Efecto de La Aplicacion de Aminoacidos en Jitomates
Efecto de La Aplicacion de Aminoacidos en Jitomates
Efecto de La Aplicacion de Aminoacidos en Jitomates
II
AGRADECIMIENTOS
A mi madre María López Avendaño, por creer en mí, darme la confianza de seguir
con mis estudios y apoyarme en los momentos difíciles.
A mis hermanos Juan Carlos Sánchez López y Eduardo Sánchez López, por su
amistad y apoyo que me han brindado durante mi formación personal y académica.
Al Ing. Raúl Jacinto Mata, por su tiempo y disposición para la realización, revisión y
corrección del presente trabajo.
Al Ing. Francisco Rodríguez Neave, por estar al pendiente del presente trabajo,
revisando y dando sugerencias para su corrección, sobre todo de su disponibilidad y
paciencia.
A los integrantes del comité examinador, los profesores, M.C. Arturo Chong Eslava,
M.C. Carlos Sánchez Abarca y M.C. Claudio Arturo Pérez Mercado, por las
sugerencias aportadas, así como del tiempo dedicado para la revisión y disponibilidad
para la conclusión del presente trabajo.
A los C. Gilberto García López, C. Joel Onofre y C. Santiago Rosas Cabrera personal
del invernadero de Olericultura, del Campo Agrícola Experimental del Departamento
de Fitotecnia, por las facilidades y apoyo brindado en la etapa de experimentación.
A mis amigos Manuel Guadalupe García, Carlos Alberto Martínez Reyes, Paola
Ibarra Vega, Ramón Ponce Gutiérrez, Rey David Xochimil Duran y Adriana
Rodríguez Rodríguez que me acompañaron durante esta etapa de mi vida y a todos
los que estuvieron conmigo en algún momento.
III
DEDICATORIAS
A mi madre María López Avendaño, por haberme apoyado en todo momento, por sus
consejos y valores, por su motivación y confianza para seguir mis estudios.
A mis hermanos Juan Carlos Sánchez López y Eduardo Sánchez López por estar
siempre presentes, acompañándome y brindándome su apoyo en momentos difíciles.
De igual manera cuentan conmigo y les deseo éxito en su carrera profesional.
A mis primos, Beto López rodríguez, Mario López Rodríguez y Seferino López
Rodríguez, a pesar de no convivir seguido, les agradezco el apoyo que me han
brindado.
A mis amigos en especial a los que termínanos juntos esta etapa de la carrera
profesional.
IV
ÍNDICE
RESUMEN……………………………………………………………………………………… II
ABSTRACT…………………………………………………………………….……………… III
ÍNDICE DE CUADROS…………………………………………………………………….… IV
ÍNDICE DE FIGURAS………………………………………………………………………… V
I. INTRODUCCIÓN ...................................................................................................... 1
III. HIPÓTESIS............................................................................................................ 2
V
4.6.4 Ventilación ......................................................................................................... 11
VI
5.10 Análisis de datos ................................................................................................. 40
IX. ANEXOS................................................................................................................. I
VII
ÍNDICE DE CUADROS
VIII
Cuadro 21. Medias del número total de frutos por planta para cada uno de los 54
tratamientos evaluados. Corte 3
Cuadro 22. Medias del número de frutos comerciales por planta para cada uno 55
de los tratamientos evaluados. Corte 3
Cuadro 23. Medias del peso total de frutos por planta, para cada uno de los 56
tratamientos evaluados. Corte 3
Cuadro 24. Medias del peso promedio de frutos por planta para cada uno de 57
los tratamientos evaluados. Corte 3
Cuadro 25. Análisis de varianza para el total de cortes 58
Cuadro 26. Medias del número total de frutos por planta para el total de cortes 58
Cuadro 27. Medias del número de frutos comerciales por planta para el total 59
de cortes
Cuadro 28. Medias del peso total de frutos por planta, para el total de cortes 60
Cuadro 29. Medias del peso promedio de frutos por planta para el total de 61
cortes
IX
ÍNDICE DE FIGURAS
X
Figura 17. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso promedio de 57
frutos para el tercer corte
Figura 18. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el número total de 59
frutos para el total de cortes
Figura 19. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el número de frutos 60
comerciales para el total de cortes
Figura 20. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso total de frutos 61
para el total de cortes
Figura 21. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso promedio de 62
frutos para el total de cortes
XI
RESUMEN
XII
ABSTRACT
The experiment was carried out in the greenhouse of Olericulture of Fitotecnia located in
the experimental agricultural field of the Autonomous University Chapingo, in the spring-
summer 2017 cycle. The objective of the present work was to evaluate the effect of the
different concentrations of the foliar application of the agrochemical "Maskio" and
"Lidamino" in the production and quality of Tomato variety "Condor", with fertirrigation.
These agrochemicals contain amino acids and micronutrients in common. An
experimental desing was used in random blocks with seven treatments. Witness: Normal
Edaphic Fertilization (FEN); Treatment 2: Maskio (2 ml / L) + FEN; Treatment 3: Maskio
(3 ml / L) + FEN; Treatment 4: Maskio (4 ml / L) + FEN; Treatment 5: Lidamino (1 ml / L)
+ FEN; Treatment 6: Lidamino (2 ml / L) + FEN; and Treatment 7: Lidamino (4 ml / L) +
FEN. The variables evaluated were: total number of fruits per plant, number of
commercial fruits per plant, total weight of fruits per plant (g) and average weight of fruits
per plant (g). With the data obtained was performed present experiment, an analysis of
variance and a Tukey means test (α≤0.05). The results showed a statistically significant
difference of the effect of the treatments in cuts 1 and 3. For cut 1, the favorable variables
were the total number of fruits per plant, number of commercial fruits per plant and total
weight of fruits per plant, being treatment 4 the best: "MASKIO" (4 ml / L) + FEN. For cut
3, the favorable variables were total weight of fruits per plant and average weight of fruits
per plant, with treatment 3 being the best: "MASKIO" (3 ml / L) + FEN. For the 2 cut and
total cuts, the treatments did not show statistically significant differences.
XIII
I. INTRODUCCIÓN
Actualmente en México existen una gran variedad de productos comerciales a base de
aminoácidos, con diferentes concentraciones de los 20 aminoácidos esenciales para las
plantas, cada una de estos aminoácidos cumple diferentes funciones dentro de las
plantas y pueden requerir más o menos dependiendo de la especie, el uso de los
aminoácidos se recomienda por los general cuando las plantas se encuentran en
situaciones de estrés ambiental. El jitomate es de los cultivos más importantes en México
en cuando la producción y el valor que genera dentro de los productos agrícolas, gran
parte de la producción presentan problemas de estrés ambiental en algún momento de
las etapas de crecimiento, principalmente cuando el cultivo está en campo abierto o en
invernaderos de baja y en menor medida a los de media y alta tecnología. La mayoría
de los cultivos, incluyendo el jitomate son sensibles a los diferentes tipos de estrés
ambiental desde la germinación hasta el cuajado de frutos, en cada etapa la planta
experimenta cambios a nivel molecular, morfológico, fisiológico y celular. Las respuestas
de la planta dependen del genotipo y el estado de desarrollo de la misma en el momento
del estrés, de la duración y la severidad del estrés y de los factores ambientales que lo
provoquen (Florido & Bao, 2014). La aplicación de aminoácidos ayuda a contrarrestar
los efectos negativos causados por estrés, principalmente los aminoácidos libres que son
de bajo peso molecular, ya que son sustancias nutritivas de fácil absorción y asimilación,
tanto por vía foliar como radical, transportándose a los órganos del vegetal, como brotes,
flores y frutos, en los que existe una mayor demanda debido a su actividad (Franco,
1989). Además ayudan a reducir significativamente el daño en el rendimiento y en la
calidad del cultivo causado por las situaciones de estrés. En México no hay estudios de
la efectividad biológica del agroquímico “MASKIO”, en el cultivo de jitomate, debido a que
es un producto nuevo, por este motivo se evaluó este producto para observar si presenta
efectos sobre algunos indicadores de calidad y rendimiento. Con base en lo anterior se
realizó el presente experimento en el cultivo de jitomate, donde el agroquímico MASKIO
se comparó con el LIDAMINO, es decir dos fuentes de aminoácidos.
