JP6721503B2 - 二重特異性ナノボディ - Google Patents
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Description
(1)上で示された通り、一般的に抗体は最高の親和性についてスクリーニングされ、一方、低親和性結合因子は捨てられる。この場合には、低親和性結合因子が要求されるのみならず、同時に、それらの低親和性結合因子は、結合したときにその標的の機能を妨害しなければならない。結合は単純明快ではないので、その機能を試験することはチャレンジングである。
(2)係留アーム側では、高親和性結合因子がその標的の機能に最小限のインパクトのみを及ぼすということがさらに確かめられ、試験されなければならない。
(3)二重特異性フォーマットにおいて、2つのビルディングブロック(例えばISV)の組み合わせられた相互作用が正しく読み取られ、各個体の結合因子の可能な相加的効果とは識別されるということが確定されなければならない。
白血病は、白血球のコントロールされていない蓄積によってキャラクタリゼーションされる骨髄および血液の悪性疾患である。白血病は、関わる細胞(それぞれ、骨髄前駆体細胞またはTおよびBリンパ球)の型に従って骨髄性またはリンパ性いずれかに分類される。なおその上に、白血病は臨床像および経過に基づいて慢性または急性いずれかに分類される。急性白血病は、疾患の急速に進行する形態であり、血液、骨髄、および組織中への未成熟な機能の無い細胞(芽球)の蓄積をもたらす。骨髄は、多くの場合、十分な正常な赤血球、白血球、および血小板をもはや産生し得ず、これは貧血、感染と戦うための低減された能力、ならびに容易な痣および出血につながる。慢性白血病はよりゆっくり進行し、機能的でより成熟した細胞のより大きい数が産生されることを許す。白血病の診断は、血液検査、骨髄生検、およびいくつかの場合には腰椎穿刺を要求する。骨髄および/または血液の組織学、フローサイトメトリー(イムノフェノタイピング)、細胞化学、および細胞遺伝学(DNA分析)が、白血病の正確な型および亜型を決定するために用いられる。白血病の4つの主な型がある:
(1)急性リンパ球性白血病(ALL、急性リンパ性白血病または急性リンパ芽球性白血病としてもまた公知);(2)慢性骨髄性白血病(CML、慢性顆粒球性白血病、慢性骨髄球性白血病、または慢性骨髄白血病ともまた言われる);(3)慢性リンパ球性白血病(CLL、慢性リンパ性白血病ともまた呼ばれる)。有毛細胞白血病(HCL)は慢性リンパ性白血病の稀な型である;(4)急性骨髄性白血病(AML、急性骨髄球性白血病、急性骨髄芽球性白血病、急性顆粒球性白血病、または急性非リンパ球性白血病としてもまた公知)。AMLのホールマークは、骨髄中の骨髄前駆細胞(「芽球」)の異常な増殖、自己破壊の低減された率、および細胞分化の停止である。芽球細胞が、正常な様式で分化し且つ細胞増殖の正常な制御因子に応答するそれらの能力を失うとき、結果は、高頻度の感染、出血、および臓器浸潤である。白血病細胞は正常な健康な細胞に対する異常な生存優位性を授かっており、その結果、骨髄および末梢血は未成熟な芽球細胞によって増々占められ、これが正常な血球を追い出して行く。AMLは成人における最も普通の悪性の骨髄性障害である。2009年のU.S.では、AML:12,810の新たな症例(成人においてはおよそ90%)、ALL:5,760、CML:5,050、CLL:約15,490の新たな症例、他の白血病:5,680。発症時の中位年齢は70歳であり、疾患は女性よりも多く男性を冒すが、小児AMLは稀ではない。現行の処置は侵襲的な化学療法である。患者の50〜80%では完全な寛解があるが、まだ高頻度の最小限の残遺疾患および再発がある。自家または同種幹細胞移植が、免疫を取り戻すために要求される。AMLは全ての白血病の中で最低の生存率と関連している。60歳未満の患者の5年生存率は30%であり、一方、65歳超の患者の5年生存率は10%未満である。ゆえに、明白な医学的必要がある。
上皮成長因子受容体(EGFR)は、上皮起源の多くの正常なヒト細胞において発現されるErbBチロシンキナーゼ受容体のメンバーであり、細胞成長、分化、および増殖に重要な役割を果たす。皮膚においては、上皮、皮脂腺、および毛包上皮において正常には発現されており、そこで正常な皮膚の健康の維持にいくつもの重要な役割を果たす。多くの場合に、消化管の悪性を包含するさまざまな固形腫瘍において過剰発現または脱制御される。脱制御したEGFRは、コントロールされていない細胞成長、増殖、および血管新生をもたらし得、増大した転移能およびより不良な総合的な生存となって現れるより不良な予後と関連する。
T細胞によって媒介される免疫は、抗原(Ag)特異的なTリンパ球を発生させてウイルス、細菌、もしくは寄生虫感染、または悪性の細胞を除く適応プロセスである。T細胞によって媒介される免疫には自己Agの異常な認識もまた関わり得、これは自己免疫性炎症性疾患につながる。T細胞によって媒介される免疫は適応免疫システムの中心的な要素であり、ナイーブT細胞による一次応答、活性化T細胞によるエフェクター機能、およびAg特異的なメモリーT細胞の存続を包含する。IL−12はナイーブT細胞からTh1細胞への分化に関わっている。IL−23はナイーブCD4+T細胞から高度に病原性のヘルパーT細胞への分化を誘導する。
ヒト免疫不全ウイルス(HIV)による感染は、未処置で放置された場合には、ほぼ常に感染者の死につながる。HIVはCD4+T細胞に感染し、感染者のCD4+T細胞の数の低下につながる。CD4+T細胞数が決定的に重要なレベルよりも下まで低下したときには、細胞によって媒介される免疫が有効に失われ、さまざまな日和見微生物による感染が現れて、後天性免疫不全症候群(AIDS)をもたらす。HIV感染者はそれらの日和見感染に対してもはや防御し得ないので、患者は最後にはそれらの感染の1つに屈する。
a)別様に指示または定義されない限り、用いられる全ての用語は当分野におけるそれらの通常の意味を有し、それらは当業者には明白であろう。例えばWO08/020079の46ページのパラグラフa)に挙げられている標準的なハンドブックが参照される。
本発明は、「本発明のポリペプチド」ともまた言われる特定のポリペプチドに関し、これは(i)第1の免疫グロブリン単一可変ドメインから本質的になる第1のビルディングブロック(その第1の免疫グロブリン単一可変ドメインは低親和性で細胞の表面上の第1の標的に結合するが、結合したときには、その第1の標的の機能を損するかまたは阻害する(機能ISV))と(ii)第2の免疫グロブリン単一可変ドメインから本質的になる第2のビルディングブロック(その第2の免疫グロブリン単一可変ドメインは高親和性で細胞の表面上の第2の標的に結合するが、結合したときには、好ましくは最小限にのみその第2の標的の機能を損するかまたは阻害する(係留ISV))とを含むか、またはそれから本質的になる。加えてまたは代替的に、その第2の標的の機能は好ましくは細胞にとって不可欠でなく、例えば冗長的である。結果的に、その第2の標的(「係留部」)の機能を阻害することは、限定されたまたは無視できる副作用および/または毒性をもたらすであろう。それにもかかわらず、正常細胞上のその第2の標的(係留部)のみの機能を阻害すること(すなわち、その第1の標的の機能を阻害すること無し)は、1つまたは両方の標的いずれかに対する高親和性抗体を用いる処置と比較したときに、既に毒性および副作用の有意な低減である。本発明のポリペプチドは、従来技術の抗体よりも特異的な腫瘍増殖の阻害および腫瘍細胞の停止または死を提供する。好ましくは、本発明の二重特異性ポリペプチドは少なくとも2つの結合部分(例えば、2つのビルディングブロック、ISV、またはナノボディなど)を含み、少なくとも第1の結合部分(機能ISV)は腫瘍関連抗原(例えば、腫瘍細胞上に発現される抗原。「腫瘍マーカー」ともまた呼ばれる)に特異的である。用語二重特異性ポリペプチド、二重特異性体、および二重特異性抗体は本明細書において交換可能に用いられる。
