“AÑO DEL BICENTENARIO DEL PERÚ: 200 AÑOS DE

INDEPENDENCIA”

MÉTODOS DEL
EXAMEN DIRECTO
PARA EL
DIAGNÓSTICO
PARASITOLÓGICO

I.E.S.T.P. “SAUSA”

UNIDAD MÉTODOS Y TÉCNICAS DE ESTUDIO PARASITOLOGICO

DIDACTICA

DOCENTE CARLOS COZ CANO

ESTUDIANTE INGA HURTADO ANGÉLICA

SEMESTRE IV

2021

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 DIAGNÓSTICO PARA EL EXAMEN PARASITOLÓGICO
1. OBTENCIÓN DE LA MUESTRA

CONDICIONES GENERALES

 Los parásitos intestinales del hombre son protozoarios y/o helmintos, llamados
comúnmente gusanos intestinales (Anexo A). Estos helmintos o gusanos pueden ser
cilíndricos (nemátodes), anillados o segmentados (céstodes).

 Para observar los trofozoítos, quistes u ooquistes de los protozoarios, así como las larvas y
huevos de helmintos, se debe usar un microscopio; en cambio, la mayor parte de los
gusanos o helmintos adultos son macroscópicos y su morfología puede estudiarse
directamente, con ayuda de un estereoscopio o una lupa.

 Para observar los trofozoítos, quistes u ooquistes de los protozoarios, así como las larvas y
huevos de helmintos, se debe usar un microscopio; en cambio, la mayor parte de los
gusanos o helmintos adultos son macroscópicos y su morfología puede estudiarse
directamente, con ayuda de un estereoscopio o una lupa.

 Los protozoarios intestinales eliminan con las heces sus formas evolutivas (trofozoíto,
quiste, ooquiste y espora), según la especie involucrada.

 Los helmintos intestinales adultos (proglótidos de Taenia sp., Enterobius vermicularis y

Ascaris lumbricoides) pueden salir al exterior espontáneamente o después del tratamiento.
 Los gusanos intestinales se eliminan con las heces.

 Los métodos de diagnóstico de los parásitos intestinales pueden ser: directo o por
concentración de los elementos parasitarios que se eliminan en las heces.

 En las heces podemos encontrar formas adultas y microscópicas (huevos, larvas,

trofozoitos, quistes, ooquistes y esporas) de los parásitos intestinales; por ello, es
importante obtener una buena muestra fecal, así como la conservación óptima del
espécimen.

 La muestra debe ser obtenida (entre 3 y 6 gramos) lo más fresca posible (máximo 90
minutos, si se busca Entamoeba histolytica), y depositada en un frasco de boca ancha con
tapa rosca y rotulada correctamente con los datos de identificación.

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  La muestra debe obtenerse antes del uso de medicamentos antiparasitarios, o hasta 2 a 5
días después de su administración.
 Las heces depositadas en el suelo no son las recomendadas para el diagnóstico, debido a
que pueden contaminarse con formas biológicas, como, por ejemplo: larvas similares a los
enteroparásitos del hombre, larvas de nemátodes, huevos de ácaros o insectos, etc.

 Si el paciente no es regular en la evacuación de sus deposiciones y ha evacuado en la noche

anterior al examen, se recomienda guardar la muestra en una refrigeradora o en un lugar
fresco no expuesto a la luz solar, para que no se alteren las formas parasitarias. Cuando la
muestra va a demorar en llegar al laboratorio varias horas o días, se recomienda
adicionarle líquido fijador y/o conservador (PAF, PVA, formalina 10%, SAF, acetato de
sodio, etc.).

 En algunos parasitismos relacionados al parasitismo intestinal, es necesario el examen de

bilis, esputo, secreción, biopsia, tejido de necropsia o frotis perianal.

MUESTRA PARA EXAMEN PARASITOLÓGICO

Comprende las siguientes muestras: heces, bilis o jugo duodenal, esputo, secreción, biopsia o
preparaciones histológicas, siendo heces, la más frecuente.

HECES
CARACTERÍSTICAS DE LA MUESTRA
 Recipiente o contenedor: boca ancha, con tapa rosca.