1
II. OBJETIVO
Evaluar el efecto de los productos “MASKIO” y “LIDAMINO” en el rendimiento del
jitomate (Lycopersicum esculentum Mill.), con fertigación bajo condiciones controladas
de invernadero en Chapingo, México.
III. HIPÓTESIS
Los productos “MASKIO” y “LIDAMINO”, que proporcionan aminoácidos incrementan
el rendimiento del cultivo de Jitomate.
2
IV. REVISIÓN DE LITERATURA
Cuatro estados concentran la mayor superficie de cultivo en invernadero: Sinaloa (30 %),
Baja California (16 %), Estado de México (12 %) y Jalisco (7 %). Estas entidades aportan
más del 50 % de la producción total de cultivos protegidos. El jitomate es el principal
cultivo bajo agricultura protegida (70 %) en México (roma, bola, cherry), seguido de
pimiento (en todos sus colores), pepino (europeo y americano), berenjena y chile picoso.
El 60 % de la producción en invernadero se exporta y el 70 % de dicho volumen de
exportación corresponde a tomate (Ponce, 2011).
Una estructura casa-sombra produce unas 160 t por ha de tomate; mientras que en un
invernadero con tecnología media y mejor sustrato, podrían lograrse 350 t por ha; y en
uno de alta tecnología, más de 500 t por ha.
3
Más del 50 % de estructuras comerciales son casas-sombra, según indican los
comercializadores de invernadero en México, quienes agregan que de las 6,500 ha de
operaciones comerciales, el 48 % corresponden a invernaderos de plástico y únicamente
el 1 % son estructuras de vidrio. Para dichos empresarios, México es un mercado
atractivo que se encuentra en proceso de expansión y transición hacia estas nuevas
tecnologías, pero además, en sus proyecciones indican que es un mercado que seguirá
creciendo hacia el 2015 a un ritmo de 1,500 ha por año (AMCI, 2011 citado por Ponce
2011).
4.2.1 Origen
La palabra jitomate procede del náhuatl xictli, ombligo y tomatl, tomate, que significa
tomate de ombligo. El tomate ya se cultivaba 700 años a. C en México y en el antiguo
Perú antes de la formación del Imperio Inca. El jitomate se originó muy probablemente
en las tierras altas de la costa occidental de Sudamérica, lugar donde aún existen una
gran cantidad de variedades silvestres. Los españoles distribuyeron el jitomate a lo largo
de sus colonias en el Caribe después la conquista de Sudamérica. También lo llevaron
a filipinas y por allí entro al continente asiático (Pérez & Castro, 2011).
4.2.2 Distribución
El jitomate se distribuye en América, desde los Andes sudamericanos a través de Perú
y hasta el norte de Chile, y en las islas Galápagos, donde crecen las especies endémicas
Solanum cheesmaniae, Solanum galapagaense y Solanum lycopersicum. (Nuez, 1999;
citado por Pérez & Castro, 2011).
4
4.3 Clasificación taxonómica
Clase Dicotiledóneas
Orden Solanales (Personatae).
Familia Solanaceae.
Subfamilia Solanoideae.
Tribu Solanae.
Género Lycopersicum
Especie Esculentum
4.4.1 La planta
El jitomate es una planta herbácea perenne, cultivada como anual, sensible al frio (Pérez
& Castro, 2011). Las hojas casi siempre son compuestas, y sus foliolos ovales
acostumbran a ser un poco más dentados. Las flores, pequeñas, amarillas, en forma de
estrella, se agrupan sobre un mismo pedúnculo semejante a un racimo suelto, de tres a
ocho flores. Por lo general, estos ramilletes aparecen de forma regular en el tallo cada
vez que la planta ha producido tres nuevas hojas. El ovario es súpero (situado por encima
de cáliz), tiene dos carpelos (bilocular), aunque algunas variedades pueden tener cuatro
o cinco (Jean, 2007).
4.4.2 Raíz
El sistema de raíces es pivotante, muy denso y con gran cantidad de ramificaciones
secundarias en los primeros 30 cm del suelo y en los primeros 20 cm se concentra el 70
% de la biomasa radical. No obstante, bajo condiciones de cultivo sin suelo y con sistema
de riego por goteo, las raíces prácticamente carecen de pelos absorbentes, son gruesas
y la mayor parte de estas tienden a concentrarse en torno a la salida del emisor (Pérez
& Castro, 2011).
5
4.4.3 Tallo
El tallo es anguloso, pubescente, con algunos pelos glandulares; al principio de su ciclo
biológico, su consistencia es herbácea y en estado adulto es leñoso, la ramificación del
tallo es simpodial; es decir; las yemas axilares desarrollan ejes sucesivos. En
condiciones de invernadero las plantas de jitomate son conducidas a un solo tallo. En las
axilas de las hojas del tallo principal surgen los tallos secundarios que son eliminados
mediante poda para una buena conformación de la planta. El desbrote debe ser
oportuno, para que las cicatrices sean pequeñas y disminuya el riesgo de enfermedades
criptogámicas. Cuando se quiere conducir a dos tallos se deja el brote lateral que se
ubica inmediatamente abajo del primer floral (Pérez & Castro, 2011).
4.4.4 Hoja
Las hojas son simples y alternas, bipinatisectas y pecioladas, con una longitud de 10 a
25 cm. los segmentos foliares son de borde lobulado, ovales y acuminados.
Normalmente aparecen tres hojas entre dos racimos en los híbridos de jitomate de
crecimiento indeterminado (Pérez & Castro, 2011).
4.4.5 Flor
Las flores son hermafroditas, actinomorfas y péndulas, de 1 a 2 cm de largo y color
amarillo brillante. En las especies silvestres de jitomate la flor es pentámera, mientras
que en los cultivados el número de segmentos de cada ciclo es muy diverso,
observándose muchas variaciones. El cáliz está formado por cinco a diez segmentos,
lineales a lanceolados y persistentes. Su tamaño va aumentando a medida que se va
desarrollando el fruto. La corola es amarilla, rotada, con el tubo corto, dividida en 5 o más
lóbulos, con numerosos pelos glandulares en la cara dorsal, cinco o más estambres
adheridos al tubo de la corola, de filamentos cortos y anteras dehiscentes por hendiduras
longitudinales. El pistilo es único, formado por la unión de cinco o seis carpelos. El ovario
es bilocular (aunque existen hasta diez lóculos en ciertas variedades cultivadas) con la
placenta central carnosa. Los pedicelos presentan un pequeño estrangulamiento en la
parte media que corresponde a la zona de abscisión. Las flores se disponen en cimas
axilares, cada una de las cuales lleva normalmente de cinco a seis flores, pero a veces
hasta treinta o más (Pérez & Castro, 2011).
6
4.4.6 Fruto
El fruto es una baya carnosa compuesto de endocarpio y pericarpio (mesocarpio y
epicarpio). En las especies silvestres de jitomate el fruto de jitomate el fruto es bilocular,
mientras que en las variedades cultivadas tienen de dos a treinta lóculos, siendo lo más
frecuente, de cinco a nueve. En la epidermis de los frutos se desarrollan pelos y
glándulas que desaparecen cuando llegan a la madurez. En el ápice del fruto suelen
observarse restos de estilo. La forma del fruto es variable, generalmente globosa u
oblonga (Pérez & Castro, 2011).