− その第1のISV(機能ISV)は低親和性で第1の標的に結合し、
− その第2のISV(係留ISV)は高親和性で第2の標的に結合し、
その第1の標的およびその第2の標的は細胞の表面上に存在し、その第1の標的はその第2の標的とは異なり、任意でその第1のビルディングブロック(機能ビルディングブロックまたは係留ISV)とその第2のビルディングブロック(係留ビルディングブロックまたは係留ISV)とはリンカーを介して連結される。
本明細書に記載される通り、本発明のポリペプチドは少なくとも2つのビルディングブロック(例えば本発明のISVまたはナノボディ)を含有し、その第1のビルディングブロック、ISV、またはナノボディは、疾患または障害(例えば悪性)に関わる(特にAMLなどの白血病に関わる)第1の標的に対するものであり、さらにより特にはヒトCXCR4に対するものである。好ましくは、その第1の標的は有疾患細胞(例えば癌細胞)にユニークであり、例えばその第1の標的は正常細胞上に発現されない。しかしながら、これは一般的には当てはまらないであろう。たいていの場合、その第1の標的は正常および有疾患細胞(例えば癌細胞)両方に存在するであろう。ゆえに、有疾患細胞(例えば癌細胞)に対する特異性を増大ならびに/または副作用および毒性(例えば、正常細胞への結合を原因とする)を減少させるために、かかるポリペプチド中の第1のビルディングブロック、ISV、またはナノボディは、第1および第2の標的両方が細胞(好ましくは癌細胞)上に存在するときに、本発明の対応する単量体または一価ビルディングブロック、ISV、またはナノボディと比較して増大したアビディティでその第1の標的(特にヒトCXCR4)に結合するであろう(シスフォーマット)。第1の標的に結合したときには、その第1の機能ビルディングブロック、ISV、またはナノボディはその第1の標的の機能を阻害する。
本発明の第2のビルディングブロック、ISV、ナノボディ、またはVHHは、その第2の標的に対する高親和性を有する。本発明の第2のビルディングブロック、ISV、またはナノボディは、例えば、その第2の標的の抗原決定基、エピトープ、パーツ、ドメイン、サブユニット、または立体配座(confirmation)(応用可能な場合)に対してであり得る。第2のビルディングブロック(例えば第2のISV、ナノボディ、またはVHH)は、その標的そのものに対するその高親和性について選ばれ、いずれかのアビディティ効果の影響は無視する。
特異性を増大させ、それゆえに副作用および/または毒性を最小化するために、第2の係留標的は好ましくは腫瘍関連抗原(TAA)である。TAAは、典型的には、特定の腫瘍の細胞上に発現されるが、典型的には正常細胞において発現されない抗原である。多くの場合に、TAAは、正常には生物の発生の特定のポイントの(例えば胎児発生中の)細胞において発現され、且つ発生の現時点の生物において不適切に発現されている抗原であるか、または、今では抗原を発現する臓器の正常な組織もしくは細胞においては発現されない抗原である。第2の係留標的としての好ましいTAAは、MART−1、癌胎児性抗原(「CEA」)、gp100、MAGE−1、HER−2、およびルイスY抗原を包含する。
− 第1の標的としての受容体チロシンキナーゼおよび第2の標的としての腫瘍関連抗原(TAA)、
− 第1の標的としてのG蛋白質共役受容体(GPCR)および第2の標的としての造血系分化抗原、
− 第1の標的としての受容体チロシンキナーゼおよび第2の標的としての造血系分化抗原、
− 第1の標的としてのG蛋白質共役受容体(GPCR)および第2の標的としての腫瘍関連抗原(TAA)、
− 第1の標的としてのCXCR4および第2の標的としてのCD123、
− 第1の標的としてのDR5および第2の標的としてのEpCam、
− 第1の標的としてのDR4および第2の標的としてのEpCam、
− 第1の標的としてのCD95および第2の標的としてのEpCam、
− 第1の標的としてのCD47および第2の標的としてのCD123、
− 第1の標的としてのCD47および第2の標的としてのEpCam、
− 第1の標的としてのEGFRおよび第2の標的としてのCEA、
− 第1の標的としてのCD4および第2の標的としてのCXCR4、
− 第1の標的としてのIL12Rβ1および第2の標的としてのCD4、
− 第1の標的としてのIL12Rβ2および第2の標的としてのCD4、ならびに
− 第1の標的としてのIL23Rおよび第2の標的としてのCD4、
からなる群から選ばれる。
FR1−CDR1−FR2−CDR2−FR3−CDR3−FR4
のアミノ酸配列として定義され得、FR1〜FR4はそれぞれフレームワーク領域1〜4を言い、CDR1〜CDR3はそれぞれ相補性決定領域1〜3を言う。
FR1−CDR1−FR2−CDR2−FR3−CDR3−FR4
のアミノ酸配列である少なくとも1つの免疫グロブリン単一可変ドメインを含むポリペプチドを提供し、FR1〜FR4はそれぞれフレームワーク領域1〜4を言い、CDR1〜CDR3はそれぞれ相補性決定領域1〜3を言い、
i)Kabatの番号付けに従う位置11、37、44、45、47、83、84、103、104、および108のアミノ酸残基の少なくとも1つが、下の表A−1に挙げられたホールマーク残基から選ばれ、
ii)そのアミノ酸配列は、WO2009/138519に示されている免疫グロブリン単一可変ドメインの少なくとも1つ(WO2009/138519中の配列番号1〜125参照)と少なくとも80%、より好ましくは90%、さらにより好ましくは95%のアミノ酸同一性を有し、アミノ酸同一性の程度を決定する目的のためには、CDR配列を形成するアミノ酸残基(配列中のXによって指示される)は無視され、
iii)CDR配列は、一般的に、本明細書においてさらに定義される通りである(例えば、本明細書において提供される情報によって決定され得る組み合わせでのCDR1、CDR2、およびCDR3。CDRの定義はKabatの番号付けシステムに従って計算されるということに注意する)。
