U.A.E.

CULTIVO DE ROTIFEROS

DIANA CAJAMARCA, LISSETH HIDALGO,

VALERIA SARMIENTO, DIANA RODRIGUEZ
4TO AÑO A
 INDICE

1. INTRODUCCION ......................................................................................... 2
2. CARACTERÍSTICAS DIAGNOSTICAS ....................................................... 3
3. CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA ................................................................ 3
4. FORMA Y FUNCIÓN ................................................................................... 5
5. ECOLOGÍA .................................................................................................. 8
6. CULTIVO DE ROTIFEROS ......................................................................... 9
6.1. CARACTERÍSTICAS DEL CULTIVO .................................................... 9
6.1.1. MEDIO DE CULTIVO ..................................................................... 9
6.1.2. RECIPIENTES. ............................................................................... 9
6.1.3. ILUMINACIÓN Y TEMPERATURA ............................................... 10
6.1.4. AIREACIÓN .................................................................................. 10
6.1.5. DENSIDAD ................................................................................... 10
6.1.6. ALIMENTACIÓN ........................................................................... 11
6.1.7. SIEMBRA Y MANTENIMIENTO ................................................... 11
7. COSECHA Y CAMBIOS DE RECIPIENTE ................................................ 12
8. Precauciones en el cultivo de rotíferos ....................................................... 15
9. Condiciones generales de cultivo ............................................................... 16
10. ENRIQUECIMIENTO DE ROTIFEROS .................................................. 17
10.1 Tanque de enriquecimiento ................................................................. 17
10.2 Calidad del agua ................................................................................. 18
10.3 Densidad de rotíferos .......................................................................... 18
10.4 Aireación ............................................................................................. 18
10.5 Temperatura........................................................................................ 18
10.6 Preparación del alimento..................................................................... 18
10.7 Alimentación ........................................................................................ 18
11. IMPORTANCIA DEL CULTIVO DE Brachionus plicatilis ........................ 18
 1. INTRODUCCION

Los rotíferos son organismos microscópicos, acuáticos y semiacuáticos, más

conocidos en la limnologia por ser componentes del plancton
(microplancton) aunque están muy bien representados en las comunidades
litorales y también forman parte del zoomicrobentos. La mayoría es de vida
libre, hay pocos parásitos, generalmente son solitarios, pero hay especies que
forman colonias de variable tamaño.

Son organismos muy diversos en formas que se caracterizan por dos

elementos particulares como son la corona de cilios de la cabeza y el trophi
o estructura masticatoria. Constituyen comparativamente un pequeño filum
pero son muy importantes en los ambientes continentales a causa de su tasa
reproductora, su habilidad para ocupar rápidamente los nichos vacantes,
constituyendo más del 30% de la biomasa planctónica, son recicladores
eficientes de la materia orgánica y responden rápidamente a los cambios
ambientales.Característicamente poseen un órgano ciliado anterior
denominado corona o troco cuyo movimiento da nombre al grupo ya que
aparenta la rotación de ruedas microscópicas (rota = rueda, ferre = los que
llevan). El registro fósil más antiguo del filo data del Eoceno (55,5 a 33,9
millones de años).La gran mayoría ocupa aguas continentales ya que son
comparativamente muy pocas las especies marinas. Colonizan ambientes con
distinto grado de salinidad, pH y temperatura, tolerando muchos de ellos
concentraciones muy bajas de oxígeno.
En general se reproducen por partenogénesis, producen machos por muy
breves períodos, en condiciones desfavorables dan lugar a huevos
de resistencia; hay casos comprobados de huevos que han eclosionado 20
años después .Actualmente se considera que existen unas 2000 especies de
pequeños animales (50-2000 µm).. Los rotíferos dulceacuícolas se reúnen en
dos grandes Sub-clases Monogonta y Bdelloidea. La Sub- clase Monogonta es
la más importante en los ambientes acuáticos continentales, reúne 95 géneros
y 1600 especies. Aunque hay especies marinas y algunas terrestres, la gran
mayoría son dulceacuícolas siendo uno de los grupos animales dominante en
el zooplancton de ecosistemas límnicos.
 2. CARACTERÍSTICAS DIAGNOSTICAS
 Metazoos triblásticos (ecto, meso y endodermo)
 Protostomados (blastoporo forma la boca)
 Pseudocelomados (remanente del blastocele embrionario, cavidad
pseudocele)
 Simetría bilateral
 No segmentados
 Cuerpo formado por un número fijo de células (eutelia)
 Sistema nervioso formado por ganglios anteriores y número variable
de nervios. Órganos de los sentidos en forma de penacho o manchas
oculares
 Sistema digestivo completo, regionalizado. Faringe modificada en
un mástax muscular.
 Sistema excretor formado por protonefridios
 Ausencia de sistema circulatorio y respiratorio
 Presencia de corona ciliada anterior con funciones alimenticia y
locomotora.

3. CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA
Los rotíferos se clasifican en 4 clados:

Clase Seisonidea. Simbiontes de crustáceos marinos

Clase Bdelloidea. De vida libre o simbiontes, mayormente marinos

Clase Monogononta. De vida libre o sésiles, solitarios o coloniales,

mayoría límnicos
“Clase” Acantocephala. Exclusivamente parásitos de vertebrados e
invertebrado
Bdelloidea Rotaria

Philodina
Collotheca
 Asplanchna Ascomorpha

4. FORMA Y FUNCIÓN
Los rotíferos son animales pequeños de entre 50 y 2000 µm (1 µm equivale a 1
milésima de mm) de longitud. Presentan gran diversidad de formas que se
corresponden con los estilos de vida (flotadores, nadadores o sésiles) pero
generalmente son alargados en forma de saco o cilíndricos (Figura 1)
Figura 1. (A-D) Distintas especies de rotíferos que ilustran la diversidad de
formas del grupo.

En el cuerpo de un rotífero en general se pueden distinguir tres regiones: la

anterior identificada por la corona ciliada o troco, el tronco donde se alojan la
mayoría de los órganos internos y el pie provisto de dedos y glándulas
adhesivas para la fijación (Fig.2). La corona o troco, órgano ciliado
característico de los rotíferos, a través del movimiento de los cilios
interviene en la alimentación y la locomoción.

Corona ciliada o tronco

Mástax

Tronco

Pie

Figura 2. Esquema de la anatomía de un rotífero

La epidermis es sincitial y suele estar engrosada formando una cubierta

protectora (lóriga) que en las formas sésiles puede formar una cutícula en
forma de tubo donde se aloja el individuo. La loriga normalmente está
ornamentada con rebordes, espinas y apéndices articulados. Por lo general
son trasparentes aunque algunos pueden adoptar la coloración de su aparato
digestivo.
El tubo digestivo es completo y posee estructuras especializadas. La presencia
de una faringe muscularizada denominada mástax (Fig. 2) provista de piezas
quitinizadas (trophi) es una característica distintiva del grupo. El mástax
participa en la captura y trituración del alimento y por consiguiente la forma de
los trophi varía según los distintos hábitos alimenticios (suspensívoros,
depredadores)
Las estrategias reproductivas varían entre las clases de rotíferos:

Clase Seisonidea: Dioicos (sexos separados) y se reproducen sexualmente

Clase Bdelloidea: Se reproducen exclusivamente por partenogénesis sin

meiosis: óvulos diploides sin fecundar se desarrollan en hembras. Por
esta razón no se conocen machos!! (Partenogénesis: forma de reproducción
basada en el desarrollo de óvulos no fecundados. Pueden ser óvulos haploides
(un único juego de cromosomas) cuando ocurre meiosis o diploides (2 juegos
cromosómicos) si la gametogénesis ocurre sin meiosis).