4.4.7 Semilla
Presentan numerosas semillas pequeñas embebidas en una masa gelatinosa formada
por un tejido parenquimático que llena las cavidades del fruto maduro, de forma lenticular
con dimensiones aproximadas de 5 x 4 x 2 mm. Está constituida por el embrión, el
endospermo y la testa o cubierta seminal, el embrión lo forman una yema apical, dos
cotiledones, el hipocótilo y la radícula. La testa es de tejido duro e impermeable (Pérez
& Castro, 2011).
4.5 Bromatología
4.5.1 Bromatología
El jitomate contiene azucares simples que le confieren un ligero sabor dulce y ácidos
orgánicos que le otorgan el sabor acido característico. Es una fuente importante de
minerales (potasio y magnesio), y vitaminas como la B1, B2, B5 y C. Presentan también
carotenoides como el licopeno, pigmento que da color rojo característico. La vitamina C
y el licopeno son antioxidantes con una función protectora de nuestro organismo. Es un
alimento con pocas calorías, ya que 100 gramos aportan 18 kcal. La mayor parte de su
peso es agua y el segundo constituyente en importancia son los carbohidratos (Nuez,
1999, citado por Pérez & Castro, 2011).
7
El contenido bromatológico en 100 g de fruto fresco se muestra en el Cuadro 2.
Cuadro 2. Valor nutricional promedio por cada 100 g de jitomate rojo crudo (Pérez &
Castro, 2011).
Constituyente Cantidad
Agua 94.5 g
Valor calórico 75.3 kj
Proteínas 0.9 g
Glúcidos 2.8 g
Lípidos 0.2 g
Provitamina A 0.38 mg
Vitamina B1 0.06 mg
Vitamina B2 0.04 mg
Vitamina B6 0.11 mg
Vitamina C 15 mg
Hierro 0.4 mg
Calcio 10 mg
Magnesio 10 mg
Fósforo 24 mg
Potasio 280 mg
Sodio 1.2 mg
4.5.2 El licopeno
En el jitomate maduro, el carotenoide mayoritario es el licopeno que lo contiene en
aproximadamente en un 83 % y en porcentaje también importante, se encuentra el beta-
caroteno, y otros como son el y-caroteno, que al igual que el beta caroteno tienen
actividad provitamínica A, fitoeno, fitoflueno. El contenido el licopeno aumenta con la
maduración de jitomate y pueden presentarse grandes variaciones según la variedad,
condiciones del cultivo como el tipo de suelo y clima, tipo de almacenamiento, etc.
8
La cantidad de licopeno en los jitomates de ensalada (tipo bola) está alrededor de 3000
µg por 100 g y en los de tipo saladette es más de 10 veces esa cantidad (Gebhardt y
Thomas, 2002, citado por Pérez & Castro, 2011).
4.6.1 Radiación
En la producción de jitomate en invernadero se utilizan altas densidades de población,
el factor luz adquiere una gran relevancia porque se debe contar con esta, también se
debe tener una adecuada distribución de las plantas en invernadero y tener especial
cuidado en los lugares de mucha nubosidad, ya que en ellos normalmente en ellos existe
baja intensidad de luz. Por ello es importante emplear cubiertas transparentes como las
de cristal o polietileno, que se utilizan para cubrir los invernaderos; aunque el cristal
permite mayor paso de luz (90 %), su costo es elevado y lo hace poco atractivo, para ser
empelado en la producción comercial de jitomate. El polietileno transparente es el más
utilizado en México porque permite el paso de aproximadamente 70 % de la luz incidente
y tiene menor costo con relación al cristal (Pérez & Castro, 2011).
9
Para favorecer la disponibilidad de luz blanca dentro del invernadero y en consecuencia
la actividad fotosintética de la planta, es aconsejable pintar de color blanco toda la
estructura del invernadero, empelar sustratos de color blanquecino, como el granzón, e
incluso recurrir al acolchado con plástico plateado a blanco mate y cubiertas flotantes
que incrementan la reflexión de este factor y en algunas ocasiones es conveniente cubrir
el suelo de los pasillos o andadores con una cubierta conocida como grown cover color
blanco (Pérez & Castro, 2011).
Los niveles óptimos de luz para el cultivo de jitomate, varían de acuerdo a la etapa de
desarrollo de la planta; por ejemplo, en el caso de la producción de este en invernadero
en la zona de Chapingo, México (19°29´ W y 2250 msnm), se han observados como
óptimos los siguientes datos: plántula (25 000-30 000 luxes), trasplante a primer racimo
florar (40 000- 50 000 luxes), crecimiento de frutos (más de 60 000 luxes). Si en esta
etapa existe sombreado excesivo, la coloración del fruto a rojo es tardada y se mantiene
de color rosa tenue. Para tener el control de la luz en el invernadero es recomendable
contar con al menos un fotómetro digital de bolsillo. Este instrumento ayudara a medir el
nivel de sombreado que deberá de proporcionarse a las plantas, según la fase de
desarrollo en la que se encuentren (Pérez & Castro, 2011).
4.6.2 Temperatura
El jitomate en una planta termoperiódica diaria, por lo cual requiere una oscilación de
temperatura entre el día y la noche de al menos 8 °C lo que favorece su crecimiento y la
formación de un mayor número de flores. La temperatura óptima para el cultivo oscila
entre 22 y 24 °C, varía en función de cada una de etapas fenológicas. Para medir la
temperatura dentro del invernadero se debe contar con un termómetro de máximas y
mínimas o con un dataloger. La temperatura mínima no debe ser menor de 12 °C, lo cual
evita que el crecimiento de la planta se detenga y, sobre todo, no menor de 10 °C, de lo
contrario la planta no crece. La temperatura máxima no debe ser mayor de 35 °C, ya que
temperaturas superiores a esta permiten un crecimiento mínimo o nulo y, a la vez, se
pueden tener problemas por mala fecundación debido a la deshidratación de los granos
de polen, más aún, si tal temperatura está acompañada por humedad relativa menor a
40 %.
10
La regulación de la temperatura en el invernadero se puede lograr con el uso de
calentadores, si la temperatura es baja; o de ventilas laterales y cenitales, ventiladores o
muros húmedos si las temperaturas son elevadas (Pérez & Castro, 2011).
4.6.4 Ventilación
Una ventilación deficiente dentro del invernadero generalmente va acompañada de la
incidencia de una serie de enfermedades fungosas difíciles de controlar, para lo cual se
hace usos de productos químicos que en muchos casos no logran solucionar el
problema. el aire fresco es más pesado que el aire caliente, por lo que el invernadero
debe tener suficiente ventilación lateral que permita la entrada de aire fresco y una
ventilación cenital proporcional que permita la salida de aire caliente, evitando de esta
manera el sobrecalentamiento del mismo. Para evitar el incremento excesivo de la
humedad relativa en el microambiente que rodea las hojas de las plantas, es necesario
hacer una buna distribución de ellas en el invernadero (Pérez & Castro, 2011).
11
4.7 Calidad del agua
4.7.2 pH
El pH afecta la disponibilidad de los nutrientes y la absorción de ellos por raíces de las
plantas. En un sistema hidropónico con sustrato inerte el pH de la solución nutritiva debe
estar entre 5.5 a 6.0, y de 6.0 a 6.5 para cultivo en suelo. Si el pH de la solución nutritiva
es muy elevado debido a alcalinidad del agua, se debe agregar un ácido como el sulfúrico
(H2SO4), fosfórico (H3PO4) o nítrico (HNO3) para alcanzar el valor de pH recomendado.
En cambio, sí es acido se puede agregar bicarbonato de potasio (KHCO3) o hidróxido de
potasio (KOH), (Pérez & Castro, 2011).
12
4.7.4 Dureza del agua
Es un indicador de la presencia de calcio y de magnesio en el agua. De 100 a 150 mg
de carbonato de calcio por litro de agua es aceptable para el crecimiento de las plantas.
Si el agua es suave, menos de 50 mg, será necesario suplementar la solución nutritiva
con calcio o magnesio (Pérez & Castro, 2011).
13
4.10 Aminoácidos
4.10.1 ¿Qué son los aminoácidos?
