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Universidad de Sonora

Departamento de investigaciones científicas y tecnológicas

Licenciatura en Biología

Laboratorio de Protistas y Algas

M.C Erick José Ponce

Silvia María Rochín Rivera

Práctica 4: Limpieza y montaje de preparaciones permanentes


y semipermanentes de Heterokontophyta (diatomeas y
silicoflagelados)

Entrega: 22 de Septiembre del 2022


Limpieza y montaje de preparaciones permanentes y semipermanentes de
Heterokontophyta (diatomea y silicoflagelados)

Diatomeas (clase Bacillariophyceae) son algas microscópicas únicas que contienen


sílice y tienen una distintiva figura geométrica. Son unicelulares, organismos
eucarióticos y fotosintéticos. Su tamaño celular es entre 5 μm -- 0.5 mm. Ocurren en
áreas mojadas o húmedas donde la fotosíntesis es posible. Las diatomeas son
planctónicas (flotan libremente) o bentónicas (adherido a un sustrato) en la
naturaleza. Los individuos son solitarios o a veces de colonias. Las diatomeas son
mayormente inmóviles, sin embargo, algunas diatomeas bentónicas tienen un
sistema de rafe especializado que segrega mucílago para adherirse o deslizarse a lo
largo de una superficie. También son conocidas por formar biopelículas, por
ejemplo, capas de células unidas fuertemente de microorganismos. Las biopelículas
están formadas en una superficie sólida y están usualmente rodeadas de fluidos
extracelulares. (Kale & Karthick 2015)

Para una identificación adecuada de las diatomeas es necesario eliminar todo el


contenido de materia orgánica celular o extracelular. Esto puede realizarse
exponiendo la muestra a agentes oxidantes fuertes. En aguas ricas en carbonato
cálcico se recomienda eliminar previamente los carbonatos con HCl diluido. Para
limpiar los frústulos de las diatomeas se debe tratar la muestra con reactivos que
permitan la digestión de la materia orgánica. Aunque hay diversas posibilidades, se
recomienda digerir la materia orgánica mediante solución peróxido de hidrógeno
(H202) al 30% (100 volúmenes). En caso de materia orgánica difícilmente digerible,
como filamentosas, se puede optar por una digestión más energética mediante
ácido sulfúrico concentrado (H2SO4) y permanganato potásico (KMnO4) en
cristales, añadiendo peróxido de hidrógeno como catalizador.

En los dos casos hay que limpiar los restos de reactivo mediante lavados sucesivos
con agua destilada o desionizada. Los lavados pueden realizarse mediante filtros
(0,4 micras de poro) o mediante centrifugación suave. (Gómez et. al., 2009)
Objetivos:

- Limpiar muestras de preparaciones semipermanentes de diatomeas y


silicoflagelados.
- Realizar el montaje de preparaciones permanentes de diatomeas y
silicoflagelados, utilizando resina sintética.
- Realizar el montaje de preparaciones semipermanentes de diatomeas y
silicoflagelados.

Materiales:

- Microscopio óptico.
- Micropipetas.
- Portaobjetos.
- Cubreobjetos.
- Muestra en fresco.
- Tubos de ensaye.
- Centrífuga.
- Mechero de alcohol.
- Pipeta.
- Placa para calentar.

Métodos:

- Con una micropipeta, tomar 1ml de la muestra en fresco proporcionada por el


maestro y verter en tubo de ensayo.
- Añadir 1ml de ácido clorhídrico a la muestra, dentro de la campana.
- Pasar lentamente el tubo de ensayo por el fuego, hasta que se convierta en
un color cristalino verdoso-amarillento.
- Pasar la muestra del tubo de ensayo a tubo de centrífuga. Después, añadir
5ml de agua desionizada.
- Meter el tubo a la centrífuga y dejar actuar por cinco minutos.
- Sacar el tubo de ensayo, veremos al fondo del tubo, una especie de nata
color blanca y con una pipeta, sólo sacar la mezcla de agua desionizada y
ácido clorhídrico.
- Volvemos a añadir 5ml de agua desionizada y metemos a centrifugar por
cinco minutos.
- Nuevamente, retiramos sólamente el agua del tubo.
- Tomamos un poco de la muestra que quedó, y ponemos una gota en el
portaobjetos.
- Dejamos el portaobjetos secar en la placa.
- Una vez seca la muestra, añadimos una gota de resina y con mucho cuidado,
colocamos el cubreobjetos en la muestra, y dejamos secar.

