JPS6219093A - L−フエニルアラニンの製造方法 - Google Patents
L−フエニルアラニンの製造方法Info
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- JPS6219093A JPS6219093A JP15512585A JP15512585A JPS6219093A JP S6219093 A JPS6219093 A JP S6219093A JP 15512585 A JP15512585 A JP 15512585A JP 15512585 A JP15512585 A JP 15512585A JP S6219093 A JPS6219093 A JP S6219093A
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- JP
- Japan
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- phenylalanine
- adenine dinucleotide
- nicotinamide adenine
- ammonia
- nadh
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は酵素法によるL−ツーニルアラニンの製造方法
に関するものであり、さらに詳しくは補酵素NADI−
Tおよび/またはNADPHの存在下でフェニルピルビ
ン酸とアンモニアからし一フェニルアラニンを生産する
酵素活性を有するロドコッカス属に属する微生物の培養
液、菌体、または菌体処理物を用いるフェニルピルビン
酸からのL−−yエニルアラニンの製造方法に関する。
に関するものであり、さらに詳しくは補酵素NADI−
Tおよび/またはNADPHの存在下でフェニルピルビ
ン酸とアンモニアからし一フェニルアラニンを生産する
酵素活性を有するロドコッカス属に属する微生物の培養
液、菌体、または菌体処理物を用いるフェニルピルビン
酸からのL−−yエニルアラニンの製造方法に関する。
産業上の利用分野
L−フェニルアラニンは必須アミノ酸の一種であり、輸
液の成分として重要であるばかりでなく。
液の成分として重要であるばかりでなく。
新しい人工甘味剤であるアスパルテーム(α−L−アス
パルチルーL−フェニルアラニンメチルエステル)の原
料として、近年その需要が大きくなっている。
パルチルーL−フェニルアラニンメチルエステル)の原
料として、近年その需要が大きくなっている。
従来の技術
L−ツーニルアラニンは従来、化学合成法や発酵法で生
産されてきたが、前者では合成されたDL一体のラセミ
分割が必要であり、後者では必ずしもその蓄積量が実用
化レベルとしては十分ではないという欠点を有していた
。したがって適当な前駆物質を用いた酵素法によるL−
フェニルアラニンの製造法が開発されれば、工業化を行
なう上でのメIJ ノ)は非常に太きい。
産されてきたが、前者では合成されたDL一体のラセミ
分割が必要であり、後者では必ずしもその蓄積量が実用
化レベルとしては十分ではないという欠点を有していた
。したがって適当な前駆物質を用いた酵素法によるL−
フェニルアラニンの製造法が開発されれば、工業化を行
なう上でのメIJ ノ)は非常に太きい。
酵素法によるL−ツーニルアラニンの製造法としては、
これまでにトランスアミナーゼを利用したフェニルピル
ビン酸からの製法、ヒダントイナ−ゼを利用したDL−
5−ベンジルヒダントインからの製法、フェニルアラニ
ンアンモニアリアーゼを利用した桂皮酸からの製法など
が報告されている。しかしながら、いずれの方法も、こ
れら前駆物質からのL−フェニルアラニンへの転換率や
前駆物質の価格の面において問題を残している。
これまでにトランスアミナーゼを利用したフェニルピル
ビン酸からの製法、ヒダントイナ−ゼを利用したDL−
5−ベンジルヒダントインからの製法、フェニルアラニ
ンアンモニアリアーゼを利用した桂皮酸からの製法など
が報告されている。しかしながら、いずれの方法も、こ
れら前駆物質からのL−フェニルアラニンへの転換率や
前駆物質の価格の面において問題を残している。