Clase Monogononta: Dioicos con dimorfismo sexual: las hembras son más
grandes y diploides y los machos pequeños, haploides y degenerados.
Presentan partenogénesis cíclica en el cual el ciclo asexual es dominante sobre
el sexual, por lo que los machos aparecen estacionalmente. Se reproducen
sexualmente solamente luego de ser estimulados por señales ambientales
específicas como una alta densidad poblacional, cambios en la cantidad o tipo
de alimento, fotoperiodo o temperatura. Durante estos ciclos se producen 2
tipos de huevo: amícticos y mícticos. Los primeros tienen una cubierta
delgada, se desarrollan inmediatamente por partenogénesis sin meiosis y sólo
producen hembras; en condiciones favorables pueden producirse varias
generaciones de esta manera. Cuando ocurre algún cambio en las condiciones
ambientales, se origina una generación en que las hembras ponen huevos
haploides (ocurre meiosis durante la gametogénesis) que si no son
fecundados se desarrollan en machos. Si son fecundados se forman huevos
latentes diploides con cascaras gruesas, resistentes a la deshidratación y otras
condiciones adversas, que permiten sobrevivir hasta la siguiente estación
favorable. Estos requieren un periodo de reposo (diapausa obligatoria) y
pueden permanecer durante largos periodos de tiempo antes de desarrollarse
en hembras. Probablemente esta estrategia reproductiva sea una adaptación a
la vida en agua dulce, especialmente en lagunas y arroyos temporales.

“Clase” Acantocephala: Dioicos con dimorfismo sexual.

5. ECOLOGÍA
En general son de vida libre pelágicos (nadadores o flotadores) o bentónicos
(reptadores), pero existen especies sésiles que se fijan al sustrato a través del
pie y especies simbiontes de organismos de mayor tamaño o parásitas. La
mayoría de las especies son solitarias, aunque algunas pueden formar colonias
agregados de individuos solitarios (colonias) que resultan de una reproducción
partenogenética. Los Rotíferos son componentes importantes en los
ecosistemas de agua dulce a causa de su alta tasa reproductora y su habilidad
para colonizar rápidamente diferentes microhábitats, constituyendo más del
30% de la biomasa planctónica. Son eficientes recicladores de la materia
orgánica y responden rápidamente a los cambios ambientales. A pesar de su
pequeño tamaño, debido a sus grandes poblaciones, juegan un rol
fundamental en las redes tróficas. Alimentándose de partículas detríticas de
pequeño tamaño, de bacterias, de componentes del fitoplancton y de otros
organismos del zooplancton, hacen disponible materia y energía para niveles
tróficos superiores que de otra manera no sería utilizable. Son consumidos por
pequeños invertebrados depredadores y por larvas de peces, hecho que tiene
utilidad productiva ya son alimento de muchos crustáceos y peces de interés
comercial. Al ser sensibles a cambios ambientales, muchas especies de
rotíferos son utilizadas como bioindicadores de contaminación o polución del
agua. Adicionalmente se cultivan en laboratorio de manera relativamente
simple y son sensibles a muchos poluentes, habiendose convertido en
herramientas importantes en pruebas ecotoxicológica
 6. CULTIVO DE ROTIFEROS
En el proceso de cultivo de rotíferos se observa dos fases distintas: el
mantenimiento de un stock (cultivo en volumenes pequeños) y el cultivo masivo
(cultivo en gran volumen).

6.1. CARACTERÍSTICAS DEL CULTIVO

6.1.1. MEDIO DE CULTIVO

El cultivo de rotífero se realiza en agua de mar filtrada a 0,45 ó 1µ, (o agua

dulce preparada, más recomendado para cultivos pequeños) a la que se le
añade un 10% de fitoplancton. Las especies de fitoplancton más utilizadas son
Chlorella sp, Tetraselmis suecica e Isochrysis galbana, aunque han informado,
que hay empresas, (acuario) en el que los alimentan con cápsulas de spirulina
y les va bien.
Respecto a la spirulina, (microalga con un valor nutricional elevadísimo)…
digamos que este microalga nos puede solucionar muchos problemas de cara
a la alimentación de animales filtradores de fitoplancton, bien sea rotíferos,
artemia, daphnia, copépodos.. es una solución bastante práctica .
A pesar de que el cultivo se realiza generalmente en agua de mar, el rotífero se
adapta bien a salinidades inferiores, del orden de un 20 - 25%o, y hay
cultivadores de grandes volúmenes (acuicultura) que prefieren mantenerlo a
esta salinidad.

