DMG - Aislamiento, Caracterizacion y Analisis Funcional Del Gen Thpg1
DMG - Aislamiento, Caracterizacion y Analisis Funcional Del Gen Thpg1
DMG - Aislamiento, Caracterizacion y Analisis Funcional Del Gen Thpg1
-5Zf(+) digerido con EcoRV y al que se le han aadido dos residuos de timidina
en los extremos 3, esto permite la clonacin de productos de PCR generados por
polimerasas que aaden un nucletido adenina en los extremos 3; contiene un sitio de
clonacin multiple dentro de la regin codificante de la enzima -galactosidasa, lo que
permite identificar los clones recombinantes por el color y por su resistencia a la
ampicilina (Figura 10); posee un origen de replicacin monocatenaria del fago f1.
Materiales y Mtodos
39
- pSIL (Sousa, 2004) (5257 pb). Plsmido utilizado en el silenciamiento de la expresin
gnica del gen Thpg1 de T. harzianum CECT 2413. Se construy mediante la clonacin
sucesiva de diferentes fragmentos en el vector pBluescript SK(+). Contiene el promotor
del gen ta de T. harzianum, un fragmento de 159 pb correspondiente a uno de los
intrones de la secuencia genmica de T. harzianum T34 y el terminador del gen de la
celobiohidrolasa 2 (cbh2) de T. reesei T59 (Figura 10).
- pJL43b1 (Gutirrez y Martn, no publicado) (4488 pb). Plsmido utilizado para la
transformacin de protoplastos de T. harzianum. Contiene el promotor del gen
gliceraldehido 3-P-deshidrogenasa A (gpdA) de Aspergillus nidulans, el terminador del
gen que codifica la citocromo oxidasa 1 (cyc1) de S. cerevisiae y el gen de resistencia a
la fleomicina (ble) de Streptoalloteichus hindustanus (Figura 10).
- pBI121 (Chen, 2003) (14758 pb). Plsmido utilizado para la transformacin de A.
tumefaciens C58C1. Es un vector binario derivado de pBI19 y pBI221. Este plsmido
contiene el gen que codifica la -glucuronidasa (GUS) flanqueado por el promotor 35S
del virus del mosaico de la coliflor (CaMV) y el terminador del gen que codifica la
nopalina sintasa (NOS) de A. tumefaciens. El gen que codifica la neomicina
fosfotransferasa II (NPTII) permite seleccionar los transformantes por su resistencia a la
kanamicina. Esta regin delimitada por el borde derecho (RB) e izquierdo (LB),
constituye el T-DNA que se integrar en el genoma de A. thaliana (Figura 10).
- pGEM-fThpg1 y pGEM-rThpg1 (3464 pb). Vectores derivados de pGEM-T en los
que se subclon un fragmento de 440 pb del gen Thpg1 y su secuencia invertida,
respectivamente. Estos vectores se utilizaron como intermediarios en la construccin del
vector pSIL-Thpg1.
- pSIL-Thpg1 (6139 pb). Este vector se construy a partir del plsmido pSIL mediante
la insercin de dos fragmentos de 440 pb del gen Thpg1 en orientaciones invertidas.
Este vector se utiliz para llevar a cabo el silenciamiento del gen Thpg1 en T.
harzianum T34.
- pJL43b1-Thpg1 (7456 pb). Vector derivado de pJL43b1 en el que se subclon el
fragmento que comprende el promotor del gen ta, las secuencias invertidas del gen
Thpg1 separadas por uno de los intrones de T. harzianum T34 y el terminador del gen
cbh2 de T. reesei. El proceso de construccin del vector se detalla en el apartado 6.1.
- pGEM-Thpg1 (4170 pb). Vector derivado del vector pGEM-T en el que se subclon
el gen Thpg1 de T. harzianum T34. Se utiliz como intermediario en la construccin del
vector pBI121-Thpg1.
Materiales y Mtodos
40
- pBI121-Thpg1 (14011 pb). Vector derivado de pBI121 en el que se sustituy el gen
que codifica la protena GUS por la ORF completa del gen Thpg1 de T. harzianum T34.
Este vector se utiliz en la transformacin de A. thaliana mediada por A. tumefaciens.
El proceso de construccin del vector se detalla en el apartado 6.2.
Figura 10. Esquema de los vectores plasmdicos utilizados en este trabajo.
2.2. Vectores fgicos
-GEM
-11 (Promega) (43,0 kb). Este vector se utiliz para construir una genoteca de
ADN genmico de T. harzianum T34 (Lora y col., 1995). Los brazos de -GEM-11
(Figura 11) derivan del fago EMBL3, que acepta fragmentos de ADN exgeno de entre
9 y 23 kb. Est formado por tres regiones: brazo derecho (9,2 kb), brazo izquierdo (20,3
kb) y una regin central (13,5 kb), y presenta las siguientes caractersticas:
Un sitio de clonacin mltiple con sitios de reconocimiento para las enzimas
SalI, EcoRI y BamHI, entre otras.
Materiales y Mtodos
41
Los promotores fgicos SP6 y T7 situados uno en cada brazo (SP6, brazo
derecho; T7, brazo izquierdo).
Sitios para SfiI asimtricos flanqueando la regin de clonacin.
Figura 11. Esquema del bacteifago GEM
-11.
3. MEDIOS DE CULTIVO
Salvo que expresamente se indique otro mtodo, los medios se esterilizaron en
autoclave a 120C y 1 atm durante 20 minutos.
3.1. Medios de cultivo para bacterias y bacterifagos
- Medio Luria-Bertani (LB) (Miller, 1972). Se emple como medio general para el
crecimiento de E. coli.
Composicin:
NaCl 10 g
Bactotriptona 10 g
Extracto de levadura 5 g
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
Se ajust el pH a 7,5 con NaOH 1 M
Para medio slido se aadieron 15 g de agar por litro.
El medio se suplement con ampicilina (100 g/mL) para la seleccin de
bacterias portadoras de plsmidos con resistencia al antibitico. Para bacterias
portadoras de plsmidos con seleccin por color (-galactosidasa), el medio se
suplement con IPTG (25 M) y X-gal (50 g/mL). Para el crecimiento de bacterias
que van a ser infectadas por bacterifagos, el medio se suplement con maltosa 0,2%
(p/v) y sulfato magnsico 10 mM.
Materiales y Mtodos
42
- Medio NZY (Miller, 1972). Medio empleado para el crecimiento de la cepa de E. coli
LE392 infectada con bacterifagos, y posterior formacin de placas de lisis.
Composicin:
NZ Amina tipo A (Sigma) 10 g
NaCl 5 g
MgSO
4
7H
2
O 2 g
Extracto de levadura 5 g
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
Se ajust a pH 7,5 con NaOH
Para medio slido se aadieron 15 g de agar por litro.
Para medio de cobertera se aadieron 7 g de agarosa por litro.
- Medio SM. Medio empleado para el mantenimiento de los bacterifagos.
Composicin:
NaCl 5,8 g
MgSO
4
7H
2
O 2 g
Tris-HCl 1 M, pH 7,5 50 mL
Gelatina al 2% (p/v) 5 mL
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
- Medio SOC. Medio empleado para la recuperacin de A. tumefaciens despus de su
transformacin mediante electroporacin y para la preparacin de clulas competentes
de E. coli.
Composicin:
Bacto-triptona 20 g
Extracto de levadura 5 g
NaCl 0,50 g
KCl 0,19 g
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
Se ajust el pH a 7,5 y una vez autoclavado y fro se aadieron 2 g de
MgCl
2
.
6H
2
O y glucosa 20 mM filtrados a esterilidad.
3.2. Medios de cultivo para hongos
- CM. Empleado como medio lquido de crecimiento de Trichoderma para la posterior
preparacin de protoplastos.
Composicin:
Extracto de malta 5 g
Extracto de levadura 5 g
Glucosa 5 g
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
Materiales y Mtodos
43
- Patata dextrosa agar (PDA). Se emple como medio slido general para el
crecimiento de hongos.
Composicin:
Extracto de patata 20 g
Glucosa 20 g
Agar 20 g
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
Este medio se adquiri a Sigma, que lo presenta en forma de polvo, del que se
resuspendieron 39 g en 1 L de agua destilada.
- Caldo de patata dextrosa (Potato Dextrose Broth, PDB). Se emple como medio de
cultivo lquido general para el crecimiento de hongos.
Composicin:
Extracto de patata 20 g
Glucosa 20 g
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
Este medio fue adquirido a Sigma, que lo presenta en forma de polvo, del que se
resuspendieron 24 g en 1 L de agua destilada.
- MEA. Se emple como medio slido para el crecimiento de la cepa de B. cinerea
utilizada en este trabajo.
Composicin:
Peptona micolgica 10 g
Extracto de malta 20 g
Agar 15 g
H
2
O destilada c.s.p. 1 L
- Medio Mnimo (MM). Medio lquido de crecimiento de Trichoderma (Penttil y col.,
1987) que se utiliz para estudios de expresin.
Composicin:
KH
2
PO
4
15 g
Glucosa 20 g
Solucin de metales traza (*) 1 mL
Se ajust el pH a 5,5 con KOH 1M
H
2
O destilada c.s.p 1 L
Para los ensayos en medio slido se aadieron 15 g de agar por cada L de medio.
Materiales y Mtodos
44
(*) Solucin de metales traza preparada a una concentracin 1000X:
FeSO
4
.
7H
2
O 5 g/L
MnSO
4
.
H
2
O 1,6 g/L
ZnSO
4
.
H
2
O 1,4 g/L
CoCl
2
2 g/L
Una vez esterilizado en autoclave se aadieron: 20 mL de (NH
4
)
2
SO
4
250
mg/mL (esterilizado en autoclave), 4,1 mL de CaCl
2
1M (esterilizado por filtracin) y
2,4 mL de MgSO
4
1M (esterilizado en autoclave).
Este medio se utiliz en todos los casos para la obtencin de biomasa o de crecimiento (primera fase).
Para realizar los ensayos de expresin (segunda fase), la fuente de carbono y/o nitrgeno vari
dependiendo de las condiciones requeridas en cada caso.
- Medio TSA (Triptic Soy Agar). Este medio se utiliz en la seleccin de trasformantes
de Trichoderma. Se aadieron 30 g/L de triptic soy broth (TSB, Merck) y 15 g/L de
agar tcnico (Difco). Para regenerar los protoplastos se aadi sorbitol 1 M (USB,
Amersham). Este medio se suplement, cuando fue necesario, con fleomicina (200
g/mL) para la seleccin de transformantes.
- Agar-agua (AA). Este medio se emple para los ensayos de interaccin de T.
harzianum T34-tomate-patgeno. Se prepar a una concentracin de agar del 1%.
3.3. Medios de cultivo para plantas
- Medio Murashige y Skoog (MS) (Murashige y Skoog, 1962). Utilizado para la
germinacin de semillas de A. thaliana y de tomate. El medio se suplement, cuando
fue necesario, con kanamicina (50 g/mL) para la seleccin de las plantas
transformadas.
Composicin:
Medio MS bsico 4,9 g
Sacarosa 10 g
MES 500 mg
Agar 8 g
H
2
O destilada c.s.p 1 L
Una vez ajustado el pH a 5,7 con KOH se esteriliz en autoclave.
