制流速20mL/min、检测器UV254nm，对上述流份段进行恒定洗脱，经薄层色谱分析(流动相为二氯甲烷：甲醇＝5:1)确定目标化合物的收集时机，分段收集洗脱液，目标化合物A的收集时间为15-16min，目标化合物B的收集时间为24-28min，浓缩冻干得到目标化合物。

实施例3

将南山茶果晾干，去壳，以物理压榨法脱去油脂后将茶饼晾干，并适当粉碎，即得到南山茶饼。以55％乙醇水溶液于65℃加热回流提取3次，每次2h，料液比为1:2(m/v)，然后对得到的提取液进行过滤、合并。

取上述萃取浓缩液150mL于蒸发皿中，以少量多次的方式加入250目硅胶，共计43g，进行拌样。搅拌均匀后于50℃烘干，得到处理样品。

使用LC3000型高效液相色谱仪、C18ME(20×250mm，10μm)色谱柱、乙腈：水＝22:78作为流动相；控制流速20mL/min、检测器UV254nm，对上述流份段进行恒定洗脱，经薄层色谱分析(流动相为二氯甲烷：甲醇＝5:1)确定目标化合物的收集时机，分段收集洗脱液，目标化合物A的收集时间为15-16min，目标化合物B的收集时间为24-28min，浓缩冻干得到目标化合物。

实施例4

将南山茶果晾干，去壳，以物理压榨法脱去油脂后将茶饼晾干，并适当粉碎，即得到南山茶饼。以58％乙醇水溶液于65℃加热回流提取3次，每次2h，料液比为1:2.5(m/v)，然后对得到的提取液进行过滤、合并。

对该处理样品进行硅胶柱层析处理：取200目硅胶500g作为柱层析的填料，以干法上样，并以泵对柱子进行加压处理。二氯甲烷-甲醇体系的洗脱配比依次为20:1，8:1，5:1，3:1，每个体积比对应的洗脱段洗脱至洗脱液无色。以已确定梯度的二氯甲烷-甲醇体系进行梯度洗脱。同时以约1/4BV为单位收集洗脱液，分别按顺序编号为1、2、3……124、125，将收集到的洗脱液进行薄层色谱检测和高效液相色谱检测，根据检测结果合并收集编号22-23的含有目标化合物的流份段。此步骤中，高效液相色谱检测的条件同实施例1所列。

使用LC3000型高效液相色谱仪、C18ME(20×250mm，10μm)色谱柱、乙腈：水＝20:80作为流动相；控制流速20mL/min、检测器UV254nm，对上述流份段进行恒定洗脱，经薄层色谱分析(流动相为二氯甲烷：甲醇＝5:1)确定目标化合物的收集时机，分段收集洗脱液，目标化合物A的收集时间为15-16min，目标化合物B的收集时间为24-28min，浓缩冻干得到目标化合物。

对实施例1-4得到的各个目标化合物单体的纯度进行测定，其测定条件为：使用LC3000型高效液相色谱仪、C18ME(4.6mm×250mm，5μm)色谱柱、乙腈：水＝20:80作为流动相；控制流速20mL/min、检测器UV254nm、进样量1mL，进行恒定洗脱。其中实施例1得到目标化合物A的纯度为98.9％，提取得率为72mg/kg，纯度测定图如图2所示；目标化合物B的纯度为97.2％，提取得率为276mg/kg，纯度测定图如图3所示；

实施例2-4得到的目标提取物纯度均大于等于上述值。

对实施例1-4得到的化合物单体均进行LC-MS测定和核磁共振检测。

如图4所示，质谱数据m/z329.1006[M-H]^-，659.2110[2M-H]^-。推测其分子式为C₁₈H₁₈O₆。

如图5所示，¹H-NMR中，δ6.91-6.20之间共有8组信号为苯环或者烯烃质子，由此可推断该化合物中包含不止一个苯环；δ4.80(H,d,J＝8.0Hz)、4.18(H,d,J＝5.8Hz)、3.98(H,m)、3.66(H,dd,J＝12.3,2.2Hz)、3.47(H,dd,J＝12.3,4.5Hz)等5组信号符合连氧碳上质子特征。

如图6所示，¹³C-NMR中，δ196.06为醛基碳信号，δ79.99、77.70、63.78、62.13等4组信号符合连氧碳信号特征，其余14组信号化学位移位于110-160区间范围内，均符合苯环或烯烃碳信号特征。

如图7所示，H-H COSY中，δ6.76(H,dd,J＝8.5,1.5Hz)分别与δ6.79(H,d,J＝8.5Hz)、6.85(H,d,J＝1.5Hz)相关；δ6.91(H,dd,J＝8.5,1.5Hz)分别与δ6.88(H,d,J＝8.5Hz)、6.94(H,d,J＝1.5H)相关；δ6.20(H,dt,J＝15.8,5.8Hz)分别与δ6.48(H,d,J＝15.8Hz)、4.18(H,d,J＝5.8Hz)相关。

