DEDICACE

Je dédie ces nombreuses années de sacrifice et de dur

labeur à ma famille qui m’a soutenue tout au long
de ce travail
 REMERCIEMENTS

Je voudrais remercier ici le laboratoire de Paléobiogéologie (Professeur

Emmanuelle Javaux) - Paléobotanique (Maître de recherches du F.R.S.-FNRS, Dr.
Philippe Gerrienne) - Paléopalynologie (Maître de recherches du F.R.S.-FNRS, Dr.
Philippe Steemans) de l’Université de Liège qui m’ont acceptée au sein de leur
structure. J’ai reçu l’encadrement nécessaire à ma formation et je leur exprime ma
profonde gratitude.
Ce travail a été rendu possible grâce à la collaboration de la Société Nationale des
Hydrocarbures du Cameroun qui a mis à ma disposition le matériel de travail étudié et je
lui adresse tous mes sincères remerciements.
Cette thèse s’inscrit dans le programme des bourses de formations de doctorat
mixte, bourses financées par la CUD (Commission Universitaire pour le Développement).
Je suis très reconnaissante au gouvernement belge de m’avoir accordé cette bourse
sans laquelle ce travail aura été impossible.
Mes sincères remerciements vont particulièrement au Pr. Emile Roche qui n’a
ménagé aucun effort pour faire aboutir ce travail. Je tiens à lui témoigner ma très grande
reconnaissance.
Je remercie le Dr. Philippe Gerrienne promoteur de cette thèse pour sa prompte
réaction à résoudre tous mes problèmes administratifs pendant ma formation. Je n’oublie
pas son apport scientifique à la réalisation de ce travail.
J’exprime ma reconnaissance aux personnes qui sont intervenues à divers titres
dans l’élaboration du travail : Mme Giraldo pour son initiation aux techniques de
traitements palynologiques ; Pr. Streel, Dr. Anceau de l’Université de Liège, Pr Louywe
et Pr. De Coninck de l’Université de Gent et Dr. Owona de l’Université de Douala pour
leur aide à la recherche bibliographique des dinokystes ; Dr. Prestianni pour l’initiation à
la prise des photos par le programme incorporé à l’ordinateur DeltaPixCamera ; Dr.
Iakovleva et Pr. De Coninck, pour la vérification des déterminations des dinokystes.
Je remercie mon promoteur local Pr. Ngos III pour son suivi académique ainsi que
le Pr. Ndjeng, superviseur local de ce travail.
Mes remerciements vont aussi au Professeur Paul Bilong, Doyen de la Faculté
des Sciences de l’Université de Yaoundé I pour ses encouragements. Je ne saurais
oublier tout le personnel enseignant de l’Université de Yaoundé I qui m’a suivie depuis la
première année : je pense particulièrement aux Professeurs. Ekodeck, Ndjigui, Mvondo
Ondoa, et Bitom, puis au Dr. Tchouankoué, pour ne citer que ceux-là.
Je remercie mes collègues de l’Université de Douala qui ont assuré la
permanence dans mes unités d’enseignement, mes jurys, mes surveillances aux
examens et corrections pendant mes séjours en Belgique : il s’agit du Dr. Mvondo, du
Dr. Bayiga et du Dr. Nkoue.
Je remercie aussi tout le staff administratif de l’Université de Douala en
commençant par mon chef de Département, Pr. Ntamak, mon Doyen Pr. Mukengue
Imano et enfin mon Recteur Pr. Oyono pour leurs avis favorables à mes sollicitations de
permissions d’absence afin que je finalise ma thèse à l’Université de Liège.
Mon très cher époux Dr. Bessong Moïse qui n’a cessé de m’encourager à faire la
thèse pendant que je cherchais plutôt du travail, merci pour ton soutien scientifique,
financier et moral.
Toute ma reconnaissance va à mes trois fils Menye A Bessong Salomon Teddy
Vanel, Bessong Moise et Dang A Bessong Nathan qui ne se sont pas lassés de
m’attendre. Je sais que cela a été dur pour vous, et je vous remercie de tout cœur pour
votre amour.
Le soutien de tous les miens mérite un grand merci. Je pense à Mme Melingui
Babare, Mme Ndzomo Caliste, Maitre Menye Emmanuel Dieudonné, Mr. Essimi
Oscar, Mr. Olangana François, Mme Andela Martine, Mme Menye Justine, Mme
Mballa Cathérine et Mme Abena Odette Denise.
Je n’oublie pas de remercier tous ceux qui de près ou de loin et d’une manière ou
d’une autre ont contribué à la réalisation de ce travail.
 TABLE DES MATIÈRES

PREMIERE PARTIE : GÉNÉRALITÉS

CHAPITRE 1 - INTRODUCTION GENERALE

1.1. INTRODUCTION 2
1.2. BASSIN DE DOUALA 2
1.2.1. Cadre géographique 2
1.2.2. Contexte géologique 3
1.2.2.1. Histoire du bassin 3
1.2.2.2. La limite Paléocène-Eocène 6
1.2.2.3. Séries, Etages et Formations géologiques 7
1.2.2.3.a. Séries et Etages 7
1.2.2.3.b. Formations géologiques 11
1.2.3. Esquisse paléogéographique 14
1.3. CONTEXTE GÉNÉRAL ET OBJECTIFS DE L’ÉTUDE 15

CHAPITRE 2 – MÉTHODOLOGIE

2.1. PROVENANCE DU MATÉRIEL 19

2.2. DESCRIPTION DES SÉQUENCES 19
2.2.1. Moulongo 19
2.2.2. Pungo 21
2.2.3. Nord Matanda 22
2.2.4. Mamiwater 22
2.2.5 Yatou 24
2.2.6. Ngata 24
2.3. MÉTHODES D’ANALYSES 25
2.3.1. Traitement des échantillons 25
2.3.1.1. Traitement mécanique 25
2.3.1.2. Traitement chimique 25
2.3.2. Montage des lames 28
2.4. PRÉSENTATION DES RÉSULTATS 28
2.4.1. Observation et comptage 28
2.4.2. Identifications 29
2.4.3. Tableaux statistiques 30
 DEUXIEME PARTIE : RESULTATS

CHAPITRE 3 – INVENTAIRE DES PALYNOMORPHES

3.1. TABLEAUX D’INVENTAIRES 33

3.1.1. Inventaire des dinoflagellés 33
3.1.2. Inventaire des spores et pollens 37

CHAPITRE 4 – CLASSIFICATION DES PALYNOMORPHES

DE LA FORMATION DE NKAPA

4.1. CLASSIFICATION DES DINOFLAGELLÉS 43

4.2. CLASSIFICATION DES SPORES ET POLLENS 57

TROISIÈME PARTIE : INTERPRÉTATION ET DISCUSSION

CHAPITRE 5- ETUDE DES DINOFLAGELLÉS

5.1. BIOZONATIONS 94
5.1.1. Moulongo 94
5.1.2. Mamiwater 98
5.1.3. Nord Matanda 101
5.2. CORRÉLATIONS DES BIOZONES DES DINOFLAGELLÉS 104
5.3. INTERPRÉTATION ET DISCUSSION 108
5.3.1. Biostratigraphie 108
5.3.2. Paléoenvironnements 112
5.3.3. Comparaison avec les bassins nordiques 117

CHAPITRE 6 – ETUDE DES SPORES ET POLLENS

6.1. LES DOMAINES FLORISTIQUES DU PALEOCENE

ET DE L’EOCENE INFERIEUR 129
6.2. BIOZONATIONS 130
6.2.1. Moulongo 131
6.2.2. Mamiwater 134
6.2.3. Nord Matanda 138
6.2.4. Ngata 141
6.3. INTERPRETATION ET DISCUSSION 144
6.3.1. Biostratigraphie 144
6.3.1.1. Taxons à caractère paléocène 144
6.3.1.2. Taxons à caractère éocène 147
6.3.1.3. Tendances des ubiquistes 149
6.3.1. 4. Discussion 150
6.3.2. Paléoenvironnements 154
6.3.2.1. Les formations particulières 155
6.3.2.2. Les ubiquistes 157
6.3.2.3. Discussion 158

QUATRIEME PARTIE : CONCLUSIONS ET PERSPECTIVES

CHAPITRE 7 - CONCLUSIONS ET PERSPECTIVES

7.1. CONCLUSIONS 161

7.2. PERSPECTIVES 163

RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES 164

ANNEXES

Liste des figures 176

Liste des tableaux 177

Planches 179

Liste des kystes de dinoflagellés de la Formation de Nkapa par ordre alphabétique 204

Liste des spores et pollens présents dans la Formation de Nkapa 206

Glossaire des principaux termes utilisés dans la description des dinokystes 208
 RESUME

Ce travail présente une analyse du phytoplancton et des sporomorphes recensés dans

divers puits de prospection pétrolière ayant traversé la Formation de Nkapa dans le Bassin
de Douala au Cameroun. La distribution verticale de taxons marqueurs dans les sondages
de Moulongo, Ngata, Mamiwater et Nord Matanda a permis d’établir une biostratigraphie
du Tertiaire inférieur du Bassin et d’y préciser la position de la limite Paléocène-Eocène sur
base d’une comparaison avec les bassins sédimentaires avoisinants.
En considérant trente espèces de dinoflagellés à caractère stratigraphique sur les
quelque septante inventoriées, quatre biozones ont pu être établies, trois pour le Paléocène,
une pour l’Eocène basal. La biozone 1 se caractérise par des espèces héritées du Crétacé,
Cerodinium diebelii, Lejeunecysta hyalina, Andalusiella gabonensis, Palaeocystodinium
australinum et Palaeocystodinium golzowense ; les biozones 2 et 3 par les acmés de
certaines espèces, pour la 2, de Areoligera coronata, Adnatosphaeridium multispinosum et
Glaphyrocysta ordinata, pour la 3, de diverses espèces du genre Apectodinium (A.
hyperacanthum, A. homomorphum, A. paniculatum, A. parvum, A. quinquelatum). La
biozone 4 voit apparaître des espèces caractéristiques de l’Eocène : Deflandrea cf.
oebisfeldensis, Hystrichosphaeridium tubiferum et Wetzeliella sp. En tenant compte de la
limite Paléocène/Eocène établie par les stratigraphes pétroliers à Moulongo, les corrélations
ont été précisées avec les autres séquences analysées.
L’étude a mis en évidence l’existence d’un diachronisme entre deux acmés
d’Apectodinium, celui pré-CIE (Carbon Isotope Excursion) observé au Paléocène supérieur
dans le Bassin de Douala comme dans celui du Nigeria voisin et celui contemporain du
PETM (Paleocene-Eocene Thermal Maximum) dans l’Eocène basal de divers bassins
nordiques passés en revue dans le travail.
Sur les nonante-quatre espèces de sporomorphes identifiées, une cinquantaine de
taxons a été retenue dans un objectif biostratigraphique. Trois biozones à caractère évolutif
se sont dégagées : une biozone inférieure à caractère paléocène soulignée par une
dominance de formes de types « Palmae » et « Proteaceae », ces dernières d’aspect
archaïque crétacé ; une biozone intermédiaire du Paléocène supérieur avec évolution de la
flore originelle vers un ensemble qui peut être qualifié de plus « moderne » et enfin, à
l’Eocène basal, de l’installation d’associations annonçant les prémices de la mise en place
de la flore actuelle à « Légumineuses » d’Afrique de l’Ouest.
En parallèle de l’analyse biostratigraphique est proposée une reconstitution
paléoenvironnementale basée sur l’écologie des dinoflagellés, sur l’évolution du ratio
dinoflagellés/pollen et spores et sur la reconstitution des milieux végétaux dans les
différentes séquences étudiées.
L’évolution du Bassin selon deux axes géographiques a été mise en évidence : un
axe WE (Moulongo-Ngata) et un axe SSW-NNE (Moulongo-Mamiwater-Nord Matanda).
Au Paléocène inférieur et moyen, le Bassin, largement ouvert sur la mer, présente
un milieu côtier-estuarien frangé de mangroves et de forêts de basse plaine marécageuse.
Au Paléocène supérieur, l’influence marine se faisant moins importante, des milieux
saumâtres fluvio-lagunaires soumis aux marées se développent, ils sont bordés de galeries
forestières et entourés de forêts denses périodiquement inondées vers le Nord et de forêts
sur sols humides vers l’Est.
Avec la régression marine amorcée à la base de l’Eocène, les paléoenvironnements
s’individualisent : vers le Nord s’installent des milieux lagunaires confinés entourés d’une
flore locale appauvrie et vers l’Est, autour de milieux d’eau douce d’arrière-delta, une forêt
dense sempervirente humide de terre ferme occupe le terrain.
 ABSTRACT

This work consists of the analysis of the palynoflora (dinoflagellates and

sporomorphs) identified from four petroleum exploration wells drilled through the Nkapa
Formation (Douala Basin, Cameroon). The vertical distribution of index taxa in the
Moulongo, Ngata, Mamiwater and North Matanda wells allowed establishing a
biostratigraphic frame of the first half of the Paleogene of the Douala Basin and identifying
the Paleocene/Eocene boundary in each well through a comparison with surrounding
sedimentary basins.
Seventy dinoflagellate species have been identified, among which 30 are
stratigraphically informative. Four biozones have been established, three for the Paleocene
and one for the Early Eocene. The biozone 1 is characterized by Cretaceous species such as
Cerodinium diebelii, Lejeunecysta hyalina, Andalusiella gabonensis, Palaeocystodinium
australinum and Palaeocystodinium golzowense. The biozone 2 is defined by the acme of
Areoligera coronata, Adnatosphaeridium multispinosum and Glaphyrocysta ordinata. The
biozone 3 is defined by the acme of several Apectodinium species (A. hyperacanthum, A.
homomorphum, A. paniculatum, A. parvum, A. quinquelatum). The biozone 4 is defined by
the occurrence of Eocene taxa such as Deflandrea cf. oebisfeldensis, Hystrichosphaeridium
tubiferum and Wetzeliella sp. Based on the position of the Paleocene/Eocene boundary in
the Moulongo well, correlations have been established with the others sedimentary
sequences analysed.
Our study shows that, as previously demonstrated for Nigeria in an other study, the
acme of Apectodinium in the Douala Basin can be attributed a Late Paleocene age and
hence occurred before the carbon isotope excursion (CIE) of the Paleocene-Eocene
boundary and the coeval Paleocene-Eocene thermal maximum (PETM). The acme of
Apectodinium in the Douala Basin is thus markedly diachronous with the Apectodinium
acme identified in various Nordic Basins, where it is contemporaneous with the PETM
(earliest Eocene).
Ninety-four sporomorph species have been recognized, among which fifty are
stratigraphically informative. Three biozones have been established. The biozone 1 is
predominantly characterized by Palmae- and Proteaceae-type pollens, the latter with
Cretaceous characteristics. The biozone 2, Late Paleocene in age, is characterized by a
transition from original floras towards more « modern » floras. The biozone 3 is earliest
Eocene in age and shows the early steps of the extant « Leguminosae flora » of West
Africa.
Together with the biostratigraphic analysis, a palaeoenvironmental reconstruction is
proposed, based on dinoflagellate ecology, on the evolution of the dinoflagellate
/sporomorph ratio, as well as on the reconstruction of the plant environments in the studied
sedimentary sequences. The evolution of the Douala Basin during the timespan studied
occurred according to two geographical axes: a WE (Moulongo-Ngata) axis and a SSW-
NNE (Moulongo-Mamiwater-North Matanda) axis. During the Early and Middle
Paleocene, the Douala Basin was open towards the sea and showed a coastal-estuarine
environment, with marginal mangroves and lowland swamp forests. During the Late
Paleocene, the marine character of the sedimentation was less prominent as brackish fluvio-
lagoonal intertidal environments developped. They were accompanied by gallery forests
and surrounded by dense, periodically flooded, forests northwards and by forests on wet
soils eastwards. During the earliest Eocene, a marine regression occurred. The
palaeoenvironments included confined coastal lagoon systems with a peripheral
impoverished local flora northwards, and moist, dense, evergreen forests eastwards.
PREMIERE PARTIE - GENERALITES

1
 CHAPITRE 1. INTRODUCTION GENERALE

1.1. INTRODUCTION

La séparation des plaques tectoniques sud-américaine et africaine qui a commencé

au début du Crétacé par un processus graduel diachronique Sud-Nord a provoqué
l’ouverture de l’Atlantique Sud. Cette dernière a donné naissance en Afrique de l’Ouest
équatoriale une série de bassins salifères. Ceux-ci se sont créés par suite des premières
incursions marines dans l’espace ouvert par la première phase de drift succédant à la phase
de rift initiale et durant laquelle s’est formée la première croûte océanique. Dans le sens de
cette ouverture graduelle de l’Atlantique Sud qui va du Berriasien à l’Aptien supérieur, on
dénombre du Sud vers le Nord : le Bassin de la Namibie, le Bassin de Benguela (Angola),
le Bassin de la Cuenza (Angola), le Bassin du Congo (y compris Cabinda), le Bassin du
Gabon, le Bassin du Rio Muni (Gabon/Guinée équatoriale) et le Bassin de Douala/Kribi-
Campo (BROWNFIELD & CHARPENTIER, 2006).
Au Cameroun, le long de la marge atlantique, deux bassins sédimentaires sont
séparés par la ligne volcanique du Cameroun : le Bassin du Rio del Rey représentant
l’extension Sud-Est du delta du Niger et le Bassin de Douala/Kribi-Campo, grande
dépression épicontinentale de marge passive, née de l’ouverture de l’Atlantique Sud. Le
Bassin de Douala/Kribi-Campo s’étend le long du Golfe de Guinée (SNH, 2005) et
appartient au système des bassins salifères de l’Ouest Africain regroupés, d’après leurs
caractéristiques structurales, dans la Province côtière du Centre-Ouest s’étendant du
Cameroun à la Namibie (BROWNFIELD & CHARPENTIER, 2006).

1.2. LE BASSIN DE DOUALA

1.2.1. Cadre géographique

Le Bassin de Douala (Figure 1) couvre une superficie totale de 19 000 km2 dont 7
000 sont émergés. Le bassin s.l. qui se prolonge sous les eaux du Golfe de Guinée par une
plate-forme continentale d’une largeur de 25 km (NGUENE et al., 1992) comprend deux
sous-bassins : le sous- bassin de Douala s.s. limité au Nord par la ligne volcanique du

2
Cameroun et au Sud par le fleuve Nyong et le sous-bassin de Kribi-Campo situé entre ce
dernier au Nord et le fleuve Ntem au Sud.
La zone d’étude du présent travail est comprise dans les basses terres côtières englobant
tout le sous-bassin de Douala (Figure 1). Cette région est marquée par un relief relativement
plat d’une altitude n’excédant pas 200 m.

1.2.2. Contexte géologique

1.2.2.1. Histoire du Bassin

L’histoire géologique du Bassin de Douala (Figure 2) débute au Crétacé inférieur

par la cassure marquant la séparation de l’Amérique du sud et de l’Afrique. Le comblement
du bassin commence pendant cette phase de rift initiale avec la mise en place des premiers
dépôts de la Formation Mundeck inférieur (REGNOULT, 1986 ; NGUENE et al., 1992).
Ce comblement s’amorce au Barrémien dans le sous-bassin de Kribi-Campo et à l’Aptien
dans le sous-bassin de Douala (NGUENE et al., 1992 ; TAMFU et al., 1995). Les dépôts
continentaux du Mundeck inférieur sont constitués de conglomérat, de grès (Grès de base),
d’argile schisteuse gris foncé, de marne riche en matière organique et de minces lits de
calcaire (NTAMAK-NIDA et al., 2010). A la fin de l’Aptien, au cours d’une période de
transition, les premières incursions marines développent des séries salifères qui vont
s’accumuler depuis le Cameroun jusqu’à l’Angola (GIRESSE, 1990).
A cette phase de transition succèdent trois intervalles de séparation allant de
l’Albien à l’Actuel au cours desquels une marge passive s’est formée par accumulation de
dépôts sédimentaires en discordance, séparés par des coupures dues à des phases
d’orogenèse (LAWRENCE et al., 2002 ; NTAMAK-NIDA et al., 2010).

3
 5°N

A
Bassin de Rio Del Rey

1 Wouri
4°N
Douala

2
Lac Ossa
Bassin de Douala
3
B 4
Sanaga

5
6

Nyong
Cameroun

3°N

Formations sédimentaires

Sites:
A: Souza (Nkapa)
B: Kwa-Kwa
1. Pungo
Bassin
2. Nord Matanda de
3. Mamiwater Kribi-Campo
4. Yatou
5. Moulongo
6. Ngata

9°E 10°E
0 50 km

Figure 1 : Carte de localisation du Bassin de Douala/Kribi-Campo (SNH, 1995)

et positionnement des sites étudiés.

4
 Crétacé inférieur Crétacé supérieur

Paléocène Eocène inférieur

Figure 2 :Paléogéographie de l’Atlantique sud (Crétacé - Tertiaire inférieur)

d’après:PALEOMAP Project [ C.R.Scotese (2001)]
Phase de rift - Phase de séparation I (Drift I)
Crétacé inférieur: dépôt de la Formation de Mundeck
Phase de séparation II (Drift II)
Crétacé supérieur: dépôts des Formations de Logbadjeck et de Logbaba
Paléocène-Eocène: dépôt de la Formation de Nkapa
d’après: Lawrence et al., 2002
Ntamak-Nida et al., 2010

A l’Albien, l’importante transgression marine de la phase de Drift I amène à la

formation des couches du Mundeck supérieur, ensemble de grès, d’argilite, d’argile litée
organique et de passées carbonatées. Cette succession se termine généralement par la
« discordance du Cénomanien », conséquence de l’amorce d’une régression se poursuivant
au Turonien (BATUPE, 1996).
La phase de Drift II, liée à l’épisode tectonique du Santonien est séparée de la phase
I (Drift I) par une discontinuité résultant de cet événement. A la suite de ce dernier,
s’amorce déjà au Santonien et se poursuit au Campanien inférieur le dépôt de la Formation
de Logbadjek, faite de microconglomérat, de sable, de grès moyen à grossier et de rares

5
intercalations calcaires et argileuses. A celle-ci fait suite, au Campanien supérieur et au
Maastrichtien, l’épaisse Formation de Logbaba formée de sédiments marins d’eau profonde
à prédominance argileuse. Ces sédiments sont constitués d’argilite fossilifère, avec des
niveaux de grès et de sable (REGNOULT, 1986 ; SNH, 2005).
Dans l’ensemble des bassins de l’Ouest Africain, le passage Crétacé-Tertiaire est
souligné par la lacune du Maastrichtien terminal et du Danien. Dans le Bassin de Douala, la
sédimentation tertiaire commence par le dépôt de la Formation de Nkapa par simple
subsidence de la marge passive. D’âge Paléocène-Eocène inférieur, cette formation est
constituée d’argile litée, d’argilite, de grès friable fin à grossier, de silt, de lentilles de sable
et de dolomie (DUMORT, 1968 ; SNH, 2005).
La sédimentation est stoppée brutalement au cours de l’Eocène par l’épisode majeur
de soulèvement du Tertiaire moyen créant la grande lacune stratigraphique de l’Eocène
supérieur-Oligocène inférieur. La Formation de Souellaba, Oligo-Miocène, produit d’une
subsidence et débutant en même temps que la phase de Drift III à la fin de l’Oligocène
(LAWRENCE et al., 2002) repose en discordance sur la Formation de Nkapa ; elle est
caractérisée par des marnes, des grès, des silts et des argiles avec des lentilles de sable
interstratifié et occasionnellement des calcaires coquillers.
Après une dernière lacune stratigraphique située à la fin du Miocène, la série
cénozoïque se termine par les Formations de Matanda (Pliocène) et de Wouri (Pléistocène)
faites de sable fin à grossier, d’argile bariolée et de tuf volcanique.

1.2.2.2. La limite Paléocène - Eocène

La Formation de Nkapa, objet de cette étude, est formée de dépôts d’âge Paléocène-
Eocène (NGUENE et al., 1992 ; ECL, 2001 ; LAWRENCE et al., 2002) ; elle est marquée
à sa base par la discordance du Crétacé supérieur et, à son sommet, par la lacune intra-
Eocène due à un phénomène tectonique observé dans la plupart des bassins ouest africains
(LAWRENCE et al., 2002).
En général, pour le Bassin de Douala, on considère que le Paléocène est transgressif
et que l’Eocène est régressif. Une étude de géologues pétroliers de la SNH Cameroun basée
sur la lithologie, la sismique, la diagraphie et sur l’analyse biostratigraphique d’une
distribution des foraminifères planctoniques, situe la limite P/E dans le sondage de
Moulongo à -2362 m ; par ailleurs, le Paléocène inférieur se situerait entre –3025 m et –
2572 m, le Paléocène supérieur entre –2572 m et –2362 m et l’Eocène inférieur entre –2362

6
m et –2120 m. C’est la seule séquence de référence et le seul repère dont nous disposons
dans ce travail pour supporter des études palynostratigraphiques menées sur le Paléogène
inférieur du bassin et établir des corrélations au sein de celui-ci.

1.2.2.3. Séries, Etages et Formations géologiques

Les dépôts sédimentaires du Bassin de Douala reposent en discordance sur un socle

granitogneissique d’âge précambrien. La stratigraphie de ces dépôts a été établie
essentiellement par l’étude de forages profonds qui ont mis en relief une accumulation de
sédiments allant du Crétacé au Néogène.
L’esquisse géologique du Bassin de Douala a été réalisée en 1955 par HOURQ
(Figure 3). Depuis, la description initiale a été complétée et affinée par divers stratigraphes
oeuvrant principalement dans le domaine pétrolier : REYRE (1964, 1966), BELMONTE
(1966), DUMORT (1968), NJIKE (1984), REGNOULT (1986), ROBERTSON (1992),
NGUENE et al. (1992), BATUPE (1996, 1999). Une synthèse de leurs données permet
aujourd’hui de déterminer une stratigraphie sérieuse des étages et formations du bassin.

a-Séries et Etages

Mésozoïque

Albien et Cénomanien
Ces étages sont représentés par des séries gréseuses dites « Grès de base » dans
lesquelles des conglomérats et des argiles se trouvent en intercalation. Les grès de base,
datés par comparaison avec le même faciès observé au Nigeria et au Gabon reposent en
discordance sur le socle précambrien.

Turonien
Cet étage se caractérise par deux cycles sédimentaires : le premier est constitué
d’une alternance de grès et d’argiles sableuses avec rares intercalations calcaires et se
poursuit par des argiles et calcaires riches en faune ; le second comporte des grès surmontés
d’argiles noduleuses micacées avec des intercalations de calcaires lumachelliques (NJIKE,
2004).

7
8
 Coniacien
Daté par les Ammonites (REYMENT, 1958), il est constitué de grès parfois
calcaires recouverts d’argiles sableuses fossilifères.

Santonien
Le Santonien est représenté par des grès et des sables à intercalations marno-
calcaires, des argiles schisteuses micacées à intercalations gréso-sableuses ou d’argiles
marneuses à nodules.

Campanien
Bien développé dans le bassin, il est représenté par des calcaires gréseux et des
argiles schisteuses ou, localement, par une alternance de calcaires gréseux, marneux ou
cristallins, fossilifères (DUMORT, 1968). En forage, il est représenté par des argiles à
intercalations de sables fins.

Maastrichtien
Caractérisé par la présence d’argiles schisteuses à nodules calcaires et des argiles
micacées noires, il a été daté sur base d’arguments micropaléontologiques (REYRE, 1966)
et palynologiques, ces derniers identiques à ceux du « Coal Measures » du Nigeria.

Cénozoïque

Danien
Cet étage a toujours été considéré comme inconnu dans tout le Bassin de Douala.
Cependant les travaux de KENFACK et al., 2012 ont mis en évidence Damassadinium
mutabilis qui est un marqueur du Danien.

Paléocène
Le Paléocène repose en discordance sur le Maastrichtien dans la moitié nord du
Bassin de Douala et sur le socle dans la moitié sud. Dans la vallée du Moungo affleurent
des schistes argilo-calcaires, sans faune caractéristique (BELMONTE, 1966). A Bongue, la
série Paléocène présente de bas en haut : des grès à kaolinite friables, des grès marneux à
lignites, des grès grossiers à stratification entrecroisée, une marne grise à galets, un grès
ferrugineux grossier et une marne gris-noir micacée, parfois glauconieuse ou calcaire. Le

9
Paléocène est aussi traversé par des forages couvrant tout le bassin ; il y est représenté par
des marnes vert foncé à noires, micacées, glauconieuses et des argiles schisteuses
(DUMORT, 1968). Le Paléocène est reconnu par ses associations de foraminifères et
ostracodes typiques (BELMONTE, 1966).

Eocène
Très mal connu au Cameroun, l’Eocène a été décrit pour la première fois par
REYRE (1959 in NJIKE, 1984) dans le forage de la pointe de Souellaba. Pour
BELMONTE (1966), l’Eocène ne serait caractérisé avec certitude qu’à l’affleurement de la
série de Bonangando (12 km au Nord de Douala) épaisse de 30 m. Pour cet auteur, la
composition faunistique de l’Eocène y serait similaire de celle de l’Yprésien, voire du
Lutétien du Bassin de Paris. Dans les forages, l’Eocène inférieur a été signalé dans le sous-
bassin de Douala (LAWRENCE et al., 2002 ; SNH, 2005) alors qu’il serait absent dans le
sous-bassin de Kribi-Campo (NTAMAK-NIDA et al., 2010). Dans son étude
palynologique du sondage Kwa-Kwa (+/- 25 km au sud de Douala) SALARD
CHEBOLDAEFF (1977) a mis en évidence des assemblages caractérisant des dépôts qui
seraient Eocène inférieur et moyen. Les séquences éocènes relevées dans le sous-bassin de
Douala comportent des argiles schisteuses, des calcaires marneux ainsi que des marnes.

Oligocène
L’Oligocène du Bassin de Douala comprend, de bas en haut : des argiles noires ou
brunes avec quelques petits bancs sableux, des sables argileux à fines intercalations
calcaires et des sables et graviers alternant avec des argiles plastiques. Selon les auteurs
précités, les dépôts oligocènes ne représenteraient que la partie supérieure de la série ; un
hiatus sédimentaire dû à une phase tectonique séparant les couches éocènes et oligocènes.
Dans le sondage Kwa-Kwa, SALARD CHEBOLDAEFF (1979) a décrit un assemblage
sporopollinique propre à la période.

Miocène
Le Miocène est connu en affleurement à Tiko (ouest de Douala), au pied du Mont
Cameroun. Il y est représenté par des sables et des argiles à miogypsines interstratifiés de
basalte. Ces dépôts auraient un âge Burdigalien, datés à la base par des foraminifères
(REYRE, 1964 ; BELMONTE, 1966). Dans le sondage Kwa-Kwa, la palynoflore
confirmerait cet âge (SALARD-CHEBOLDAEFF, 1979).

10
 Pliocène
La série est caractérisée par une prédominance de sables grossiers à la base et fins
au sommet alternant avec des argiles bariolées, parfois interstratifiées avec des basaltes. Le
Pliocène affleure aussi à Tiko et dans la zone littorale.

Actuel
Les dépôts plus récents sont des sables interstratifiés et des argiles recouverts par
des alluvions dans les vallées, des vases dans la mangrove et des sables côtiers. Ce sont des
dépôts fluvio-deltaïques ou estuariens.

b-Formations géologiques

Sur base des travaux de REGNOULT (1986), NGUENE et al. (1992), TAMFU et
al. (1995), LAWRENCE et al. (2002), MEYERS et al. (1996), BROWNFIELD &
CHARPENTIER (2006), sept formations ont été décrites dans le sous-bassin de Douala. De
la plus ancienne à la plus récente, il s’agit de :

Formation de Mundeck
Le terme « Formation de Mundeck » est appliqué à la section d’âge Crétacé
inférieur sous la discordance sismique sénonienne (ECL, 2001). Cette formation est la plus
ancienne, datée Aptien-Cénomanien (NGUENE et al., 1992 ; ECL, 2001), et repose en
discordance sur le socle précambrien. Elle est bien exposée dans la partie nord du sous-
bassin de Douala, près de Mundeck, dans la vallée du Moungo.
La Formation de Mundeck est constituée de dépôts continentaux et fluvio-deltaïques
avec quelques intercalations de faciès marins (REGNOULT, 1986). Il s’agit d’une épaisse
couche constituée de conglomérats à éléments du socle, de grès arkosiques moyens à
grossiers, de grès fins micacés, charbonneux et carbonatés, de schistes noirs micacés,
d’argilites, de calcaires et de marnes (LOGAR, 1983 ; SNH, 2005).

Formation de Logbadjeck

11
 Cette formation repose en concordance ou discordance sur la Formation de
Mundeck, conséquence de la régression turonienne et des phénomènes d’érosion du socle et
des grès de base.
Elle est composée de microconglomérats, de sables, de grès moyens à grossiers, de
rares intercalations de calcaires fossilifères et d’argiles sableuses, de grès et sables à
intercalations marno-calcaires (SNH, 2005). Elle est érodée en partie à l’Est à cause de la
flexuration turonienne. En affleurement, la Formation de Logbadjeck est bien représentée
dans la vallée du Moungo où elle représente les dépôts de la plate-forme externe du bassin.
La Formation de Logbajeck est datée Cénomanien (NJIKE, 2004)-Campanien (SPT,
1995 ; SNH, 2005). La sédimentation est du type fluvio-deltaïque, principalement à la base.

Formation de Logbaba
La Formation de Logbaba est une épaisse couche sédimentaire dominée par des
argilites et dont le sommet est caractérisé par la discordance du Crétacé supérieur (SNH,
2005). Les sédiments de la Formation de Logbaba sont marins, déposés en eaux profondes
avec enfouissement rapide, particularité du développement des bassins ouest-africains où
des argilites d’eau profonde se sont déposées. Cette formation est constituée de grès, de
sables et d’argilites fossilifères (REGNOULT, 1986 ; SNH, 2005) ; elle est datée
Campanien-Maastrichtien (ECL, 2001 ; SNH, 2005).

Formation de Nkapa
La Formation de Nkapa recouvre la base de la discordance cénozoïque, annonçant la
sédimentation tertiaire par simple subsidence de la marge passive. Son dépôt se termine
brusquement à l’Eocène moyen par suite d’un épisode majeur de soulèvement et d’érosion
de la marge africaine.
La Formation de Nkapa est sévèrement érodée à l’est et au sud-est du sous-bassin et
repose en discordance sur la Formation de Logbaba. En affleurement, elle est visible dans
la vallée du Moungo (BELMONTE, 1966). Elle est reconnue comme d’âge Paléocène-
Eocène inférieur et est constituée de schistes argileux, argiles calcaires, grès arkosiques,
grès friables fins à grossiers, silts, lentilles de sable et de dolomie (DUMORT, 1968 ; SNH,
2005). En ce qui concerne l’environnement de dépôt, LOGAR (1983) parle d’une
coexistence d’un milieu marin et d’un milieu continental. De côtier argilo-silteux,
l’environnement évolue au Sud vers un milieu plus franchement marin marqué par des
dépôts sableux turbiditiques (SNH, 2005).

12
 Formation de Souellaba
Produit d’une subsidence et d’une reprise de sédimentation succédant à l’importante
phase de soulèvement et d’érosion responsable de la grande lacune stratigraphique de
l’Eocène supérieur, la Formation de Souellaba repose en discordance sur la Formation de
Nkapa (REYRE, 1964 ; BELMONTE, 1966 ; NGUENE et al., 1992). Les sédiments de
l’Eocène supérieur et de l’Oligocène inférieur étant érodés, la Formation de Souellaba est
datée Oligocène supérieur-Miocène inférieur (SALARD, 1977, 1979 ; NGUENE et al.,
1992). Elle est caractérisée par des marnes et des lentilles de sables interstratifiés en
intercalation (REGNOULT, 1986 ; SNH, 2005) et occasionellement par des calcaires
coquillers (ECL, 2001). Les grès et silts transgressifs qui dominent dans la partie inférieure
sont recouverts par des argiles.

Formation de Matanda
La Formation de Matanda (Miocène supérieur-Pliocène) est dominée par des faciès
deltaïques interstratifiés et des tufs volcaniques (REGNOULT, 1986 ; SNH, 2005). Il s’agit
de sables grossiers à la base et fins au sommet, alternant avec des poches d’argiles
bariolées, parfois interstratifiées avec des basaltes (NJIKE, 2004). La Formation de
Matanda affleure à Tiko et dans la zone littorale du Bassin de Douala.

Formation du Wouri
La Formation du Wouri (Pliocène-Pléistocène) est caractérisée par des graviers et
sables grossiers à matrice argileuse (SNH, 2005). On note aussi la présence de laves et tufs
volcaniques. Les sédiments du Wouri représentent la sédimentation estuarienne de
l’embouchure du Wouri et de la Dibamba.

La couverture volcanique
Les manifestations du volcanisme se traduisent par des basaltes et des granitoïdes
d’âge miocène, subactuel et même actuel. Ces basaltes ainsi que des scories, des bombes
volcaniques, des cinérites, recouvrent par endroits le socle et le sédimentaire aussi bien à
l’Est qu’à l’Ouest du Mont Cameroun (NJIKE, 2004).

13
1.2.3. Esquisse paléogéographique

LOGAR (1983) a proposé une esquisse de la paléogéographie du Bassin de Douala

completée par NJIKE (2004). Cette paléogéographie se présente comme suit.
- Après l’ouverture de l’Atlantique sud, le démantèlement des reliefs du socle amène dès
l’Aptien le comblement du sillon subsident à Campo par des formations arkosites à
intercalations marines.
- L’intervalle Aptien-Albien correspond à une sédimentation continentale torrentielle avec
des dépôts très épais de grès de base. L’Albien est dominé par une importante
transgression.
- Le Cénomanien est caractérisé par une phase régressive torrentielle à la base et au sommet
par des séries carbonatées marquant une transgression en provenance de la Téthys en
communication avec le Golfe de Guinée (FURON & LOMBARD, 1964).
- Le Turonien est marqué par une grande transgression dans le Nord du Bassin où dominent
des dépôts d’argiles et de calcaires.
- Les séries du Santonien évoluent vers une dominance gréseuse au Nord et argileuse au
Sud.
- Des faciès à dominance argileuse et quelques faciès sableux formant des chenaux au Nord
du bassin caractérisent le Campanien et le Maastrichtien inférieur.
- La lacune du Maastrichtien terminal et du Danien souligne le passage Crétacé-Tertiaire
sur l’ensemble des bassins ouest-africains.
- Au Paléocène, il y a coexistence de dépôts continentaux et marins sur un relief peu
accentué. Le Paléocène correspond toutefois à l’apogée d’une importante transgression
marine.
- L’Eocène se caractérise par une tendance à la régression et une reprise d’érosion dues à
une flexuration.
- Accentuation de la flexuration à l’Oligo-Miocène inférieur du bassin amenant les
manifestations du Mont cameroun. Des coulées volcaniques recouvrent les formations
sédimentaires.
- Régression générale du Miocène supérieur à l’Actuel. Reprise de l’érosion avec des
apports détritiques.

14
1.3. CONTEXTE GENERAL ET OBJECTIFS DE L’ETUDE

Les bassins sédimentaires d’Afrique de l’Ouest dont l’intérêt économique est lié à
l’exploitation pétrolière ont fait l’objet de nombreuses études dans divers domaines de la
géologie (structurale, tectonique, stratigraphique…).
En biostratigraphie, les études palynologiques ont été particulièrement développées
au Nigéria mais aussi au Sénégal, en Côte d’Ivoire, au Ghana, au Gabon et au Congo
(BELSKY et al., 1965 ; BOLTENHAGEN, 1965 ; JARDINE & MAGLOIRE, 1965 : VAN
HOEKEN-KLINKENBERG, 1966 ; GERMERAAD et al., 1968 ; BOLTENHAGEN,
1976, 1977 ; JAN DU CHENE & SALAMI, 1978 ; JAN DU CHENE et al., 1978a ; JAN
DU CHENE et al., 1978b ; JAN DU CHENE et al., 1978c ; KIESER & JAN DU CHENE,
1979 ; M’BORO, 1980 ; JAN DU CHENE & ADEDIRAN, 1984, 1985 ;
BOLTENHAGEN & SALARD-CHEBOLDAEFF, 1980 ; OLOTO, 1989, 1990, 1992 ;
EDET, 1992 ; EDET & NYONG, 1994 ; BIO-LOKOTO et al.,1998 ; GREGG, 1998 ;
OBOH-IKUENOBE et al., 1998 ; ATTA-PETERS & SALAMI, 2004a, 2004b, 2006 ;
BANKOLE et al., 2007, ANTOLINEZ-DELGADO & OBO-IKUENOBE, 2007 ;
AJAEGWU et al., 2008 ; LUCAS & ISCHIEKWENE, 2010a, 2010b ; OGALA et al., 2009
; DIGBEHI et al., 2011 ; DIGBEHI et al., 2012 ; ADEGOKE, 2012 ; ADEONIPEKUM et
al., 2012 ; CHIAGHANAM et al., 2012)
La plupart de ces travaux concernent le Crétacé, probablement en raison de l’intérêt
qu’y présentent les roches réservoirs en hydrocarbures.
Au Cameroun, le Bassin de Douala a fait l’objet de quelques études palynologiques
dont la plus détaillée est celle de SALARD-CHEBOLDAEFF (1976, 1977, 1978, 1979,
1981, 1990) couvrant largement la série Tertiaire au puits Kwa-Kwa du Crétacé supérieur
au Miocène (situation : Figure 1). On notera aussi les travaux de thèse de NJIKE (2004) sur
le Crétacé de l’Est du bassin et, plus récemment, de KENFACK et al. (2012) sur des
affleurements « onshore » du Tertiaire inférieur des localités de Kompina, Miang et Fiko
situées dans la région de Souza (Nkapa), à 25 km environ au Nord-Ouest de la ville de
Douala (situation : Figure 1).
De ceci, il résulte que la base du Tertiaire représentée par la Formation de Nkapa
reste encore peu explorée du point de vue palynostratigraphique ; les travaux de NJIKE ne

15
concernant que le Crétacé alors que SALARD n’a abordé le sujet que partiellement par
l’analyse sporopollinique, englobant en un tout le Paléocène et l’Eocène inférieur et que
KENFACK et al. (2012) n’ont recensé que 16 espèces de dinoflagellés auxquelles ils
attribuent une valeur stratigraphique, situant leurs dépôts à la limite Crétacé-Tertiaire.
C’est dans la Formation de Nkapa que la limite Paléocène/Eocène a été définie par
les géologues pétroliers sur base de la lithologie, de la sismique, de la diagraphie et d’une
étude des foraminifères planctoniques (rapport de sondage inédit, 1995).
A l’échelle de la planète, la limite Paléocène/Eocène n’est pas soulignée par un
événement paléo-biologique majeur de renouvellement des flores et des faunes
caractérisant les « catastrophes globales » qui jalonnent l’échelle des temps géologiques et
dont la plus connue, celle de la limite Crétacé-Tertiaire est marquée par l’extinction des
dinosaures. Toutefois, deux techniques biostratigraphiques, l’une basée sur l’étude des
foraminifères (P), l’autre sur celle des nannofossiles calcaires (NP), couplées aux méthodes
palynostratigraphiques (spores, pollen, dinoflagellés), affinées ces dernières décennies, ont
permis d’avancer certains critères situant la limite Paléocène/Eocène à divers niveaux de
l’intervalle 56,2 – 53,6 MA de l’échelle chronométrique (DUPUIS, 2005). Par ailleurs, la
chémostratigraphie a mis en évidence une anomalie isotopique du carbone (SINHA et al.,
1996 ; SINHA, 1997) ou « Carbon Isotope Excursion » (CIE) se situant à 55,8 MA (vers la
base des faciès sparnaciens) résultant d’un déséquilibre dans le ratio isotopique naturel 12C-
13 12
C dû à une libération brutale de carbone C dans l’atmosphère et le milieu marin, avec
comme effet une augmentation brusque de la température globale (KENNETT & STOTT,
1991 ; ZACHOS et al., 2003). Ce phénomène hyperthermique, couplé à la CIE a été choisi
comme situant la limite entre le Paléocène et l’Eocène et comme marquant le début d’un
court intervalle de 150 000-200 000 ans à l’échelle géologique (RÖHL et al., 2000) connue
sous l’appellation « Paleocene-Eocene Thermal Maximum » (PETM). Cette limite
correspond à un changement des flores terrestres (WING et al., 2005) déjà signalé par
SCHIMPER (1874) dans le Sparnacien du Bassin de Paris alors que, dans le milieu marin,
on assiste à une extinction massive de foraminifères benthiques (KENNETT & STOTT,
1991). Tout récemment, WRIGHT & SCHALLER (2013) ont montré que la CIE est un
phenomène de très brève durée, ce qui semblerait indiquer qu’elle est liée à un événement
quasi instantané comme un impact météoritique.
La coupe de référence choisie pour établir la limite Paléocène-Eocène
internationalement reconnue est celle des « Dababiya Quarry Beds » à Louxor, en Egypte.
La coupure Paléocène-Eocène a été fixée au début de cette séquence dans laquelle des

16
variations lithologiques et des événements paléo-biologiques ont été identifiés par rapport à
la CIE et au PETM, notamment l’extinction des foraminifères benthiques à sa base et, en
son sein, la présence d’une association typique de nanofossiles calcaires avec leurs acmés
caractéristiques (DUPUIS et al., 2003 ; AUBRY et al., 2007).
La CIE et le PETM ont été enregistrés dans deux autres sites africains, l’un dans une
zone côtière du Sud-Est de la Tanzanie, l’autre dans la région de Lagos au Nigeria.
En Tanzanie, au site TDP 14 appartenant au « Kilwa Group Outcrop », la limite
Paléocène-Eocène initialement déterminée par biostratigraphie a été confirmée par le
repérage de la CIE. Une étude basée sur des indicateurs minéralogiques et des
biomarqueurs (HANDLEY et al., 2012) suggère que le PETM y correspondait à un climat
régional plutôt sec à précipitations saisonnières intenses ce qui infirme l’opinion
généralement admise qui associe le PETM à une humidification globale du climat
(BOWEN et al., 2004) .
Au Nigeria, dans une recherche récente (FRIELING et al., 2011) relative à
l’hydrologie et à la paléoécologie du PETM, l’analyse de l’évolution des assemblages de
dinoflagellés, non seulement du point de vue biostratigraphique mais aussi en termes de
niveau marin, de température et de salinité a été abordée. La position stratigraphique
particulière du genre Apectodinium par rapport à la CIE a été soulevée.
Avec le début de la CIE coïnciderait, à l’échelle globale, une progression dans les
assemblages de dinokystes du genre Apectodinium dont la phase d’abondance serait
associée au PETM (CROUCH et al., 2001 ; CROUCH et al., 2003). D’après les travaux
préliminaires de FRIELING et al. (2011) cette assertion pourrait être remise en question
pour ce qui concerne le Paléogène inférieur des bassins sédimentaires tropicaux de
l’Afrique de l’Ouest en effet ; au Nigeria, Apectodinium semble connaître une expansion
pré-CIE.
Dans le Bassin de Douala, on ne dispose pas de séquence sédimentaire avec
enregistrement de la CIE. La limite Paléocène-Eocène y a été établie au puits Moulongo par
une analyse biostratigraphique de la Formation de Nkapa basée, notamment, sur l’étude des
foraminifères planctoniques (rapport de sondage inédit, 1995). Dans ce rapport, des taxons
de foraminifères planctoniques d’âge Paléocène supérieur ont été mis en évidence à -2370
m : Tritaxia midwayensis, Rzehakina spp. et Globorotalia pseudobuloides. Au dessus de -
2360 m, des taxons d’âge Paléocène supérieur-Eocène inférieur ont également été mis en
évidence : Radiolaria sp., Spiroplectammina spectabilis et Karreriella apicularis.

17
 Le présent travail a pour but de faire l’inventaire des dinoflagellés présents dans
cette formation traversée par divers sondages et de mettre en relief la distribution des
espèces à caractère stratigraphique avec le puits Moulongo comme séquence de référence.
Une comparaison sera établie avec des analyses faites dans différents bassins de l’Afrique
de l’Ouest : la position stratigraphique du genre Apectodinium par rapport à la CIE telle que
suggérée au Nigeria sera évaluée. Aussi une comparaison avec les bassins nordiques sur
base bibliographique sera également établie.
Une recherche semblable sera effectuée sur base de l’étude sporopollinique des
différentes séquences utilisées pour l’analyse des dinoflagellés en y ajoutant la séquence
onshore de Ngata dont les dinokystes sont pratiquement absents mais qui peut également
servir de coupe de référence étant donné que, comme pour Moulongo, la limite
Paléocène/Eocène y a été fixée par les stratigraphes pétroliers. La biostratigraphie
pollinique qui en découlera sera comparée à celle des dinoflagellés. Comme pour ces
derniers, il sera fait une référence comparative avec divers bassins voisins de l’Afrique de
l’Ouest.
L’analyse sporopollinique sera utilisée pour réaliser une analyse floristique menant
à la reconstitution de l’environnement régional de terre ferme, complémentaire de la
reconstitution de l’environnement marin suggéré par les dinoflagellés. Une synthèse
globale de l’ensemble sera ensuite effectuée.

18
 CHAPITRE 2-METHODOLOGIE

2.1. PROVENANCE DU MATERIEL ETUDIE

Le matériel étudié provient de cuttings de six forages réalisés par les sociétés
pétrolières dans le sous-bassin de Douala. Un prélèvement de 97 échantillons au total a été
effectué dans les séquences provenant des six sondages suivants : Moulongo, Mamiwater,
Nord Matanda, Ngata, Pungo et Yatou (cartes de situation : Figures 1 et 3).
D’après les données des rapports de fin de sondage et sur base de signatures
diagraphiques notamment le gamma ray mises à notre disposition, la lithologie de la
Formation de Nkapa de chacun des puits a été définie. Globalement, les sédiments traversés
sont à dominance d’argilite et d’argile litée au sein desquelles on peut observer des passées
gréseuses et dolomitiques. Les différentes séquences relevées dans la zone d’étude sont
représentées à la Figure 4.
Le puits de référence où la position de la limite Paléocène-Eocène a été définie est
le puits offshore de Moulongo. La Formation de Nkapa y atteint une épaisseur de 890 m (-
2134 à -3024 m). C’est toutefois au sondage onshore de Ngata qu’elle est la plus
importante, 1180 m (-570 à -1750 m) ; viennent ensuite les sites de Nord Matanda et de
Mamiwater, où l’épaisseur de la formation atteint respectivement 682 m (-1941 à -2623 m)
et 355 m (-828 à -1183 m). Cette épaisseur est la plus faible dans les puits de Pungo et de
Yatou, soit 20 m et 70 m respectivement.