 Cantidad: 3 - 6 g
 Condiciones óptimas: No estar mezclado con orina, que no exista el antecedente de haber ingerido
bario u otros productos de contraste, y llevar la muestra al laboratorio en corto tiempo (de 2 - 4
horas de su obtención).

REGISTRO DE DATOS
 Se debe consignar la siguiente información: Nombre, edad, sexo, ocupación, síntomas y
signos, fecha de inicio de síntomas y diagnóstico presuntivo.

PROCESAMIENTO DE LA MUESTRA
 Debe realizarse lo antes posible y en un lugar apropiado (que no le llegue la luz directa). Las
muestras diarreicas y las que contienen sangre, deben examinarse en forma macroscópica y
microscópica apenas lleguen al laboratorio.

 Se aplicará la metodología correspondiente.

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  Los reactivos y colorantes empleados en el procesamiento deben estar en envases adecuados,
mantenerse fuera de los rayos del sol o luz, etiquetados (con nombre y fecha de preparación),
sometidos a un control periódico y con una preparación proporcional a la demanda.

REPORTE DE RESULTADOS

 Escribir el nombre completo de los parásitos, indicando el estadio evolutivo y su densidad

en la muestra

ENVÍO Y TRANSPORTE DE LA MUESTRA

OBJETIVO
 Describir el procedimiento y condiciones para el envío y transporte de las muestras al
laboratorio

CONDICIONES ESPECÍFICAS
 Las muestras deben mantenerse en un ambiente fresco y lejos de la luz solar, se deben evitar las
temperaturas extremas o el desecamiento, deben contener cantidades óptimas y estar en frascos o
contenedores rotulados y con soluciones conservadoras.

TIPO DE MUESTRA TIEMPO QUE DEMORA EN LLEGAR AL AGENTES PARASITARIOS

LABORATORIO
< 24 HORAS 24 HORAS
T° ambiente
Esputo, secreción PAF, SAF, Paragonimus, Fascias,
biliar Formalina 10% Giardia.
Giardia, Strongyloides,
Contenido duodenal T° ambiente Paragonimus, Fasciola,
PAF, Formalina 10% Ancylostoma o Necator,
Microsporidia y otros.
Frotís perianal T° ambiente T ambiente Enterobius, Ascaris,
Taenia y otros.
Secreción vaginal T° ambiente
Frotis en lámina E. vermicularis.
Tejidos 4° C Formol 10% E. histolytica, otros (según
el tejido)
T° ambiente Nemátodes en alcohol Ascaris, Trichuris,
Helmintos 70%, Céstodes y Diphyllobothrium, Taenia,
Tremátodes en formol Paragonimus y Fasciola,
10% etc.
Suero 4° C E. histolytica, Giardia,
Hielo seco o congelador Paragonimus, Fasciola
y otros.
Heces PAF, PVA,
T° ambiente Formalina 10%, Cary E. histolytica, Giardia,
blair, Bicromato de Cryptosporidium,
potasio al 2,5%, MIF Enterocytozoon,
Encephalitozoon y otros.
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PROCEDIMIENTO

 Colocar la muestra elegida en un envase apropiado, rotulado correctamente y en un

recipiente secundario (podría ser de plástico u otro material resistente a roturas)
 Enviar la muestra al laboratorio lo antes posible; en caso fuera fresca, dentro de las 2 a 4
horas de obtenida.
 Si el envío de la muestra va a demorar más de un día en llegar al laboratorio, debe
guardarse en un fijador conservador, aplicando las medidas de bioseguridad
correspondientes
 Si se enviara la muestra a otro laboratorio, el personal responsable del envío debe elegir la
forma apropiada para la óptima conservación de ésta.
 Cuando la muestra no reúne las condiciones o cantidades óptimas para los análisis, así
como los datos, se recomienda establecer contacto con la persona responsable para
efectuar las correcciones respectivas.

RECHAZO DE UNA MUESTRA

 Es importante controlar cada hoja de pedido y verificar si tiene toda la información
(etiquetado). De no cumplirse ello, se debe establecer contacto con la persona responsable
para efectuar las correcciones necesarias.
 Los criterios para rechazar una muestra son los siguientes:
 No indicar el tipo de muestra o procedencia.
 No indicar el examen requerido.
 Demora en el envío al laboratorio.
 Muestra sin rotular o mal rotulada.
 Muestra que presente evidencia de haber sido derramada.
 Recipiente o contenedor inapropiado.
 Muestra con contaminación.