如图8所示，HSQC中，δ115.52与δ6.85(H,d,J＝1.5Hz)对应，δ116.34与δ6.76(H,dd,J＝8.5,1.5Hz)对应，δ120.39与δ6.79(H,d,J＝8.5Hz)对应，δ77.70与4.80(H,d,J＝8.0Hz)对应，δ79.99与δ3.98(H,m)对应，δ62.13分别与δ3.66(H,dd,J＝12.3,2.2Hz)以及3.47(H,dd,J＝12.3,4.5Hz)对应，δ115.61与δ6.94(H,d,J＝1.5H)对应，δ117.95与δ6.88(H,d,J＝8.5Hz)对应，δ120.74与δ6.91(H,dd,J＝8.5,1.5Hz)对应。δ131.41与δ6.48(H,d,J＝15.8Hz)对应，δ128.16与δ6.20(H,dt,J＝15.8,5.8Hz)对应，δ63.78与δ4.18(H,d,J＝5.8Hz)对应。

结合HSQC，通过HMBC(参见图9)可确定不同片段的连接位点。

对H谱和C谱的峰进行归属如下：

¹³C-NMR:129.55(C-1),115.52(C-2),146.65(C-3),147.15(C-4),116.34(C-5),120.39(C-6),77.70(C-7),79.99(C-8),62.13(C-9),132.18(C-1’),115.61(C-2’),144.87(C-3’),145.03(C-4’),117.95(C-5’),120.74(C-6’),131.41(C-7’),128.16(C-8’),63.78(C-9’).

¹H-NMR:6.94(H,d,J＝1.5Hz,H-2’),6.91(H,dd,J＝8.5,1.5Hz,H-6’),6.88(H,d,J＝8.5Hz,H-5’),6.85(H,d,J＝1.5Hz,H-2),6.79(H,d,J＝8.5Hz,H-5),6.76(H,dd,J＝8.5,1.5Hz,H-4),6.48(H,d,J＝15.8Hz,H-7’),6.20(H,dt,J＝15.8,5.8Hz,H-8’),4.80(H,d,J＝8.0Hz,H-7),4.18(H,d,J＝5.8Hz,H-9’),3.98(H,m,H-8),3.66(H,dd,J＝12.3,2.2Hz,H-9a),3.47(H,dd,J＝12.3,4.5Hz,H-9b).

综合所有核磁谱图及质谱结果，目标化合物A鉴定为美商陆酚A，即rel-(7'E)-(7α,8β)-3,4,9,9'-四羟基-4',7-环氧-8,3'-氧新木脂素-7'-烯；其结构式为：

如图10所示：质谱数据m/z329.1010[M-H]^-，659.2116[2M-H]^-。推测其分子式为C₁₈H₁₈O₆。

如图11所示：¹H-NMR中，δ7.04-6.23之间共有8组信号为苯环或者烯烃质子，由此可推断该化合物中包含不止一个苯环；δ4.82-3.49之间共有5组信号符合连氧碳上质子特征。

如图12所示：¹³C-NMR中，δ80.04、77.59、63.76、62.10等4组信号符合连氧碳信号特征，其余14组信号化学位移位于110-160区间范围内，均符合苯环或烯烃碳信号特征。

如图13所示：H-H COSY中，δ6.78(H,dd,J＝8.5,1.5Hz)分别与δ6.86(H,d,J＝1.5Hz)、6.81(H,d,J＝8.5Hz)相关；δ6.92(H,dd,J＝8.5,1.5Hz)分别与δ6.84(H,d,J＝8.5Hz)、7.04(H,d,J＝1.5Hz)相关；δ6.23(H,dt,J＝15.8,5.8Hz)分别与δ6.51(H,d,J＝15.8Hz)、4.21(H,d,J＝5.8Hz)相关。

如图14所示：HSQC中，δ115.52与δ6.86(H,d,J＝1.5Hz)对应，δ116.34与δ6.78(H,dd,J＝8.5,1.5Hz))对应，δ120.40与δ6.81(H,d,J＝8.5Hz)对应，δ77.59与4.82(H,d,J＝8.0Hz)对应，δ80.04与δ4.00(H,m)对应，δ62.10分别与δ3.69(H,dd,J＝12.3,2.2Hz)以及3.49(H,dd,J＝12.3,4.5Hz,)对应，δ115.59与δ7.04(H,d,J＝1.5Hz)对应，δ117.95与δ6.84(H,d,J＝8.5Hz)对应，δ120.84与δ6.92(H,dd,J＝8.5,1.5Hz)对应。δ131.37与δ6.51(H,d,J＝15.8Hz)对应，δ128.14与δ6.23(H,dt,J＝15.8,5.8Hz)对应，δ63.76与δ4.21(H,d,J＝5.8Hz)对应。