2.2. DESCRIPTION DES SEQUENCES

2.2.1. Moulongo (03°27’45’’ N – 09°37’32’’ E)

Le forage a traversé 3700 m de couches sédimentaires. Les cinq formations

traversées sont : Wouri (de la surface à 259,5 m), Matanda (259,5-1467 m), Souellaba
(1467-2134 m), Nkapa (2120-3024 m) et Logbaba (3024-3700 m). Ce puits a été pris
comme référence parce que la limite Paléocène-Eocène y a été définie sur base de
différentes techniques stratigraphiques (rapport de sondage inédit, 1995).

19
 La Formation de Nkapa, épaisse de 890 m a été divisée en deux parties : Nkapa
supérieur (Eocène) allant du sommet de la formation jusqu’à 2362 m de profondeur et
Nkapa inférieur (Paléocène) allant de 2362 m à 3024 m, base de la formation.

2134 m à 2362 m : Le sommet de la Formation de Nkapa a été fixé sur base des
gammas rays et de la résistivité, comparés aux données d’un puits effectué antérieurement,
Yum-1. De plus, la position du sommet de la formation est matérialisée par un changement
lithologique à 2134 m où on observe un passage d’une argilite brunâtre limoneuse à une
argilite brunâtre à glauconite.
La partie supérieure de la Formation de Nkapa (Nkapa supérieur) est caractérisée
par des argilites brunes ou grises à glauconite et des composants arénacés sporadiques de
sable très fins.
Les argilites sont généralement brun clair, parfois devenant brun gris et localement
brun foncé. Elles sont de nature plastique et collante. Avec la profondeur, ces argilites
deviennent plus coherentes, faiblement ou non calcaires, glauconitiques avec certaines
concentrations locales, associées à des argiles.
Les composants arénacés présentent des traces des grains de quartz très fins bien
triés sub-arrondis à arrondis suspendus dans les argilites brunâtres (90-100 µm).
2362 m à 2597 m : Le sommet de Nkapa inférieur est basé sur un changement
lithologique des argilites brunâtres, glauconitiques à des argilites grises, fortement
pyritisées et non glauconitiques.
Nkapa inférieur se caractérise par des argilites grises à pyrite, avec des passages de
calcaires dolomitiques. Les composants arénacés sont rares et réduits à des grains flottants
dans la matrice argileuse.
Les argilites ont une couleur gris clair à moyennement bleu, devenant parfois gris
sombre. Elles sont compactes, pourvues de pyrites fréquentes, finement disséminées et
nodulaires ou de calcaire, finement micacé. Ces argilites sont généralement non carbonatées
localement associées à une seconde variété d’argilites. Ces dernières sont gris clair à
brunâtre, fragiles, collantes, non calcaires, micacéeset renferme de la pyrite peu disséminée.
Les calcaires dolomitiques sont de couleur beige. A la cassure, ils ont une teinte gris
blanc à vert gris, sont friables et microcristallins avec localement des microclastes dans la
matrice.
La dolomie, brun sombre, très dure, fortement cristalline, apparaît localement sous
forme de microclastes dans la matrice des calcaires. Les composants arénacés : transparents
à clairs, translucides, avec des grains de quartz fins à moyens, sub-anguleux à sub-arrondis,
en vrac, se présentent comme flottant dans la matrice argileuse.

2597 m à 2626 m : Il n’existe pas de changement lithologique notable dans cette

partie de la séquence. Cet intervalle est constitué d’une argilite gris foncée homogène avec
de rares traces de dolomie.
Les argilites sont gris foncé à noires, homogènes, compactes, non calcareuses, très
micromicacées, avec une dissémination de la pyrite. La dolomite est brun foncé, très dure,
de forme irrégulière à arrondie, fortement cristalline.
20
 2626 m à 2944,5 m : Le sommet de cet intervalle est considéré par rapport à la
première apparition des grès possédant des fluorescences à hydrocarbures.
Cette section comprend une séquence d’intercalations d’argilites gris foncé à pyrite
et de minces lits de grès à grains fins à moyens. On note aussi la présence des traces de
dolomie et, localement, de calcaires dolomitiques.
Les grès sont essentiellement blancs à gris clair, localement bruns, gris clair à brun
foncé, durs, friables en partie. Initialement, les grains de ces grès sont très fins à fins, mais
avec la profondeur ils deviennent fins à moyens, plus ou moins bien triés, consolidés dans
un ciment siliceux et par endroit à ciment calcaire et rarement dolomitique. La présence des
micas et de la pyrite est observée par endroits. Des grains de quartz sub-anguleux à sub-
arrondis apparaissent en vrac dans les échantillons.
Les argilites sont gris foncé à gris blanc, dures, non calcaires, finement
micromicacées, avec de la pyrite finement disséminée, localement limoneuses progradant
vers les siltites. Elles sont localement associées à des variétés d’argilites, grises à brunes ou
jaune pâle, fragiles, collantes, non calcaires, micromicacées et pyritisées, limoneuses.

2944,5 m à 3024 m : Le sommet de cet intervalle est fixé par l’apparition d’un grès
distinct. Cette section représente le premier développement significatif des composants
arénacés rencontrés durant le forage et dont une grande partie est constituée d’intercalations
de lits de grès et d’argilites. Des niveaux de grès clairs sont présents entre 2944,5-2953,0
m, 2992,5-3001 m et 3016-3017,5 m.
Les grès sont blancs à très blancs, gris clair, en partie gris brun, généralement durs.
Chaque unité de grès présente des grains fins (125-250 µm) au sommet et des grains fins à
moyens (125-500 µm) à la base. Ils sont bien triés, dotés d’un ciment siliceux et localement
calcaire, micacé.
Les argilites sont gris foncé à gris noir, micacées, présentant des traces de pyrite,
non calcaires, localement limoneuses, fréquemment associées à des argiles limoneuses
claires, légèrement brunes et fragiles. Par endroits des composants arénacés, très limoneux,
faiblement ou non calcaires et micacés, sont présents.

2.2.2. Pungo (04°06’52’’ N – 09°24’12’’ E)

Le puits Pungo, dont la profondeur est de 1358 m, n’a pas atteint la base de la
Formation de Nkapa. Le sondage a traversé trois formations, à savoir la Formation du
Wouri (0-475 m), la Formation de Souellaba (475-1338 m) et la Formation de Nkapa
(1338-1358 m). La lithologie de la Formation de Nkapa est essentiellement faite des dépôts
d’argilite avec toutefois quelques passages gréseux.

21
2.2.3. Nord Matanda (03°56’37’’ N – 09°36’22’’ E)

Le puits Nord Matanda a traversé cinq formations jusqu’à une profondeur de 3085
m : la Formation du Wouri (100-375 m), la Formation de Matanda (375-1152 m), la
Formation de Souellaba (1152-1941 m), la Formation de Nkapa (1941-2623 m) et la
Formation du Logbaba (2623-3085 m).

La lithologie de la Formation de Nkapa se présente comme suit.

1941 m à 2200 m : sédiments constitués de schistes, gris foncé et de rares calcaires,

gris brun.
2200 m à 2240 m : essentiellement des limons, gris brun, très calcaires, argileux et
des schistes durs, gris foncé.
2240 m à 2390 m : argilites gris clair, douces, collantes et schistes gris foncé
2390 m à 2623 m : argilites, gris clair, douces et collantes ; schistes gris foncé avec
calcite et pyrite occasionnelles.

2.2.4. Mamiwater (03°46’32’’ – 09°45’02’’ E)

Ce puits est localisé à 5600 m au NNE du puits Kwa-Kwa sur lequel Salard-
Cheboldaeff (1977) a fait les premières investigations palynologiques dans le Bassin de
Douala. Le forage Mamiwater a traversé les Formations Matanda (0-268 m), Souellaba
(268-828 m) et Nkapa (828-1183 m). D’après le rapport de fin de sondage, il n’a pas atteint
la base de cette dernière. La Formation de Nkapa a été traversée par le forage sur 355 m
d’épaisseur de sédiments seulement.

La lithologie de la Formation de Nkapa est la suivante.

828 m à 915 m : présence de schistes de couleur gris foncé ;
915 m à 1000 m : intervalle caractérisé par la présence des schistes limoneux de
couleur grise, très doux ;
1000 m à 1060 m : des schistes gris foncé, micacés et des minces lits de silex
caractérisent cet intervalle ;
1060 à 1183 m : cette partie de la séquence comporte des schistes argileux gris clair,
avec, à 1120 m, un mince lit de grès est blanc à grains moyens, sub-anguleux.

22
 Pungo Nord Matanda Mamiwater Moulongo Yatou Ngata
4° 06’ 52” N 3° 56’ 37” N 3° 46’ 33” N 3° 27’ 45” N 3° 42’ 58” N 3° 24’ 21” N
9° 24’ 12” E 9° 36’ 23” E 9° 45’ 03” E 9° 37’ 32” E 9° 46’ 17” E 9° 52’ 13” E
(Sondage de référence) 4

Fm
268 Souellaba 570 Argilite

Profondeurs (en m)
Grès dolomitique
600 Argilite sableuse

Fm
Dolomie Grès dolomitique
Dolomie
800
820
Argile litée gris foncé, Argilite
traces de fossiles
1000 Argile litée grise, silteuse
475 Argile litée gris foncé, fissile, Sable
micacée, minces lits de cherts 700 Argilite sableuse
Grès blanc, non consolidé Dolomie Argilite

Fm
1183 Argile litée gris clair Grès
Dolomie Argilite sableuse

Fm

Souellaba
Argilite sableuse

Formation de Nkapa Souellaba

1338 Argile avec passées Dolomie
? Argilite
Formation de Nkapa

1358 sableuses 1402 Argile litée noire,

Fm
Minces lits de grès blanc, Dolomie
Fm

Nkapa
1472 Argilite
? Dolomie Dolomie
Argilite
Grès
Argilite
Dolomie Argilite
Fm

1152 Dolomie
Dolomie Argilite
Logbaba Nkapa Souellaba

1928 1750 Grès

Fm
1467

Souellaba
Fm

1940

Fm
Logbaba

2000
2270

Souellaba
Argile litée gris foncé, dense

Oligo-Miocène
2134
Silt gris-brun, calcaire
Argilite gris-brun,
Argile gris clair, collante glauconieuse et sables fins

Eocène
Argile litée gris foncé, fissile inférieur
2362
Argile gris clair, collante

Formation de Nkapa
Argile litée gris foncé, fissile,
2630 à calcite et pyrite occasionnels
2600 Argilite grise, pyriteuse,
Formation de Nkapa

fins lits de silts,

Fm
Paléocène

traces de Dolomie

Logbaba
3085
3000 3024
Fm
Crétacé
supérieur

Logbaba

3564

23
Figure 4 : Séquences étudiées dans les différents puits pétroliers du Bassin de Douala (descriptions: SNH - Cameroun)
2.2.5. Yatou (03°42’57’’ N – 09°46’16’’ E)

Le puits Yatou est situé à 1,5 km au Sud-Est du puits Kwa Kwa. Le forage a
traversé 1928 m de sédiments répartis sur les Formations Wouri (0-112 m), Souellaba (700-
1402 m), Nkapa (1402-1472 m) et Logbaba (1472-1928 m). La Formation de Nkapa a une
épaisseur de 70 m.
Les sédiments de la Formation de Nkapa sont constitués de schistes noirs, calcaires,
durs avec des intercalations de minces lits de grès mal trié, blancs à grains fins, de rares
blocs de quartz et de la dolomite, rouge brun, dure.

2.2.6. Ngata (03°24’21’’ N – 09°52’13’’ E)

Le forage de Ngata a traversé les Formations Souellaba (4-570 m), Nkapa (570-
1750 m), Logbaba (1750-2270 m).
D’après le rapport de fin de sondage inédit du puits Ngata, la Formation de Nkapa y
est divisée en Nkapa supérieur (570-990 m) soit 420 m d’épaisseur et Nkapa inférieur (990-
1750 m) soit 760 m d’épaisseur de sédiments. L’épaisseur totale de la formation est de
1180 m. Elle est constituée des sédiments de grès, d’argilite et de dolomie.
L’intervalle Nkapa supérieur (570-990 m) présente du sommet vers la base la lithologie
suivante :
- une argilite plus ou moins grise, douce, meuble, amorphe, collante, limoneuse ;
- un grès dolomitique coloré, translucide, doté de grains de quartz fins à moyens, mal
triés, sub-arrondis à sub-anguleux, faiblement cimenté, à matrice calcaire et
dolomitique ;
- un grès constitué de quartz coloré, transparent à translucide, à grains fins à moyens,
sub-arrondis à sub-anguleux, moyennement cimenté avec de la silice ;
- une argilite gris brunâtre, amorphe, en bloc par endroit, limoneuse, friable ;
- une dolomie grisâtre, dure, micritique, limoneuse ;
- une argilite gris clair, douce, amorphe, limoneuse, friable, non calcaire ;
- une argilite limoneuse grisâtre, douce, amorphe, meuble, limoneuse, micacée,
présentant des fragments de coquilles.

L’intervalle Nkapa inférieur (990-1750 m) présente la succession suivante :

- une argilite grisâtre, douce, amorphe, limoneuse contenant des fragments de
coquilles ;
- une dolomie brunâtre, dure, microcristalline, limoneuse ;
- une argilite gris foncé à grise, douce, amorphe, limoneuse ;

24
 - une argilite limoneuse grisâtre, douce, amorphe, meuble, micacée, dotée de
fragments de coquilles.
- un sable contenant du quartz coloré, transparent à translucide, à grains moyens à
grossiers, sub-arrondis à sub-anguleux ;
- une argilite grisâtre, légèrement dure, amorphe, limoneuse, légèrement calcaire ;
- une dolomie brunâtre, légèrement dure, micritique, à structure cryptocristalline,
présente en blocs ;
- un grès brunâtre, à grains fins à très fins, mal triés, sub-arrondis à sub-anguleux,
sub-sphériques, modérément cimenté, calcaire.
-
En résumé la Formation de Nkapa est essentiellement constituée dans ce forage de
couches d’argilites et schistes au sein desquelles on peut observer des passages gréseux et
dolomitiques.

2.3. MÉTHODES D’ANALYSES

2.3.1. Traitement des échantillons

2.3.1.1. Traitement mécanique

Un prélèvement de 25 g maximum d’échantillon a été effectué. L’échantillon

prélevé est initialement lavé à l’eau courante et séché à l’étuve. Puis, il est concassé dans un
mortier en agathe à l’aide d’un pilon en agathe afin d’obtenir des grains d’une fraction
d’environ 2 mm au maximum. La fraction concassée est homogénéisée et pesée. La
particule utilisable est conservée dans un flacon portant un numéro de référence
préalablement choisi et en concordance avec le numéro de l’échantillon pour la suite du
traitement chimique. Au passage à un autre échantillon afin d’éviter toute éventuelle
contamination, le mortier et le pilon sont lavés à l’aide d’une brosse et du savon, puis
nettoyés avec une serviette propre.

2.3.1.2. Traitement chimique

Le traitement chimique pratiqué au Laboratoire de Paléobiogéologie-

Paléobotanique-Paléopalynologie (PPP) de l’ULg comporte une attaque à l’HCl (30%)
suivie d’un rinçage de l’HCl par deux centrifugations. Vient ensuite une attaque à l’HF
(40%). Ici aussi l’acide fluorhydrique est rincé par deux centrifugations. Suit un traitement

25
à l’HCl chaud, une filtration sur un tamis en nylon à maille de 12 µm après refroidissement
et une dernière attaque à l’HNO3 (60 %) pendant 2 mn.

Déroulement des opérations

a. Traitement à l’acide chlorhydrique (HCl 30%)

Cette attaque consiste à éliminer les carbonates (calcite et dolomite) contenus dans
l’échantillon.
L’échantillon préalablement préparé mécaniquement est traité par 250 ml d’une
solution d’HCl préparée de la façon suivante : prélever 50 ml d’HCl dilué à 30% dans un
bécher, puis ajouter de l’eau jusqu’à 500 ml. Une fois le liquide (250 ml) versé sur
l’échantillon, l’ensemble est laissé à macérer ½ jour à 1 nuit.
On procède ensuite à un rinçage de l’HCl par centrifugation à 3000 tours pendant 5
mn. L’échantillon subit alors un nouveau test à l’HCl, cette fois, à 30% non dilué pour
s’assurer de l’élimination des carbonates. Si le test est positif, l’échantillon reste encore
quelques minutes dans l’acide puis est soumis à une nouvelle centrifugation. Lorsqu’il n’y a
plus effervescence, l’échantillon est prélevé à l’aide d’une pissette ; après ajout d’eau
distillée, une nouvelle centrifugation a lieu et l’échantillon est prêt pour un traitement à
l’HF.

b. Traitement à l’acide fluorhydrique (HF 40%)

L’attaque à l’acide fluorhydrique (40%) permet d’éliminer la silice et les silicates,

afin de ne conserver que de la matière organique en éliminant au maximum tout ce qui est
minéral. Pour cette attaque, les échantillons sont placés dans des récipients cylindriques en
plastique avec 150 ml d’HF à 40%. Ces récipients, soigneusement bouchonnés, sont posés
sur des cylindres permettant une rotation assurant une homogénéisation de l’ensemble par
agitation lente. L’opération dure environ 12 heures (une nuit).
Pour procéder à la centrifugation des échantillons, on vide les récipients de leur
contenu à l’aide d’une pissette. Si l’échantillon est trop compacté, il faut se servir
préalablement d’une baguette en verre pour le détacher du fond du récipient. Par la suite,
quand le mélange est bien homogénéisé, de l’eau distillée est ajoutée au 3/4 du volume du
récipient contenant le sédiment traité et on procède à une centrifugation. Un deuxième

26
rinçage à l’eau est effectué afin de débarrasser l’échantillon d’un maximum d’acide. Après
la deuxième centrifugation du deuxième rinçage à l’eau, l’échantillon est versé dans des
béchers en verre de 250 ml à l’aide de la pissette.

c. Traitement à l’HCl à chaud

Ce traitement consiste à faire bouillir pendant quelques minutes l’échantillon afin de

libérer les palynomorphes du reste du contenu de la matière organique. Pour cela, on utilise
une plaque chauffante. Pour le traitement à l’acide chlorhydrique à chaud, on ajoute une
petite quantité d’eau distillée sur les échantillons (maximum 100 ml) pour décoller le
sédiment du fond du récipient et le rincer. Le sédiment libéré et rincé est transvasé dans un
bécher de 250 ml ; ensuite, une petite quantité de l’HCl à 30% et environ 200 ml d’eau y
sont ajoutés. Aussitôt le pot est placé sur une plaque chauffante préalablement branchée
pendant 5 mn. Après le début d’ébullition, on répète l’opération pour chaque échantillon.

d. Filtration

La séparation physique des matières organiques s’effectue par filtration au moyen

d’un appareillage type. Ce système permet une séparation et un nettoyage efficace de la
matière organique tout en nécessitant un contrôle préalable des filtrats. Un tamis de maille
12 µm est placé sur un entonnoir surmontant un erlenmeyer relié à une pompe aspirante. On
verse alors le contenu de l’échantillon bouilli dans l’entonnoir par petites quantités à
plusieurs reprises. Cette filtration se fait à l’eau courante qui devient de plus en plus claire
au fur et à mesure du nettoyage. Quand l’échantillon est propre, à l’aide d’une pissette
contenant de l’eau distillée le contenu du tamis est récupéré dans un petit tube à essai
préalablement numéroté. A la fin de la filtration on procède à une centrifugation pour
récupération du sédiment traité. Le contenu liquide est vidé mais une petite quantité d’eau
pour le montage des lames est conservée.

e. Traitement à l’HNO3 (éventuellement)

Ce traitement permet de débarrasser les palynomorphes de débris divers qui auraient

résisté au traitement précédent. L’oxydation de ces derniers se fait à l’aide d’acide nitrique
pendant 2 mn. Cela consiste à remettre les échantillons dans les béchers et à ajouter de

27
l’acide nitrique à 60% en quantité double de l’eau qui se trouve sur l’échantillon à oxyder.
Après les deux minutes requises pour l’opération, la quantité d’eau est augmentée dans le
bécher et on procède ensuite à une nouvelle filtration.

2.3.2. Montage des lames

La procédure de traitement adoptée conduit au montage de lames qui permettront

l’observation des palynomorphes au microscope et l’estimation de leur concentration.
Une fois les traitements décrits ci-dessus réalisés, quelques gouttes de la préparation
sont déposées sur un couvre-objet et mélangées à de l’HEC afin d’assurer une meilleure
dispersion des palynomorphes. Le HEC est un mélange de Cellulose Hydroxyéthilique,
d’alcool et d’eau distillée. Quelques gouttes du mélange sont pipetées et étalées sur une
lamelle préalablement placée sur une lame numérotée. Par la suite, les lames et lamelles
correspondant aux différents échantillons traités sont placées dans l’étuve pour séchage
pendant une demi-heure minimum. Lorsque le contenu des lamelles a séché, celles-ci sont
décollées délicatement à l’aide de pinces puis retournées et collées avec de la colle Eukitt
sur des lames définitives initialement préparées et reprenant le n° de l’échantillon et sa
profondeur dans les séquences provenant des sondages.

2.4. PRESENTATION DES RESULTATS : DETERMINATION DES

TAXONS, TECHNIQUES DE COMPTAGE ET DE CLASSIFICATION

2.4.1. Observations et comptages

L’observation des palynomorphes a été réalisée sous microscope photonique Zeiss

Jenaval (objectif 100 à immersion ; oculaire 10x). On a procédé ensuite au balayage des
lames à l’objectif 40x afin de recenser l’ensemble des taxons présents. Le comptage de
chaque taxon correspond au nombre de fois que le fossile a été rencontré dans toute la lame.
Il se fait en balayant celle-ci de gauche à droite et de haut en bas. Dans chacun des

28
sondages, deux lames par niveau ont été examinées et un minimum de 250 individus a été
compté (250 dinoflagellés + 250 pollens et spores).
Les proportions comptées de chaque taxon pour les niveaux analysés sont
consignées dans des tableaux numériques. Elles sont ensuite exprimées en fréquences
relatives, c’est-à-dire en pourcentages par rapport au total des dinoflagellés ou de pollen et
spores comptés, soit un minimum de 250 par niveau pour chacune des deux catégories de
palynomorphes.
Dans les graphiques relatifs aux dinoflagellés (Figures 5 et 6) présentés dans ce
travail, la fréquence relative des taxons est figurée par des traits dont l’épaisseur varie selon
la simple présence (3 %<) jusqu’à l’abondance (>40 %). Les espèces reprises dans ces
graphiques ont été retenues pour leur caractère particulier, lié à l’évolution séquentielle
qu’elles présentent dans les dépôts analysés et pour leur valeur biostratigraphique reconnue
dans les bassins voisins. En ce qui concerne les pollens et spores, on a retenu la méthode de
présence/absence (Figures A, B, C, D), moins précise mais suffisante dans l’optique du
travail présenté ici où les dinokystes occupent une place prépondérante dans la discussion
biostratigraphique.

2.4.2. Identifications

Les identifications des formes recensées ont été effectuées principalement à partir
de comparaisons avec des espèces figurées et décrites dans des publications relatives à
l’Afrique mais aussi d’Europe et d’Amérique, voire d’Asie. Nous avons pu aussi bénéficier
des judicieux conseils de A. IAKOVLEVA (Geological Institute – Russian Academy of
Sciences) et de J. DE CONINCK (U. Gent, Belgium) pour vérifier nos déterminations de
dinoflagellés.
En ce qui concerne les dinoflagellés, l’essentiel des identifications est basée sur les
caractères morphologiques (la forme du kyste, le type de processus et sa distribution,
l’ornementation de surface ou le type d’archéopyle, la corne apicale et les cornes
antapicales). Les formes recensées dans l’étude ont été comparées à des formes publiées
dans des travaux antérieurs relatifs à l’Afrique (JAN DU CHÊNE & ADEDIRAN, 1984 ;
OLOTO, 1990 ; OLOTO, 1992 ; ATTA-PETERS & SALAMI, 2004a, 2006 ; BANKOLE
et al., 2007) mais aussi dans des publications en Europe (COSTA & DOWNIE, 1976 ;
HANSEN, 1977 ; HARLAND, 1979 ; ISLAM, 1983 ; POWELL, 1992 ; DE CONINCK,

29
1993 ; GEDL, 1995 ; STOVER et al., 1996 ; RONCAGLIA & CORRADINI, 1997 ;
IAKOVLEVA et al., 2000, 2001 ; NØHR-HANSEN, 2003 ; GEDL, 2005 ;
ALEKSANDROVA & ZAPOROZHETS, 2008 ; FENSOME et al., 2009 ;
ALEKSANDROVA & SHCHERBININA, 2011 ; HOFMANN et al., 2011), en Amérique
(GREGORY & HART,1995 ; YEPES, 2001 ; HELENES & TELLEZ-DUARTE, 2002) et
au Pakistan (EDWARDS, 2007).
De même, les identifications des spores et pollens sont basées sur la forme du grain,
les apertures, le type d’exine et son ornementation. Les formes inventoriées ont été
comparées aux formes présentes dans d’autres travaux existants en Afrique, en Amérique
du Sud ou, accessoirement, en Asie : VAN HOEKEN KLINKENBERG (1966),
GERMERAAD et al. (1968), BOLTENHAGEN (1976), SALARD-CHEBOLDAEFF
(1977, 1978, 1979), JAN DU CHÊNE et al. (1978b), BOLTENHAGEN et al. (1985),
SCHRANK (1987), SCHRANK (1994, 1994a) FREDERIKSEN (1994), EL BEIALY,
(1998) ; FREDERIKSEN et al. (1999), JARAMILLO & DILCHER (2001), RULL (2001),
HELENES & CABRERA (2003) ; PARDO TRUJILLO et al. (2003), ATTA-PETERS &
SALAMI (2004b), PARDO TRUJILLO (2004), STEAD & AWAD (2005), JARAMILLO
et al. (2007), EISAWI & SCHRANK (2008, 2009), PAUVILAUSKAS et al. (2008),
AJAEGWU et al. (2012).

2.4.3. Tableaux statistiques

Les tableaux de comptages et de pourcentages (voir annexes) des palynomorphes

des différents groupes issus de chacun des puits fournissent la liste complète des variables
palynologiques quantitatives. Nous avons établi six tableaux de comptages et six tableaux
de pourcentages des taxons de chaque groupe de palynomorphes correspondant aux six
puits analysés. La lettre (a) correspond au comptage et la lettre (b) au pourcentage.
Pour les dinoflagellés, il s’agit de tableaux 1a et 1b pour le puits Moulongo,
tableaux 2a et 2b pour le puits Mamiwater, tableaux 3a et 3b pour le puits Nord Matanda,
tableaux 4a et 4b pour le puits Ngata, tableaux 5a et 5b pour le puits Yatou, tableaux 6a et
6b pour le puits Pungo.
Les palynomorphes terrestres (spores et pollens) ont été inventoriés et consignés
également dans six tableaux correspondant aux six puits. Les pourcentages de chaque taxon
ont été calculés par rapport au nombre total des taxons par échantillon et consignés dans les

30
tableaux de pourcentage. Pour faire la différence avec les dinokystes, les tableaux de taxons
sporopolliniques portent des chiffres romains. Il s’agit de tableaux Ia et Ib pour le puits
Moulongo, tableaux IIa et IIb pour le puits Mamiwater, tableaux IIIa et IIIb pour le puits
Nord Matanda, tableaux Iva et IVb pour le puits Ngata, tableaux Va et Vb pour le puits
Yatou et tableaux VIa et VIb pour le puits Pungo.

31
DEUXIEME PARTIE : RESULTATS

32
 CHAPITRE 3 - INVENTAIRES DES PALYNOMORPHES

Presque tous les échantillons analysés dans ce travail ont été productifs. Les
palynomorphes de la Formation de Nkapa sont très bien préservés. Parmi les fossiles
trouvés dans les forages traversant la Formation de Nkapa à laquelle cette étude est
consacrée, se trouvent de nombreux dinokystes, des spores et des grains de pollens. Les
formes bien connues permettant de faire des correlations, de la biostratigrahie et du
paléoenvironnement ainsi que des formes moins connues, laissées en nomenclature ouverte
font partie de l’inventaire des palynomorphes trouvés dans chaque puits.

3.1. TABLEAUX D’INVENTAIRES

Ces tableaux font état des taxons (dinoflagellés, pollens et spores) recensés dans les
différentes séquences étudiées, sans valeur quantitative. Complémentairement aux données
statistiques, les données de type présence-absence des taxons représentent le résultat des
observations de nature purement qualitatives. En paléopalynologie, les données de type
présence-absence sont utilisées à des fins biostratigraphiques et chronostratigraphiques
pour dater les terrains et établir des corrélations régionales et inter-régionales, voire
globales. Ces données présentent parfois un intérêt paléoécologique et/ou paléoclimatique.
Aux tableaux d’inventaires ont été joints, à titre indicatif, des tableaux reprenant la liste des
auteurs ayant reconnu la présence des taxons identifiés à Douala dans des bassins proches
ou éloignés.

3.1.1. Inventaire des dinoflagellés

Les sédiments de la Formation de Nkapa se sont révélés très riches en dinokystes.

Tous les puits étudiés offrent une diversité de dinokystes bien que ces derniers soient rares
dans le puits Ngata. L’inventaire établi sur base de la présence/absence figure au Tableau 1.
Ce tableau est suivi de deux autres (tableaux 2 et 3) reprenant la présence des taxons dans
d’autres bassins, surtout d’Afrique. En plus des espèces inventoriées, plusieurs genres sont
également restés en nomenclature ouverte.

33
 Tableau 1 - Distribution des dinoflagellés dans les différentes séquences étudiées.
Pungo Nord Mamiwater Yatou Moulongo Ngata
Dinoflagellés Matanda
Achomosphaera sp. × × × × × ×
Adnatosphaeridium multispinosum Williams × × × × ×
& Downie 1966.
Adnatosphaeridium sp. × × × × ×
Andalusiella gabonensis Wrenn & Hart ×
1988
Andalusiella sp. × × ×
Apectodinium homomorphum Lentin & × × × ×
Williams 1977
Apectodinium hyperacanthum Lentin & × × ×
Williams 1977
Apectodinium paniculatum Lentin & × ×
Williams 1977
Apectodinium parvum Lentin & Williams ×
1977
Apectodinium quinquelatum Costa & × × ×
Downie 1979
Apectodinium sp. × × × ×
Areoligera coronata Lejeune-Carpentier × × × × ×
1938
Areoligera sp. × × × × ×
Cerodinium boloniense Lentin & Williams ×
1989
Cerodinium diebelii Lentin & Williams × × × ×
1987
Cerodinium wardenense Lentin & Williams × × × ×
1987
Cleistosphaeridium sp. ×
Cordosphaeridium fibrospinosum Davey & × × × × ×
Williams 1966
Cordosphaeridium cf. inodes Eisenack 1963 × × × × × ×
Cordosphaeridium cf. minimum × × ×
Cordosphaeridium multispinosum Davey & × × × ×
Williams 1966
Cordosphaeridium sp. × × × × × ×
Dapsilidinium sp. ×
Deflandrea denticulata Alberti 1959 × × ×
Deflandrea cf. oebisfeldensis Alberti 1959 × ×
Deflandrea sp. × × × × × ×
Diphyes cf. spinulum Stover & Evitt 1978 × × × ×
Diphyes spinulum Stover & Evitt 1978 ×
Diphyes colligerum Cookson 1965 × × × ×
Eocladopyxis peniculata Morgenroth 1966 × × × × × ×
Fibrocysta bipolaris Stover & Evitt 1978 × × × × × ×
Fibrocysta sp. × × × × × ×
Fibrocysta vectensis Stover & Evitt 1978 × × × ×
Glaphyrocysta ordinata Stover & Evitt 1978 × × × × ×
Glaphyrocysta sp. × × × × × ×
Hafniasphaera septata Hansen 1977 × × × × × ×
Hafniasphaera sp. ×
Homotryblium abbreviatum Eaton 1976 × ×
Homotryblium cf. tenuispinosum × ×
Homotryblium sp. ×
Hystrichokolpoma rigaudiae Deflandre & × ×
Cookson 1955
Hystrichokolpoma sp. × × × ×
Hystrichokolpoma unispinum Bujak 1980 ×
Hystrichosphaeridium sp. ×
Hystrichosphaeridium tubiferum Deflandre × × × × ×
1937
Ifecysta pachyderma Jan Du Chêne & × × ×
Adediran 1985
Kallosphaeridium sp. × ×
Kallosphaeridium yorubaense Jan Du × × × × ×
Chêne & Adediran 1985

34
 Tableau 1 - Suite.

Kenleyia pachycerata Cookson & Eisenack ×

1965
Kenleyia sp. × × × × ×
Lejeunecysta cf. beninensis × ×
Lejeunecysta hyalina Sarjeant 1984 × × × ×
Lejeunecysta cf.lata × × ×
Lejeunecysta sp. × × × × × ×
Lingulodinium machaerophorum Wall 1967 × × × × ×
Lingulodinium sp. × × × × ×
Millioudodinium sp. × × ×
Operculodinium sp. ×
Palaeocystodinium australinum Lentin & × × ×
Williams 1976
Palaeocystodinium golzowense Alberti 1961 × × × × ×
Palaeocystodinium sp. ×
Phelodinium cf. magnificum × × × × × ×
Phelodinium magnificum Stover & Evitt × × × × ×
1978
Phelodinium sp.1 × × × × ×
Phelodinium sp.2 ×
Polysphaeridium sp. × × × × × ×
Polysphaeridium subtile Davey & Williams × × × × ×
1966
Polysphaeridium zoharyi Rossignol 1966 × × × × ×
Senegalinium laevigatum Bujack & Davies × ×
1983
Senegalinium orei Stover & Williams 1987 × × × × ×
Senegalinium sp. × × × × × ×
Spiniferites cf. ramosus × × ×
Spiniferites sp. × × × × × ×
Thalassiphora patula Stover & Evitt 1978 × ×
Thalassiphora sp. ×
Wetzeliella sp. × ×
Wilsonidium nigeriaense Jan Du Chêne & × × ×
Adediran 1985

Tableau 2- Ages définis dans les travaux antérieurs en Afrique (Côte d’Ivoire, Ghana,
Nigeria, Gabon) pour les espèces sélectionnées de la Formation de Nkapa.
Taxons Age Localisation
Adnatosphaeridium Crétacé supérieur – Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria.
multispinosum. Eocène inférieur
Andalusiella gabonensis Crétacé supérieur - Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria.
Paléocène inférieur
Apectodinium Paléocène – Eocène Nigeria
homomorphum inférieur
Apectodinium Paléocène supérieur – Nigeria
hyperacanthum Eocène inférieur
Apectodinium paniculatum Paléocène supérieur - Nigeria
Eocène inférieur
Apectodinium quinquelatum Paléocène supérieur - Nigeria
Eocène inférieur
Areoligera coronata Crétacé supérieur - Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria.
Paléocène
Cerodinium diebelii Crétacé supérieur - Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria, Gabon.
Paléocène inférieur
Cerodinium wardenense Paléocène supérieur – Nigeria
Eocène inférieur
Cordosphaeridium cf. inodes Crétacé supérieur - Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria, Gabon.
Paléocène
Cordosphaeridium minimum Crétacé supérieur - Côte d’Ivoire, Nigeria.
Eocène
Cordosphaeridium Paléocène – Eocène Nigeria, Gabon.
multispinosum inférieur.
Deflandrea denticulata Paléocène supérieur Nigeria

35
 Tableau 2 - Suite

Deflandrea cf. oebisfeldensis Paléocène-Eocène

Eocladopyxis peniculata Paléocène supérieur – Nigeria.
Eocène inférieur
Fibrocysta vectensis Paléocène inférieur - Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria.
Eocène inferieur
Glaphyrocysta ordinata Paléocène inférieur- Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria.
Eocène inférieur
Hafniasphaera septata Crétacé supérieur – Ghana, Nigeria.
Eocène inférieur
Homotryblium Paléocène supérieur - Côte d’Ivoire, Nigeria.
tenuispinosum Eocène
Hystrichosphaeridium Eocène Nigeria
tubiferum
Kallosphaeridium Paléocène-Eocène Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria.
yorubaense
Lejeunecysta beninensis Paléocène Nigeria
Lejeunecysta hyalina Crétacé supérieur- Nigeria
Paléocène inférieur
Palaeocystodinium Crétacé supérieur – Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria.
australinum Paléocène inférieur
Palaeocystodinium Crétacé supérieur – Côte d’Ivoire, Ghana, Nigeria, Gabon.
golzowense Eocène inférieur
Phelodinium cf. magnificum Paléocène-Eocène Nigeria
inférieur
Polysphaeridium subtile Eocène inférieur Nigeria
Senegalinium orei Paléocène supérieur – Nigeria
Eocène inférieur
Wilsonidium nigeriaense Paléocène supérieur – Nigeria
Eocène inférieur
Wetzeliella sp. Eocène Nigeria
Apectodinium sp. Paléocène supérieur – Nigeria
Eocène inférieur

Tableau 3- Ages prédéfinis dans les travaux antérieurs en Afrique et dans d’autres régions
du monde (Ghana, Nigeria, Pakistan, Tunisie, Maroc) des espèces sélectionnées de la
Formation de Nkapa.
Taxons Age Auteurs
Achomosphaera sp. Crétacé - Miocène Oboh-Ikeuneobe et al., 1998 ; Atta-peters & Salami, 2004a, 2006 ;
Adeonipekum et al., 2012 ; Digbehi et al., 2012
Andalusiella sp. Crétacé supérieur - Oboh-Ikuenobe et al., 1998 ; Oloto, 1990 ; Atta-Peters & Salami, 2004a
Paléocène inférieur
Andalusiella gabonensis Crétacé supérieur - Atta-Peters & Salami, 2004a ; Atta-Peters & Salami, 2006 ; Digbehi et
Paléocène inferieur al., 2011 ; Masure et al., 1998
Cerodinium diebelii Crétacé supérieur - Boltenhagen, 1977 ; Masure et al., 1998 ; Oboh-Ikuenobe et al., 1998 ;
Paléocène Atta-Peters & Salami, 2004a, 2006 ; Digbehi et al., 2011
Cerodinium wardenense Crétacé supérieur - Jan Du Chêne et al., 1985 ; Digbehi et al., 2011
Eocène inférieur
Palaeocystodinium Crétacé supérieur - Oloto, 1989 ; Edet & Nyong, 1993 ; Masure et al., 1998 ; Oboh-
australinum Paléocène Ikuenobe et al., 1998 ; Atta-Peters & Salami, 2004a ; Bankole et al.,
2007
Palaeocystodinium golzowense Crétacé supérieur - Jan Du Chêne et Adediran 1985 ; Oloto, 1990, 1992 ; Atta-Peters &
Eocène inférieur Salami, 2004a, 2006 ; Bankole et al., 2007 ; Digbehi et al., 2011, 2012
Cordosphaeridium cf. Crétacé supérieur - Jan Du Chêne & Adediran 1984 ; Jan Du Chêne & Adediran., 1985 ;
minimum Eocène inférieur Digbehi et al., 2011
Cordosphaeridium Crétacé supérieur - Oloto, 1992 ; Atta-Peters & Salami, 2004a
multispinosum Eocène
Cordosphaeridium cf. inodes Maestrichtien- Oloto, 1989, Oboh-Ikuenobe et al., 1998 ; Masure et al., 1998 ; Atta-
Eocène Peters & Salami, 2004a ; Bankole et al., 2007 ; Lucas & Ishiekwene,
2010a ; Digbehi et al., 2012
Hafniasphaera septata Maestrichtien- Oloto, 1992 ; Atta-Peters & Salami, 2006 ; Bankole et al., 2007 ;
Eocène Slimani et al., 2010 ; Adeonipekum et al., 2012
Apectodinium quinquelatum Thanetien-Yprésien Jan Du Chêne et al., 1985, Oloto, 1992
Deflandrea cf. oebisfeldensis Sélandinien- Powell, 1988 ; Powell, 1992 ; Gradstein et al. 1992, De Coninck, 1993 ;
Yprésien Stover et al., 1996 ;
Deflandrea denticulata Thanetien-Yprésien Lucas & Ishiekwene, 2010a
Apectodinium paniculatum Paléocène supérieur- Jan Du Chêne & Adediran, 1985 ; Bankole et al., 2007

36
 Eocène inferieur
Tableau 3 - Suite

Apectodinium hyperacanthum Paléocène supérieur- Jan Du Chêne & Adediran 1985

Eocène inférieur
Apectodinium homomorphum Paléocène-Eocène Jan Du Chêne et al., 1978a ; Jan Du Chêne & Adediran, 1985 ; Oloto,
1992 ; Bankole et al., 2007 ; Lucas & Ishiekwene, 2010 ; Adeonipekum
et al., 2012
Lejeunecysta cf. beninensis Paléocène-Miocène Bankole et al., 2007 ; Digbehi et al., 2012
Lejeunecysta hyalina Maestrichtien- au- Oloto, 1989 ; Slimani et al., 2010
delà du Danien
Phelodinium cf. magnificum Paléocène-Yprésien Jan Du Chêne & Adediran, 1985 ; Bankole et al., 2007
Glaphyrocysta ordinata Maestrichtien Oloto, 1992 ; Oboh-Ikuenobe et al., 1998 ; Slimani et al., 2010
supérieur-Eocène
Areoligera coronata Campanien Oboh-Ikuenobe et al., 1998 ; Masure et al., 1998 Atta-Peters & Salami,
supérieur-au de la du 2004a
Danien
Eocladopyxis peniculata Thanetien-Yprésien Jan Du Chêne & Adediran, 1985
Wilsonidium nigeriaense Thanetien-Yprésien Jan Du Chêne & Adediran, 1985
Senegalinium orei Paléocène-Yprésien Jan Du Chêne & Adediran, 1985 ; Bankole et al., 2007
Apectodinium sp. Thanetien-Eocène Bankole et al., 2007 ; Lucas & Ishiekwene, 2010a, Adeonipekum et al.,
2012
Fibrocysta vectensis Danien-Eocène Oboh-Ikuenobe et al., 1998 ; Oloto, 1992
Kallosphaeridium sp. Paléocène inférieur Bankole et al., 2007
Kallosphaeridium yorubaense Danien-Yprésien Jan Du Chêne & Adediran, 1985 ; Masure et al., 1998 ; Slimani et al.,
2010 ; Digbehi et al., 2011
Adnatosphaeridium Maestrichtien- Masure et al., 1998 ; Atta-Peters & Salami, 2004a ; Jan Du Chêne &
multispinosum Yprésien Adediran, 2005 ; Atta-Peters & Salami, 2006 ; Bankole et al.
2007 Digbehi et al., 2011
Homotryblium tenuispinosum Paléocène-Eocène Bankole et al., 2007 ; Digbehi et al., 2011
Polysphaeridium subtile Eocène Oloto, 1992 ; Bankole et al., 2007
Wetzeliella sp. Eocène Oloto, 1992
Hystrichosphaeridium Eocène Jan Du Chêne et al., 1978a
tubiferum

3.1.2. Inventaire des spores et pollens

Les palynomorphes terrestres en l’occurrence les spores et pollens, enregistrés dans

les six puits de la Formation de Nkapa sont répertoriés dans le tableau 4. Les spores
trouvées dans les sédiments de la Formation de Nkapa sont des spores de ptéridophytes
monolètes et surtout trilètes. Les grains de pollens concernent essentiellement des
angiospermes et minoritairement des gymnospermes. 93 espèces sporopolliniques
déterminées ont été recensées dans la Formation de Nkapa. Parmi ces espèces, 13 nouvelles
espèces et un nouveau genre ont été mis en évidence. Un nouveau genre a été défini dans ce
travail. Deux nouvelles sous-espèces à savoir ont aussi été définies. Plusieurs genres sont
restés en nomenclature ouverte.
En dehors de ces nouvelles espèces, les autres espèces déjà connues en Afrique, en
Amérique du Sud et même en Inde sont repris dans le tableau 5 à titre indicatif.