いくつかの態様において、本発明のポリペプチドは薬物とコンジュゲーションされて、ポリペプチド−薬物コンジュゲート(PDC)を形成する。当代の抗体−薬物コンジュゲート(ADC)は腫瘍学応用に用いられており、薬物(例えば、細胞傷害性または細胞増殖抑制薬、毒素または毒素部分)の局所送達のための抗体−薬物コンジュゲートの使用は、腫瘍への薬物部分標的化送達を許し、これがより高い有効性、より低い毒性などを許し得る。それらのADCは3つの構成要素を有し、(1)モノクローナル抗体が(2)リンカーを介して(3)毒素部分または毒素にコンジュゲーションされる。このテクノロジーの概略はDucry et al., Bioconjugate Chem., 21:5-13 (2010), Carter et al., Cancer J. 14(3):154 (2008) および Senter, Current Opin. Chem. Biol. 13:235-244 (2009)において提供されている(それらの全ては、参照によってそれらの全体が本明細書に組み込まれる)。PDCもまた3つの構成要素を有し、(1)ポリペプチドが(2)リンカーを介して(3)毒素部分または毒素などの薬物にコンジュゲーションされる。当業者は、ADCのテクノロジー、方法、手段などがPDCに等しく応用可能であるということを認めるであろう。
本発明のポリペプチドにおいて、2つまたは3つ以上のビルディングブロック(ISVまたはナノボディ)と任意で1つまたは2つ以上のポリペプチド、1つまたは2つ以上の他の基、薬物、薬剤、残基、部分、または結合単位とは、互いに直接的に連結され得るか(例えばWO99/23221に記載されている通り)、および/あるいは1つもしくは2つ以上の好適なスペーサーもしくはリンカーまたはそのいずれかの組み合わせを介して互いに連結され得る。
本発明は、本発明のポリペプチド(PDCを包含する)と医薬上受け入れられる担体、希釈剤、または賦形剤とを含む組成物、ならびに本発明のポリペプチドまたは組成物を使用する治療および診断方法を提供する。本発明の方法に従うポリペプチド(PDCを包含する)は、インビボ治療および予防応用、インビボ診断応用、ならびに同類に使用され得る。本発明のポリペプチド(PDCを包含する)の治療および予防の使用には、ヒトなどのレシピエント哺乳動物への本発明に従うポリペプチド(PDCを包含する)の投与が関わる。
例1.CXCR4−CD123二重特異性ポリペプチドによる白血病細胞の選好的な標的化
例1.1.二重特異性CXCR4およびCD123ポリペプチドを設計するための実験のセットアップ
二重特異性抗CXCR4−CD123ナノボディの作出によって、本発明者は、全て副作用または毒性を最小化するために、主にCXCR4を発現する細胞(これは正常細胞をあらわす)ではなくCXCR4およびCD123受容体両方を発現する細胞(癌細胞のモデルシステムとして)上のCXCR4に対する高親和性の高力価アンタゴニストを作出することを目指した。
一価のCXCR4およびCD123特異的ナノボディをE.coli内で産生し、発現ベクターpAX129によってC末端連結FLAG3−His6タグ蛋白質として発現した。アミノ酸配列は、それぞれ一価CXCR4ビルディングブロックおよび一価CD123ビルディングブロックについて表1および2に表現されている。発現はIPTGによって誘導し、37℃で4h継続することを許した。細胞培養物を遠心した後に、ペリプラズム抽出物を、ペレットを凍結−融解することによって調製した。固定化金属アフィニティークロマトグラフィー(IMAC)およびD−PBSへの緩衝液交換を用いて、ナノボディをそれらの抽出物から精製した。純度およびインテグリティはSDS−PAGEによって確認した。
あり得る副作用および/または毒性を最小化するために、抗CD123ナノボディは、好ましくは、正常細胞上にもまた発現されるIL3Rαの機能に影響しない。なおその上に、エピトープ多様性のあり得る導入によるいずれかの複雑化を回避するために、且つ概念実証(PoC)研究における機能/選択性のいずれかの上昇が相対的な親和性(すなわち一価ビルディングブロックの親和性)によってのみ定義されることを保証するために、本発明者は、同じエピトープに結合するが相対的な親和性のみが異なるナノボディを同定することに取りかかった。
膜に会合したヒトIL−3Rαへのナノボディ結合を、pcDNA3.1−IL3Rα(NM_002183.2)によってトランスフェクションしたHEK293T細胞および非トランスフェクション細胞において分析した。表面発現を、ヤギ抗マウスPE(Jackson Immuno Research 115-115-164)が続くIL−3Rα特異的抗体(R&D MAB301およびBD Pharminogen 554528)を用いるFACSによって確認した。簡潔には、ナノボディの段階希釈物がFACS緩衝液(PBS1X+10%FBS+0.05%アジ化物)中において4℃で30分間会合することを許した。これに続いて、細胞を遠心分離によって洗浄し、4℃で30分間、6.7nMの抗FLAGによってプローブ処理して、結合したナノボディを検出した。検出は抗M13によって30分間4℃で行った。細胞を洗浄し、TOPRO3と一緒にインキュベーションして死細胞を染色した(これらは、そこでゲーティング手続き中に除去される)。そこで、細胞をBD FACSArrayによって分析した。結果は図1.2に表現されている。
CD123特異的ナノボディの親和性を、ProteOnにおいて表面プラズモン共鳴(SPR)によってさらに研究した。組み換えIL−3Rαエクトドメイン(Sino Biologicals)の固定化は761RUまで行った。ナノボディを、3倍のタイトレーション(1μM〜4.1nMに渡る5つのさらなる濃度をカバーする)が続く1μMの最高濃度で加えた。これらを、そこで単一の注入サイクルで加え、キネティクス分析のためのProteOnの特異的なワンショットキネティクス手法を利用した。会合/解離データの評価は、1:1相互作用モデル(ラングミュア結合モデル)をフィッティングすることによって実施した。いくつものクローンが、ナノボディの低親和性を原因として1μM濃度において飽和を示し損なった。CD123ナノボディについて、得られたKD値は、細胞結合のEC50値によってリトリーブされた見かけ上の親和性と良く相関した(表3参照)。
機能的な高親和性ヒトIL−3受容体は、リガンド結合αサブユニットおよびβサブユニットからなるへテロ二量体である。βサブユニットはそれ自体ではリガンドIL−3に結合しないが、へテロ二量体受容体複合体へのIL−3の高親和性結合には要求される。
本例において、本発明者は、一方では低親和性を有し、他方では機能アンタゴニストとして作用する能力が尚ある抗CXCR4ナノボディを同定およびキャラクタリゼーションすることに取りかかった。低〜中程度の親和性を有するナノボディを機能的に試験することは骨であり、特に、いずれかの観察される機能の不在は低親和性を原因とし、例えば無関係なエピトープへの結合を原因とするのではないに違いないので、本発明者は非従来の手法を用いた。これを下で詳述する。
CXCR4−IL−3Ra二重特異性体の作出のために、機能遮断のための正しいエピトープを認識する低〜中程度の親和性を有するナノボディが必要とされる。以前の研究において、CXCR4に特異的な機能的なアンタゴニストナノボディが同定された。しかしながら、それらの以前の研究におけるリード選択および同定手順中の第1の狙いは、低親和性クローンではなく高力価候補を同定することであった。以前の研究のスクリーニングカスケードはリガンド結合の遮断にフォーカスしていたので、これは、正しいエピトープを有するが本研究において要求される低親和性を原因とする低力価を有するクローンの同定を妨げた。正しい立体配座のためには細胞膜中に埋め込まれるべきであるCXCR4の場合には、IL−3Raナノボディについて行ったSPRにおけるoff速度分析によって低親和性ナノボディを特異的に探索するための組み換え蛋白質のソースが利用可能でなかった。