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  Muestra escasa o seca en el hisopo o contenedor.
 Presencia de una sola muestra, a pesar de la presencia de varias órdenes.
 Volumen o cantidad inadecuada.
 En casos de rechazar una muestra, el personal de laboratorio debe explicar al solicitante las
observaciones y motivos en la ficha de solicitud de diagnóstico. Si no fuera posible la
obtención de otra muestra, revisar nuevamente los exámenes realizados.
 Tener en cuenta el examen parasitológico por macroscopía.

PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO PARA EL DIAGNÓSTICO

PARASITOLÓGICO - HECES

EXAMEN DIRECTO MACROSCÓPICO

FUNDAMENTO.
Permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o
fraccionados, así como los cambios en las características organolépticas de las heces eliminadas,
(color, presencia de sangre y/o moco, consistencia, etc.).

MATERIALES.

 Suero fisiológico (Anexo C).

 Aplicador (bajalengua).
 Pinza de metal.
 Coladera de plástico o malla metálica.

PROCEDIMIENTO.

 Agregar suero fisiológico en cantidad suficiente para homogeneizar la muestra.

 En caso de presencia de parásitos adultos, tamizar o colar la muestra.

OBSERVACIÓN.

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Observar las características organolépticas de las heces, útiles para la ayuda diagnóstica
(consistencia, color, presencia de moco, sangre, alimento sin digerir), así como la presencia de
gusanos cilíndricos, anillados o aplanados (enteros o parte de ellos)

RESULTADO.
En caso que la muestra no sea normal, es decir, contenga información útil para el diagnóstico
(ejemplo: presencia de glóbulos rojos, fibras musculares no digeridas, mucus, etc.), se debe
adicionar al informe del examen parasitológico las características macroscópicas de las heces.

EXAMEN DIRECTO MICROSCÓPICO

FUNDAMENTO.
Buscar, principalmente en muestras frescas, la presencia de formas evolutivas móviles de parásitos
de tamaño microscópico (trofozoítos, quistes de protozoos: Entamoeba histolytica, Giardia
lamblia, Balantidium coli, etc.; así como larvas o huevos de helmintos: Strongyloides stercoralis,
Ancylostoma duodenale, Necator americanus, Trichostrongylus sp., Paragonimus, Fasciola, etc.).

MATERIALES
 Láminas portaobjetos
 Laminillas cubreobjetos.
 Aplicador de vidrio o madera.
 Microscopio óptico.
 Marcador de vidrio.
 Suero fisiológico.
 Solución de Lugol.
 Verde brillante.
 Rojo neutro.

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PROCEDIMIENTO.
 Colocar en un extremo de la lámina portaobjeto una gota de suero fisiológico y, con ayuda de un
aplicador, agregar 1 a 2 mg de materia fecal, emulsionarla y cubrirla con una laminilla cubreobjeto.
 Colocar en el otro extremo de la lámina portaobjeto, una gota de Lugol y proceder a la aplicación
de la muestra fecal como en el párrafo anterior.
 Con el suero fisiológico, los trofozoítos y quistes de los protozoarios se observan en forma natural, y
con Lugol, las estructuras internas, núcleos y vacuolas.
 En algunos casos, se recomienda el uso de colorantes vitales, debido a que no alteran la actividad
del trofozoíto. Los más usados son verde brillante 0,2% y rojo neutro 0,01%.

OBSERVACIÓN

 Observar al microscopio a 10X ó 40X. No es aconsejable usar objetivo de inmersión (100X),

pues se puede ensuciar el microscopio.
 Recorrer la lámina siguiendo un sentido direccional, ejemplo: de derecha a izquierda, o de
arriba a abajo.

RESULTADO
En un formato y en el cuaderno de registro correspondiente, se anotará el nombre de la especie
del parásito y su estadío evolutivo, indicando la densidad (número de formas parasitarias por
campo microscópico) expresado en cruces.

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