6.1.2. RECIPIENTES.
Puede ser una garrafa, un bidón, una botella, un fonil gigante… en eso está la
necesidad.
Los recipientes de cultivo es mejor que sean redondos o cuadrados con las
esquinas redondeadas (para evitar que existan zonas mal aireadas) aunque lo
que sí sería casi fundamental es que tengan el fondo cóncavo o con inclinación
hacia el centro, (cónicos) para facilitar las labores de limpieza, que son muy
importantes.
Lo ideal es que se les ponga una válvula en el fondo a modo de purga o salida
central con el fin de limpiar diariamente los restos de levadura y rotíferos
muertos, evitando así que se descompongan dentro del tanque.
Aconsejo (por ejemplo para pequeña escala) poner una garrafa de agua de 5L
a la que se le ha cortado el fondo y colocada invertida con una válvula en la
tapa de la misma, de ese modo… todo lo que caiga al fondo (restos de comida,
rotíferos muertos… suciedad) irá a parar a la tapa, pudiendo extraerse
fácilmente abriendo la válvula.

6.1.3. ILUMINACIÓN Y TEMPERATURA

La iluminación debe ser constante y no muy intensa, siendo suficiente colocar
un fluorescente encima del “tanque”.
La temperatura debe oscilar entre los 19-21 °C. Temperatura ambiente irá bien.

6.1.4. AIREACIÓN
Los recipientes de cultivo deben estar dotados de aireación, consistentes en
tubos o mangueras perforadas, para que las burbujas sean lo más finas
posibles, generando una corriente suave.
La aireación no debe ser muy intensa ya que golpearía los rotíferos contra las
paredes del recipiente, pero ha de cumplir con el fin de mantener el rotífero, la
levadura y el fitoplancton en suspensión.
Un truco es poner un aireador de manguera perforada (tipo acuarios)
adaptándola al fondo circular del recipiente, justo unos cuatro dedos de altura
por encima de la válvula de purga de este modo, se mantendrá todo el cultivo
en suspensión y lo que caiga al fondo… se saca por la válvula.

6.1.5. DENSIDAD
La densidad varía según el tamaño del cultivo, normalmente una densidad de
cultivo buena para alimentar muchos alevines oscila entre 100-150 rot/ml,
aunque hay que tener un dato en cuenta: para que un cultivo vaya
prosperando, debe haber un porcentaje de hembras con huevo superior al
20%. De esta manera estaremos seguros de un cultivo con un índice de
individuos alto.
6.1.6. ALIMENTACIÓN
Brachionus plicatilis, es un rotífero filtrador que se alimenta de fitoplancton y,
por tanto, puede cultivarse con algas verdes unicelulares como alimento. El
rotífero, con su corona ciliada, produce corrientes en el cultivo y dirige hacia su
interior las células de fitoplancton. Estas son trituradas por el mástax y pasan al
estómago, que toma color verde oscuro en los rotíferos bien alimentados.
Cuando el cultivo de rotífero se hace en volúmenes grandes, se hace inviable
una alimentación exclusiva de fitoplancton. Entonces se usa como
complemento al alimento levadura de panificación (Saccharomyces cerevisiae),
añadiéndola a razón de 0,75 - 1 g por millón de individuos y día, y
departiéndola en, al menos, cuatro tomas. La levadura se disuelve en agua
dulce y se homogeniza mediante una batidora.
La alimentación con levadura simplifica mucho el cultivo, pero tiene el
inconveniente de que los rotíferos alimentados con levadura de panificación
tienen un escaso valor nutritivo. Esta es la razón por la cual se recomienda que
se recurra a este método para aumentar la población.

6.1.7. SIEMBRA Y MANTENIMIENTO

El procedimiento consiste en ir colocando el rotífero en recipientes
progresivamente más grandes, bajo las condiciones que antes se mencionaron,
hasta llegar a los volúmenes deseados, esto va en los planes de cada uno.