本発明者らは、こうした欠点のないL−フェニルアラニ
ンの製造方法を種々検討した結果、 NAT’)Hおよ
び/またはNADPHの存在下でツーニルビル、ビン酸
とアンモニアからL−フェニルアラニンを生産する能力
を有する微生物を土壌中より見出し。
ンの製造方法を種々検討した結果、 NAT’)Hおよ
び/またはNADPHの存在下でツーニルビル、ビン酸
とアンモニアからL−フェニルアラニンを生産する能力
を有する微生物を土壌中より見出し。
その発見に基づき本発明を完成させた。
本発明に用いられるMT−20076株およびMT−2
0082株は顕著なフェニルアラニンデヒドロゲナーゼ
活性を有している。
0082株は顕著なフェニルアラニンデヒドロゲナーゼ
活性を有している。
アミノ酸デヒドロゲナーゼ反応においては、グルタメー
トデヒドロゲナーゼ、アラニンデヒドロゲナーゼ等の例
にみもれるように、一般にその反応の平衡が対応するα
−ケト酸からL−アミノ酸を生成する方向へ著しく片寄
っており、効率良(L−アミノ酸を製造するためにアミ
ノ酸デヒドロゲナーゼ反応を利用する方法は非常に有利
である。
トデヒドロゲナーゼ、アラニンデヒドロゲナーゼ等の例
にみもれるように、一般にその反応の平衡が対応するα
−ケト酸からL−アミノ酸を生成する方向へ著しく片寄
っており、効率良(L−アミノ酸を製造するためにアミ
ノ酸デヒドロゲナーゼ反応を利用する方法は非常に有利
である。
また、基質のフェニルピルビン酸にはD−1L一体が存
在しないため化学合成法により基質を比較的安価に供給
することができる。
在しないため化学合成法により基質を比較的安価に供給
することができる。
補酵素NA、1)Hおよび/またはNA、DPHは必ず
しも基質等量を反応系に添加する必要はなく1例えばア
ルコールデヒドロゲナーゼやフォルメートデヒドロゲナ
ーゼのようなNADHおよび/またはNAI)PHの再
生反応を触媒する酵素とその基質を系内に共存させてお
くことにより、触媒量の補酵素を何度も回転させて利用
することができる。
しも基質等量を反応系に添加する必要はなく1例えばア
ルコールデヒドロゲナーゼやフォルメートデヒドロゲナ
ーゼのようなNADHおよび/またはNAI)PHの再
生反応を触媒する酵素とその基質を系内に共存させてお
くことにより、触媒量の補酵素を何度も回転させて利用
することができる。
菌体なそのまま反応して用いる場合には菌体内のNAD
’Hおよび/またはNADPHのみである程度まで反応
を進めることも可能である。
’Hおよび/またはNADPHのみである程度まで反応
を進めることも可能である。
フェニルアラニンデヒドロゲナーゼについては。
既に報告されたもの(特開昭59−198972)があ
るが5本発明に用いられる微生物の種類、酵素の性質は
、以下に述べるように既報のものどは全く異なる新しい
ものであるといえる。
るが5本発明に用いられる微生物の種類、酵素の性質は
、以下に述べるように既報のものどは全く異なる新しい
ものであるといえる。
1)微生物が放線菌ロドコッカス属に属する。
(既報のものはブレビバクテリウム属の細菌)2)NA
DH,NADPHがともに補酵素としてほぼ同等に有効
である。(既報のものはNADHのみ有効) 3) L−フヱニルアラニン合成反応(還元的アミノ
化反応)の至適pHは10.ト11.0である。
DH,NADPHがともに補酵素としてほぼ同等に有効
である。(既報のものはNADHのみ有効) 3) L−フヱニルアラニン合成反応(還元的アミノ
化反応)の至適pHは10.ト11.0である。
(既報のものはpH8,5)
本発明の概説
本発明に用いられるロドコッカス・エリスロポリス(F
Lhodococcus erythropol i
s)MT−20076株、MT−20082株はそれぞ
れ微工研菌寄第8281号および第8282号として寄
託されており、それぞれの菌学的性質は特に示さない限
り以下のように同一である。
Lhodococcus erythropol i
s)MT−20076株、MT−20082株はそれぞ
れ微工研菌寄第8281号および第8282号として寄
託されており、それぞれの菌学的性質は特に示さない限
り以下のように同一である。
以上の菌学的性質を放置(Journal of (3
