JP3428012B2 - Hiv―1、hiv―2及びsivタイプのレトロウイルスのゲノムからのヌクレオチド配列、並びに、特に、これらのレトロウイルスのゲノムの増幅のため及びこれらのウイルスによる感染の「生体外」診断のためのこれらの配列の応用 - Google Patents
Hiv―1、hiv―2及びsivタイプのレトロウイルスのゲノムからのヌクレオチド配列、並びに、特に、これらのレトロウイルスのゲノムの増幅のため及びこれらのウイルスによる感染の「生体外」診断のためのこれらの配列の応用Info
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Description
又はSIVタイプのサル免疫不全レトロウイルスに特異な
核酸配列の増幅技術の使用のために用いることができる
オリゴヌクレオチド配列に関する。
2)タイプのレトロウイルスによるヒトの感染について
の人間の生体外(in vitro)診断方法としてこれらの配
列を応用することに関する。
ウイルスの分離及び特徴づけは、それぞれ欧州特許出願
明細書第85/905.513.9号及び第87/400.151.4号の中で記
述されている。これらのレトロウイルスは、リンパ節疾
患又は後天性免疫不全症候群(エイズ)の症状を示す複
数の患者において分離された。
レトロウイルスと同様、ヒトT4リンパ球に対する向性及
び増殖した場合のこれらのリンパ球に対する細胞変性効
果ひいては中でも全身性で持続性の多発腺症すなわちエ
イズをひき起こす効果によって特徴づけされる。
いう名称で呼ばれているもう1つのレトロウイルスはア
カゲザルにおいて分離された(M.D.DANIEL他、Scienc
e、228、1201(1985年);N.L.LETWIN他、Science、23
0、71(1985年)、「STLV−IIImac」の呼称で)。
レトロウイルスは、野生のサバンサモンキーにおいて分
離された。しかし、アカゲザルに存在するウイルスとは
異なり、STLV−IIIAGMの存在は、アフリカのサバンサモ
ンキーにおいてエイズタイプの疾病を誘発しないように
思われる。
は、SIVという表現(SIVという表現は「Simian Immunod
ificiency Virus」(サルの免疫不全症ウイルス)とい
う英語の略語である)と場合によってそれに続くこれら
ウイルスが出てきたサルの種を表わす略語すなわちアカ
ゲザル(macaque)に対する「MAC」又はアフリカサバン
サモンキーに対する「AGM」(「African Green Monke
y」の略)でのみ呼ばれる。
I−521という番号でC.N.C.M.に寄託された。
につれて、そのゲノムのRNAの相補的DNA(cDNA)の配列
を得ることもできた。HIV−2クラスを代表するレトロ
ウイルスのcDNAの完全なヌクレオチド配列(HIV−2、R
OD)は、1986年2月21日、照会名LAV−2RODでI−522と
してC.N.C.M.に寄託された。
スのcDNAの完全なヌクレオチド配列は、WAIN HOBSON,SO
NIGO,COLE,DANOS及びALIZONによりCELL(1985年1月)
の中に記述されている。
イルスは以下時としてHIVという表現で呼ばれる。
よる感染の「生体外」診断方法は、例えば抗体と抽出物
又は抗原の場合によって発生する免疫反応の生成を可能
にする条件の下でHIV−1又はHIV−2の抗原又は抽出物
と生物学的流体を接触させることによる、研究対象の患
者から得られた血清中などの生物学的流体中又は生物学
的採取物中に場合によって存在する抗体ANTI−HIV−1
又はanti−HIV−2の検出(生検)を利用する。
ヒトが最近感染した場合には、誤って陰性となる危険性
をはらんでいる。
外診断方法の完成にとって著しく助けとなるものであ
る。これらの遺伝子増幅技術としては、欧州特許出願明
細書1986年3月27日付の第86/302,298.4号及び1987年1
月9日付の第87/300,203.4号の中に記述されているよう
なPCR(ポリメラーゼ連鎖反応)技術、或いはまたBiote
chnology第6巻p1197(1988年10月)に記述されている
いわゆる「Qβレプリカーゼ」技術、及び国際特許出願
明細書WO89/01050号に記述されているRNAポリメラーゼ
(T7RNAポリメラーゼ)を用いて行なう技術、を挙げる
ことができる。これらの技術は、ウイルスの核酸の検出
感度を改善できるようにし、特異的合成リーダの使用を