Dada la dificultad para conseguir cepas de fitoplancton, siempre es bueno

mantener una cepa pura de pequeña escala en la nevera, y removerla de
vez en cuando, ya que si el cultivo se te contamina o se te estropea,
tienes de dónde iniciar de nuevo. El hecho de meterlo en la nevera es para
ralentizar el metabolismo de las algas, de manera que lo tienes casi
“parado”.
El sistema más comúnmente usado es sembrar el rotífero en el nuevo
recipiente y esperar unos días hasta que duplique o triplique su número,
momento en el que se procede a extraerlo y pasarlo a un recipiente mayor. La
siembra en el nuevo recipiente ha de efectuarse con mucho cuidado,
observando de mantener las mismas características de temperatura, aireación
e iluminación que tenía en el recipiente anterior.
El agua, si es de mar se debería filtrar a 0,45 ó 1 µ, (por eso de evitar posibles
protozoos y animalitos indeseables) y se añade el fitoplancton. (Es conveniente
que el agua esté más o menos verde, aunque no demasiado, ya que el exceso
de alimento estresa a los rotíferos y no se tendría una buena producción).
La densidad inicial ideal oscila entre 100 - 150 rotíferos/ml como mínimo.
En los recipientes de cultivo de rotíferos han de realizarse periódicamente una
serie de tareas: muestreo, alimentación y limpieza.
Para el muestreo se procede a la toma de una muestra de distintos puntos del
tanque a fin de hacer el contaje del rotífero. Sería ideal contar con un
microscopio de poco aumento o con una lupa electrónica.

Diariamente se procede a purgar el tanque, abriendo la válvula central, para

extraer del fondo los restos de levadura, rotíferos muertos, etc.

7. COSECHA Y CAMBIOS DE RECIPIENTE

La cosecha debe oscilar entre un 15 y un 20%.
Para realizar la extracción, se toma un salabre con un diámetro de malla de
62µ y se apoya sobre un barreño o un cubo (yo usaba un trozo de tubería de
PVC, poniendo el salabre en una punta y dejando caer el agua hacia el
sumidero por la el otro extremo. Esta operación debe realizarse lentamente y
con mucho cuidado, evitando que el rotífero se quede en seco o que se aplaste
contra la malla. Antes de utilizar este rotífero como alimento de larvas,
conviene lavarlo bien (con agua preparada nueva).
Es muy importante lavar los rotíferos y cualquier animal antes de dárselo a las
larvas, porque en el tanque, bien por la suciedad, o por el acumulo de residuos
en el fondo se pueden criar infecciones, protozoos u otros animalitos
indeseables que se comen los huevos de los rotíferos y/o pueden dañar a las
larvas de nuestros peces. Tengan mucho cuidado con el tema de la limpieza,
sea el cultivo de lo que sea, he visto cultivos con densidades altísimas de
cientos de litros echarse a perder en un fin de semana por no purgarse los
tanques..
Una vez extraída la cosecha del recipiente de cultivo, hay que rellenarlo hasta
su volumen inicial con agua y fitoplancton. Se debe observar que el agua
añadida está a la misma temperatura que el agua presente en el recipiente, e
introducirla muy lentamente para no remover el fondo. La proporción de agua-
fitoplancton a añadir es de 4:1.
Cuando por cualquier motivo existe un deterioro del medio de cultivo (elevada
concentración de amoníaco, disminución del oxígeno, al remover el fondo, etc)
o una variación brusca de los parámetros ambientales, el cultivo se vuelve
inestable. Esto se traduce en una disminución del movimiento del rotífero,
transparencia del mismo por falta de alimentación, disminución de la tasa de
reproducción (baja el porcentaje de hembras con huevo) e, incluso, una
disminución de la densidad de la población. En este momento, se hace
aconsejable una renovación total del medio de cultivo, cambiando los rotíferos
a un nuevo recipiente.

La técnica para ese cambio es la misma que se utiliza para la cosecha del
rotífero: se prepara previamente el nuevo recipiente con las condiciones de
agua, temperatura, iluminación y aireación que se describieron en las
características del cultivo y, a continuación, se siembra el rotífero a la densidad
ya indicada.
Contaje de rotíferos en un recipiente de cultivo
Para realizar el contaje, se toma 1 ml de un vaso de muestra, (es importante lo
de la aireación homogénea porque así puedes hacerte una idea bastante fiable
de la cantidad que puede haber si está bien disperso) y se deposita en una
placa transparente.
Consejo: para poder contarlos es necesario que estén quietos=muertos. Lo
ideal es echarles unas gotitas de alguna solución a base de yodo (por ejemplo
betadine) esto sería bueno por dos motivos, los mata rápidamente, facilitando
el contaje, y el color del betadine tiñe los rotíferos, de modo que son más
visibles, ya que si no se han alimentado cuesta más verlos porque son
transparentes. (Bajo ningún concepto le den estos rotíferos del contaje a las
larvas, ni siquiera lavándolos con agua).
Hay que mirar el número de rotíferos totales y el número de hembras con
huevo.
Una vez los hayamos contado, procedemos a hacer los cálculos.
Cómo hacer los cálculos:
Para saber los individuos totales que tenemos:

Densidad = Nº de individuos (totales) / Volumen total (ml)

Para saber los individuos totales se multiplica el número de rotíferos que

hemos contado en 1 ml, (por ejemplo) por la cantidad de mililitros totales de
cultivo.
Vamos a suponer que en total tenemos 150 rot/ml.