enera1Microbiology 10099−
122(1977)、および”The Prokary
otes”(1981)155章)の記述に基づいて分
類すると、生理学的性質にわずかに相違点がみられるも
のの1両菌株ともロドコッカス・エリスロポリスに属す
るものであると認められた。
enera1Microbiology 10099−
122(1977)、および”The Prokary
otes”(1981)155章)の記述に基づいて分
類すると、生理学的性質にわずかに相違点がみられるも
のの1両菌株ともロドコッカス・エリスロポリスに属す
るものであると認められた。
これらの菌株の培養は1通常、振盪培養あるいは通気攪
拌深部培養などの好気的条件下で行なう。
拌深部培養などの好気的条件下で行なう。
培養温度は15〜35℃であり、培養中の培地のPHは
中性または微アルカリ性付近に維持することが望ましい
。培養期間は通常1〜3日間である。
中性または微アルカリ性付近に維持することが望ましい
。培養期間は通常1〜3日間である。
培地に使用する炭素源および窒素源は、使用菌の利用可
能なものならばいずれの種類を用いても良いが、高いし
一フェニルアラニン合成活性を有する菌体を得るために
は、培地中にL−フェニルアラニンを0.05〜1係、
好ましくは0.1〜0.4係程度添加すると良い。炭素
源を具体的に述べるト、クルコース、グリセロール、フ
ラクトース。
能なものならばいずれの種類を用いても良いが、高いし
一フェニルアラニン合成活性を有する菌体を得るために
は、培地中にL−フェニルアラニンを0.05〜1係、
好ましくは0.1〜0.4係程度添加すると良い。炭素
源を具体的に述べるト、クルコース、グリセロール、フ
ラクトース。
シークロース、澱粉加水分解液、糖蜜などの種々の炭水
化物が使用できる。窒素源としてはアンモニア、塩化ア
ンモニウム、硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢
酸アンモニウムなどの各種の無機および有機アンモニウ
ム塩類、または肉エキス、酵母エキス、コーン・スチー
プ・リカー、カゼイン加水分解物、フィンシーミールあ
るいはその消化物などの天然有機窒素源が使用可能であ
る。
化物が使用できる。窒素源としてはアンモニア、塩化ア
ンモニウム、硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢
酸アンモニウムなどの各種の無機および有機アンモニウ
ム塩類、または肉エキス、酵母エキス、コーン・スチー
プ・リカー、カゼイン加水分解物、フィンシーミールあ
るいはその消化物などの天然有機窒素源が使用可能であ
る。
天然有機窒素源の多くの場合は窒素源であると共に炭素
源にもなり得る。さらに無機物としてリン酸−カリウム
、リン酸二カリウム、塩化カリウム、塩化ナトリウム、
硫酸マグネシウム、リン酸第−鉄なども心安に応じて使
用すると好都合である。
源にもなり得る。さらに無機物としてリン酸−カリウム
、リン酸二カリウム、塩化カリウム、塩化ナトリウム、
硫酸マグネシウム、リン酸第−鉄なども心安に応じて使
用すると好都合である。
本発明に酵素源として使用されるものは2種類に大別さ
れる。
れる。
まず、菌株の培養物をそのまま、又はそれからの酵素抽
出物である。
出物である。
培養液から遠心分離などの方法により採集した生菌体を
そのま〜用いる場合は外部より反応液に添加するNAD
Hおよび/またはNADPHは無効であり、この場合は
菌体内に存在するこれらの補酵素および再生系が利用さ
れることになる。
そのま〜用いる場合は外部より反応液に添加するNAD
Hおよび/またはNADPHは無効であり、この場合は
菌体内に存在するこれらの補酵素および再生系が利用さ
れることになる。
一方、菌体の磨砕、自己消化、超音波処理な・どの処理
により得られる菌体処理物、または菌体からの抽出物な
どを用いる場合には反応液に添加したNA’D)(およ
び/またはNA、DPT(は有効にはたらく。
により得られる菌体処理物、または菌体からの抽出物な
どを用いる場合には反応液に添加したNA’D)(およ
び/またはNA、DPT(は有効にはたらく。