CXCR4発現細胞へのCXCR4ナノボディの結合を異なる細胞株において評価して、EC50値を評価した。CXCR4については、膜挿入が受容体のまともな立体配座および機能性にとって必要とされる。そのため、CXCR4ナノボディを、ELISAにおいて、CXCR4を発現するウイルス脂質粒子(VLP;Molecular Integral)対対照脂質粒子への結合についてキャラクタリゼーションした。この目標のために、VLPを0.5U/ウェルで一晩4℃でコーティングし、検出のための抗myc抗体を用いた。全ての異なる結合アッセイにおいて、ナノボディ14D09は、EC50値のシフトによって指示される通り14A02よりも低い結合親和性を常に発揮した。結果は図1.3に表現されている。
CXCR4ナノボディを、フローサイトメトリーにおけるCaki−CXCR4細胞上のビオチン化SDF−1の置換によって、受容体結合についてリガンドCXCL12(またはSDF−1a)と競合するそれらの能力について分析した。この目標のために、ナノボディの段階希釈物を細胞上でビオチン化SDF−1(R&D Systems Fluorokineキット)の30nMと一緒にインキュベーションし、その後にエクストラアビジン−PEを用いてリガンド結合を可視化した。このアッセイに用いたビオチン−SDF−1競合剤濃度は、用量タイトレーションにおいて得られたEC50値よりも下だった。ここで、IC50値はKiを反映するはずである。
本例において、本発明者は、以前の実験で同定およびキャラクタリゼーションされた、その特徴が表5に要約されている異なる抗CXCR4および抗CD123ナノボディを組み合わせた。もたらされた二重特異性ポリペプチドを特異性について爾後に試験した。特に、表6に要約されている8つの構築物を作った。
IL3RαおよびCXCR4ナノボディを産生ベクターpAX138中にクローニングし、Myc−His6タグ蛋白質として発現して、二重特異性ポリペプチドを構築した。CXCR4ナノボディ14D09(CXCR4#1と呼称される)および281F12(CXCR4#2と呼称される)とIL−3Raナノボディ57A07(CD123#1と呼称される)および55A01(CD123#2と呼称される)との全ての8つの組み合わせを構築した(表6参照)。ナノボディを、反復した(GGGGS)7のフレキシブルな長いリンカーと繋げた。個体のナノボディを別々のPCR反応によって増幅し、適切な制限部位を含有するプライマーを用いてN末端断片およびC末端断片を作出した。断片を、E.coli産生のためのpAX138発現ベクター中に順に挿入した。全ての構築物の正しいヌクレオチド配列が、配列分析によって確認された(表7、二重特異性構築物参照)。爾後に、正しい構築物を、Flag3−His6タグ蛋白質としてのPichia pastoris中での産生のためにpAX205ベクター中に再クローニングした。二重特異性構築物をコードするプラスミドを、P.pastoris株X−33への形質転換に先立って制限酵素による消化によって直鎖状化した。P.pastoris形質転換体の小スケール試験発現を行って、良好な発現レベルを有するクローンを選択した。ここに、24ウェルディープウェルプレート中の各構築物の4クローンの4mlスケール発現を実施した。培地中のナノボディの発現をSDS−PAGEによって評価した。培地画分を集め、ニッケルセファロース(商標)6FFを用いて固定化金属アフィニティークロマトグラフィー(IMAC)のための出発材料として用いた。ナノボディを250mMイミダゾールによってカラムから溶出し、爾後に、dPBSに対してAtoll(ATO002)によってSephadex G-25 Superfine上で脱塩した。ナノボディの純度およびインテグリティは、SDS−PAGEおよびウエスタンブロットによって抗VHHおよび抗タグ検出を用いて検証した。
二重特異性構築物へのフォーマット化が個体のナノボディの標的結合キャパシティーに影響するかどうかを評価するために、二重特異性ナノボディを、ELISAにおける組み換えIL−3Ra(R&D Systems)およびCXCR4ウイルス脂質粒子(Integral Molecular)への結合について分析した。図1.4は、CD123#1(57A07)およびCD123#2ナノボディのIL−3Ra結合能力が全ての二重特異性体において保持されているということを示している。しかしながら、CXCR4#1またはCXCR4#2いずれかとの構築物のCXCR4結合は、1つのオリエンテーションにおいてのみ(CXCR4ナノボディがN末端位置にあるときに)保持されている。CXCR4ナノボディがC末端に位置する二重特異性構築物は、CXCR4−VLPへの結合の50〜100倍の損失を示す。
CXCR4およびCD123の異なる発現レベルを有する白血病細胞株、さらにはJurkat細胞を用いて、二重特異性CXCR4−IL−3Raポリペプチドおよびそれらの一価カウンターパートの結合特徴を評価した。標的発現は、二次抗体のヤギ抗マウスPE(Jackson Immuno Research)が続く抗hCXCR4抗体12G5(R&D Systems MAB170)および抗hIL−3Ra抗体7G3(BD Pharmingen,554527)によるFACS分析によって確認した。
両方のオリエンテーションの二重特異性ポリペプチドの結合を、CXCR4のみを発現するU937細胞と、異なる比で両方の標的を発現するMOLM−13およびTHP−1細胞とに対して分析した。代表的なグラフを図1.6に示す。CXCR4−IL−3Raオリエンテーションでは、二重特異性ナノボディの親和性は、一価CXCR4ナノボディと比較してMolm−13細胞において改善している。ここで、EC50は、構築物中に存在するそれぞれの一価IL−3Raナノボディのものを反映している。EC50値のシフトとは別に、トータルな結合もまた、CXCR4に対する親和性が維持されている二重特異性体(CXCR4−IL−3Raオリエンテーション)については増大しているように見える。Molm−13細胞において、CXCR4結合が強く低減された構築物(IL−3Ra−CXCR4オリエンテーション)の結合曲線は、それぞれのIL−3Raナノボディとオーバーラップしている。これは、Molm−13細胞におけるCXCR4と比べてCD123のより高い発現レベルと辻褄が合っている。
CXCR4単独を発現する細胞よりもむしろCXCR4およびCD123両方を発現する細胞に選好的に結合する二重特異性ポリペプチドの能力を評価した。この目標のために、二重陽性(MOLM−13)およびCXCR4のみ(JurkatE6−1)細胞の混合集団によるFACS実験を行って、不均一な細胞集団を有する現実の状況を模倣した。両方の細胞集団を見分けるために、ナノボディと一緒のインキュベーションに先立って、MOLM−13細胞を0.5μMのCFSE(Molecular Probes, Life Technologies)によって、JurkatE6−1を0.5μMのPKH26(Sigma-Aldrich)によって、製造者の使用説明書に従って標識した。1:1比で同じウェル中において両方の細胞株を混合した後に、それらを、異なる二重特異性ポリペプチドの6倍の段階希釈物および対応する一価ビルディングブロックと一緒にインキュベーションした。ナノボディの用量依存的な結合を、抗マウスIgG−APC(Jackson Immununoresearch)が続くマウス抗FLAG(Sigma-Aldrich)を用いてC末端FLAGタグによって検出し、FACSCanto II(Becton, Dickinson and Company)によって測定した。対照として、ナノボディ結合をいずれの細胞株単独においてもまた評価した。