Sabiendo la cantidad que necesitamos, por ejemplo, para un acuario de cría de

10L necesitaremos:

5 rot…………1ml

X rot ………10.000ml
X= 10.000 x 5 / 1ml; X=50.000

Necesitaremos 50.000 rotíferos en nuestro acuario de cría, con lo cual, vamos

a ver cuanta cantidad de cultivo tenemos que filtrar para saber la cantidad de
rotíferos que les damos a los peques.

Para saber cuántos tenemos que filtrar:

Volumen= nº de individuos / Densidad
Esto, en otras palabras:
Nº de individuos = cuantos rotíferos necesito. (p. ej: 50.000)
Densidad = densidad a la que están los rotíferos en mi recipiente. (p. ej: 150
rot/ml)
Con lo cual, 50.000 ÷ 150 = 333´3.
Con lo cual, tendremos que filtrar 333´3 ml de nuestro cultivo.
Cabe mencionar que estos cálculos son aplicables a la artemia, copépodos,
daphnia…etc.

8. Precauciones en el cultivo de rotíferos

El cultivo de rotíferos es bastante delicado, por lo que se hace necesario tomar
una serie de precauciones para que se mantenga lo más estable posible. Entre
ellas, se pueden citar:
• Procurar no mover los puntos de aireación ni la intensidad de los mismos, ya
que se removerían los sedimentos del fondo.
• Introducir el agua con cuidado, evitando que caiga bruscamente y remueva el
fondo.
• Mantener constantes la temperatura e iluminación, evitando variaciones
bruscas de las mismas.
• Al cosechar el rotífero, evitar que se golpee con las paredes del salabre o que
quede en seco.
• Lavar bien el rotífero con agua limpia en los salabres. Para ello, es importante
no cargar los salabres con demasiados rotíferos.
• No retirar la aireación durante las cosechas o el cambio, ya que el rotífero
tendería a subir a la superficie.
 9. Condiciones generales de cultivo
•Los rotíferos se pueden cultivar en agua de mar o agua preparada a 20-25‰ y
a una temperatura de 19-21 °C.
• Los recipientes deberán estar dotados de iluminación débil y aireación no muy
intensa.
• La densidad inicial oscila entre 100 - 150 rotíferos/ml.
• Las tareas son:, contaje, alimentación y limpieza.
• La alimentación es con fitoplancton. Pero para aumentar la población en
momentos concretos, se le administra junto con el fito un poco de levadura a
razón de 0,75 - 1 gr por cada millón de rotíferos y día.
• La cosecha es la extracción de la producción de rotíferos de un recipiente.
• La cantidad de rotífero que se cosecha oscila entre 15 - 20%. Tras la cosecha
se rellena el recipiente con agua nueva y fitoplancton.
• Un cultivo de rotífero se cambia cuando se deteriora el medió. Entonces él
rotífero pierde movilidad, no come y el porcentaje de hembras con huevo
desciende del 20%.
Cultivo masivo de rotíferos
Utilizando los rotíferos remanentes de las fiolas se inocula tanques de 50
litros, se alimenta con algas hasta conseguir después de 4 días una densidad

promedio de 150 R.ml-1. Luego serán transferidos a tanques de 200 litros,

500 litros hasta llegar a 5,000 litros, por un lapso de 4 en cada fase. El
alimento a utilizar varía de acuerdo a las necesidades, pudiendo ser éste
algas, levaduras, combinación de los mencionados o levadura manipulada.
De acuerdo al alimento se obtienen diferentes densidades de rotíferos (150