この場合、当該菌株の外部から導入したN ADHおよ
び/またはN A D P I−Iの再生系の共存下で
、触媒量のこれらの補酵素を回転させながら反応を行な
うことが可能である。
び/またはN A D P I−Iの再生系の共存下で
、触媒量のこれらの補酵素を回転させながら反応を行な
うことが可能である。
本発明の実施におけるL−ツーニルアラニンの合成反応
は中性から弱アルカリ性にかけてのP I−1の水溶液
中で行なわれる。すなわち1反応液のPHは6〜12の
範囲にあり、望ましくは8〜11である。反応温度は2
0〜50°C1好ましくは25〜40℃である。
は中性から弱アルカリ性にかけてのP I−1の水溶液
中で行なわれる。すなわち1反応液のPHは6〜12の
範囲にあり、望ましくは8〜11である。反応温度は2
0〜50°C1好ましくは25〜40℃である。
次に実施例により本発明を説明するが、各側とも生成し
たL−ツーニルアラニンは高速液体クロマトグラフィー
で定量した。
たL−ツーニルアラニンは高速液体クロマトグラフィー
で定量した。
(実施例1)
ロドコッカス・エリスロポリスMT−20076株。
MT−20082株を0.2係 L−フェニルアラニン
を含む6−のブイヨン培地(肉エキス1係、ペプトン1
チ、塩化ナトリウム0.5%、 PT−I 7.0 )
に1白金耳植菌し、試験管中で30℃で16時間振盪培
養した。生育した菌体を遠心分離により集め。
を含む6−のブイヨン培地(肉エキス1係、ペプトン1
チ、塩化ナトリウム0.5%、 PT−I 7.0 )
に1白金耳植菌し、試験管中で30℃で16時間振盪培
養した。生育した菌体を遠心分離により集め。
生理食塩水で一度洗浄した後、生理食塩水1.5−に懸
濁し、菌体を超音波処理で破砕した。この処理液0.2
−を含有する全量Oj3mlの反応液(20mMフェニ
ルピルビン酸、20 mMNADH、200m’M塩化
アンモニウム、1100rnビロリン酸カリウムを含む
。PH8,5) ノ中で37°Cで30分間反応を行な
った。反応液中にはMT−20076株の場合3.2
mM 、 MT−20082株の場合8.5mMのL−
フェニルアラニンが生成していた。
濁し、菌体を超音波処理で破砕した。この処理液0.2
−を含有する全量Oj3mlの反応液(20mMフェニ
ルピルビン酸、20 mMNADH、200m’M塩化
アンモニウム、1100rnビロリン酸カリウムを含む
。PH8,5) ノ中で37°Cで30分間反応を行な
った。反応液中にはMT−20076株の場合3.2
mM 、 MT−20082株の場合8.5mMのL−
フェニルアラニンが生成していた。
(実施例2)
11当りペプトン2g、グリセロール10g、塩化アン
モニウム3g、リン酸−カリウムl。
モニウム3g、リン酸−カリウムl。
リン酸二カリウム19.塩化ナトリウム1g、硫酸マグ
ネシウム・7水塩0.1g、酵母エキス0.2qを含む
PH7,0の基本培地を調製した。
ネシウム・7水塩0.1g、酵母エキス0.2qを含む
PH7,0の基本培地を調製した。
この基本培地および基本培地にL−フェニルアラニンを
0.2 %添加した培地120−を入れた坂ロフラスコ
に、ロッドコツカス・エリスロホリスMT−20082
株を1白金耳植菌し、30℃で40時間撮撮盪養した。
0.2 %添加した培地120−を入れた坂ロフラスコ
に、ロッドコツカス・エリスロホリスMT−20082
株を1白金耳植菌し、30℃で40時間撮撮盪養した。
生育した菌体を遠心分離により集菌した後、再び100
−の生理食塩水に懸濁し、坂ロフラスコ中で300G、
3時間振盪した。
−の生理食塩水に懸濁し、坂ロフラスコ中で300G、
3時間振盪した。
菌体を遠心分離により集め、生理食塩水に100Tn9
/−の濃度に懸濁し、超音波処理で破砕した。
/−の濃度に懸濁し、超音波処理で破砕した。
この処理液1−を含む全量4−の反応液(20mM フ
ェニルピルビン酸、20 mM NADHマたはNA、
DPI、200 mM塩化アンモニウム−アンモニア、
PH10,0)中で、37℃で2時間反応を行なった
。対照区として、NADH,NADPHのいずれも添加
しない実験区を設定した。
ェニルピルビン酸、20 mM NADHマたはNA、