二重特異性CXCR4−IL3Raポリペプチドが、両方の受容体を発現する細胞に対する増大した親和性および力価を示すかどうかを検証するために、CXCR4依存的な機能アッセイを実行した。この目標のために、JurkatE6−1(CXCR4+/IL3Ra−)およびMOLM−13細胞(CXCR4+/IL3Ra+)におけるSDF−1a依存的な走化性を、両方または1つの受容体のみを発現する細胞の直接的な比較のために実施した。機能遮断はCXCR4のみによって媒介されるので、抗IL3Raナノボディ(登録商標)の同時の結合によるアビディティは、走化性の阻害において増大した力価となって現れると予想される。
例2.1:フォーマット化のための一価ナノボディの特徴
CD4ナノボディのパネルが、ヒト末梢血リンパ球による免疫ライブラリーから以前に同定されていた。T細胞上におけるその役割とは別に、CD4はHIV1侵入のための第1の受容体としてもまた働く。そのため、CD4ナノボディのパネルを、ウイルスgp120蛋白質との相互作用をブロックするキャパシティーについて分析した。簡潔には、CD4ナノボディを、ELISAにおいて、組み換えCD4へのgp120蛋白質結合と競合する能力について分析した。簡潔には、プレートを20ug/mLのヒツジ抗gp120抗体によってコーティングした。HIV1のgp120蛋白質の1ug/mLを室温で1hr捕捉した。0.5μg/mLのビオチン化組み換えヒトCD4(Invitrogen)を、500nMの抗CD4ナノボディまたは対照抗体マウス抗CD4mAbのB−A1およびF5(Diaclone)ならびにウサギ抗CD4pAb(ImmunoDiagnostic Inc)と一緒に1hrプレインキュベーションし、その後に、混合物をコーティングプレートに移して、1hrインキュベーションした。結合したCD4の検出はエクストラアビジン−ペルオキシダーゼコンジュゲートによって行った。図2.1は、唯一のクローン、すなわちナノボディ3F11がgp120との相互作用を阻害することが見いだされたということを示している。3F11の細胞によって発現されたCD4への結合は、抗flagタグの検出を用いてMOLM−13細胞およびヒトT細胞におけるフローサイトメトリーによって明証され、0.76nMの見かけ上の親和性であった。ナノボディCD4の特徴は表2.1に見いだされる。
抗CD4ナノボディ3F11(CD4#8と呼称される)および抗CXCR4ナノボディ282F12(CXCR4#2と呼称される)の構築物を、産生ベクターpAX100中にクローニングした。このベクターはpUC119に由来し、LacZプロモーター、カナマイシン耐性遺伝子、マルチクローニング部位、OmpAリーダー配列、C末端c−mycタグ、および(His)6タグを含有する。両方の標的はHIV−1侵入のためのコレセプターとして作用するので、それらは細胞表面上でごく近くにあると予想される。この理由で、2つのナノボディビルディングブロックを連結するための異なる長さのフレキシブルなスペーサー(それぞれ、(Gly4SerGly4)(9GS)、(Gly4Ser)5(25GS)および(Gly4Ser)7(35GS))を有する二重特異性ポリペプチドを作出した。二重特異性構築物は、両方のオリエンテーションで作出し、8つの異なる二重特異性構築物を産した(表2.2)。全ての構築物の正しいヌクレオチド配列は配列分析によって確認された(全ての配列の概略については表10参照)。爾後に、正しいナノボディ構築物を、FLAG3−His6タグ蛋白質としての酵母Pichia pastorisによる産生のためにpAX205ベクター中に再クローニングした。これは例1.2に記載する通りである。
二重特異性構築物へのフォーマット化がCXCR4へのCXCR4#2ナノボディの結合に影響するかどうかを評価するために、二重特異性ポリペプチドのセット全体を、ウイルス脂質粒子(Integral Molecular)上のCXCR4への結合について分析した。簡潔には、ヌルVLPおよびhCXCR4−VLPの2単位をmaxisorpプレート上に一晩4℃でコーティングした。翌日に、フリーな結合部位を、室温で2h、PBS中の4%のmarvelスキムミルクを用いてブロッキングした。そこで、PBSによって3×プレートを洗浄した後に、精製されたポリペプチドの100nM、10nM、1nM、および0nMを、コーティングされたウェルに追加し、室温で1hインキュベーションした。PBSによる3×洗浄後に、結合したポリペプチドをマウス抗c−myc(Roche, cat#11667149001)およびウサギ抗マウス−HRP(DAKO, cat#P0260)抗体によって、両方とも1h室温で検出した。結合はO.D.値に基づいて決定し、対照(無関係なナノボディ、コーティングしていないウェル、R&Dからの両方の親の一価ビルディングブロックおよびモノクローナル抗CXCR4抗体(クローン:12G5,cat# MAB170))と比較した。図2.1は結合ELISAの結果を示している。CD4#8ナノボディを有する二重特異性構築物のオリエンテーション効果を観察し、CXCR4結合は、N末端位置に置かれたCXCR4ナノボディでのみ保持されていた。リンカー長の変化は、CXCR4#2ナノボディの標的結合のこの損失を克服し得なかったが、恐らくCD4#8−25GS−CXCR4#2構築物は別であり、C末端位置にCXCR4部分を有する2つの他の二重特異性体よりも損されていないように見えた。
二重特異性CXCR4−IL−3Raポリペプチドが、両方の受容体を発現する細胞に対して増大した親和性および力価を示すかどうかを検証するために、CXCR4依存的な機能アッセイを行った。MOLM−13細胞はCXCR4およびCD123と併せてCD4を発現するので、CXCR4−CD123二重特異性ナノボディについて記載した同じ実験のセットアップを用いた(例1.5.5参照)。
恒常性ケモカイン受容体としてのその生理的な役割とは別に、CXCR4はTリンパ球指向性HIV株にとってのコレセプターとしてもまた用いられる。ホスト細胞の侵入のために、ウイルスgp120蛋白質はCD4およびコレセプター(これはCCR5またはCXCR4いずれかであり得る)と相互作用する。HIV1株は、CCR5の利用(R5)、CXCR4の利用(X4)いずれかに依存的であり得るか、または二重指向性であり得、侵入のためにいずれの受容体をも用いる能力がある。
二重特異性CD4−CXCR4ポリペプチドならびに一価CXCR4#2およびCD4#8ナノボディのパネル全体の抗HIV−1力価を、MT−4およびU87細胞株における別個のHIV−1株の細胞変性効果を測定することによって、またはPBMCの培養上清中へのウイルスp24抗原産生を定量することによって決定した。