37
 Tableau 4- Relevé des taxons sporopolliniques inventoriés dans les six puits
Taxons Pungo Nord Matanda Mamiwater Yatou Moulongo Ngata
Camarazonosporites sp. × × × × ×
Cicatricososporites eocenicus × ×
Cyathidites congoensis × × × ×
Cyathidites sp. × × × × ×
Cyathidites minor × × ×
Deltoidospora minor × × ×
Dictyophillidites harrisi × ×
Foveotriletes margaritae × × × ×
Foveotriletes sp. × × ×
Leiotriletes sp. × × × × × ×
Polypodiaceoisporites simplex × × × ×
Polypodiaceoisporites sp. × × × ×
Psilatriletes martinensis × × × × × ×
Psilatriletes sp. × × × × × ×
Triletes sp. × × × × × ×
Laevigatosporites sp. × × × × × ×
Verrucatosporites favus × × ×
Verrucatosporites sp. × × × × × ×
Verrucatosporites usmensis × ×
Pityosporites sp. × × ×
Echimonocolpites protofranciscoi × × × × ×
Echimonocolpites rarispinosus × × × × × ×
Echimonocolpites sp. × ×
Longapertites sp. × × × × × ×
Longapertites marginatus × × × ×
Longapertites vaneendenburgi × × ×
Mauritiidites crassiexinus × × × × ×
Mauritiidites franciscoi var franciscoi × × × ×
Mauritiidites minimus × × × ×
Mauritiidites sp. × × ×
Proxapertites operculatus × × × × × ×
Proxapertites cursus × × × × × ×
Proxapertites psilatus ×
Inaperturopollenites sp. × ×
Racemonocolpites sp. × × × ×
Racemonocolpites facilis × ×
Racemonocolpites racematus × × × ×
Retimococolpites longicolpatus × × ×
Retimonocolpites tertiarus × × × ×
Retimonocolpites irregularis × × × × ×
Retimonocolpites sp. × × × × × ×
Spinizonocolpites baculatus × × × × ×
Spinizonocolpites echinatus × × × × ×
Spinizonocolpites sp. ×
Monocolpopollenites sp. × × × × × ×
Monocolpites marginatus × × × × ×
Psilamonocolpites medius × × × × × ×
Praedopollis sp. ×
Retidiporites magdalenensis × × ×
Retidiporites sp. × ×
Auriculopollenites simplex × ×
Corsinipollenites sp. × × ×
Concavisubtriporites nkapaensis ×
Cricotriporites guianensis × × × × × ×
Cricotriporites macroporus × × × ×
Echitriporites trianguliformis × × × × ×
Echitriporites variabilis × × ×
Echitriporites sp. × × × × ×
Momipites eoafricanus × × × × ×
Proteacidites pseudocooksonii × × × × × ×
Proteacidites miniporatus ×
Protéacidites dehanii × ×
Proteacidites sp. × × ×
Scabratriporites annellus × × × × ×
Bacutriporites orluensis ×
Pediculisporis reticularis × ×
Psilatriporites doualaensis × × × × ×

38
Psilatriporites magnotriangulus × ×
Tableau 4- Suite 1

Psilatriporites sp. 1 × × × × ×
Psilatriporites sp. 2 × × ×
Psilatriporites sp. 3 × × × × ×
Psilatriporites sp. 4 × ×
Psilatriporites sp. 5 × × ×
Psilatrioprites sp. 6 × ×
Anacolosidites cf. luteoides ×
Echiperiporites sp. × ×
Retitriporites sp. × × ×
Scabratriporites sp. × × × × ×
Triorites sp. × × × × × ×
Aquilapollenites sp. × × ×
Ulmipollenites undulosus × × × × ×
Psilastephanoporites oculiporus ×
Psilastephanoporites sp. 1 × × ×
Psilastephanoporites sp. 2 ×
Retistephanoporites minutiporus ×
Retitriporites spissoexinus ×
Retitriporites boltenhagenii × ×
Triatriopollenites sp. 1 × × × × ×
Triatriopollenites sp. 2 × × × ×
Triatriopollenites sp. 3 × × ×
Triatriopollenites sp. 4 × × ×
Triatriopollenites sp. 5 ×
Brevitricolporites echinus × ×
Clavatricolpites densiclavatus × × × × ×
Crototricolpites densus × × × ×
Crototricolpites cf. protoannemariae × × × × × ×
Crototricolpites protoannemariae × × × × ×
Pslilabrevitricolpites sp. 1 × × ×
Psilabrevitricolpites sp. 2 × × × ×
Psilabrevitricolpites sp. 3 ×
Psilatricolpites sp. 1 × × × × ×
Psilatricolpites sp. 2 × × × × × ×
Psilatricolpites sp. 3 × × × × × ×
Psilatricolpites sp. 4 × × × × ×
Psilatricolpites sp. 5 ×
Retibrevitricolpites triangulatus × ×
Retitrescolpites baculatus × × × ×
Retitricolpites sp. 1 × × × × × ×
Retitricolpites cf. retiaphelis × × ×
Retitricolpites clarensis × × × × × ×
Retitricolpites simplex × × × ×
Retitricolpites sp. 2 × × × × ×
Retitricolpites sp. 3 × × × × ×
Retitricolpites sp. 4 × × × × × ×
Spirosyncolpites spiralis × ×
Retistephanocolpites williamsi × × × × × ×
Bombacacidites cf. annae × × ×
Bombacacidites sp. 1 × × × × ×
Bombacacidites sp. 2 × ×
Bombacacidites sp. 3 × ×
Bombacacidites sp. 5 ×
Bombacacidites sp. 4 ×
Bombacacidites ngosii ×
Bombacacidites sp. 6 × ×
Brevitricolporites eomolinae × × × × × ×
Clavatricolporites leticiae × × × × × ×
Clavatricolporites cf. leticiae × × × ×
Clavatricolporites sp. × × ×
Colombipollis tropicalis ×
Lanagiopollis crassa × ×
Margocolporites sp. × × × ×
Margocolporites vanwijhei × × ×
Psilabrevitricolporites sp. × × × ×
Psilatricolporites operculatus × × ×
Psilatricolporites crassus × × × × × ×
Myrtacidites psilatus × ×

39
Psilatricolporites sp. 11 × × ×
Tableau 4- Suite 2

Psilatricolporites sp. 7 × ×
Psilatricolporites sp. 1 × × ×
Psilatricolporites sp. 2 ×
Psilatricolporites sp. 5 ×
Psilatricolporites sp. 6 × × × × ×
Psilatricolporites sp. 8 × × × × × ×
Psilatricolporites sp. 9 ×
Psilatricolporites sp. 4 ×
Psilatricolporites sp. 3 × × × × ×
Psilatricolporites sp. 10 × × × × × ×
Siltaria mariposa × ×
Striacolporites striatus × × ×
Retibrevitricolporites protrudens × × × ×
Retibrevitricolporites sp. ×
Retitricolporites crassicostatus × × × ×
Retitricolporites crassicostatus major ×
Retitricolporites « poricostatus »
Retitricolporites cf. hispidus × × ×
Retitricolporites irregularis × × × ×
Retitricolporites sp. 1 ×
Retitricolporites bessongii × × × ×
Retitricolporites sp. 2 × × ×
Retitricolporites sp. 3 ×
Retitricolporites sp. 4 ×
Retitricolporites sp. 5 × ×
Retitricolporites sp. 6 (1) × ×
Retitricolporites sp. 6 (2) × × × × ×
Retitricolporites sp. 7 × ×
Retitricolporites sp. 8 × × × × ×
Retitricolporites sp. 9 ×
Retitricolporites sp. 10 × × × ×
Retitricolporites sp. 11 × × × × ×
Ilexpollenites sp. × × × ×
Retitricolporites « venzuelensis » ×
Striatopollis bellus × × × × × ×
Striatopollis sp. × × × ×
Striatricolporites pimulis × × × × ×
Striatricolporites fragilis × × ×
Striatricolporites sp. × × ×
Tricolporites microrugulatus × ×
Psilastephanocolporites fissilis × × ×
Adenantheridites sp. ×
Tetracolporites pachyexinatus × × ×
Tetracolporites quadratus × × × × × ×
Psilastephanocolporites scabratus × × × × × ×
Psilastephanocolporites sp. 2 × × × × × ×
Psilastephanocolporites sp. 1 × × × ×
Psilastephanocolporites salardiae × ×
Retistephanocolporites sp. 5 × ×
Retistephanocolporites sp. 1 × × ×
Retistephanocolporites sp. 2 ×
Retistephanocolporites sp. 3 ×
Retistephanocolporites sp. 4 × × ×
Syncolporites lisamae × × × ×
Syncolporites marginatus × × × × ×
Syncolporites cf. marginatus ×
Syncolporites poricostatus × × ×
Syncolporites doualaensis ×
Cupanieidites reticularis major × × ×
Syncolporites sp. 1 × × × × ×
Syncolporites sp. 2 × × × × ×
Syncolporites sp. 3 × ×
Syncolporites sp. 4 × × ×
Syncolporites sp. 5 × × × × × ×
Syncolporites sp. 6 ×
Syncolporites sp. 7 × × ×
Syncolporites sp. 8 × × × ×
Ephedripites sp. × × × ×

40
Ephedripites vanegensis × × ×
Tableau 5- Distribution stratigraphique en Afrique de l’Ouest, en Amérique du Sud et en
Asie des taxons sporopolliniques significatifs.
Taxons Age Auteurs
Cyathidites congoensis Paléocène-Miocène Eisawi & Schrank, 2008
Foveotriletes margaritae Maestrichtien-Paléocène-Eocène Germeraad et al., 1968 ; Salard-
inferieur ? Cheboldaeff, 1979 ; Bio-Lokoto et al.,
1998 ; Rull, 1999 ; Helenes & Cabrera,
2003 ; Atta-Peters & Salami, 2004b
;Chiaghanam et al., 2012
Verrucatosporites usmensis Maestrichtien - Miocène inferieur Salard-cheboldaeff, 1979 ; Atta-Peters &
Salami, 2004b ; Eisawi & Schrank, 2008
Echimonocolpites rarispinosus Paléocène-Eocène Sah & Dutta, 1966 ; Salard-Cheboldaeff,
1978 ; Srivastava & Binda, 1991 ; Bio-
Lokoto & al., 1998 ; Stead & Awad, 2005
Longapertites marginatus Campanien- Eocène moyen Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ; Salard,
1990 ; Bio-Lokoto et al.,1998 ; Atta-Peters
& Salami, 2004b ; Chiaghanam et al.,2012
Longapertites vaneendenburgi Maestrichtien-Eocène Germeraad et al., 1968 ; Salard-
Cheboldaeff, 1990 ; Srivastava & Binda,
1991 ; Rull, 1997 ; Bio-lokoto, 1998 ;
Stead & Awad, 2005 ;
Mauritiidites crassiexinus Paléocène supérieur- Eocène Jan Du Chêne, 1978 ; Stead & Awad, 2005
Proxapertites operculatus Maestrichtien- Eocène Van Hoekeng-Klinkenberg, 1966 ;
Germeraad et al., 1968 ; Salard-
Cheboldaeff, 1979 ; Rull, 1999 ; Atta-
Peters & Salami, 2004b ; Stead & Awad,
2005 ; Eisawi & Schrank, 2009 ;
Chiaghanam et al., 2012
Proxapertites cursus Maestrichtien-Eocène supérieur Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ;
Germeraad et al., 1968 ; Salard-1978 ;
Rull, 1997 ; Atta-Peters & Salami, 2004b
Racemonocolpites facilis Paléocène-Oligocène Gonzalez, 1967 ; Salard-Cheboldaeff, 1979
; Srivastava & Binda, 1991 ; Stead &
Awad, 2005
Racemonocolpites racematus Maestrichtien-Oligocène Van Der Hammen, 1954 ; Gonzalez, 1967 ;
Salard-Cheboldaeff, 1979 ; Srivastava &
Binda, 1991 ; Stead & Awad, 2005 ;
Jaramillo et al., 2007
Retimonocolpites irregularis Maestrichtien- Eocène supérieur-Miocène Salard, 1979 ; Srivastava & Binda, 1991 ;
inferieur El Beialy, 1998 ; Eisawi & Schrank, 2008
Spinizonocolpites baculatus Crétacé supérieur-Eocène moyen Salard, 1979 ; Rull, 1999 ; Atta-Peters &
Salami, 2004b ; Chiaghanam et al., 2012
Spinizonocolpites echinatus Campanien- Eocène supérieur Sole De Porta, 1961 ; Germeraad et al.
1968 ; Salard, 1979 ; Rull, 1997, 1999 ;
Atta-Peters & Salami, 2004b
Monocolpites marginatus Campanien-Eocène Adegoke et al. 1978 ; Jan Du Chêne &
Salami, 1978 ; Lawal & Moullade, 1986 ;
Salard, 1990 ; Awad, 1994 ; Edet &
Nyong, 1994 ; Eisawi & Schrank, 2009 ;
Ogala et al., 2009
Psilamonocolpites medius Crétacé supérieur-Oligocène inferieur Salard-Cheboldaeff, 1979 ; Rull, 1997,
1999 ; Bayona et al., 2004
Retidiporites magdalenensis Maestrichtien- Eocène moyen Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ;
Germeraad et al., 1968 ; Rull, 1999 ;
Awad, 1994 ; Eisawi & Schrank, 2008
Cricotriporites guianensis Paléocène-Eocène Leidelmeyer, 1966 ; Regali et al.1974 ;
Pardo-Trujillo et al. 2003
Echitriporites trianguliformis Campanien-Eocène supérieur Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ; Regali et
al., 1974 ; Germeraad et al., 1968 ;
Srivastava & Binda, 1991 ; Rull, 1997,
1999 ; Atta-Peters & Salami, 2004b
Momipites africanus Eocène Van Hoeken Klinkenberg, 1966 ; Helenes
& Cabrera, 2003
Proteacidites miniporatus Maestrichtien-Paléocène Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ; Bio-
lokoto et al. , 1998 ; Chiaghanam et al. ,
2012
Proteacidites dehanii Maestrichtien- Paléocène Germeraad et al., 1968 ; Rull, 1997 ; Bio-
Lokoto et al., 1998 ; Chiaghanam et al.,
2012.
Scabratriporites annellus Maestrichtien-Paléocène moyen Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ; Salard-
Cheboldaeff, 1979 ; Bio-Lokoto et al.,

41
 1998
Pediculisporis reticularis Crétacé Belsky et al., 1965 ; Salard, 1990
Tableau 5- Suite

Anacolosidites cf. luteoides Danien-Oligocène Germeraad et al., 1968 ; Salard-

Cheboldaeff, 1979 ; Rull, 1997
Ulmipollenites undulosus Crétacé supérieur-Miocène inferieur Salard-Cheboldaeff, 1979
Retitriporites boltenhagenii Miocène inferieur Salard-Cheboldaeff, 1979
Clavatricolpites densiclavatus Eocène moyen Pardo-Trujillo et al. 2003
Crototricolpites densus Eocène inferieur miocène inferieur Salard-Cheboldaeff, 1979 ; Eisawi &
Schrank, 2008 ; Digbehi et al., 2012 ;
Crototricolpites protoannemariae Thanétien-Lutétien Jaramillo et al., 2011
Retibrevitricolpites triangulatus Paléocène supérieur- Eocène Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ;
Germeraad et al., 1968 ; Salard-
Cheboldaeff, 1979 ; Srivastava & Binda,
1991 ; Rull, 1999 ; Pardo-Trujillo et al.,
2003
Spirosyncolpites spiralis Eocène inferieur- Miocène inferieur Salard-Cheboldaeff 1979 ; Pardo-Trujillo
et al., 2003 ; Digbehi et al., 2012
Retitricolpites clarensis Campanien-Eocène Gonzalez, 1967 ; Salard-Cheboldaeff, 1979
; Salard, 1990 ; Awad, 1994 ; Bio-Lokoto
et al., 1998 ; Eisawi & Schrank, 2009
Retitricolpites simplex Yprésien supérieur- Eocène supérieur Rull, 1997 ; Pardo-Trujillo et al., 2003
Retistephanocolpites williamsi Maestrichtien-Eocène moyen Germeraad et al., 1968 ; Bio-Lokoto et al.,
1998 ; Atta-Peters & Salami, 2004b ;
Eisawi & Schrank, 2008
Bombacacidites cf. annae Yprésien inférieur-Eocène supérieur Salard, 1979 ; Jaramillo et al., 2011
Clavatricolporites leticiae Paléocène supérieur- Eocène supérieur Rull, 1997 ; 1999
Colombipollis tropicalis Paléocène Pardo-Trujillo et al. 2003 ; Jaramillo et al.,
2011
Lanagiopollis crassa Paléocène supérieur-Eocène Germeraad et al., 1968 ; Pardo-Trujillo et
al., 2003
Margocolporites vanwijhei Yprésien supérieur- Pléistocène Germeraad et al., 1968 ; Regali et al., 1974
; Rull, 1997
Psilatricolporites operculatus Eocène inférieur-Pléistocène Germeraad et al., 1968 ; Salard-
Cheboldaeff, 1979 ; Rull, 1997 ; Pardo-
Trujillo et al., 2003
Psilatricolporites crassus Fini Paléocène- Pléistocène Germeraad et al., 1968 ; Salard-
Cheboldaeff, 1979 ; Rull, 1999
Myrtacidites psilatus Crétacé Belsky et al. 1965 ; Salard, 1990
Retibrevitricolporites Eocène-Oligocène Salard- Cheboldaeff, 1990 ; Stead & Awad,
protrudens/obodoensis 2005 ; Eisawi & Schrank, 2008
Retitricolporites crassicostatus Maestrichtien-Paléocène Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ; Bio-
Lokoto et al., 1998
Retitricolporites cf. hispidus Maestrichtien ? Yprésien-Bartonien Rull, 1997, 1999 ; Eisawi & Schrank, 2008
Retitricolporites irregularis Paléocène supérieur- Pléistocène Germeraad et al., 1968 ; Salard-
Cheboldaeff, 1979 ; Rull, 1999 ; Atta-
Peters & Salami, 2004b
Striatopollis bellus Paléocène supérieur-Miocène inferieur Schuler & Doubinger, 1970 ; Regali et al,
1974 ; Salard-Cheboldaeff, 1978 ; Bio-
Lokoto et al., 1998
Striatricolporites pimulis Maestrichtien-Paléocène Leidelmeyer, 1966 ; Van Hoeken-
Klinkenberg, 1966
Striatricolporites fragilis Eocène moyen-Miocène inferieur Salard-Cheboldaeff, 1979
Psilastephanocolporites fissilis Eocène-Miocène Leidelmeyer, 1966 ; Regali et al., 1974
Psilastephanocolporites scabratus Oligocène-Miocène Salard, 1978
Syncolporites lisamae Maestrichtien-Eocène Srivastava & Binda, 1991 ; Rull, 1999 ;
Jaramillo & Dilcher, 2001
Syncolporites marginatus Maestrichtien supérieur-eocène moyen Edet & Nyong, 1994 ; Eisawi & Schrank,
2008 ; Jaramillo et al, 2009 ; Chiaghanam
et al., 2012
Syncolporites poricostatus Eocène inferieur-Oligocène Van Hoeken-Klinkenberg, 1966 ; Salard-
Cheboldaeff, 1979 ; Srivastava & Binda,
1991
Cupanieidites reticularis Crétacé Belsky et al., 1965 ; Salard, 1990
Ephedripites vanegensis Paléocène Rull, 1997, 1999 ; Pardo-Trujillo et al.,
2003

42
CHAPITRE 4- CLASSIFICATION DES PALYNOMORPHES
DE LA FORMATION DE NKAPA

Dans le présent travail, la classification des dinoflagellés est basée sur celle mise au
point par FENSOME et al. (1993). Les genres et espèces sont organisés par ordre
alphabétique au sein des familles ou des sous-familles.
La classification des spores et pollens est celle basée sur la classification artificielle
de IVERSEN & TROELS-SMITH 1950 ; les genres et espèces sont organisés par ordre
alphabétique dans chaque classe.

4.1. CLASSIFICATION DES DINOFLAGELLÉS

La classification des dinoflagellés rencontrés dans la Formation de Nkapa est basée

sur celle de Fensome et al. (1993) illustrée dans le tableau 6. Ainsi, tous les dinokystes
présents dans les sédiments analysés de la Formation de Nkapa dans le sous-bassin de
Douala appartiennent à la classe des Dinophyceae, à la sous-classe des Peridiniphycidae,
aux ordres des Gonyaulacales et des Peridiniales et aux sous-ordres des Peridiniineae,
Gonyaulacineae, Goniodomineae (Tableau 6). Le sous-ordre des Peridiniineae comprend
deux familles à savoir Peridiniaceae et Protoperidiniaceae. Le sous-ordre des
Gonyaulacineae comprend aussi deux familles à savoir Gonyaulacaceae et Areoligeraceae.
Enfin le sous-ordre des Goniodomineae comprend la famille des Goniodomaceae. En
dehors de la famille des Areoligeraceae, toutes les autres familles comprennent des sous-
familles listées ci-dessous. Au total 6 familles et 7 sous-familles (Tableau 6) sont mises en
évidence. Une brève description de certaines espèces reprises sur les planches est inclue
dans cette classification.

DOMAINE : EUKARYA
REGNE : CHROMALVEOLATA
DIVISION : ALVEOLATA
EMBRANCHEMENT : DINOFLAGELLATA (Bűtschli, 1885) Fensome et al., 1993
SOUS EMBRANCHEMENT : DINOKARYOTA Fensome et al., 1993
CLASSE DINOPHYCEAE Pascher 1914.
SOUS CLASSE PERIDINIPHYCIDAE Fensome et al. 1993
ORDRE GONYAULACALES Taylor 1980
SOUS ORDRE GONYAULACINEAE
43
 SOUS ORDRE GONIODOMINEAE
ORDRE PERIDINIALES Haeckel 1894
SOUS ORDRE PERIDINIINEAE

Famille PERIDINIACEAE

Sous famille Deflandreoideae

Genre Andalusiella Riegel 1974

Andalusiella gabonensis (Stover & Evitt) Wrenn & Hart 1988

Planche 1 fig.1
Description : Andalusiella gabonensis : forme bicavate de contour losangique ;
cingulumcirculaire divisant le kyste deux parties inégales.
Dimensions : corps du kyste (81 × 46 µm) ; deux cornes apicale et antapicales (37 µm× 41
µm).
Andalusiella sp.

Genre Cerodinium Vozzhennikova 1963

Cerodinium boloniense (Riegel 1974) Lentin & Williams 1989

Planche 2 fig. 9
Description : kyste bicavate de forme pentagonale aux côtés courbes ; cornes antapicales et
apicale bien développées et subsymétriques ; cingulum net et circulaire.
Dimensions : corps central (58 × 64 µm) ; corne apicale (16 µm) ; cornes antapicales (22
µm × 21 µm) ; cingulum (8 µm) ; épithèque (45 µm) ; hypothèque (43,21 µm).

Cerodinium diebelii (Alberti 1959) Lentin & Williams 1987

Planche 2 fig. 10
Dimensions : corps du kyste (54 × 58 µm) ; corne apicale (48 µm) ; corne antapicale
visible (41 µm).

Cerodinium wardenense (Williams & Downie 1966c) Lentin & Williams 1987
Planche 2 fig. 6. 7. 8
Description : kyste de forme pentagonale présentant des ponctuations sur la coque ; corne
apicale à extrémité bifide et deux cornes antapicales à extrémités apparemment
acuminées ; cingulum net et arrondi ; archéopyle triangulaire aux angles arrondis
avec la base du triangle fourchu ou convexe.
Dimensions : corps central (47-61 × 48-78 µm) ; corne apicale (14-26 µm) ; cornes
antapicales (19-24 × 14-23 µm) ; cingulum (5-9 µm) ; épithèque (42-51 µm) ;
hypothèque (34-40 µm).
Cerodinium sp.

44
Genre Deflandrea Eisenack 1938b

Deflandrea denticulata Alberti 1959

Planche 2 fig. 4. 5
Description : kyste proximate de forme pentagonale pourvu d’excroissances en forme
d’épines recouvrant toute la coque ; corne apicale plus courte que les deux cornes
antapicales ; épithèque plus long que l’hypothèque ; cingulum circulaire bien
individualisé ; archéopyle large de forme triangulaire à angle arrondis.
Dimensions : corps central (59-74× 53-83 µm) ; corne apicale (8-25 µm) ; cornes
antapicales (13-33 × 10-26 µm) ; cingulum (7-10 µm) ; épithèque (40-61 µm)
hypothèque (32-60 µm) ; longueur maximale des épines 2 µm.

Deflandrea cf. oebisfeldensis Alberti 1959

Planche 1 fig. 11. 12
Description : kyste de forme pentagonale, finement ponctuée ; cornes antapicales et apicale
à forme conique, large à la base ; cingulum circulaire et bien tracé. Sur la fig. 12 pl.
1, l’archéopyle apparait apical.
Dimensions : corps central (84-104 × 107-110 µm) ; corne antapicale visible (50 µm) ;
corne apicale visible (33-45 µm) ; cingulum (8-10) ; épithèque (97µm) hypothèque
(60-79 µm).

Deflandrea sp.

Genre Palaeocystodinium Alberti 1961

Palaeocystodinium golzowense Alberti 1961

Planche 1 fig. 3. 4. 5
Description : kyste bicavate de forme losangique à contour ovale, pourvue de deux
prolongements assez longs ; corne apicale plus longue que la corne antapicale ;
archéopyle subtriangulaire.
Dimensions : Corps du kyste (80-93 × 42-53 µm) ; corne apicale (41-62 µm) ; corne
antapicale (36-55 µm)

Palaeocystodinium australinum (Cookson 1965) Lentin & Williams 1976

Planche 1 fig. 2
Description : kyste de forme ovale à contour régulier ; corps pourvu de deux
prolongements polaire longs en forme de corne à bout pointu ; archéopyle
précingulaire, de contour triangulaire à bord arrondis ; cingulum circulaire ;
épithèque plus court que l’hypothèque.
Dimensions : corps du kyste (72 × 103 µm) ; corne apicale (38 µm) ; corne antapicale (61
µm).

Palaeocystodinium sp.

45
Genre Senegalinium Jain & Millepied 1973

Senegalinium laevigatum (Malloy 1972) Bujack & Davies 1983

Planche 1 fig. 9
Description : contour de la thèque oval ou pentagonal ; corne apicale moins rapprochée du
corps de la thèque que les deux cornes antapicales
Dimensions : corps central (52 × 48 µm) ; corne apicale (11 µm) ; cornes antapicales (13 ×
10 µm).

Senegalinium orei (Jan Du Chêne & Adediran 1985) Stover & Williams 1987
Planche 1 fig. 6. 7. 8
Description : kyste de forme pentagonale ; corne apicale très courte ; deux cornes
antapicales inégales ; cingulum bien net divisant le kyste en deux parties inégales
l’épithèque étant plus long et l’hypothèque. L’archéopyle apparait triangulaire ou
polygonal.
Dimensions : corps du kyste (44-56 × 50-59 µm) ; corne apicale (6-13 µm) ; cornes
antapicales (36-55 µm) ; cingulum (5-7 µm) ; épithèque (38-43 µm) ; hypothèque
(29-39 µm).
Remarque : ce taxon est de très petite taille par rapport à l’holotype qui presque le double
de cette taille

Senegalinium sp.
Planche 1 fig.10
Description : kyste pentagonale pourvue d’une corne apicale courte et de deux cornes
antapicales très réduites en hauteur.
Dimensions : corps central (98 × 91 µm) ; corne apicale (10 µm) ; corne antapicale
visiblesur la figure (4 µm).

Sous famille Wetzelielloideae

Genre Apectodinium (Costa & Downie 1976) Lentin & Williams 1977b

Apectodinium homomorphum (Deflandre & Cookson 1955) Lentin & Williams 1977
Planche 3 fig. 13. 14. 15
Description : forme ovale à subpentagonale ; cornes apicales, latérales et antapicales moins
nettes ; processus non tabulaires, courbes et acuminés.
Dimensions : corps du kyste (64-84 × 66-76 µm) ; longueur maximale des processus (17
µm).

Apectodinium paniculatum Lentin & Williams 1977

Planche 3 fig. 1. 2. 3
Description : kyste de forme pentagonale ; deux cornes latérales bien marquées et deux
cornes antapicales asymétriques ; nombreux processus de forme sinusoïdale à
légèrement courbe.

46
Dimensions : corps central (76-91 × 86-94 µm) ; corne apicale (2-17 µm), cornes
antapicales (12-18 × 10-20 µm) ; cornes latérales (4-12 × 8-18 µm) ; longueur
maximale des processus (15 µm).

Apectodinium hyperacanthum (Cookson & Eisenack 1965) Lentin & Williams 1977
Planche 3 fig. 11
Description : kyste de forme pentagonale ; deux cornes latérales symétriques et deux
cornes antapicales disymétriques (une plus developpée).
Dimensions : corps central (69 × 73 µm) ; corne apicale (7 µm) ; cornes antapicales(23 ×
13 µm) ; cornes latérales (17 × 10 µm) ; longueur maximale des processus (11 µm).

Apectodinium parvum (Alberti 1961) Lentin and Williams 1977

Apectodinium quinquelatum (Williams & Downie 1966) Costa & Downie 1979
Planche 3 fig. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 12
Description : corps du kyste pentagonale aux cotés convexes et parfois droits ; cornes
antapicales et latérales très courts mais visibles ; processus courbes.
Dimensions : corps central (58-78 × 54-85 µm) ; corne apicale (3-10 µm) ; cornes
antapicales (3-15 × 2-15 µm) ; corne latérale (3-11 × 3-9 µm) ; longueur maximale
des processus (18 µm).

Apectodinium sp.
Planche 3 fig. 16. 17
Dimensions : corps du kyste (61-68 × 68-74 µm) ; corne apicale (6,51 µm) ; cornes
latérales (6-7 × 5-9 µm) ; longueur maximale des processus (13 µm).

Genre Wetzeliella Eisenack 1938b

Wetzeliella sp.
Planche 3 fig. 18
Description : kyste de forme pentagonale aux bords supérieurs droits et aux bords
inférieurs courbes ; une corne apicale, deux cornes latérales et deux cornes
antapicale dont l’une des cornes antapicales très courte mais visibles.
Dimensions : corps central (78 × 78 µm) ; corne apicale (11 µm) ; cornes antapicales (2 × 6
µm) ; cornes latérales (7 × 11 µm) ; longueur moyenne des processus (1 µm).

Genre Wilsonidium Lentin & Williams 1976

Wilsonidium nigeriaense Jan Du Chêne & Adediran 1985

Planche 2 fig. 15. 16
Description : kyste de forme pentagonale ; une corne apicale, deux cornes latérales et deux
cornes antapicales bien marqués ; surface du périphragme ornementée de rides
parasuturales soutenant de nombreux processus courts ; deux cornes antapicales et

47
 deux cornes latérales positionnées symétriquement ; l’une des cornes antapicales
parfois plus longue que l’autre.
Dimensions : corps du kyste (52-73 × 61 µm) ; corne apicale (12-21 µm) corne latérale
(12-14 × 11 µm) ; cornes antapicales (17-23 × 16 – 24 µm), longueur maximale des
processus (5,31 µm).

Famille PROTOPERIDINIACEAE

Sous famille Protoperidinioideae

Genre Lejeunecysta Artzner & Dörhöfer 1978

Lejeunecysta cf. beninensis Biffi & Grignani 1983

Planche 2 fig. 11
Description : corps du kyste pentagonale aux formes creuses ou courbes de l’extérieur ;
cingulum bien marqué ; cornes apicales et antapicales très courts mais distinguables
; deux cornes antapicales nettement séparées l’une de l’autre.
Dimensions : corps du kyste (77 × 90 µm) ; corne apicale (4 µm) ; cornes antapicales (8 ×
4 µm) ; cornes latérales (6 × 7 µm).

Lejeunecysta hyalina (Gerlach 1961) Artzner & Dörhöfer 1978. emend. Sarjeant 1984
Planche 2 fig. 13
Description : corps du kyste pentagonal aux cotés droits sauf dans la partie compressée
entre les deux cornes antapicales ; cingulum apparaissant comme divisé en deux
parties ; cornes presque confondues à l’apex pour la corne apicale et à l’antapex
pour les cornes antapicales.
Dimensions : corps du kyste (82 × 99 µm) ; cornes antapicales (2 × 1 µm).

Lejeunecysta cf. lata Biffi & Grignani 1983

Planche 2 fig.14
Description : kyste de forme pentagonale aux cotés courbes ; une corne apicale et deux
cornes antapicales très courtes ; cingulum circulaire ; archéopyle précingulaire,
pentagonal.
Dimensions : corps central (80 × 86 µm) ; corne apicale (3 µm) cornes antapicales (3 µm)

Lejeunecysta sp.
Planche 2 fig. 12
Description : corps du kyste pentagonal, de coté convexe entre les deux cornes antapicales
; cingulum apparaissant comme divisé en deux parties.
Dimensions : corps du kyste (83 × 90) ; corne apicale (1 µm) ; corne antapicale (1 × 2 µm).

Genre Phelodinium Stover & Evitt 1978

48
Phelodinium magnificum (Stanley 1965) Stover & Evitt 1978
Planche 1 fig. 13
Description : kyste subpentagonal aux bords équatoriaux arrondis ; épicone plus court que
l’hyposome ; corne apicale très courte ; deux cornes antapicales dont une bien
visible et développée ; cingulum très épais bien visible et circulaire.
Dimensions : corps du kyste (57 × 99 µm).

Phelodinium cf. magnificum (Stanley 1965) Stover & Evitt 1978

Planche 2 fig. 1. 2
Description : kyste proximate de forme pentagonale, à cinq côtés droits sauf la base entre
les deux cornes antapicales ; corne apicale très réduite et deux cornes antapicales
bien que très courtes s’individualisant nettement ; cingulum bien net et circulaire ;
archéopyle assez large, triangulaire et fourchu à la base du triangle. Les bords du
triangle de l’archéopyle sont arrondis.
Dimensions : corps du kyste (85-89 × 88-89 µm) ; cingulum (3-6 µm) ; corne apicale (5-6
µm) ; cornes antapicales (6-8 × 5-8 µm) ; épithèque (43 × 48 µm) ; hypothèque (50
× 51 µm).

Phelodinium sp. 1
Description : il s’agit du taxon Phelodinium mal preservé.

Phelodinium sp. 2
Planche 2 fig. 3
Dimensions : corps central (61 × 64 µm) ; cornes antapicales (9 × 6 µm) ; corne apicale (4
µm). Ce taxon diffère de Phelodinium magnificum et de Phelodinium cf.
magnificum par la forme du kyste.

SOUS ORDRE GONYAULACINEAE

Famille GONYAULACACEAE

Sous famille Cribroperidinioideae

Genre Cordosphaeridium Eisenack 1963b

Cordosphaeridium fibrospinosum Davey & Williams 1966b

Planche 4 fig. 23
Description : kyste de forme subsphérique ; processus denses, fibreux et courts, parfois
bifurqués ; processus nombreux à extrémités dentelées.
Dimensions : corps du kyste (56 × 51 µm) ; longueur maximale des processus (17 µm).

Cordosphaeridium cf. inodes (Klump 1953) Eisenack 1963

Cordosphaeridium cf. minimum (Morgenroth 1966) Benedek 1972

49
Planche 4 fig. 24
Description : kyste de forme ovoïde à subsphérique ; processus nombreux, très courts.
Dimensions : corps du kyste (30 × 30 µm) ; longueur des processus (4 µm).

Cordosphaeridium multispinosum Davey & Williams 1966

Cordosphaeridium sp.

Genre Diphyes Cookson 1965a

Diphyes colligerum (Deflandre & Cookson 1955) Cookson 1965

Diphyes spinulum (Drugg 1970) Stover & Evitt 1978

Planche 4 fig. 10
Description : kyste de forme subsphérique avec un grand appendice antapical ; appendices
nombreux et de forme acuminée.
Dimensions : corps du kyste (32 × 31 µm) ; longueur maximale des processus (11 µm).

Diphyes cf. spinulum (Drugg 1970) Stover & Evitt 1978.

Planche 4 fig. 11
Dimensions : corps du kyste (24 × 26 µm) ; longueur maximale des processus (maximum
11 µm)

Genre Hystrichokolpoma Klumpp 1953

Hystrichokolpoma rigaudiae Deflandre & Cookson 1955

Planche 4 fig. 9
Description : kyste de forme subsphérique à périphragme lisse sur lequel se développent
les processus tubulaires à extrémité denticulée.
Dimensions : (56 × 58 µm) ; longueur maximale des processus (17 µm).

Hystrichokolpoma unispinum (Williams & Downie 1966) Bujak 1980

Planche 4 fig. 27
Dimensions : diamètre du corps du kyste (35 µm) ; longueur maximale des processus (23
µm)

Hystrichokolpoma sp.

Genre Ifecysta Jan Du Chêne and Adediran 1985

Ifecysta pachyderma Jan Du Chêne and Adediran 1985

Genre Kallosphaeridium De Coninck 1969

50
Kallosphaeridium yorubaense Jan Du Chêne & Adediran 1985
Planche 5 fig. 15
Description : kyste de forme subsphérique, surface de la coque finement réticulée,
archéopyle apical, aux bords zigzagants et affecté par des fentes aux angles
rentrants, typique au genre.
Dimensions : corps du kyste (85 × 73 µm).

Kallosphaeridium sp.

Genre Kenleyia Cookson & Eisenack 1965b

Kenleyia pachycerata Cookson & Eisenack 1965

Kenleyia sp.
Planche 4 fig. 4
Description : kyste de forme ellipsoïdale au bord arrondi à l’équateur et en triangle aux
pôles ; appendices fibreux et courts.
Dimensions : corps du kyste (92 × 99 µm) longueur maximale des processus (9 µm).

Genre Lingulodinium Wall 1967

Lingulodinium machaerophorum (Deflandre & Cookson 1955) Wall 1967

Planche 4 fig. 5. 6
Description : fkyste de forme ovale et subsphérique ; nombreux processus en sinus ou
courbes à extrémité acuminée.
Dimensions : corps du kyste (54-60 × 41-58 µm) ; longueur maximale des processus (13
µm).

Lingulodinium sp.

Genre Millioudodinium Stover & Evitt 1978

Millioudodinium sp.
Planche 4 fig. 3
Dimensions : corps du kyste (59 × 45 µm) ; corne antapicale (8 µm).
Description : kyste de forme allongée ; corne apicale bien marquée mais courte ; cingulum
plus ou moins net divisant le kyste en deux parties inégales.

Genre Operculodinium Wall 1967

Operculodinium sp.
Planche 5 fig. 3
Description : kyste de forme subsphérique avec de nombreux processus de forme
sinusoïdale ou courbée, à extrémité acuminée.

51
Dimensions : corps du kyste (52 × 56 µm) ; longueur maximale des processus (9 µm).

Genre Thalassiphora Eisenack & Gocht 1960

Thalassiphora patula (Williams & Downie 1966) Stover & Evitt 1978
Planche 5 fig.16
Description : kyste avec corps central subsphérique à ellipsoïdal, doté d’une courte
projection antapicale ; larges processus fibreux unis distalement.
Dimensions : corps du kyste (79 × 70 µm) ; longueur maximale des processus (35 µm).
Thalassiphora sp.

Sous famille Gonyaulacoideae

Genre Achomosphaera Evitt 1963

Achomosphaera sp.
Planche 4 fig. 26
Description : forme subsphérique à ovoïde soutenant des processus en forme de branche
parfois soudés ; processus larges à la base partant du périphragme et ramifiés à
partir de la moitié ou des ¾ de leur hauteur, à extrémités bifurquées ; de forme
digitée dans leur partie distale.
Dimensions : corps du kyste (52 × 49 µm), longueur maximale des processus (17 µm).

Genre Hafniasphaera Hansen 1977

Hafniasphaera septata (Cookson & Eisenack 1967b) Hansen 1977

Planche 4 fig. 1. 2
Description : kyste proximochorate de forme ellipsoïdal à subsphérique à structure
granuleuse ; processus épais et ramifiés de forme conique ; extrémités des
processus digités ou ramifiés
Dimensions : corps du kyste (33-50 × 42-60 µm) ; longueur maximale des processus (14
µm)

Hafniasphaera sp.

Genre Spiniferites Mantell 1850

Spiniferites cf. ramosus (Ehrenberg 1838) Mantell 1854

Planche 4 fig. 7
Description : kyste proximochorate, de forme ellipsoïdale ou ovale sans protrusion apicale
; paroi de la surface intérieure et extérieure lisse ; des processus gonaux longs et
creux avec une extrémité distale bifurquée, parfois trifurquée.
Dimensions : corps du kyste (35 × 54 µm) ; longueur maximale des processus (13 µm).

52
Spiniferites sp.
Planche 4 fig. 8
Dimensions : corps du kyste (37 × 35 µm) ; longueur moyenne processus (20 µm).

Sous famille Incertaine

Genre Fibrocysta Stover & Evitt 1978

Fibrocysta vectensis (Eaton 1976) Stover & Evitt 1978

Planche 5 fig. 14
Dimensions : corps du kyste (73 × 63 µm) ; longueur maximale des processus (16 µm).
Description : forme ellipsoïdale ; processus (un apical et un antapical) divisés en deux ou
trois distalement.

Fibrocysta bipolaris (Cookson & Eisenack 1965) Stover & Evitt 1978

Fibrocysta sp.

Famille AREOLIGERACEAE

Genre Adnatosphaeridium Williams & Downie 1966c

Adnatosphaeridium multispinosum Williams & Downie 1966c

Planche 5 fig. 1. 2
Description : kyste skolochorate, de forme sphérique à subsphérique ; corps du kyste lisse
à finement granulé ; processus élancés sont souvent bifurqués, fourchus à mi-
distance et élargis à leur extrémité distale.
Dimensions : corps du kyste (45-52 × 52-57 µm) ; longueur moyenne des processus (21
µm)

Adnatosphaeridium sp.

Genre Areoligera Lejeune-Carpentier 1938a

Areoligera coronata (O. Wetzel 1933) Lejeune-Carpentier 1938

Planche 5 fig. 6. 8
Description : forme ellipsoïdale ; processus ramifiés formant des groupes de processus
bifurquant aux extrémités ou dans la moitié supérieure de leur hauteur.
Dimensions : corps du kyste (45-51 × 51-62 µm) ; longueur maximale des processus (19
µm).

Areoligera sp.
Planche 5 fig. 7
Dimensions : diameter du corps du kyste 45 µm

53
Genre Glaphyrocysta Stover & Evitt 1978

Glaphyrocysta ordinata (Williams & Downie 1966c) Stover & Evitt 1978
Planche 5 fig. 9. 10. 11. 12. 13
Description : kyste skolochorate de forme subsphérique à ellipsoïdale ; partie centrale du
corps dépourvue d’appendices ; appendices individualisés ou couplés à la base, et
ensuite distalement enchevêtrés, anastomosés et réunis au sommet (jusqu’au 2/3 de
leur hauteur environ à partir de la base) par une membrane plus ou moins ajourée, à
extrémités sont bifides ou acuminées.
Dimensions : corps du kyste (49-91 × 52-76 µm) ; longueur maximale des processus (25
µm).

Glaphyrocysta sp.

SOUS ORDRE GONIODOMINEAE

Famille GONIODOMACEAE

Sous famille Pyrodinioideae

Genre Eocladopyxis Morgenroth 1966a

Eocladopyxis peniculata Morgenroth 1966

Planche 4 fig. 25
Description : kyste de forme ovale avec de nombreux processus courts à moyennement
longs, acuminés.
Dimensions : corps du kyste (36 × 44 µm) ; longueur maximale des processus (7 µm).

Genre Homotryblium Davey & Williams 1966b

Homotryblium abbreviatum Eaton 1976

Planche 4 fig. 20
Description : kyste acavate de forme sphérique à subsphérique avec des processus
intratabulaires particulièrement courts, ne dépassant pas 1/3 du diamètre du corps.
Dimensions : corps du kyste (66 × 62 µm) ; longueur maximale des processus (14 µm).

Homotryblium cf. tenuispinosum Davey & Williams 1966

Planche 4 fig. 17. 18. 19
Description : forme sphérique à subsphérique ; processus tubulaires à extremité distale «
secate » à « aculeate ».
Dimensions : corps du kyste (55-63 × 51-62 µm) ; longueur maximale des processus (20
µm).

54
Homotryblium sp.

Genre Hystrichosphaeridium Deflandre 1937b

Hystrichosphaeridium tubiferum (Ehrenberg 1838) Deflandre 1937

Planche 4 fig. 21. 22
Description : forme ovoïde ou subsphérique ; appendices parfois approximativement de
même longueur et répartis sur la coque de façon aléotoire à extrémité émoussée ou
s’ouvrant par un orifice finement découpé ou évasé.
Dimensions : corps du kyste (50-57 × 47-54 µm) ; longueur maximale des processus
(20,31 µm).

Hystrichosphaeridium sp.

Genre Polysphaeridium Davey & Williams 1966b

Polysphaeridium subtile Davey & Williams 1966 emend. Bujack, Downie, Eaton &
Williams 1980
Planche 4 fig. 12
Description : forme ovoïde ou subsphérique ; nombreux processus fins, coniques
partiellement recourbés à extrémités arrondies et/ou acuminées.
Dimensions : corps du kyste (69 × 69 µm) ; longueur maximale des processus (11 µm).

Polysphaeridium sp.

Polysphaeridium zoharyi Rossignol 1962

Planche 4 fig. 14. 15. 16
Description : kyste de forme ovoïde ; surface du corps lisse à faiblement réticulée ;
processus de taille moyenne, à extrémité ouvertes pouvant être fusionnés à la base
ou bifurquer distalement.
Dimensions : corps du kyste (42-70 × 40-65 µm) ; longueur moyenne des processus (11
µm).

SOUS ORDRE INCERTAIN

Famille INCERTAINE

Genre Cleistosphaeridium Davey, Downie, Sarjeant and Williams 1966

Cleistosphaeridium sp.

Genre Dapsilidinium Bujak Downie Eaton and Williams 1980b

Dapsilidinium sp.

55
Planche 5 fig. 4. 5
Description : forme subsphérique ; nombreux appendices de forme conique à extrémité en
forme de chapeau.
Dimensions : corps du kyste (54 × 60 µm) ; longueur maximale des processus (17 µm).
CLASSE

CLASSE

ORDRE

SOUS ORDRE FAMILLE SOUS FAMILLE Genres Fossiles

SOUS

Cordosphaeridium,
Diphyes, Ifecysta,
Kallosphaeridium,
Kenleyia,
CRIBROPERIDINIOIDAE Millioudodinium,
Operculodinium
GONYAULACACEAE Hystrichokolpoma,
GONYAULACINEAE Lingulodinium,
GONYAULACALES

Thalassiphora
Achomosphaera,
GONYAULACOIDEAE Hafniasphaera,
Spiniferites,
INCERTAINE Fibrocysta
Areoligera,
PERIDINIPHYCIDAE

AREOLIGERACEAE Glaphyrocysta,
DINOPHYCEAE

Adnatosphaeridium

GONIODOMINEAE Eocladopyxis,
PYRODINIOIDEAE Homotryblium,
GONIODOMACEAE Hystrichosphaeridium,
Polysphaeridium
Cleistosphaeridium,
INCERTAIN INCERTAINE Dapsilidinium

Andalusiella,
Cerodinium,
DEFLANDREOIDEAE Deflandrea,
PERIDINIALES

Palaeocystodinium,
PERIDINIACEAE Senegalinium

PERIDINIINEAE Apectodinium,
WETZELIELLOIDEAE Wetzeliella,
Wilsonidium

PROTOPERIDINIACEAE PROTOPERIDINIOIDEAE Lejeunecysta,

Phelodinium

Tableau 6 : Classification, d’après FENSOME et al. (1993), des dinoflagellés trouvés dans
la Formation de Nkapa dans le sous-bassin de Douala (Cameroun).

56
4.2. CLASSIFICATION DES SPORES ET POLLENS

Les spores et grains de pollens sont repris dans des groupes morphologiques basés
sur les subdivisions en classes établies par IVERSEN ET TROELS-SMITH (1950).
Les genres et espèces sont organisés par ordre alphabétique dans chaque classe. Une
brève description de la plupart des spécimens figurés sur les planches a été faite.

Division I SPORITES H. Potonié 1893

Classe A Triletes (Reinsch 1881) Pot. & Kr. 1954

Genre Camarazonosporites (Pant ex Potonié 1956) Klaus 1960

Camarazonosporites sp.
Planche 6 fig. 2
Description : spore trilète à exine « hamulate » de 3-3,5 µm d’épaisseur. Marque de
déhiscence nette dont les branches n’atteignent pas le contour de la spore. N.B. :
Cette forme ressemble à celle qui se trouve sur lesPlanches des travaux de Pardo-
Trujillo, 2004 (pl.4.1-fig.19, 20) mais diffère par sa grande taille.
Dimensions : 50-55 µm
Affinités botaniques : Lycopodiaceae

Genre Cyathidites Couper 1953

Cyathidites minor Couper 1953

Planche 6 fig.12
Description : spore trilète à exine lisse (épaisseur : +/- 2 µm). Marque de déhiscence à
branches relativement courtes.
Dimensions : 43-45 µm
Affinités botaniques : Cyatheaceae, Dicksoniaceae ou autres Ptéridophytes (Couper, 1958 ;
Macphail, 1999).

Cyathidites congoensis Sah 1967

Planche 6 fig. 13
Description : spore trilète de forme triangulaire, aux sommets arrondis. Exine lisse
d'épaisseur variable : 1,5 à 2,5 µm. Marque trilète nette n’atteignant pas le bord de
la spore.
Dimensions : 40-45 µm

57
Affinités botaniques : Cyatheaceae ; Diksoniaceae

Genre Deltoidospora (Miner 1935) Potonié 1956

Deltoidospora minor (Couper) Pocock, 1970

Planche 6 fig. 10.11
Description : spore trilète à exine lisse, épaisse (2,5-3 µm). Marque de déhiscence nette à
branches longues.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Foveotriletes Van der Hammen 1954

Foveotriletes sp.
Planche 6 fig. 4
Description : spore trilète de contour triangulaire à sommets arrondis. Exine finement
fovéolée (+/- 1,5 µm) Marque trilète nette à branches droites atteignant le bord de la
spore.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Foveotriletes margaritae Germeraad, Hopping & Muller 1968

Planche 6 fig. 3
Description : spore trilète triangulaire convexe à sphérique. Exine fovéolée (2,5 µm) à
sculpture très marquée (2,5 µm). Marque trilète nette à longues branches.
Dimensions : 45-50 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Leiotriletes (Naumova 1937) Potonie & Krutzsch 1954

Leiotriletes sp.
Planche 6 fig. 1
Description : spore trilète à exine lisse (1-2 µm) aux branches de la marque de déhiscence
atteignant le bord de la spore.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : incertaines (Schizeaceae)

Genre Polypodiaceoisporites Potonié 1956

Polypodiaceoisporites simplex Sah 1967

Planche 6 fig. 5
Description : spore trilète zonale. Epaisseur de la zone : 3-6 µm. Ornementation du corps
central : face proximale verruqueuse ; face distale grossièrement rugulée.
Dimensions : 35-40 µm

58
Affinités botaniques : incertaines : divers genres de Pteridaceae ou de Cyatheaceae

Polypodiaceoisporites sp.
Planche 6 fig. 6
Description : spore trilète zonale. Epaisseur de la zone : 3-5 µm. Ornementation du corps
central : faces proximale et distale rugulées.
Dimensions : 40-45 µm
Affinités botaniques : incertaines : diversGenres de Pteridaceae et de Cyatheaceae

Genre Psilatriletes Van der Hammen 1954 ex Potonié 1956

Psilatriletes martinensis Sarmiento 1992

Planche 6 fig. 14
Description : spore trilete sub-circulaire. Marque trilète nette mais courte. Exine lisse (1,5
µm).
Dimensions : 45-50 µm
Affinités botaniques : incertaines (Schizeaceae)

Classe B Monoletes Ibrahim 1933

Genre Cicatricososporites Pflug & Thomson 1953

Cicatricososporites eocenicus (Selling 1944) Jansonius & Hills 1976

Planche 6 fig. 7
Description : spore simple de forme ovale, à ornementation en cicatrices (sillons
longitudinaux).
Dimensions : 50-55 µm
Affinités botaniques : inconnues.

Genre Verrucatosporites (Pflug) ex. Potonié 1956

Verrucatosporites sp.
Planche 6 fig. 8
Description : spore monolète à exine verruqueuse d’épaisseur 1,5-2 µm
Dimensions : 38 x 24 µm
Affinités botaniques : Polypodiaceae

Verrucatosporites usmensis (Van der Hammen 1956) Germeraad, Hopping & Muller 1968
Planche 6 fig. 9
Description : spore monolète à exine épaisse (2,5-3 µm), grossièrement verruqueuse
Dimensions : 53 x 40 µm
Affinités botaniques : Blechnaceae (Germeraad et al., 1968) ; Polypodiaceae (Jaramillo &
Dilcher, 2001).

59
Division II POLLENITES R. Potonié 1893

Classe Saccites Erdtman 1947

Genre Pityosporites Seward 1914

Pityosporites sp.
Planche 6 fig. 15
Description : pollen disaccate.Dimensions du corps central : 50 x 46 µm. Exine : 3,5-4 µm.
Dimensions des ballonnets : 55-52 x 32-30 µm.
Dimensions : 90 x 60 µm
Affinités botaniques : incertaines (Podocarpus ?)

Classe Inaperturatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Inaperturopollenites Pflug & Thomson 1953

Inaperturopollenites sp
Planche 7 fig. 13. 14
Description : pollen arrondi, sans aperture à exine réticulée (1,5-2 µm)
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

Classe Monocolpatae Iversen & Troels-Smith, 1950

Genre Echimonocolpites Van der Hammen & Garcia 1966

Echimonocolpites protofranciscoi Sarmiento 1992

Planche 6 fig. 22. 23
Description : pollen monocolpé de forme elliptique à exine échinée. Epines de 2-5 µm.
Longueur du colpe : 26-35 µm.
Dimensions : 40-30 x 30-25 µm
Affinités botaniques : indéterminées

Echimonocolpites rarispinosus (Sah & Dutta 1966) Salard-Cheboldaeff 1978

Planche 7 fig. 4
Description : pollen monocolpé à exine finement échinée (ornementation lâche). Epaisseur
de l’exine : 2,5-3 µm. Colpe long : 55 µm.
Dimensions : 60 x 40 µm
Affinités botaniques : Palmae (Lepidocaryoïdae)

60
Genre Longapertites Van Hoeken Klinkenberg 1964

Longapertites sp.
Planche 6 fig. 19
Description : pollen monocolpé ellipsoïdal à exine grossièrement réticulée. Colpe long : 55
µm
Dimensions : 60 x 35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Longapertites marginatus Van Hoeken Klinkenberg 1964

Planche 6 fig. 21
Description : pollen monocolpé de forme ellipsoïdale. Colpe long : 55 µm long. Exine
mince columellée à tectum perforé.
Dimensions : 60 x 32 µm
Affinités botaniques : inconnues

Longapertites vaneendenburgi Germeraad, Hopping & Muller 1968

Planche 6 fig. 20
Description : pollen monocolpé à exine mince infraréticulée. Colpe long de 60-65 µm
Dimensions : 70-65 x 60-50 µm
Affinités botaniques : probablement Palmae (Germeraad et al. 1968).

Genre Mauritiidites Van Hoenken Klinkengerg 1964

Mauritiidites crassiexinus Jan du Chêne, Onyike & Sowunmi 1978b

Planche 7 fig. 3
Description : pollen monocolpé à exine épaisse (5 µm), échinée (épines : +/- 4 µm), à
ornementation lâche.
Dimensions : 60 x 55 µm
Affinités botaniques : Palmae (Adegoke et al. 1978 ; Jaramillo & Dilcher 2001)

Mauritiidites franciscoi var fransiscoi (Van der Hammen 1956) Van Hoenken Klinkenberg
1964
Planche 7 fig. 1.2
Description : pollen monocolpé à exine échinée
Dimensions : 25-20 x 40-30 µm
Affinités botaniques : Palmae, cf. Mauritia (Germeraad et al. 1968)

Mauritiidites minimus sp. nov.

Planche 7 fig. 5

61
Etymologie : du latin « minimus » (très petit), en référence à la petite taille du grain de
pollen
Holotype : Yatou 1430 m, lame 67388, référence avec England Finder T 28-4 ; boite 234
Diagnose : pollen monocolpé isopolaire. Diamètre : 30-32 µm. Exine assez épaisse (3,5
µm) à sculpture échinée et endexine mince de +/- 0,5 µm. La hauteur des épines est
de 1-1,5 µm. L’espace entre les épines est en moyenne de 5 µm.
Dimensions : 30 x 32 µm
Comparaisons : cette espèce ressemble à Mauritiidites crassiexinus (Jan Du Chêne 1978 b),
mais le pollen diffère par sa petite taille.
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur
Affinités botaniques : Palmae

Genre Monocolpites Van der Hammen 1954

Monocolpites marginatus Van der Hammen 1954

Planche 6 fig. 16
Description : pollen monocolpé de forme elliptique. Exine lisse (1,5-2 µm). Colpe ouvert,
+/- de la longueur du pollen.
Dimensions : 30 x 25 µm
Affinités botaniques : Palmae

Genre Monocolpopollenites Pflug & Thomson 1953

Monocolpopollenites sp.
Planche 6 fig. 18
Description : pollen monocolpé elliptique. Exine lisse, mince. Colpe long et ouvert.
Dimensions : 40 x 25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Psilamonocolpites Van der Hammen & Garcia de Mutis 1965

Psilamonocolpites medius (Van der Hammen 1956) Van der Hammen & Garcia 1965
Planche 6 fig. 17
Description : pollen monocolpé elliptique. Exine mince (1µm) à aspect perforé
Dimensions : 55-50 x 35-30 µm
Affinités botaniques : Palmae

Genre Proxapertites Van der Hammen 1956

Proxapertites cursus Van Hoeken Klinkenberg 1966

Planche 7 fig. 11.12
Description : pollen monocolpé elliptique. Ectoaperture continue divisant le grain en 2
parties. Exine nettement réticulée de 2,5 µm d’épaisseur.
Dimensions : 50-45 x 35-30 µm

62
Affinités botaniques : Palmae

Proxapertites operculatus Van der Hammen 1956

Planche 7 fig. 6.7
Description : pollen monocolpé rond à légèrement ovale. Le colpe divise le grain en deux
parties inégales. Exine (2 µm) finement réticulée
Dimensions : 50-35 x 60-50 µm
Affinités botaniques : Palmae de plaine côtière (Jaramillo & Dilcher, 2001).