DPI、200 mM塩化アンモニウム−アンモニア、
PH10,0)中で、37℃で2時間反応を行なった
。対照区として、NADH,NADPHのいずれも添加
しない実験区を設定した。
生じたフェニルアラニンの量を表1に示す。培地にL−
フェニルアラニンを添加することにより。
フェニルアラニンを添加することにより。
酵素活性が著しく上昇すること、NA、DPHがNAD
Hと同様に補酵素として有効であることが明らかである
。
Hと同様に補酵素として有効であることが明らかである
。
補酵素の添加区で生じたフェニルアラニンのD一体、L
一体を判定するために反応液を銅イオンとL−プロリン
を含む移動相を用いた逆相カラムクロマトグラフィーに
かけたところ、いずれのサンプル中のフェニルアラニン
も1001;L一体であった。
一体を判定するために反応液を銅イオンとL−プロリン
を含む移動相を用いた逆相カラムクロマトグラフィーに
かけたところ、いずれのサンプル中のフェニルアラニン
も1001;L一体であった。
(実施例3)
実施例2に示したL−ツーニルアラニンを0.2係添加
した基本培地120m/(坂ロフラスコ)にロドコッカ
ス・エリスロポリスMT−20082株を1白金耳植菌
し、30℃で32時間撮撮盪養した。
した基本培地120m/(坂ロフラスコ)にロドコッカ
ス・エリスロポリスMT−20082株を1白金耳植菌
し、30℃で32時間撮撮盪養した。
生育した菌体を遠心分離により集菌し、生理食塩水で1
回洗浄した後反応に用いた。反応液(4−)は、50m
Mフェニルピルビン酸、200mM塩化アンモニウム、
500mMエタノール、 100mMピロリン酸カリ
ウム、および200 mgの菌体を含有し、pHは8.
5である。
回洗浄した後反応に用いた。反応液(4−)は、50m
Mフェニルピルビン酸、200mM塩化アンモニウム、
500mMエタノール、 100mMピロリン酸カリ
ウム、および200 mgの菌体を含有し、pHは8.
5である。
密閉した試験管中でゆるやかに振盪しながら30℃で2
4時間反応を行なったところ、反応液中には39.3
mMのフェニルアラニンが生成していた。
4時間反応を行なったところ、反応液中には39.3
mMのフェニルアラニンが生成していた。
生じたフェニルアラニンは実施例2と同様の方法により
100チがL一体であることを確認した。
100チがL一体であることを確認した。
(実施例4)
実施例3と同様の方法で培養し、洗浄した菌体を100
m9/−の濃度に生理食塩中に懸濁し、超音波処理によ
り菌体を破砕した。
m9/−の濃度に生理食塩中に懸濁し、超音波処理によ
り菌体を破砕した。
この処理液l mlを含む全量5−の反応液(20mM
フェニルピルビンH、100mM 硫酸アンモニウム、
0.5mMNAD+、500mMエタノ−yv、 1.
00mMピロリン酸カリウムおよび5unitの市販ア
ルコールデヒドロゲナーゼを含む。I)H9,0)の中
で37℃で2時間反応を行なったところ1反応液中には
12.6mMのし一フェニルアラニンが生じていた。
フェニルピルビンH、100mM 硫酸アンモニウム、
0.5mMNAD+、500mMエタノ−yv、 1.
00mMピロリン酸カリウムおよび5unitの市販ア
ルコールデヒドロゲナーゼを含む。I)H9,0)の中
で37℃で2時間反応を行なったところ1反応液中には
12.6mMのし一フェニルアラニンが生じていた。
(実施例5)
実施例3と同様の方法で培養し、洗浄した菌体を、20
%グリセロール中に601n9/−の濃度に懸濁し、超
音波処理を行ない、さらに処理液の遠心分離により透明
な上清を得た。この上清中にはタンパクが1.0mg/
−含まれていた( Lowry法による)。これを粗酵
素液として用い、L−ツー二ルアラニン合成反応の速度
とpHとの相関関係を調べた。反応液は全量0.2−で
20mMフェニルピルビン酸、 20 mM NA、D
H,200mM塩化アンモニウム、100mMの緩衝液
、および0.05−の粗酵素液を含む。37℃で30分
間反応させた後に生じたし一フーニルアラニンの量をp
H値との関数として添付の図面に示した。図面より明ら
かなように1反応の至適p I−Tは10.0〜11.