CXCR4ナノボディの力価は、侵入のためにCXCR4の利用に依存するHIV1株に特異的である。1つのHIV1コレセプターのみの遮断の1つのあり得る不都合は、元々標的化されていないHIV亜型の再出現を誘発し得るということである。CCR5依存的なHIV−BaLウイルスの場合には、二重特異性構築物中のCD4ナノボディのみがPBMCにおけるウイルス中和に寄与する。CXCR4はPBMC上に発現されているので、それらの細胞においては、二重特異性体中のCXCR4ナノボディが係留部として働いて、CD4ナノボディの阻害力価を向上させ得る。実に、最長のリンカーを有する二重特異性CXCR4−CD4はBaLに対して2.5nMのIC50値(一価CD4#8と相対的にだいたい200倍の向上)を有し、逆のオリエンテーションの構築物(CXCR4結合親和性が損する)よりも感染の強力な阻害剤である。CD4−CXCR4二重特異性については、より長いリンカーはより良好な阻害を与えるように見え、これが係留部としてのCXCR4への結合を好むということが示唆される。
二重特異性ポリペプチド中の係留部としてのCXCR4ナノボディの寄与を実証するために、HIV感染の遮断を、CXCR4低分子阻害剤AMD3100、CXCR−4リガンド、または対照抗体12G2に対して、耐性になったHIV1変異体のパネルについて評価した。加えて、ウイルスのエスケープ変異体を、複数代かけたIC90濃度のポリペプチドの存在下におけるNL4.3の培養によって、一価ナノボディのそれぞれの遮断のために作出した。それゆえに同定された耐性ウイルスクローンを、一価ポリペプチドと比較して二重特異性ポリペプチドの力価を試験するために用いた。IC50値は表2.5に提出されている。
例3.1:フォーマット化に用いた一価ナノボディの特徴
特異的なT細胞亜群を選好的にブロックするキャパシティーを有する二重特異性ポリペプチドを作出するために、異なる亜群特異的インターロイキン受容体に対するナノボディをCD4糖蛋白質に対するナノボディを組み合わせた。機能アーム側では、IL−12β2をTH1細胞亜群のマーカーとして、IL−23RをTH17細胞のマーカーとして用いた。両方の受容体は同じインターロイキン12受容体ファミリーに属し、同じコレセプターIL−12Rβ1を用いて機能的なへテロ二量体を形成する。この理由で、IL−12Rβ1およびCD4の二重特異性構築物もまた作出した。なぜなら、これらは両方のT細胞亜群を標的化すると予想され、ゆえに正の対照として働き得るからである。CD4糖蛋白質に対する係留ナノボディを用いてアビディティを提供し、他の免疫細胞(例えば、CD8+T細胞、B細胞、ナチュラルキラー細胞、およびある種の骨髄細胞)上の受容体の遮断を防止する。
精製されたナノボディの細かい結合親和性を、ヒトIL12Rβ1、IL12Rβ2、およびIL−23R細胞外ドメインのFc融合体(R&D Systems,#839-B1、#1959-B2、#1400-IR)に対する表面プラズモン共鳴分析(Biacore T100)を用いて、マルチサイクルキネティクス分析によって決定した。センサーチップCM5を抗hIgG抗体(GE Healthcare,BR-1008-39)によって固定化し、その後、受容体を、5μg/mlの蛋白質且つ120秒の接触時間で捕捉した。用いたラン用緩衝液は、5ml/minの流速の25℃のHBS−EP+(GE Healthcare,BR-1006-69)であった。アミンカップリングによる固定化のためには、EDC/NHSを活性化に、エタノールアミンHClを脱活性化に用いた(Biacore,アミンカップリングキット)。ナノボディを1.37nM〜3μMの濃度範囲で評価した。ナノボディが2min会合して15min解離することを45ml/minの流速で許した。注入間には、3MのMgCl2の3minパルスおよび2min安定化時間によって表面を再生した。会合/解離データの評価は、Biacore T100ソフトウェアv2.0.3によって1:1相互作用モデル(ラングミュア結合モデル)をフィッティングすることによって実施した。off速度および親和性定数を表3.1に示す。
一価ナノボディがIL−12へのIL12受容体−Fc蛋白質の結合と競合する能力を、384ウェルSpectraPlate HBマイクロタイタープレート(Perkin Elmer)中のコーティングされたヒトIL−12(10nM,Peprotech #200-12B)上で競合ELISAによって評価した。フリーな結合部位をPBS中の1%カゼインによってブロッキングした。ナノボディの段階希釈物を、2nMのIL12Rβ1−Fcまたは3nMのIL12Rβ2−Fcいずれかの固定濃度で1hrインキュベーションした。競合剤の濃度は用量タイトレーション実験に基づき、用いた最終濃度は<EC50値であった。IL12Rβ1−FcまたはIL12Rβ2−Fcの残存的な結合を、HRPコンジュゲーションヤギ抗hIgG抗体(1/3000,Jackson ImmunoResearch,Cat# 109-035-088)と基質esTMB(SDT reagents)の存在下における爾後の酵素反応とを用いて検出した。
へテロ二量体複合体の文脈での、それらの細胞によって発現された受容体への一価ナノボディの用量依存的な結合を、別個の健康なドナーからの活性化ヒトT細胞においてフローサイトメトリーによって決定した。
二重特異性CD4−IL−12Rβ2、CD4−IL−12Rβ1、およびCD−IL−23Rポリペプチドのフォーマット化を、長いフレキシブルな(GGGGS)7リンカーによって連結されたナノボディの遺伝子融合によって行った。ビルディングブロックは両方のオリエンテーションとした。各組み合わせについて、2つの機能ブロック受容体特異的ナノボディを1つの抗CD4ナノボディCD4#83F11と組み合わせた(図3.4)。全ての構築物の正しいヌクレオチド配列は、配列分析によって確認した(全ての配列の概略については表12参照)。ナノボディを、酵母Pichia pastorisのX−33中での発現のためにflag3−His6タグ蛋白質として作出し、サイズ排除クロマトグラフィーが続く標準的なアフィニティークロマトグラフィーを用いて培養培地から精製した。全ての蛋白質は、初代細胞でのアッセイへの使用のためにエンドトキシン不含を確認した。
例3.3.1.フォーマット化の効果
フォーマット化後のナノボディのオリエンテーションが、それぞれのインターロイキン受容体に対する結合および機能性に影響するかどうかを評価するために、精製された一価および二重特異性ナノボディを、リガンド結合についてのhIL−12Rβ1−Fc、hIL−12Rβ2−Fc、またはIL−23R−Fc融合体いずれかとの競合について分析した(上を参照)。一価ナノボディおよび二重特異性体両方の用量依存的な阻害を実行して、ヒトIL−12によってコーティングしたプレート上での競合についてIC50値を決定した。類似に、ヒトIL−23によってコーティングしたプレート上での競合ELISAを実施して、IL−23RおよびIL−12Rβ1ナノボディの二重特異性体の機能性を評価した。IC50値は表3.2および3.3に示されている。
