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    COPROCULTIVO

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    Edwin Oncebay
    El coprocultivo es un examen de laboratorio que permite identificar diferentes organismos causantes de enfermedades gastrointestinales como Shigella, Salmonella y Campylobacter mediante el cultivo de muestras fecales. El procedimiento implica la siembra de la muestra en varios medios, la selección de colonias sospechosas, identificación bioquímica y serológica de los patógenos, y la determinación de su perfil de sensibilidad a antibióticos.

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    COPROCULTIVO

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    El coprocultivo es un examen de laboratorio que permite identificar diferentes organismos causantes de enfermedades gastrointestinales como Shigella, Salmonella y Campylobacter mediante el cultivo de muestras fecales. El procedimiento implica la siembra de la muestra en varios medios, la selección de colonias sospechosas, identificación bioquímica y serológica de los patógenos, y la determinación de su perfil de sensibilidad a antibióticos.

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    El coprocultivo es un examen de laboratorio que permite identificar diferentes organismos causantes de enfermedades gastrointestinales como Shigella, Salmonella y Campylobacter mediante el cultivo de muestras fecales. El procedimiento implica la siembra de la muestra en varios medios, la selección de colonias sospechosas, identificación bioquímica y serológica de los patógenos, y la determinación de su perfil de sensibilidad a antibióticos.

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    El coprocultivo es un examen de laboratorio que permite identificar diferentes organismos causantes de enfermedades gastrointestinales como Shigella, Salmonella y Campylobacter mediante el cultivo de muestras fecales. El procedimiento implica la siembra de la muestra en varios medios, la selección de colonias sospechosas, identificación bioquímica y serológica de los patógenos, y la determinación de su perfil de sensibilidad a antibióticos.

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    COPROCULTIVO

    COPROCULTIVO: DEFINICIÓN

    • Examen de laboratorio que permite identificar diferentes organismos


    causantes de enfermedades gastrointestinales

    • Las bacterias más frecuentes:


    • Shigella
    • Salmonella
    • Campylobacter
    • Aeromonas
    • Plesiomonas shigelloides
    • Escherichia coli (EPEC, EHEC,EIEC)
    • Vibrio cholerae
    COPROCULTIVO: INDICACIONES

    RAZONES CLÍNICAS RAZONES EPIDEMIOLÓGICAS

    Gravedad del proceso Brotes epidémicos


    Guarderías

    Susceptibilidad del paciente Sospecha de patógenos


    con potencial epidémico

    COPROCULTIVO

    Control de brotes epidémicos


    Tx específico
    Evitar difusión de patógenos
    potencialmente epidémicos
    COPROCULTIVO: BIOSEGURIDAD

    • Uso de guantes para obtención, recepción y tratamiento


    de muestras

    • Lavado de manos

    • Uso de indumentaria

    • Considerar como material de alto riesgo


    ETAPA PRE - ANALÍTICA
    OBTENCIÓN DE LA MUESTRA

    • Durante período agudo de • Envase adecuado


    enfermedad
    • Muestra fresca
    • Paciente sin tratamiento Diarreica: no < 2 a 5 ml
    antimicrobiano
    Pastosa: no < 3 a 5 g

    • Hisopado rectales
    RECEPCIÓN DE MUESTRA

    • Número de muestras

    • Identificación de la muestra

    • Datos clínicos y epidemiológicos de la muestra

    • Criterios de rechazo:
    • Deposición formada, excepto en estudio de portadores
    • Más de 1h a T° ambiente sin medio de transporte
    ETAPA ANALÍTICA
    EXAMEN DIRECTO

    • EXAMEN MACROSCÓPICO
    • Consistencia
    • Color
    • Olor
    • Moco y/o sangre

    • EXAMEN MICROSCÓPICO
    • Leucocitos fecales
    PROCEDIMIENTO DEL CULTIVO

    EXAMEN EXAMEN
    MACROSCÓPICO MICROSCÓPICO

    REACCIÓN
    INFLAMATORIA

    Cary – Blair
    Mantener en refrigeración COLORACIÓN VAGO
    O
    GRAM INTERRUMPIDO