El medio MS bsico fue adquirido a Duchefa y lleva como componentes:
microelementos, macroelementos y vitaminas.
Para los cultivos de interaccin A. thaliana-Trichoderma (ensayos de microarrays) el medio MS se
prepar sin agar.
Materiales y Mtodos
45
4. CULTIVO DE LOS ORGANISMOS
4.1. Trichoderma
4.1.1. Recogida de esporas
Para la obtencin de esporas, Trichoderma se cultiv en medio PDA a 25-30C
durante 5-7 das, el tiempo suficiente para que la superficie de la placa estuviera
cubierta de esporas. stas se recogieron aadiendo 5 mL de agua destilada estril por
placa y raspando la superficie con una esptula. A continuacin, se filtr la suspensin
de esporas a travs de lana de vidrio para eliminar restos de micelio. Las esporas se
almacenaron a 4C hasta su uso.
En el caso de B. cinerea 26 el proceso fue similar al descrito para Trichoderma.
4.1.2. Cultivo para la obtencin de germnulas
Para la obtencin de germnulas (esporas que slo han desarrollado el tubo
germinativo), se inocularon en medio PDB esporas de Trichoderma a una concentracin
final de 10
6
esporas/mL, y se incubaron a 28C, durante 15 h, en agitacin (150 rpm).
Para recoger las germnulas se centrifug el micelio en condiciones estriles a 4.400
rpm, durante 10 minutos a 4C. Se lav el micelio tres veces con agua estril,
centrifugando cada vez, en las mismas condiciones. Por ltimo, el micelio se
resuspendi en, aproximadamente, 25 mL de agua destilada estril.
4.1.3. Cultivos para la extraccin de ADN
Se utilizaron matraces de 250 mL que contenan 100 mL de medio PDB,
inoculados con esporas de Trichoderma a una concentracin final de 10
6
esporas/mL,
que se incubaron a 28C durante 36-48 h, en agitacin (150 rpm). La biomasa obtenida
se recogi mediante filtracin por vaco a travs de papel de filtro. El micelio se lav
con agua destilada estril, se congel a -80C y se liofiliz durante unas 12 h,
conservndose a -20C hasta su utilizacin.
4.1.4. Cultivos para el anlisis de la expresin gnica
Estos cultivos se hicieron en dos fases. En la primera fase (preinduccin o
produccin de biomasa) se inocularon matraces de 1 L conteniendo 300 mL de MM
(Penttil y col., 1987) con glucosa al 2% (p/v), con esporas de Trichoderma a una
concentracin final de 10
5
esporas/mL. Se incubaron a 28C durante 36-40 h, en
agitacin (150 rpm). Transcurrido este tiempo, los cultivos se filtraron en condiciones
de esterilidad mediante vaco a travs de papel de filtro. Los micelios se lavaron con
Materiales y Mtodos
46
agua destilada estril, y se utilizaron para inocular los medios de induccin (segunda
fase). Estos medios se prepararon a partir del mismo MM (Penttil y col., 1987), en
ausencia de fuente de carbono (glucosa al 0%), y con ciertas modificaciones en las
condiciones nutricionales: presencia de glucosa al 2%, dficit de nitrgeno (usando una
concentracin 100 veces menor de sulfato amnico, 50 mg/L), cido poligalacturnico
(PGA) (Sigma) al 0,1 0,5%, pectina (Sigma) al 0,1 0,5%, planta de tomate al 1%,
paredes celulares de B. cinerea 26, R. solani 19 o P. ultimum 8 al 1%. Los diferentes
medios modificados se cultivaron a 28C y 150 rpm durante un tiempo variable, entre 4
y 24 h.
Para llevar a cabo extracciones de ARN (que se emplean en el anlisis de la expresin gnica), el
micelio obtenido se recogi por filtracin como se ha descrito para las preinducciones en el prrafo
anterior. A continuacin se congel inmediatamente en nitrgeno lquido y se liofiliz durante 12 h,
conservndose a -80C hasta su utilizacin.
Para el estudio de la actividad endopoligalacturonasa se recogieron los sobrenadantes filtrados de los
medios de induccin en todas las condiciones empleadas para realizar los estudios de expresin. Las
muestras se guardaron a -20C hasta su utilizacin.
Plantas de tomate: se utilizaron hojas pulverizadas en un mortero, en presencia
de nitrgeno lquido.
Paredes celulares de hongos: se prepararon segn el mtodo descrito por Fleet
y Phaff (1974) a partir del micelio obtenido tras el crecimiento de B. cinerea 26, R.
solani 19 o P. ultimum 8 en medio lquido PDB durante aproximadamente 7 das, segn
el hongo.
Para la obtencin de las paredes celulares se sigui el siguiente protocolo:
1. Se centrifug el medio con micelio autoclavado a 12000 g durante 10 minutos.
2. Se lav el precipitado dos veces con agua desionizada y se recogi la biomasa
centrifugando de nuevo.
3. Se resuspendi la biomasa en NaCl al 2% y se centrifug en las mismas
condiciones indicadas anteriormente desechando el sobrenadante.
4. Se lav el precipitado tres veces con NaCl al 2% y otras tres veces con agua
desionizada centrifugando cada vez.
5. El precipitado se sec parcialmente prensndolo con papel de filtro.
6. Se congel y liofiliz para eliminar el agua por completo.
7. La biomasa liofilizada se pulveriz en un mortero y se guard a temperatura
ambiente hasta su utilizacin.
Materiales y Mtodos
47
4.1.5. Cultivos para el anlisis de la expresin gnica en un sistema de tres
componentes
Para la obtencin de micelio de la cepa T34 se utiliz un sistema que simulaba
una interaccin T34-planta-patgeno in vivo. Para ello, se utilizaron plntulas de tomate
crecidas durante 15 das en placas de agar-agua (AA). Estas plntulas se infectaron con
una suspensin de B. cinerea 26, o con discos de agar (1 cm
2
) de R. solani 19 o
P.ultimum 8, crecidos previamente en placas de PDA. Despus de 4 das de incubacin
a 28C, se coloc sobre estas placas, un celofn (CM) con micelio de la cepa T34
previamente crecido durante 48 h a 28C en placas de PDA cubiertas con una membrana
de CM estril. Estas placas se inocularon con 100 L de una suspensin de 5.10
5
esporas/mL de la cepa T34. La membrana de CM utilizada permiti separar los
patgenos de la cepa T34 pero permitiendo el paso de micro y macronutrientes (Kullnig
y col., 2000).
4.1.6. Cultivos para la obtencin de protenas intracelulares en un sistema de tres
componentes
Para la obtencin de protenas intracelulares de la cepa T34 se utiliz un sistema
que simulaba una interaccin in vivo, Trichoderma-planta-patgeno. Se utiliz el mismo
sistema empleado para el anlisis de la expresin gnica descrito en el apartado anterior.
4.2. A. thaliana
4.2.1. Desinfeccin de semillas
Las semillas de A. thaliana ecotipo Col-0 se lavaron con una solucin de etanol
al 70% y Triton X-100 al 0,1%. Despus de 20 minutos en un agitador orbital, se retir
el sobrenadante y se aadi una solucin de leja al 2,5 % y Triton X-100 al 0,05%. Las
semillas se agitaron durante 10 minutos, se dejaron precipitar, se retir el sobrenadante,
y se lavaron tres veces con agua destilada estril. Las semillas se estratificaron a 4C
durante 3-5 das en ausencia de luz, como paso previo a su germinacin, con el fin de
sincronizar la germinacin y eliminar la dormicin.
4.2.2. Cultivo en placa
Una vez estratificadas las semillas, se retir el agua, se resuspendieron en una
solucin de agarosa estril al 0,15% y se germinaron en placas de MS durante dos
semanas. Estas placas se incubaron a 21-24C, con un fotoperiodo de 16 h de luz y 8 h
de oscuridad, y una humedad del 70%.
Materiales y Mtodos
48
4.2.3. Cultivo en maceta
Las plntulas de A. thaliana germinadas en placa se pasaron a macetas con una
mezcla de turba (Gramoflor GmbH y Co., Oldenburg, Alemania) y vermiculita en
proporcin 3:1. Las macetas se taparon con papel transparente para mantener una
atmsfera hmeda, y se incubaron durante 4-5 das en las condiciones antes descritas.
Una vez retirado el papel transparente, las plantas se incubaron durante dos meses en las
mismas condiciones, regndose cada tres das. Estas plantas se utilizaron para la
recogida de semillas y de material vegetal.
La mezcla de turba se compone de carbono orgnico al 35% y azufre orgnico al 0,3%, a un pH 6,0.
4.2.4. Cultivo en medio lquido
Para realizar el anlisis del transcriptoma de A. thaliana se prepararon 18
matraces de 10 mL (2 matraces por cada rplica) a los que se aadi 8 mL de medio MS
lquido. Cada matraz se inocul con 10
5
germnulas/mL (segn el protocolo de
obtencin descrito en el apartado 4.1.2) de la cepa T34, del transformante ePG5, o sin
inculo en el control negativo. La raz de A. thaliana se introdujo hasta la roseta en el
medio y sujeta al matraz con Parafilm
N
+
(Amersham). Para ello, el gel se
situ sobre un puente de papel de filtro Whatman
S-400-HR"
(Amersham), siguiendo las instrucciones del fabricante, con objeto de eliminar los
oligonucletidos no incorporados a la misma.
11.2.2. Marcaje no radiactivo de ADN
Para este marcaje se utilizaron dCTPs con digoxigenina unida. Para incorporar
estos dCTPs, se utiliz una reaccin de PCR y se incluy, en la mezcla de reaccin,
1/10 del volumen de nucletidos marcados del kit "PCR Dig Labeling Mix" (Roche).
El producto de la reaccin de marcaje no radiactivo fue sometido a electroforesis
en gel de agarosa y purificado a partir del gel, empleando el mtodo indicado en el
apartado 10.5.
11.2.3. Marcaje de ADNc con uracilo biotinilado
Para el marcaje del ADNc y posterior purificacin del ARNc, se emple el kit
comercial, "IVT" (Affymetrix), siguiendo las recomendaciones del fabricante.
Para favorecer la hibridacin y reducir las estructuras secundarias, el ARNc se
fragment en productos de 50-100 pb mediante una digestin, tal y como se indica en el
apartado 10.2.1.1.
11.3. Prehibridacin, hibridacin y lavados
11.3.1. Prehibridacin
La prehibridacin tiene como finalidad, adems de equilibrar la membrana con
el tampn de hibridacin, bloquear los sitios activos de la membrana donde no se han
unido los cidos nucleicos transferidos y que pueden unir inespecficamente los
fragmentos de ADN usados como sonda. En todos los casos, se llev a cabo una
prehibridacin en el tampn de hibridacin correspondiente durante un mnimo de 60
minutos. El volumen del tampn aadido no debe superar los 100 L por cm
2
de
membrana.
11.3.2. Hibridacin y lavados
La especificidad de la hibridacin depende tanto de las condiciones utilizadas
durante la incubacin (temperatura, concentracin de sales y detergentes en el tampn
de hibridacin) como de los lavados posteriores.