Los aminoácidos son compuestos que poseen dos grupos funcionales característicos: el
amino (- NH2) y el carboxilo (-COOH). Todos los aminoácidos presentes en las proteínas
son α-aminoácidos que llevan el grupo amino en la posición α (Vajda, 1976). Difieren
unos de otros en sus cadenas laterales, o grupos R, que varían en estructura, tamaño y
carga eléctrica y que influyen en la solubilidad en agua de los aminoácidos (Nelson &
Cox, 2006) como se puede observar en la Figura 1.
Los aminoácidos son los componentes básicos de las proteínas, macromoléculas que
en las plantas tienen funciones estructurales, enzimáticas y hormonales.
14
El NH4+ generalmente es convertido a N orgánico antes de su traslocación (Magalhães
et al., 1995, citado por Peña, 2006). La nitrato reductasa (NR) es estimulada por la luz,
CO2 y NO3-, su actividad disminuye con el estrés (Mussel, 1979, citado por Peña, 2006).
15
Figura 2. Esquema general de la biosíntesis de los aminoácidos. Los esqueletos
carbonados de los precursores proceden de tres fuentes: glucólisis (en rosa), ciclo de
ácido cítrico (en azul), y vía de las pentosas fosfato (en violeta), (Lenhinger, 2003).
16
La mayor parte de las bacterias y plantas pueden sintetizar los 20 aminoácidos como se
puede ver en el Cuadro 4 (Nelson & Cox, 2006).
4.10.3 Características
Los 20 aminoácidos estándar encontrados en la proteína son α-aminoácidos. Tienen
todos, un grupo carboxilo y un grupo amino unidos al mismo átomo de carbono, como ya
se describe anteriormente en la Figura 1. Difieren unos de otros en sus cadenas laterales,
o grupos R, que varían en estructura, tamaño y carga eléctrica, lo cual influye en la
solubilidad del agua de los aminoácidos. A menudo se hace referencia a los 20
aminoácidos de las proteínas, denominándolos aminoácidos estándar, para distinguirlos
de aminoácidos menos comunes que son residuos que han sido modificados después
de la síntesis de una proteína, y de las otras muchas clases presentes en organismos
vivos, pero no en proteínas. A los aminoácidos estándar se les han asignado abreviaturas
de tres letras y símbolos de una sola letra que se utilizan para indicar de manera
abreviada la composición y secuencia de aminoácidos polimerizados en las proteínas
(Lenhniger, 2003).
17
En todos los aminoácidos estándar excepto la glicina, el carbono α está unido a cuatro
grupos diferentes: un grupo carboxilo, un grupo amino, un grupo R y un átomo de
hidrogeno; en la glicina el grupo R es otro átomo de hidrogeno. El átomo de carbono α
es por lo tanto un centro quiral. Debido al ordenamiento tetraédrico de los orbitales de
enlace alrededor del átomo de carbono α, los cuatro grupos diferentes pueden ocupar
dos ordenamientos diferentes en el espacio que son imágenes especulares no
superponibles entre sí. Estas dos formas constituyen un tipo de estereoisómeros
denominados enantiómeros. Todas las moléculas con un centro quiral son también
ópticamente activas, es decir, hacen girar el plano de la luz polarizada (Lenhniger, 2003).
Para especificar la configuración absoluta de los cuatro constituyentes de los átomos de
carbono asimétricos se ha desarrollado una nomenclatura especial. Las configuraciones
absolutas de los azucares sencillos y aminoácidos se especifican mediante el sistema D
(dextrógiros), L (levógiros), basado en la configuración absoluta del azúcar de tres
carbonos gliceraldehído. Para todos los compuestos quirales los estereoisómeros que
tienen una configuración relacionada con del L-gliceraldehído se designan como L, y los
estereoisómeros relacionados con el D-gliceraldehído se designan como D. Los grupos
funcionales de la L-alanina están relacionados con los de L-gliceraldehído por
conversiones químicas sencillas. Así, el grupo carboxilo de la L-alanina ocupa la misma
posición respecto al carbono quiral que el grupo aldehído del L-gliceraldehído puesto que
un aldehído puede convertirse fácilmente (oxidarse) en un grupo carboxilo (Lenhniger,
2003).
18
De acuerdo a Nelson & Cox (2003), los aminoácidos se pueden clasificar según su grupo
R. El tema se puede simplificar agrupando los aminoácidos en cinco clases principales
basadas en las propiedades de sus grupos R, en especial su polaridad, o tendencia a
interaccionar con el agua a pH biológico (cerca de 7.0). La polaridad de los grupos R
varía enormemente desde totalmente apolar o hidrofóbico (insoluble en agua) a
altamente polar o hidrofílico (soluble en agua). Dentro de cada clase existen variaciones
de polaridad, tamaño y forma de los grupos R.
19
El de la cisteína es un caso especial porque su polaridad, aportada por el grupo
sulfihidrilo, es muy discreta. La cisteína es un ácido débil y puede establecer enlaces de
hidrogeno débiles con el oxígeno o el nitrógeno. La asparagina y la glutamina son las
amidas de otros dos aminoácidos que también se encuentran en las proteínas, el
aspartato y el glutamato, respectivamente, a las cuales la asparagina y la glutamina se
hidrolizan fácilmente por ácido o base (Nelson & Cox, 2003).
20
Los aminoácidos son metabolizados a compuestos solubles e insolubles durante la
translocación lateral y ascendente. La conversión metabólica durante la translocación
significa que los aminoácidos son tomados por células vivas y liberados después de la
conversión a distintos compuestos. Los factores que determinan mayormente el alcance
de la toma de solutos podrían ser las interacciones iónicas entre los sitios de captación,
de células vivas y los solutos, el pH de la solución y la selectividad base de membranas
en las vías de translocación (Katto., Makoto & Sadao 1985, citado por Roberto, 1999).
Por otro parte Azcón-B & Talón (2008), mencionan que el en el fluido del floema se
encuentra gran número de aminoácidos. Los más abundantes son el glutamato y el
aspartato, bien en forma libre o como amidas (glutamina y asparagina). Ésta es también
la forma en que se transporta el nitrógeno en el xilema de muchas especies. El contenido
en aminoácidos del fluido del floema varía ampliamente según la especie y el estado de
desarrollo. Normalmente, su concentración oscila entre el 0.2 y el 0.5 %, pero durante la
senescencia de las hojas puede aumentar hasta el 5 %.
Según PROALAN®, el estrés se origina por el cambio de cualquier factor ambiental, que
actúe sobre el vegetal afectando a la respuesta bioquímica y fisiológica de los mismos,
pudiendo provocar daños y lesiones, ocasionalmente irrecuperables.
21
En general, las situaciones de estrés originan en el vegetal una serie de cambios
fisiológicos compensatorios que van encaminados a mantener las condiciones vitales del
organismo.
Según Larcher (1987), citado por PROALAN®, menciona que el estrés es una reacción
de presión interna que resulta de fuerzas externas. Hay tres fases en la dinámica del
estrés:
El tipo de los factores que afectan a los vegetales divide el estrés en dos grupos. Uno es
el estrés abiótico. Alteración en el metabolismo celular, inducido por factores no
infecciosos como:
Por otra parte, BIONET® ha observado que en situaciones de estrés la planta tiende a
acumular aminoácidos libres como mecanismo de defensa, tal acumulación repercute en
una menor dotación de aminoácidos para la síntesis de proteínas. Si en estas
condiciones existe un aporte exterior compensatorio de aminoácidos, las plantas se
encontrarán en mejores condiciones para reanudar su crecimiento.