Proxapertites psilatus Sarmiento 1992

Planche 7. fig. 8.9.10
Description : pollen monocolpé de forme arrondie. Exine lisse assez épaisse (3 µm)
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : Palmae ?

Genre Racemonocolpites Gonzalez 1967

Racemonocolpites facilis Gonzalez 1967

Planche 6 fig. 29. 30
Description : pollen monocolpé, elliptique. Colpe net et parfois ouvert, plus ou moins égal à
la longueur du grain. Exine verruqueuse à sculpture très marquée.
Dimensions : 50-45 x 35-30 µm
Affinités botaniques : Palmae, type Iriartea (Muller, 1981).
Racemonocolpites racematus Gonzalez 1967

Genre Retimonocolpites Pierce 1961

Retimonocolpites irregularis Salard-Cheboldaeff 1978

Planche 6 fig. 24.25
Description : pollen monocolpé elliptique. Colpe de la longueur du grain. Exine (1,5 µm)
finement réticulée.
Dimensions : 45-40 x 35-25 µm
Affinités botaniques : cf. Palmae

Retimonocolpites longicolpatus Lorente 1986

Planche 6 fig. 26
Description : pollen monocolpé elliptique. Colpe de la longueur du grain. Exine réticulée
mince (0,5-1 µm)
Dimensions : 35 x 25 µm
Affinités botaniques : cf. Palmae

Retimonocolpites tertiarius Gonzalez 1967

Planche 6 fig. 28

63
Description : pollen monocolpé elliptique. Colpe ouvert, légèrement inférieur à la longueur
du grain. Exine (1-1,5 µm) réticulée à sculpture bien marquée.
Dimensions : 20 x 30 µm
Affinités botaniques : Palmae

Retimonocolpites sp.
Planche 6 fig. 27
Dimensions : 40 x 25 µm

Genre Spinizonocolpites Muller 1968

Spinizonocolpites baculatus Muller 1968

Planche 7 fig. 15
Description : pollen monocolpé elliptique. Exine tectée (+ /-2 µm) à épines allongées à
extrémités Arrondies (+/-5-6 µm).
Dimensions : 65-60 x 50-45 µm
Affinités botaniques : Nipa, palmier de mangroves et plaines côtières.

Spinizonocolpites echinatus Muller 1968

Planche 7 fig. 16
Description : pollen monocolpé arrondi. Exine tectée (+/- 2 µm) à épines acérées (+/- 5-6
µm)
Dimensions : 40-45 µm
Affinités botaniques : Nipa, palmier de mangroves (Germeraad et al. 1968) et de plaines
côtières (Jaramillo & Dilcher, 2001)

Classe Diporatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Retidiporites Varma & Rawat 1963

Retidiporites magdalenensis Van der Hammen & Garcia 1966

Planche 7 fig. 17.18.19.20
Description : pollen diporé (pores : 8-10 µm). Exine réticulée peu épaisse (1-1,5 µm)
Dimensions : 40-35 x 35-25 µm
Affinités botaniques : Proteaceae de plaine côtière (Germeraad et al. 1968 ; Jaramillo &
Dilcher, 2001).

Genre Pediculisporis Belsky, Boltenhagen & Potonié 1965

Pediculisporis reticularis Belsky, Boltenhagen & Potonié 1965
Planche 7 fig. 21.22.23

Description : pollen bilatéral, de forme subsphérique, globulaire, de contour circulaire ou

ovale pourvu d’une auricule ou de deux pédoncules situés aux extrémités du grand
axe ; exine fortement réticulée

64
Dimensions : 65-55 x 35-25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Classe Triporatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Bacutriporites Jan du Chêne Onyike & Sownmi 1978

Bacutriporites orluensis Jan du Chêne Onyike & Sownmi 1978b

Planche 7 fig. 32

Description : pollen triporé sub-arrondi. Pores ronds (+ /- 5 µm). Exine (1-1,5 µm) finement
baculée. N.B. : l’espèce semble différente de celle décrite par les auteurs de par sa
petite taille mais ressemble à celle trouvée par Eisawi & Schrank (2008) au Soudan.
Dimensions : 28-30 µm
Affinités botaniques : Bombacaceae ? (Utescher & Mosbrugger, 2007)

Genre Cricotriporites Leidelmeyer 1966

Cricotriporites guianensis Leidelmeyer 1966

Planche 7 fig. 24.25
Description : grain de pollen triporé subsphérique. Pores (2-2,5 µm) à contour épaissi.
Exine lisse, mince (+/- 1 µm)
Dimensions : 30 µm
Affinités botaniques : inconnues.

Cricotriporites macroporus Jaramillo & Dilcher 2001

Planche 7 fig. 26
Description : pollen triporé ellipsoïdal à subsphérique. Pores ronds (+/- 6 µm). Exine lisse,
mince (+/- 1 µm)
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Corsinipollenites Nakoman 1965

Corsinipollenites sp.
Description : pollen triporé à bord du pore épaissi. Exine scabre
Dimensions : 50 µm
Affinités botaniques : Oenotheraceae

Genre Echitriporites Van der hammen 1956 ex Van Hoeken Klinkenberg 1964

65
Echitriporites trianguliformis Van Hoeken Klinkenberg 1964
Planche 7 fig. 28.29.30.31
Description : pollen triporé triangulaire convexe. Pores (3-4 µm) entourés d’un léger
épaississement. Exine échinée. Longueur des épines : 1-1,5 µm.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : incertaines - Proteaceae ? (Germeraad et al., 1968)

Echitriporites variabilis Jaramillo & Dilcher 2001

Planche 7 fig. 27
Description : pollen triporé convexe. Exine échinée. Taille des épines : 2-2,5 µm
Dimensions : 33-36 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Momipites Woodhouse 1932

Momipites eoafricanus sp. nov.

Planche 8 fig. 7. 8
Etymologie : eo vient de premier ou ancien
Holotype :Planche 8 fig. 7 Moulongo 2350 m ; England Finder F40-2 ; numéro de la lame :
69814 ; boite 360. Fig. 8 Moulongo 2395 m ; England Finder : N34-3 ; boite 364 ;
numéro de la lame 69908
Diagnose : pollen triporé triangulaire convexe. Diamètre des pores : 3-3,5 µm. Exine lisse
de +/- 1-1,5 µm d’épaisseur.
Dimensions : 29-31 µm
Comparaisons avec Momipites africanus (Van Hoeken Klinkenberg, 1966) repris dans
Biolokoto et al., 1998. La taille de notre matériel est plus grande.
Répartition stratigraphique : Paléocène supérieur - Eocène inférieur
Affinités botaniques : Moraceae ?

Momipites africanus Van Hoeken Klinkenberg 1966

Planche 8 fig. 9
Description : pollen triporé triangulaire convexe. Pores de 3,5-4 µm de diamètre. Exine
lisse mince : 1-1,5 µm. N.B. Ce pollen ressemble à M. africanus (pl.2 fig. 24)
déterminé par Ajaegwu et al. (2012) mais est de plus grande taille.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : Moraceae

Genre Proteacidites Cookson 1950 ex Couper 1953

Proteacidites dehaani Germeraad Hopping & Muller 1968

Planche 8 fig. 3
Description : pollen triporé triangulaire. Exine (1,5-2 µm) verruqueuse (verrues : +/- 1 µm).
Pores larges (diamètre : 5-6 µm).
Dimensions : 25-30 µm

66
Affinités botaniques : incertaines - Proteaceae ?

Proteacidites miniporatus Van Hoeken Klinkenberg 1966

Planche 8 fig. 4
Description : pollen triporé triangulaire à côtés droits ou légèrement concaves. Pores étroits
(+/- 2µm). Exine mince (+/- 1 µm) et scabre.
Dimensions : 28-32 µm
Affinités botaniques : inconnues

Proteacidites pseudocooksonii sp. nov.

Planche 8 fig. 1. 2
Etymologie : vient du grec pseudês : « faux »
Holotype : Planche 8 fig. 1 Yatou 1450 m, lame 367389, référence England Finder S42-3 ;
boite 234.Planche 8 fig. 2 Mamiwater 840 m, lame : 67163, référence England
Finder O34-3, boite 225.
Diagnose : pollen triporé triangulaire à côtés droits ou légèrement convexes. Les sommets
du triangle sont tronqués par des apertures circulaires de 5-8 µm de diamètre. Exine
(1,5 µm) réticulée. N.B. la forme ressemble à l’espèce Proteacidites cf.
symphyonemoides décrite par Salard (1977) mais elle est plus petite de taille et
apparaît avant l’Oligocène.
Dimensions : 29-32 µm
Comparaisons : Proteacidites pseudocooksonii ressemble à Proteacidites cooksonii de
Salard - Cheboldaeff (1978) qui présente une exine réticulée plus épaisse et l’exine
a des strates de fines columelles perforées.
Affinités botaniques : inconnues
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur

Genre Psilatriporites (Van der Hammen) Mathur ex Hoorn 1993

Psilatriporites doualaensis sp. nov.

Planche 8 fig. 6
Etymologie : situation géographique du gisement
Holotype : Planche 8 fig. 6, Moulongo 2365 m, lame 69826, référence England Finder
G44-4, boite 361
Diagnose : pollen triporé arrondi. Exine scabre de 1-1,5 µm d’épaisseur. Pores ronds de
diamètre 4,5-5,5 µm à bords légèrement épaissis.
Dimensions : 45-50 µm
Comparaison : cette espèce semble ne pas correspondre avec celles duGenre à cause de sa
très grande taille.
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur
Affinités botaniques : inconnues

Psilatriporites magnotriangulus sp. nov.

Planche 8 fig. 30. 31

67
Etymologie : grande taille du pollen
Holotype :Planche 8 fig. 30 Ngata 1180 m, lame 69883, référence England Finder G36-1,
boite 361. Fig. 31 Ngata 980 m, lame 69662, England Finder U34-4, boite 351.
Diagnose : pollen triangulaire de grande taille, à bords droits. Exine scabre, peu épaisse
(1,5-2 µm). Pores étroits (+/- 3 µm) à annulus allongé (7-10 µm) évasé vers
l’intérieur.
Dimensions : 54-56 µm
Comparaisons : les caractéristiques de cette espèce ne semblent pas correspondre à celles
des autres espèces duGenre (Psilatriporites desilvae, Psilatriporites sarmientoi).
Les pores de Psilatriporites magnotriangulus de formes très caractéristiques
(allongés et évasés de l’intérieur) sont differents de ceux des specimens du genre.
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur
Affinités botaniques : inconnues

Psilatriporites sp. 1
Planche 8 fig. 10
Description : pollen triporé de forme arrondie à exine lisse (1,5-2,5 µm) épaissie au niveau
des pores. Diamètre des pores : 3-3,5 µm.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatriporites sp. 2
Planche 8 fig. 11
Description : pollen triporé rond. Exine mince (1-1,5 µm) finement granulée. Pores ronds
(2,5- 3 µm) à contour épaissi.
Dimensions : 32-36 µm
Affinités botaniques : Bombacaceae ?

Psilatriporites sp. 3
Planche 8 fig. 12
Description : pollen triporé rond. Exine lisse, épaisse (2,5-3 µm). Pores ronds, simples,
assez grands (4,4-5 µm).
Dimensions : 34-36 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatriporites sp. 4
Planche 8 fig. 13.14
Description : pollen triporé subsphérique, de petite taille. Pores (2 µm) au contour épaissi.
Exine lisse à scabre, mince (+/- 1 µm).
Dimensions : 20-25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatriporites sp. 5
Planche 8 fig. 15

68
Description : pollen triporé triangulaire, légèrement convexe. Exine lisse à scabre (1,5 µm),
épaissie au niveau des pores (2 µm)
Dimensions : 27-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatriporites sp. 6
Planche 8 fig. 16
Description : pollen triporé sphérique. Pores de 2-2,5 µm avec vestibulum. Exine lisse de
+/- 2,5 µm d’épaisseur
Dimensions : 30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Retitriporites Ramanujam 1966

Retitriporites boltenhagenii Salard-Cheboldaeff 1978

Planche 8 fig.18
Description : pollen triporé triangulaire fortement convexe. Exine réticulée de 1,5-2 µm
d’épaisseur. Pores de 2,5-3 µm de diamètre.
Dimensions : 35-38 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitriporites sp.
Planche 8 fig. 19
Description : pollen triporé subsphérique. Exine mince (1-1,5 µm), finement réticulée.
Pores circulaires de +/- 2 µm de diamètre.
Dimensions : 32-33 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitriporites spissoexinus sp. nov.

Planche 8 fig. 17
Etymologie : du latin « spissus » (épais), en référence au caractère épais de l’exine
Holotype :Planche 8 fig. 17, Ngata 1020 m, lame 69748, référence England Finder E26-1,
boite 354.
Diagnose : pollen triporé triangulaire. Exine épaisse (2,5-3 µm), grossièrement réticulée ;
endexine mince (0,5 µm). Grands pores de 4-5 µm de diamètre.
Dimensions : 30-33 µm
Comparaisons : notre matériel a une forme distincte de celle des mêmes genres et son exine
est plus épaisse que celle de Retitriporites boltenhagenii (SALARD, 1978).
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur
Affinités botaniques : inconnues

Genre Scabratriporites Van Hoeken Klinkenberg 1964

Scabratriporites annellus Van Hoeken Klinkenberg 1964

69
Planche 7 fig. 33 –Planche 8 fig. 5
Description : pollen triporé triangulaire légèrement convexe. Pores (4 µm) à contour
épaissi. Exine mince (+/- 1µm) finement granulée.
Dimensions : 30 µm
Affinités botaniques : Proteaceae

Scabratriporites sp.
Planche 7 fig. 34
Description : pollen triporé à bord légèrement convexe. Pores 8 µm de diamètre à contour
épaissi.
Exine mince (+/- 1 µm).
Dimensions : 40 µm

Genre Triatriopollenites Pflug 1953

Triatriopollenites sp. 1.
Planche 8 fig. 20
Description : pollen triangulaire à 3 pores avec atrium. Exine lisse à scabre, mince (1-1,5
µm). Diamètre des pores : 2-2,5 µm.
Dimensions : 23-25 µm
Affinités botaniques : cf. Myricaceae

Triatriopollenites sp. 2
Planche 8 fig. 21
Description : pollen triangulaire convexe à subsphérique, à 3 pores avec atrium. Exine lisse,
épaisse (3-3,5 µm). Diamètre des pores : 2-3 µm.
Dimensions : 27-32 µm
Affinités botaniques : inconnues

Triatriopollenites sp. 3
Planche 8 fig. 22.23
Description : pollen triangulaire convexe à subsphérique à 3 pores avec atrium. Exine
scabre plutôt épaisse (2-2,5 µm). Diamètre des pores : 2-2,5 µm.
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : cf. Myricaceae

Triatriopollenites sp. 4
Planche 8 fig. 24
Description : pollen triangulaire légèrement convexe à 3 pores avec atrium ponctué. Exine
scabre de 1,5-2 µm d’épaisseur. Diamètre des pores : 2 µm.
Dimensions : 30 µm
Affinités botaniques : Myricaceae

70
Triatriopollenites sp. 5
Planche 8 fig. 25
Description : pollen triangulaire convexe. Exine mince (1-1,5 µm), lisse. Pores étroits (1,5
µm) avec petit atrium.
Dimensions : 21-23 µm
Affinités botaniques : cf. Myricaceae

Genre Anacolosidites (Cookson & Pike 1954) Potonié 1960

Anacolosidites cf. luteoides Cookson & Pike 1954

Planche 8 fig. 39
Description : pollen triangulaire concave à pores subéquatoriaux de 2-2,5 µm de diamètre.
Exine lisse.
Dimensions : 24-25 µm
Affinités botaniques : Olacaceae (g. Anacolosia) Boltenhagen, Dejax & Salard-Cheboldaeff
1985.

Genre Concavisubtriporites n.gen.

Diagnose : pollen subtriporé triangulaire concave de grande taille

Concavisubtriporites nkapaensis sp. nov.

Planche 8 fig. 32
Etymologie : adjectif dérivé de la localité ayant donné le nom à la formation étudiée
Holotype : Planche 8 fig. 32, Ngata 1280 m, lame 69888, référence England Finder F30-2,
boite 361
Diagnose : pollen triangulaire bréviaxe de grande taille aux cotés concaves. Exine striée
(épaisseur : 2-2,5 µm). Pores oblongs (2,5 x 3 µm) en situation subéquatoriale.
Dimensions : 45-50 µm
Comparaisons : cette espèce peut ressembler au genre Concavitriporites de Song (1996) en
Chine, mais les pores ne sont pas nets et un des cotés est plus concave que les deux
autres.
Répartition stratigraphique : Paléocène supérieur
Affinités botaniques : inconnues

Classe Stephanoporatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Echiperiporites Van der Hammen & Wijmstra 1964

Echiperiporites sp.
Planche 8 fig. 38
Dimensions : 20-23 µm

71
Description : pollen circulaire à exine échinée mince (Epines : 1,5 µm). Pores étroits : 1-1,5
µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Psilastephanoporites Regali ex Hoorn 1993

Psilastephanoporites sp. 1
Planche 8 fig. 28
Description : pollen arrondi. Exine scabre, mince (1-1,5 µm). Pores ronds (2,5-3 µm)
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilastephanoporites sp. 2
Planche 8 fig. 29
Description : pollen de forme quadrangulaire ou pentagonale. Structure en arceaux. Exine
lisse, mince. 4 pores étroits.
Dimensions : 28-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilastephanoporites oculiporus Pardo-Trujillo 2004

Planche 8 fig. 36
Description : pollen de forme polygonale. Exine mince (1,5-2 µm), scabre. 6-7 pores ronds
(3- 3,5 µm). Structure en arceaux joignant les pores.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Retistephanoporites Gonzalez 1967

Retistephanoporites minutiporus Jaramillo & Dilcher 2001

Planche 8 fig. 37
Description : pollen arrondi à exine réticulée (2,5-3 µm). Pores ronds (2,5-3 µm) à contour
épaissi.
Dimensions : 40-45 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Ulmipollenites Wolff 1934

Ulmipollenites undulosus Wolff 1934

Planche 3 fig. 26.27
Description : pollen à exine mince (1-1,5 µm) verruqueuse à vaguement rugulée. 4 pores
équatoriaux de 3 µm de diamètre.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : Ulmaceae

72
Classe Tricolpatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Clavatricolpites Pierce 1961

Clavatricolpites densiclavatus Jaramillo & Dilcher 2001

Planche 9 fig. 8
Description : pollen tricolpé à profil arrondi en vue polaire. Exine clavée (2-2,5 µm)
Dimensions : 25-28 µm
Affinités botaniques : Aquifoliaceae

Genre Crototricolpites Leidelmeyer 1966

Crototricolpites cf. densus Salard-Cheboldaeff 1978

Planche 9 Fig. 18
Description : pollen arrondi en vue polaire. Exine « crotonoïde » finement réticulée, fine
(1-1,5 µm).
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae (Croton ?)

Crototricolpites protoannemariae Jaramillo & Dilcher 2001

Planche 9 fig. 6
Description : pollen tricolpé, arrondi en vue polaire. Exine « crotonoïde » (2,5-3 µm)
grossièrement réticulée.
Dimensions : 45-50 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae

Crototricolpites cf. protoannemariae Jaramillo & Dilcher 2001

Planche 9 fig. 7
Description : pollen tricolpé à exine « crotonoïde »
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae ?

Genre Psilabrevitricolpites Van Hoeken Klinkenberg 1966

Psilabrevitricolpites sp.1
Planche 8 fig. 33
Description : pollen tricolpé triangulaire. Exine mince (1 µm), lisse. Colpes courts (4-4,5
µm).
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilabrevitricolpites sp. 2
Planche 8 fig. 34.35.

73
Description : pollen tricolpé subarrondi. Exine lisse, mince (1,5 µm). Colpes courts (3,5-4
µm) entourés d’un épaississement de +/- 3 µm.
Dimensions : 20-25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Psilatricolpites Pierce 1961

Psilatricolpites sp. 1
Planche 8 fig. 40
Dimensions : 45-50 µm
Description : pollen tricolpé à contour sub-circulaire. Exine lisse, épaisse (2,5-3 µm).
Colpes longs (13-15 µm).
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolpites sp. 2
Planche 9 fig. 1.2
Description : pollen tricolpé arrondi en vue polaire. Exine scabre mince (1-1,5 µm).
Longueur des colpes (8-12 µm).
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolpites sp. 3
Planche 9 fig. 3
Description : pollen tricolpé sub-arrondi. Exine scabre épaisse (2-2,5 µm). Longueur des
colpes : 10 µm.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolpites sp. 4
Planche 9 fig. 4
Description : pollen tricolpé elliptique en vue équatoriale. Exine lisse, mince (1-1,5 µm).
Dimensions : 32 x 20 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Retibrevitricolpites Van Hoeken Klinkenberg 1966

Retibrevitricolpites triangulatus Van Hoeken Klinkenberg 1966

Planche 9 fig. 12
Description : pollen tricolpé triangulaire à colpes courts (4-5 µm). Exine mince (+/- 1,5
µm), réticulée.
Dimensions : 35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Retitrescolpites Sah 1967

74
Retitrescolpites baculatus Jaramillo & Dilcher 2001
Planche 9 fig. 14
Description : pollen tricolpé arrondi. Exine grossièrement réticulée (2,5-3 µm).
Colpes courts (5-7 µm)
Dimensions : 33-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Retitricolpites Pierce 1961

Retitricolpites sp. 1
Planche 9 fig. 5
Description : pollen tricolpé subtriangulaire convexe en vue polaire. Exine réticulée mince
(1-1,5 µm). Colpes courts (5-8 µm).
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolpites sp. 2
Planche 9 fig. 9
Description : pollen tricolpé à contour arrondi. Exine réticulée (1,5-2 µm). Colpes courts
(5-7 µm).
Dimensions : 20-25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolpites sp. 3
Planche 9 fig. 10
Description : pollen tricolpé arrondi. Exine finement réticulée mince (1-1,5 µm). Colpes
longs (10 µm).
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolpites cf. retiaphelis Leidelmeyer 1966

Planche 9 fig. 22
Description : pollen tricolpé rond. Exine finement réticulée (1,5-2 µm). Colpes longs (12-
15 µm).
Dimensions : 40-45 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolpites clarensis Gonzalez-Guzman 1967

Planche 9 fig. 11.15.16.17
Description : pollen tricolpé bréviaxe à contour arrondi. Exine (1-2 µm) finement réticulée.
Colpes longs à extrémités proches des pôles.
Dimensions : 25-32 µm
A ffinités botaniques : inconnues

75
Retitricolpites simplex Gonzalez 1967
Planche 9 fig. 13
Description : pollen tricolpé oblong à colpes atteignant les pôles. Exine mince (1,5 µm),
réticulée.
Dimensions : 35 x 25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Classe Stephanocolpatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Retistephanocolpites Leidelmeyer 1966

Retistephanocolpites williamsi Germeraad, Hopping & Muller 1968

Planche 9 fig. 19.20.21
Description : pollen de forme arrondie à 5-6 colpes. Exine scabre à infraréticulée, peu
épaisse (1- 1,5 µm). Colpes assez longs (7-8 µm) n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : Linaceae-Ctenolophonideae (Ctenolophon, Tescher & Mosbrugger,
2007)

Classe Tricolporatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Bombacacidites Couper 1960 emend. Krutzsch 1970

Bombacacidites cf. annae (Van der Hammen 1954) Leidelmeyer 1966

Planche 9 fig. 26
Description : pollen tricolporé subtriangulaire. Exine di-réticulée (grandes mailles, 3,5-4
µm, au centre ; petites mailles, 1µm < aux angles). Pores à contour épaissi ; colpes
courts : 5-6 µm.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : Bombacaceae

Bombacacidites ngosii sp. nov.

Planche 9 fig. 29
Etymologie : dédié au Pr. S. Ngos, responsable de Laboratoire de Géologie du Sédimentaire
et du Pétrole à l’Université de Yaoundé I, et co-promoteur de ce travail.
Holotype : planche 9 fig. 29, Ngata 1460 m, lame 69942, référence England Finder M26-1,
boite 266
Diagnose : pollen tricolporé à contour arrondi. Exine réticulée à réticule légèrement plus fin
aux angles. Pores à épaississement bien marqué. Colpes de 7-8 µm de long.
Dimensions : 30-35 µm

76
Comparaison : cette espèce est différente de Bombacacidites annae (Leidelmeyer 1966) par
sa forme et son ornementation moins prononcée. L’exine est moins épaisse que celle
de B. annae.
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur
Affinités botaniques : Bombacaceae

Bombacacidites sp. 1
Planche 9 fg. 23
Description : pollen tricolporé rond. Exine finement réticulée uniforme (1,5 µm). Pores à
contour légèrement épaissi. Colpes plutôt longs (+/-8 µm).
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : cf. Bombacaceae

Bombacacidites sp. 2
Planche 9 fig. 24
Description : pollen tricolporé rond. Exine grossièrement réticulée uniforme. Pores à
contour fortement épaissi. Colpes courts (7-8 µm).
Dimensions : 40-50 µm
Affinités botaniques : Bombacaceae ?

Bombacacidites sp. 3
Planche 9 fig. 25
Description : pollen tricolporé rond. Exine réticulée à mailles légèrement plus larges au
centre. Pores à contour fortement épaissi. Colpes courts : 5-6 µm.
Dimensions : 33-35 µm
Affinités botaniques : cf. Bombacaceae

Bombacacidites sp. 4
Planche 9 fig. 28
Description : pollen tricolporé subtriangulaire. Exine (1,5 µm) à réticule fortement marqué.
Petits pores à colpes courts (+/-5 µm).
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : Bombacaceae ?

Bombacacidites sp. 5
Planche 9 fig. 27
Diagnose : pollen tricolporé subtriangulaire convexe. Exine di-réticulée (grandes mailles au
centre, 2,5-3 µm, petites mailles, 1 µm < aux angles). Pores à contour épaissi.
Colpes courts (6-7 µm).
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : Bombacaceae

Bombacacidites sp. 6
Planche 9 fig. 30

77
Description : pollen tricolporé arrondi. Exine mince (1,5 µm) très finement réticulée.
Colpes assez longs (+/- 10 µm)
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Brevitricolporites Anderson 1960

Brevitricolporites echinus sp. nov.

Planche 9 fig. 36.37
Etymologie : du latin « echinus » (hérisson) en référence aux épines portées par le pollen.
Holotype : Planche 9 fig. 36, Mamiwater 1010 m, lame 67166, référence England Finder
V35-1-3, boite 225
Diagnose : pollen tricolporé subcirculaire. Exine mince (1 µm) à ornementation échinée
(hauteur des épines : 0,5-1 µm). Colpes courts (5 µm). Pores arrondis (2 µm).
Dimensions : 23-25 µm
Comparaison : aucune espèce du genre n’a été recensé comme épineux auparavant.
Répartition stratigraphique : Paléocène
Affinités botaniques : inconnues

Brevitricolporites eomolinae sp. nov.

Planche 9 fig. 33
Etymologie : vient de premier ou ancien (apparait avant celui de Salard)
Holotype : Planche 9 fig. 33, Yatou 1450 m, lame 67389, England Finder L35-4, boite 234
Diagnose : pollen tricolporé subsphérique bréviaxe. Exine lisse (1,5 µm). Colpes plutôt
longs (5-6 µm)
Dimensions : 20-25 µm
Comparaison : Brevicolporites molinae (Salard, 1978) est de grande taille, la taille de
l’exine de stratification augmente au niveau des apertures alors que l’exine de notre
matériel a la même épaisseur presque en tout point.
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur
Affinités botaniques : inconnues

Genre Clavatricolporites Leidelmeyer 1966

Clavatricolporites leticiae Leidelmeyer 1966

Planche 10 fig. 22
Description : pollen de forme arrondie. Exine (2,5-3 µm) clavée à ornementation très
serrée. Pores ronds (4-5 µm). Colpes longs (9-10 µm) n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 27-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Clavatricolporites cf. leticiae Leidelmeyer 1966

Planche 10 fig. 21

78
Description : pollen breviaxe de forme ronde. Exine clavée (2,5-3 µm) à ornementation
serrée. Pores ronds (6,5-7 µm). Colpes longs (10-12 µm) n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Colombipollis Sarmiento 1992

Colombipollis tropicalis Sarmiento 1992

Planche 10 fig. 7
Description : pollen triangulaire convexe. Exine scabre (2-2,5 µm). Pores ronds (5,5-6 µm).
Colpes longs (15-20 µm).
Dimensions : 50-60 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Ilexpollenites Thiergart 1937

Ilexpollenites sp.
Planche 10 fig. 31
Description : pollen de forme triangulaire très convexe. Exine clavée épaisse (2,5-3,5 µm).
Pores larges (7-8 µm). Colpes longs (9-10 µm).
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : Aquifoliaceae

Genre Lanagiopollis Morley 1982

Lanagiopollis crassa (Van der hammen & Wijmstra 1964) Frederiksen 1988
Planche 9 fig. 35
Description : pollen tricolporé rond en vue polaire. Exine (1,5-2 µm) infraréticulée. Colpes
relativement courts (6-7 µm).
Dimensions : 33-35 µm
Affinités botaniques : Pellicieraceae cf. Pelliciera rhizophorae, plante de mangrove
(Germeraad et al., 1968)

Genre Margocolporites Ramanujan 1966 (ex Srivastava 1969) emend. Pocknall &
Mildenhall 1984

Margocolporites vanwijhei Germeraad, Hopping & Muller 1968

Planche 9 fig. 31
Description : pollen tricolporé rond. Exine (1,5-2 µm) réticulée. Pores larges (+/- 10 µm).
Colpes longs en entonnoir (10 à 1 µm) aboutissant aux pôles.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : Leguminosae-Caesalpinioideae (Germeraad et al., 1968), type
Caesalpinia, à large feuilles, arbres sempervirents tempérés (Utescher &
Mosbrugger, 2007).

79
Margocolporites sp.
Planche 9 fig. 32
Description : pollen tricolporé subsphérique. Exine (1,5-2 µm) réticulée. Pores larges (5-6
µm). Colpes longs (7-8 µm) n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 28-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Myrtacidites Chitaley 1951

Myrtacidites psilatus Belsky, Boltenhagen & Potonié 1965

Planche 10 fig. 17.18.
Description : pollen breviaxe de forme triangulaire à aspect syncolpé. Exine tectée lisse ou
scabre (2-2,5 µm), épaissie au niveau des pores (3 µm). Pores : 3-3,5 µm. Colpes
assez longs (+/- 20 µm) atteignant les pôles sans s’y rencontrer.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : Myrtaceae

Genre Psilabrevitricolporites Van der Kaars 1983

Psilabrevitricolporites sp.
Planche 9 fig. 34
Description : pollen tricolporé rond. Exine lisse à scabre (1,5-2 µm). Colpes (5-6 µm),
étroits.
Dimensions : 25-28 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Psilatricolporites Van der Hammen ex Pierce 1961

Psilatricolporites crassus Van der Hammen & Wijmstra 1964

Planche 10 fig. 1
Description : pollen tricolporé triangulaire convexe. Exine (3-3,5 µm) lisse à scabre, tectée.
Pores allongés de 3-5 µm. Colpes moyennement longs (15-17 µm).
Dimensions : 45-50 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites operculatus Van der Hammen & Wijmstra 1964

Planche 10 fig. 2.3.4.5
Description : pollen tricolporé sphérique à subsphérique. Exine (1,5-2,5 µm) lisse à scabre.
Pores larges (4-5 µm). Colpes longs (+/- 10 µm). Les apertures sont pourvues d’un
opercule de 1,5 à 3,5 µm de long.
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae cf. Alchornea (Germeraad et al, 1968)

80
Psilatricolporites sp. 1
Planche 10 fig. 6
Description : pollen tricolporé subsphérique. Exine lisse (1-1,5 µm). Pores : 3-4 µm. Sillons
longs : 8-9 µm.
Dimensions : 22-25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 2
Planche 10 fig. 8.9
Description : pollen tricolporé bréviaxe, subsphérique. Exine mince (1,5 µm) lisse à scabre.
Colpes (9-10 µm) entourés d’un épaississement de l’exine de +/- 2 µm.
Dimensions : 33-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 3
Planche 10 fig. 10
Description : pollen tricolporé de forme oblongue. Exine lisse à scabre. Pores ronds (2 µm).
Colpes longs : +/- 20 µm.
Dimensions : 25 x 20 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 4
Planche 10 fig. 11
Description : pollen tricolporé triangulaire à côtés convexes. Exine lisse (1-3 µm). Pores :
+/- 3 µm. Colpes longs : 15-16 µm
Dimensions : 35-38 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 5
Planche 10 fig. 12
Description : pollen tricolporé oblong. Exine lisse (+/-2 µm). Pores ovales (3 x 6 µm).
Colpes longs et étroits.
Dimensions : 45 x 40 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 6
Planche 10 fig. 13.14
Description : pollen tricolporé ellipsoïdal. Exine (+/- 1,5 µm) lisse à très finement réticulée.
Pores ovales (5-10 x 1-2 µm) fortement étiés dans le sens de l’équateur. Colpes
longs, atteignant les pôles.
Dimensions : 45-35 x 35-30 µm
Affinités botaniques : inconnues.

Psilatricolporites sp. 7

81
Planche 10 fig. 14
Description : pollen tricolporé arrondi. Exine scabre (1,5 µm). Pores : 2,5-3 µm. Colpes
longs : 10-12 µm.
Dimensions : 35 x 38 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 8
Planche 10 fig. 15
Description : pollen tricolporé de petite taille. Exine lisse (+/- 1,5 µm). Petits pores (1,5
µm). Colpes : 11-12 µm
Dimensions : 20 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 9
Planche 10 fig. 16
Description : pollen tricolporé subsphérique. Exine lisse à scabre. Petits pores (+/- 2 µm).
Colpes (10-12 µm) à bords fortement marqués.
Dimensions : 20-22 µm
Affinités botaniques : inconnues

Psilatricolporites sp. 10
Planche 10 fig. 19
Description : pollen tricolporé elliptique. Exine lisse à scabre (1-1,5 µm). Pores : 4-5 µm.
Colpes longs bien marqués (18-20 µm).
Dimensions : 25 x 20 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Retibrevitricolporites Legoux 1978

Retibrevitricolporites protrudens Legoux 1978

Planche 10 fig. 28.29
Description : pollen tricolporé de forme triangulaire. Exine scabre à infraréticulée (1,5 µm)
épaissie au niveau des pores (2,5 µm). Pores : 4-4,5 µm. Colpes courts : +/- 8 µm.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retibrevitricolporites sp.
Planche 10 fig. 30
Description : pollen tricolporé triangulaire convexe. Exine réticulée à larges mailles. Pores :
3,5- 4,5 µm. Colpes courts : +/- 8 µm.
Dimensions : 33 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Retitricolporites Van der Hammen & Wijmstra 1964

82
Retitricolporites crassicostatus Van der Hammen & Wijmstra 1964
Planche 10 fig. 25.26.27
Description : pollen tricolporé subcirculaire. Exine scabre à finement réticulée mince (1,5-
2 µm). Pores larges (5-6 µm). Colpes courts (6-8 µm).
Dimensions : 23-25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites crassicostatus Van der Hammen & Wijmstra 1964 major subsp. nov.
Planche 10 fig. 24
Holotype : Planche 10 fig. 24, Moulongo 2435 m, lame 69922, England Finder G32-3,
boite 365
Diagnose : pollen tricolporé subcirculaire. Exine finement réticulée (3 µm). Pores larges
(6-7 µm). Colpes plutôt courts (15-20 µm).
Dimensions : 35-40 µm
Comparaisons cette espèce est plus grande que Retitricolporites crassicostatus décrit par
Van Hoeken-Klinkenberg (1966), et ses colpes sont aussi un peu plus longs que
ceux de l’holotype.
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites bessongii sp. nov.

Planche 10 fig. 32.33.34
Etymologie : dédié au Dr. Moise Bessong, Chargé de Recherche à l’Institut de Recherches
Géologiques et Minières du Cameroun.
Holotype : Planche 10 fig. 32, Ngata 1120 m, lame 69799, référence England Finder R43-
2, boite 354
Diagnose : pollen tricolporé breviaxe. Exine finement réticulée peu épaisse (+/- 1,5 µm).
Pores larges : 5-6 µm. Colpes longs (10-12 µm), non jointifs aux pôles.
Dimensions : 30-35 µm
Comparaisons : la nouvelle espèce ne semble pas correspondre aux caractéristiques de
Retitricolporites irregularis de Salard 1979. En fait chez Retitricolporites
irregularis trouvé par Salard (1979), l’exine est épaisse et très ornementée, alors
que celle de notre matériel est finement réticulée.
Répartition stratigraphique : Paléocène-Eocène inférieur
Affinités botaniques : Euphorbiaceae

Retitricolporites irregularis Van der Hammen & Wijmstra 1964

Planche 10 fig. 40
Description : pollen tricolporé longiaxe. Exine (2,5-3 µm) nettement réticulée. Pores : +/-5
µm. Colpes longs n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 50 x 35 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae (Amanoa sp.), arbres tropicaux à larges feuilles
(Utescher & Mosbrugger, 2007).

83
Retitricolporites venezuelensis Pardo-Trujillo, Jaramillo & Oboh-Ikuenobe 2003
Planche 6 fig. 2
Description : pollen tricolporé de forme arrondie. Exine tectée-réticulée (4-5 µm). Pores
larges : 7-8 µm. Colpes plutôt longs (+/- 15 µm) non jointifs aux pôles.
Dimensions : 40-45 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites cf. hispidus Van der Hammen & Wijmstra 1964

Planche 11 fig. 4
Description : pollen tricolporé de forme ellipsoïdale. Exine (1-1,5 µm) à ornementation
réticulée bien marquée. Pores : +/-5 µm. Colpes longs atteignant les pôles.
Dimensions : 30 x 25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites sp. 1
Planche 10 fig. 23
Diagnose : pollen tricolporé bréviaxe. Exine finement réticulée (1,5 µm) épaissie au niveau
des pores (2 µm). Pores larges (7-8 µm). Colpes longs (+/- 20 µm) jointifs aux
pôles.
Dimensions : 33-38 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae

Retitricolporites sp. 2
Planche 10 fig. 35-36
Description : pollen tricolporé sub-arrondi. Exine réticulée (+/- 1,5 µm) à mailles
irrégulières et tectum. Pores ronds (3,5-4 µm). Colpes relativement longs (8-10 µm).
Dimensions : 25-32 µm
Affinités botaniques : cf. Oleaceae

Retitricolporites sp. 3
Planche 10 fig. 37
Description : pollen tricolporé bréviaxe. Exine (+/- 1,5 µm) grossièrement réticulée à larges
mailles.Pores larges : +/- 10 µm. Colpes plutôt courts (12-15 µm). Apertures
pourvues d’un opercule (8-9 µm).
Dimensions : 50-55 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites sp. 4
Planche 10 fig. 38
Description : pollen tricolporé bréviaxe. Exine réticulée (+/- 1,5 µm) à mailles à bords
épais. Pores ronds : 3-3,5 µm. Colpes (10-13 µm à bords épaissis.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

84
Retitricolporites sp. 5
Planche 10 fig. 39
Description : pollen tricolporé bréviaxe sub-sphérique. Exine mince (+/- 1 µm) réticulée-
tectée. Pores ronds (4-4,5 µm). Colpes : 10-12 µm.
Dimensions : 35 µm
Affinités botaniques : Oleaceae ?

Retitricolporites sp. 6 (1)

Planche 10 fig. 41
Description : petit pollen tricolporé arrondi en vue polaire. Exine mince (+/- 1 µm)
finement réticulée. Pores : 2,5-3 µm. Colpes plutôt longs (8-9 µm), atteignant les
pôles.
Dimensions : 18-20 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites sp. 6 (2)

Planche 11 fig. 1
Description : pollen tricolporé oblong. Exine finement réticulée mince (+/- 1 µm). Pores
ronds : +/- 4 µm. Colpes longs et minces (20-22 µm).
Dimensions : 20 x 25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites sp. 7
Planche 11 fig. 3
Description : pollen arrondi à pôles aplatis. Exine (2-2,5 µm) finement réticulée. Pores :
3,5- 4 µm. Colpes courts (8-9 µm).
Dimensions : 28 x 25 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae ?

Retitricolporites sp. 8
Planche 11 fig. 5.6
Description : pollen tricolporé de forme ellipsoïdale. Exine mince (1 µm) finement
réticulée. Pores oblongs dans l’axe équatorial (1,5 × 4,5 µm). Colpes longs (10-20
µm).
Dimensions : 26-20 x 15-13 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retitricolporites sp. 9
Planche 11 fig. 7
Description : pollen tricolporé arrondi en vue polaire. Exine mince (1-1,5 µm) mini-
réticulée. Pores arrondis (4,5-5 µm). Colpes longs (+/- 13 µm), presque jointifs aux
pôles.
Dimensions : 28-30 µm
Affinités botaniques : cf. Euphorbiaceae

85
Retitricolporites sp. 10
Planche 11 fig. 12
Description : pollen breviaxe arrondi. Exine mince (+/- 1,5 µm), réticulée, épaissie au
niveau des pores. Pores larges : 4-5 µm. Colpes longs (+/- 15 µm), presque jointifs
aux pôles.
Dimensions : 32 x 28 µm
Affinités botaniques : Euphorbiaceae ?

Genre Siltaria Traverse 1955

Siltaria mariposa (Leidelmeyer 1966) Jaramillo & Dilcher 2001

Planche 10 fig. 20
Description : pollen arrondi bréviaxe. Exine finement réticulée (2 µm), plus épaisse au
niveau des pores (2,5 µm). Colpes longs atteignant les pôles.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Striatopollis Krutzsch 1959

Striatopollis bellus Sah 1967

Planche 11 fig. 8.9.10
Description : pollen tricolpé longiaxe, de forme ellipsoïdale. Sillons longs atteignant les
pôles. Exine (1,5-2 µm) striée et ponctuée. Columelles serrées formant des stries
(+/- 1,5 µm) séparées par des espaces de même largeur
Dimensions : 35-60 x 30-40 µm
Affinités botaniques : Cesalpiniaceae

Genre Striatricolporites Leidelmeyer 1966

Striatricolporites fragilis Salard-Cheboldaeff 1978

Planche 11 fig. 13
Description : pollen tricolporé longiaxe de forme ellipsoïdale. Exine (+/- 1,5 µm) finement
striée. Pores (3 × 5 µm). Les colpes, longs (+/- 25 µm), n’arrivent pas aux
extrémités.
Dimensions : 30 x 20 µm
Affinités botaniques : cf. Anacardiaceae

Striatricolporites cf. pimulis Leidelmeyer 1966

Planche 11 fig. 17
Description : pollen arrondi équiaxe. Exine striée (2-2,5 µm). Pores oblongs (7-8 x 4,5-5
µm). Colpes assez longs (15-18 µm) n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

86
Striatricolporites sp. 1
Planche 11 fig. 14
Description : pollen tricolporé allongé. Exine striée (1,5-2 µm) à stries épaisses. Pores
oblongs (2 x 5 µm). Colpes longs (27-30 µm) n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 35 x 25 µm
Affinités botaniques : inconnues

Striatricolporites sp. 2
Planche 11 fig. 15
Description : pollen tricolporé de forme ellipsoïdale. Exine finement striée (1,5-2 µm).
Pores : 5,5 x 3,5 µm. Colpes longs (30 µm), bien marqués, atteignant les pôles.
Dimensions : 30 x 20 µm
Affinités botaniques : Anacardiaceae

Genre Striacolporites Sah & Kar 1970

Striacolporites striatus Sah & Kar 1970

Planche 11 fig. 16
Description : pollen tricolporé de grande taille. Exine striée bien marquée (+/- 2,5 µm).
Pores larges (7-8 µm). Colpes plutôt courts (15-20 µm)
Dimensions : 70 x 50 µm
Affinités botaniques : inconnues

Genre Tricolporites Cookson 1947

Tricolporites microrugulatus sp. nov.

Planche 11 fig. 11
Etymologie : finement rugulé
Holotype : Planche 11 fig.11, NM 2000 m, lame 68385, England Finder O30-1, boite 294
Diagnose : pollen tricolporé longiaxe. Exine (2-2,5 µm) à ornementation rugulée. Pores
ronds (3,4-4,5 µm) à contour épaissi, en relief sur la zone équatoriale. Colpes (+/-
45 µm) n’atteignant pas les extrémités.
Dimensions : 60 x 35 µm
Comparaisons : aucune espèce connue de Tricolporites ne semble correspondre à notre
matériel. Tricolporites scabratus (Harris, 1965), à exine scabrée et de forme ovale,
est moins grand que notre espèce. T. pachyexinus (Cookson, 1947) à exine réticulée
a été transféré dans le genre Rhoipites d’après Baldoni & Askin, 1993.
Répartition stratigraphique : Paléocène supérieur-Eocène inferieur.
Affinités botaniques : inconnues

Classe Stephanocolporatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Psilastephanocolporites Leidelmeyer 1966

87
Psilastephanocolporites fissilis Leidelmeyer 1966
Planche 11 fig. 20.21
Description : Grain de pollen longiaxe colporé (6-8 apertures). Exine mince (+/- 1,5 µm)
lisse à légèrement scabre. Pores oblongs (axes des pores : 2-3 x 2-4 µm). Colpes
parallèles (+/- 3-4 µm) à extrémités proches des pôles. Espaces entre les colpes 2-3
µm.
Dimensions : 40-60 x 25-35 µm
Affinités botaniques : Polygalaceae (Lorente 1986)

Psilastephanocolporites scabratus Salard-Cheboldaeff 1978

Planche 11 fig. 22.23.24
Description : pollen tétracolporé longiaxe de forme arrondie. Exine mince (1,5-2 µm), lisse
à scabre. Pores oblongs dans le sens équatorial (5 x 2,5 µm). Colpes étroits, longs
(25- 30 µm) mais n’atteignant pas les pôles.
Dimensions : 30-40 x 25-30 µm
Affinités botaniques : Meliaceae

Psilastephanocolporites salardiae sp. nov.

Planche 11 fig. 26.27
Etymologie : espèce nommée en hommage au Prof. Salard-Cheboldaeff.
Holotype : Planche 11 fig. 26-27, Moulongo 2200 m, lame 69952, réference England
Finder P39- 1, boite 366. Fig. 27 Moulongo 2395 m, lame 69908, référence England
Finder J28-2, boite 364.
Diagnose : pollen tetracolporé sub-circulaire. Exine mince (1,5-2 µm), lisse. Pores allongés
dans l’axe équatorial (6-7 x 2,5-3,5 µm). Colpes longs (28-33 µm) n’atteignant pas
les extrémités.
Dimensions : 35-45 x 30-35 µm
Comparaison : cette espèce a presque la même taille que P. perforatus mais son tectum est
lisse alors que celui de P. perforatus est finement perforé. Par ailleurs les spécimens
de P. laevigatus décrits par Salard (1978) ont un axe polaire plus court et leurs
endoapertures sont moins développés. Plus, P. perforatus et P. laevigatus sont
connus du Miocène au Cameroun.
Affinités botaniques : Sapotaceae

Psilastephanocolporites sp.
Planche 11 fig. 25
Description : pollen tétracolporé de forme elliptique. Exine lisse à scabre, mince (+/- 1,5
µm). Pores : 2-2,5 µm. Colpes longs (+/- 20 µm) mais sans atteindre les pôles.
Dimensions : 25 x 20 µm
Affinités botaniques : cf. Sapotaceae

Genre Tetracolporites Couper 1963

88
Tetracolporites pachyexinatus Jaramillo & Dilcher 2001
Planche 11 fig. 19
Description : pollen arrondi tétracolporé. Exine lisse à scabre, mince (1-1,5 µm). Pores :
2,5-3,5 µm. Colpes courts.
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : cf. Meliaceae (Jaramillo & Dilcher, 2001)

Tetracolporites quadratus Sah 1967

Planche 11 fig. 18
Description : pollen tétracolporé quadrangulaire convexe. Exine scabre à mini-réticulée
(1,5-2 µm). Pores : +/- 5 µm. Colpes courts (+/- 8 µm).
Dimensions : 28-32 µm
Affinités botaniques : Meliaceae ?

Genre Retistephanocolporites Van der Hammen & Wijmstra 1964

Retistephanocolporites sp. 1
Planche 11 fig. 28
Description : pollen stéphanocolporé (6-8) longiaxe. Exine mince (+/- 1,5 µm) finement
réticulée. Pores allongés (4,5 x 3,5 µm). Colpes longs (+/- 35 µm) et étroits.
Dimensions : 42 x 32 µm
Affinités botaniques : cf. Polygalaceae

Retistephanocolporites sp. 2
Planche 11 fig. 29
Description : pollen tétracolporé. Exine mince (+/- 1 µm) infraréticulée. Pores oblongs (4 x
2 µm). Colpes courts (+/- 15 µm)
Dimensions : 30 x 25 µm
Affinités botaniques : Meliaceae ?

Retistephanocolporites sp. 3
Planche 11 fig. 30
Description : pollen tétracolporé. Exine mince (+/- 1 µm) infraréticulée. Pores elliptiques
(4,5 x 3,5 µm). Colpes courts : +/- 20 µm.
Dimensions : 25 x 20 µm
Affinités botaniques : inconnues

Retistephanocolporites sp. 4
Planche 11 fig. 31
Description : pollen tétracolporé longiaxe. Exine mince (1,5 µm) infraréticulée. Petits pores
(+/- 2,5 µm). Colpes longs (+/- 25 µm).
Dimensions : 30 x 20 µm
Affinités botaniques : inconnues

89
Retistephanocolporites sp. 5
Planche 11 fig. 32
Description : pollen circulaire tetracolporé. Exine mince (1,5 µm), réticulée à maillage
régulier. Pores : 3,5-4 µm. Colpes très courts : 5-6 µm.
Dimensions : 38-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

Classe Syncolpatae Iversen & Troels-Smith 1950

Genre Cupanieidites Cookson & Pike 1954

Cupanieidites reticularis Cookson & Pike 1954 major subsp. nov.