Materiales y Mtodos
75
11.3.2.1. Hibridacin con sondas radiactivas
Las hibridaciones de este tipo se realizaron a 65C durante, al menos, 12 h en el
tampn de hibridacin correspondiente, al que se le aadi la sonda desnaturalizada. La
desnaturalizacin se realiz por calentamiento durante 10 minutos a 100C y,
posteriormente, enfriamiento en hielo durante, al menos, 2 minutos.
Pasado este tiempo, se retir el tampn de hibridacin con la sonda y se procedi
a hacer los lavados. La membrana se someti a un lavado a temperatura ambiente
durante 1 minuto en tampn fosfato 0,04 M pH 7,2; SDS al 1%, seguido de dos lavados
en el mismo tampn a 65C durante 20 minutos.
Tampn de hibridacin para sondas radiactivas: tampn fosfato 0,5 M pH 7,2; SDS al 7%, EDTA 10
mM.
11.3.2.2. Hibridacin con sondas no radiactivas
Estas hibridaciones se llevaron a cabo tal y como se describe en el apartado
anterior pero empleando un tampn de hibridacin de composicin diferente.
Posteriormente, se retir el tampn de hibridacin con la sonda (se puede
guardar a -20C para ser reutilizado) y se procedi a hacer los lavados. La membrana se
someti a dos lavados con SSC 2X y SDS al 0,1% durante 15 minutos, el primero a
temperatura ambiente y el segundo a 65C. A continuacin, se realiz un lavado ms
con SSC 0,2X y SDS al 0,1% durante 15 minutos a 65C.
Tampn de hibridacin para sondas no radiactivas: para preparar 200 mL, se aadieron en este orden
148 mL de agua, 0,4 mL de SDS al 10%, 2 mL de sarcosina al 10% (p/v) y 50 mL de SSC 20X. Se
mantuvo la mezcla durante 5-10 minutos a 65C y se aadieron despus 2 g de "Blocking Reagent"
(Roche). Se calent y agit la mezcla durante 30-45 minutos a 65C y, posteriormente, se dej enfriar.
11.3.2.3. Hibridacin con sondas no radiactivas (GeneChip)
Se utiliz un "GeneChip Arabidopsis ATH1 Genome Array" (Affymetrix), que
fue hibridado con 15 g de ARNc fragmentado de las distintas muestras. Para llevar a
cabo la hibridacin, se utiliz el sistema GeneChip de Affymetrix siguiendo las
recomendaciones de la casa comercial. El sistema se compone de un horno de
hibridacin (permite realizar la hibridacin de un gran nmero de chips de manera
simultnea), una unidad de procesamiento (realiza el proceso de lavado de los chips,
junto con la inyeccin de una solucin de estreptavidina y anti-estreptavidina
biotinilada, SAPE), y un lser. En la Figura 15 se muestra el proceso completo de
hibridacin del chip.
Materiales y Mtodos
76
Figura 15. Esquema del proceso de marcaje e hibridacin del GeneChip Arabidopsis ATH1 de
Affymetrix.
11.4. Deteccin
11.4.1. Radiactiva
Tras llevar a cabo los lavados, las membranas se envolvieron en papel de
plstico transparente y se expusieron en un cassette BAS 2040 (Fujifilm) con pantalla
intensificadora Imaging Plate BAS-MS 2040 (Fujifilm) durante un tiempo, que se
determin de forma emprica para cada experimento, y la imagen se obtuvo usando un
sistema o equipo Bio-Imaging Analyzer BAS-1500 (Fujifilm). En caso necesario, para
cuantificar la intensidad relativa de las bandas obtenidas en experimentos de tipo
Northern se utiliz el programa ImageGauge v4.0 (Fuji Photo Film Co., Ltd.).
11.4.2. No radiactiva
La deteccin no radiactiva se realiz con anticuerpos frente a digoxigenina
conjugados con fosfatasa alcalina. El revelado de la actividad fosfatasa se llev a cabo
mediante una reaccin quimioluminiscente empleando el reactivo CDP-Star (Roche).
Para ello se sigui, con ligeras modificaciones, el siguiente protocolo que proporciona la
casa comercial:
1. Tras llevar a cabo los lavados, se trat la membrana con tampn de lavado
(washing buffer) a temperatura ambiente durante 5 minutos.
2. Se aadi sobre la membrana la solucin de bloqueo y se incub en agitacin a
temperatura ambiente durante 30 minutos.
3. Se aadi sobre la solucin anterior el anticuerpo AntiDIG-AP Fab fragments
(Roche) a una dilucin 1:20000 y se incub en agitacin a temperatura
ambiente durante 30 minutos.
4. Se hicieron dos lavados de 15 minutos con tampn de lavado.
Materiales y Mtodos
77
5. Se aadi el tampn de deteccin durante 3-5 minutos para equilibrar la
membrana.
6. Se retir el tampn y se aadi el reactivo CDP-Star (Roche), diluido 1:100 en
tampn de deteccin, sobre la membrana y se cubri la misma con un papel de
plstico transparente para facilitar la distribucin del reactivo por toda la
superficie de la membrana. Se incub 5 minutos en oscuridad.
7. Finalmente se expuso a una pelcula radiogrfica (Fujifilm) en un cassette EC-
DW (Fujifilm) durante 1-15 minutos y se revel.
Tampn maleico: NaCl 150 mM; cido maleico 100 mM, pH 7,5.
Tampn de lavado: Tween 20 al 0,3% (v/v) en tampn maleico.
Solucin de bloqueo: Blocking Reagent al 1% (p/v) en tampn maleico.
Tampn de deteccin: Tris-HCl 100 mM, pH 9,5; NaCl 100 mM.
11.4.3. No radiactiva (GeneChip)
La deteccin de la fluorescencia emitida por el chip se realiz con el sistema
Gene Array reader (Affymetrix). Los resultados fueron analizados con un paquete
informtico compuesto por el programa GCOS, que permite digitalizar los datos de
fluorescencia generados por el lser, y el programa Desktop Mining Solution (Micro DB
3.0, Data Mining Tool 3.0), que permite la identificacin de los genes inducidos y/o
reprimidos en cada experimento, mediante el uso de las bases de datos generales junto
con la base de datos de Affymetrix.
11.5. Reutilizacin de membranas
11.5.1. Hibridacin radiactiva
Con objeto de reutilizarlas, las membranas se limpiaron sumergindolas en una
solucin hirviendo de SDS al 0,2%, y se mantuvieron ah hasta que la solucin se enfri
a temperatura ambiente.
11.5.2. Hibridacin no radiactiva
Las membranas se sometieron al siguiente tratamiento para su reutilizacin:
1. Inicialmente se sumergieron en agua destilada estril y, a continuacin, se
realizaron dos lavados de 15 minutos con una solucin de NaOH 0,2 N y SDS al
0,1%.
2. Por ltimo, se mantuvieron durante, al menos, 10 minutos en SSC 2X.
Materiales y Mtodos
78
12. MANIPULACIN DE PROTENAS
12.1. Obtencin de protenas intracelulares
12.1.1. Condiciones de cultivo
Para la obtencin de protenas intracelulares de la cepa T34, sta se creci en
condiciones que simulaban una interaccin in vivo Trichoderma-planta-patgeno, tal y
como se describe en el apartado 4.1.6.
12.3.2. Concentracin y dilisis de las muestras
La obtencin de protenas intracelulares se realiz siguiendo el mtodo descrito
por Gorg y col. (2000), con ligeras modificaciones:
1. Se parti de aproximadamente 1 g de micelio de Trichoderma (obtenido como
se describe en el apartado 4.1.6), que se pulveriz en un mortero en presencia de
nitrgeno lquido. El micelio se resuspendi en 10 mL de una solucin de cido
tricloroactico (TCA) al 20% (p/v) en acetona fra conteniendo ditiotreitol
(DTT) al 0,2%.
2. Las muestras se homogeneizaron con ayuda de una micropipeta y por agitacin
en vrtex. Posteriormente, se mantuvieron a -20 C durante, al menos, 45
minutos, para que las protenas precipitasen.
3. Seguidamente, las muestras se centrifugaron a 15000 x g durante 20 minutos a
4C. El precipitado se lav con 1,5 mL de acetona fra conteniendo DTT al
0,2%.
4. Las protenas se dejaron precipitar de nuevo a -20 C durante, al menos, 1 h.
5. Las muestras se centrifugaron a 15000 x g durante 15 minutos a 4C, y el
precipitado se dej secar al aire, resuspendindolo despus en 1,5 mL de
solucin RHS.
6. Finalmente, las protenas se mantuvieron a temperatura ambiente, durante 2 h, y
en agitacin para ayudar a su completa resuspensin. Transcurrido este tiempo,
se centrifugaron a 20000 x g durante 30 minutos a 20C, y los sobrenadantes
obtenidos se conservaron hasta su uso a -20 -80C.
Solucin RHS: urea 9M; CHAPS 2% (p/v); DTT 1% (p/v); fenilmetilsulfonil fluoride (PMSF) 10mM
(Sigma).
Este protocolo se utiliz para la obtencin de protenas intracelulares que posteriormente se
visualizaran en geles 2D SDS-PAGE.
Materiales y Mtodos
79
12.2. Obtencin de protenas intracelulares de A. thaliana
Para la obtencin de protenas intracelulares de A. thaliana, se resuspendi 1 g
de material vegetal liofilizado, en tampn fosfato 50 mM pH 5,5 y se agit en vortex a
4C durante 30 minutos. Las muestras se centrifugaron 15 minutos a 12000 x g a 4C y
el sobrenadante se guard a -20C hasta su uso.
12.3. Obtencin de protenas extracelulares
12.3.1. Condiciones de cultivo
Para el estudio de la actividad endopoligalacturonasa en T. harzianum se emple
un sistema en cultivo en dos fases similar al utilizado para los estudios de expresin,
descrito en el apartado 4.1.4. Las condiciones de cultivo seleccionadas fueron aquellas
en las que se detect expresin del gen Thpg1.
12.3.2. Concentracin y dilisis de los sobrenadantes
Los sobrenadantes de cultivos de Trichoderma se pasaron a travs de un filtro de
0,22 m y, a continuacin, se concentraron hasta un volumen de 40-50 mL mediante un
Sistema de Ultrafiltracin Minitan (Millipore), empleando una membrana con un
tamao de poro de 10 kDa y siguiendo las instrucciones del fabricante. Los
sobrenadantes concentrados se dializaron utilizando membranas de dilisis (Sigma),
preparadas de acuerdo a las instrucciones de la casa comercial. La dilisis se mantuvo a
4C durante, al menos, 48 h, con cambios de agua destilada cada 6-8 h.
12.4. Cuantificacin de protenas
La cantidad de protena en solucin se determin por el mtodo de Bradford
(1976), utilizando el reactivo Bio-Rad Protein Assay (Bio-Rad) y siguiendo el
procedimiento de microensayo recomendado (para 1-20 g protena/mL). Se utilizaron
800 L de la muestra convenientemente diluida en agua y se aadieron 200 L del
reactivo. Las muestras se incubaron a 37C durante 15 minutos y se midi la densidad
ptica a 595 nm. La cantidad de protena se determin por extrapolacin sobre una recta
patrn realizada simultneamente con diluciones seriadas de seroalbmina bovina
(Sigma) de concentracin conocida en el rango de 1-20 g/mL.