22
Efectos de los aminoácidos en las plantas:
Es el uso actual más difundido de los aminoácidos, ya sea para mitigar los efectos de las
altas o las bajas temperaturas. Para las altas temperaturas: la L-prolina promueve la
retención de mayor cantidad de agua en el citoplasma de las células vegetales. El ácido
glutámico refuerza la permeabilidad de la membrana citoplasmática ante el estrés
hídrico. La L-serina actúa sobre las acuaporinas (proteínas especializadas) que regulan
la entrada de agua en la planta a nivel celular aun cuando existan limitaciones para
hacerlo, mientras que la L-valina mantiene la integridad de la membrana celular. Bajas
temperaturas: una de las respuestas de la planta es acumular aminoácidos hacia los
puntos débiles, razón por la cual se trasladan los aminoácidos libres por el floema para
que se acumulen en donde la planta los requiere. El principal aminoácido es la L-prolina,
cuya función es ayudar a reducir el daño por congelación (INTAGRI® 2018).
23
4.10.7 Relación proteína estrés
Se ha identificado que situaciones de estrés por altas temperaturas desencadenan una
cascada de señales que activan la expresión de genes y la síntesis de “proteínas del
estrés”, algunas específicas del estrés por calor (“heat-shock proteins”, HSPs), que
estabilizan la estructura de proteínas y enzimas y están involucradas en la protección del
aparato fotosintética y la estabilidad de las membranas. Las HSPs juegan un papel
preventivo al proteger a las proteínas y enzimas de su desnaturalización, actúan como
“estabilizadores” que protegen y reparan la estructura espacial de las proteínas, y así
permiten el funcionamiento de las células durante los episodios de estrés por
temperaturas elevadas (Tradecorp®, 2017).
Los aminoácidos libres (son aquellos que no están ligados a ningún otro, tienen un peso
molecular menor y por ello son asimilados con mayor facilidad), actúan como promotores
del crecimiento y dan vigor en periodos críticos de los cultivos: arboles recién
trasplantados, en floración y cuajado de frutos. También ayudan a la recuperación de
daños producidos por el estrés hídrico, heladas, granizos y plagas (Agriculturers, 2017).
24
4.10.9 Hidrolisis de proteínas
Es el proceso químico de rotura de los enlaces peptídicos que unen los aminoácidos de
una proteína. Se llama “hidrolizado” al producto final de un proceso de hidrólisis. Es una
mezcla de aminoácidos libres y péptidos de diferente tamaño, en función del proceso de
hidrólisis.
La hidrólisis es una reacción química que únicamente incorpora agua; pero necesita la
presencia de un catalizador. El tipo de catalizador o “agente hidrolítico” define la hidrólisis
(PROALAN®, s/f).
25
Ácido aspártico
Ácido glutámico
Alanina
Arginina
Asparagina
Fenilalanina
26
botánicos, que pueden tener uso farmacéutico o bien son utilizadas por las plantas
como sistema de defensa.
La activación de la ruta del ácido shikímico está muy relacionada con el
aminoácido fenilalanina.
Glicina
Posee una gran acción quelante, por lo que un alto contenido en este aminoácido
favorece la asimilación de los nutrientes. Es recomendable su aplicación al suelo
para facilitar la absorción de nutrientes bloqueados en él o incorporarlo al tanque
de fertirrigación (siempre que el pH del mismo sea compatible con el propio
aminoácido).
La glicina también actúa mejorando el proceso de floración y fecundación, por lo
que también tiene interés utilizarlo en los momentos previos a la floración.
Como el aminoácido glicina está muy relacionado con la clorofila y la fotosíntesis,
su aplicación también fomenta el desarrollo y salida de nuevos brotes.
Hidroxiprolina
Histidina
Isoleucina
Leucina
27
Lisina
Metionina
Prolina
Serina
Tirosina
Treonina
28
Triptófano
Valina
Cisteína
29
Este catalizador puede ser una enzima, aminoácidos de hidrólisis enzimática, que
también son proteínas, pero con funciones específicas, o mediante un agente ácido,
aminoácidos hidrólisis ácida, que no se controla el proceso de obtención o rotura de las
proteínas tan adecuadamente como los otros. Como son “agentes energéticos” y se
asimilan muy bien por la planta, producen un gran estímulo sobre los vegetales,
aumentando su construcción celular (más tallos, más hojas, más raíces) y fomentando
una salida de estrés al que esté sometido (Agromática, s/f).
30
Según Agriculturers (2017), las plantas son capaces por si solas de sintetizar los
aminoácidos que necesitan a partir del nitrógeno, carbono, oxigeno e hidrogeno a través
de un proceso bioquímico muy complejo y que consume gran cantidad de energía. Es
por ello, que su aplicación directa permite un importante ahorro de energía y en mejor
funcionamiento de la planta en etapas críticas donde requiere gran cantidad de estos
elementos para realizar funciones básicas.
Según Agriculturers (2017), menciona que los aminoácidos L-glicina y L-acido glutámico
son agentes quelantes muy efectivos.
31
Tienen un efecto quelante, lo cual contribuye a evitar la toxicidad de los metales
pesados, mejorando la absorción y el transporte de los micronutrientes.
Los aminoácidos parecen ser más importantes para el transporte del Cobre. (White et
al., 1981; Mullins et al., 1986). En la solución del suelo, hasta el 98 % del Cobre se
encuentra generalmente quelatado por compuestos orgánicos de bajo peso molecular
(Hogdson et al., 1966). Entre estos compuestos se encuentran aminoácidos y ácidos
fenólicos, así como ácidos polihidroxicarboxílicos (Perea, E., Ojeda, D., Hernández, A.,
Ruiz T., & Martínez R., 2010).
También Mullins et al., (1986) menciona que los aminoácidos y otros ácidos orgánicos
de bajo peso molecular, son utilizados por las plantas, de forma natural, en la adsorción
y asimilación de calcio y magnesio, así como de micronutrientes (citado por Lucena,
2009).
4.10.13.1 Cisteína
La cisteína ejerce un papel esencial en la defensa de las plantas a situaciones de estrés
como la presencia de metales pesados en los suelos (Gotor, 2013). De esta forma, una
planta con una mayor acumulación de cisteína, es capaz de atrapar el metal pesado
como el cadmio mediante la formación de uniones con los grupos tiólicos (sulfhidrilo) de
las cisteínas y así acumular el metal en una forma menos tóxica (Gotor, 2013).
Según Azcón-B & Talón (2008), las proteínas de bajo peso molecular, pero con un
elevado número de aminoácidos azufrados (cisteína principalmente), que forman
complejos con metales pesados (Cd, Cu y Pb), constituyéndose así en uno de los
principales mecanismos de defensa de las plantas frente a estos agentes, tóxicos en su
mayoría.
4.10.13.2 Glicina
Posee una gran acción quelante, por lo que un alto contenido en este aminoácido
favorecer la asimilación de los nutrientes. Es recomendable su aplicación al suelo para
facilitar la absorción de nutrientes deficientes o incorporarlo al tanque de fertirrigación
(siempre que el pH del mismo sea compatible con el propio aminoácido) Agromática (s/f).
32
4.10.14 Los aminoácidos como precursores de fitohormonas
4.10.14.1 Auxinas
Esa sustancia activa fue identificada como ácido indolacético (AIA), la hormona auxínica
por excelencia, que deriva del aminoácido triptófano (Red Agrícola, 2017). El triptófano
es el precursor del ácido indolacético. Diferentes grupos de plantas emplean distintas
rutas para producir AIA a partir del triptófano. Además, algunas plantas, tales como el
maíz (Zea mays) emplean distintas rutas según su estado de desarrollo. La auxina se
produce en los ápices de los coleóptilos de las gramíneas y en los meristemos apicales
de los tallos y, en menor proporción, de las raíces. También se encuentra en los
embriones, en cantidades notables, y en las hojas jóvenes, flores y frutos. El L-triptófano
es precursor de las síntesis de hormonas relacionadas con la floración y cuajado de fruto
(Agriculturers, 2017).
4.10.14.2 El etileno
Son precursores o activadores de fitohormonas y sustancias de crecimiento. Por
ejemplo, la L-metionina es precursor del etileno y otros factores de crecimiento
(Agriculturers, 2017).