结合HSQC，通过HMBC(参见图15)可确定不同片段的连接位点，本化合物中有14组碳信号符合苯环或烯烃碳信号特征，从HSQC中可得知δ131.37与δ6.51(H,d,J＝15.8Hz)对应，δ128.14与δ6.23(H,dt,J＝15.8,5.8Hz)对应，通过其氢信号的耦合常数可以得知，该两组碳应为烯烃碳，因此看得知该化合物中包含有两个苯环以及一个-CH＝CH-基团。从苯环上氢信号的耦合常数可以得知，该化合物中两个苯环均为1,3,4三取代苯。

HMBC中，δ132.04与δ6.51(H,d,J＝15.8Hz)相关，说明-CH＝CH-基团直接与一个苯环相连。δ63.76与δ6.23(H,dt,J＝15.8,5.8Hz)相关，说明δ63.76的碳原子与-CH＝CH-基团相连。δ128.14与δ4.82(H,d,J＝8.0Hz)相关，说明另一个苯环与δ77.59的碳原子相连。

对H谱和C谱的峰进行归属如下：

¹³C-NMR:128.14(C-1),115.52(C-2),146.62(C-3),147.11(C-4),116.34(C-5),120.40(C-6),77.59(C-7),80.04(C-8),62.10(C-9),132.04(C-1’),115.59(C-2’),144.55(C-3’),145.28(C-4’),117.95(C-5’),120.84(C-6’),131.37(C-7’),128.14(C-8’),63.76(C-9’)。

¹H-NMR:7.04(H,d,J＝1.5Hz,H-2’),6.92(H,dd,J＝8.5,1.5Hz,H-6’),6.86(H,d,J＝1.5Hz,H-2),6.84(H,d,J＝8.5Hz,H-5’),6.81(H,d,J＝8.5Hz,H-5),6.78(H,dd,J＝8.5,1.5Hz,H-4),6.51(H,d,J＝15.8Hz,H-7’),6.23(H,dt,J＝15.8,5.8Hz,H-8’),4.82(H,d,J＝8.0Hz,H-7),4.21(H,d,J＝5.8Hz,H-9’),4.00(H,m,H-8),3.69(H,dd,J＝12.3,2.2Hz,H-9a),3.49(H,dd,J＝12.3,4.5Hz,H-9b)。

综合所有核磁谱图及质谱结果，目标化合物B鉴定为异美商陆酚A，即rel-(7'E)-(7α,8β)-3,4,9,9'-四羟基-3',7-环氧-8,4'-氧新木脂素-7'-烯；其结构式如下所示：

对实施例2-4获得的化合物分别进行结构鉴定，其结构与实施例1得到的目标化合物A、B一致。

本申请提供的从南山茶中提取木脂素类化合物的方法，首次从山茶属植物中分离提取出了两种目标化合物，方法简单实用，适宜于规模化应用，产品纯度高收率高，对于南山茶的深度开发利用有着积极意义，也为木脂素类化合物的应用提供了一个稳定、绿色、高效的来源。

尽管已用具体实施例来说明和描述了本发明，然而应意识到，在不背离本发明的精神和范围的情况下可以作出许多其它的更改和修改。因此，这意味着在所附权利要求中包括属于本发明范围内的所有这些变化和修改。

Claims

1.一种从南山茶中提取木脂素类化合物的方法，其特征在于，所述方法包括以下步骤:

A.将南山茶的茶饼用乙醇水溶液浸提，得到提取液；所述南山茶饼的制作方法为：将南山茶果晾干、去壳，以物理压榨法脱去油脂后晾干，粉碎即可；

所述目标化合物B的结构式为：

2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述步骤D中，所述梯度洗脱为：各洗脱段二氯甲烷-甲醇体系的体积比依次为20:1、8:1、5:1、3:1，每个体积比对应的洗脱段洗脱至洗脱液无色。

3.根据权利要求2所述的方法，其特征在于，所述步骤D中，柱层析时，对层析柱进行加压处理；所述步骤D中，层析柱体积为1.25L，收集流份段时，以四分之一柱体积为一个收集单位，收集第22-23流份段。

4.根据权利要求3所述的方法，其特征在于，所述乙腈水溶液的体积分数为18-22％。

5.根据权利要求4所述的方法，其特征在于，步骤E中，所述C18色谱柱规格为C18ME，20×250mm，填料粒径为10微米；所述乙腈水溶液的体积分数为20％，流速为20mL/min，检测器参数为UV254 nm。

6.根据权利要求5所述的方法，其特征在于，所述目标化合物A的收集时间为15-16min，所述目标化合物B的收集时间为24-28min。

7.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述乙醇水溶液的体积分数为50-60％；所述浸提的方法为：料液比为1kg所述南山茶饼对应2-4L所述乙醇水溶液，在60-70℃条件下回流提取，过滤得到所述提取液。

8.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述步骤C和D中使用的硅胶相同且粒径均为200-300目。

9.根据权利要求1-8任一项所述的方法，其特征在于，所述步骤C中，硅胶的加入量为：每3.5-4mL所述萃取浓缩液对应1g硅胶。