12.5. Ensayos de actividad endopoligalacturonasa
12.5.1. En medio slido
Se realiz un primer ensayo para determinar la actividad de la protena ThPG1,
mediante un ensayo en medio slido. Para ello, se utiliz un sobrenadante concentrado
Materiales y Mtodos
80
200 veces, tal y como se describe en el apartado 12.2.2., de la condicin en la que se
detect mayor expresin, en MM suplementado con pectina al 0,5% durante 24 h. El
ensayo se realiz en placas de tampn acetato sdico 100 mM pH 5,5, con cido
poligalacturnico al 0,5% y agarosa al 1%. Se aadieron 50 L del sobrenadante
concentrado a un cilindro metlico con un dimetro de 0,7 cm colocado sobre la placa.
Se incub a 37 C durante 36 h. Transcurrido este tiempo la placa se revel con HCl 6 N
durante 5 minutos en agitacin suave.
12.5.2. En medio lquido
Para determinar la actividad endopoligalacturonasa en las muestras
seleccionadas se utiliz el mtodo de Somogyi (1952) de determinacin de azcares
reductores. En un tubo se aadieron 150 L de la solucin problema y 150 L de la
solucin Somogyi (Somogyi I: Somogyi II en proporcin 4:1). La mezcla se hirvi
durante 10 min y posteriomente se pasaron los tubos a un bao de hielo. Se aadieron
150 L del reactivo de Nelson y se agitaron vigorosamente el tiempo necesario para
eliminar el CO
2
emergente. Las muestras se diluyeron hasta un volumen de 1 mL con
agua ultrapura y se midi la absorbancia a 520 nm.
Para cuantificar los azcares reductores en la solucin problema se llev a cabo
en paralelo una reaccin de Somogyi-Nelson para disoluciones de glucosa de
concentraciones conocidas en el rango comprendido entre 0 y 400 g/mL. Con los
resultados obtenidos para las muestras de glucosa de concentracin conocida, se hizo
una recta patrn sobre la que se extrapolaron los resultados obtenidos para las muestras
problemas.
La solucin problema se prepar con 50 L de sobrenadante y 100 L de tampn acetato 50 mM pH
5,5 con PGA al 0,2%. Para comprobar si los sobrenadantes haban sido correctamente dializados, no se
aadi el PGA al tampn acetato en sus controles, y se utiliz como blanco una solucin de tampn
acetato con PGA al 0,2%.
Reactivo de Somogyi I: 15 g de tartrato potsico, 30 g de Na
2
CO
3
y 20 g de NaHCO
3
en 300 mL de agua
desionizada. La solucin resultante se aadi sobre una solucin de 180 g de NaSO
4
en 500 mL de agua
desionizada. Finalmente se complet hasta 1 L con agua desionizada y se conserv la solucin a
temperatura ambiente.
Reactivo de Somogyi II: 2 g de CuSO
4
5H
2
O y 18 g de NaSO
4
en 100 mL de agua desionizada. El
reactivo se conserv a temperatura ambiente.
Reactivo de Nelson: se disolvieron 12,5 g de (NH
4
+
)
2M
MoO
4
4H
2
O en 225 mL de agua desionizada y se
mantuvo en agitacin mientras se aadan 10 mL de H
2
SO
4
concentrado. Por otro lado se prepar una
segunda solucin de 1,5 g de NaAsO
3
en 12,5 mL de agua destilada. Ambas soluciones se mezclaron y se
mantuvo la mezcla a 37C durante 48 h. El reactivo se conserv a temperatura ambiente en un frasco
topacio, para protegerlo de la luz.
Materiales y Mtodos
81
12.6. Tcnicas electroforticas: Electroforesis unidimensional de protenas en
condiciones desnaturalizantes (SDS-PAGE)
La separacin de protenas mediante electroforesis unidimensional en
condiciones desnaturalizantes (Weber y Osbern, 1975) se llev a cabo con un sistema
vertical de minigeles Mini-Protean II (Bio-Rad), siguiendo las instrucciones de la firma
comercial. Los geles de separacin se prepararon a una concentracin final de
acrilamida del 12% (v/v), y los de empaquetamiento a una concentracin de acrilamida
del 4%. La polimerizacin de los geles se realiz a temperatura ambiente entre dos
placas de vidrio dispuestas para obtener geles de 0,75 mm de grosor. Las muestras de
protenas se prepararon en un volumen final de 30 L a una dilucin 3:1 en tampn de
carga y se precalentaron a 55C durante 5 minutos para evitar la desnaturalizacin
irreversible de las protenas. La electroforesis se llev a cabo en tampn de
electroforesis aplicando una corriente de 150 V y 70 mA hasta que el colorante alcanz
la parte inferior de la placa (1 h aproximadamente). Como marcadores de peso
molecular se utilizaron protenas de bajo peso molecular (Bio-Rad): beta-galactosidasa
(116,3 kDa), seroalbmina bovina (66,2 kDa), ovoalbmina de gallina (45 kDa),
anhidrasa carbnica bovina (31 kDa), inhibidor de tripsingeno de semilla de soja (21,5
kDa) y lisozima de huevo de gallina (14,4 kDa).
Gel de separacin: 3,35 mL de agua ultrapura; 2,50 mL de Tris-HCl 1,5M, pH 8,8; 100 L de SDS al
10%; 4 mL de solucin de acrilamida-bis:acrilamida (29:1); 50 L de APS al 10% (p/v); 10 L de
TEMED (Bio-Rad).
Gel de empaquetamiento: 3,05 mL de agua ultrapura; 1,25 mL de Tris-HCl 0,5M, pH 6,8; 50 L de
SDS al 10%; 0,65 mL de solucin de acrilamida-bis:acrilamida (29:1); 25 L de APS al 10%; 5 L de
TEMED.
Tampn de carga: Tris-HCl 0,25 M, pH 6,8; glicerol al 40%; SDS al 8%; azul de bromofenol al 0,05%;
2-mercaptoetanol al 20% (v/v).
Tampn de electroforesis: Tris 25 mM; glicina 192 mM; SDS al 0,1%.
12.6.1. Determinacin de la actividad endopoligalacturonasa en geles de acrilamida
El gel resultante tras la separacin electrofortica de las protenas se lav en
tampn de renaturalizacin a 4C durante 1 h con agitacin suave y cambios de tampn
cada 30 minutos. Posteriormente, se lav en tampn acetato 50 mM pH 5,5 a
temperatura ambiente durante 5 minutos. Paralelamente, se prepar un gel de agarosa al
1% (p/v) que contena PGA al 0,5% (p/v). La solidificacin del gel se realiz a
temperatura ambiente entre dos placas de vidrio dispuestas para obtener geles de 1,5
mm de grosor. Los geles de agarosa y acrilamida se colocaron uno sobre otro, y se
incubaron a 37C durante 2 h y 30 minutos. A continuacin, se separaron ambos geles, y
el gel de agarosa se ti, durante 2 h, con una solucin de Rojo Rutenio al 0,02% (p/v).
Transcurrido este tiempo, se equilibr mediante un lavado de 10 minutos en una
solucin de NaCl 1 M y, finalmente, se mantuvo en tampn acetato 50 mM pH 5,5
Materiales y Mtodos
82
(Soler y col., 1999). La actividad endopoligalacturonasa se observ como bandas de
color blanco en el gel de acrilamida.
Tampn de renaturalizacin: Tris-HCl 50 mM, pH 8,2, EDTA 2 mM y casena al 1% (p/v).
12.7. Tcnicas electroforticas: Electroforesis bidimensional de protenas en
condiciones desnaturalizantes (2D SDS-PAGE)
12.7.1. Primera dimensin (isoelectroenfoque, IEE)
Las protenas intracelulares obtenidas tal y como se describe en el apartado
12.1., se separaron utilizando un sistema de isoelectroenfoque en un equipo PROTEAN
IEF Cell system (Bio-Rad Laboratories, Richmond, CA, EE.UU.). Se aplicaron 400 g
de protenas totales (200 L de la solucin) a lo largo de un cassette de rehidratacin, y
se puso en contacto con unas tiras de isoelectroenfoque de 11 cm (IPG strips, Bio-Rad)
con un gradiente lineal inmovilizado de pH de 3-10, que fueron rehidratadas con una
solucin de rehidratacin (Sigma) durante 1 h a temperatura ambiente y 12 h aplicando
una corriente de 50 V. Tras este paso se aplicaron las siguientes condiciones de IEE:
300 V durante 1 h, 8000 V durante 3 h y 8000 V hasta completar 34000 V/h.
Solucin de rehidratacin: urea 9 M, CHAPS al 2%, DTT al 1%, anfolitos al 2% y fenilmetilsulfonil
fluoride (PMSF) 10mM (Sigma).
12.7.2. Equilibrado de las tiras
Para eliminar el exceso de DTT que pudiera interferir en la separacin que tiene
lugar en la segunda dimensin, las tiras se equilibraron con lavados consecutivos de 10
minutos y en agitacin, en las soluciones de equilibrado I y II.
Solucin de equilibrado I: urea 6 M; Tris-HCl 50 mM, pH 8,8; glicerol al 20%; SDS al 2%; DTT al 2%.
Solucin de equilibrado II: urea 6 M; Tris-HCl 50 mM, pH 8,8; glicerol al 20%; SDS al 2%;
iodoacetamida al 2,5% (p/v).
12.7.3. Segunda dimensin
La separacin de protenas en la segunda dimensin (SDS-PAGE) se llev a
cabo con un sistema vertical de geles Protean II xi 2-D Cell (Bio-Rad), siguiendo las
instrucciones del fabricante.
Los geles de separacin se prepararon a una concentracin final de acrilamida
del 12%. La polimerizacin de los mismos se realiz a temperatura ambiente entre dos
placas de vidrio dispuestas para obtener geles de 1,5 mm de grosor. Las tiras de la
primera dimensin se situaron en la parte superior de los geles polimerizados con ayuda
Materiales y Mtodos
83
de una solucin de agarosa que favoreci el contacto entre la tira y el gel, evitando la
formacin de burbujas. La electroforesis se llev a cabo en tampn de electroforesis
aplicando una corriente constante de 80 V durante 12 h. Como marcadores de peso
molecular se utilizaron protenas de amplio rango de pesos moleculares (Bio-Rad).
Geles de separacin: para preparar 6 geles se mezclan 156,44 mL de agua ultrapura; 89,91 mL de Tris-
HCl 1,5M, pH 8,8; 4 mL de SDS al 10%; 107,89 mL de solucin de acrilamida-bis:acrilamida (29:1);
1,80 mL de APS al 10% y 360 L de TEMED.
Solucin de agarosa: agarosa al 0,5% y trazas de azul de bromofenol en tampn de electroforesis.
12.7.4. Tratamiento informtico de las imgenes
Las imgenes de los geles fueron obtenidas con un escner GS-800 Imaging
Densitometer (Bio-Rad) y fueron analizadas mediante el programa informtico PD-
Quest. La intensidad de la seal de cada spot fue determinada en unidades de densidad
ptica (D.O.), y se normaliz como la suma de las intensidades de todos los spots
incluidos en el gel estndard. Se consider un spot diferencial cuando la variacin de la
intensidad de la seal era de, al menos, dos veces.