二重特異性ポリペプチドの用量依存的な結合を、IL12Rの発現レベルを増大させるために活性化されたヒトT細胞において評価した。活性化T細胞は、IL12R抗原の相対的な中程度の発現レベルを、しかし非常に高いCD4発現を示した。これは、抗CD4ナノボディの高い見かけ上の親和性および高い蛍光シグナルを反映している。2つの標的受容体への同時の結合は明らかではない。なぜなら、全ての二重特異性ナノボディの結合曲線が一価CD4ナノボディのものとオーバーラップし、類似のEC50値を与えるからである(図3.6)。
例3.4.1:ヒトT細胞におけるIL−12機能の細胞特異的な遮断
二重特異性ポリペプチドが同じ細胞上の両方の標的を同時に連繋させる能力を、IL−12依存的な機能アッセイ(活性化ヒトT細胞における、IL−12によって媒介されるIFN−γ放出の阻害)において分析した。機能遮断はIL12Rによってのみ媒介されるので、CD4ナノボディの同時の結合によるアビディティは、サイトカイン放出の阻害において二重特異性の増大した力価となって現れると予想される。
機能的なIL23受容体を標的化する二重特異性ポリペプチドが、CD4およびIL23Rを共発現する細胞に対して増大した親和性および力価を示すかどうかを検証するために、ナノボディがTh17型サイトカインIL17のIL23依存的な放出を阻害する能力を測定した。このアッセイセットアップにおいて、ヒトPBMCは可溶性のIL23の存在下で培養して、Th17表現型に向けてT細胞の分化を許した。細胞を、OKT−3(eBioscience #16-0037-85)コーティングプレートに、溶液中の組み換えヒトIL−23(eBioscience #14-8239)およびPeliCluster CD28(Sanquin #M1650)の存在下で播種した。それぞれナノボディの存在または不在下でのサイトカイン(IL17)放出を、9日のインキュベーション時間後にELISAによって決定した。
例4.1:フォーマット化に用いられた一価ナノボディの特徴
以前の例は、二重特異性ポリペプチドの細胞特異的なアビディティが、機能アッセイにおける力価増大によって測定され得るということを指示していた。ここで、二重特異性ポリペプチドは、それらが両方の標的をシスに同時に連繋させ得るときに、細胞上の受容体機能を特異的にブロックするであろう。治療ウィンドウを明証するために、機能細胞アッセイを、2つの標的を共発現する細胞(「二重陽性細胞」)、および正常な細胞をあらわす機能標的(「単一陽性細胞」)のみを発現する細胞に対して行った。
精製されたEGFRバリアントの細かい結合親和性を決定するために、直接的に固定化されたhEGFR細胞外ドメイン(Sino Biological, #10001-H08H)に対する表面プラズモン共鳴分析(Biacore T100)を用いて、マルチサイクルキネティクス分析を実施した。hEGFRのだいたい1000RUをCM5センサーチップ上に固定化した。用いたラン用緩衝液は、5μl/minの流速の25℃のHBS−EP+(GE Healthcare,BR-1006-69)であった。アミンカップリングによる固定化のためには、EDC/NHSを活性化に、エタノールアミンHClを脱活性化に用いた(Biacore,アミンカップリングキット)。ナノボディを1.37nM〜3μMの濃度範囲で評価した。ナノボディが2min会合することおよび15min解離することを45μl/minの流速で許した。注入間には、表面を50mMのNaOHの5secパルスおよび1minの安定化時間によって再生した。会合/解離データの評価は、Biacore T100ソフトウェアv2.0.3によって1:1相互作用モデル(ラングミュア結合モデル)をフィッティングすることによって実施した。1:1相互作用モデルの受け入れ基準を満たさなかった相互作用は、不均一なリガンドフィットモデルを用いてフィッティングした。親和性定数KDは、もたらされた会合および解離速度定数kaおよびkdから計算し、表4.1に示している。定義されたアミノ酸置換の導入は、EGFRナノボディのoff速度を明白に低減させ、一方、on速度は類似であった。
全ての精製されたナノボディは、結合ELISAにおいて用量依存的なやり方で、組み換えEGFRエクトドメインおよび組み換えCEACAM5蛋白質に結合することが示された。手短かには、ヒトEGFR−ECDの0.25μg/ml(Sino Biological,Cat#10001-H08H)または0.125μg/mlの組み換えヒトCEACAM5(R&D Systems,Cat#4128-CM)を、384ウェルSpectraPlate-HBマイクロタイタープレート上で直接的にコーティングした(Perkin Elmer)。フリーな結合部位をPBS中の1%カゼインによってブロッキングした。精製されたナノボディの段階希釈物が抗原に1時間結合することを許した。ナノボディ結合を、HRPコンジュゲーションマウス抗FLAGM2抗体(Sigma,Cat#A8592)と基質esTMBの存在下での爾後の酵素反応とを用いて検出した(SDT reagents,Cat#esTMB)。結合特異性を、無関係なナノボディの対照と比較してOD値に基づいて決定した。EC50値を表4.1および4.2に示す。
結腸癌腫細胞株LoVoおよびHT−29は、異なる相対的な発現レベルでEGFRおよびCEAを共発現する(図4.1)。LoVo細胞はHT−29と比較してより高いCEAレベルを有したので、LoVo細胞を、細胞によって発現された受容体に対する一価EGFRおよびCEAバリアントのパネルの結合分析に用いた。細胞によって発現されたEGFRおよびCEAへの結合は、EGFR+/CEA+LoVo細胞およびHER14細胞(ヒトEGFRを安定に発現するマウスNIH−3T3細胞)に対してフローサイトメトリーによって確認した。結合したナノボディは、記載される通りflagタグ特異的抗体によって検出した。結果は図4.1に示す。EGFRバリアントについては、飽和には届かず、ゆえに精密なEC50は決定され得ないが、off速度の違いはシフトした曲線によってはっきりしている。CEAナノボディの特異性は、HER14細胞への結合の欠如によって確認された(データは示さない)。
二重特異性EGFR−CEAポリペプチドのフォーマット化は、フレキシブルな35GSリンカーによって連結されたナノボディの遺伝子融合によって達成し、両方のビルディングブロックを両方のオリエンテーションとした。別個のoff速度を有する4つの異なるEGFRバリアントを、それぞれ0.5および3nMのKD値を有する2つの別個のCEAナノボディと組み合わせた(図4.2)。加えて、各ナノボディを無関係な対照ナノボディ(リゾチームに対するcAblys3)と一緒に構築し、単一特異性の参照分子中の価数を保存した。全ての構築物の正しいヌクレオチド配列は配列分析によって確認された(全ての配列の概略については表11参照)。全てのポリペプチドは、酵母Pichia pastoris中でflag3−His6タグ蛋白質として作出された。精製は標準的なアフィニティークロマトグラフィーを用いて行った。
例4.3.1.フォーマット化の効果
フォーマット化が、ビルディングブロックのそれぞれがそれらのそれぞれの標的に結合する能力に影響するかどうかを検証するために、精製された二重特異性ナノボディの結合を、上で記載した組み換えEGFRエクトドメインまたはCEACAM5に対する結合ELISAによって評価した。EGFR−CEAを含む全ての単一特異性ナノボディおよび二重特異性ポリペプチドのEC50値が、表4.3に示されている。