El etileno deriva del aminoácido metionina y es una de las moléculas orgánicas más
simples ya que consta de sólo dos carbones (CH2=CH2). Hoy el etileno se conoce como
la hormona de la maduración por excelencia, pero también de la abscisión (Red Agrícola
2017).
Los dos precursores principales del etileno son la metionina y el ATP, los cuales pasan
por una serie de reacciones químicas gracias a enzimas como la Adenosin-Metionina
sintetasa o las ACC sintetasas (1-aminociclopropano-1-carboxilato sintasa), dando como
compuesto final el gas etileno. Esta biosíntesis de etileno se puede dar en situaciones
de estrés, en altas concentraciones de auxina, durante la senescencia de las flores y la
maduración de frutos (Rodríguez, 2016).
33
V. MATERIALES Y METÓDOS
34
Cuadro 5. Características del material vegetal
Jitomate variedad Condor de Ahern Seeds
Tipo: Roma indeterminado
Variedad: Condor
Proveedor: BHN
Peso promedio por tamaño: 120 -160 g / G & XG
Resistencia / tolerancia: Verticillium / Marchitez por fusarium / Virus del mosaico del
tomate / Virus del bronceado del tomate.
Cultivo: Media tecnología
Roma indeterminado con buena cobertura de planta y maduración de frutos
intermedia, buenos rendimientos de producción, de paredes muy gruesas, tamaños
grandes y extra grandes y con excelente firmeza y vida de anaquel.
Composición: aminoácidos (8.58 %, equivalente a 100 g L -1), boro más zinc (1.72 %,
equivalente a 20 g L-1).
Presentación: Líquido.
Características principales: MASKIO, es un bio-estimulante a base de aminoácidos de
origen vegetal y micronutrimentos. Activa las funciones bioquímicas en las células para
acelerar la fotosíntesis y redistribuir la nutrición en las plantas.
La formulación contiene sulfato de zinc, octa borato de sodio como fuentes de zinc y
boro, respectivamente y aminoácidos de origen vegetal, provenientes de soya.
35
Recomendaciones de uso
Cultivo mL L-1de agua Observaciones
Berenjena, Brócoli, 2-3 Realizar 2-3 aplicaciones foliares,
Calabacita, Chile, Chile realizando la primera antes de la
bell, Coliflor, Jitomate, floración y las posteriores con
Melón, Tomate de intervalo de 10 días cada una.
Cáscara, Pepino, Sandía.
Ajo, Cebolla, Col, Col de 2-3 Realizar 3 aplicaciones foliares en
Bruselas, Lechuga. desarrollo vegetativo con intervalo
de 10 días entre cada una.
36
5.5 Listado de los tratamientos
En el Cuadro 6, se presentan en resumen los tratamientos considerados en la presente
investigación.
Cuadro 6. Tratamientos evaluados en la producción de jitomate en Chapingo, México.
Tratamiento Dosis Manejo
1. TESTIGO --------- Se adicionó una fertilización edáfica normal (FEN),
suficiente para la nutrición del cultivo de JITOMATE.
2. “MASKIO” + 2 mL L-1 Se adicionó al follaje en tres ocasiones, la primera
FEN antes de la floración y las posteriores con una
separación de 10 días entre ellas.
37
5.6 Unidad experimental y parcela útil
Para esta evaluación se utilizó un invernadero con una superficie de 1200 m2, con una
capa de plástico y ventanas laterales como se puede observar en la Figura 4. El manejo
fue en camas con sustrato tezontle, además de acolchado plástico y cintilla con goteo a
cada 10 cm.
Las camas tuvieron un ancho de 1.20 m, la longitud fue de 21.5 m, la separación entre
camas fue de 60 cm, la plantación se realizó a dos hileras por cama con separación de
60 cm, la separación entre plantas fue de 40 cm, se ocupó 3 camas y media, con un área
total de 135.5 m2 incluyendo la separación entre camas. La densidad de población fue
de 2.7 plantas por m2 y con un total de 376 plantas.
Cama Cama Cama Cama Cama Cama Cama Cama Cama Cama
20 19 18 17 16 15 14 13 12 11
NORTE
Chile Jito- Jito- Melón Jito- Jito- Jito- Jitomate Jitomate Chile
mate mate mate mate mate Prof. Prof.
Marco Marco Marco Orduña Orduña
A. S. L. A. S. L. A. S. L.
T7 T6 T1
T5 T2
T4 T3
SUR
Cama 1 Cama 2 Cama 3 Cama 4 Cama 5 Cama 6 Cama 7 Cama 8 Cama 9 Cama
10
Figura 4. Croquis del invernadero y ubicación del área del experimento (marcado de
color amarillo).
38
5.7 Croquis de distribución de bloque y tratamientos.
La distribución de los bloques y tratamientos fue con el diseño experimental bloques al
azar con cuatro repeticiones como se puede observar en la Figura 5.
NORTE
T7 T6 T1
R1 R1 R1
R2 R2
R2
R3 R3
R3 R4 R4
T5 T2
R4 R1 R1
R2 R2
R3 R3
R4 R4
T4 T3
R1 R1
R2 R2
R3 R3
R4 R4
SUR
39
Cuadro 7. Variables respuesta evaluados en el crecimiento y desarrollo del jitomate.
Número total de frutos por planta. Se incluyen los frutos comerciales y no comerciales.
Peso promedio de frutos. Esta variable se obtuvo al dividir el peso total de fruto por
planta, entre el número de frutos por planta.
Peso total de frutos. Esta variable se obtuvo con el peso total de frutos por planta en
cada uno de los cortes.
40
5.11 Manejo del cultivo
En el Cuadro 8 se pueden observar las actividades y fechas en que estas se realizaron,
de acuerdo a las necesidades del cultivo.
Preparación de la cama
Control de malezas
41
Fertilización
Riego
Tutoreo y polinización
Se colocó las rafias para realizar el tutoreo después del trasplante, la rafia se colocó
aproximadamente a 3 m de altura, posteriormente a los 20 días después del trasplante
se le colocó a las plantas anillos de plástico en las base apoyándose con la rafia, se
revisó frecuentemente el crecimiento para evitar daños por caída o por el mismo peso
de la planta acomodándolas en la rafia para su sostén.
42
La polinización se realizó con el mismo movimiento al realizar el tutoreo, aunque se
complementaba con mover el alambre en donde se amarró la rafia para una mayor
polinización, esto se realizaba, entre las 9 y 10 de la mañana.
El principal problema de plagas que se tuvo fue la mosquita blanca (Bemisia tabaci), el
cual se realizó la aplicación de plaguicida Biodi®e (Argemonina), con tres aplicaciones al
follaje cada 5 días, con una dosis de 3mL L-1 de agua. La aplicación se realizó con una
mochila manual de 20 L.
Podas
La primera poda se realizó tres semanas antes del primer corte, quitando dos o tres hojas
a partir de la base de la planta, una vez descubierto el primer racimo próximo a cosechar,
esto solo se realizó en dos ocasiones. Cuando se realizó la poda también se retiraron
los brotes, para mantener la estructura a un solo tallo, evitando problemas en cuando a
la densidad de follaje.
Los resultados obtenidos del análisis de varianza y el cuadro de medias de cada una de
las variables en el corte 1, se encuentran anotadas en cuadro A-1 del APÉNDICE. En el
Cuadro 10 se encuentra el resumen de los análisis de varianza realizados para cada
uno de los componentes del rendimiento.
43
Cuadro 10. Análisis de varianza para el corte 1.
Parámetro CM Fc Pr > Fc CV ( % )
Número total frutos por planta 0.213 2.88 0.038 16.37 %
Número de frutos comerciales 0.257 2.78 0.0433 19.38 %
Peso total de frutos 2072.675 3.06 0.0304 21.85 %
Peso promedio de frutos 141.584 1.95 0.1270 11.97 %
Pr>Fc: si este valor es menor a α=0.05 entonces la prueba de F es significativa; CM: Cuadrado medio; CV: coeficiente
de variación.