12.8. Tincin de protenas en geles de acrilamida: Tincin con azul de Coomassie.
Para la visualizacin de protenas despus de SDS-PAGE, los geles se
mantuvieron en solucin de teido a temperatura ambiente y en agitacin durante al
menos 2 h. Posteriormente, se destieron por lavados repetidos con solucin de lavado.
Finalmente, se fijaron y conservaron en cido actico al 7%. Las protenas se
observaron como bandas de color azul en el gel de acrilamida.
Para la determinacin del peso molecular de protenas se tuvo en cuenta que la
distancia de migracin es inversamente proporcional a su peso molecular. Los valores
reales de peso molecular se calcularon grficamente, representando en abscisas las
movilidades relativas de las protenas patrn respecto al colorante de carga, y en
ordenadas el logaritmo decimal de los pesos moleculares.
Solucin de teido: azul de Coomassie R-250 (Sigma) al 0,25% (p/v); cido actico al 10%; etanol al
45%.
Solucin de lavado: cido actico al 10%; etanol al 45%.
Para la visualizacin de las protenas en los geles 2D SDS-PAGE se utiliz una solucin comercial,
SimplyBlue SafeStain G-250 (Invitrogen, CA, EE.UU.), patentado como Coomassie G-250, siguiendo las
instrucciones del fabricante.
Materiales y Mtodos
84
12.9. Identificacin de protenas
Los spots seleccionados, a los que se les asign un Standard Spot Number (SSP
number) mediante el programa PD-Quest, fueron escindidos del gel y digeridos con
tripsina (Talamo y col., 2003). Los pptidos resultantes de la digestin fueron
resuspendidos en 10 L de una solucin de cido actico al 1% y anlizados mediante
una espectrometra de masas, Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization-Time-Of-
Flight (MALDI-TOF), utilizando la tcnica de identificacin por huella peptdica,
Peptide mass fingerprint (PMF).
12.9.1. Espectrometra de masas
La muestra se embebi en una matriz de cido -ciano-4-hidroxicinmico
(CHCA) mezclado con solventes orgnicos [10 mg/mL de acetonitrilo (ACN)/cido
trifluoroactico al 0,2% (ATF)]. Se deposit 1 L de la mezcla en la placa del
espectrmetro de masas Voyager-DE Pro MALDI-TOF (Applied Biosystem, Foster
City, CA, EE.UU.) que se irradi con un lser a una longitud de onda de 337 nm. Se
utilizaron como controles internos los iones de la adrenocorticotropina humana (ACTH)
(Sigma) y la angiotensina III humana, con pesos moleculares de 2465,1989 Da y
931,5154 Da, respectivamente.
12.9.2. Identificacin por huella peptdica
Los datos de masas obtenidos con la espectrometra se analizaron por
comparacin con las bases de datos del National Centre Biotechnology Information
(NCBI), y de la base de Expressed Sequence Tags (EST) de Trichoderma, Trichobase
(Vizcano y col., 2006, 2007), mediante el programa Mascot (Matrix Science, Londres,
UK) (http://www.matrix-science.com). Este programa compara los valores tericos y
experimentales de pptidos depositados en bases de datos, sometidos a una digestin
virtual, generando una lista de posibles pptidos candidatos que coinciden con el spot
analizado.
13. ENSAYOS DE CRECIMIENTO Y GERMINACIN
13.1. Ensayos con Trichoderma
Para determinar como el silenciamiento del gen Thpg1 podra afectar a la
capacidad pectinoltica de la protena ThPG1, se realiz un ensayo de crecimiento en
placa del transformante silenciado, ePG5, junto con la cepa silvestre T. harzianum T34,
en MM Penttil sin glucosa y suplementado con pectina al 0,5%. Como control se
crecieron las dos cepas en placas de PDA y MM Penttil sin glucosa. El ensayo fue
Materiales y Mtodos
85
realizado por triplicado, incubando las placas a 28C durante 3-4 das. Se tomaron
medidas del dimetro de crecimiento para cada condicin de crecimiento ensayada, cada
24 h.
13.2. Ensayos con A. thaliana
Para determinar el porcentaje de germinacin de semillas de A. thaliana (Col-0
y lneas transgnicas), se sembraron en placas de medio MS suplementado con manitol
100 mM y NaCl 50 100 mM. En paralelo, se realizaron siembras en medio MS que se
utilizaron como control. Se sembraron 100 semillas por placa y el ensayo se realiz por
triplicado.
14. DETERMINACIN DE FITOHORMONAS
Para la determinacin de cido abscsico (ABA), cido jasmnico (JA) y cido
saliclico (SA) se sigui el protocolo descrito por Durgbanshi y col. (2005):
Se parti de 0,5 g de tejido fresco foliar de cada muestra.
Se aadieron, de forma previa a la extraccin, 100 ng de [
2
H
6
]-ABA (preparado
segn Gmez-Cadenas y col., 2005), 100 ng de di-hidro-jasmnico (DHJA,
segn se describe en Kristl y col., 2002) y 5 ng de [
2
H
2
]-IAA (Sigma-Aldrich,
Madrid, Espaa).
El tejido se homogeniz con 5 mL de agua destilada con la ayuda de un
homogenizador (Ultra-Turrax, IKA-Werke, Staufen, Alemania).
La muestra resultante se centrifug a 4000 rpm durante 45 minutos.
Se recuper el sobrenadante y se ajust el pH a 3.0 utilizando una solucin de
cido actico glacial al 15% (v/v).
La solucin resultante se extrajo con 3 mL de ter etlico por evaporacin (grado
ACS, Scharlau, Barcelona, Espaa) utilizando un concentrador centrfugo a
vaco (RC 10.22, Jouan, Saint-Herblain, Francia).
El residuo seco obtenido se resuspendi en 1 mL de una solucin de agua y
metanol en proporcin 9:1 con la ayuda de un bao de ultrasonidos.
El extracto resultante se filtr a travs de filtros de celulosa regenerada de 0,22
m de tamao de poro y se inyect en un equipo de HPLC (Waters Alliance
2860, Waters Corp., Milford, EE.UU.) acoplado en lnea con un espectrmetro
de masas en tndem con interfaz de electrospray (Quattro LC, Micromass,
Manchester, Reino Unido).
Para la deteccin de las distintas hormonas vegetales se optimizaron las
condiciones de ionizacin y fragmentacin mediante la infusin directa de soluciones
patrn (a una concentracin de 1-3 ppm cada una). La separacin de las fitohormonas se
Materiales y Mtodos
86
llev a cabo mediante cromatografa lquida en fase reversa con una columna de C18
(Kromasil 100 C18 5 m 100 2.0 mm, Scharlau) utilizando como solventes agua y
metanol, ambos con una pureza de grado HPLC y suplementados con cido actico a
una concentracin de 0,1%. La deteccin de las fitohormonas se realiz en modo
electrospray negativo (ES) siguiendo las transiciones indicadas en la Tabla 4. La
cuantificacin se realiz mediante la interpolacin, en una curva de calibrado inyectada
previamente, de los valores de respuesta hallados en las diferentes muestras.
Tabla 4. Iones precursores y transiciones para cada una de las fitohormonas analizadas.
Compuesto In precursor (m/z) Transicin
ABA 263,0 263,0>153,0
JA 209,0 209,0>59,0
SA 137,1 137,1>93,1
15. HERRAMIENTAS BIOINFORMTICAS Y SOFTWARE UTILIZADO
15.1. Bsqueda de secuencias similares en bases de datos
15.1.1. FASTA
El algoritmo FASTA (Pearson y Lipman, 1988) es una aproximacin al
algoritmo de Smith-Waterman (1981), que divide la secuencia en palabras solapantes,
con una longitud de dos letras para protenas o seis para cidos nucleicos. Cada
secuencia de la base de datos es dividida de la misma forma. Estas dos listas de palabras
se comparan para encontrar palabras idnticas en ambas secuencias.
Permite diferentes combinaciones entre cidos nucleicos y protenas, sean estos
las secuencias problema o las bases de datos de secuencias. Nos proporciona un valor, el
Z-score, que despus es convertido en un valor E (E-value), como en el caso de BLAST.
Las comparaciones de secuencias usando este algoritmo se llevaron a cabo en el
servidor del European Bioinformatics Institute (EBI) (http://www.ebi.ac.uk/fasta3).
15.1.2. BLAST
BLAST (Basic Local Alignment Search Tools) constituye una coleccin de
diferentes programas que permiten distintas combinaciones entre cidos nucleicos y
protenas, sean estos las secuencias problema o las bases de datos de secuencias. Lleva a
Materiales y Mtodos
87
cabo alineamientos de tipo local entre una secuencia desconocida y una base de datos.
Las mayores ventajas de BLAST son su gran velocidad y la evaluacin estadstica que
realiza de los resultados. El parmetro estadstico correspondiente al valor E se calcula
en funcin de que un alineamiento ocurra por azar. Por ejemplo, si tenemos un valor E
igual a 0, significa que la probabilidad de que ese alineamiento haya ocurrido por azar
es 0.
Las comparaciones de secuencias usando las diferentes variantes del algoritmo
BLAST (BLASTN, BLASTX, BLASTP) se llevaron a cabo en la pgina web del NCBI
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/.
15.2. Alineamiento de secuencias
Hay dos tipos principales de alineamiento de secuencias: global y local. El
global optimiza el alineamiento sobre toda la longitud de la secuencia, mientras que en
el alineamiento local, tienen prioridad fragmentos de la secuencia con una gran cantidad
de coincidencias.
Un alineamiento mltiple de secuencias de protenas de la misma familia nos
proporciona informacin sobre la evolucin de esta familia, ya que el alineamiento
muestra la presin de la evolucin en cada aminocido y muestra tambin las posiciones
que son clave para mantener el plegamiento y la funcin de las protenas.
Para los alineamientos realizados en este trabajo se emple el programa ClustalX
(Thompson y col., 1994).
15.3. Otras manipulaciones de secuencias
La bsqueda de marcos de lectura abierta (Open Reading Frames, ORFs) sobre
las secuencias de ADN, la traduccin de los mismos a la secuencia proteica y un primer
anlisis elemental de esta secuencia proteica se realizaron con el programa EditSeq, que
forma parte del paquete informtico Lasergene (DNASTAR Inc., Madison, EE.UU.).
Para ensamblar las secuencias parciales o los cromatogramas de un mismo clon
se emple el programa Seqman II (Lasergene, DNASTAR Inc.). El programa Chromas
(http://www.technelysium.com.au/chromas14x.html) permiti el manejo de los
cromatogramas y exportar la secuencia a otros formatos.
La bsqueda de motivos o dominios en la secuencia primaria de la protena se
llev a cabo en la base de datos de dominios SMART (Simple Modular Architecture
Research Tool), que se puede consultar en la pgina web http://smart.embl.de.
Materiales y Mtodos
88
15.4. Anlisis estructural de protenas
Los mtodos de prediccin de la estructura secundaria de una protena tratan de
predecir si un residuo concreto pertenece a uno de estos 3 estados: hlice , hoja
plegada o bien, a segmentos irregulares o no ordenados de la protena. Estos mtodos
han evolucionado mucho en los ltimos aos. Al principio se basaban en la probabilidad
estadstica de que un aminocido concreto perteneciera a una de las tres estructuras
posibles. Despus, una segunda generacin de estos mtodos incluy la influencia del
ambiente local en el que se situaba cada aminocido. La exactitud de estos mtodos
nunca super el 60%. En la tercera generacin, se incluyeron alineamientos mltiples
como base de los mtodos de prediccin.