800 R.ml -1 proporcionando algas y levadura manipulada respectivamente;

la levadura de pan, posiblemente complementado con algas da
resultados intermediarios).
La técnica implantada de producción de rotíferos, se basa en el tipo de cultivo
de recolección completa (cultivo “batch”). Consiste en inocular el cultivo y
una vez que se ha alcanzado densidad máxima se realiza la cosecha
completa. Para alimentar con algas, inicialmente se realiza un bloom
fitoplanctónico en agua de mar (35 ppt), se pone dichas algas en los tanques
de producción de rotíferos y se inocula los animales a una densidad de 10-

30 R.ml-1, para después de 4 días cosechar todo el volumen. De cada

cosecha se utilizará el 80% para alimentar las larvas y el remanente 20%
sirve como inóculo de un nuevo tanque. Cuando se administra levadura de
pan ó levadura manipulada se trabaja con salinidad de 20 ppt, salinidad en
que se observa mayor reproducción de los rotíferos. La densidad inoculada es

de alrededor de 200 R.ml-1 y la ración diaria usualmente utilizada de

levadura de pan es de 1 g.10-6 de rotíferos mientras que de la levadura

manipulada se utiliza 300 - 550 mg.10 -6 de rotíferos. Esta técnica de cultivo

tiene dos variantes: una consiste en el mantenimiento de un volumen
constante de cultivo con un incremento en la densidad de rotíferos o el
mantenimiento de una densidad constante de rotíferos con un incremento en
el volumen de cultivo.

10. ENRIQUECIMIENTO DE ROTIFEROS

Igual que en la Artemia , donde la técnica es ampliamente conocida, se

puede enriquecer el rotífero con una variedad de componentes activos.

El componente activo debe ser presentado en forma accessible lo que

significa en el caso del rotífero: partículas con tamaño inferior a 20 m o
gotas de aceite emulsificadas en el agua (diámetro alrededor de 1 m).

Las condiciones de enriquecimiento son similares a las mencionadas para la

Artemia . Se puede ejecutar el processo al final de un cultivo masivo (en el
medio de cultivo mismo) o en un medio fresco después de la cosecha del
cultivo masivo. Por lo tanto el tanque de enriquecimiento, la calidad del
agua, la aireación y la temperatura son idénticos a los del cultivo masivo.

10.1 Tanque de enriquecimiento

 tanques cilindro-cónicos (de preferencia) ó con fondo plano
10.2 Calidad del agua
 agua desinfectada (clorinada y consecutivamente neutralizada con
tiosulfato de sodio)
 el agua pude ser agua de mar normal ( 35 ppt) o diluida con agua dulce
hasta 18-22 ppt)

10.3 Densidad de rotíferos

 400-600 rotíferos.ml-1

10.4 Aireación
 moderada, sin embargo evitando que la concentracion de oxígeno baje
hasta 5 ppm

10.5 Temperatura
 25-30 °C

10.6 Preparación del alimento

 bien licuado con agua de manera que el producto de enriquecimiento se
presente en forma de partículas individualizadas con un tamaño máximo
de 20 m o en forma de glóbulos aceitosos emulsificados con diámetro
de 1 m

10.7 Alimentación
 se agrega el producto de enriquecimiento en 2 raciones iguales de 150
ppm (0.15 g.l-1)
 primera ración: 6 horas antes de la cosecha
 segunda ración: 3 horas antes de la cosecha

11. IMPORTANCIA DEL CULTIVO DE Brachionus plicatilis

Las principales ventajas que ofrece el cultivo de Brachionus plicatilis son:

rangos amplios de T° y S%, y diferentes alternativas prácticas de cultivo
masivo, su pequeño tamaño (100–300μ), lo que permite a las larvas de peces y
crustáceos ingerirlos cuando todavía no pueden ingerir nauplios de artemia, su
fácil y barata alimentación con diferentes especies de fitoplancton, levaduras y
dietas artificiales. Su alta velocidad de reproducción bajo condiciones óptimas
de cultivo, pudiendo duplicarse la población en menos de 24 horas, lo que
permite obtener altas densidades.

Para el buen manejo de la población de rotíferos en cultivo, es recomendable

conocer la concentración adecuada de alimento y la tasa de reproducción y
fecundidad, factores que nos indican el buen desarrollo del cultivo, que si son
bien controlados nos permitirán el establecimiento de cultivos continuos y
densos para su uso como alimento vivo.