Planche 12 fig. 9
Holotype :Planche 12 fig.9 Ngata 1060 m ; numéro de la lame 69796 ; boite 354 ; England
Finder H39-3.
Diagnose : pollen syncolporé triangulaire. Exine tectée-réticulée (1,5-2 µm). Pores étroits
(3-4 µm). Colpes (25-30 µm) jointifs aux pôles.
Comparaisons : plus grand que Cupanieidites reticularis de Cookson & Pike (1954)
Dimensions : 50-60 µm
Affinités botaniques : cf. Sapindaceae

Genre Syncolporites Van der Hammen 1954

Syncolporites doualaensis sp. nov.

Planche 12 fig. 10.11.12.13
Etymologie : position géographique de la ville du gisement
Holotype : Planche 12 fig. 10-11, Ngata 1260 m, lame 69887, référence England Finder
T37-4, boite 361. (12) Ngata 1300 m England Finder S34-2 ; numéro de la lame
69911 ; boite 364. (13) Ngata 1080m ; numéro de la lame 69797 ; England Finder
P49-4 ; boite 354
Diagnose : pollen syncolporé, triangulaire à côtés concaves. Exine tectée-réticulée (2-2,5
µm) à réticule très marqué. Pores étroits (4-5 µm). Colpes larges et longs (35-45
µm).
Dimensions : 55-70 µm
Comparaisons : Syncolporites doualaensis est plus grand que tous les Syncolporites décrits
(Syncolporites marginatus, S. lisamae, S. poricostaus) dont les colpes sont simples
et jointifs. Ses colpes sont plus larges que ceux des autres espèces duGenre et ne
sont pas toujours jointifs.
Répartition géographique : Paléocène
Affinités botaniques : inconnues

Syncolporites lisamae Van der Hammen 1954

Planche 12 fig. 7

90
Description : pollen syncolporé triangulaire convexe. Exine verruqueuse mince (1,5-2 µm),
épaissie au niveau des pores. Pores étroits (2-2,5 µm). Colpes : +/- 15 µm.
Dimensions : 25-28 µm
Affinités botaniques : Myrtaceae (Muller, 1981)

Syncolporites marginatus Sarmiento 1992

Planche 12 fig. 1.2
Description : pollen syncolporé arrondi. Exine lisse à scabre, mince (1,5-2 µm). Pores (3-4
µm) à bords épaissis. Colpes : +/- 10-12 µm.
Dimensions : 25-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Syncolporites poricostatus Van Hoeken Klinkenberg 1966

Planche 12 fig. 4
Description : pollen syncolporé triangulaire convexe. Exine mince (1-1,5 µm) lisse à
scabre. Pores : 3,5-4 µm. Colpes : 10-11 µm.
Dimensions : 22-25 µm
Affinités botaniques : Myrtaceae

Syncolporites sp. 1
Planche 11 fig. 33.34
Description : pollen syncolporé trilobé. Exine scabre (2,5-3 µm). Petits pores : 3-4 µm.
Colpes : 12-15 µm.
Dimensions : 28-30 µm
Affinités botaniques : inconnues

Syncolporites sp. 2
Planche 11 fig. 35
Description : pollen syncolporé trilobé. Exine lisse (1,5-2 µm). Petits pores : 3-4 µm.
Colpes : 10-12 µm.
Dimensions : 35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Syncolporites sp. 3
Planche 12 fig. 3
Description : pollen syncolporé triangulaire légèrement convexe. Exine mince (1-1,5 µm)
lisse à scabre. Pores : 3,5-4 µm. Colpes : 11-12 µm.
Dimensions : 25-28 µm
Affinités botaniques : cf. Myrtaceae

Syncolporites sp. 4
Planche 12 fig. 5
Description : pollen syncolporé triangulaire. Exine (2,5-3 µm) lisse à scabre. Pores : 4,5-5
µm à bords Épaissis. Colpes : 10-12 µm. Zone triangulaire marquée au pôle.

91
Dimensions : 28-30 µm
Affinités botaniques ; inconnues

Syncolporites sp. 5
Planche 12 fig. 6
Description : pollen syncolporé triangulaire. Exine mince (1-1,5 µm) finement réticulée.
Pores étroits (3-4 µm). Colpes : +/- 15 µm. Petite zone triangulaire polaire.
Dimensions : 30-35 µm
Affinités botaniques : Myrtaceae ?

Syncolporites sp. 6
Planche 12 fig. 8
Description : pollen syncolporé triangulaire convexe. Exine mince (1-1,5 µm) lisse. Pores :
5-6 µm. Colpes : +/- 20 µm.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues.

Syncolporites sp. 7
Planche 12 fig. 16.17
Description : pollen de forme triangulaire. Exine mince (+/-1 µm), légèrement striée. Pores
: 2-. 3 µm Colpes : 12-15 µm.
Dimensions : 25-35 µm
Affinités botaniques : inconnues

Syncolporites sp. 8
Planche 12 fig. 14.15
Description : pollen de forme arrondie. Exine lisse à scabre, mince. Grande zone
triangulaire aux pôles. Pores : 4-6 µm. Colpes courts : 5-6 µm.
Dimensions : 35-40 µm
Affinités botaniques : inconnues

Classe Polyplicatae Erdtman 1952

Genre Ephedripites Bolkhovitina 1953 ex Potonié 1958

Ephedripites vanegensis Van der Hammen & Garcia 1966

Planche 12 fig. 19
Description : grain de pollen allongé constitué de plusieurs sillons. Exine mince, lisse
Dimensions : 60 x 30 µm
Affinités botaniques : Ephedraceae
Ephedripites sp.
Planche 12 fig. 18
Dimensions : 105 x 55 µm
Affinités botaniques : Ephedraceae

92
TROISIEME PARTIE - INTERPRETATION
ET DISCUSSION

93
 CHAPITRE 5. ETUDE DES DINOFLAGELLÉS

Les kystes de dinoflagellés de la Formation de Nkapa appartiennent à 47 espèces

déterminées et 28 espèces ont été laissées en nomenclature ouverte. Ces kystes sont répartis
dans 33 genres appartenant eux-mêmes à 6 familles et à 7 sous familles (tableau 6).
Dans les puits Pungo et Yatou l’épaisseur des dépôts est trop faible pour réaliser un
échantillonnage et une analyse biostratigraphique significatifs. Par ailleurs, les dépôts du
puits onshore de Ngata se sont révélés riches en pollens et spores et très pauvres en
dinoflagellés. Ainsi donc, seules les trois séquences de Nord Matanda, Mamiwater et
Moulongo se sont prêtées à l’établissement d’une échelle stratigraphique basée sur l’étude
des dinokystes. Comme nous l’avons signalé plus haut, c’est le puits offshore de Moulongo
où la limite Paléocène/Eocène a été repérée, qui a servi de référence pour déterminer la
distribution des taxons ; les corrélations avec les deux autres séquences ont ensuite été
établies par comparaison.

5.1. BIOZONATIONS

5.1.1. Moulongo (03°27’45’’ N – 09°37’32’’ E)

La séquence analysée couvre 300 m d’épaisseur de la Formation de Nkapa entre -

2140 m et -2540 m de profondeur, où la relative abondance des dinoflagellés dans les
sédiments se prête à une analyse statistique ; sous 2600 m, les dépôts sont pauvres en
dinoflagellés, et donc difficiles à inventorier.
Quatre zones principales (Zd1 à Zd4) ont été mises en évidence dans le diagramme
biostratigraphique (Figure 5), selon la distribution et l’évolution en pourcentage des
différentes espèces représentatives. Deux de ces zones (Zd3 et Zd4) ont été ensuite
découpées en deux sous-zones en fonction de l’évolution de leurs principales composantes.

Zone 1 (Zd1 : de -2540 à –2440 m)

Dans cette zone, on remarque principalement la dominance d’Hafniasphaera

septata dont la zone d’expansion se situe entre -2500 et -2440 m ainsi que la présence
d’Andalusiella sp., limitée à cette partie de la séquence. Comme autres espèces à caractère

94
stratigraphique propres à la Zone 1, on notera aussi la présence de Cerodinium diebelii,
Cerodinium wardenense, Lejeunecysta hyalina et Palaeocystodinium golzowense, ces deux
dernières espèces connaissant une légère expansion, respectivement entre –2530 et -2500 m
et entre –2500 et –2480 m. Cinq espèces font leur apparition dans la zone : Phelodinium cf.
magnificum, Glaphyrocysta ordinata, Areoligera coronata, Adnatosphaeridium
multispinosum et une espèce d’Achomosphaera.

Zone 2 (Zd2 : -2440 à –2400 m)

Dans la zone 2, outre la progression de Glaphyrocysta ordinata on remarque un

acmé de Areoligera coronata et d’Adnatosphaeridium multispinosum, cette dernière espèce
étant la plus importante des trois. A côté de ces espèces dominantes, on note la présence
régulière de Achomosphaera sp., Cerodinium wardenense, Hafniasphaera septata,
Lejeunecysta hyalina, Palaeocystodinium golzowense et Phelodinium cf. magnificum. A ce
niveau apparaissent Cordosphaeridium cf. inodes, Eocladopyxis peniculata,
Kallosphaeridium yorubaense, Senegalinium orei, Wilsonidium nigeriaense ainsi que
Apectodinium homomorphum et Cordosphaeridium cf. multispinosum, ces deux dernières
espèces étant sporadiques. Au sommet de la zone 2, on enregistre la disparition de
Cerodinium diebelii.

Zone 3 (Zd3 : -2400 à –2360 m)

La zone 3 a été subdivisée en deux sous-zones (Zd3a et Zd3b) sur base de la

dominance de Glaphyrocysta ordinata et d’Areoligera coronata dans la première et
d’espèces du genre Apectodinium dans la seconde.
Dans la sous-zone 3a, Areoligera coronata, quoique en légère régression et
Glaphyrocysta ordinata, à la fin de son acmé, sont les espèces dominantes ; on note la
disparition de Lejeunecysta hyalina en fin de zone.
Dans la sous-zone 3b, la présence d’Apectodinium sp. est bien marquée alors
qu’Apectodinium homomorphum est à son optimum d’expansion. En additionnant les taux
de présence des deux espèces, le genre Apectodinium est nettement dominant dans Zd3b.
Cerodinium wardenense, par contre, y est proche de sa disparition.
D’une façon plus générale, la zone 3 se caractérise par la présence régulière
d’Achomosphaera sp., de Cordosphaeridium cf. multispinosum, d’Eocladopyxis peniculata,

95
d’Hafniasphaera septata et de Senegalinium orei, ce dernier en légère progression, tandis
que sont faiblement représentés, voire sporadiques : Adnatosphaeridium multispinosum,
Kallosphaeridium yorubaense, Palaeocystodinium golzowense, Phelodinium cf.
magnificum, et Polysphaeridium subtile. On enregistre aussi, dans cette zone, l’apparition
de Fibrocysta vectensis, Homotryblium cf. tenuispinosum et Kallosphaeridium sp.
A noter que le sommet de la Zone 3 correspond à la limite Paléocène/Eocène
reconnue dans le sous-bassin de Douala (rapport de fin de sondage inédit, 1995).

Zone 4 (Zd4 : -2360 à –2140 m)

Deux sous-zones se différencient nettement dans la zone 4, par l’évolution de la

distribution des espèces au passage de la limite de –2360 m et par leur extension verticale
dans la partie supérieure de la séquence étudiée (25 m pour la première ; 195 m pour la
seconde)
La spécificité de la première sous-zone Zd4a (-2360 à –2335 m) relève de la
disparition dans celle-ci, notamment, de quasi toutes les espèces ayant connu leur
expansion sous la barre des 2360 m.
Ainsi, ne sont plus enregistrées au-dessus de –2335 m : Apectodinium sp,
Apectodinium homomorphum, Areoligera coronata, Eocladopyxis peniculata, Fibrocystis
vectensis, Glaphyrocysta ordinata, Hafniasphaera septata, Kallosphaeridium sp.,
Kallosphaeridium yorubaense, Palaeocystodinium golzowense, Phelodinium cf.
magnificum et Senegalinium orei. Adnatosphaeridium multispinosum poursuit encore
quelque peu son extension dans la sous-zone Zd4b. Dans cette dernière (-2335 à – 2140 m),
sont, en outre, encore présents, parfois même en progression : Achomosphaera sp.,
Cordosphaeridium cf. multispinosum, Homotryblium cf. tenuispinosum et Polysphaeridium
subtile.
Dans la séquence de référence de Moulongo où la limite Paléocène/Eocène était
définie préalablement, un choix rationnel de taxons de dinoflagellés a permis d’établir une
biozonation (Figure 5) fondée sur une succession d’apparitions-disparitions des espèces
ainsi que des acmés des plus représentatives d’entre-elles. Sur ce dernier point, on notera
l’évolution suivante pour les trois premières zones :
- Dans la Zd1 (-2540 à –2440 m), deux progressions sont à souligner ; celle de
Lejeunecysta hyalina (-2530 à –2500 m) et celle de Hafniasphaera septata (-2500 à –2440
m)

96
- La Zd2 (-2440 à – 2400 m) se signale par les acmés de Glaphyrocysta ordinata,
Areoligera coronata et Adnatosphaeridium multispinosum.
- Ces trois espèces entament leur régression dans la Zd3a (-2400 à –2380 m) alors que la
Zd3b (-2380 à –2360 m) correspond aux acmés d’Apectodinium homomorphum et
d’Apectodinium sp. Au sommet de la Zd3 se situe la fin de la période paléocène.
Par ailleurs, la Zd4a (-2360 à –2335 m) qui constitue la base de l’Eocène, se caractérise par
la régression rapide, suivie de leur disparition, d’un lot d’espèces surtout abondantes dans
les sédiments du Paléocène. Dans la Zd4b (-2335 à – 2140 m) se retrouvent quelques
taxons au caractère biostratigraphique moins affirmé.
La biozonation des dinoflagellés ainsi établie sur une séquence de référence de la
Formation de Nkapa datée au préalable peut servir de base à l’analyse d’autres puits à
l’étude dans le sous-bassin de Douala.

Figure 5 : Distribution stratigraphique des espèces recensées dans la séquence de

Moulongo

97
 b
Zd4
a b a
Limite Paléocène/Eocène Zd2 Zd3
Zd1

5.1.2. Mamiwater (03°46’33’’ N – 09°45’03’’ E)

La séquence étudiée couvre une épaisseur de 380 m de la Formation de Nkapa, ce

qui n’en constitue qu’une partie, le forage n’ayant pas atteint sa base.
Quatre zones principales ressortent de l’analyse effectuée selon les mêmes principes
que pour Moulongo : examen des extensions verticales des différentes espèces inventoriées
et de la succession des acmés des taxons les plus significatifs.

Zone 1 (Zd1 : de – 1180 à –1140 m)

98
 Dans la Zone 1, on enregistre une présence marquée d’Areoligera coronata,
Glaphyrocysta ordinata et Lejeunecysta hyalina. Comme espèces compagnes, on note la
présence de Achomosphaera sp., Adnatosphaeridium multispinosum, Cerodinium diebelii,
Cordosphaeridium cf. inodes, Hafniasphaera septata et Palaeocystodinium australinum.

Zone 2 (Zd2 : de –1140 à – 1050 m)

La Zone 2 se distingue par les acmés d’Areoligera coronata et de Glaphyrocysta

ordinata auxquels succède celui d’Adnatosphaeridium multispinosum. Achomosphaera sp.,
Cerodinium diebelii et Cordosphaeridium cf. inodes sont faiblement représentés dans cette
zone alors que Hafniasphaera septata y connaît une légère progression.
Côté apparitions, citons celles d’Apectodinium homomorphum, Cordosphaeridium
minimum, Cordosphaeridium cf. multispinosum, Deflandrea denticulata, Eocladopyxis
peniculata, Phelodinium cf. magnificum, Senegalinium orei, Wilsonidium nigeriaense.
Enfin, à signaler deux disparitions ; Palaeocystodinium australinum au sommet de
Zd1 et Lejeunecysta hyalina dans Zd2.

Zone 3 (Zd3 : de –1050 à – 840 m)

La Zone 3 se subdivise en deux sous-zones soulignant deux phases distinctes

d’évolution dans les assemblages de dinoflagellés.
Dans la sous-zone 3a (–1050 à –900 m), certaines espèces restent stables par rapport
à leur situation dans Zd2 : Cordosphaeridium cf inodes, Cordosphaeridium cf.
multispinosum, Cordosphaeridium minimum, Deflandrea denticulata, Hafniasphaera
septata, Phelodinium cf. magnificum et Senegalinium orei. D’autres sont en progression,
comme Achomosphaera sp., Apectodinium homomorphum et Eocladopyxis peniculata.
Sont en régression : Adnatosphaeridium multispinosum, Areoligera coronata, Cerodinium
diebelii, Glaphyrocysta ordinata et Wilsonidium nigeriaense. Plusieurs espèces font leur
apparition dans cette sous-zone : Apectodinium hyperacanthum, Apectodinium
paniculatum, Apectodinium sp., Cerodinium wardenense, Fibrocysta vectensis,
Homotryblium cf. tenuispinosum, Kallosphaeridium yorubaense, Polysphaeridium subtile.
La sous-zone 3b (-900 à –840 m) est celle de l’expansion généralisée des
Apectodinium. On y observe les acmés d’Apectodinium homomorphum d’Apectodinium
quinquelatum et d’Apectodinium sp ainsi que la progression d’autres taxons du genre,

99
comme Apectodinium hyperacanthum et Apectodinium paniculatum alors qu’on note aussi
la présence d’Apectodinium parvum. Globalement, le genre Apectodinium, en expansion,
domine largement les autres taxons parmi lesquels Cordosphaeridium cf. multispinosum,
Fibrocysta vectensis et Senegalinium orei connaissent une faible progression. Sont encore
régulièrement présents dans la sous-zone 3b Achomosphaera sp., Eocladopyxis peniculata
et Glaphyrocysta ordinata alors qu’y sont faiblement représentés Cerodinium wardenense,
Cordosphaeridium minimum, Deflandrea denticulata, Homotryblium cf. tenuispinosum,
Kallosphaeridium yorubaense, Phelodinium cf. magnificum et Polysphaeridium subtile.
Apparaissent à ce niveau Apectodinium parvum, Hystrichosphaeridium tubiferum et
Lejeunecysta cf. beninensis alors que sont en recul Areoligera coronata et Hafniasphaera
septata et que disparaissent Cerodinium diebelii et Cordosphaeridium cf. inodes.

Zone 4 (Zd4 : de –840 à – 820 m)

Dans cette dernière zone, le genre Apectodinium est en régression. Si Apectodinium

hyperacanthum et Apectodinium parvum se maintiennent, mais en faibles pourcentages, les
autres espèces sont en recul : Apectodinium homomorphum, Apectodinium paniculatum,

Figure 6 (page suivante) : Répartition stratigraphique des espèces recensées dans les
séquences de Mamiwater et Nord Matanda

100
 Profondeurs (en m)

-1140
-1100

-1180
-1050
-1000
-900
-840
-830
-820

-1200
Pal
aeo
Leje cystod
un ini
Cer ecysta um aus
odin t
Cor ium hyalina ralinum
dos dieb
eli
MAMIWATER

Are phaerid i
olig ium
Gla e r a co cf in
phy r ode
s
rocy onata
sta
Adn
atos ordin
Haf ph ata
nias aeridiu
Ach p h a m mul
omo era se tisp
s p p t ata
inos
Ape hae um
ctod ra s
Cor in p
dos ium ho
pha
Sen erid momor
ega ium p
liniu min hum
3°46’33” N - 9°45’03” E

mo imu
Phe
lodin rei m
Wils iu
onid m cf m

NORD MATANDA 3°56’37” N - 9°36’23” E

ium ag
Def nige nificum
land
r ea d r iaae
Cor enti nse
dos cula
pha ta
Eoc erid
lad ium
Fibr opyxis cf m
ocy pen ult
Ape s ta v icula ispinos
ctod ecten ta um
Ape in sis
ctod ium pa
Poly iniu n
sp m s iculatu
p m
Hom haerid
otry ium
Cer b su

Légende : %
odin lium te btile
Ape ium w nuispi

0.5
ct ar no
Ape odinium denens sum
ctod q u e

3
Kall ini inq
osp um hyp uelatu
era m

10
Ape haerid can
ctod ium
yo t h um

dispersé
Hys ini

20
trich um cf rubaen
Leje o s p a se
une phaerid rvum

30
We c ysta iu
tzeli cf b m tubif
ella enin e

40
sp ens rum
is
Zd1 a b
Zd2 Zd3 Zd4

101
Apectodinium quinquelatum et Apectodinium sp. Avec le tassement du genre Apectodinium,
on enregistre aussi celui de Fibrocysta vectensis et de Glaphyrocysta ordinata. Sont encore
régulièrement présents dans la Zone 4 : Achomosphaera sp., Cordosphaeridium cf.
multispinosum, Eocladopyxis peniculata et Senegalilium orei ; le sont aussi mais à des taux
de représentativité moindres : Adnatosphaeridium multispinosum, Cerodinium wardenense,
Cordosphaeridium minimum, Deflandrea denticulata, Hafniasphaera septata,
Homotryblium cf. tenuispinosum, Hystrichosphaeridium tubiferum, Kallosphaeridium
yorubaense, Lejeunecysta cf. beninensis, Phelodinium cf. magnificum et Polysphaeridium
subtile. On note également dans la Zd4 l’apparition du genre Wetzeliella et la disparition
d’Areoligera coronata.
De la même manière que pour Moulongo, la séquence de Mamiwater a été
subdivisée en quatre biozones principales (Zd1 à Zd4) délimitées par le jeu des apparitions-
disparitions des espèces de dinokystes et le positionnement des acmés des taxons les plus
significatifs.
L’évolution de la biozonation peut être synthétisée comme suit (v. figure 6) :
- La première Zone (Zd1 : -1180 à –1140 m), a été déterminée par la présence de trois
espèces marquantes : Areoligera coronata, Glaphyrocysta ordinata et Lejeunecysta hyalina
- A la Zone 2 (Zd2 : -1140 à –1050 m) correspondent les acmés de Adnatosphaeridium
multispinosum, Areoligera coronata et Glaphyrocysta ordinata.
- La spécificité de la Zone 3a (Zd3a : -1050 à –900 m) consiste en l’apparition d’un lot
d’espèces nouvelles au sein d’un assemblage diversifié et en la présence affirmée de
certains taxons.
- La Zone 3b (Zd3b : -900 à –840 m) est marquée par la progression généralisée du genre
Apectodinium en général et par les acmés d’Apectodinium homomorphum et
d’Apectodinium quinquelatum en particulier.
- La Zone 4 (Zd4 : -840 à –820 m) se signale par la régression du genre Apectodinium dans
son ensemble et par l’apparition modérée mais significative du genre Wetzeliella.

5.1.3. Nord Matanda (03°56’37’’ N – 09°36’23’’ E)

La séquence de Nord Matanda présente une épaisseur de 680 m. Ici aussi, quatre
zones principales ont été identifiées.

102
 Zone 1 (Zd1 : de – 2630 à – 2450 m)

Les deux principales espèces recensées à ce niveau sont Cerodinium diebelii et

Glaphyrocysta ordinata ; elles font partie d’un ensemble comprenant : Achomosphaera sp.,
Andalusiella gabonensis, Areoligera coronata, Lejeunecysta hyalina, Palaeocystodinium
australinum. Apparaissent dans cette première zone : Adnatosphaeridium multispinosum,
Cerodinium wardenense, Cordosphaeridium cf. inodes et Hafniasphaera septata.

Zone 2 (Zd2 : de –2450 à –2200 m)

Le caractère particulier de la zone 2 réside dans les acmés de Adnatosphaeridium

multispinosum, Areoligera coronata et Glaphyrocysta ordinata. Ces espèces dominent
celles qui poursuivent leur extension dans la zone comme Achomosphaera sp., Cerodinium
wardenense, Cordosphaeridium cf. inodes et Hafniasphaera septata ou y apparaissent,
telles Deflandrea denticulata, Deflandrea cf. oebisfeldensis, Eocladopyxis peniculata,
Phelodinium cf. magnificum, Senegalinium orei, Wilsonidium nigeriaense. A signaler la
disparition dans Zd2 de Lejeunecysta hyalina.

Zone 3 (Zd3 : de –2200 à –2000 m)

Dans cette zone, cinq espèces se démarquent des autres par leur progression ;
toutefois, leur taux de représentativité reste plutôt modeste. Ces cinq espèces,
Achomosphaera sp., Cerodinium wardenense, Eocladopyxis peniculata, Kallosphaeridium
yorubaense, Senegalinium orei font partie d’un ensemble, déjà présent dans la zone 2, où
on recense la présence de Adnatosphaeridium multispinosum, Areoligera coronata,
Deflandrea denticulata, Deflandrea cf. oebisfeldensis, Glaphyrocysta ordinata,
Hafniasphaera septata, Phelodinium cf. magnificum et Wilsonidium nigeriaense. Le genre
Apectodinium représenté par les espèces homomorphum et quinquelatum ont des taux
confidentiels alors que Apectodinium hyperacanthum, à peine apparu au sommet de la Zone
2 disparaît déjà à la base de la zone 3. Avec les deux premières espèces d’Apectodiunium
précitées apparaît Polysphaeridium subtile. Les espèces Areoligera coronata et
Glaphyrocysta ordinata qui ont connu un acmé dans la zone 2, sont en régression et
atteignent la limite de leur extension stratigraphique au sommet de la zone 3.

103
 Zone 4 (Zd4 : de –2000 à –1950 m)

La Zone 4 se signale par la progression d’une série d’espèces dont l’avancée est
toutefois relativement modérée. Il s’agit d’Achomosphaera sp., Apectodinium
quinquelatum, Cerodinium wardenense, Deflandrea cf. oebisfeldensis et Senegalinium orei.
Les autres espèces de l’assemblage précédent se maintiennent sauf Deflandrea denticulata
qui régresse alors que Areoligera coronata et Glaphyrocysta ordinata ont disparu. On
notera particulièrement ici l’apparition du genre Wetzeliella et de Cordosphaeridium cf.
minimum.
Dans la séquence de Nord-Matanda, les quatre zones biostratigraphiques (Zd1 à
Zd4) ont été délimitées principalement par les apparitions-disparitions des espèces et par
leurs fluctuations plutôt que par les acmés de certaines d’entre elles. Par exemple, on ne
dispose pas ici du repère « Apectodinium » existant dans les deux autres puits.

L’évolution de la biozonation se présente comme suit (voir Figure 5) :

- La première zone (Zd1 : -2630 à – 2450 m) a été déterminée par la présence de deux
espèces légèrement dominantes, Cerodinium diebelii et Glaphyrocysta ordinata associées à
Areoligera coronata.
- Le début et la fin de trois acmés fixent les limites de la Zone 2 (Zd2 : - 2450 à – 2200 m) :
ceux de Adnatosphaeridium multispinosum, Areoligera coronata et Glaphyrocysta
ordinata. Dans cette zone apparaissent six nouvelles espèces.
- Quatre taxons déjà présents dans la Zone 2 sont en progression dans la Zone 3 (Zd3 : -
2200 à – 2000 m) mais cette progression ne constitue pas un élément distinctif spécialement
déterminant dans l’ensemble des taxons de la zone. Quatre nouvelles espèces, dont
Kallosphaeridium yorubaense est la plus marquante, apparaissent dans la zone 3 ; les deux
Apectodinium dont la présence est plutôt discrète, sont cités à titre informatif.
- Parmi les éléments en progrès dans la Zone 4 (Zd4 : - 2000 à – 1950 m), ou qui y
apparaissent, le genre Wetzeliella et l’espèce Cordosphaeridium cf. minimum sont les plus
significatifs.

104
5.2. CORRELATIONS DES BIOZONES DES DINOFLAGELLÉS
Du point de vue de leur composition, les deux premières zones présentent des
analogies évidentes dans les trois séquences étudiées.
Ainsi, dans la Zone 1 (Zd1), sept espèces distinctives de dinoflagellés sont présentes
à des taux divers dans les trois sites, à savoir : Achomosphaera sp., Adnatosphaeridium
multispinosum, Areoligera coronata, Cerodinium diebelii, Glaphyrocysta ordinata,
Hafniasphaera septata et Lejeunecysta hyalina.
Dans l’ensemble, la présence la plus nette dans les trois puits est celle de
Glaphyrocysta ordinata ; celle d’Areoligera coronata est plus marquée dans Mamiwater et
Moulongo que dans Nord Matanda alors que Lejeunecysta hyalina est davantage présente
dans Mamiwater. Les autres taxons oscillent entre présence régulière ou sporadique. Le
genre Palaeocystodinium est présent dans les trois séquences mais à Mamiwater et Nord
Matanda, il s’agit de l’espèce Palaeocystodinium australinum alors qu’à Moulongo c’est
Palaeocystodinium golzowense qui a été recensé. Certaines espèces ne sont présentes que
dans deux sites sur les trois ; c’est le cas de l’espèce Cerodinium wardenense et du genre
Andalusiella (respectivement Andalusiella sp. et Andalusiella gabonensis) à Moulongo et
Nord Matanda et de Cordosphaeridium cf. inodes à Mamiwater et Nord Matanda. Quant à
l’espèce Phelodinium cf. magnificum, elle n’apparaît qu’à Moulongo.
La Zone 2 (Zd2) des trois diagrammes se distingue par les acmés de trois taxons :
Areoligera coronata, Adnatosphaeridium multispinosum, Glaphyrocysta ordinata. Bien que
les acmés présentent un léger décalage dans leur évolution, leur début et leur fin constituent
un élément majeur pour la délimitation de la Zone 2 dans les trois puits. Si Achomosphaera
sp. enregistre une légère progression partout, celle-ci est limitée à Mamiwater et Nord
Matanda pour Hafniasphaera septata. Concernant les apparitions dans la Zone 2
respectives, on citera : Cordosphaeridium cf multispinosum, Eocladopyxis peniculata,
Senegalinium orei et Wilsonidium nigeriaense. Apectodinium homomorphum apparaît à
Moulongo et Mamiwater et Deflandrea denticulata à Mamiwater et Nord Matanda. Parmi
les disparitions, on notera celles de Palaeocystodinium australinum et du genre
Andalusiella. Encore dispersé à Moulongo, Lejeunecysta hyalina disparaît déjà à
Mamiwater et Nord Matanda.
Si les deux premières zones présentent des similitudes dans les trois sites, c’est
moins évident pour la Zone 3 (Zd3). Pour Moulongo et Mamiwater on a encore une
concordance bien perceptible mais pour Nord Matanda, c’est moins net. Deux sous-zones

105
peuvent se dégager des Zones 3 de Moulongo et de Mamiwater, ce qui n’est pas le cas pour
Nord Matanda où on ne dispose pas de repères particuliers, notamment du repère
« Apectodinium », pour une subdivision en deux sous-zones.
Globalement, on constate pour la Zone 3 des differents puits une progression de
Achomosphaera sp., Eocladopyxis peniculata et Senegalinium orei alors que,
conjointement, sont en recul Adnatosphaeridium multispinosum, Areoligera coronata et
Glaphyrocysta ordinata, ces deux dernières espèces atteignant leur limite de répartition à
Nord Matanda. Parmi les progressions, on remarque celles des espèces d’Apectodinium à
Moulongo et Mamiwater alors qu’il s’agit seulement d’apparitions à Nord Matanda. Parmi
les espèces quasiment stationnaires, on relève Cerodinium wardenense, Kallosphaeridium
yorubaense et Phelodinium cf. magnificum. Côté disparitions, on citera celles de
Cerodinium diebelii et Cordosphaeridium cf. inodes.
Les sous-zones Zd3a et Zd3b de Moulongo et de Mamiwater doivent leurs
similitudes principalement au développement notable du genre Apectodinium dont les
espèces enregistrées dans les deux sites connaissent une progression dans les sous-zones 3a
et des acmés dans les sous-zones 3b. A côté de ce fait majeur on enregistre d’autres faits
moins marquants, mais analogues dans les deux séquences : une progression modérée de
Cordosphaeridium cf. multispinosum et de Fibrocysta vectensis, les progrès ou la stabilité
de Homotryblium cf. tenuispinosum, de Polysphaeridium subtile et de Senegalinium orei, la
constance de Achomosphaera sp., Eocladopyxis peniculata, Kallosphaeridium yorubaense,
Phelodinium cf. magnificum ou la diminution de certains taxons comme
Adnatosphaeridium multispinosum, Areoligera coronata et Glaphyrocysta ordinata.
Etant donné les analogies décelées dans les deux séquences, on peut considérer que,
par comparaison avec Moulongo où la fin de l’acmé d’Apectodinium se situe au sommet de
Zd3b, à une limite Paléocène-Eocène préétablie (rapport de sondage inédit, 1995), le
sommet de Zd3b à Mamiwater peut raisonnablement être aussi considéré comme la limite
Paléocène-Eocène. On sera plus réservé pour fixer celle-ci au sommet de la Zd3 à Nord
Matanda, par manque de repères indiscutables, en admettant toutefois que cette proposition
serait très vraisemblable.
Pour la zone 4 (Zd4), les traits communs sont plus évidents entre la Zd4a de
Moulongo et la Zd4 de Mamiwater qu’entre la zone Zd4 de ces deux sites et la Zd4 de Nord
Matanda. La Zd4b de Moulongo ne se retrouve ni à Mamiwater, ni à Nord Matanda,
vraisemblablement à cause d’évolutions sédimentaires distinctes dues, lors de la régression
marine de l’Eocène inférieur, à la position géographique des sites au sein du bassin.

106
 Le fait principal constaté à Moulongo et à Mamiwater est le recul généralisé des
espèces du genre Apectodinium après leur acmé enregistré dans Zd3b. Parmi les autres
taxons recensés dans les deux sites, certains sont stables ou en léger progrès comme
Achomosphaera sp., Adnatosphaeridium multispinosum, Cordosphaeridium multispinosum,
Eocladopyxis peniculata, Kallosphaeridium yorubaense, Polysphaeridium subtile ; d’autres
sont stables ou subissent un tassement tels Fibrocysta vectensis, Glaphyrocysta ordinata,
Hafniasphaera septata, Homotryblium cf. tenuispinosum, Phelodinium cf. magnificum,
Senegalinium orei. Parmi les disparitions, à signaler celles de Areoligera coronata et de
Cerodinium wardenense.
Malgré l’absence à Nord Matanda de repère indubitable, des correspondances
peuvent s’observer entre la Zd4 de ce site et celles de Moulongo et de Mamiwater. Les
taxons inventoriés ont, pour la plupart, un comportement similaire dans les différentes
séquences, soit qu’ils soient stables, légèrement progressifs ou légèrement régressifs. Le
fait le plus significatif est, à Nord Matanda comme à Mamiwater, l’apparition du genre
Wetzeliella.
Enfin, dans la Zd4b de Moulongo où la concentration en dinokystes se raréfie
progressivement, on recense encore la présence de Achomosphaera sp., Adnatosphaeridium
multispinosum, Cordosphaeridium cf. multispinosum, Homotryblium cf. tenuispinosum et
Polysphaeridium subtile.
Les corrélations discutées ci-dessus sont reprises à la figure 7 (page suivante) qui en
constitue la synthèse.

107
 PALEOCEN E

3000
2000
1000
800
600
Profondeurs (en m)

Inférieur

CRETACE
Supérieur
EOCENE

Inférieur
Supérieur
Fm Fm
Formation de Nkapa

1
A nda Logbaba Souellaba
lusie

3085
2630
1940
ll a ga

1152

2
Cero b o ne
d inium nsis

3
diebe
Lejeu li i

Z2
Z3

Z1
Z4
necy
sta h

4
P ala y ali n
eocy a
stodin
9° 36’ 23” E

5
3° 56’ 37” N

A reo ium
li gera aus tr
Nord Matanda

2450
2200
2000
alinu
cor on m

6
Cord ata
os ph
aeri d

7
P ala ium in
eocy odes
A dna
stodin
ium Fm
tos p
haer
golzo
wens Formation de Nkapa Souellaba
Cord idium e
os ph multis
aeri d pino
Hafn iu mm sum
1183
820

ias ph inimu
m
268

a er a
Lejeu s epta
necy ta
sta b
Z4

Z1
Z2
Z3

Fibro enine
cy sta ns is
Glap v ecten
sis
Mamiwater

9° 45’ 03” E

hyroc
3° 46’ 33” N

Eocène
ys ta
900

1180
1140

ordin
1050

K all o ata

Paléocène
spha
eridiu
P helo m yo
diniu ruba
m c f. ense
Defla magn
ndre
A pec a denti
ific um
todin c ulata
ium h
A pec omo
todin morp
ium h hu m
y per
Apec
todin a canth

3020
2362
2120

um

3564
1467

ium p
A pec anicu
todin latum
ium q
A pec uinqu
Z4

Z2
Z3

todin elatu Z1
ium s
p
m
Cero
diniu
m wa
Cord rden
Moulongo

2550
2440
2400
2335

os ph
9° 37’ 32” E

ens e
3° 27’ 45” N

aeri d
ium m
(Sondage de référence)

E ocla ultisp

de Nkapa en référence à leur distribution dans divers bassins d’Afrique de l’Ouest

dopy

Figure 7 : Corrélations stratigraphiques entre les différentes séquences étudiées

xis p inosu
Hom enic u m
otryb lata Fm Fm
S ene
lium
tenu Logbaba Formation de Nkapa Souellaba
is pin
galin Eoc ène

.
ium o osum C rétacé Palé oc ène Oli go-Mi ocè ne
W il so r ei su pé rieu r infér ieur
nidiu
m nig
P oly eri ae
spha ns e

Figure 8 : Extension temporelle des principales espèces à caractère biostratigraphique de la Formation

eri diu
Hy str m su
ichos btile
phae

8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30
Wetz r idium
eli ell
a tubife
r um

108
5.3. INTERPRETATION ET DISCUSSION

5.3.1. Biostratigraphie

Des investigations bibliographiques relatives à la distribution stratigraphique dans

divers bassins d’Afrique de l’Ouest, voisins de celui de Douala, des trente taxons ayant
servi à définir les biozones de la Formation de Nkapa dans les forages de Moulongo,
Mamiwater et Nord Matanda, ont permis de positionner ces derniers dans une échelle
chronologique envisagée au sens large (tableaux 2 et 3) et dont la synthèse est consignée
sur la Figure 8 (page précédente).
Majoritairement, les informations proviennent de travaux entrepris sur les proches
bassins du Nigeria (JAN DU CHENE & ADEDIRAN, 1984 ; OLOTO, 1989 ; EDET &
NYONG, 1994 ; BANKOLE et al. 2007 ; LUCAS & ISHIEKWENE, 2010a ;
ADEONIPEKUM et al., 2012) mais on dispose aussi de renseignements en provenance de
la Côte d’Ivoire (DIGBEHI et al., 2011), de la marge Côte d’Ivoire-Ghana (MASURE et
al., 1998 ; OBOH-IKUENOBE et al., 1998), du Ghana (ATTA-PEETERS & SALAMI,
2004a, 2006) et du Gabon (BOLTENHAGEN, 1977).
La figure 8 représente une synthèse des informations recueillies concernant la
distribution chronostratigraphique des taxons dans les différents bassins sus-mentionnés.
Dans cet ensemble, quatre espèces issues du Crétacé supérieur ne dépassent pas le
Paléocène inférieur : Andalusiella gabonensis, Cerodinium diebelii, Lejeunecysta hyalina,
Palaeocystodinium australinum et deux le Paléocène supérieur : Areoligera coronata et
Cordosphaeridium cf. inodes. Quatre autres enfin atteignent la base de l’Eocène :
Adnatosphaeridium multispinosum, Cordosphaeridium cf. minimum, Hafniasphaera
septata et Paleocystodinium golzowense. A noter que la présence au Crétacé supérieur de
Adnatosphaeridium multispinosum et de Hafniasphaera septata n’a été signalée qu’au
Ghana (ATTA-PEETERS & SALAMI, 2004a, 2006) et celle de Cordosphaeridium cf.
minimum en Côte d’Ivoire (DIGBEHI et al., 2011) alors que dans les autres bassins leur
apparition est plus tardive, au début du Paléocène. Par ailleurs, la présence de
Palaeocystodinium golzowense à l’Eocène inférieur n’a été mentionnée qu’en Côte d’Ivoire
(DIGBEHI et al., 2011). Cinq taxons apparaissent au Paléocène inférieur dont seul
Lejeunecysta beninensis est limité à cette période ; les quatre autres, Fibrocysta vectensis,
Glaphyrocysta ordinata, Kallosphaeridium yorubaense et Phelodinium cf. magnificum se

109
retrouvent à l’Eocène inférieur. Jusqu’à présent, Deflandrea denticulata n’a été signalé
qu’au Paléocène supérieur. Parmi les douze espèces présentes au Paléocène supérieur et à
l’Eocène inférieur on dénombre un groupe d’Apectodinium (A. homomorphum, A.
hyperacanthum, A. paniculatum, A. quinquelatum et Apectodinium.sp.) auquel sont associés
Cerodinium wardenense, Cordosphaeridium multispinosum, Eocladopyxis peniculata,
Homotryblium cf. tenuispinosum, Senegalinium orei et Wilsonidium nigeriaense. Enfin,
trois taxons apparaissent à l’Eocène : Polysphaeridium subtile, Hystrichosphaeridium
tubiferum et Wetzeliella sp.
Rapportée aux trois séquences étudiées, l’analyse met en évidence la présence, dans
les Zones 1, d’un ensemble de marqueurs représentant un héritage du Crétacé supérieur
(fig.8 : taxons 1 à 7) dont quatre (1 à 4) ne dépassent pas le Paléocène inférieur et trois (5,
6, 7) le Paléocène supérieur. A cet ensemble sont associés trois taxons (fig.8 : 10, 13, 15)
faisant leur apparition au Paléocène inférieur ainsi qu’une première espèce (fig.8 : 22) dont
les débuts sont mentionnés au Paléocène supérieur (JAN DU CHENE & ADEDIRAN,
1984) ; cette dernière espèce est plutôt sporadique au niveau de la Zone 1.
Dans leur étude sur des affleurements d’argiles litées de la Formation de Nkapa de
la région de Souza (v. Figure 1), dans la partie nord du sous-bassin de Douala, KENFACK
et al. (2012) ont identifié seize taxons de dinoflagellés parmi lesquels on retrouve des
genres et espèces également présents dans les séquences de Moulongo, Mamiwater et Nord
Matanda, avec, entre-autres : Adnasphaeridium sp., Andalusiella gabonensis, Areoligera
sp., Palaeosystodinium golzowense issus du Crétacé ainsi que des taxons propres au
Paléocène, tels que Fibrocysta, Glaphyrocysta sp., Hafniasphaera septata,
Kallosphaeridium, Phelodinium. Sur base de leurs observations limitées à seize taxons, les
auteurs attribuent prudemment à leur gisement un âge situé dans une fourchette
Maastrichtien-Paléocène.
En ce qui concerne la Zone 1 de Moulongo, Mamiwater et Nord Matanda, compte
tenu des apparitions et des disparitions d’espèces, de l’évolution de la distribution de celles-
ci dans les différentes séquences, de la composition générale des assemblages de
dinoflagellés (Tableau 1) et des comparaisons avec les bassins voisins, on peut
raisonnablement admettre qu’elles sont d’âge Paléocène inférieur, d’autant plus que, pour la
plupart, les espèces issues de la microflore crétacée sont en fin de période, ainsi que
l’attestent leurs faibles pourcentages dans les graphiques.
Pour la Zone 2 des trois puits, on observe une raréfaction des taxons issus du
Crétacé supérieur. Pour certains (fig. 8 : 1, 2, 4), il s’agit d’une quasi-disparition ; pour

110
d’autres (fig.8 : 3, 6, 7), d’un taux de représentativité qui s’amenuise. Fait important, on
enregistre à ce niveau les acmés de trois espèces : Areoligera coronata, déjà présente vers
la fin du Crétacé, ainsi que Adnatosphaeridium multispinosum et Glaphyrocysta ordinata
citées généralement comme apparaissant au Paléocène inférieur. A côté de ces espèces
dominantes on remarque une présence modérée d’autres taxons du Paléocène inférieur (fig.
8 : 10, 14, 15). Enfin, on recense un lot de taxons (fig. 8 : 17, 23, 24, 26, 27) habituellement
identifiés dans des assemblages caractéristiques du Paléocène supérieur et de l’Eocène
basal. Ainsi, de par leur composition hétérogène, la zone 2 des trois séquences se présente
comme le reflet d’une période de transition assimilable à un âge « Paléocène moyen »
(Thanétien inférieur).
La Zone 3 se distingue par différents faits marquants ; tout d’abord, par la
disparition ou la régression sensible d’espèces héritées de la microflore du Crétacé
supérieur (fig. 8 : 2, 3, 6, 7), la stabilité de taxons du Paléocène inférieur (fig. 8 : 10, 12, 14,
15) et le recul des trois espèces dont l’acmé se situe dans la Zone 2 (fig. 8 : 5, 8, 13). Mais
la spécificité de la Zone 3 réside principalement dans la progression d’un assemblage
d’espèces identifiant le Paléocène supérieur et l’Eocène basal dans les bassins d’Afrique de
l’ouest (fig. 8 : 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26). Parmi la progression la plus
significative au sein de cet ensemble, on note celle des espèces du genre Apectodinium mais
celle-ci ne se remarque de façon tangible que dans les sites de Moulongo et de Mamiwater.
A signaler aussi la présence discrète de taxons à affinités éocènes (fig. 8 : 28, 29, 30). Par
rapport à l’assemblage de dinoflagellés qu’elles renferment et en raison de la coupure
Paléocène/Eocène prédéfinie (rapport de sondage, 1995) dans la séquence de Moulongo, un
âge Paléocène supérieur doit être attribué à la zone 3 des différentes séquences étudiées.
Dans la zone 4, on remarque la disparition des dernières espèces crétacées et une
raréfaction des taxons du Paléocène inférieur. En majorité, les espèces apparues au
Paléocène supérieur se maintiennent et certaines même progressent (fig. 8 : 23, 25) alors
qu’apparaissent des taxons (fig. 8 : 28, 29, 30), dont le genre Wetzeliella, qui permettent de
considérer les couches terminales de la Formation de Nkapa dans les trois puits comme
étant d’âge Eocène.
Il faut remarquer aussi la faible épaisseur des couches éocènes à Mamiwater et à
Nord Matanda par rapport à celles de Moulongo qui occupent une position plus externe
dans le sous-bassin de Douala. Lorsqu’on se déplace vers l’intérieur de ce dernier, il arrive
que l’Eocène soit absent dans les séquences, résultat de la phase marine régressive ayant
marquée l’amorce de cette période géologique ; c’est le cas notamment des affleurements

111
étudiés par KENFACK et al. (2012) dans sa partie nord. A plus large échelle, si l’Eocène
est habituellement reconnu dans le sous-bassin de Douala (LAWRENCE et al., 2002), il
semble par contre absent dans le sous-bassin de Kribi-Campo, situé plus au sud
(NTAMAK-NIDA et al., 2010).

CIE, PETM et limite Paléocène-Eocène

L’excursion isotopique du carbone (CIE), mise en évidence par l’analyse de

carbonates biogéniques marins et du carbone inorganique dissous se caractérise par de
12
hautes valeurs du ratio C-13C à la fin du Paléocène et par de faibles valeurs au début de
l’Eocène (SINHA, et al., 1996 ; SINHA, 1997). Le phénomène, reconnu globalement,
survient à la base de la moitié supérieure de la biozone NP9 (NP9b) de l’échelle du
nannoplancton. Il est considéré comme la meilleure façon de corréler les séries marines et
les séries continentales, même si ces dernières renferment des réservoirs à carbone non
fossilifères (STOTT et al., 1996). En effet, le CO2 transformé via la photosynthèse par la
flore terrestre transfère en milieu continental l’anomalie isotopique enregistrée en milieu
marin. Cette anomalie isotopique reconnue sur les sites ODP (Ocean Drilling Program) 690
dans l’Océan antarctique et les sites DSDP (Deep Sea Drilling Program) 549 et 550 dans
l’Atlantique nord atteint sa valeur la plus négative vers la base de la moitié superieure de la
nannozone NP9b ; celle-ci coïncide avec une extinction massive des Foraminifères
benthiques (+/- 50%) et d’importants changements de la faune terrestre (AUBRY et al.,
1996 ; STOTT et al., 1996). Parallèlement à la CIE (Carbon Isotope Excursion), l’IETM
(Initial Eocene Thermal Maximum), plus récemment appelé le PETM (Paleocene-Eocene
Thermal Maximum) traduit une augmentation généralisée de la température des eaux
marines avec, comme corollaire, un réchauffement climatique global.
L’excursion isotopique du carbone a donc retenu particulièrement l’attention au
moment où une définition précise de la limite Paléocène-Eocène à l’échelle planétaire
s’imposait, dès lors que la suppression de l’étage Sparnacien ait créé la confusion en fixant
arbitrairement cette limite entre le Thanétien et l’Yprésien (AUBRY, 2000).
D’après nos observations, dans le Bassin de Douala, l’acmé d’Apectodinium se situe
sous la limite Paléocène-Eocène établie au sondage de Moulongo (rapport de sondage,
1995). Au Nigeria, cet acmé est considéré comme caractéristique du Paléocène supérieur
(BANKOLE et al., 2007 ; ADEONIPEKUM et al., 2012) ce qui confirme nos résultats. Sur
ce point cependant, une information plus précise nous est fournie par des travaux effectués

112
sur des dépôts paléocènes-éocènes de la région de Lagos par FRIELING et al. (2011). Sur
base de résultats préliminaires relatifs à la position de la CIE repérée dans ses dépôts et du
phytoplancton y recensé, l’auteur situe l’acmé d’Apectodinium avant la CIE qui, à l’origine
du PETM (Paleocene-Eocene Thermal Maximum), est reconnu comme marquant la limite
Paléocène-Eocène à l’échelle mondiale. Ceci constitue un élément majeur précisant la
position biostratigraphique de l’acmé du genre Apectodinium dans les bassins d’Afrique
occidentale.
Dans le Bassin de Douala, l’acmé d’Apectodinium enregistré au Paléocène supérieur
est précédé par des phases d’extension d’autres taxons biostratigraphiquement significatifs
qui se succèdent dans le temps ; ainsi, Cerodinium diebelii et Palaeocystodinium
australinum progressent dans le Paléocène inférieur tandis que Adnatosphaeridium
multispinosum, Areoligera coronata et Glaphyrocysta ordinata connaissent un acmé au
« Paléocène moyen » (Thanétien inférieur). Au Paléocène supérieur, Cerodinium
wardenense accompagne Apectodinium dans sa phase d’expansion. Enfin, le début de
l’Eocène voit s’affirmer la présence de Wetzeliella sp.