単一特異性および二重特異性EGFR−CEAナノボディ構築物の結合特異性を、それぞれEGFR+/CEA−HER14およびHeLa細胞ならびに二重陽性LoVoおよびHT−29細胞においてフローサイトメトリーによって分析した。EC50値は表4.3に提出されている。LoVo細胞についての結果は図4.4に示されている。
二重特異性ポリペプチドが、細胞表面上のEGFRおよびCEAの同時の連繋によってEGFRナノボディの力価を向上させ得るかどうかを検証するために、二重特異性EGFR−CEAポリペプチドおよび対応する単一特異性ナノボディのパネルを、機能的なEGFRアッセイにおいて分析した。
Claims (15)
- 第1および第2のVHHを含むポリペプチドであって、ここで、
− 該第1のVHHが10nM〜200nMの平均KD値で第1の標的に結合し、
− 該第2のVHHが10nM〜0.1pMの平均KD値で第2の標的に結合し、および
ここで、該第1の標的および該第2の標的が細胞の表面上に存在し、
ここで、該第1の標的は該第2の標的とは異なり、
ここで、該第2のVHHが該第1のVHHの結合を向上させ、
ここで、該第1のVHHによる結合が該第1の標的の機能を阻害し、および
ここで、該第1の標的および該第2の標的が、
− 第1の標的としてのEGFRおよび第2の標的としてのCEA、
− 第1の標的としてのCXCR4および第2の標的としてのCD123、
− 第1の標的としてのCD4および第2の標的としてのCXCR4、
− 第1の標的としてのIL12Rβ2および第2の標的としてのCD4、および
− 第1の標的としてのIL23Rおよび第2の標的としてのCD4、
からなる群から選ばれる、
前記ポリペプチド。 - 細胞が有疾患細胞である、請求項1に記載のポリペプチド。
- 細胞が、第1の標的および第2の標的の0.01〜0.9の比を含む、請求項1または2に記載のポリペプチド。
- ポリペプチドが、
− 少なくとも約102M−1s−1、少なくとも約103M−1s−1、少なくとも約104M−1s−1、少なくとも約105M−1s−1、および少なくとも約106M−1s−1からなる群から選択される、第1の標的に対するon速度定数(Kon)を有し、および/または
− 多くて約10−3s−1、多くて約10−4s−1、多くて約10−5s−1、および多くて約10−6s−1からなる群から選択される、第1の標的に対するoff速度定数(Koff)を有し、および/または
− 多くて約10−7M、多くて約10−8M、多くて約10−9M、多くて約10−10M、多くて約10−11M、および多くて約10−12Mからなる群から選択される、第1の標的に対する解離定数(KD)を有する、
請求項1〜3のいずれか一項に記載のポリペプチド。 - 第1のVHHが、
− 10nM〜200nMの平均KD値、例えば10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、110、120、130、140、150、160、170、180、または190nMの平均KD値で第1の標的に結合し、および/または
− 走化性を走化性アッセイにおいて約10%、20%、30%、40%、50%、60%、80%、90%、または95%またはそれより大きく阻害し、および/または
− 細胞の退形成、侵襲性、転移、増殖、分化、遊走、および/または生存を阻害し、および/または
− 細胞のアポトーシス、殺細胞、および/または増殖停止を増大させる、
請求項1〜4のいずれか一項に記載のポリペプチド。 - 第2のVHHが、
− 10nM〜0.1pMの平均KD値、例えば10nMまたはそれより小さい平均KD値で第2の標的に結合し、および/または
− 第2の標的への天然のリガンドの結合を約50%未満、例えば40%、30%、もしくは20%、またはさらに10%未満、例えば5%未満阻害する、
請求項1〜5のいずれか一項に記載のポリペプチド。 - 第1および第2のVHHを含むポリペプチドであって、
− 該第1のVHHが、10nM〜200nMの平均EC50値で細胞の表面上の第1の標的に結合し、
− 該第2のVHHが、10nM〜0.1pMの平均EC50値で前記細胞の表面上の第2の標的に結合し、および
ここで、該第1の標的が該第2の標的とは異なり、
ここで、該第2のVHHが該第1のVHHの結合を向上させ、
ここで、該第1のVHHが該第1の標的の機能を阻害し、および
ここで、該第1の標的および該第2の標的が、
− 第1の標的としてのEGFRおよび第2の標的としてのCEA、
− 第1の標的としてのCXCR4および第2の標的としてのCD123、
− 第1の標的としてのCD4および第2の標的としてのCXCR4、
− 第1の標的としてのIL12Rβ2および第2の標的としてのCD4、および
− 第1の標的としてのIL23Rおよび第2の標的としてのCD4、
からなる群から選ばれる、
前記ポリペプチド。 - 第1のVHHが、10nM〜200nMの平均EC50値、例えば10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、110、120、130、140、150、160、170、180、またはl90nMの平均EC50値で細胞の表面上の第1の標的に結合する、請求項7に記載のポリペプチド。
- 第2のVHHが、10nM〜0.1pMの平均EC50値、例えば10nMまたはそれより小さい平均EC50値で、細胞の表面上の第2の標的に結合する、請求項7または8に記載のポリペプチド。
- 第1の標的および第2の標的が、0.01〜0.9、例えば0.2〜0.8、0.3〜0.7、0.4〜0.6の比、例えば0.01、0.02、0.05、0.08、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9の比で細胞の表面上に存在する、請求項7〜9のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- 毒素または毒素部分などの薬物をさらに含む、請求項1〜10のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- 有機分子、酵素標識、放射性標識、有色標識、蛍光標識、クロモゲン標識、発光標識、ハプテン、ジゴキシゲニン、ビオチン、金属錯体、金属、金コロイド、蛍光標識、金属標識、ビオチン、化学発光、生物発光、クロモフォア、およびその混合物からなる群から選択される分子を包含するが、これに限定されないイメージング剤をさらに含む、請求項1〜10のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- 請求項1〜12のいずれか一項に記載のポリペプチドを含む医薬組成物。
- 体内の特異的な場所、組織、または細胞型に予防もしくは治療ポリペプチド、PDC、またはイメージング剤を送達するための、請求項1〜12のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- その必要がある対象を処置することへの使用のための、請求項1〜11のいずれか一項に記載のポリペプチド。
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