En la actualidad se usan mtodos basados en redes neuronales, tcnicas que
permiten el aprendizaje del mtodo. En este trabajo se us el programa PSIPRED
(Jones, 1999), que alcanza una exactitud del 75%. Est accesible va web en la direccin
http://bioinf.cs.ucl.ac.uk/psipred/.
15.5. Anlisis de los dominios de unin a factores de transcripcin
La bsqueda de los dominios de unin a factores de transcripcin presentes en la
secuencia de ADN de las zonas reguladoras, se realiz con el programa MatInspector
Profesional (Quandt y col., 1995). Este programa emplea la base de datos TRANSFAC
y est disponible en versin de acceso limitado en la pgina web http://genomatix.de.
Tambin puede consultarse de forma gratuita, previo registro, en http://www.gene-
regulation.com/pub/databases.html#transfac.
15.6. Otras herramientas de prediccin
La identificacin de un posible pptido seal sobre la secuencia primaria de la
protena se llev a cabo con el programa SignalP v2.0 (Nielsen y col., 1997), accesible
en la direccin web http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalIP-2.0/. Por otro lado, el
anlisis de la secuencia de la protena mediante la aplicacin Scan Prosite
(www.expasy.org/tools/scanprosite/) revel la presencia de posibles sitios de
glucosilacin, fosforilacin, miristilacin y sulfatacin.
El perfil hidroptico de las protenas se calcul segn el algoritmo de Kyte y
Doolittle (1982) empleando la aplicacin Protean (Lasergene, DNASTAR Inc.).
La prediccin de la posible estructura tridimensional de la protena se llev a
cabo en el servidor web ESyPred3D
(http://www.fundp.ac.be/sciences/biologie/urbm/bioinfo/esypred/) que reconoce el
plegamiento utilizando perfiles de secuencias y multiples programas de alineamiento.
Para analizar los modelos propuestos se emple el programa de visualizacin de
Materiales y Mtodos
89
modelos DeepView-Swiss-PdbViewer disponible en la pgina web
http://www.expasy.ch/spdbv/.
Para el estudio terico previo de oligonucletidos y reacciones de PCR se utiliz
la aplicacin PrimerSelect (Lasergene, DNASTAR Inc.). Una herramienta para predecir
la Tm de los oligonucletidos se encuentra en la web
http://alces.med.umn.edu/rawtm.html.
15.7. Anlisis filogenticos
El objetivo de un anlisis filogentico es caracterizar la evolucin. Puede
llevarse a cabo por atributos morfolgicos de los organismos, o bien, como se ha hecho
en los ltimos aos, siguiendo las mutaciones en el material gentico de los organismos.
Para la construccin de rboles filogenticos se ha utilizado el programa PAUP
(Phylogenetic Analysis Using Parsimony, v4.0, Sinauer Associates, Sunderland, MA,
EE.UU.), usando el mtodo neighbour-joining (NJ). En este caso, la distancia entre dos
secuencias (la longitud de las ramas) en el rbol final corresponde a la similitud entre
dos secuencias.
La estabilidad de las ramas de un rbol filogentico se mide mediante un test
bootstrap (Felsenstein, 1985), el cual se lleva a cabo construyendo un rbol basado en
un subconjunto de las columnas del alineamiento mltiple en el que se basa el rbol
original. Este proceso se repite mltiples veces (en nuestro caso, 1000 veces) y nos da el
nmero de veces, en porcentaje, en el que el anlisis proporciona el mismo rbol final.
15.8. Anlisis estadstico
15.8.1. Datos obtenidos en microarrays
Para el clculo de la seal de expresin por probset de cada uno de los
microarrays se utiliz el algoritmo RMA (Robust Microarray Analysis) (Irizarry y col.,
2003) que incluye 3 pasos: correccin de background, normalizacin por cuantiles y
clculo sumarizado de la seal por probset utilizando una mediana pulida. Se utiliza un
grupo de sondas (probeset) para medir los niveles de expresin de un nico gen. Cada
grupo de sondas consta, a su vez, de mltiples pares de celdas (probe cells), con
millones de copias de la misma sonda. Las celdas se organizan en parejas (probe pairs)
con un Perfect Match (PM), secuencia que coincide exactamente con una parte del gen,
y un Mismatch (MM), secuencia idntica al PM excepto en el nucletido central que es
reemplazado por su complementario.
Materiales y Mtodos
90
Para evitar que la poca variabilidad en la seal de los genes afecte al algoritmo
de expresin diferencial, los datos se filtran a travs de otro algoritmo, IQR
(intercuartile range), que muestra solo aquellos genes que muestran ms variabilidad.
Para el clculo de la expresin diferencial significativa se utiliz el algoritmo
SAM (Tusher y col., 2001), que permite obtener un determinado nmero de genes
significativos para un determinado umbral de FDR (False Discovery Rate) (Benjamini y
Hochberg, 1995), que indica el nmero mximo estimado de falsos positivos que
admitimos en la lista de genes estadsticamente significativos.
15.8.2. Datos obtenidos en otros ensayos
Los datos obtenidos en los diferentes ensayos se sometieron a un anlisis de la
varianza para comprobar si las diferencias entre las cepas analizadas eran
estadsticamente significativas. Para ello se aplic el test de Fisher PLSD (Protected
Least-Significance Difference) utilizando el programa StatView versin 5.0 (SAS
institute Inc., Cary, NC, EE.UU.).
15.9. Herramientas de edicin
En esta memoria se usaron los siguientes programas de edicin especficos de
biologa molecular o manejo de bibliografa:
- pDRAW (www.acaclone.com). Se utiliz para dibujar y editar plsmidos a partir de su
secuencia.
- DNA Strider (CEA, Gif sur Yvette, Francia). Se emple para la edicin de las
secuencias de DNA y protenas.
- Genedoc (www.psc.edu/biomad/genedoc). Se us para la edicin de los alineamientos.
- Endnote (Thompson ISI ResearchSoft, www.endnote.com). Se utiliz para la gestin y
edicin de la bibliografa.
16. CASAS COMERCIALES
Affymetrix: Affymetrix, Santa Clara, CA, EE.UU. (http://www.affymetrix.com).
Agilent: Agilent Technologies, Santa Clara, CA, EE.UU.
(http://www.chem.agilent.com).
Materiales y Mtodos
91
Amersham: Amersham Biosciences AB, Uppsala, Suecia
(http://www.amershambiosciences.com).
Applied Biosystems: Applied Biosystems, Foster City, CA, EE.UU.
(www.appliedbiosystems.com).
Bio-Rad: Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, EE.UU. (www.biorad.com).
Biotools: Biotools B y M Labs, Madrid, Espaa (www.biotools.net).
Cepheid: Cepheid, Sunnyvale, CA, EE.UU. (http://www.cepheid.com).
Difco: Difco Becton Dickinson, Sparks, MD, EE.UU. (www.difco.com).
Duchefa: Duchefa Biochemie B.V, Haarlem, Holanda (www.duchefa.com).
Eppendorf: Eppendorf, Hamburgo, Alemania (www.eppendorf.com).
Fermentas: Fermentas Life Science, Burlington, Ontario, Canad.
(www.fermentas.com).
Fujifilm: Fuji Photo Film Europa, Dsseldorf, Alemania (www.fujifilm.es).
Gramoflor: Gramoflor GmbH y Co. KG, Vechta, Alemania (www.gramoflor.de).
Invitrogen: Invitrogen, Groningen, Holanda (www.invitrogen.com).
Isogen: Isogen Life Science, Maarssen, Holanda (www.isogen-lifescience.com).
Maissa: Maissa, Barcelona, Espaa.
Merck: Merck KGaA, Darmstadt, Alemania (www.merck.com).
Millipore: Millipore, Billerica, MA, EE.UU. (www.millipore.com).
MoBio: MoBio Laboratories, Carslbad, CA, EE.UU. (www.mobio.com).
Molecular Research Center: Molecular Research Center Inc., Cincinnati, OH, EE.UU.
(www.mrcgene.com).
Promega: Promega, Madison, WI, EE.UU. (www.promega.com).
QBio Gene: QBio Gene, Montreal, Quebec, Canad (www.qbiogene.com).
Materiales y Mtodos
92
Qiagen: Qiagen GmbH, Hilden, Alemania (www.qiagen.com).
Roche: Roche Applied Science, Basilea, Suiza (www.roche.com).
Scharlau: Scharlau Chemie S.A., Barcelona, Espaa (www.scharlau.com).
Sigma: Sigma-Aldrich Co., San Luis, MO, EE.UU. (www.sigma-aldrich.com).
Stratagene: Stratagene, La Jolla, CA, EE.UU. (www.stratagene.com).
Takara: Takara Bio Inc., Otsu, Shiga, Japn (http://www.takara-bio.com).
Thermo: Thermo Electron Corporation, Ulm, Alemania (www.thermo.com).
Whatman: Whatman Laboratory Products Inc., Clifton, NJ, EE.UU.
(www.whatman.com).
Captulo 1: CLONACIN Y CARACTERIZACIN
DEL GEN Thpg1 DE T. harzianum T34
RESULTADOS
Resultados
95
1. TRABAJO PREVIO
El trabajo realizado en esta Tesis Doctoral se engloba dentro del proyecto de
genmica funcional TrichoEST, financiado por la Unin Europea, cuyo objetivo era la
obtencin y el estudio de ESTs de diferentes especies del gnero Trichoderma
relacionadas con el proceso del biocontrol y, a su vez, que tuvieran un inters
agroalimentario o industrial.
La secuenciacin del genoma de T. harzianum T34 y otras cepas del gnero
Trichoderma se abord mediante la generacin y el anlisis de ESTs (Rey y col., 2004).
Estas ESTs se obtuvieron a partir de genotecas de ADNc que se construyeron
cultivando el hongo en diferentes situaciones metablicas (estrs, micoparasitismo,
interaccin con plantas, etc.). Actualmente, nuestro grupo dispone de una coleccin de
genotecas de ADNc de distintas cepas, obtenidas en diferentes condiciones de cultivo.
De forma previa a este trabajo, en nuestro grupo se construyeron distintas
genotecas de ADNc para el proyecto de genmica funcional TrichoEST. Entre ellas se
construy una genoteca mix de T. harzianum T34 (que se denomin L15). Para la
construccin de esta genoteca, la cepa T34 se cultiv en un MM (Penttil y col., 1987)
suplementado con cido poligalacturnico (PGA) al 0,1%, carboximetilcelulosa (CMC)
al 0,1%, pectinas al 0,1%, xilano al 0,1% y glucosa al 0,2%, a 28C durante 36 horas.
Los ADNc obtenidos a partir de los ARNm purificados mediante el sistema de perlas
magnticas unidas a poli-T (dynabeads), se clonaron en el vector Lambda Zap
(Stratagene).