0であった。
%グリセロール中に601n9/−の濃度に懸濁し、超
音波処理を行ない、さらに処理液の遠心分離により透明
な上清を得た。この上清中にはタンパクが1.0mg/
−含まれていた( Lowry法による)。これを粗酵
素液として用い、L−ツー二ルアラニン合成反応の速度
とpHとの相関関係を調べた。反応液は全量0.2−で
20mMフェニルピルビン酸、 20 mM NA、D
H,200mM塩化アンモニウム、100mMの緩衝液
、および0.05−の粗酵素液を含む。37℃で30分
間反応させた後に生じたし一フーニルアラニンの量をp
H値との関数として添付の図面に示した。図面より明ら
かなように1反応の至適p I−Tは10.0〜11.
0であった。
図面は1本発明に係る微生物酵素の至適pHを示すグラ
フである。 特許出願人 三井東王化学株式会社 d’jl(、+1112 ビH 手 続 補 正 書 昭和60年8月22日 特許庁長官 殿 1、事件の表示 昭和60年特許願第155125号 2、発明の名称 L−フェニルアラニンの製造方法 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 東京都千代田区霞が関三丁目2番5号5、補
正の内容 (1)明細書第4頁下から第7行の1反応して」の記載
を「反応に」と補正する。 (2)明細書の第7頁第7行の「放置」の記載を「雑誌
」と補正する。 (3)明細書の第7頁第8行の1および」の記載を1及
び放置」と補正する。 (4)明細書の第9頁第2行の1まず」の記載を1即ち
」と補正する。
フである。 特許出願人 三井東王化学株式会社 d’jl(、+1112 ビH 手 続 補 正 書 昭和60年8月22日 特許庁長官 殿 1、事件の表示 昭和60年特許願第155125号 2、発明の名称 L−フェニルアラニンの製造方法 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 東京都千代田区霞が関三丁目2番5号5、補
正の内容 (1)明細書第4頁下から第7行の1反応して」の記載
を「反応に」と補正する。 (2)明細書の第7頁第7行の「放置」の記載を「雑誌
」と補正する。 (3)明細書の第7頁第8行の1および」の記載を1及
び放置」と補正する。 (4)明細書の第9頁第2行の1まず」の記載を1即ち
」と補正する。
Claims (1)
- ロドコッカス属(Rhodococcus)に属し、N
ADHおよび/またはNADPHの存在下でフェニルピ
ルビン酸とアンモニアからL−フェニルアラニンを生産
する能力を有する微生物の酵素作用により、フェニルピ
ルビン酸、アンモニア、NADHおよび/またはNAD
PHからL−フェニルアラニンを生成させることを特徴
とするL−フェニルアラニンの製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP15512585A JPS6219093A (ja) | 1985-07-16 | 1985-07-16 | L−フエニルアラニンの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP15512585A JPS6219093A (ja) | 1985-07-16 | 1985-07-16 | L−フエニルアラニンの製造方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6219093A true JPS6219093A (ja) | 1987-01-27 |
Family
ID=15599102
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP15512585A Pending JPS6219093A (ja) | 1985-07-16 | 1985-07-16 | L−フエニルアラニンの製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6219093A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106290212A (zh) * | 2016-08-16 | 2017-01-04 | 山东博科生物产业有限公司 | 一种灵敏度高的丙酮酸检测试剂 |
-
1985
- 1985-07-16 JP JP15512585A patent/JPS6219093A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106290212A (zh) * | 2016-08-16 | 2017-01-04 | 山东博科生物产业有限公司 | 一种灵敏度高的丙酮酸检测试剂 |
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