Resultados:

(fig. 1) (Fig. 2)

(Fig. 3)
(Fig. 4)
(Fig. 6)
(Fig. 5)

(Fig. 6)
fi (Fig. 7)
RESULTADO FINAL

Discusión:

Se describe el tratamiento de muestras de diatomeas para eliminar la materia


orgánica, y su posterior montaje en resina para su observación al microscopio.

Una vez digerido el material, se coloca en un vial limpio con un volumen conocido
de agua destilada. Se agita el vial y, con una pipeta Pasteur, se deposita el material
en un cubreobjetos. Una vez evaporado el líquido, se procede al montaje con resina.
(Gómez et. al., 2009)

Con este artículo, podemos avalar lo que se hizo en la práctica cuatro de limpieza y
montaje permanente de diatomeas.
Conclusión:

- Se entendió el tema de limpieza y montaje de diatomeas.


- Se logró la limpieza correcta de diatomeas.
- Se logró crear un montaje en buen estado y calidad.

Bibliografía:

Gómez, N., Charles, J., Giorgi, A., Guasch, H., Sabater, P. y Sabater, S. (2009). Conceptos y
técnicas en ecología fluvial. Rubes Editorial.

Kale, A. y Karthick, B. (2015). The Diatoms: Big Significance of Tiny Glass Houses.
RESONANCE, 919.

Cuestionario:

1. ¿Qué es el índice de refracción y cuál es su importancia en el montaje


de preparaciones permanentes para microscopía?

Es la relación que existe entre la velocidad de la luz en el aire y su velocidad en el


medio transparente utilizado. Se pueden obtener los índices de refracción de una
serie de sustancias que se utilizan en la construcción y tallado de las lentes de los
objetivos.

2. Mencionar los tipos de resinas sintéticas que existen y cuáles son más
recomendables para el estudio de diatomeas y silicoflagelados.
● Acrílica
● Alquídica
● Polivinilo
● Ureal formaldehído
● Viniléster
● Epoxi

Las resinas recomendable serían, las cuales serían Naphrax o Hyrax, ya que tienen
alto índice de refracción.
Ensayo

La importancia de las algas

Las algas bentónicas manejan un papel importante en los ambientes lóticos, pues
estas participan significativamente en los ciclos biogeoquímicos, con la retención de
nutrientes, en la formación y estabilidad de los sedimentos y en la modificación de
velocidad de la corriente, generando así microhábitats que son utilizados por otros
organismos acuáticos como zonas de refugio, para el depósito de huevos o también,
como alimento.

Las algas, también son consideradas los productores primarios con más importancia
en los sistemas lóticos porque son más abundantes y permanentes que las plantas
que viven en los medios acuáticos, y tienen la capacidad de transformar elementos
químicos inorgánicos de diversas fuentes que se encuentran en compuestos
orgánicos, que pueden ser empleados por organismos de otros niveles tróficos.

La incorporación de energía en las redes tróficas de los ambientes lóticos pueden


venir de un origen alóctono, gracias al ingreso de materia orgánica de origen
terrestre, por ejemplo, la vegetación primaria. O autóctono, por los autótrofos que
habitan en el agua, como algas, musgos y plantas vasculares.

La importancia que tiene la fuente de energía autóctona para satisfacer la demanda


energética ha sido avalada por estudios hechos con isótopos estables.

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