Se eligieron al azar diferentes clones de esta genoteca (L15) y se obtuvo una
secuencia parcial de los mismos. Por lo tanto, las secuencias as obtenidas derivan de
genes que se expresan en las condiciones en las que se elabor la genoteca de ADNc. La
funcin hipottica de cada EST o contig (grupo de ESTs correspondientes al mismo
gen) se dedujo a partir de su similitud con otras secuencias presentes en las bases de
datos utilizando diferentes herramientas bioinformticas.
Uno de estos clones, correspondiente a la EST L15T34P120R10663 (a partir de
ahora, EST 10663), se eligi como punto de partida en el trabajo de esta Tesis Doctoral.
La eleccin de esta EST se bas en la similitud que presentaba, en bases de datos, con
endoPGs fngicas, implicadas en la degradacin de la pared celular de las plantas, y en
el hecho de que la cepa de la que proviene se utiliza como agente de control biolgico.
Resultados
96
2. AISLAMIENTO DE Thpg1 A PARTIR DE LA EST 10663
Se dispona de una secuencia de 685 pb de la EST 10663 (entre las posiciones
222 y 1150 en la secuencia del gen, Figura 16). Puesto que faltaban los extremos 5 y 3
del gen Thpg1, el primer paso consisti en la obtencin de una sonda para realizar el
escrutinio de una genoteca de ADN genmico de T. harzianum T34 y completar la
secuencia.
Figura 16. Esquema de la regin genmica secuenciada de Thpg1 de T.
harzianum T34. Se muestra punteada la posicin de la EST 10663
utilizada en el escrutinio de una genoteca de ADN genmico. Se indican
tambin el promotor y los cuatro intrones de Thpg1.
Se disearon los oligonucletidos 10663-1 y 10663-2 (Tabla 5, en Materiales y
Mtodos), sobre los extremos de la secuencia de la EST 10663, y mediante una reaccin
estndar de PCR, empleando ADN plasmdico de la EST 10663 como molde, estos
oligonucletidos amplificaron un fragmento de 618 pb.
A continuacin, se llev a cabo un escrutinio de la genoteca de ADN genmico
de T. harzianum T34, L01, (Lora y col., 1995), construida en el vector GEM11
(Promega). El producto de PCR de 618 pb, se marc con digoxigenina y se emple
como sonda para la hibridacin de filtros que contenan, aproximadamente, 10000 fagos
procedentes de dicha genoteca. Se obtuvieron varios fagos positivos, que se purificaron
en dos rondas sucesivas de infeccin e hibridacin. Se seleccion uno de ellos, el
10663-4-1, y se realiz la extraccin de ADN del fago (tal y como se describe en el
apartado 9.1.2. de Materiales y Mtodos). El ADN del fago obtenido se emple
directamente para secuenciar por primer walking los extremos 5 y 3 del gen con los
oligonucletidos 10663-1, 10663-2, 10663-3, 10663-4 y 10663-5 (Tabla 5, en
Materiales y Mtodos).
Resultados
97
En total, se secuenciaron 2199 pb de los cuales 812 pb correspondieron al
promotor y 1387 pb correspondieron a la secuencia completa del gen Thpg1 (Figura
16). Al traducir esta secuencia a aminocidos se produjo una ruptura en la fase de
lectura, y al compararla con las secuencias de otros genes de endoPGs en las bases de
datos, se dedujo que contena al menos un intrn.
3. ANLISIS in silico DE LA SECUENCIA NUCLEOTDICA Y
AMINOACDICA
3.1. Identificacin de intrones en la secuencia de Thpg1
Para identificar los intrones presentes en la secuencia de Thpg1 se disearon los
oligonucletidos endop-1 y endop-2 a partir de los extremos de la secuencia completa
del gen. Se utilizaron en una reaccin estndar de PCR en la que se us como molde
ADN de fagos amplificados de la genoteca L15, de la que provena la EST 10663. Para
poder comparar los tamaos de las bandas, tambin se llev a cabo la misma PCR
usando ADN genmico de T. harzianum T34 como molde.
En la Figura 17 se muestran los tamaos de ambos productos de PCR. Se puede
apreciar que el tamao de la banda amplificada a partir de la genoteca de ADNc L15 es
ms pequeo que el de la banda amplificada a partir de ADN genmico, debido a que el
ADNc carece de intrones.
Figura 17. Productos de PCR obtenidos a partir de
ADN genmico de T34 (carril 1) y ADN de la
escisin en masa de la genoteca de ADNc L15
(carril 2), usando los oligonucletidos endop-1 y
endop-2. M: marcador 100 pb DNA ladder XIV
(Roche).
Resultados
98
El producto de PCR amplificado a partir de ADNc se purific del gel y se
secuenci directamente. Al comparar esta secuencia con la obtenida a partir de los fagos
amplificados, se confirm la presencia de cuatro intrones: intrn 1, 74 pb (256-330),
intrn 2, 60 pb (753-813), intrn 3, 55 pb (943-998) e intrn 4, 55 pb (1083-1138).
Estos intrones contienen las secuencias consenso tpicas en 5 y 3, as como la
secuencia de formacin del lazo (Tabla 5).
Tabla 5. Intrones de Thpg1. Las secuencias consenso para hongos filamentosos estn tomadas de
Ballance (1986). Las bases que no coinciden con el consenso se indican en minscula.
Inicio del procesamiento del
intrn
Sitio de formacin del
"lazo"
Fin de procesamiento del
intrn
Consenso GTAHGTY WRCTRAC MYAG
Intrn 1 GTtgagTa TACTGAt ATAG
Intrn 2 GTAAGTC AGCTGAg ATAG
Intrn 3 GTAAGTC AtCTAgt ACAG
Intrn 4 GTATGcC AGCTAtt ACAG
3.2. Estudio de la secuencia del promotor de Thpg1
Se secuenciaron 812 pb del promotor de Thpg1 con los oligonucletidos 10663-
5, 10663-6 y 10663-7. La secuencia completa de la regin promotora se encuentra en el
apndice de esta memoria y se deposit en la base de datos de secuencias GenBank con
el nmero de acceso AM489729. Al analizar in silico dicha secuencia, en primer lugar
se buscaron los elementos fundamentales de una regin reguladora de este tipo. En las
posiciones -92 y -453 respecto al codn de inicio, se encontr una secuencia idntica a
una caja TATA (5-TATATAA-3) que se ajustaba perfectamente al consenso 5-
TATA(T/A)AA-3. Tambin se encontr en las posiciones -74 y -254 (en la cadena
codificante), y -355, -506 y -601 (en la cadena complementaria) respecto al condn de
inicio, una caja CCAAT que se ajust perfectamente al consenso 5-CCAWT-3. A esta
ltima caja se une el complejo trimrico HAP2/3/4, implicado en la regulacin de genes
relacionados con el metabolismo del carbono (Zeilinger y col., 2001).
Se llev a cabo un anlisis terico para buscar sitios de unin para factores de
transcripcin cuyas secuencias consenso estn definidas. Se emple la aplicacin
MatInspector usando la base de datos TRANSFAC, restringida a hongos.
Se localizaron tres secuencias 5-SYGGRG-3, todas ellas en la cadena
codificante (en las posiciones -105, -373 y -439). En esta secuencia se une la protena
Mig1/CreA/Cre1 (Mig1 en S. cerevisiae, CreA en A. nidulans, Cre1 en T. reesei),
Resultados
99
responsable de la represin catablica. Reprime un gran nmero de genes en presencia
de glucosa (Kulmburg y col., 1993; Ilmen y col., 1996).
Tambin aparecieron tres secuencias 5 HGATAR 3, dos de ellas en la cadena
codificante (-26 y -565) y otra en la cadena complementaria (-303). Esta secuencia est
implicada en la unin de factores de transcripcin (AreA o Nit2) relacionados con el
metabolismo del nitrgeno. En A. nidulans, AreA regula el metabolismo del nitrgeno
en respuesta a los niveles extracelulares de glutamina (Ravagnani y col., 1997). Su
homlogo en N. crassa es Nit2 (Scazzocchio y col., 2000).
Adems se encontraron, entre otros, posibles sitios de unin para los siguientes
factores de transcripcin:
- AbaA: regulador que interviene en la diferenciacin de los conidios y, por tanto,
en la activacin de genes implicados en el desarrollo (Adrianopoulos y
Timberlake, 1994).
- MCM1: regulador de genes implicados en el control del ciclo celular, en la
sntesis de pared celular, en el metabolismo celular, en la activacin de
glucoproteinas secretadas en condiciones de choque trmico y en el metabolismo
de la arginina (Kuo y col., 1994). Miembro de la familia MADS de factores
trans, regulan los genes por interaccin con distintos cofactores como alpha1,
Ste12 y alpha2 (Mead y col., 2002; Abraham y col., 2005).
- GCR1: regulador de genes glucolticos (Uemura y col., 1997).
- GAL4 y LAC9: activadores que median la respuesta a la presencia de galactosa
(Bram y col., 1986; Wray y col., 1987).
- MAT1: regulador que interviene en la diferenciacin sexual (Kjaerulff y col.,
1997).
- XBP1 (XhoI site-binding protein 1): regulador negativo que acta sobre la
transcripcin de genes especficos, pudiendo causar un retraso pasajero del ciclo
celular bajo condiciones de estrs como choque trmico, alta osmolaridad, estrs
oxidativo o dficit de glucosa (Mai y Breeden, 1997).
- HSF: responsable de la regulacin de la expresin de las protenas de choque
trmico (Fernndes y col., 1994).
- PHO4: en S. cerevisiae activa la expresin de una fosfatasa cida (PHO5) en
condiciones limitantes de fuente de fsforo (Ficher y Goding, 1992).
Tambin se analiz el entorno del lugar de inicio de la traduccin, que presenta
una secuencia consenso caracterstica (Goldman y col., 1998). Las coincidencias se
muestran en la Tabla 6.
Resultados
100
Tabla 6. Regin adyacente al codn de iniciacin de la traduccin que aparece ms frecuentemente en
Trichoderma y la que presenta el gen Thpg1 (Goldman y col., 1998). En negrita se muestran las
coincidencias.
Secuencia consenso -5 -4 -3 -2 -1 +1 +2 +3 +4 +5 +6
Trichoderma T/C C A A A/C A U G A/Y T/G T/A
Thpg1 A C A A C A U G A C C
3.3. Anlisis de la estructura primaria, secundaria y terciaria de la protena
ThPG1
La secuencia del gen Thpg1 tena 1387 pb y al traducirla, teniendo en cuenta ya
la presencia de los intrones, se obtuvo una secuencia de 380 aminocidos. La secuencia
completa de la regin gnica clonada se encuentra en el apndice de esta memoria y se
deposit en la base de datos de secuencias GenBank con el nmero de acceso
AM421521. El peso molecular terico de la protena es de 38,29 kDa y su punto
isoelctrico terico, 5,02. La estructura primaria de la protena deducida consta de 18
aminocidos bsicos (K, R) (5,9%), 25 cidos (D, E) (8,2%), 144 polares (N, C, Q, S, T,
Y) (47,2%) y 118 hidrofbicos (A, I, L, F, W, V) (38,7%). En la composicin de
aminocidos, el que se encuentra en mayor proporcin es la alanina (11,3%), seguido de
la valina (10,4%) y la leucina (9,2%).