5.3.2. Paleoenvironnements

L’évolution de l’environnement de dépôt de la Formation de Nkapa a pu être

reconstituée sur base des caractères écologiques spécifiques de différents assemblages de
dinokystes se succédant dans les séquences de Moulongo, Mamiwater et Nord Matanda.
Ces assemblages (groupements) ont été définis en tenant compte de critères d’évaluation
particuliers (hydrographie, température, salinité, degré d’eutrophisation des eaux,
positionnement des espèces sur la marge continentale) discutés dans de nombreux travaux
sur la question, particulièrement ceux de : DOWNIE et al., 1971 ; JAN DU CHENE &
ADEDIRAN, 1984 ; BRINKHUIS & ZACHARIASSE, 1988 ; OLOTO, 1992 ;
BRINKHUIS, 1994 ; BUJAK & MUDGE, 1994 ; THOMAS, 1996 ; POWELL et al., 1996
; STOVER et al., 1996 ; IAKOVLEVA et al., 2001 ; STEURBAUT et al., 2003 ;
CROUCH & BRINKHUIS, 2005 ; PROSS & BRINKHUIS, 2005 ; SLUIJS et al., 2008 ;
SLUIJS & BRINKHUIS, 2009 ; ALEKSANDROVA et al., 2012.

113
 MOULONGO 3°27’45” N - 9°37’32” E
2260

EOCENE
Régression
2300 Milieu marin régressif
Zone lagunaire de faible profondeur d’eau, à salinité prononcée.
Apports détritiques de la zone périphérique.
2340
2360

Sup.
Environnement d’estuaire à salinité variable
2380

PALEOCENE
Milieu fluvio-lagunaire avec apport d’eau douce marqué
2400

Transgression
Phase transgressive importante - Milieu marin largement ouvert
2420 Milieu lagunaire de type saumâtreà salinité modérée
2440

Inférieur
Influence marine franche en zone littorale peu profonde
2480 Milieu estuarien soumis à une influence marine sensible
2500
0 50 100%
Dinoflagellés
Pollens + Spores
100% 50 0

NORD MATANDA 3°56’37” N - 9°36’23” E

1950

Eo
Zd4
Milieu lagunaire littoral confiné à forte salinité, déficitaire en apport d’eau douce
2000

Supérieur
Milieu lagunaire à dominance d’eaux saumâtres riches en nutriments et à
Zd3

salinité réduite par des apports d’eau douce continentale.

2200

PALEOCENE
Environnement marin de zone côtière à influence du plateau continental externe
2250

Moyen
Zd2

Contexte transgressif - Influence marine accrue mais restant sous influence

du plateau continental interne
2400
Milieu estuarien sous influence du plateau continental interne
2450
Environnement marin aux eaux peu profondes de milieux estuariens ou

Inférieur
2500 littoraux.
Zd1

2550 Phase transgessive de mer ouverte - Fraîcheur entretenue par des upwellings
2600
0 50 100%
Dinoflagellés
Pollens + Spores
100% 50 0

MAMIWATER 3°46’33” N - 9°45’03” E

820

Eo
Lagune littorale à contact marin restreint et à forte salinité
840

900 Supérieur
PALEOCENE
Zd3

Lent mouvement transgressif.

Passage d’un milieu lagunaire saumâtre à un milieu estuarien à salinité
modérée.
1000

1150
Inf. Moyen

Environnement lagunaire saumâtre - Apport d’eau douce du milieu continental.

Zd2

1100
1140 Milieu côtier sous influence du plateau continental interne
Zd1

1180
0 50 100%
Dinoflagellés
Pollens + Spores
100% 50 0

Figure 9 : Evolution environnementale déduite des ratios dinoflagellés/pollen et spores

calculés ainsi que des données de la littérature relatives à l’écologie des principales espèces
de dynokystes recensés (références dans le texte).

Aux différentes zones définies biostratigraphiquement dans les trois séquences

considérées correspondent des particularités paléoenvironnementales soulignant l’évolution
du bassin sédimentaire au cours du temps. Ainsi, la première biozone (Zd1) présente un

114
ensemble de dinokystes composé principalement d’espèces des genres Andalusiella,
Areoligera, Cerodinium, Glaphyrocysta, Hafniasphaera, Lejeunecysta, Palaeocystodinium
et Phelodinium. Cette association dans laquelle prédominent, dans l’ordre, Areoligera,
Glaphyrocysta, Lejeunecysta (surtout à Mamiwater) et Hafniasphaera (plutôt à Moulongo)
atteste un environnement marin ouvert d’eaux peu profondes de milieux estuariens ou
littoraux propices à une concentration en nutriments et présentant une certaine fraîcheur
entretenue au large par des upwellings (LIENGJARERN et al., 1980 ; BRINKHUIS &
ZACHARIASSE, 1988 ; POWELL et al., 1996). Dans la deuxième phase évolutive (Zd2)
du bassin, trois espèces enregistrent leur acmé : Areoligera coronata, Adnatosphaeridium
multispinosum et Glaphyrocysta ordinata. Cette association reconnue comme Groupement
(ou Complexe) à Areoligera est représentatif d’un environnement littoral de mer ouverte
peu profonde mais qui serait sous l’influence du milieu néritique interne du plateau
continental responsable de l’apport de matériaux clastiques grossiers (DOWNIE et al.,
1971 ; BRINKHUIS, 1984 ; STOVER et al., 1996 ; SLUIJS et al., 2008). Comme
compagnes de moindre importance mais témoignant aussi d’un environnement littoral, on
note la présence de Achomosphaera sp., Cordosphaeridium cf. inodes, Hafniasphaera
septata et Phelodinium cf. magnificum. Avec l’accroissement de la composante principale
du Groupe « Areoligera », on reste inscrit à ce niveau dans un contexte transgressif.
A la troisième biozone (Zd3) correspond une importante avancée d’Apectodinium à
Moulongo et à Mamiwater où les différentes espèces du genre connaissent un acmé. A
Nord Matanda, Apectodinium affirme sa présence sans toutefois être prépondérant dans la
séquence. Globalement, la progression d’Apectodinium traduit l’existence d’un milieu
marin marginal côtier à faible salinité, voire d’un milieu lagunaire à dominance d’eaux
saumâtres. Ces types d’environnements se développent sous un climat chaud, 20° C en
moyenne ou davantage, dans des conditions plutôt anoxiques entraînant une eutrophisation
des eaux de surface. Les progressions concomitantes d’Eocladopyxis peniculata,
Fibrocysta vectensis et Senegalinium orei confirment l’existence d’un milieu d’eaux
saumâtres, riches en nutriments et à salinité variable mais faible de façon générale. Le recul
d’espèces telles Areoligera coronata, Adnatosphaeridium multispinosum et Glaphyrocysta
ordinata souligne par ailleurs que s’amorce à ce niveau une phase marine régressive.
Il semblerait que l’environnement qui serait plus estuarien à Mamiwater et plus lagunaire à
Nord Matanda, connaîtrait à Moulongo une sorte de « balancement » allant du type
lagunaire dans un premier temps (Zd3a) à un type estuarien par la suite (Zd3b).

115
 A Moulongo, la partie supérieure de la séquence (Zd4) reconnue comme base de
l’Eocène présente une association de dinokystes à dominance d’Achomosphaera et de
Cordosphaeridium évoquant un paysage lagunaire ouvert sur la mer, aux eaux peu
profondes mais à salinité prononcée, comme en atteste la progression de genres tels
Homotryblium et Polysphaeridium et le retrait d’Eocladopyxis et Senegalinium
habituellement rencontrés dans des milieux saumâtres. Un schéma similaire se dégage de
l’examen des dépôts de faible épaisseur terminant les séquences de Mamiwater et Nord
Matanda. On y retrouve des taxons représentatifs d’environnements littoraux comme
Achomosphaera, Cerodinium, Cordosphaeridium et Hystrichosphaeridium ainsi que
Homotryblium et Polysphaeridium, ces derniers indiquant une salinité de surface des eaux
des mers dans un milieu marin très restreint ou lagunaire. L’apparition de Wetzeliella
suggère un environnement d’estuaire soumis aux marées et à salinité de surface ; la
présence du genre Deflandrea serait plutôt liée à des eaux de surface eutrophes de faciès
deltaïques.
Il est communément admis que, complémentairement à l’analyse des dinokystes, le
ratio dinoflagellés/pollen et spores peut être indicatif des variations d’influence qu’exercent
milieu marin et milieu continental dans l’évolution d’un environnement de dépôt déterminé.
Ainsi, en procédant au comptage de l’ensemble des palynomorphes aux différents niveaux
analysés dans les trois séquences considérées, on a pu établir des ratios moyens pour les
quatre biozones définies par l’étude des dinoflagellés (Figure 9).
A Moulongo, la période initiale (Zd1), avec un ratio d’environ 70/30, traduit une
influence marine franche avec apport modéré du milieu continental. La période suivante
(Zd2) connaît, dans un premier temps, une pulsation plutôt régressive (ratio : 60/40), à
influence marine moins marquée ; celle-ci est suivie d’une phase à allure transgressive
(ratio : 85/15). Cette situation suggère l’existence d’une lagune étendue, alimentée un
temps en eau douce en provenance de l’arrière-pays, puis largement ouverte sur la mer. La
troisième période (Zd3) présente également une sorte de « balancement » entre deux
tendances : la première où le ratio 45/55, favorable aux assemblages sporopolliniques et où
le « complexe » dinoflagellés s’est révélé de type saumâtre, évoque un milieu fluvio-
lagunaire avec apport d’eau douce continentale alors que la seconde, avec un ratio 70/30,
suggère la présence d’un environnement d’estuaire à salinité variable. Enfin, les dépôts de
fin de séquence (Zd4) où la représentation de l’ensemble palynologique évolue vers des
taux en pollen et spores de plus en plus élevés alors que le milieu augmente en salinité,
impliqueraient l’existence d’une lagune à faible profondeur d’eau en contact avec la mer

116
mais dans un stade régressif plus confiné, avec un impact sporopollinique plus marqué,
vraisemblablement lié à un apport détritique en provenance de sa zone périphérique.
A Nord Matanda, on enregistre l’évolution environnementale suivante : dans un
premier temps (Zd1), l’influence marine semble particulièrement importante avec un ratio
dinoflagellés/pollen et spores de 90-80/10-20 ce qui traduirait une phase transgressive de
mer ouverte. La période suivante (Zd2) est moins marquée par cette influence marine bien
que celle-ci soit encore très franche avec des ratios de 70/30 au début et 80/20 en fin de
période ; dans ce cas, on se trouverait dans un environnement de zone côtière sous
l’empreinte du plateau continental externe. Avec un ratio de 65/35, on passerait dans la
troisième période (Zd3) à un milieu plus saumâtre à la salinité réduite par des apports d’eau
douce continentale dans un paysage littoral ou lagunaire de mer peu profonde. Enfin, dans
la dernière phase (Zd4), le ratio 80/20 marque le retour à une influence marine plus
importante dans un milieu côtier enregistrant une augmentation de salinité des eaux de
surface ainsi que le suggère la présence de certains dinoflagellés. A l’inverse du stade
initial, cette situation serait le reflet de l’amorce d’une régression avec un taux
sporopollinique représentatif d’un apport éloigné en provenance de la périphérie d’une
lagune déficitaire en apport d’eau douce.
A Mamiwater, la phase initiale, à forte influence marine, de la première période
(Zd1) telle que repérée à Nord Matanda est vraisemblablement occultée par le fait que le
sondage n’a pas atteint ici la base de la Formation de Nkapa. Si les périodes Zd1 et Zd2
pour sa partie inférieure se signalent par un processus transgressif souligné par les
dinoflagellés identifiés à ces niveaux, un ratio dinokystes/pollen et spores de +/- 65/35
serait le signe d’une influence du plateau continental interne. Cette dernière s’intensifie
même dans la partie supérieure de Zd2 où un ratio moyen de 60/40 attesterait d’apports en
eau douce véhiculant un important matériel sporopollinique en provenance du milieu
continental. Au cours de la période suivante (Zd3), le passage d’un ratio de 65/35 à son
début à un ratio de 75/25 à sa fin serait révélateur du passage d’un environnement de type
lagunaire saumâtre vers un stade estuarien à salinité modérée. La partie supérieure de la
séquence (Zd4) présentant un ratio de 80/20 dans des conditions de salinité croissante
attestée par certains taxons de dinoflagellés, s’apparente à la période terminale de Nord
Matanda suggérant un aspect environnemental similaire de lagune côtière avec apport d’eau
douce limité.
Dans l’ensemble, l’évolution paléoenvironnementale déduite des associations de
dinoflagellés reconnues aux différents niveaux des séquences étudiées et les ratios moyens

117
dinokystes/pollen et spores correspondant aux différentes périodes y associées est celle
d’une transgression marine pour le Paléocène inférieur et moyen (Biozones Zd1 et Zd2),
d’une stabilisation pour le Paléocène supérieur (Biozones Zd3) et d’une régression au début
de l’Eocène (Biozones Zd4). Ces constatations s’accordent avec la proposition formulée par
les géologues pétroliers d’un Paléocène globalement transgressif et d’un Eocène régressif
dans le sous-bassin de Douala (SNH, 2005). C’est à Nord Matanda que la phase marine du
Paléocène inférieur et moyen a été archivée de façon la plus marquante. Celle-ci souligne
l’importante transgression dont on retrouve des traces en affleurement plus à l’Est dans la
région de Souza (Nkapa), objet d’une étude de KENFACK et al. (2012). D’autre part, la
régression de l’Eocène basal, bien visible à Moulongo, apparaît masquée à Nord Matanda et
Mamiwater du fait, vraisemblablement, de la persistance d’espaces lagunaires étendus et à
salinité prononcée, restant en communication avec la mer. L’arrêt assez brusque de la
sédimentation des dépôts éocènes dans ces deux derniers sites serait à mettre en relation
avec les prémices de l’effet tectonique reconnu pour avoir provoqué la phase régressive
éocène dans le Bassin de Douala (LAWRENCE et al., 2002). Celle-ci aurait eu des effets
plus tardifs à Moulongo, site plus éloigné à l’Ouest, vers l’extérieur du bassin où la
sédimentation se serait poursuivie un certain temps avec des apports détritiques en fin de
période.

5.3.3. Comparaison avec les bassins nordiques

La méconnaissance de l’étage Sparnacien, défini dans le Bassin parisien et de son

analogue, le Landénien continental du bassin belge, puis la suppression de cet étage lors de
la révision de la chronostratigraphie mondiale ont eu pour effet de créer la confusion quant
à la position de l’acmé d’Apectodinium dans les bassins nordiques et, par extension, dans le
Domaine téthysien sensu lato par rapport à la limite Paléocène-Eocène, celle-ci étant
arbitrairement fixée entre le Thanétien, considéré comme Paléocène et l’Yprésien considéré
comme Eocène. Il en est résulté deux définitions concurrentes de la base de l’Eocène qui se
sont imposées indépendamment l’une de l’autre (AUBRY, 2000), une limite placée à la
base de l’Yprésien sensu stricto, c’est-à-dire à la base de l’Argile d’Ypres, du London Clay
et des Sables inférieurs du Cuisien, une autre à la base du Sparnacien du Bassin de Paris,
des Woolwich & Reading series du Sud-Est de l’Angleterre et des argiles, sables, lignites,
faluns et grès à plantes du Landénien supérieur fluvio-lagunaire du Bassin belge. Dans cet

118
ordre d’idée une variante proposée pour que la limite Paléocène/Eocène se situe entre
l’Yprésien et le Thanétien a été de descendre la base de l’Yprésien au niveau de celle du
Sparnacien disparu (FEUGUEUR, 1963 ; POMEROL, 1969, 1977).

Bassin de la Mer du Nord

En 1976, une biozonation basée sur les dinoflagellés a été établie par COSTA &
DOWNIE pour les Bassins de Londres et du Hampshire (S.E. de l’Angleterre). Ces auteurs
ont défini une biozone à Apectodinium hyperacanthum incluant les Reading, les Woolwich
et les Oldhaven Beds, ces derniers représentant la base de la zone NP10 de l’échelle
biostratigraphique du nannoplancton. Dans les Woolwich Beds, assimilés à la zone NP9 de
cette même échelle, le genre Apectodinium représenté par les espèces A. homomorphum, A.
hyperacanthum, A. parvum, A. paniculatum et A. quinquelatum connaît une progression
massive. Dans cette étude de 1976, la biozone à Apectodinium hyperacanthum inclut la
base de NP10 avec les Oldhaven Beds. Dans le London Clay sus-jacent, le genre
Wetzeliella devient prépondérant. A l’apparition de Wetzeliella meckelfeldensis dans le
NP10 fait suite une diversification du genre. Dans deux études complémentaires de 1978,
COSTA et al., et COSTA & MÜLLER introduisent une biozone à Wetzeliella astra à la
base de NP10 ; celle-ci est aussi considérée comme celle du London Clay et marquant selon
ces auteurs, la base de l’Yprésien et donc la limite Paléocène/Eocène. Dans le London Clay,
COSTA & MÜLLER reconnaissent quatre biozones successives de Wetzeliella : W. astra
et W. meckelfeldensis dans le NP10, W. similis dans le NP11 et W. varielongituda dans le
NP12.
Adoptant le point de vue de MORTON et al. (1983) et de KNOX (1984), POWELL
(1988) considère comme caduque la proposition de COSTA & MÜLLER (1978) de situer
la biozone à Wetzeliella astra à la base de la nannozone NP10 marquant la limite
Paléocène/Eocène dans le N.O. de l’Europe. Pour les dépôts de la partie centrale de la Mer
du Nord, l’auteur signale que, par rapport à l’échelle biostratigraphique du nannoplancton,
l’acmé du genre Apectodinium (comprenant A. augustum, A. homomorphum, A.
hyperacanthum, A. paniculatum, A. parvum, A. quinquelatum, espèces identifiées
également par THOMAS, 1996 pour la fin du Thanétien) se situe à la fin du Paléocène,
dans la moitié supérieure de NP9 alors que l’acmé de Deflandrea oebisfeldensis correspond
au début de l’Eocène dont la base coïncide avec le sommet de la biozone à Apectodinium
augustum. Pour l’ensemble des bassins de la Mer du Nord et du S.E. de l’Angleterre,

119
POWELL (1988, 1992) estime que la dernière présence d’Apectodinium augustum est
concordante avec la base de NP10 alors que Wetzeliella astra apparaît dans la partie
inférieure de cette nannozone mais après la disparition de Apectodinium augustum et
Apectodinium hyperacanthum. Il y a donc décalage entre la base de la zone à Wetzeliella
astra et celle du NP10. POWELL et al. (1996) précisent que la zone à Wetzeliella astra doit
être considérée comme étant la base du London Clay alors que l’acmé de Deflandrea
oebisfeldensis représente la base de l’Yprésien (base de l’Eocène).
POWELL (1988, 1992) a également mis en évidence une succession d’assemblages
de dinoflagellés dans lesquels on retrouve certains genres et espèces qui, dans le Bassin de
Douala, connaissent une évolution similaire ; ainsi, de la base au sommet du Paléocène :
- Cerodinium diebelii, du NP1 au NP7 ;
- Palaeocystodinium australinum du NP4 au NP7 avec présence significative dans NP6 ;
- Areoligera spp., présent dans NP7, abondant à la base de NP8 ;
- Apectodinium div.sp. dans NP9 avec acmé dans la moitié supérieure de la nannozone.
A la base de l’Eocène se situent, dans NP10, l’acmé de Deflandrea oebisfeldensis et
l’apparition du genre Wetzeliella.
Dans la partie septentrionale de la Mer du Nord, entre 57° et 62° N, BUJAK &
MUDGE (1994) et MUDGE & BUJAK (1996a, 1996b) ont daté du Paléocène supérieur la
biozone à Apectodinium augustum dont le sommet est fixé à la dernière présence de
l’espèce, au sommet de la nannozone NP9 ; la moitié supérieure de cette dernière se
caractérise par une abondance des différentes espèces du genre Apectodinium (A. augustum,
A. homomorphum, A. hyperacanthum, A. paniculatum, A. parvum) reconnues dans l‘aire
géographique étudiée. C’est aussi l’opinion de GRADSTEIN et al. (1992), qui situent le
sommet de la zone à Apectodinium augustum à la fin du Paléocène. Mais, pour ces auteurs,
la base de la zone à Deflandrea oebisfeldensis marquerait plutôt le début de l’Eocène alors
que MUDGE & BUJAK considèrent que la progression de Deflandrea oebisfeldensis est
précédée, à la base de NP10 par celle de Cerodinium wardenense.
Tout comme POWELL, BUJAK & MUDGE (1994) ont établi une succession de
genres et d’espèces de dinoflagellés les plus caractéristiques observés dans les dépôts du
Paléocène et de l’Eocène inférieur de la Mer du Nord ; selon eux, dans la zone, objet de
leurs études, la série suivante est à considérer :
- Palaeocystodinium australinum dans NP5-NP6
- Glaphyrocysta ordinata dans NP8 et la moitié inférieure de NP9

120
- Apectodinium augustum et les autres espèces du genre Apectodinium dans NP9 avec un
acmé dans la partie supérieure de la nannozone
- Cerodinium wardenense à la base de NP10
- Deflandrea oebisfeldensis dont la progression, dans NP10, fait suite à celle de Cerodinium
- Hystrichosphaeridium tubiferum à la fin de NP10
Enfin, dans l’Atlantique Nord, NOHR-HANSEN (2003) dans des dépôts off-shore à
l’Ouest du Groenland situe l’acmé du genre Apectodinium au sommet du Thanétien tandis
qu’à la base de l’Eocène, il identifie une succession d’acmés : respectivement de
Glaphyrocysta sp, Deflandrea oebisfeldensis et Wetzeliella astra, dans l’ordre. A l’Est, se
référant aux travaux de COSTA & DOWNIE (1976) et de COSTA et al. (1978),
BOULTER & MANUM (1989) avaient reconnu une biozone à Apectodinium
hyperacanthum couvrant la nannozone NP9 et la base de NP10. Y faisaient suite, une
biozone à Wetzeliella astra, en position sub-basale de NP10, une biozone à Wetzeliella
meckelfeldensis couvrant la partie supérieure de NP10 et une biozone à Wetzeliella similis
dans la moitié inférieure de NP11.
Dans toutes les études précitées, il apparaît clairement que l’acmé du genre
Apectodinium, se situant dans la moitié supérieure de NP9 et se terminant à la base du
NP10 est considéré par les biostratigraphes anglo-saxons comme représentant la partie
terminale du Thanétien ; à celle-ci est associée la fin du Paléocène.

Bassin de Paris

L’étude du phytoplancton du Bassin de Paris (GRUAS-CAVAGNETTO, 1968 ;

CHATEAUNEUF, 1971 ; CARO, 1975 ; GRUAS-CAVAGNETTO, 1976 ;
CHATEAUNEUF & GRUAS-CAVAGNETTO, 1978) a donné des résultats comparables à
ceux obtenus pour les bassins du SE de l’Angleterre et de la Mer du Nord. Ainsi, dans le
Bassin de Paris, la biozone à Apectodinium homomorphum couvre le sommet du Thanétien
(Thanétien III) et le Sparnacien. Dans les faciès marins du Thanétien III, les espèces
Apectodinium homomorphum et Apectodinium parvum apparaissent simultanément.
Comme taxons associés à ces deux espèces, on note la présence d’Areoligera sp.,
Cordosphaeridium cf. inodes et Deflandrea denticulata.
Dans le Sparnacien, le phytoplancton est peu varié et le genre Apectodinium y est dominant
; très largement dans le Sparnacien inférieur laguno-continental, dans une moindre mesure
dans le Sparnacien supérieur, marin. Dans le Cuisien, la première zone fossilifère au-dessus

121
du Sparnacien se signale par l’apparition de Wetzeliella astra, suivie par celle de
Wetzeliella meckelfeldensis puis par celle de Wetzeliella (Dracodinium) similis.
Pour COSTA et al. (1978), la zone à Wetzeliella astra qui se situe à la base des
Sables de Cuise inférieurs est conforme à celle reconnue à la base du London Clay. La zone
à Apectodinium hyperacanthum des bassins anglais équivaut à la zone à Apectodinium
homomorphum couvrant le Thanétien III et le Sparnacien du Bassin de Paris, ce dernier
correspondant au Landénien continental (L2) du Bassin belge. Cette opinion est partagée
par CHATEAUNEUF & GRUAS-CAVAGNETTO (1978) qui mettent en parallèle les
zones à Wetzeliella du Cuisien inférieur avec le London Clay et l’Yprésien de Belgique. La
zone à Wetzeliella astra soulignerait une phase transgressive synchrone dans les trois
bassins. CARO (1975) souligne toutefois que, par la présence d’Apectodinium
hyperacanthum et Apectodinium parvum, la base de l’Yprésien correspondrait plutôt au
sommet du Sparnacien et que l’Argile des Flandres serait l’équivalent du London Clay. On
rejoindrait ici le schéma proposé par POWELL (1988, 1992) pour les bassins du SE de
l’Angleterre et de la Mer du Nord centrale où il constate que la biozone à Apectodinium
dépasse légèrement la limite NP9/NP10 et donc que la biozone à Wetzeliella astra ne
constitue pas la base de l’Yprésien.
CARO et al. (1975) précisent les zonations établies pour le Paléocène supérieur et
l’Eocène inférieur avec la succession suivante : dans les Thanet Sands (NP7/NP8) se situe
l’acmé d’Areoligera sp. ; dans le Thanétien III (NP9 inférieur : Sables de Bracheux =
dépôts marins du Landénien inférieur belge – L1 terminal) et le Sparnacien inférieur laguno-
continental (NP9 supérieur = dépôts laguno-continentaux du Landénien supérieur – L2), mis
en parallèle avec les Woolwich Beds, on assiste à l’apparition, puis à l’importante
expansion du genre Apectodinium. Ce dernier décline dans le Sparnacien supérieur laguno-
marin (base de la nannozone NP10 = Oldhaven Beds = base de l’Yprésien). La progression
du genre Wetzeliella survient à la base de l’Argile des Flandres, assimilée au London Clay.
Dans le tableau des corrélations qu’ils proposent pour les différents bassins
méridionaux de la Mer du Nord, CHATEAUNEUF et GRUAS-CAVAGNETTO (1978)
incluent dans un étage Ilerdien le Sparnacien et le Cuisien inférieur du Bassin de Paris.
Dans leur schéma, le Thanétien III étant seul considéré comme Paléocène, la limite
Paléocène-Eocène est donc, de fait, fixée à la base du Sparnacien. AUBRY (1985), pour sa
part, place toujours, à l’exemple des auteurs anglo-saxons, la limite Paléocène/Eocène entre
la nannozone NP9, considérée comme le sommet du Thanétien, et la nannozone NP10, base
de l’Yprésien. La biozone à Apectodinium homomorphum couvrant NP9 et la base de

122
NP10, la biozone à Wetzeliella astra est reconnue comme la base du London Clay mais pas
comme celle de l’Yprésien. Le London Clay est assimilé à la Formation de Varangeville
reconnue dans le Bassin de Dieppe.
Dans une étude des formations paléogènes de la Manche orientale, GRUAS-
CAVAGNETTO (In : AUFFRET, J.P. & GRUAS-CAVAGNETTO, C., 1975) distingue
trois faciès dans l’Yprésien : un faciès sparnacien, un faciès londinien et un faciès cuisien.
Le faciès sparnacien se caractérise par la présence marquée du genre Apectodinium comme
dans le Sparnacien du Bassin de Paris ; le faciès londinien correspondant à la Formation de
Varangeville est considéré comme l’équivalent du London Clay avec le même type
d’associations phytoplanctoniques ; le faciès cuisien renferme pour sa part une association
palynologique analogue à celle de l’Argile de Laon, sommet de l’Yprésien.
Au Cap d’Ailly, sur la côte française de la Manche, les faciès sparnaciens (NP9)
constitués de lignites, sables et argiles à ostracodes et mollusques se caractérisent par un
acmé d’Apectodinium qui prend fin à la base du NP10, dans l’Argile glauconieuse de
l’Unité des Craquelins ; cette dernière est surmontée par les sables fauves et les argiles de la
Formation de Varangeville (DUPUIS et al., 1998, 2006). La base de la Formation de
Varangeville se signale par la présence de Wetzeliella astra (AUBRY, 1986) et serait
l’équivalent du London Clay.

Bassin belge

Dans leur publication de 1976, COSTA et DOWNIE remarquent que les travaux de
DE CONINCK (1968, 1975) sur le Paléocène supérieur et l’Eocène inférieur de Belgique
présentent la même succession de dinoflagellés que dans le SE de l’Angleterre. Ainsi, les
Sables d’Oostende-ter-Streep appartenant à la Formation de Tienen (Landénien supérieur –
L2 = Formation du Mt Bernon - Sparnacien) ressemblent, même lithologiquement, aux
Woolwich Beds. Ils correspondent à la biozone à Apectodinium homomorphum, similaire
de la biozone à Apectodinium hyperacanthum où on relève aussi la présence de A.
augustum, A. paniculatum et A. parvum et où le genre Apectodinium dans son ensemble est
en expansion. La limite supérieure du Landénien est marquée par la fin de l’acmé
d’Apectodinium tandis que la base de l’Yprésien appartiendrait à la biozone à Wetzeliella
meckefeldensis qui correspondrait à la base du London Clay.
Dans des travaux ultérieurs, DE CONINCK (1988, 1990 in Dupuis et al., 1990,
1996) a affiné sa biostratigraphie, notifiant outre la présence de Wetzeliella sp. à l’interface

123
Landénien-Yprésien, l’acmé de Deflandrea oebisfeldensis à la base de NP10 et l’apparition
de Wetzeliella astra à la base de la Formation d’Ypres (Ieper Fm). Dans DUPUIS et al
(1990)., il précise que, dans le Landénien supérieur (L2) laguno-continental A. parvum et A.
homomorphum sont dominants, le second prenant plus d’importance dans la partie
terminale de la formation. A la base de l’Yprésien, A. homomorphum, bien qu’en retrait, est
encore bien représenté, associé à A. hyperacanthum et A. paniculatum. Dans les couches
sus-jacentes au caractère Yprésien plus « affirmé » apparaît Wetzeliella meckelfeldensis.
Dans une étude plus approfondie sur la biostratigraphie d’une période couvrant du
Paléocène moyen à l’Eocène inférieur, STEURBAUT (1998) passe en revue une série
d’événements marquants relatifs à la distribution des dinoflagellés :
- Dans la nannozone NP8, on assiste à la fin de l’acmé d’Areoligera sp.
- Apectodinium homomorphum apparaît dans la nannozone NP9 à la fin du Thanétien mais,
c’est dans la partie supérieure de NP9, correspondant au Landénien supérieur (L2)
que l’espèce connaît un acmé qui se termine à la limite NP9/NP10. Cette
progression concerne le genre Apectodinium dans son ensemble.
- A la base de NP10, dans la phase transgressive marquant la base de l’Yprésien, se signale
un acmé de Deflandrea oebisfeldensis alors que Apectodinium régresse.
Adnatosphaeridium multispinosum se rencontre aussi à ce niveau.
- A la base de l’Argile d’Ypres (Ieper Fm = Argile des Flandres) apparaissent Cerodinium
wardenense et Wetzeliella astra.

En comparant aux bassins voisins du sud de la Mer du Nord, on peut associer La

Formation de Tienen (Landénien supérieur) aux faciès sparnaciens du Bassin de Paris et
aux Woolwich et Reading Beds du SE de l’Angleterre. La base de l’Argile des Flandres
(Ieper Fm) équivalant au London Clay où apparaît Wetzeliella astra, ne peut être corrélée
avec le début de l’Yprésien, base de NP10.
Sur base de ses observations relatant les principales étapes de l’histoire évolutive
des dinokystes, assortie d’une comparaison avec celles des nannofossiles calcaires et des
foraminifères planctoniques, STEURBAUT (1998) pose la question de savoir s’il ne serait
pas opportun de placer la limite Paléocène/Eocène à la base du Landénien supérieur
continental belge et donc à la base du Sparnacien français. La Formation de Tienen passant
d’un stade laguno-continental à un stade laguno-marin annonçant la transgression
yprésienne, la limite Thanétien/Yprésien marquant traditionnellement le passage du
Paléocène à l’Eocène mériterait ainsi d’être revue.

124
 STEURBAUT et al. (2000) se référant aux zonations de POWELL (1992) placent la
Formation de Tienen (Landénien supérieur – L2) dans la biozone à Apectodinium augustum.
La base de la formation coïncide avec la dernière présence d’Areoligera sp., le début de
l’acmé d’Apectodinium homomorphum et l’apparition d’Apectodinium augustum. L’acmé
d’Apectodinium homomorphum se poursuit jusqu’au sommet du Landénien supérieur. Ce
taxon est associé à A. augustum dans la partie inférieure du L2 fluvio-lagunaire et à A.
parvum dans sa partie supérieure laguno-marine. Les taxons du genre Apectodinium, quasi
en voie de disparition, se rencontrent encore à la base de la Formation de Kortrijk (base de
l’Yprésien – base de NP10), tandis que les premiers Wetzeliella apparaissent à la base de
l’Argile d’Ypres (= Argile des Flandres). Les auteurs constatent que l’acmé
d’Apectodinium est synchrone dans toute l’Europe et que l’apparition du genre Wetzeliella
l’est aussi dans tout le bassin de la Mer du Nord et donc que les deux genres sont de bons
marqueurs biostratigraphiques.
MOORKENS et al. (2000), sur base d’une biostratigraphie incluant divers groupes
de microfossiles, notamment le nannoplancton et les dinokystes, arrivent aux mêmes
constatations : le Landénien L2, correspondant à la partie supérieure de NP9, se caractérise
par l’acmé d’Apectodinium homomorphum et la base de l’Yprésien (base de NP10) se
distingue par la fin de la biozone à Apectodinium et par un acmé de Deflandrea
oebisfeldensis, suivi, dans la partie basale de l’Argile d’Ypres, par l’apparition de
Wetzeliella astra. Les auteurs considèrent que l’acmé d’Apectodinium permet de corréler le
Landénien laguno-continental de Belgique au Sparnacien du Bassin de Paris et à la
Formation de Sele, définie dans la série des dépôts Paléocène/Eocène de la Mer du Nord
(POWELL, 1988 ; POWELL et al., 1996).
La dernière publication en date relative au Bassin belge (STEURBAUT et al., 2003)
intègre de nouvelles données concernant la sédimentologie, la micropaléontologie et surtout
l’analyse isotopique du carbone qui ont permis de reconstruire l’histoire des dépôts
sédimentaires au cours de l’intervalle Paléocène-Eocène de ca. 57,1 Ma à ca. 54,7 Ma. Le
début de l’IETM (Initial Eocene Thermal Maximum) ou PETM (Paleocene-Eocene
Thermal Maximum) résultant d’une excursion isotopique du Carbone (CIE = Carbon
Isotope Excursion) a été positionné dans le Bassin belge de façon indéniable à la base de la
Formation de Tienen (Landénien supérieur laguno-continental – L2). Cet événement
coïncide parfaitement avec le début d’une abondance massive d’Apectodinium. Les taux
élevés d’Apectodinium durant tout le Landénien supérieur (L2) suggèrent que l’IETM
(=PETM) s’est poursuivi durant toute cette période avec toutefois des températures plus

125
élevées de la surface de la mer qui se situeraient à son début quand la CIE atteint ses
valeurs les plus négatives. Ces événements, l’IETM et l’acmé d’Apectodinium qui lui est
associé, constituent d’excellents marqueurs stratigraphiques de la limite Paléocène/Eocène
dans les bassins méridionaux de la Mer du Nord. Ceci confirme la proposition de
STEURBAUT (1998) de placer la limite Paléocène/Eocène à la base du Landénien
supérieur, période s’identifiant à la partie supérieure de la nannozone NP9.

CIE, PETM et limite Paléocène-Eocène dans les bassins nordiques

En stratigraphie traditionnelle, la limite Paléocène/Eocène devait se situer à la base

de l’Yprésien selon les stratigraphes du domaine marin alors que les paléontologistes
spécialistes des milieux continentaux la situaient à la base du Sparnacien. Au Congrès
Géologique international de Rio (2000), le choix de l’inflexion de l’anomalie isotopique du
carbone comme critère de la limite Paléocène-Eocène a été acté. Dès lors, il fallait revoir le
concept de l’Eocène, soit en abaissant la base de l’Yprésien qui engloberait la partie
supérieure du Thanétien, soit en réintroduisant un étage entre le Thanétien et l’Yprésien en
lui maintenant le terme de Sparnacien ou en lui attribuant un autre nom. La base de
l’Eocène se trouverait ainsi à la base du nouvel étage (AUBRY et al., 2002).
Chronostratigraphiquement, le démarrage de la CIE se situe à la base du Sparnacien ; il
semblerait donc que la solution la plus appropriée serait de maintenir l’étage en fixant la
limite Paléocène-Eocène entre ce dernier et le Thanétien sous-jacent (AUBRY et al., 2003).
Biostratigraphiquement, on prendrait en compte l’acmé du genre Apectodinium, associé à la
CIE.
Sur base de la concomitance des événements CIE et acmé d’Apectodinium BUJAK
& BRINKHUIS (1998) situent dans les bassins de la Mer du Nord le point de départ de ces
événements dans la nannozone NP9. La limite Paléocène-Eocène se situerait donc
respectivement à la base des Formations Woolwich et Reading (compilation
STEURBAUT, 1998) dans le SE de l’Angleterre, de la Formation de Sele (cf. POWELL,
1988 ; POWELL et al., 1996) en Mer du Nord centrale et de la Formation Forties (cf.
BUJAK & MUDGE, 1994 ; MUDGE & BUJAK, 1996a, 1996b) en Mer du nord
septentrionale.
Dans le Bassin de Paris, l’excursion isotopique du carbone démarre à la base des
faciès sparnaciens, calcaires et marnes sous-jacents des Argiles plastiques dans la partie
inférieure desquelles se situe le dC13 le plus négatif (STOTT et al., 1996 ; DUPUIS, C. &

126
THIRY, M., 1998). A l’Ouest, au Cap d’Ailly, sur la côte orientale de la Manche, le CIE
débute à la base d’une série laguno-palustre (Lignites, Sables et Argiles à Ostracodes et
Mollusques) correspondant à un acmé d’Apectodinium s’achevant à la base du NP10, dans
l’Unité des Craquelins (DUPUIS et al., 1998, 2006) sous-jacente à la Formation de
Varangeville.
Dans les sondages du Nord de la Belgique on constate que le matériel organique
enfoui en milieu continental atteint des valeurs isotopiques du carbone très négatives à la
base de la Formation de Tienen (NP9). L’écart avec les valeurs isotopiques du sommet de
la Formation de Hannut (NP8) sous-jacente implique une importante excursion isotopique
du carbone entre ces deux formations. Ces dernières étant séparées par un hiatus, cela
suppose que la base de l’excursion isotopique se situe dans le hiatus et que la Formation de
Tienen (Landénien supérieur fluvio-lagunaire – L2) doit être incorporée en sa totalité dans
l’Eocène (MAGIONCALDA et al., 2001), soutenant ainsi une suggestion déjà faite
antérieurement (STEURBAUT, 1998).
Dans tous les bassins considérés, la fin de l’acmé d’Apectodinium associé au CIE se
situe à la base de NP10, c’est-à-dire, pour le SE de l’Angleterre, dans la Formation de
Harwich [(= Oldhaven beds peu fossilifères (COSTA et al., 1978)], pour la Mer du Nord
centrale, au sommet de la Formation de Sele et pour la Mer du Nord septentrionale dans la
Formation de Dornoch (MUDGE & BUJAK, 1996). Dans le Bassin de Paris, cela pourrait
correspondre aux Faluns à Cyrènes et à Huîtres et aux « Fausses glaises » tandis que sur la
côte de la Manche, l’équivalent pourrait-être les argiles glauconieuses de l’Unité des
Craquelins. Dans le Bassin belge, c’est le Zoute silt Member, base de la Formation de
Kortrijk (Yprésien), qui correspondrait aux formations précitées (compilation de
STEURBAUT, 1998). Enfin, les bases des formations caractérisées par la présence de
Wetzeliella astra seraient contemporaines, à savoir : celle du London Clay dans le SE de
l’Angleterre, des Sables du Cuisien inférieur du Bassin de Paris (Sables de Laon), des
Sables fauves de la Formation de Varangeville des côtes de la Manche orientale et de
l’Argile d’Ypres en Belgique et dans le Nord de la France.

Le Domaine téthysien

Les faits relatifs à la biostratigraphie de la limite Paléocène-Eocène observés dans

les bassins nordiques se retrouvent dans le domaine téthysien, espace marin continu
séparant d’Ouest en Est l’Eurasie de l’Afrique avant l’émergence des orogénèses alpine et

127
himalayenne. Des sites particuliers liés à l’acmé du genre Apectodinium relevés dans cet
espace en attestent.
Ainsi, à l’Ouest, dans les sections de Campo (CARO, 1973) en Espagne, de
Schlieren (JAN DU CHENE, 1977) en Suisse centrale, de sites italiens (BRINKHUIS,
inédit), de El Kef (in : BUJAK & BRINKHUIS, 1998) en Tunisie, d’Unterberg
(MOHAMED & EGGER, 2012) et d’Anthering (HEILMAN-CLAUSEN & EGGER, 2000)
en Autriche, l’acmé d’Apectodinium est contemporain de la nannozone NP9b. En Tunisie et
dans les sites autrichiens où la CIE a été identifiée, l’acmé d’Apectodinium se développe
conjointement à ce dernier alors que les pourcentages du genre dans les assemblages
phytoplanctoniques est faible avant et après. Au site d’Anthering, on remarque en outre
l’apparition du genre Wetzeliella dans la moitié supérieure de NP10.
Vers l’Est, en Eurasie centrale, la limite Paléocène/Eocène se trouve liée de la
même façon à l’acmé d’Apectodinium. Dans le Paléogène de Sibérie occidentale couvrant
la période allant du Sélandien à l’Yprésien, IAKOVLEVA (2000) a enregistré dans la
biozone NP9 la succession Apectodinium hyperacanthum-Apectodinium augustum ; la
progression de ce dernier souligne la base de NP10, base de l’Yprésien. Dans NP11
apparaît Wetzeliella meckelfeldensis. Pour RADIONOVA et al.(2001), la transition
Paléocène-Eocène dans la coupe-clé de Sokolovskii, située dans le détroit de Turgay (Nord
du Kazakhstan) en région Nord-Ouest de la Péritéthys, est mise en évidence par la même
succession (en ce qui concerne la distribution des espèces) : dans le NP9 se succèdent
Apectodinium hyperacanthum et Apectodinium augustum qui connaît une progression fin
NP9-début NP10 tandis que la biozone à Wetzeliella meckelfeldensis couvre la fin de NP10
et le début de NP11. Ces auteurs estiment que leur succession correspond à celles établies
par POWELL (1992) pour la Mer du Nord et par CARO (1973) pour la coupe de Campo
dans les Pyrénées espagnoles. Dans leur synthèse sur le Paléocène et l’Eocène de l’Eurasie
centrale, AKHMENTIEV et al. (2012) ont analysé les effets de la liaison marine du bassin
épicontinental joignant la Téthys à l’Océan arctique (du Nord du Pakistan au Nord de la
Sibérie) avec, vers l’Ouest, une connexion avec l’Atlantique nord. Cette liaison a permis la
mise en contact de biocénoses téthysiennes et arctiques pendant la période couvrant le
Thanétien et l’Yprésien. Le réchauffement global du PETM a été associé à une large
échelle, par l’entremise de courants marins, au transfert de chaleur des zones tropicales des
moyennes latitudes vers les hautes latitudes via le détroit de Turgay (Kazakhstan). Ainsi,
l’acmé d’Apectodinium a pu être enregistré dans une vingtaine de sites répartis du Sud au
Nord. Cet acmé qui se traduit par une extension de différentes espèces d’Apectodinium (A.

128
hyperacanthum, A. paniculatum, A. parvum et A. augustum, ce dernier dominant) se situe à
la fin du Thanétien (ancienne conception) et le début de l’Yprésien.
En s’étendant plus largement vers l’Ouest dans l’hémisphère nord et vers le Sud
dans le domaine pacifique, on remarque que les assemblages de dinokystes à acmé
d’Apectodinium lié à la CIE et au PETM se retrouvent en Amérique du Nord, notamment
dans des sites du New Jersey et de Californie (CRAMER et al., 2000 ; SLUIJS et al., 2008 ;
SLUIJS & BRINKHUIS, 2009) et jusqu’en Nouvelle-Zélande (CROUCH et al., 2001,
2003). Ce phénomène à vaste échelle, globalement répandu au début de l’Eocène, constitue
un repère biostratigraphique important pour la datation des séries marines. Dans cette
globalité, les bassins de l’Ouest africain feraient donc figure d’exception, la CIE y étant
postérieure à l’acmé.

129
 CHAPITRE 6. ETUDE DES POLLEN ET SPORES

6.1. LES DOMAINES FLORISTIQUES DU PALÉOCÈNE ET DE

L’EOCÈNE INFÉRIEUR

La comparaison des associations sporopolliniques fossiles avec les associations

actuelles, déterminées botaniquement, permet de reconstituer l’allure du couvert végétal
correspondant. L’extrapolation des données de l’écologie actuelle à ces couvertures
végétales anciennes amène à évaluer les conditions climatiques et édaphiques qui en
découlent ; ces notions de paléoécologie et de paléoclimatologie continentales débouchent
sur des notions plus larges de paléophytogéographie et de paléolatitudes ou d’altitudes.
Dès le début du Cénozoïque, les florules archaïques du Crétacé supérieur font place
à de grands ensembles floristiques (fig. 10) mieux structurés (KRUTZSCH 1967).
Pour le Paléocène, KRYSHTOFOVICH (1957) distingue dans l’hémisphère nord
deux provinces situées de part et d’autre d’une ligne ondulant entre 35° et 60° de latitude :
une province nordique à flore « arctotertiaire » tempérée à tempérée chaude et une province
méridionale à flore « paléotropicale » laurophylle. Selon TAKHTAJAN (1969), la
végétation qui se développait dans la zone allant du Sud-Est de l’Amérique du Nord au Sud
de l’Oural était semblable à celle des forêts sempervirentes pluviales qui, sous climat
subtropical humide, occupent de nos jours les reliefs de l’Assam et du Yunnan.
Au cours du Paléocène, de profonds changements ont marqué la flore de la Province
Européenne-Nord Atlantique. Les Normapolles, produits par des genres d’Angiospermes
ayant connu leur apogée au Crétacé supérieur et adaptés aux climats chauds, régressent
progressivement dans les assemblages palynologiques et sont remplacés par un ensemble
de genres « plus modernes » que KRUTZSCH (1967) a appelé « l’élément paléotropical
éocène ». Pour les définir, MULLER (1980) préfère toutefois utiliser le terme d’ « élément
téthysien », plus neutre, et marquant mieux l’absence dans la flore d’Europe occidentale
éocène de vrais taxons mégathermes.

130
 Figure 10 : Grands ensembles floristiques du Paléocène et de l’Eocène inférieur
(KRUTZSCH, 1967)

Parmi ces différents ensembles, la flore du Bassin de Douala fait partie de la

Province africano-sud américaine, qui relève d’un domaine plus spécifiquement tropical
couvrant le Nord de l’Amérique du Sud et l’Ouest africain. Cet ensemble, complètement
individualisé des autres ensembles floritiques tertiaires, bien qu’ayant certains groupes en
commun avec le domaine téthysien, a évolué indépendamment au cours du temps pour
aboutir au déveleoppement des flores intertropicales actuelles d’Afrique et d’Amérique du
Sud. Les assemblages sporopolliniques issus de cette flore particulière constituent un
monde à part, abondant en genres et espèces, qui nécessite des connaissances appropriées
pour aborder la biostratigraphie et l’évolution des milieux de dépôts cénozoïques
régionaux.

6.2. BIOZONATIONS DES SPORES ET POLLENS

L’évolution biostratigraphique de la microflore terrestre a été évaluée en fonction

des zonations établies par les dinoflagellés pour les puits Moulongo, Mamiwater et Nord
Matanda (Figures 11, 12 et 13). Les biozones définies dans le puits Ngata font en revanche
référence uniquement aux spores et grains de pollen du fait qu’une comparaison avec une
zonation de dinokystes n’a pas pu être établie par suite de leur rareté (Figure 14).

131
6.2.1 Moulongo 3°27’45’’N – 9°37’32’’E (fig. 11)

Zone 1 (Zd1 : 2500-2440 m)

La zone Zd1 définie sur les graphiques des dinoflagellés est caractérisée par la
présence des palynomorphes suivants : Ephedripites vanegensis, Mauritiidites minimus,
Syncolporites lisamae, Scabratriporites annellus, Myrtacidites psilatus, Racemonocolpites
racematus, Monocolpites marginatus, Proxapertites cursus, Retitricolpites clarensis,
Spinizonocolpites echinatus, Retitricolpites simplex, Echitriporites trianguliformis,
Spinizoncolpites baculatus, Clavatricolporites leticiae, Crototricolpites protoannemariae,
Momipites eoafricanus, Clavatricolpites densiclavatus, Proxapertites operculatus, groupe
Bombacacidites, Psilamonocolpites medius, Retimonocolpites irregularis, groupe
Psilastephanocolporites. Parmi ces palynomorphes énumérés 7 espèces disparaissent
totalement dans cette période : Ephedripites vanegensis, Mauritiidites minimus,
Syncolporites lisamae, Scabratriporites annellus, Myrtacidites psilatus, Racemonocolpites
racematus, Monocolpites marginatus. Une espèce, en l’occurrence Retitricolporites
crassicostatus apparaît vers le sommet de la zone. Les autres espèces poursuivent leur
évolution verticalement.
Dans cette zone, on remarque que les espèces suivantes sont plus ou moins dominantes :
Psilamonocolpites medius (11-14%), Retitricolpites clarensis (8-15,45%), Momipites
eoafricanus (7,5-10%). Ces espèces sont suivies d’Echitriporites trianguliformis et du
groupe des Proxapertites dont le pourcentage est inférieur à 7%. Les proportions des autres
espèces n’atteignent pas 5%.