    SIEMBRA
    PRIMARIA
    COPROCULTIVO: MATERIALES

    • Medio XLD
    • Medio Salmonella Shigella
    • Medio TCBS
    • Medio para Campylobacter o filtros de 0.45 um
    • Medio Mc Conkey Sorbitol
    • Caldo Selenito
    • Agua peptonada alcalina
    • Medios diferenciales: TSI, LIA
    • Reactivos: Indol, Oxidasa, Catalasa
    • Sueros polivalentes y monovalentes
    CULTIVO DE MUESTRA: SIEMBRA PRIMARIA

    Caldo
    Selenito Agar
    Agar McConkey Campylobacter
    Agar XLD Agar SS Agar TCBS
    Sorbitol /filtrado

    Incubar a 42° por


    48h en
    Agar SS
    microaerofilia
    Incubar a 35-37°
    por 18 a 24h
    CARACTERÍSTICAS DE COLONIAS SOSPECHOSAS

    • AGAR XLD: xilosa es fermentada por los entéricos, excepto Shigella


    CARACTERÍSTICAS DE COLONIAS SOSPECHOSAS

    • AGAR SALMONELLA – SHIGELLA: no fermentan lactosa (colonias incoloras)


    CARACTERÍSTICAS DE COLONIAS SOSPECHOSAS

    • AGAR MC CONKEY SORBITOL: sorbitol no es fermentado por E. coli O157:H7


    CARACTERÍSTICAS DE COLONIAS SOSPECHOSAS

    • AGAR TCBS: El pH alcalino favorece el crecimiento de Vibrio cholerae


    IDENTIFICACIÓN BIOQUÍMICA PRELIMINAR
    INTERPRETACIÓN
    IDENTIFICACIÓN BIOQUÍMICA FINAL

    • Citrato de Simmon’s
    • Triple Azúcar Hierro
    • Agar Lisina Hierro
    • Movilidad Indol Ornitina
    • Agar Urea de Christensen’s
    • Voges – Proskauer
    • Gelatina
    IDENTIFICACIÓN DE CAMPYLOBACTER

    • CULTIVO POR EL MÉTODO DE FILTRACIÓN


    IDENTIFICACIÓN DE CAMPYLOBACTER

    • EXAMEN DE LAS PLACAS • IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA


    • Colonias sospechosas
    • Tinción Gram
    • Catalasa +
    • Oxidasa +
    IDENTIFICACIÓN DE CAMPYLOBACTER

    EXAMEN MICROSCÓPICO DIRECTO

    • TINCIÓN GRAM – VAGO: para identificar leucocitos y formas bacilares curvas


    ANTIBIOGRAMA

    • Medios de cultivo a utilizar

    • Preparación del inóculo

    • Inoculación de las placas

    • Discos que se colocarán

    • Medición de halos
    ANTIBIOGRAMA

    • DISCOS QUE SE COLOCARÁN:

    • Ampicilina
    • Sulfametoxazol – trimetoprim
    • Ciprofloxacina (Campylobacter)
    • Furazolidona
    • Cloranfenicol
    • Eritromicina (Campylobacter)
    CULTIVO DE LA MUESTRA

    Agar
    Agar McConkey
    Agar XLD Agar SS Agar TCBS Campylobacter/
    Sorbitol
    filtrado

    COLONIAS SOSPECHOSAS
    • Shigella COLONIAS SOSPECHOSAS COLONIAS SOSPECHOSAS
    • Salmonella SORBITOL (-): • Campylobacter
    • Plesiomonas • EHEC O157/H7 • Oxidasa +
    • Aeromonas • Aeromona • Catalasa +
    BUSCAR: • Gram
    • Shigella
    • Vibrios
    • Yersinia
    • Aeromonas
    TSI LIA
    Serie y ATB Serie y ATB
    Serie y ATB ATB
    Serología Serología
    Serología
    ETAPA ANALÍTICA

    • 1º DÍA: Siembra primaria


    • 2º DÍA: Selección de colonias sospechosas + identificación bioquímica preliminar
    • 3º DÍA: Lectura TSI – LIA + identificación bioquímica final
    • 4º DÍA: Lectura serie bioquímica final + antibiograma + confirmación serológica
    • 5º DÍA: Lectura de la identificación final de enteropatógenos y su antibiograma
    proveniente del agar SS con identificación presuntiva a Salmonella, Shigella y
    Yersinia o Reporte final.

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