Al analizar in silico la secuencia de aminocidos a travs del programa SignalP
v2.0, se detect la presencia de un pptido seal (posible punto de ruptura entre los
aminocidos Ala
21
-Leu
22
). Esto se explica si observamos el perfil hidroptico de ThPG1
(Figura 18), calculado segn el algoritmo de Kyte y Doolittle (1982). La presencia de
pptidos seal se relaciona con un alto grado de hidrofobicidad en esa regin y vemos
que en esta protena hay un marcado carcter hidrofbico al principio de la secuencia.
El anlisis realizado con el programa ProP v.1.0 para determinar prepro-pptidos dentro
de la secuencia, no revel ningn sitio de corte en residuos de arginina o lisina
Resultados
101
Figura 18. Representacin grfica del perfil hidroptico de ThPG1 calculado
mediante el algoritmo de Kyte y Doolittle (1982). Se indica con una flecha la
zona de ruptura del pptido seal.
Se realiz una prediccin in silico de la estructura secundaria de la protena
mediante el programa PSIPRED (Figura 19). Se observ que en la estructura secundaria
de ThPG1 predominaban las regiones de hojas . Adems, el anlisis de la secuencia de
la protena mediante la aplicacin Scan Prosite revel la presencia de posibles sitios de
fosforilacin, miristilacin, sulfatacin y amidacin en los siguientes residuos (Figura
19):
- fosforilacin por proten kinasa C: serina 55 y treonina 282.
- fosforilacin por proten kinasa II: serinas 119, 185 y 276.
- miristilacin: glicinas 9, 45, 108, 115, 133, 174, 190, 201, 225, 232, 240,
281, 290, 314, 334, 348 y 369.
- glucosilacin: asparaginas 227 y 329.
- amidacin: glicina 365.
Resultados
102
Figura 19. Secuencia de la protena ThPG1 incluyendo la prediccin de su estructura secundaria
llevada a cabo con el programa PSIPRED (Jones, 1999). Se han marcado con fondo verde las
conformaciones en hlice y con fondo amarillo las conformaciones en hoja plegada . Tambin se
incluyen los posibles sitios de fosforilacin (en color gris y negro), miristilacin (en color azul),
glucosilacin (en color rojo) y amidacin (en color verde) segn el programa Scan Prosite
(www.expasy.org/tools/scanprosite).
Resultados
103
La secuencia total de la protena ThPG1 se compar mediante el algoritmo
FASTA con las secuencias presentes en la base de datos UNIPROT. Las protenas que
presentaron un mayor nivel de similitud con ThPG1 se recogen en la Tabla 7. La mayor
parte de estas protenas correspondan a endoPGs descritas en diversos hongos, aunque
la funcin de algunas de ellas era desconocida debido a que sus secuencias procedan de
proyectos de secuenciacin.
Tabla 7. Protenas con mayor similitud de secuencia con ThPG1. El anlisis se llev a cabo empleando el
algoritmo FASTA sobre la base de datos UNIPROT. Las protenas estn ordenadas en funcin de su valor
E. Id: identidad
Protena Organismo N aa E % Id N Acceso Referencia
poligalacturonasa
hipottica
Neosartorya
fischeri
378
3,E-
100
73,6 A1D145_NEOFI
poligalacturonasa
hipottica
Aspergillus
fumigatus
378
1,E-
99
73,4
BOXPA1_ASPF
U
poligalacturonasa
Penicillium
occitanis
384
2,E-
98
72,1
A7LH56_9EUR
O
(Trigui-Lahiani
y Gargouri,
2007)
endopoligalacturonasa
hipottica
Emericella
nidulans
380
1,E-
95
70,9
Q5ATQ3_EMEN
I
poligalacturonasa
Ophiostoma
ulmi
379
1,E-
94
68,2
Q4PJU8_OPHU
L
poligalacturonasa O. novo-ulmi 379
1,E-
94
67,9 O59934_OPHNO
endopoligalacturonasa
PG1
Leptosphaeria
maculans
384
8,E-
91
65,4
Q9P8MO_LEPM
C
endopoligalacturonasa
Alternaria
alternata
379
1,E-
90
66,5
Q9C4AO_ALTA
L
(Isshiki y col,
1997)
endopoligalacturonasa A. citri 379
2,E-
90
66,2 Q9C4A1_9PLEO
En la Figura 20 se muestra el alineamiento de la secuencia de aminocidos de
ThPG1 y algunas de las protenas que aparecen recogidas en la Tabla 7, realizado con el
programa ClustalX. En dicho alineamiento se observan las 4 regiones conservadas de
estas protenas que han sido descritas en bibliografa: Asn
194
-Thr
195
-Asp
196
, Asp
217
-
Asp
218
, Gly
238
-His
239
-Gly
240
y Arg
272
-X-Lys
274
(resaltados con un recuadro rojo y segn
la numeracin correspondiente a la secuencia de la protena ThPG1). Dentro de estas
regiones se localizan los residuos conservados en todas las endoPGs y que forman parte
del centro cataltico; los residuos Asn
194
, Asp
196
, Asp
217
, Asp
218
, His
239
y Gly
240
estaran
Resultados
104
implicados en la hidrlisis del sustrato; los residuos Arg
272
y Lys
274
estaran implicados
en la unin al sustrato (van Santen y col., 1999).
Figura 20. Alineamiento y comparacin de la secuencia de aminocidos de ThPG1 con otras
endopoligalacturonasas descritas en diversos hongos: T. reesei (contig C_1000682; http://genome.jgi-
psf.org/), A. alternata (nmero de acceso GenBank: BAB32924), L. maculans (AAF70169), N. fischeri
(XP_001264035), A. fumigatus (XP_753090), B. cinerea (AAC24955) y F. oxysporum (BAE97103).
Las 4 regiones conservadas descritas en bibliografa aparecen marcadas en recuadros rojos. Los
aminocidos conservados en todas las endopoligalacturonasas que forman parte del centro activo de la
protena aparecen marcados con un asterisco (*). El alineamiento se llev a cabo con el programa
ClustalX (Thompson y col., 1994).
Se estudi la estructura de dominios de ThPG1 en la base de datos SMART
(http://smart.embl.de) y se encontr un domino glicoslico (Glyco_Hydro_28, glucosil
hidrolasas familia 28, pfam 00295) que se extenda desde el aminocido 59 hasta el
final de la protena. Este dominio glicoslico engloba un amplio rango de enzimas
implicadas en la degradacin de la pared celular de las plantas. La prediccin de la
estructura terciaria para la protena ThPG1 se realiz con el programa ESyPred3D v1.0
por comparacin con la cadena A de la endopoligalacturonasa cristalizada de
Colletotrichum lupini (2IQ7_A), con un ndice de similitud del 54,4% (Figura 21). Se
utiliz la secuencia de aminocidos de la regin comprendida entre los aminocidos
Resultados
105
Ala
38
y Cys
380
. El modelo obtenido para ThPG1 muestra la disposicin tpica en hlice
paralela dextrgira, tpica de las enzimas que degradan la pectina (Herron y col.,
2000). Este tipo de dominio est constituido por repeticiones de giros formados por
hlices , que a su vez estn compuestas por varias lminas beta unidas (en amarillo en
la figura). El sitio de unin al sustrato se localiza en la hendidura que se forma en la
parte exterior de la hlice (lnea roja en la figura) y donde se localizan los residuos
que componen el centro cataltico de la protena (sealados en la figura).
Figura 21. Modelo terico de la estructura tridimensional de la protena ThPG1
utilizando el programa DeepView-Swiss-PdbViewer. En amarillo se representa las
hlices y en verde las hlices . La hendidura que forma el sitio cataltico de la
enzima est representada con una lnea roja discontinua junto a los aminocidos
que constituyen el centro activo.
El destino celular ms probable de ThPG1 se simul mediante el uso del
programa PSORT II (Nakai y Horton, 1999) que le asign, con una probabilidad del
56%, una ubicacin extracelular.
Resultados
106
4. ANLISIS FILOGENTICO
Se llev a cabo un anlisis filogentico tras un alineamiento de Thpg1 con otras
15 secuencias de genes que codifican endoPGs y endoPGs hipotticas depositadas en la
base de datos GenBank. Se incluyeron genes de 8 ascomicetos, 1 basidiomiceto, 1
oomiceto y 4 plantas. Adems se incluy un gen que codifica una exoPG hipottica de
T. reesei. En la Figura 22 se muestra el rbol filogentico neighbour-joining (NJ),
basado en distancias, y valores de un anlisis bootstrap procedentes de 1000
repeticiones. Se pueden observar dos cuerpos principales, uno donde se sitan las
secuencias de hongos y del oomiceto, y otro donde se sitan las secuencias de plantas.
Adems, la secuencia del oomiceto queda separada de las de hongos por un valor
bootstrap del 59%. La secuencia Thpg1 de T. harzianum T34 se agrup con la endoPG
hipottica de T.virens formando un subgrupo soportado por un valor bootstrap del
100%.
Figura 22. rbol filogentico de Thpg1 de T. harzianum T34 con otras 13 secuencias de endoPGs y
una exoPG hipottica de T. reesei (en color azul) (C_33000038, http://genome.jgi-psf.org/). En color
gris se presentan los ascomicetos, en color amarillo el basidiomiceto, en naranja el oomiceto y en verde
las secuencias de plantas. El alineamiento se llev a cabo con el programa ClustalX (Thompson y col.,
1994) y el rbol neighbour-joining se obtuvo utilizando el programa MEGA v 2.1 (Kumar y col., 2001).
Los nmeros en las ramas indican los valores bootstrap procedentes de un anlisis de 1.000
repeticiones. A la derecha de cada especie aparece su nmero de acceso en la base de datos GenBank.
El acceso a la secuencia de T. virens se encuentra en la pgina web http://genome.jgi-psf.org/
(e_gw1.27.146.1). La barra representa 20 sustituciones por cada 100 aminocidos.
Resultados
107
5. ESTUDIO DE LA EXPRESIN DEL GEN Thpg1
El patrn de expresin del gen Thpg1 se analiz mediante hibridaciones tipo
Northern. Para ello, se utilizaron 15 g de ARN total extrado a partir de micelio de T.
harzianum T34 crecido en MM (Penttil y col., 1987), sin glucosa, durante 4, 8 24
horas, bajo distintas condiciones de cultivo, tal y como se describe en el apartado 4.1.4
de Materiales y Mtodos. Se utilizaron condiciones de induccin que simulaban
situaciones de estrs bitico como: presencia de pectina al 0,1 y 0,5%, presencia de
PGA al 0,1 y 0,5%, plantas de tomate al 1% y paredes celulares de los hongos B.
cinerea 26, R. solani 19 o P. ultimum 8 al 1%. Tambin se cultiv T. harzianum T34 en
condiciones de dficit de fuente de carbono, dficit de nitrgeno (sulfato amnico 50
mg/L) y una combinacin de ambas situaciones. Todas estas condiciones se realizaron
en ausencia de glucosa, excepto la condicin con glucosa al 2%. Como sonda se utiliz
la secuencia de la ORF del gen Thpg1. Esta sonda se obtuvo marcando radiactivamente
el producto de PCR obtenido tras amplificar el ADN plasmdico clonado en el vector
pGEM-T