Cuadro 11. Medias del número total de frutos por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
44
2.5
Número total de frutos por
a ab
2 ab ab ab ab
1.5 b
planta
0.5
0
MASKIO (4 LIDAMINO (1 LIDAMINO (2 MASKIO (3 TESTIGO MASKIO (2 LIDAMINO
ml/L) ml/L) ml/L) ml/L) ml/L) (4 ml/L)
Tratamientos
Cuadro 12. Medias del número de frutos comerciales por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
45
2.5
0.5
0
MASKIO (4 LIDAMINO (1 MASKIO (3 LIDAMINO TESTIGO MASKIO (2 LIDAMINO (4
ml/L) ml/L) ml/L) (2 ml/L) ml/L) ml/L)
Tratamientos
Cuadro 13. Medias del peso total de frutos por planta, para cada uno de los tratamientos
evaluados.
46
160 a
Peso total de frutos por a
140 ab ab
ab ab
120
100
planta (g)
80
b
60
40
20
0
LIDAMINO MASKIO (4 MASKIO (3 LIDAMINO (2 TESTIGO MASKIO (2 LIDAMINO (4
(1 ml/L) ml/L ml/L) ml/L) ml/L) ml/L)
Tratamientos
Cuadro 14. Medias del peso promedio de frutos por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
47
100
Peso promedio de frutos
a a a a a
80 a
a
por planta(g)
60
40
20
0
LIDAMINO TESTIGO MASKIO (3 LIDAMINO MASKIO (4 MASKIO (2 LIDAMINO
(1 ml/L) ml/L) (2 ml/L) ml/L) ml/L) (4 ml/L)
Tratamientos
Los resultados obtenidos del análisis de varianza y el cuadro de medias de cada una de
las variables en el corte 2, se encuentran anotadas en cuadro A-2 del APÉNDICE. En el
Cuadro 15 se encuentra el resumen de los análisis de varianza realizados para cada
uno de los componentes del rendimiento.
Parámetro CM Fc Pr > Fc CV ( % )
Número total frutos por planta 0.069 0.60 0.72 16.99 %
Número de frutos comerciales 0.148 1.10 0.39 19.44 %
Peso total de frutos 1861.080 1.35 0.28 21.99 %
Peso promedio de frutos 334.159 2.39 0.07 13.97 %
Pr>Fc: si este valor es menor a α=0.05 entonces la prueba de F es significativa; CM: Cuadrado medio; CV: coeficiente
de variación.
48
El tratamiento MASKIO (4 mL L-1) se posiciona en la parte superior de la tabla
manteniendo la tendencia del primer corte. Por otra parte, MASKIO (3 mL L-1) fue menor
que el testigo, con un decremento del 9.5 %.
Cuadro 16. Medias del número total de frutos por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
2.5 a a a
Número total de frutos por
a a a
2 a
1.5
1
planta
0.5
0
Tratamientos
Figura 10. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el total de frutos por planta para
el segundo corte.
49
Número de frutos comerciales por planta. Corte 2.
Cuadro 17. Medias del número de frutos comerciales por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados. Corte 2.
2.5 a
comerciales por planta
Número total de frutos
a a a
2 a a
a
1.5
1
0.5
0
Tratamientos
50
Peso total de frutos por planta. Corte 2.
Cuadro 18. Medias del peso total de frutos por planta para cada uno de los tratamientos
evaluados.
250
Peso total de frutos por
a a a
200 a a a
150 a
planta (g)
100
50
0
Tratamientos
Figura 12. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso total de frutos para el
segundo corte.
51
Peso promedio de frutos por planta. Corte 2.
Cuadro 19. Medias del peso total de frutos por planta para cada uno de los tratamientos
evaluados.
100 a a a a a a
Peso promedio de frutos
80 a
60
por planta (g)
40
20
0
Tratamientos
Figura 13. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso promedio de frutos para
el segundo corte.
52
6.3 Componentes del rendimiento. Corte 3
Los resultados obtenidos del análisis de varianza y el cuadro de medias de cada una de
las variables en el corte 3, se encuentran anotadas en cuadro A-3 del APÉNDICE. En el
Cuadro 20 se encuentra el resumen de los análisis de varianza realizados para cada
uno de los componentes del rendimiento.
53
Cuadro 21. Medias del número total de frutos por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
3 a a a a
Número total de frutos por
2.5 a
2 a a
1.5
1
planta
0.5
0
Tratamientos
Figura 14. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el número total de frutos para el
tercer corte.
54
El tratamiento más bajo fue MASKIO (2 mL L-1) con un decremento del 31.6 %, respecto
al testigo.
Cuadro 22. Medias del número de frutos comerciales por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
3 a a a
comerciales por planta
2.5 a a
Número de frutos
2 a a
1.5
1
0.5
0
Tratamientos
55
Hubo una ligera recuperación de la dosis LIDAMINO (4 mL L-1), con respecto a los cortes
1 y 2, aunque no son significativas.
Cuadro 23. Medias del peso total de frutos por planta para cada uno de los tratamientos
evaluados.
350
a
Peso total de frutos por
300 ab ab
250
ab ab ab
200
planta (g)
ab
150
100
50
0
Tratamientos
Figura 16. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso total de frutos para el
tercer corte.
56
Por otra parte, la dosis MASKIO (4 mL L-1) fue inferior en un 22.7 % respecto al testigo.
Cuadro 24. Medias del peso promedio de frutos por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
120 a ab abc
Peso promedio de frutos por
40
20
0
Tratamientos
Figura 17. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso promedio de frutos para
el tercer corte.
Los resultados obtenidos del análisis de varianza y el cuadro de medias de cada una de
las variables para el total de cortes, se encuentran anotadas en cuadro A-4 del
APÉNDICE. En el Cuadro 25 se encuentra el resumen de los análisis de varianza
realizados para cada uno de los componentes del rendimiento.
57
Cuadro 25. Análisis de varianza para el total de cortes.
Parámetro CM Fc Pr > Fc CV ( % )
Número total frutos por planta 0.753 1.85 0.146 10.73 %
Número de frutos comerciales 0.634 1.01 0.450 14.19 %
Peso total de frutos 12337.410 1.45 0.250 18.47 %
Peso promedio de frutos 204.853 2.57 0.056 10.82 %
Pr>Fc: si este valor es menor a α=0.05 entonces la prueba de F es significativa; CM: Cuadrado medio; CV: coeficiente
de variación.
Cuadro 26. Medias del número total de frutos por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
58
7 a a a a
Número total de frutos 6 a a a
5
4
por planta
3
2
1
0
Tratamientos
Figura 18. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el número total de frutos para
los tres cortes.
Cuadro 27. Medias del número de frutos comerciales por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados.
59
7 a a a a a a
comerciales por planta
6 a
5
Número de frutos
4
3
2
1
0
Tratamientos
Cuadro 28. Medias del peso total de frutos por planta para cada uno de los tratamientos
evaluados. Total de cortes.
60
700 a
Peso total de frutos por 600 a a a a
500 a a
400
planta (g)
300
200
100
0
Tratamientos
Cuadro 29. Medias del peso promedio de frutos por planta para cada uno de los
tratamientos evaluados. Total de cortes.
61
100 a a a
Peso promedio de frutos por 90 a a a
80 a
70
60
50
40
planta (g)
30
20
10
0
Tratamientos
Figura 21. Efecto de producto MASKIO y LIDAMINO en el peso promedio de frutos para
los tres cortes.
Una de las posibles causas que no hubo diferencias significativas en el corte 2 y total de
cortes, fue que durante la aplicación de los tratamientos no se usó algún adherente o
surfactante, ya que estos mejoran la absorción de los aminoácidos por las plantas. Por
otra parte en menor medida pudo afectar los números de cortes realizados en este caso
de tres cortes, de haberse incrementado a cinco cortes, se pudiera obtener mayores
diferencias significativas.