132
Figure 11 : Distribution stratigraphique des espèces de pollens et spores recensés dans la
séquence de Moulongo

133
 Zone 2 (Zd2 : 2430-2400 m)

La zone Zd2 est caractérisée par quatre nouvelles apparitions (Syncolporites

marginatus, Ulmipollenites undulosus, Retistephanocolpites williamsi et Striatopollis
bellus), dont l’une est propre à la zone c’est-à-dire y fait son apparition et sa disparition : il
s’agit de Syncolporites marginatus. Retitricolpites simplex présent dans la zone précédente
est absent dans cette zone. En dehors des espèces qui ont disparu dans la zone précédente,
toutes les autres à savoir Proxapertites cursus, Retitricolpites clarensis, Spinizonocolpites
echinatus, Retitricolpites simplex, Echitriporites trianguliformis, Spinizoncolpites
baculatus, Clavatricolporites leticiae, Crototricolpites protoannemariae, Momipites
eoafricanus, Clavatricolpites densiclavatus, Proxapertites operculatus, le groupe de
Bombacacidites, Psilamonocolpites medius, Retimonocolpites irregularis, le groupe de
Psilastephanocolporites sont encore présentes dans cette zone.
Par rapport à la zone précédente, Retitricolpites clarensis régresse légèrement,
tandis que Momipites eoafricanus fait une nette progression de la base au sommet de la
zone (13,08% à la base et 25,89% au sommet). Les autres espèces conservent plus ou moins
leurs proportions.

Zone 3 (Zd3 : 2400-2360 m)

La zone Zd3 des dinoflagellés a été divisée en deux sous zones ; en maintenant cette
subdivision, on constate que :
- La sous-zone Zd3a est caractérisée par la présence d’un ensemble cosmopolite issu de la
zone précédente à l’exception d’Echitriporites trianguliformis, Spinizonocolpites baculatus,
Clavatricolpites densiclavatus et de Proxapertites cursus. Cricotriporites guianensis
apparaît à la base de cette sous-zone.
- La sous zone Zd3b est caractérisée par l’apparition de quatre nouvelles espèces à la base,
à savoir Foveotriletes margaritae, Crototricolpites densus, Psilatricolporites crassus et
Retitricolporites irregularis. Les formes Foveotriletes margaritae et Retitricolporites
crassicostatus disparaissent à la limite supérieure de la sous-zone.
Spinizonocolpites Echinatus atteint des proportions de 10% durant la période tandis que
Proxapertites operculatus, Retitricolpites clarensis et Psilamonocolpites medius régressent
légèrement de la base au sommet

134
 Zone 4 (Zd4 : 2360-2140 m)

La zone Zd4 présente aussi deux sous zones de dinoflagellés.

La sous-zone Zd4a enregistre neuf disparitions à savoir : Ulmipollenites undulosus,
Retistephanocolpites williamsi, Proxapertites cursus, Retitricolpites clarensis,
Spinizonocolpites echinatus, Retitricolpites simplex, Echitriporites trianguliformis,
Spinizonocolpites baculatus, Crototricolpites densus. En dehors de ces disparitions, on note
aussi cinq apparitions : Spirosyncolpites spiralis, Echimonocolpites rarispinosus,
Mauritiidites crassiexinus, Psilatricolporites operculatus et Striatricolporites fragilis.
Spirosyncolpites spiralis, Echimonocolpites rarispinosus, Mauritiidites crassiexinus sont
propres à la sous zone.
La sous-zone Zd4b renferme des espèces ayant subsisté jusqu’au sommet de la
formation. En plus de l’assemblage cosmopolite visible dès la base de la section, certaines
espèces apparues dans la zone Zd3 et la sous-zone Zd4a sont encore présentes dans la sous
zone Zd4b ; il s’agit de Cricotriporites guianensis, Retitricolporites irregularis,
Psilatricolporites crassus, Psilatricolporites operculatus, Striatopollis fragilis,
Echitriporites trianguliformis. Cependant on note certaines apparitions, comme Cyathidites
congoensis et Retitriporites boltenhagenii dans la partie supérieure de la sous-zone.
La plupart de ces espèces présentes dès la base de la section deviennent rares ou
éparses.

6.2.2. Mamiwater 3°46’33’’N – 9°45’03’’E (fig. 12)

Zone 1 (Zd1 : 1180-1140 m)

Dans la zone Zd1 sont archivés les paynomorphes suivants : Syncolporites lisamae,
Longapertites marginatus, Syncolporites marginatus, Scabratriporites annellus,
Ulmipollenites undulosus, Longapertites vaneendenburgi, Retistephanocolpites williamsi,
groupe Psilastephanocolporites, Cyathidites congoensis, Retitricolpites clarensis,
Cricotriporites guianensis, Clavatricolporites leticiae, Crototricolpites protoannemariae,
Striatopollis bellus, Echitriporites trianguliformis, Retidiporites magdalenensis,

135
Monocolpites marginatus, Psilamonocolpites medius, Proxapertites cursus, Proxapertites
operculatus, Spinizonocolpites baculatus, groupe Bombacacidites.
Les formes dominantes dans cet intervalle sont : Proxapertites operculatus (environ
16%), Proxapertites cursus (≤ 11%), Retitricolpites clarensis (≤ 15%). Ces espèces
régressent verticalement dans la zone. Les autres espèces sont en faible ou très faible
quantité ; Psilamonocolpites medius est en proportion inférieure à 4%.

Zone 2 (Zd2 : 1140-1050 m)

La zone Zd2 est caractérisée par deux disparitions à savoir Longapertites

marginatus et Syncolporites lisamae, alors que les autres espèces présentes dans la zone
précédente persistent dans Zd2. Deux apparitions, Lanagiopollis crassa et Foveotriletes
margaritae sont présentes à la base de la zone. Il est à noter que Lanagiopollis crassa est
propre à la Zd2. Huit autres espèces font leur apparition au sommet de la zone ; il s’agit de :
Retitricolporites crassicostatus, Racemonocolpites racematus, Retitricolporites cf.
hispidus, Striacolporites pimulis, Clavatricolporites densiclavatus, Striatricolporites
fragilis, Crototricolpites densus et Retimonocolpites irregularis. Les présences de
Syncolporites marginatus, Scabratriporites annellus, Ulmipollenites undulosus et
Longapertites vaneendenburgi sont intermittentes. Psilamonocolpites medius progresse
légèrement tandis, que les autres espèces sont plus ou moins constantes.

Zone 3 (ZD3 : 1050-840 m)

La zone Zd3 ayant été divisée en deux sous-zones, on remarque des variations
propres à celle-ci :

La sous-zone Zd3a (1050-900 m) est caractérisée par quatre disparitions :

Syncolporites marginatus, Scabratriporites annellus, Ulmipollenites undulosus et
Longapertites vaneendenburgi. Cependant vers le sommet de la sous-zone, on note
également la disparition de Retistephanocolpites williamsi et Retitricolporites cf. hispidus.
Les Bombacacidites, Retimonocolpites irregularis et Crototricolpites densus sont absents
dans la moitié supérieure de la sous-zone. L’évolution de Psilastephanocolporites et
Cyathidites congoensis n’est pas régulière. Les espèces cosmopolites (présentes dès la base
de la section) sont régulièrement présentes. Dans cette zone deux espèces apparues à la

136
zone Zd2 à savoir, Retitricolporites crassicostatus, Racemonocolpites racematus
disparaissent déjà ici.
La sous-zone Zd3b (900-840 m) se distingue par deux apparitions, à savoir
Psilatricolporites crassus et Retitricolpites simplex. Plusieurs espèces disparaissent à la
limite supérieure de cette sous-zone. Il s’agit de groupe de Psilastephanocolporites,
Cyathidites congoensis, Retitricolpites clarensis, Cricotriporites guianensis,
Clavatricolporites leticiae, Crototricolpites protannemariae, Striatopollis bellus et
Echitriporites trianguliformis. Les autres espèces, cosmopolites, sont toujours présentes.
Psilamonocolpites medius progresse encore à ce niveau et atteint 7%. Echitriporites
trianguliformis, Cricotriporites guianensis et Clavatricolpites densiclavatus restent
constants.

Zone 4 (Zd4 : 840-820 m)

La zone ZD4 est caractérisée par la disparition à sa base de Foveotriletes

margaritae, Bombacacidites, Striatricolporites fragilis, Clavatricolpites densiclavatus,
Striatricolporites pimulis, Retitricolpites simplex et Psilatricolporites crassus. Il existe
aussi des apparitions dans la moitié supérieure de la zone, à savoir Echimonocolpites
rarispinosus, Margocolporites vanwijhei, Psilatricolporites operculatus, Mauritiidites
crassiexinus et Syncolporites poricostatus. Les espèces telles que Retidiporites
magdalenensis, Monocolpites marginatus, Psilamonocolpites medius, Proxapertites cursus,
Proxapertites operculatus, Spinizonocolpites baculatus, Crototricolpites densus,
Retimonocolpites irregularis persistent dans la zone.
A la base de la zone, Proxapertites operculatus est encore en nette progression ; passant de
8% à 14,88%, mais au sommet, l’espèce régresse (6%). Les nouvelles espèces apparues à
ce niveau n’atteignent pas 3% chacune.

137
138
6.2.3. NORD MATANDA 3°56’37’’N – 9°36’23’’E (fig. 13)

Zone 1 (Zd1 : 2630-2450 m)

Dans cette première zone, 14 espèces se démarquent, apparaissant à des moments

différents : quatre en début de zone (Longapertites vaneendenburgi, Monocolpites
marginatus, Spinizonocolpites baculatus, Echitriporites trianguliformis), huit au milieu
(Syncolporites marginatus, Retistephanocolpites williamsi, Clavatricolpites densiclavatus,
Cricotriporites guianensis, Psilamonocolpites medius, Proxapertites cursus, Proxapertites
operculatus, Crototricolpites protoannemariae), et deux au sommet (Syncolporites lisamae
et Racemonocolpites racematus). Il est à noter que Spinizonocolpites baculatus et
Longapertites vaneendenburgi sont uniquement à la base de la zone et que Longapertites
vaneendenburgi est propre à la zone.
Dans cette zone les Monocolpites sont dominants tels que Monocolpites marginatus
(16-3%) ce dernier régressant de la base au sommet, Proxapertites operculatus (5-10%),
Proxapertites cursus (3-7%), Psilamonocolpites medius (4-7%), Spinizonocolpites
baculatus (6%). Ces espèces sont suivies d’Echitriporites trianguliformis (7-11%). Les
proportions des autres espèces sont inférieures à 5%.

Zone 2 (Zd2 : 2450-2200 m)

Parmi les espèces apparues dans la zone Zd1, quatre disparaissent dans la zone Zd2
: Monocolpites marginatus, Syncolporites marginatus, Retistephanocolpites williamsi,
Syncolporites lisamae, et Racemonocolpites racematus. Cette zone est marquée par seize
nouvelles apparitions : Cupanieidites reticularis major, Psilastephanocolporites fissilis,
Mauritiidites minimus, Anacolosidites cf. luteoides, Striatricolporites pimulis, Ephedripites
vanegensis, Ulmipollenites undulosus, Momipites eoafricanus, Scabratriporites annellus,
Foveotriletes margaritae, Bombacacidites, Retitricolpites clarensis, Retidiporites
magdalenensis, groupe Stephanocolporites, Striatopollis bellus, Retitricolporites cf.
hispidus. Parmi ces nouvelles apparitions neuf sont propres à la zone : Cupanieidites
reticularis major, Psilastephanocolporites fissilis, Mauritiidites minimus, Anacolosidites cf.
luteoides, Striatricolporites pimulis, Ephedripites vanegensis, Ulmipollenites undulosus,
Momipites eoafricanus, Retidiporites magdalenensis.

139
 Le groupe des Proxapertites progresse légèrement dans cette zone et atteint 11%.
En revanche, on note la régression de Monocolpites marginatus et de Psilamonocolpites
medius.

Zone 3 (Zd3 : 2200-2000 m)

Cette zone connait six disparitions : Clavatricolporites densiclavatus,

Scabratriporites annellus, Foveotriletes margaritae, Stephanocolporites,
Retibrevitricolporites protrudens, Syncolporites poricostatus. Cinq espèces y font leur
apparition : Retibrevitricolporites protrudens, Syncolporites poricostatus,
Clavatricolporites leticiae, Spirosyncolpites spiralis dont deux sont propres à la zone à
savoir Retibrevitricolporites protrudens, Syncolporites poricostatus. En dehors de
Cricotriporites guianensis, Spinizonocolpites baculatus et Retistephanocolpites cf.
hispidus, qui sont absents dans la zone, toutes les autres espèces apparues plus tôt
continuent leur évolution.
Proxapertites operculatus présente encore les proportions de 10%, Proxapertites
cursus passe de 10% à 6,6%. Une très légère progression de Psilamonocolpites medius est
observée. Dans l’ensemble, ce sont les Monocolpites qui dominent sur l’ensemble de
l’assemblage.

Zone 4 (ZD4 : 2000-1950 m)

Spinizoncolpites baculatus, Echitriporites trianguliformis, Cricotriporites

guianensis, Psilamonocolpites medius, Proxapertites cursus, Proxapertites operculatus,
Crototricolpites protoannemariae, Bombacacidites, Retitricolpites clarensis, Striatopollis
bellus, Retitricolporites cf. hispidus, Clavatricolporites leticiae, Spirosyncolporites spiralis
apparues antérieurement persistent dans cette zone. Trois nouvelles espèces y apparaissent
: Cyathidites congoensis, Racemonocolpites facilis et Psilatricolporites crassus.
Clavatricolporites leticiae est en nette progression et passe de 3 à 15% dans la zone. Cette
espèce est donc prédominante dans la zone. Proxapertites operculatus connaît une forte
régression et recule à 2%. Proxapertites cursus régresse légèrement.

140
141
6.2.4. NGATA 3°24’21’’ N – 9°52’13’’E (fig. 14)

La séquence de Ngata étant pauvre en dinoflagellés, on ne peut ici faire référence à

des biozonations fondées sur ces palynomorphes. Les zones décrites ci-après relèvent donc
essentiellement de l’analyse sporopollinique.

Zone 1 (ZP1 : 1480-1380 m)

La zone ZP1 se distingue par vingt-neuf présences, dont deux sont limitées à la
zone. Les espèces inventoriées sont : Syncolporites marginatus, Syncolporites lisamae,
Proteacidites dehaani, Cupanieidites reticularis major, Ephedripites vanegensis,
Syncolporites doualaensis, Longapertites vaneendenburgi, Foveotriletes margaritae,
Spinizonocolpites echinatus, Retitricolporites crassicostatus, Cricotriporites guianensis,
Pediculisporis reticularis, Myrtacidites psilatus, Cyathidites congoensis, Racemonocolpites
racematus, Proxapertites cursus, Clavatriolporites leticiae, Longapertites marginatus,
groupe Stephanocolporites, Mauritiidites minimus, Proteacidites miniporatus,
Psilamonocolpites medius, Spinizonocolpites baculatus, Proxapertites operculatus,
Retitricolpites clarensis, Clavatricolpites densiclavatus, Echitriporites trianguliformis,
Retitricolpites simplex et Striatopollis bellus. Les deux espèces limitées à la zone sont :
Syncolporites marginatus et Syncolporites lisamae. En plus des 29 espèces apparues à la
base de la zone, deux autres espèces apparaissent au sommet. Il s’agit de Retidiporites
magdalenensis et Monocolpites marginatus.
Cette zone est dominée par Echitriporites trianguliformis (9-19,5%) et Mauritiidites
minimus (19,50-8, 50 %). Psilamonocolpites medius ne dépasse pas 7% et les Proteacidites
ne dépassent pas 6%. Retitricolpites clarensis varie entre 5 et 6%. Les autres espèces ont
des proportions inférieures à 5%.

Zone2 (ZP 2 : 1380-990 m)

En dehors de Syncolporites marginatus, Syncolporites lisamae et Clavatricolpites

densiclavatus toutes les autres espèces apparues dans la zone précédente continuent leur
évolution. Cette zone est marquée par sept apparitions d’espèces, dont trois à la base
(Retimonocolpites irregularis, Echimonocolpites rarisponosus et Ulmipollenites
undulosus), trois progressives (Momipites eoafricanus, Colombipollis tropicalis et
Retitricolporites irregularis) et une espèce propre à la zone (Scabratriporites annellus).

142
143
 Dans cette zone on note l’absence de Clavatricolpites densiclavatus. Au sommet de
cette zone disparaissent Proteacidites dehaani, Cupanieidites reticularis major et
Ephedripites vanegensis.
Cette zone est également dominée par Echitriporites trianguliformis suivi de
Mauritiidites minimus. Au sommet le taxon Mauritiidites minimus atteint parfois 14,5%.
Echitriporites trianguliformis atteint son pic de 20% à 1220 m. Cependant l’évolution de
ces deux espèces (régression-progression) est fort variable. Retitricolpites clarensis ne
dépasse pas 9%. Psilamonocolpites medius atteint parfois 13% alors que les Proteacidites
n’atteignent pas 8%.

Zone 3 (ZP3 : 990-780 m)

Cette zone peut être divisée en deux sous-zones sur base des disparitions.
La sous-zone ZP3a (990-860 m) est caractérisée par la disparition à la base de
Syncolporites doualaensis, Longapertites vaneendenburgi, Clavatricolpites densiclavatus,
Retidiporites magdalenensis, par la disparition progressive de Retimonocolpites irregularis,
Echimonocolpites rarispinosus, Colombopillis tropicalis et par la disparition sommitale de
Spinizonocolpites echinatus, Retitricolporites crassicostatus, Cricotriporites guianensis,
Pediculisporis reticularis. La sous-zone est aussi caractérisée par sept apparitions, dont
trois antérieures aux autres. Ces espèces sont Crototricolpites cf. densus, Racemonocolpites
facilis, Psilatricolporites crassus, Mauritiidites crassiexinus, Retibrevitricolpites
triangulatus, Retibrevitricolporites protrudens et Striatricolpites fragilis. En plus de ces
sept apparitions, trois autres propres à la zone sont décelées, à savoir : Retistephanocolpites
williamsi, Syncolporites poricostatus, et Retitriporites boltenhagenii.
La sous-zone ZP3b (860-780 m) est caractérisée par l’apparition de Margocolporites
vanwijhei. Persistent encore dans cette zone les espèces suivantes : Myrtacidites psilatus,
Cyathidites congoensis, Racemonocolpites racematus, Proxapertites cursus,
Clavatricolporites leticiae, Longapertites marginatus, groupe Stephanocolporites,
Mauritiidites minimus, Proteacidites miniporatus, Psilamonocolpites medius,
Spinizonocolpites baculatus, Retitricolpites clarensis, Echitriporites trianguliformis,
Retitricolpites simplex, Striatopollis bellus, Monocolpites marginatus, Ulmipollenites
undulosus, Momipites eoafricanus, Retitricolporites irregularis, Crototricolpites densus,
Psilatricolporites crassus, Mauritiidites crassiexinus, Racemonocolpites facilis,

144
Retibrevitricolpites triangulatus, Retibrevitricolporites protrudens et Striatricolpites
fragilis.
Echitriporites trianguliformis se caractérise encore par des pourcentages plus ou
moins élevés ; il en est de même pour Psilamonocolpites medius (7%). Mauritiidites
minimus progresse et atteint même 30% à 820 m avant de régresser jusqu’à la fin de la
section. Proxapertites operculatus ne dépasse plus 4%. Les proportions de presque tous les
palynomorphes restant oscillent entre 1 et 2%.

6.3. INTERPRÉTATION ET DISCUSSION

6.3.1. Biostratigraphie

La Formation de Nkapa renferme des miospores bien préservées dans les quatre
puits étudiés (Moulongo, Mamiwater, Nord Matanda et Ngata). La distribution verticale de
la plupart des espèces importantes est reprise dans les graphiques (Figures 11 à 14). Sur
base des données de SALARD (1977, 1978, 1979) relatifs au sondage Kwa Kwa au
Cameroun et de travaux réalisés sur des bassins voisins (voir tableau 5), la répartition
stratigraphique des taxons les plus significatifs peut être discutée.

6.3.1.1. Taxons à caractère paléocène

Ephedripites vanegensis : cette espèce apparaît au Paléocène dans les puits Ngata
(Zp1/Zp2) Moulongo (Zd1) et Nord Matanda (Zd2). Elle constitue un bon marqueur du
Paléocène dans la Formation de Nkapa. Dans la zone sud-américaine du domaine
américano-africain, elle est le plus souvent citée comme caractéristique du Paléocène
(RULL, 1997, 1999 ; PARDO et al., 2003)

Foveotriletes margaritae : forme caractéristique du Paléocène supérieur, comme

l’indique sa distribution à Moulongo (Zd3b), Mamiwater (Zd2/Zd3) et Nord Matanda
(Zd2/Zd3). A Ngata, elle est aussi légèrement antérieure (Zp1/Zp2). Trouvée au

145
Maastrichtien au Bénin (BIO-LOKOTO et al., 1998) et au Maastrichtien-Paléocène au
Nigeria (GERMERAAD et al., 1968 ; CHIAGHANAM et al., 2012).

Groupe « Bombacacidites » : dans la Formation de Nkapa ce groupe connaît un

développement principalement au Paléocène (Mamiwater Zd1/Zd2/Zd3, Nord Matanda
Zd2/Zd3) ; sa présence à l’Eocène inférieur est plus discrète (Moulongo Zd4b).

Longapertites vaneendenburgi : ce taxon se situe dans la partie basale de Ngata

(Zp1/Zp2), Mamiwater (Zd1/Zd2) et Nord Matanda (Zd1/Zd2). Il a été trouvé au
Maastrichtien-Paléocène dans la plupart des bassins de l’Ouest africain (SALARD, 1990),
notamment au Nigeria (BIO-LOKOTO et al., 1998 ; ADEONIPEKUM et al., 2012) et dans
le Paléocène du Soudan (STEAD & AWAD, 2005).

Monocolpites marginatus : rencontré dans toutes les sections étudiées, il peut

atteindre la base de l’Eocène. Généralement considéré comme Paléocène au Nigeria
(ADEGOKE et al., 1978, 1986) et au Soudan (STEAD & AWAD, 2005), il peut toutefois y
atteindre l’Eocène inférieur (EISAWI & SCHRANK, 2008 ; JAN DU CHENE &
SALAMI, 1978).

Proteacidites dehaani : présent au Paléocène à Ngata (Zp1/Zp2), ce taxon est plutôt

catalogué Maastrichtien au Benin (BIO-LOKOTO et al., 1998), au Ghana (ATTA-PETERS
& SALAMI, 2004b), au Nigeria (GERMERAAD et al., 1968 ; CHIAGHANAM et al.,
2012 ; ONUIGBO et al., 2012) et à Kwa Kwa au Cameroun (SALARD, 1979).

Retitricolpites clarensis : la forme a été recensée à Ngata (Zp1/Zp2/Zp3),

Moulongo (Zd1 à Zd4a), Nord Matanda (Zd2/Zd3) et Mamiwater (Zd1 à Zd4), c’est-à-dire
au Paléocène et à la base de l’Eocène. Elle caractérise toutefois plutôt le Paléocène du fait
qu’elle est plus abondante à cette période. R. clarensis a été trouvé dans le Maastrichtien du
Soudan (EISAWI & SCHRANK, 2009), dans le Paléocène au Nigeria (VAN HOEKEN-
KLINKENBERG, 1966), au Paléocène supérieur-Eocène basal au Bénin (BIO-LOKOTO et
al., 1998). Au Cameroun, SALARD (1977, 1979, 1990) la situe entre le Crétacé supérieur
et l’Eocène moyen).

146
 Retitricolporites crassicostatus : cette espèce est présente dans l’espace paléocène à
Moulongo (Zd1/Zd2/Zd3), Mamiwater (Zd2/Zd3) et à Ngata (Zp1/Zp2 tout à fait
occasionnelle dans Zp3a). Présente au Paléocène au Bénin (BIO-LOKOTO et al., 1998), au
Maastrichtien et au Paléocène au Nigeria (VAN HOEKEN-KLINKENBERG, 1966).

Retistephanocolporites williamsi : essentiellement paléocène à Moulongo

(Zd2/Zd3), Mamiwater (Zd1/Zd2/Zd3) et Nord Matanda (Zd1/Zd2) le taxon est occasionnel
à l’Eocène basal (Ngata– Zp3a). Signalé comme Paléocène-Eocène basal au Bénin (BIO-
LOKOTO et al., 1998) à l’Eocène au Ghana (ATTA-PETERS & SALAMI, 2004b) et dans
l’intervalle Maastrichtien-Eocène au Nigeria (GERMERAAD et al., 1968).

Scabratriporites annellus : a été mis en évidence à Ngata (Zp2), Moulongo (Zd1),

Mamiwater (Zd1/Zd2) et Nord matanda (Zd2/Zd3). C’est un bon marqueur du Paléocène
rencontré par ailleurs au Maastrichtien-Paléocène inférieur au Nigeria (VAN HOEKEN-
KLINKENBERG, 1966) et au Paléocène au puits Kwa Kwa au Cameroun (SALARD,
1979). Au Benin, le taxon est signalé entre le Crétacé et l’Eocène basal (BIO-LOKOTO et
al., 1998).

Spinizonocolpites echinatus et Spinizonocolpites baculatus : les deux espèces sont

présentes dans le Paléocène des séquences et atteignent la base de l’Eocène.
Spinizonocolpites echinatus enregistre une progression temporaire à la fin du Paléocène.
Ces taxons ont été observés, ensemble ou individuellement, du Maastrichtien à l’Eocène
inférieur au Bénin (BIO-LOKOTO et al., 1998) au Ghana (ATTA-PETERS & SALAMI,
2004b), et au Nigeria (GERMERAAD et al., 1968 ; EDET & NYONG, 1994 ;
CHIAGHANAM et al., 2012). Au Cameroun, à Kwa Kwa, Spinizonocolpites a été signalé
par SALARD (1979) au Paléocène et à l’Eocène inférieur.

Syncolporites lisamae : cette forme rencontrée dans les couches inférieures de la

Formation de Nkapa à Ngata (Zp1), Moulongo (Zd1), Mamiwater (Zd1) et Nord Matanda
(Zd2) est aussi caractéristique du Paléocène. Dans la zone sud-américaine elle est
cataloguée comme Paléocène-Eocène inférieur (RULL, 1999 ; JARAMILLO & DILCHER,
2001 ; JARAMILLO et al., 2007).

147
 Syncolporites marginatus : cette espèce, rencontrée à Ngata (Zp1), Moulongo
(Zd1), Mamiwater (Zd1/Zd2/Zd3a) et Nord matanda Zd1/Zd2) peut être considérée comme
un bon marqueur paléocène du Bassin de Douala bien que signalée antérieurement ailleurs :
dans le Maastrichtien supérieur du Nigeria (EDET & NYONG, 1994 ; CHIAGHANAM et
al., 2012) et le Maastrichtien s.l. au Soudan (EISAWI & SCHRANK, 2008).

6.3.1.2. Taxons à caractère éocène

Crototricolpites densus : présent à partir du Paléocène supérieur et à l’Eocène basal

à Moulongo (Zd3/Zd4a), à Mamiwater (Zd3/Zd4) et à Ngata (Zp3), la forme peut être
considérée comme marqueur du Paléocène supérieur-Eocène inférieur. Cette forme apparaît
à l’Eocène inférieur dans le sondage Kwa Kwa (SALARD, 1979, 1981).

Echimonocolpites rarispinosus : le taxon apparaît à Moulongo (Zd4a), Mamiwater

(Zd4) et Ngata (Zp2/Zp3) à la limite Paléocène-Eocène. Il est considéré comme un taxon de
l’Eocène basal au Bénin (BIO-LOKOTO et al., 1998) et au Cameroun (SALARD, 1977,
1979). Au Soudan, il apparaîtrait plus tôt, au Paléocène (STEAD & AWAD, 2005).

Margocolporites vanwijhei : cette espèce peut être considérée comme marqueur

éocène. Elle apparaît à Mamiwater (Zd4) et à Ngata (Zp3-2). On la connaît à partir de
l’Eocène supérieur au Nigeria (GERMERAAD et al., 1968).

Mauritiidites crassiexinus : présente à Moulongo (Zd4a), Mamiwater (Zd4) et

Ngata (Zp3) donc dans la biozone éocène, on peut, comme SALARD (1990), considérer la
forme comme un marqueur de l’étage. Elle est citée au Nigeria comme espèce éocène (JAN
DU CHENE et al., 1978b). Au Soudan, elle apparaît au Paléocène (STEAD & AWAD,
2005).

Psilatricolporites crassus : présente à Moulongo (Zd3/Zd4), Mamiwater (Zd3b),

Nord Matanda (Zd4 et Ngata (Zp3), l’espèce semble caractériser le Paléocène supérieur et
l’Eocène inférieur. Au Cameroun, SALARD (1979, 1981) l’a identifiée à l’Eocène inférieur
et à l’Eocène moyen. Dans les Caraïbes et au Nigeria cette espèce semble caractériser
l’intervalle Paléocène terminal-Pléistocène (GERMERAAD et al., 1968). En Amérique du

148
Sud cette espèce est cataloguée Eocène inférieur-Eocène moyen (RULL, 1998, 1999,
PARDO-TRUJILLO et al., 2003).

Psilatricolporites opercualtus : cette espèce apparaît à Moulongo (Zd4a) et à

Mamiwater (Zd4), c’est-à-dire à la base de l’Eocène, ce que SALARD (1979) avait déjà
enregistré au puits Kwa Kwa.

Racemonocolpites facilis : présent à Ngata (Zp3a/Zp3b) et à Nord Matanda (Zd4),

ce taxon peut-être considéré comme marqueur de l’Eocène inférieur selon SALARD
(1979).

Retitriporites boltenhagenii : présent à l’Eocène inférieur à Moulongo (Zd4b) et à

Ngata (Zp3). Cité pour la première fois à l’Eocène du Bassin de Douala.

Retibrevitricolpites triangulatus : seulement présent à Ngata (Zp3). Pour SALARD

(1979), serait un marqueur de l’Eocène inférieur au Cameroun. L’espèce est connue du
Paléocène supérieur-Eocène au Nigeria (VAN HOEKEN-KLINKENBERG, 1966 ;
GERMERAAD et al., 1968).

Retitricolporites irregularis : ce taxon est présent dans la séquence de Moulongo

(sommet Zd3/Zd4) et dans celle de Ngata (Zp2/Zp3), soit au Paléocène supérieur et à
l’Eocène. Elle apparaît à l’Eocène au Ghana (ATTA-PEETERS & SALAMI, 2004b), au
Paléocène supérieur au Nigeria (GERMERAAD et al., 1968) et à l’Eocène inférieur du
sondage Kwa Kwa au Cameroun (SALARD, 1979).

Spirosyncolpites spiralis : l’espèce est présente à Moulongo (Zd4a) et à Nord

Matanda (Zd3/Zd4) à la limite Paléocène-Eocène. Elle apparaît au Paléocène au Soudan
(STEAD & AWAD, 2005) et à l’Eocène dans le sondage Kwa Kwa au Cameroun
(SALARD, 1979).

Retibrevitricolporites protrudens : ce taxon a été trouvé à Ngata (ZP3) et à Nord

Matanda (ZD3). Il caractériserait l’intervalle Paléocène supérieur-Eocène inférieur.
L’espèce a été signalée dans l’intervalle Maastrichtien-Eocène inférieur au Soudan, mais

149
apparait abondant dans l’intervalle Oligocène-Miocène inférieur (STEAD & AWAD, 2005
; EISAWI & SCHRANK, 2008).

Striatricolporites fragilis : cette espèce apparait dans les puits Moulongo (ZD4),
Mamiwater (ZD2 à ZD4) et Ngata (ZP3) dans l’intervalle correspondant au Paléocène
supérieur-Eocène inférieur. Elle a été trouvée dans l’intervalle Eocène moyen-Miocène
inférieur dans le puits Kwa-Kwa (SALARD-CHEBOLDAEFF, 1979).

Striatopollis bellus : le taxon se situe généralement au Paléocène supérieur et à

l’Eocène inférieur à Moulongo (sommet de Zd2 à Zd4), Nord Matanda (sommet de Zd2 à
Zd4), Ngata (sommet de Zp2/Zp3). IL peut apparaître plus tôt, mais de façon insignifiante :
Mamiwater (Zd1), Ngata (Zp1).
Dans le puits Kwa Kwa, l’espèce apparaît au Paléocène supérieur (SALARD, 1977, 1978,
1979) ; elle a été trouvée dans l’Eocène basal du Bénin (BIO-LOKOTO et al., 1998) et au
Paléocène supérieur-Eocène au Nigeria (GERMERAAD et al., 1968).

6.3.1.3. Tendances des ubiquistes

Sont reprises dans cette catégorie les espèces présentes dans l’ensemble des
séquences étudiées, de leur base à leur sommet, mais qui présentent une progression à
certains niveaux.

Crototricolpites protoannemariae : cette espèce est dominante au Paléocène

inférieur à Nord Matanda (Zd1) ; on la retrouve au Paléocène à Mamiwater (Zd1/Zd2/Zd3)
; elle est dispersée à l’Eocène inférieur à Moulongo (Zd4). Elle est citée au Paléocène au
Nigeria par RAYMER (2010). En Colombie, l’espèce est signalée au Paléocène supérieur
(JARAMILLO & DILCHER, 2001).

Echitriporites trianguliformis : forme dominante à Nord Matanda (Zd1) et à Ngata

(Zp1/Zp2) à tendance paléocène marquée. Citée au Maastrichtien par SALARD (1977,
sondage Kwa Kwa), elle est fréquente dans l’espace Maastrichtien-Eocène au Ghana
(ATTA-PEETERS & SALAMI, 2004b) et au Nigeria (VAN HOEKEN-KLINKENBERG,
1966 ; GERMERAAD et al., 1968 ; EDET & NYONG, 1994 ; OGALA et al., 2009 ;
CHIAGHANAM et al., 2012).

150
 Mauritiidites minimus : occasionnelle à Moulongo (Zd1) et à Nord Matanda (Zd2),
l’espèce est présente dans toute la séquence de Ngata, où elle est en progression constante
pour atteindre son expansion maximale à la base de l’Eocène (Ngata-Zp3).

Momipites eoafricanus : présent à Ngata dans Zp2 et Zp3, le taxon connaît une
expansion au Paléocène moyen à Moulongo (Zd2) et à Nord Matanda (Zd2).

Proxapertites cursus : taxon dominant à Moulongo (Zd1), Mamiwater (Zd1) et

Nord Matanda (Zd1/Zp3) ; présente une tendance paléocène marquée. Dans les bassins
voisins, signalé dans l’espace Maastrichtien-Eocène moyen : au Ghana (ATTA-PETERS &
SALAMI, 2004b), au Nigeria (VAN HOEKEN-KLINKENBERG, 1966 ; GERMERAAD
et al., 1968). Au Cameroun, dans le sondage Kwa Kwa, SALARD (1977, 1978, 1979) lui
reconnaît une distribution Crétacé supérieur-Eocène moyen.

Proxapertites operculatus : dominant au paléocène uniquement dans la séquence de

Nord Matanda (Zd1/Zd2/Zd3). Taxon trouvé au Cameroun dans le sondage Kwa Kwa dans
l’espace Crétacé supérieur-Eocène moyen (SALARD, 1977, 1978, 1979). Au Soudan, la
forme a été trouvée au Paléocène (STEAD & AWAD, 2005) et au Nigeria, du
Maastrichtien à l’Eocène (VAN HOEKEN-KLINKENBERG, 1966 ; GERMERAAD et al.,
1968).

Psilamonocolpites medius : cette espèce est principalement représentée au

Paléocène à Moulongo (Zd1), Nord Matanda (Zd1), Mamiwater (Zd1/Zd2/Zd3) et Ngata
(Zp1/Zp2). Elle est enregistrée au Cameroun à partir du Crétacé supérieur (SALARD,
1979).

6.3.1.4. Discussion

Les taxons repris dans la liste qui précède peuvent se répartir individuellement en
diverses catégories :

- Les marqueurs du Paléocène sensu stricto, inférieur à moyen, c’est-à-dire ceux dont
l’extension stratigraphique s’assimile plus généralement aux biozones Zd1/Zd2 de l’échelle
des dinoflagellés proposée pour les séquences de Moulongo, Mamiwater et Nord Matanda
dans la présente étude et pour lesquelles on peut avancer une corrélation avec la biozone

151
Zp1 de la séquence de Ngata. Les espèces propres à cet intervalle sont : Ephedripites
vanegensis, Longapertites vaneendenburgi, Proteacidites dehaani, Syncolporites lisamae,
Syncolporites marginatus. On peut y joindre des espèces ubiquistes, dont la période
d’expansion se situe dans Zd1/Zp1 : Crototricolpites protoannemariae, Echitriporites
trianguliformis, Retitricolpites clarensis.

- Les taxons caractérisant le Paléocène sensu lato, certains déjà présents au Paléocène
inférieur, d’autres plus spécifiques du Paléocène moyen/supérieur des biozones Zd2/Zd3 de
Moulongo, Mamiwater et Nord Matanda et de Zp2 de Ngata et quelques-uns atteignant la
base de l’Eocène. Citons : Foveotriletes margaritae, le groupe « Bombacacidites »,
Monocolpites marginatus, Retistephanocolpites williamsi, Retitricolporites crassicostatus,
Scabratriporites annellus, Spinizonocolpites baculatus, Spinizonocolpites echinatus ; ainsi
que des ubiquistes dont l’acmé se situe dans les biozones Zd2/Zd3 et Zp2 : Momipites
eoafricanus, Proxapertites cursus, Proxapertites operculatus, Psilamonocolpites medius.

- Les marqueurs de l’Eocène présents dans les Zd4 de Moulongo, Mamiwater, Nord
Matanda et dans Zp3 de Ngata : Crototricolpites densus, Echimonocolpites rarispinosus,
Margocolporites vanwijhei(*), Mauritiidites crassiexinus(*), Psilatricolporites crassus,
Psilatricolporites operculatus(*), Racemonocolpites facilis(*), Retitriporites boltenhagenii(*),
Retibrevitricolpites triangulatus(*), Retitricolporites irregularis, Spirosyncolpites spiralis,
Striatopollis bellus, Striatricolporites fragilis, Retibrevitricolporites protrudens ainsi que
Mauritiidites minimus, ubiquiste dont l’expansion maximale se situe à la base de l’Eocène.
(*)
Dans le lot des taxons précités, ceux marqués d’un sont spécifiquement éocènes,
apparaissant au-dessus de la limite P/E fixée par les stratigraphes pétroliers (rapport de
sondage inédit, 1995) ; les autres trouvent leur première apparition au Paléocène supérieur.

Les autres espèces reprises dans les graphiques sont ubiquistes et ne présentent pas
de variation significative tout au long des séquences. Elles sont représentatives d’un fond
pollinique commun sans particularité biostratigraphique.

Regroupés en assemblages polliniques, les principaux taxons cités ci-dessus

s’inscrivent dans une succession représentative de la végétation terrestre qui va subir divers
changements perceptibles au cours du temps (Tableau 7, page suivante).

152
153
 Trois assemblages se situent dans cette série évolutive :

- Un échantillon représentatif de la flore originelle paléocène,

- Un assemblage constitué d’un mélange de taxons anciens et nouveaux soulignant une
phase de transition de la flore en mutation,
- Un échantillon représentatif de la flore du début de l’Eocène.

A ces trois assemblages correspondent trois zones biostratigraphiques dont les

limites sont indiquées par les cotes de profondeurs mentionnées dans les colonnes de droite
du tableau 7 représentant les différentes séquences étudiées.
En analysant la succession des assemblages, on perçoit que les cotes inférieures
notées dans les différentes séquences situent le début de la mutation de la flore originelle
paléocène. A la base de la zone 2 s’amorce la période de transition au cours de laquelle des
taxons représentatifs du Paléocène vont entrer en régression, alors que des taxons fréquents
à l’Eocène commencent à apparaître.
La zone pollinique 1 couvrirait les zones Zp1 et Zp2 de Ngata ; à Moulongo, elle
correspondrait aux biozones Zd1 et Zd2 des dinoflagellés, à Mamiwater aux biozones
Zd1/Zd2 ainsi qu’à la partie inférieure de Zd3a, à Nord Matanda, aux biozones Zd1/Zd2.
Si on compare cette coupure pollinique à la limite Paléocène/Eocène définie par les
stratigraphes pétroliers (rapport de sondage inédit, 1995), à Moulongo, le sommet de la
zone 1 se situe à –2400 m alors que la limite P/E a été fixée à –2362 m. A Ngata, la
correspondance est plus précise : le début du changement de flore se situe à –1000 m alors
que la limite P/E proposée par les pétroliers est à –990 m. C’est ici que la correspondance
avec la coupure proposée par la palynologie est la plus précise.
La zone pollinique 2 de transition est peu développée à Moulongo (-2340 m à –2400
m) ainsi qu’à Ngata (-850 m à –1000 m) ; à Moulongo, la limite inférieure de l’Eocène s.s.
suggérée par l’analyse pollinique diffère quelque peu de la limite P/E préétablie (- 2340 m
pour – 2362 m), à Ngata, la base de l’Eocène s.s. se situerait à – 850 m, base de la subzone
pollinique Zp3b correspondant à la base de la zone pollinique 3.
A défaut d’une limite P/E préétablie comme à Moulongo et à Ngata, les données
relatives aux séquences de Mamiwater et Nord Matanda sont moins précises bien qu’on y
retrouve les mêmes successions. On constate cependant que les coupures polliniques
marquant l’évolution floristique s’identifient à la biostratigraphie des dinoflagellés.

154
6.3.2. Paléoenvironnements

A la fin du Crétacé, les florules archaïques de la période commencent à se structurer

en ensembles floristiques plus cohérents à la surface du globe. Parmi ceux-ci, la grande
« Province des Palmiers » décrite par HERNGREEN & CHLONOVA (1981) et
HERNGREEN et al. (1996), qui s’étendait d’Ouest en Est depuis le Nord de l’Amérique du
Sud jusqu’en Inde et la région indo-malaise en passant par l’Afrique.
En Amérique du sud, cette province couvrait la Colombie, le Brésil, le Venezuela et
les Caraïbes (GERMERAAD et al., 1968 ; HERNGREEN, 1975 ; MULLER et al., 1987).
En Inde, THANIKHAIMONI et al. (1984) en font état, de même que GERMERAAD et al.
(1968) en Indo-Malaisie. Des éléments constitutifs de cette « Flore à Palmiers » ont été
décrits dans des travaux relatifs à l’Afrique : au Sénégal et en Côte d’Ivoire (JARDINE &
MAGLOIRE, 1965), au Ghana (ATTA-PEETERS & SALAMI, 2004b), au Nigeria
(SALAMI, 1982, 1984, 1985, 1988, 1990), au Soudan (SCHRANK, 1987), en Egypte
(SCHRANK, 1987 ; EL BEIALY, 1995) et au Nord de la Somalie (SCHRANK, 1994).
Les assemblages sporopolliniques des dépôts du Crétacé supérieur sont dominés par
des genres monocolpés de type « Palmier » : Longapertites, Mauritiidites, Proxapertites,
Psilamonocolpites, Racemonocolpites et Spinizonocolpites. Parmi cet ensemble, rapporté à
une flore tropicale chaude et humide (SRIVASTAVA & BINDA, 1991 ; FREDERIKSEN,
1994), le genre le plus significatif est Spinizonocolpites, pollen du palmier Nipa, genre
indo-malais des forêts marécageuses de deltas, composantes des environnements de
mangroves (GERMERAAD et al., 1968).
Au Paléocène, les domaines floristiques s’individualisent davantage. Dans la
Province africano-sud américaine (Figure 10) dérivée de la Province des Palmiers, la flore
archaïque originelle va évoluer par stades successifs vers les ensembles modernes actuels,
représentatifs des forêts humides d’Amérique du sud et d’Afrique. Ceux-ci, malgré leur
éloignement progressif et leur évolution séparée dus à la dérive continentale, ont gardé
aujourd’hui des traits communs de part et d’autre de l’Atlantique. En Afrique de l’Ouest
s’est mise en place une flore dite « à Légumineuses » selon l’appellation proposée par
AUBREVILLE (1957-1958 in LETOUZEY, 1968) mais à laquelle LETOUZEY (1968)
préfère l’appellation de flore à « Césalpiniacées ». Cette dernière, forêt dense humide
sempervirente de basse et moyenne altitude enserre, au Cameroun, une forêt dense humide
littorale côtière ou deltaïque.

155
 Dans la Formation de Nkapa, on enregistre les prémices de l’évolution floristique
qui va se poursuivre tout au long du Cénozoïque. Malgré un nombre important de taxons
non encore identifiés (famille actuelle), ceux qui le sont permettent de suggérer une
évolution floristique en trois phases couvrant le Paléocène et la base de l’Eocène.

6.3.2.1. Les formations particulières

Au Paléocène inférieur à « moyen » (Thanetien inférieur) représenté dans les

séquences par les biozones Zd1/Zd2 de l’échelle des dinoflagellés à Moulongo, Mamiwater
et Nord Matanda et la biozone pollinique Zp1 à Ngata, la base de la végétation est
composée essentiellement de taxons de type « Palmier » (Longapertites vaneendenburgi,
Proxapertites operculatus, Proxapertites cursus, Monocolpites marginatus,
Racemonocolpites racematus, Spinizonocolpites baculatus, Spinizonocolpites echinatus)
associés à des taxons de type « Proteaceae » (Echitriporites trianguliformis, Proteacidites
dehaani, Scabratriporites annellus). Parmi les premiers, Longapertites vaneendenburgi, les
Proxapertites et les Spinizonocolpites (Nipa) sont adaptés au biome de la mangrove
(GERMERAAD et al., 1968, VAN DER KAARS, 1983), les deux autres sont plus
spécifiquement de forêt de plaine côtière. L’existence de mangrove serait par ailleurs
attestée par la seule Rhizophoracée identifiée dans la Formation de Nkapa : Lanagiopollis
crassa, présente à Mamiwater. Les pollens attribués aux Proteaceae sont souvent de type
archaïque, ressemblant aux formes crétacées, mais on voit déjà apparaître une forme plus
moderne : Scabratriporites annellus. L’ensemble des Protéacées, selon GERMERAAD et
al. (1968) évoquerait une forêt de plaine côtière ou un environnement alluvial (RULL,
1999).
Parmi les compagnes de cet ensemble de base, on retiendra des Myrtacées de marais
boisés et de galeries forestières (Myrtacidites psilatus, Syncolporites lisamae), des
Moracées de forêt humide (Momipites eoafricanus), des Bombacaceae de type Bombax
(Bombacacidites sp.) de forêts sempervirentes ou marécageuses de basse altitude et un
genre, Ctenolophon (Retistephanocolpites williamsi) occupant des sables alluviaux dans les
forêts marécageuses. A noter aussi la présence d’Ephedripites vanegensis, une Ephédracée
qui serait colonisatrice des zones côtières sablonneuses.
Globalement, l’assemblage pollinique identifiable du Paléocène inférieur de la
Formation de Nkapa dans le Bassin de Douala reflète un environnement de mangrove

156
assorti d’une forêt humide de basse altitude, en partie marécageuse, se situant dans un
milieu côtier à estuarien soumis aux marées.
Au Paléocène supérieur (Zd3 de Moulongo, Mamiwater et Nord Matanda, Zp2 de
Ngata), on assiste à une première évolution floristique qui se traduit par la disparition
d’espèces plutôt courantes au Paléocène inférieur : Longapertites vaneendenburgi
(Palmae), Proteacidites dehaani, Retidiporites magdalenensis, Scabratriporites annellus
(Proteaceae), Lanagiopollis crassa (Rhizophoraceae), Ephedripites vanegensis
(Ephedraceae). D’autres espèces sont en outre en voie de raréfaction comme Monocolpites
marginatus (Palmae), Echitriporites trianguliformis (Proteaceae), Retistephanocolpites
williamsi (Ctenolophon). Parmi les espèces plutôt stables, relevons Bombacacidites div. sp.
(Bombacaceae), Momipites africanus et Momipites eoafricanus (Moraceae). En revanche,
les Spinizonocolpites (Nipa) sont en progrès de même que les Proxapertites operculatus et
cursus. De nouvelles espèces s’insèrent dans les assemblages polliniques : Clavatricolpites
densiclavatus (Aquifoliaceae), Echimonocolpites rarispinosus (Palmae, Lepidocaryoideae),
Psilastephanocolporites fissilis (Polygalaceae), Striatricolporites fragilis (Anacardiaceae)
et Syncolporites poricostatus (Myrtaceae).
Le paysage du Paléocène supérieur est quelque peu différent du précédent. Ainsi,
l’ensemble forestier fait plutôt penser à un environnement de basse plaine deltaïque de
milieux saumâtres situés en retrait de la mangrove et de la frange de forêt humide côtière.
Dans cet ensemble, le Nipa et les taxons producteurs de Proxapertites sont bien
représentés. Ces derniers, initialement considérés comme associés au Nipa dans des
environnements de Mangrove (GERMERAAD et al., 1968) seraient de préférence à ranger
parmi des Araceae (ZETTER et al., 2001) lianes, de forêts sempervirentes humides ; celles-
ci pouvaient être envahies par d’autres types de lianes, de la famille des Polygalaceae.
Outre la présence de Bombacaceae, de Moraceae et de Myrtaceae, on y enregistre une
avancée d’Anacardiaceae, d’Aquifoliaceae et d’un palmier de la famille des
Lepidocaryoideae, élément de forêt humide de terre ferme. L’existence de ce type
d’environnement évoque un milieu deltaïque saumâtre pouvant encore subir l’influence des
marées, sans toutefois avoir un contact direct avec la mer. Cela laisse suggerer qu’une
phase marine régressive serait en train de s’amorcer.
La deuxième phase évolutive se situe au passage Paléocène/Eocène (Zd4 de
Moulongo, Mamiwater et Nord Matanda ; Zp3 de Ngata), avec l’installation d’un milieu
forestier plus hétérogène où les éléments de forêts marécageuses de milieu saumâtre sont en
, alors que s’affirment ceux d’une forêt dense de terre ferme.

157
 Le paysage qui se met en place au début de l’Eocène est celui d’une forêt dense
sempervirente humide de terre ferme et de basse altitude où les grands arbres de la famille
des Caesalpiniaceae (Striatopollis bellus) sont en passe de devenir un élément important. A
ces Légumineuses sont associées des Euphorbiaceae, arbres et arbustes des genres
Alchornea (Psilatricolporites operculatus), Amanoa (Retitricolporites irregularis) et
Croton (Crototricolpites densus). Des Aracées-lianes (Proxapertites cursus ; Proxapertites
operculatus) envahissent ce genre de milieu, entre-autres celles du genre Raphidophora
(THANIKAIMONI, 1970 in : SAMANT & PHADTARE, 1997). On y trouve aussi des
palmiers (Echimonocolpites rarispinosus, Racemonocolpites facilis) et des fougères
arborescentes (Cyathidites congoensis) occupant des dépressions et des bords de marais.
Parmi les palmiers, on voit progresser de façon sensible, surtout à Ngata, ceux du genre
Mauritia (Mauritiidites minimus). Ce genre, élément de la forêt bordière de marais d’eau
douce et de forêts galeries est intolérant à la salinité. Ce passage d’un milieu saumâtre
antérieur à un milieu d’eau douce évoque une position plus continentale, qui résulterait de
la régression marine entamée au début de l’Eocène en Afrique de l’Ouest et
particulièrement dans le bassin de Douala au Cameroun.