62
VII. CONCLUSIONES
Con la base a la información discutida anteriormente, se presenta las siguientes
conclusiones, de acuerdo al número de cortes realizados.
III. Para el corte 2 y total de cortes no hubo efectos significativos respecto al testigo,
para las variables del rendimiento evaluadas, ni del producto MASKIO ni de
LIDAMINO.
IV. El uso de las dosis (4 mL L-1), (3 mL L-1) del producto MASKIO y LIDAMINO (1
mL L-1) produjeron efectos positivos en al menos un componente del rendimiento.
63
VIII. LITERATURA CITADA
Agromática. (s/f). Guía de uso de los aminoácidos en las plantas. (07/09/2018). Sitio web.
https://www.agromatica.es/aminoacidos-en-las-plantas/.
Azcón-B, J. & Talón, M. (2008). Fundamentos de fisiología vegetal. Madrid: Ed. McGraw
Hill Interamericana de España. pp. 72-90.
Florido Bacallao, Marilyn, & Bao Fundora, Lourdes. (2014). Tolerancia a estrés por déficit
hídrico en tomate (Solanum lycopersicum L.). Cultivos Tropicales, 35(3), 70-88.
Recuperado en 25 de septiembre de 2018, de
http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S025859362014000300008&lng=e
s&tlng=es.
64
Gotor, C. (2015). El poder de la cisteína. (07/09/2018). Sitio web.
http://digital.csic.es/bitstream/10261/41022/1/P%C3%A1ginas%20de%20EVENTOS310
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http://www.cia.ucr.ac.cr/pdf/Memorias/Memoria%20Curso%20Fertilizaci%C3%B3n%20
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INTAGRI. (2018). Aminoácidos para la Bioestimulación de Cultivos Hortofrutícolas. Serie
Nutrición Vegetal. Núm. 111. Artículos Técnicos de INTAGRI. México. p. 4.
INTAGRI. 2017. Bioestimulantes en Nutrición, Fisiología y Estrés Vegetal. Serie
Nutrición Vegetal. Artículos técnicos de INTAGRI. México. 4 p.
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67
IX. ANEXOS
I
26 7 2 1.25 1.25 64.25 51.75
II
24 6 4 1.75 1.75 148.00 84.500
III
22 6 2 1.25 1.25 90.00 73.500
IV
20 5 4 6.25 5.75 506.00 80.47
A- 1. Corte 1.
Análisis de varianza para la variable “número total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la
primera cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 1.27678571 0.21279762 2.88 0.0380
Bloques 3 0.79464286 0.26488095 3.58 0.0343
Error 18 1.33035714 0.07390873
Total 27 3.40178571
CV ( % )=16.37016
Análisis de varianza para la variable “número de frutos comerciales” en los 7 tratamientos evaluados, para
la primera cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 1.54464286 0.25744048 2.78 0.0433
Bloques 3 0.26785714 0.08928571 0.96 0.4318
Error 18 1.66964286 0.09275794
Total 27 3.48214286
CV ( % )=19.38121
V
Análisis de varianza para la variable “peso total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la primera
cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 12436.05357 2072.67560 3.06 0.0304
Bloques 3 3714.30357 1238.10119 1.83 0.1784
Error 18 12197.69643 677.64980
Total 27 28348.05357
CV ( % )=21.85571
Análisis de varianza para la variable “peso promedio de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la
primera cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 849.5077714 141.5846286 1.95 0.1270
Bloques 3 57.2362714 19.0787571 0.26 0.8512
Error 18 1306.044229 72.558013
Total 27 2212.788271
CV ( % )=11.97335
Cuadro de medias para el primer corte.
VI
A-2
Análisis de varianza para la variable “número total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la
segunda cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 0.41964286 0.06994048 0.60 0.7268
Bloques 3 1.29241071 0.43080357 3.70 0.0312
Error 18 2.09821429 0.11656746
Total 27 3.81026786
CV ( % )=16.99512
Análisis de varianza para la variable “número de frutos comerciales” en los 7 tratamientos evaluados, para
la segunda cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 0.88839286 0.14806548 1.10 0.3982
Bloques 3 1.88169643 0.62723214 4.67 0.0139
Error 18 2.41517857 0.13417659
Total 27 5.18526786
CV ( % )=19.4434
Análisis de varianza para la variable “peso total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la
segunda cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 11166.48214 1861.08036 1.35 0.2877
Bloques 3 5318.73214 1772.91071 1.28 0.3101
Error 18 24856.26786 1380.90377
Total 27 41341.48214
CV ( %)=21.9977
VII
Análisis de varianza para la variable “peso promedio de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la
segunda cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 2004.959888 334.159981 2.39 0.0710
Bloques 3 132.439660 44.146553 0.32 0.8138
Error 18 2516.980034 139.832224
Total 27 4654.379581
CV ( % )=13.97741
VIII
A-3
Análisis de varianza para la variable “número total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la
tercera cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 4.55803571 0.75967262 3.87 0.0117
Bloques 3 0.37500000 0.12500000 0.64 0.6008
Error 18 3.53125000 0.19618056
Total 27 8.46428571
CV ( %)=19.37787
Análisis de varianza para la variable “número de frutos comerciales” en los 7 tratamientos evaluados, para
la tercera cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 3.57589286 0.59598214 1.85 0.1456
Bloques 3 1.68526786 0.56175595 1.74 0.1940
Error 18 5.79910714 0.32217262
Total 27 11.06026786
CV ( % )=26.59895
Análisis de varianza (resumen) para la variable “peso total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados,
para la tercera cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 66612.66964 11102.11161 4.08 0.0093
Bloques 3 12736.05357 4245.35119 1.56 0.2337
Error 18 48982.2589 2721.2366
Total 27 128330.9821
CV ( % )= 24.70207
IX
Análisis de varianza para la variable “peso promedio de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, para la
tercera cosecha.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 3185.877700 530.979617 5.08 0.0033
Bloques 3 516.191517 172.063839 1.64 0.2144
Error 18 1883.089764 104.616098
Total 27 5585.158981
CV ( % )=11.14563
X
A-4
Análisis de varianza para la variable “número total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, suma de
los tres cortes.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 4.52232143 0.75372024 1.85 0.1465
Bloques 3 1.63169643 0.54389881 1.33 0.2953
Error 18 7.35267857 0.40848214
Total 27 13.50669643
CV ( % )=10.73195
Análisis de varianza para la variable “número de frutos comerciales” en los 7 tratamientos evaluados,
suma de los tres cortes.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 3.80803571 0.63467262 1.01 0.4506
Bloques 3 3.00892857 1.00297619 1.59 0.2260
Error 18 11.33482143 0.62971230
Total 27 18.15178571
CV ( %)=14.19759
Análisis de varianza para la variable “peso total de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, suma de los
tres cortes.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 74024.46429 12337.41071 1.45 0.2504
Bloques 3 14802.58929 4934.19643 0.58 0.6356
Error 18 153104.4107 8505.8006
Total 27 241931.4643
CV ( % )=18.47441
XI
Análisis de varianza para la variable “peso promedio de frutos” en los 7 tratamientos evaluados, promedio
de los tres cortes.
FV GL SC CM Fc Pr > F
Tratamientos 6 1229.119243 204.853207 2.57 0.0564
Bloques 3 40.600600 13.533533 0.17 0.9155
Error 18 1436.239500 79.791083
Total 27 2705.959343
CV ( % )= 10.82719
Cuadro de medias para la suma de los tres cortes.
Tratamiento Número total Número de frutos Peso total Peso promedio
de frutos” comerciales de frutos de frutos
1 Testigo 6.1250 a 5.7500 a 553.44 a 89.995 a
2 “MASKIO” + FEN 2 mL L-1 5.3750 a 4.9375 a 489.88 a 87.273 a
XII