6.3.2.2. Les ubiquistes

Sont rangés dans cette catégorie les taxons formant le fond de la végétation et qui
peuvent s’adapter à une variété de milieux allant de l’arrière-mangrove à la forêt de terre
ferme dans un environnement chaud et humide.
Divers groupements relèvent de cette catégorie, par ordre d’importance :
- Les palmiers de la famille des Arecaceae (Retimonocolpites div.sp.) ;
- Les Sapotaceae et les Meliaceae (Psilastephanocolporites div.sp.)
- Les Myricaceae (Triatriopollenites div.sp) ;
- Les Icacinaceae (Echiperiporites sp.) ;
- Les Apocynaceae (Psiladiporites div. sp. ; Psilatricolpites sp.) ;
- Certaines Proteaceae (Retidiporites div.sp.).
Les palmiers de la famille des Arecaceae s’adaptent à différents environnements
tropicaux humides ; certains genres sont une composante des forêts galeries en milieu
saumâtre ou d’eau douce.
Les Sapotaceae, arbres de forêts denses humides, se rencontrent jusque dans les
forêts littorales partiellement inondées ; les Meliaceae, plus tolérantes que les Sapotaceae

158
du point de vue de la température et de l’humidité peuvent constituer le fond floristique des
forêts denses sempervirentes de basse altitude avec les Apocynaceae, les Caesalpiniaceae et
les Euphorbiaceae.
Les Myricaceae, buissons toujours verts se rencontrent aussi bien dans les basses
zones marécageuses que dans des milieux plus secs d’arrière-pays.
Les Icacinaceae, communes en Afrique de l’Ouest, sont des arbres, arbustes ou
lianes de forêts tropicales humides.
Les Apocynaceae font partie des forêts ombrophiles de basse altitude, certaines sont
lianeuses (Landolphia).
Enfin, les Ptéridophytes rencontrées dans tous les assemblages sporopolliniques, la
plupart arborescentes, appartiennent aux familles des Cyatheaceae, Polypodiaceae et
Schizeaceae. Elles occupent les zones bordières des marécages salins, saumâtres et d’eau
douce (ATTA-PETERS & SALAMI, 2004b).

6.3.3. Discussion

En regroupant les informations issues des études de dinoflagellés et des pollens et

spores, on peut retracer l’histoire environnementale du Bassin de Douala. Celle-ci se
développe selon deux axes : un axe W-E (Moulongo-Ngata) et un axe SSW – NNE
(Moulongo-Mamiwater-Nord Matanda). Dans le premier axe, les assemblages
sporopolliniques sont plus diversifiés, jusqu’à la base de l’Eocène incluse. Dans le second
axe, les assemblages, tout autant diversifiés au Paléocène, le sont moins à la base de
l’Eocène où l’archivage sporopollinique présente un aspect appauvri par rapport à ce qu’il
est dans l’axe W-E.
Au Paléocène inférieur et moyen (Thanetien inférieur), on se situe dans un intervalle
de transgression marine. Dans l’axe Moulongo-Mamiwater-Nord Matanda, le milieu est de
type estuarien-côtier à influence marine marquée. Ces milieux littoraux sont frangés de
mangroves et de forêts humides côtières de basse plaine marécageuse. Dans le sens W-E
(Moulongo-Ngata), on passe d’un milieu estuarien-côtier ouvert sur la mer à un milieu
laguno-deltaïque interne à salinité modérée, soumis aux marées. Du point de vue de la
végétation, à une mangrove et une forêt côtière de basse plaine marécageuse fait, suite une
forêt dense humide périodiquement inondée.

159
 Au Paléocène supérieur, de Moulongo à Mamiwater et Nord Matanda, la
transgression marine entamée au Paléocène inférieur subit un arrêt. On entre dans une
période de balancement vers une phase régressive déjà amorcée au Nord du Bassin comme
l’atteste l’absence de Paléocène supérieur dans les affleurements de la région de Souza
(KENFACK et al., 2012). L’environnement physique évolue vers un milieu fluvio-
lagunaire à salinité variable selon des alternances d’apports marins ou continentaux d’eau
douce. Dans cette zone, l’environnement végétal était constitué d’une forêt dense humide
de basse plaine en retrait de la zone côtière, entourant des bras de deltas et des lagunes
saumâtres soumis aux marées. A l’Est, vers Ngata, dans un environnement deltaïque interne
à influence marine limitée se développait une forêt dense sempervirente sur sols humides.
A la base de l’Eocène, la phase marine régressive est en cours. A Moulongo, les
données suggèrent la présence d’un milieu fluvio-lagunaire à faible profondeur d’eau et à
salinité modérée, voire un peu plus prononcée, avec apports détritiques d’origine
continentale. L’ensemble se situerait dans un environnement de forêt humide de basse
plaine deltaïque soumise encore à l’influence marine. Vers Ngata, on s’oriente vers un
milieu deltaïque interne à dépressions marécageuses d’eau douce et zones de terre ferme.
L’environnement y serait constitué de forêts sempervirentes humides de terre ferme, de
forêts galeries bordières des bras du delta et d’une végétation de marécages. A Mamiwater
et Nord Matanda, la progression en pourcentage des dinoflagellés pourrait donner
l’impression d’une progression marine ; en réalité il s’agit d’assemblages tolerant des
salinités plus ou moins fortes, propres à des lagunes côtières à faible contact avec la mer et
à apport d’eau douce déficitaire. Le spectre pollinique enregistré témoigne d’un apport
faible de la végétation d’arrière-pays alors, que la prédominance des palmiers serait surtout
révélatrice d’une flore locale de proximité.

160
QUATRIEME PARTIE : CONCLUSIONS ET
PERSPECTIVES

161
 CHAPITRE 7. CONCLUSIONS ET PERSPECTIVES

7.1. CONCLUSIONS

L’examen palynologique des dépôts de la Formation de Nkapa dans six sondages

exécutés selon un transect N-S (Pungo, Nord Matanda, Mamiwater, Yatou, Moulongo et
Ngata) a permis d’établir une biostratigraphie de la formation sur base de l’évolution des
assemblages de dinoflagellés, des pollens et spores recensés pour le Paléocène et la base de
l’Eocène.
Sur les 75 espèces de dinoflagellés inventoriés dans la Formation de Nkapa, 30
peuvent être considérés comme stratigraphiquement significatifs. Sur base de leur évolution
au cours du temps, quatre biozones ont été mises en évidence dans les trois puits, où
l’épaisseur des séquences permet d’établir une biostratigraphie : Moulongo, Mamiwater et
Nord Matanda.
La biozone 1, dont on peut admettre l’appartenance au Paléocène inférieur se
signale par la persistance de taxons issus du Crétacé supérieur dont les plus marquants sont
: Cerodinium diebelii, Lejeunecysta hyalina, Andalusiella gabonensis, Palaeocystodinium
australinum et Palaeocystodinium golzowense.
La biozone 2, considérée comme datée « Paléocène moyen » (Thanetien inférieur),
voit se développer l’acmé de 3 espèces qui la caractérisent : Areoligera coronata,
Adnatosphaeridium multispinosum et Glaphyrocysta ordinata. Dans cette zone
commencent à régresser les taxons issus de l’héritage du Crétacé.
La biozone 3, identifiée au Paléocène supérieur, a comme caractéristique essentielle
un acmé important du genre Apectodinium.
La biozone 4, dont la base correspond à Moulongo au début de l’Eocène (Limite
P/E fixée par les géologues pétroliers du SNH Cameroun), se caractérise par l’absence des
derniers taxons issus du Crétacé et par la raréfaction des espèces du Paléocène inférieur et
moyen. Avec le début de l’Eocène, on voit s’affirmer la présence de Deflandrea cf.
oebisfeldensis, d’Hystrichosphaeridium tubiferum et de Wetzeliella sp.
Dans le Bassin de Douala, l’acmé d’Apectodinium se situe au Paléocène supérieur
comme dans le delta du Niger où cet acmé a été repéré avant la CIE (Carbon Isotopic
Excursion) marquant la limite Paléocène-Eocène (FRIELING et al., 2011).

162
 Dans les bassins nordiques, l’acmé d’Apectodinium est contemporain du PETM
(Paleocene-Eocene Thermal Maximum) qui découle de la CIE et est donc d’âge Eocène
inférieur.
On en déduit qu’un diachronisme existe entre l’acmé d’Apectodinium des bassins de
l’ouest africain où il est Paléocène supérieur et celui des bassins nordiques où il est reconnu
comme Eocène inférieur.
L’inventaire des pollens et spores de la Formation de Nkapa s’élève à 76 genres
pour 93 espèces. Une cinquantaine de taxons ont pu être retenus pour établir une
biostratigraphie sporopollinique.
Le Paléocène inférieur se caractérise par un ensemble pollinique à dominance de
genres de type « Palmae » (Longapertites, Monocolpites, Psilamonocolpites,
Racemonocolpites, Retimonocolpites, Spinizonocolpites) et de type « Proteaceae »,
généralement archaïques (Echitriporites, Proteacidites, Scabratriporites), héritage de la
« Province à palmiers » du Crétacé supérieur.
Cinq espèces sont propres au Paléocène inférieur et moyen (biozone 1 des pollens et
spores) : Ephedripites vanegensis, Longapertites vaneendenburgi, Proteacidites dehaani,
Syncolporites lisamae, Syncolporites marginatus. On peut y joindre des espèces dont la
période d’expansion se situe dans la biozone : Crototricolpites protoannemariae,
Echitriporites trianguliformis, Retitricolpites clarensis.
D’archaïques, les ensembles polliniques évoluent vers des associations plus
« modernes » au Paléocène supérieur et à l’Eocène basal.
Les espèces caractérisant plus spécialement le Paléocène supérieur (Biozone 2 des
pollens et spores) sont : Monocolpites marginatus, Retistephanocolpites williamsi,
Retitricolporites crassicostatus et Scabratriporites annellus. On peut y joindre des espèces
dont l’acmé se situe durant la période : Momipites eoafricanus, Proxapertites cursus,
Proxapertites operculatus, Psilamonocolpites medius, Spinizonocolpites baculatus,
Spinizonocolpites echinatus.
Des marqueurs exclusivement d’âge Eocène (Biozone 3 des pollens et spores)
apparaissent à la base de l’étage : Margocolporites vanwijhei, Mauritiidites crassiexinus,
Psilatricolporites operculatus, Racemonocolpites facilis, Retitriporites boltenhagenii et
Retibrevitricolpites triangulatus. A ce niveau, on remarque, surtout à Ngata, une
progression sensible du genre Mauritiidites.

163
 L’évolution du paléoenvironnemnt peut se résumer en trois phases se développant
selon deux axes géographiques : un axe W-E, Moulongo-Ngata et un axe S-S-W – N-N-E,
Moulongo-Mamiwater-Nord Matanda.
Le Paléocène inférieur et « moyen » se signale par une trangression marine se
caractérisant, vers le NNE, par des milieux estuariens-côtiers ouverts sur la mer frangés de
mangroves et d’une forêt de basse plaine côtière marécageuse. Vers l’Est, légèrement en
retrait, le milieu laguno-deltaïque est occupé par une forêt humide périodiquement inondée.
Au Paléocène supérieur, une phase régressive s’amorce, principalement au Nord du
bassin. Dans l’axe Moulongo-Mamiwater-Nord Matanda, des milieux fluvio-lagunaires
saumâtres se développent, entourés d’une forêt dense humide de basse plaine. Dans l’axe
Moulongo-Ngata, dans un environnement d’eau douce, la forêt dense occupe des sols
humides.
A l’Eocène, la régression marine s’accentue ; au Nord, on enregistre la présence de
milieux lagunaires confinés à plus ou moins salinité elevée, entourés d’une flore locale
appauvrie. A Moulongo, avec des apports d’eau douce plus limités, la salinité s’accentue.
Vers l’Est, s’installe une forêt dense humide sempervirente de terre ferme.

7.2. PERSPECTIVES

Cette première étude exhaustive des dinokystes et des sporomorphes de la

Formation de Nkapa a permis d’établir une biostratigraphie du Paléocène et à l’Eocène
basal du Bassin de Douala. Elle a également abouti à la reconstitution de l’évolution
paléoenvironnementale de ce Bassin.
Elle ouvre la voie à des études complémentaires, réalisées à partir de forages
carottés, qui permettraient de compléter l’aspect biostratigraphique grâce à un pas
d’échantillonnage plus serré et sur lesquels pourraient être appliquées d’autres techniques
telles que la chémostratigraphie ou éventuellement l’étude de la matière organique et des
biomarqueurs. En matière de paléoenvironnements, ces études plus détaillées permettraient
vraisemblablement de préciser les variations climatiques et les variations du régime
hydrologique. Elles déboucheraient sur des comparaisons approfondies avec des bassins
voisins, souhaitables pour aboutir à des conclusions régionales sur les bassins paléogènes
d’Afrique de l’Ouest. Enfin, ces études complémentaires permettraient de nourrir les
travaux de modélisations climatiques à l’échelle globale.

164
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES

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174
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279.

175
ANNEXES

176
LISTE DES FIGURES

Figure. 1 Carte de localisation du Bassin de Douala/Kribi-Campo (SNH, 1995)

Figure. 2 Paléogéographie de l’Atlantique sud (Crétacé-Tertiaire inferieur) d’après PLEOMAP
Project [(C.R.Scotese (2001)]
Figure. 3 Esquisse géologique du Bassin de Douala et situation des sondages d’après Ourcq 1955/
Salard-Cheboldaeff, 1981
Figure. 4 Séquences étudiées dans les différents puits pétroliers du bassin de Douala (Description,
SNH-Cameroun)
Figure. 5 Distribution stratigraphique des espèces de dinoflagellés recensées dans la séquence de
Moulongo
Figure. 6 Distribution stratigraphique des espèces de dinoflagellés recensées dans les séquences de
Mamiwater et Nord Matanda
Figure. 7 Corrélations stratigraphiques entre les différentes séquences étudiées
Figure. 8 Extension temporelle des principales espèces à caractère biostratigraphique de la
Formation de Nkapa en référence à leur distribution dans divers bassins d’Afrique de l’Ouest.
Figure. 9 Evolution environnementale déduite des ratios Dinoflagellés/Pollens et spores calculé
ainsi que des données de la littérature relative à l’écologie des différentes espèces des dinokystes
recensés.
Figure.10 Grands ensembles floristiques du Paléocène et de l’Eocène inferieur W. KRUTZCH,
1967
Figure 11 : Distribution stratigraphique des espèces de pollens et spores recensés dans la séquence
de Moulongo.
Figure 12 : Distribution stratigraphique des espèces de pollens et spores recensés dans la séquence
de
Mamiwater
Figure 13 : Distribution stratigraphique des espèces de pollens et spores recensés dans la séquence
de
Nord Matanda
Figure 14 : Distribution stratigraphique des espèces de pollens et spores recensées dans la séquence
de Ngata

177
LISTE DES TABLEAUX

Tableau.1a : Comptage dinoflagellés Moulongo

Tableau.1b : Pourcentage dinoflagellés Moulongo
Tableau.2a : Comptage dinoflagellés Mamiwater
Tableau.2b : Pourcentage dinoflagellés Mamiwater
Tableau. 3a : Comptage dinoflagellés Nord Matanda
Tableau.3b : Pourcentage dinoflagellés Nord Matanda
Tableau. 4a : Comptage dinoflagellés Ngata
Tableau.4b : Pourcentage dinoflagellés Ngata
Tableau. 5a : Comptage dinoflagellés Yatou
Tableau.5b : Pourcentage dinoflagellés Yatou
Tableau. 6a : Comptage dinoflagellés Pungo
Tableau.6b : Pourcentage dinoflagellés Pungo
Tableau.Ia : Comptage spores et pollens Moulongo
Tableau.Ib : Pourcentage spores et pollens Moulongo
Tableau.IIa : Comptage spores et pollens Mamiwater
Tableau.IIb : Pourcentage spores et pollens Mamiwater
Tableau.IIIa : Comptage spores et pollens Nord Matanda
Tableau.IIIb : Pourcentage spores et pollens Nord Matanda
Tableau.IVa : Comptage spores et pollens Ngata
Tableau.IVb : Pourcentage spores et pollens Ngata
Tableau.Va : Comptage spores et pollens Yatou
Tableau.Vb : Pourcentage spores et pollens Yatou
Tableau.VIa : Comptage spores et pollens Pungo
Tableau.VIb : Pourcentage spores et pollens Pungo
Tableau.1 : Distribution des dinoflagellés dans les différentes séquences étudiées
Tableau. 2 : Tableau des âges définis dans les travaux antérieurs en Afrique de l’Ouest (Côte
d’Ivoire, Ghana, Nigeria, Gabon) pour les espèces sélectionnées de la Formation de Nkapa
Tableau. 3 : Tableau des âges prédéfinis dans les travaux antérieurs en Afrique et dans d’autres
régions du monde (Ghana, Nigeria, Pakistan, Tunisie, Maroc) des espèces sélectionnées de la
Formation de Nkapa
Tableau. 4 : Relevé des taxons sporopolliniques inventoriés dans les six puits
Tableau. 5 : Distribution stratigraphique en Afrique de l’Ouest, en Amérique du Sud et en Inde des
taxons sporopolliniques significatifs.
Tableau 6 : Classification, d’après Fensome et al. (1993) des Dinoflagellés trouvés dans la
Formation de Nkapa dans le sous-bassin de Douala (Cameroun).
Tableau 7 : Biostratigraphie pollinique de la Formation de Nkapa

178
179
Planches

180
 PLANCHE 1

1. Andalusiella gabonensis (Stover & Evitt) Wrenn & Hart 1988.

2. Palaeocystodinium australinum (Cookson 1965b) Lentin & Williams 1976.
3, 4, 5. Palaeocystodinium golzowense Alberti 1961.
6, 7, 8. Senegalinium orei (Jan Du Chene & Adediran 1985) Stover & Williams 1987.
9. Senegalinium laevigatum (Malloy) Bujak & Davies 1983.
10. Senegalinium sp.
11, 12. Deflandrea cf. oebisfeldensis (Vozzhennikova 1963) Lentin & Williams 1987.
13. Phelodinium magnificum (Stanley 1965) Stover & Evitt 1978.

181
182
 PLANCHE 2

1, 2. Phelodinium cf. magnificum (Stanley 1965) Stover & Evitt 1978.

3. Phelodinium sp 2.
4, 5. Deflandrea denticulata Alberti 1959.
6, 7, 8. Cerodinium wardenense (Williams & Downie) Lentin & Williams 1987.
9. Cerodinium boloniense (Riegel) Lentin & Williams 1989.
10. Cerodinium diebelii (Alberti 1959) Lentin & Williams 1987.
11. Lejeunecysta cf. beninensis Biffi & Grignani 1983.
12. Lejeunecysta sp.
13. Lejeunecysta hyalina (Gerlach 1961) Artzner & Dörhöfer 1978
emend. Sarjeant 1984.
14. Lejeunecysta cf. lata Biffi & Grignani 1983.
15, 16. Wilsonidium nigeriaense Jan Du Chêne & Adideran 1985.

183
184
 PLANCHE 3

1, 2, 3. Apectodinium paniculatum (Costa & downie 1976) Lentin & Williams 1977.

4, 5, 6, Apectodinium quinquelatum (Williams & Downie 1966) Costa & Downie 1979.
7, 8, 9, 10, 12.

11. Apectodinium hyperacanthum (Cookson & Eisenack, 1965) Lentin & Williams 1977.

13, Apectodinium homomorphum (Deflandre & Cookson 1955) Lentin & Williams 1977.
14, 15.

16, 17. Apectodinium sp.

18. Wetzeliella sp.

185
186
 PLANCHE 4

1, 2. Hafniasphaera septata (Cookson & Eisenack 1967b) Hansen 1977

3. Millioudodinium sp.
4. Kenleyia sp.
5, 6. Lingulodinium machaerophorum (Deflandre & Cookson 1955) Wall 1967.
7. Spiniferites cf. ramosus (Ehrenberg 1838) Loeblich 1966.
8. Spiniferites sp.
9. Hystrichokolpoma rigaudiae Deflandre & Cookson 1955.
10. Diphyes spinulum (Drugg 1970) Stover & Evitt 1978.
11. Diphyes cf. spinulum (Drugg 1970) Stover & Evitt 1978.
12. Polysphaeridium subtile Davey & Williams 1966 emend Bujak, Downie,
Eaton & Williams 1980.
13. Acritarche
14, 15, 16. Polysphaeridium zoharyi Rossignol 1962.
17, 18, 19. Homotryblium tenuispinosum Davey & Williams 1966.
20. Homotryblium abbreviatum Eaton 1976
21, 22. Hystrichosphaeridium tubiferum (Ehrenberg 1838) Davey & Williams 1966.
23. Cordosphaeridium fibrospinosum Davey & Williams 1966b.
24. Cordosphaeridium cf. minimum (Morgenroth 1966) Benedek 1972.
25. Eocladopyxis peniculata Morgenroth 1966.
26. Achomosphaera sp.
27. Hystrichokolpoma unispinum Williams & downie 1966a

187
188
 PLANCHE 5

1, 2. Adnatosphaeridium multispinosum Williams & Downie 1966c.

3. Operculodinium sp.
4, 5. Dapsilidinium sp.
6, 7, 8. Areoligera coronata (Wetzel 1933) Lejeune-Carpentier 1838.
7. Areoligera sp.
9, 10, 11, Glaphyrocysta ordinata (Williams & Downie 1966) Stover & Evitt 1978.
12, 13.
14. Fibrocysta vectensis (Eaton 1976) Stover & Evitt 1978.
15. Kallosphaeridium yorubaense Jan Du Chene & Adediran 1985.
16. Thalassiphora patula (Williams & Downie, 1966) Stover & Evitt 1978.

189
190
 PLANCHE 6

1. Leiotriletes sp. (30-35 µm)

2. Camarozonosporites sp. (50-55 µm)
3. Foveotriletes margaritae Germeraad, Hopping & Muller 1968 (48-50 µm)
4. Foveotriletes sp. (33-35 µm)
5. Polypodiaceoisporites simplex Sah 1967 (35-40 µm)
6. Polypodiaceoisporites sp. (40-45 µm)
7. Cicatricososporites eocenicus (Selling 1944) Jansonius & Hills 1976 (50-55 µm)
8. Verrucatosporites sp. (38 x 24 µm)
9. Verrucatosporites usmensis (Van der Hammen 1956) Germeraad, Hopping & Muller
1968 (53 x 40 µm)
10.11. Deltoidospora minor (Couper) Pocock 1970 (35-38 µm)
12. Cyathidites minor Couper 1953 (43-45 µm)
13. Cyathidites cogoensis Sah 1967 (40-43 µm)
14. Psilatriletes martinensis Sarmiento 1992 (40-50 µm)
15. Pityosporites sp. (90 x 60 µm)
16. Monocolpites marginatus Van der Hammen 1954 ( 25 x 30 µm)
17. Psilamonocolpites medius Van der Hammen & Garcia 1964 (50-55 x 30-35 µm)
18. Monocolpopollenites sp. (40 x 25 µm)
19. Longapertites sp. (63 x 35 µm)
20. Longapertites marginatus Van Hoeken Klinkenberg 1964 (60 x 32 µm)
21. Longapertites vaneendenburgi Germeraad, Hopping & Muller 1968 (65-70 x 50-60 µm)
22.23. Echimonocolpites protofranciscoi Sarmiento 1992 (30 x 25 µm)
24.25. Retimonocolpites irregularis Salard-Cheboldaeff 1978 (45-40 x 35-25 µm)
26. Retimonocolpites longicolpatus Lorente 1986 (35-25 µm)
27. Retimonocolpites sp. (40 x 25 µm)
28. Retimonocolpites tertiarus Gonzalez 1967 (30 x 20 µm)
29.30. Racemonocolpites facilis Gonzalez 1967 (50-45 x 35-30 µm)

191
192
 PLANCHE 7

1.2. Mauritiidites franciscoi var franciscoi (Van der Hammen 1956) Van Hoeken
Klinkenberg 1964 (40-30 x 25-20 µm)
3. Mauritiidites crassiexinus Jan du Chêne, Onyike & Sowunmi 1978b (60 x 55 µm)
4. Echimonocolpites rarispinosus (Sah & Dutta 1966) Salard-Cheboldaeff 1978
(60 x 40 µm)
5. Mauritiidites minimus sp. nov. (25-20 x 40-30 µm)
6.7. Proxapertites operculatus Van Der Hammen 1956 (50-60 µm)
8.9.10. Proxapertites psilatus Sarmiento 1992 (35-30 µm)
11.12. Proxapertites cursus Van Hoeken Klinkenberg 1966
13.14. Inaperturopollenites sp. (35-40 µm)
15. Spinizonocolpites baculatus Muller 1968 (65-60 x 50-45 µm)
16. Spinizonocolpites echinatus Muller 1968 (45-40 µm)
17.18.19.20. Retidiporites magdalenensis Van der Hammen & Garcia 1966 (40-35 x 35-25 µm)
21.22.23. Pediculisporis reticularis Belsky, Boltenhagen & Potonié 1965 (65-55 x 30-25 µm)
24.25. Cricotriporites guianensis Leidelmeyer 1966 (30 µm)
26. Cricotriporites macroporus Jaramillo & Dilcher 2001 (30-35 µm)
27 Echitriporites variabilis Jaramillo & Dilcher 2001 (33-36 µm)
28.29.30.31. Echitriporites trianguliformis Van Hoeken Klinkenberg 1964 (30-35 µm)
32. Bacutriporites orluensis Jan du Chêne Onyike & Sownmi 1978b (28-30 µm)
33. Scabratriporites annellus Van Hoeken Klinkenberg 1964 (30 µm)
34. Scabratriporites sp. (40 µm)

193
194
 PLANCHE 8

1.2. Proteacidites pseudocooksonii sp. nov. (29-32 µm)

3. Proteacidites dehanii Germeraad, Hopping & Muller 1968 (25-30 µm)
4. Proteacidites miniporatus Van Hoeken Klinkenberg 1966 (28-32 µm)
5. Scabratriporites annellus Van Hoeken Klinkenberg 1964 (24-23 µm)
6. Psilatriporites doualaensis sp. nov. (45-50 µm)
7.8. Momipites eoafricanus sp. nov. (29-31 µm)
9. Momipites africanus Van Hoeken Klinkenberg 1966 ( 35-40 µm)
10. Psilatriporites sp. 1 (30-35 µm)
11. Psilatriporites sp. 2 (32-36 µm)
12. Psilatriporites sp. 3 (34-36 µm)
13.14. Psilatriporites sp. 4 (20-25 µm)
15. Psilatriporites sp. 5 (27-30 µm)
16. Psilatriporites sp. 6 (30 µm)
17. Retitriporites spissoexinus sp. nov. (30-32 µm)
18. Retitriporites boltenhagenii Salard-Cheboldaeff 1978 (35-37 µm)
19. Retitriporites sp. (32-33 µm)
20. Triatriopollenites sp. 1 (23-25 µm)
21. Triatriopollenites sp. 2 (27-32 µm)
22.23. Triatriopollenites sp. 3 (25-30 µm)
24. Triatriopollenites sp. 4 (30 µm)
25. Triatriopollenites sp. 5 (21-23 µm)
26.27. Ulmipollenites undulosus Wolff 1934 (30-35 µm)
28. Psilastephanoporites sp. 1 (30-35 µm)
29. Psilastephanoporites sp. 2 (28-30 µm)
30.31. Psilatriporites magnotriangulus sp. nov. (54-56 µm)
32. Concavisubporites nkapaensis sp. nov. (45-50 µm)
33. Psilabrevitricolpites sp. 1(25-28 µm)
34. Psilabrevitricolpites sp. 2 (20-25 µm)
35. Psilabrevitricolpites sp. 3 (20-25 µm)
36. Psilastephanoporites oculiporus Pardo-Trujillo 2004 (35-40 µm)
37. Retistephanoporites minutiporus Jaramillo & Dilcher 2001 (40-45 µm)
38. Echiperiporites sp. (20-25 µm)
39. Anacolosidites cf. luteoides Cookson & Pike 1954 (24-25 µm)
40. Psilatricolpites sp.1 (45-50 µm)

195
196
 PLANCHE 9

1.2. Psilatricolpites sp. 2 (25-30 µm)

3. Psilatricolpites sp. 3 (30-35 µm)
4. Psilatricolpites sp. 4 (32 x 20 µm)
5. Retitricolpites sp. 1 (30-35 µm)
6. Crototricolpites protoannemariae Jaramillo & Dilcher 2001 (40-50 µm)
7. Crototricolpites cf. protoannemariae Jaramillo & Dilcher 2001 (35-40 µm)
8. Clavatricolpites densiclavatus Jaramillo & Dilcher 2001 (25-28 µm)
9. Retitricolpites sp. 2 (20-25 µm)
10. Retitricolpites sp. 3 (25-30 µm)
11.15.16. Retitricolpites clarensis Gonzalez 1967 (25-32 µm)
17.
12. Retibrevitricolpites triangulatus Van Hoeken Klinkenberg 1966 (35 µm)
13. Retitricolpites simplex Gonzalez 1967 (35 x 25 µm)
14. Retitrescolpites baculatus Jaramillo & Dilcher 2001 (33-35 µm)
18. Crototricolpites cf. densus Salard-Cheboldaeff 1978 (30-35 µm)
19.20.21. Retistephanocolpites williamsi Germeraad Hopping & Muller 1968 (25-30 µm)
22. Retitricolpites cf. retiaphelis Leidelmeyer 1966
23. Bombacacidites sp. 1 (25-30 µm)
24. Bombacacidites sp. 2 (40-50 µm)
25. Bombacacidites sp. 3 (33-35 µm)
26. Bombacacidites cf. annae (Van der Hammen 1954) Leidelmeyer 1966 (35-40 µm)
27. Bombacacidites sp. 5 (30-35 µm)
28. Bombacacidites sp. 4 (25-30 µm)
29. Bombacacidites ngosii sp. nov. (35-40 µm)
30. Bombacacidites sp. 6 (25-30 µm)
31. Margocolporites vanwijhei Germeraad, Hopping & Muller 1968 (30-35 µm)
32. Margocolporites sp. (28-30 µm)
33. Brevitricolporites eomolinae sp. nov. (20-25 µm)
34. Psilabrevitricolporites sp. (25-28 µm)
35. Lanagiopollis crassus (Van der Hammen & Wijmstra 1964) Frederiksen 1988 (35 µm)
36.37. Brevitricolporites echinus sp. nov. (23-25 µm)

197
198
 Planche 10

1. Psilatricolporites crassus Van der Hammen & Wijmstra 1964 (45-50µ)

2.3.4.5. Psilatricolporites operculatus Van der hammen & Wijmstra 1964 (25-30µ)
6. Psilatricolporites sp. 1 (22-25µ)
7. Colombipollis tropicalis Sarmiento 1992 (50-60µ)
8.9. Psilatricolporites sp. 2 (33-35µ)
10. Psilatricolporites sp. 3 (25 x 20µ)
11. Psilatricolporites sp. 4 (35-38µ)
12. Psilatricolporites sp. 5 (45 x 40µ)
13. Psilatricolporites sp. 6 (45-35 x 35-30µ)
14. Psilatricolporites sp. 7 (35-38µ)
15. Psilatricolporites sp. 8 (20-22µ)
16. Psilatricolporites sp. 9 (20-22µ)
17.18. Myrtacidites psilatus Belsky, Boltenhagen & Potonié, 1965 (35-40µ)
19. Psilatricolporites sp. 11 (25 x 20µ)
20 Siltaria mariposa (Leidelmeyer 1966) Jaramillo & Dilcher 2001 (30-35µ)
21. Clavatricolporites cf. leticiae Leidelmeyer 1966 (35-40µ)
22. Clavatricolporites leticiae Leidelmeyer 1966 (27-30µ)
23. Retitricolporites sp. 1 (30-35µ)
24. Retitricolporites crassicostatus Van Hoeken Klinkenberg 1966 major subsp. nov.
(35- 40µ)
25.26.27. Retitricolporites crassicostatus Van Hoeken Klinkenberg 1966
28. Retibrevitricolporites cf. protrudens Legoux 1978 (35µ)
29. Retibrevitricolporites protrudens Legoux 1978 (33-35µ)
30. Retibrevitricolporites sp.
31. Ilexpollenites sp. (25-30µ)
32.33.34. Retitricolporites bessongii sp. nov. (30-35µ)
35.36. Retitricolporites sp. 2 (25-32µ)
37. Retitricolporites sp. 3 (50-55µ)
38. Retitricolporites sp. 4 (35-40µ)
39. Retitricolporites sp. 5 (35µ)
40. Retitricolporites irregularis Van der hammen & Wijmstra 1964 (50 x 35µ)
41. Retitricolporites sp. 6 (1) (18-20µ)

199
200
 PLANCHE 11

1. Retitricolporites sp. 6 (2) (25 x 20 µm)

2. Retitricolporites venezuelensis Pardo, Jaramillo & Oboh-Ikuenobe 2003 (40-45 µm)
3. Retitricolporites sp. 7 (28 x 25 µm)
4. Retitricolporites cf. hispidus Van der Hammen & Wijmstra 1964 (30 x 25 µm)
5.6. Retitricolporites sp. 8 (25-20 x 15-13 µm)
7. Retitricolporites sp. 9 (28-30 µm)
8.9.10. Striatopollis bellus Sah 1967 (35-60 x 30-40 µm)
11. Tricolporites microrugulatus sp. nov. (60 x 35 µm)
12. Retitricolporites sp. 10 (30-33 µm)
13. Striatricolporites fragilis Salard-Cheboldaeff 1978 (30 x 20 µm)
14. Striatricolporites sp. 1 (35 x 25 µm)
15. Striatricolporites sp. 2 (33 x 20 µm)
16. Striatricolporites striatus Sah & Kar 1970 (70 x 50 µm)
17. Striatricolporites cf. pimulis Leidelmeyer 1966 (35-40 µm)
18. Tetracolporites quadratus Sah 1967 (28-32 µm)
19. Tetracolporites pachyexinatus Jaramillo & Dilcher 2001 (25-30 µm)
20.21. Psilastephanocolporites fissilis Leidelmeyer 1966 (40-60 x 25-35 µm)
22.23.24. Psilastephanocolporites scabratus Salard-Cheboldaeff 1978 (30-40 x 25-30 µm)
25. Psilastephanocolporites sp. (25 x 20 µm)
26.27. Psilastephanocolporites salardiae sp. nov. (35-45 x 30-35 µm)
28. Retistephanocolporites sp. 1 (42 x 32 µm)
29. Retistephanocolporites sp. 2 (30 x 25 µm)
30. Retistephanocolporites sp. 3 (25 x 20 µm)
31. Retistephanocolporites sp. 4 (30 x 20 µm)
32. Retistephanocolporites sp. 5 (38-40 µm)
33.34. Syncolporites sp. 1 (28-30 µm)
35. Syncolporites sp. 2 (25 µm)

201
202
 PLANCHE 12

1.2. Syncolporites marginatus Sarmiento 1992 (25-30 µm)

3. Syncolporites sp.3 (25-28 µm)
4. Syncolporites poricostatus Van Hoeken Klinkenberg 1966 (22-25 µm)
5. Syncolporites sp. 4 (28-30 µm)
6. Syncolporites sp. 5 (30-35 µm)
7. Syncolporites lisamae Van der Hammen 1954 (25-28 µm)
8. Syncolporites sp. 6 (35-40 µm)
9. Cupanieidites reticularis Cookson et Pike 1954 (50-60 µm)
10.11.12.13. Syncolporites doualaensis sp. nov. (55-70 µm)
14.15. Syncolporites sp. 8 (35-40 µm)
16.17. Syncolporites sp. 7 (25-35 µm)
18. Ephedripites sp. (105 x 55 µm)
19. Ephedripites vanegensis Van der Hammen & Garcia 1966 (60 x 30 µm

203
204
LISTE DES KYSTES DE LA FORMATION DE NKAPA PAR ORDRE ALPHABÉTIQUE

Achomosphaera sp.
Adnatosphaeridium multispinosum Williams and Downie 1966c
Adnatosphaeridium sp.
Andalusiella gabonensis (Stover and Evitt) Wrenn and Hart 1988
Andalusiella sp.
Apectodinium homomorphum (Deflandre and Cookson 1955) Lentin and Williams 1977
Apectodinium hyperacanthum (Cookson and Eisenack 1965) Lentin and Williams 1977
Apectodinium paniculatum Lentin and Williams 1977
Apectodinium parvum (Alberti 1961) Lentin and Williams 1977
Apectodinium quinquelatum (Williams and Downie 1966) Costa and Downie 1979
Apectodinium sp.
Areoligera coronata (O. Wetzel 1933) Lejeune-Carpentier 1938
Areoligera sp.
Cerodinium boloniense (Riegel 1974) Lentin and Williams 1989
Cerodinium diebelii (Alberti 1959) Lentin and Williams 1987
Cerodinium sp.
Cerodinium wardenense (Williams and Downie 1966 c) Lentin and Williams 1987
Cleistosphaeridium sp.
Cordosphaeridium cf. minimum (Morgenroth 1966) Benedek 1972
Cordosphaeridium fibrospinosum Davey and Williams 1966b
Cordosphaeridium cf. inodes (Klump 1953) Eisenack 1963
Cordosphaeridium multispinosum Davey and Williams 1966
Cordosphaeridium sp.
Dapsilidinium sp.
Deflandrea denticulata Alberti 1959
Deflandrea cf. oebisfeldensis Alberti 1959
Deflandrea sp.
Diphyes cf. spinulum (Drugg 1970) Stover and Evitt 1978.
Diphyes colligerum (Deflandre and Cookson 1955) Cookson 1965
Diphyes spinulum (Drugg 1970) Stover and Evitt 1978
Eocladopyxis peniculata Morgenroth 1966
Fibrocysta bipolaris (Cookson and Eisenack 1965) Stover and Evitt 1978
Fibrocysta sp.
Fibrocysta vectensis (Eaton 1976) Stover and Evitt 1978
Glaphyrocysta ordinata (Williams and Downie 1966c) Stover and Evitt 1978
Glaphyrocysta sp.
Hafniasphaera septata (Cookson and Eisenack 1967b) Hansen 1977
Hafniasphaera sp.
Homotryblium abbreviatum Eaton 1976
Homotryblium sp.
Homotryblium tenuispinosum Davey and Williams 1966
Hystrichokolpoma rigaudiae Deflandre and Cookson 1955
Hystrichokolpoma sp.
Hystrichokolpoma unispinum (Williams and Downie 1966) Bujak 1980
Hystrichosphaeridium sp.
Hystrichosphaeridium tubiferum (Ehrenberg 1838) Deflandre 1937

205
Ifecysta pachyderma Jan Du Chêne and Adediran 1985
Kallosphaeridium sp.
Kallosphaeridium yorubaense Jan Du Chêne and Adediran 1985
Kenleyia Pachycerata Cookson and Eisenack 1965
Kenleyia sp.
Lejeunecysta cf. beninensis Biffi and Grignani 1983
Lejeunecysta cf. lata Biffi and Grignani 1983
Lejeunecysta hyalina (Gerlach 1961) Artzner and Dörhöfer 1978. emend. Sarjeant 1984
Lingulodinium machaerophorum (Deflandre and Cookson 1955) Wall 1967
Lingulodinium sp.
Millioudodinium sp.
Operculodinium sp.
Palaeocystodinium australinum (Cookson 1965) Lentin and Williams 1976
Palaeocystodinium golzowense Alberti 1961
Palaeocystodinium sp.
Phelodinium cf. magnificum (Stanley 1965) Stover and Evitt 1978
Phelodinium magnificum (Stanley 1965) Stover and Evitt 1978
Phelodinium sp. 1
Phelodinium sp. 2
Polysphaeridium sp.
Polysphaeridium subtile Davey and Williams 1966 emend. Bujack, Downie, Eaton and Williams
1980
Polysphaeridium zoharyi Rossignol 1962
Senegalinium laevigatum (Malloy) Bujack and Davies 1983
Senegalinium orei (Jan Du Chêne and Adediran 1985) Stover and Williams 1987
Senegalinium sp.
Spiniferites cf. ramosus (Ehrenberg 1838) Mantell 1854
Spiniferites sp.
Thalassiphora patula (Williams and Downie 1966) Stover and Evitt 1978
Thalassiphora sp.
Wetzeliella sp.
Wilsonidium nigeriaense Jan Du Chêne and Adediran 1985

206
LISTE DES SPORES ET POLLENS PRÉSENTS DANS LA FORMATION DE NKAPA

Spores

Camarazonosporites sp.
Cicatricososporites eocenicus (Selling 1944) Jansonius & Hills 1976
Cyathidites congoensis Sah 1967
Cyathidites minor Couper 1953
Deltoidospora minor (Couper) Pocock, 1970
Foveotriletes margaritae Germeraad, Hopping & Muller 1968
Foveotriletes sp.
Leiotriletes sp.
Polypodiaceoisporites simplex Sah 1967
Polypodiaceoisporites sp.
Psilatriletes martinensis Sarmiento 1992
Verrucatosporites sp.
Verrucatosporites usmensis (Van der Hammen 1956) Germeraad, Hopping & Muller 1968

Grains des pollens

Anacolosidites cf. luteoides Cookson & Pike 1954

Bacutriporites orluensis Jan du Chêne Onyike & Sownmi 1978b
Bombacacidites cf. annae (Van der Hammen 1954) Leidelmeyer 1966
Bombacacidites sp. 1
Bombacacidites sp. 2
Bombacacidites sp. 3
Bombacacidites sp. 4
Bombacacidites sp. 5
Bombacacidites sp. 6
Bombacacidites ngosii
Brevitricolporites echinus sp. nov.
Brevitricolporites eomolinae sp. nov.
Clavatricolpites densiclavatus Jaramillo & Dilcher 2001
Clavatricolporites cf. leticiae Leidelmeyer 1966
Clavatricolporites leticiae Leidelmeyer 1966
Colombipollis tropicalis Sarmiento 1992
Concavisubtriporites nkapaensis sp. nov.
Corsinipollenites sp.
Cricotriporites guianensis Leidelmeyer 1966
Cricotriporites macroporus Jaramillo & Dilcher 2001
Crototricolpites cf protoannemariae Jaramillo & Dilcher 2001
Crototricolpites cf. densus Salard-Cheboldaeff 1978
Crototricolpites protoannemariae Jaramillo & Dilcher 2001
Cupanieidites reticularis Cookson & Pike 1954
Echimonocolpites protofranciscoi Sarmiento 1992
Echimonocolpites rarispinosus (Sah & Dutta 1966) Salard-Cheboldaeff 1978
Echiperiporites sp.
Echitriporites trianguliformis Van Hoeken Klinkenberg 1964

207
Echitriporites variabilis Jaramillo & Dilcher 2001
Ephedripites sp.
Ephedripites vanegensis Van der Hammen & Garcia 1966
Ilexpollenites sp.
Inaperturopollenites sp.
Lanagiopollis crassa (Van der hammen & Wijmstra 1964) Frederiksen 1988
Longapertites marginatus Van Hoeken Klinkenberg 1964
Longapertites sp.
Longapertites vaneendenburgi Germeraad, Hopping & Muller 1968
Margocolporites sp.
Margocolporites vanwijhei Germeraad, Hopping & Muller 1968
Mauritiidites crassiexinus Jan du Chene, Onyike & Sowunmi 1978b
Mauritiidites franciscoi var fransiscoi (Van der Hammen 1956) Van Hoenken Klinkenberg 1964
Mauritiidites minimus sp. nov.
Momipites africanus Van Hoeken Klinkenberg 1966
Momipites eoafricanus nsp.
Monocolpites marginatus Van der Hammen 1954
Monocolpopollenites sp.
Myrtacidites psilatus Belsky, Boltenhagen & potonié 1965
Pediculisporis reticularis Belsky, Boltenhagen & Potonié 1965
Pityosporites sp.
Proteacidites dehanii Germeraad Hopping & Muller 1968
Proteacidites miniporatus Van Hoeken Klinkenberg 1966
Proteacidites pseudocooksonii nsp.
Proxapertites cursus Van Hoeken Klinkenberg 1966
Proxapertites operculatus Van der Hammen 1956
Proxapertites psilatus Sarmiento 1992
Psilabrevitricolpites sp. 2
Psilabrevitricolpites sp.1
Psilabrevitricolporites sp.
Psilamonocolpites medius (Van der Hammen 1956) Van der Hammen et Garcia 1965
Psilastephanocolporites fissilis Leidelmeyer 1966
Psilastephanocolporites sp.
Psilastephanocolporites salardiae sp. nov.
Psilastephanocolporites scabratus Salard-Cheboldaeff 1979
Psilastephanoporites sp. 1
Psilastephanoporites sp. 2
Psilastephanoporites oculiporus Pardo-Trujillo 2004
Psilatricolpites sp. 1
Psilatricolpites sp. 2
Psilatricolpites sp. 3
Psilatricolpites sp.. 4
Psilatricolporites crassus Van der Hammen & Wijmstra 1964
Psilatricolporites sp. 1
Psilatricolporites sp. 10
Psilatricolporites sp. 2
Psilatricolporites sp. 3
Psilatricolporites sp. 4

208
Psilatricolporites sp. 5
Psilatricolporites sp. 6
Psilatricolporites sp. 7
Psilatricolporites sp. 8
Psilatricolporites sp. 9
Psilatricolporites operculatus Van der Hammen & Wijmstra 1964
Psilatriporites doualaensis sp. nov.
Psilatriporites sp. 1
Psilatriporites sp. 2
Psilatriporites sp. 3
Psilatriporites sp. 4
Psilatriporites sp. 5
Psilatriporites sp. 6
Psilatriporites magnotriangulus sp. nov.
Racemonocolpites facilis Gonzalez 1967
Retibrevitricolpites triangulatus Van Hoeken Klinkenberg 1966
Retibrevitricolporites sp.
Retibrevitricolporites protrudens Legoux 1978
Retidiporites magdalenensis Van der Hammen & Garcia 1966
Retidiporites Varma & Rawat 1963
Retimonocolpites irregularis Salard-Cheboldaeff 1978
Retimonocolpites longicolpatus Lorente 1986
Retimonocolpites sp.
Retimonocolpites tertiarius Gonzalez 1967
Retistephanocolpites williamsi Germeraad, Hopping & Muller 1968
Retistephanocolporites sp. 2
Retistephanocolporites sp. 1
Retistephanocolporites sp. 3
Retistephanocolporites sp. 4
Retistephanocolporites sp. 5
Retistephanoporites minutiporus Jaramillo & Dilcher 2001
Retitrescolpites baculatus Jaramillo & Dilcher 2001
Retitricolpites sp. 3
Retitricolpites cf. retiaphelis Leidelmeyer 1966
Retitricolpites clarensis Gonzalez-Guzman 1967
Retitricolpites sp. 1
Retitricolpites sp. 2
Retitricolpites simplex Gonzalez 1967
Retitricolporites bessongii sp. nov.
Retitricolporites cf. hispidus Van der Hammen & Wijmstra 1964
Retitricolporites crassicostatus Van de Hammen & Wijmstra 1964 major nsbsp.
Retitricolporites crassicostatus Van der Hammen & Wijmstra 1964
Retitricolporites sp. 1
Retitricolporites sp. 2
Retitricolporites sp. 3
Retitricolporites sp. 4
Retitricolporites sp. 5
Retitricolporites sp. 6 (1)

209
Retitricolporites sp. 6 (2)
Retitricolporites sp. 7
Retitricolporites sp. 8
Retitricolporites sp. 9
Retitricolporites irregularis Van der hammen & Wijmstra 1964
Retitricolporites « venezuelensis » Pardo, Jaramillo & Oboh-Ikuenobe 2003
Retitriporites boltenhagenii Salard-Cheboldaeff 1978
Retitriporites sp.
Retitriporites spissoexinus sp. nov.
Scabratriporites annellus Van Hoeken Klinkenberg 1964
Scabratriporites sp.
Siltaria mariposa (Leidelmeyer 1966) Jaramillo & Dilcher 2001
Spinizonocolpites baculatus Muller 1968
Spinizonocolpites echinatus Muller 1968
Striacolporites striatus Sah & Kar 1970
Striatopollis bellus Sah 1967
Striatricolporites cf. pimulis Leidelmeyer 1966
Striatricolporites fragilis Salard-Cheboldaeff 1979
Striatricolporites sp. 1
Striatricolporites sp. 2
Syncolporites doualaensis sp. nov.
Syncolporites sp. 5
Syncolporites sp. 8
Syncolporites sp. 1
Syncolporites sp. 2
Syncolporites sp. 3
Syncolporites sp. 4
Syncolporites sp. 6
Syncolporites sp. 7
Syncolporites lisamae Van der Hammen 1954
Syncolporites marginatus Sarmiento 1992
Syncolporites poricostatus Van Hoeken Klinkenberg 1966
Tetracolporites pachyexinatus Jaramillo & Dilcher 2001
Tetracolporites quadratus Sah 1967
Triatriopollenites sp. 1
Triatriopollenites sp. 2
Triatriopollenites sp. 3
Triatriopollenites sp. 4
Triatriopollenites sp. 5
Tricolporites microrugulatus Cookson 1947
Ulmipollenites undulosus Wolff 1934

210
GLOSSAIRE DINOFLAGELLES

Acavate : kyste avec une paroi monocouche

Antapex : aire située à l’extrémité postérieure de l’hypokyste.
Antapical : situé à l’antapex
Apex : aire située à l’extrémité antérieure de l’épikyste
Apicale : situé à l’apex
Appendice : synonyme de processus ou projections
Archéopyle : ouverture dans la paroi du kyste. Cette ouverture se trouve sur la partie antérieure au
cingulum de la face ventrale de la cellule.
Bicavate : qualifie un kyste dont le périphragme et l’endophragme reste accolés dans la région du
cingulaire.
Chorate : kyste possédant des processus ou projections dont la longueur est supérieure à 30% du
diamètre du corps central.
Cingulum : sillon transversal ou équatorial où se trouve le flagelle transversal en forme de ruban
qui encercle la cellule au niveau équatorial.
Corne antapicale : une ou deux cornes au bout de l’antapex.
Corne apicale : bosse apicale.
Corps central : terme utilisé pour désigner la partie du kyste supportant les processus.
Épisome : partie de la cellule antérieure au cingulum
Épithèque : synonyme d’épisome
Gonale : situé au point d’intersection des parasutures.
Hyposome : la partie postérieure (vers l’antapex) au cingulum.
Hypothèque : synonyme de hyposome.
Periphragme : couche la plus extérieure du kyste délimitant le perikyste.
Précingulaire : paraplaque du cingulum.
Proximate : kyste sans ornementation ou avec une ornementation dont la hauteur ne dépasse pas
10% du diamètre du corps central.
Proximochorate : kyste ornementé dont la hauteur des éléments ornementaux varie entre 10% et
30% du diamètre du corps central.
Skolochorate : kyste entièrement couvert de long processus

211