必要とする。
導配列)の選択に問題が多い。実際、ウイルス性ゲノム
のヌクレオチド配列はきわめて可変的であることから、
HIVタイプのウイルスの一定の与えられた隔離集団の既
知の配列に適合するリーダは、HIVタイプのいくつかの
変型ウイルスの増幅を起こしそうになる可能性がある。
一方、1つのHIVウイルスからもう1つのHIVウイルスへ
と保存されたゲノム領域の中でリーダが選択された場
合、その「良好な機能」はそれだからといって保証され
ているわけではなく、増幅収量不良をひき起こす可能性
がある。
と考えられる収量で特に数多くの、非特異性帯域の存在
を避けるような、HIV及びSIVタイプの全てのウイルスの
ゲノムの特に診断を目的とした増幅を可能とするオリゴ
ヌクレオチドリーダを提供する。
IV−2及びSIV群のウイルスに同時に特異的であり、こ
れらのウイルスのゲノムの変異に対する感受性をもたな
い。
びSIVタイプのウイルスのゲノム増幅のために使用する
ことができる約15個乃至30個のヌクレオチドのオリゴヌ
クレオチドリーダにある。
及びpol遺伝子内又はHIV−2 ROD及びSIV MACウイル
スのnef2、vif2及びvpx遺伝子又はHIV−1 Bru、HIV−
1 Mal及びHIV−1 Eliウイルスのenv、nef1、vif1及
びvpr遺伝子内に含まれているヌクレオチド配列のうち
の1つの中に含まれている配列の中から、より限定的に
は以下に規定するヌクレオチド鎖の中に含まれている配
列の中から選ばれていること、 −又は、(特に最も長い配列について)、HIV−1 Br
u、又はHIV−1 Mal又はHIV−1 Eli又はHIV−2 RO
D又はSIV MACからの前記ヌクレオチド配列のうちの1
つを含むか、又はこれらの配列の相補的ヌクレオチド配
列を含み、末端3′又は5′の側で当該種類のヌクレオ
チド配列から「はみ出す」相補的ヌクレオチドがある場
合それらは好ましくは上記HIV−1、HIV−2又はSIV M
ACタイプのウイルスの完全配列自体の中に相応する末端
5′又は3′の手前に置かれているものと一致するこ
と、 −又はこのヌクレオチド配列が上述のヌクレオチド配列
の1つと同一でない場合又はこれらの配列の1つと相補
的でない場合、それでもHIV−1 Bru、HIV−1 Mal、
HIV−1 Eliウイルスからのヌクレオチド配列と及び/
又は上述のHIV−2 ROD又はSIV MACウイルスからのヌ
クレオチド配列とハイブリダイズする可能性があること を特徴とするあらゆるヌクレオチド配列に関する。ハイ
ブリダイゼーションは、最適な収量を得るのに推奨され
る60℃±1℃(好ましくは60℃±0.5℃)の温度で行な
うことができる。
研究所−米国ニューメキシコ州」により編集された「ヒ
トレトロウイルスとエイズ−1989年」という参照マニュ
アルの中で用いられているものと一致する。(HIV−1
Mal、HIV−1 Eliウイルスの配列については、1986
年6月23日付の欧州特許出願明細書第86.401380号の中
でMONTAGNIER,SONIGO,WAIN−HOBSON及びALIZONにより記
述された)。
ている合成装置(リン酸−亜アミノ酸塩法)又はその他
の類似の方法を用いるあらゆる装置で合成される。
鎖を特徴とするオリゴヌクレオチド配列に関する(なお
これらの鎖は5′→3′の方向に示され、頭文字「S」
及び「AS」はオリゴヌクレオチドがセンスか又はアンチ
センスかすなわちそのオリゴヌクレオチドがそれぞれ
5′o→3′の方向又は3′o→5′の方向に向けられ
ているかを示している): 1)HIV−1、HIV−2及びSIVウイルスのゲノムに共通
の配列(1本の線で間隔どりされた一連の数字は、それ
ぞれHIV−1 Bru、HIV−1 Mal、HIV−1 Eli、HIV
−2 ROD及びSIVに相応するゲノム上のヌクレオチドの
位置を示す): ・上述のウイルスのゲノムのgag遺伝子の特異的配列
(これらのウイルスの核様体の特異的抗原群をコードす
る遺伝子)。
のヌクレオチド配列のハイブリダイゼーション特性に影
響を及ぼすことなく、下記ヌクレオチド配列のいくつか
の位置に対しいくつかの変異型を加えることも可能であ
る。これらの変異型を含むヌクレオチド配列は、塩基の
置換によってそれが誘導された元のヌクレオチド配列の
下に表示されている。元のヌクレオチド配列の塩基との
関係において変更された塩基は、これらの元の配列内の
置換された塩基に相応する位置に垂直に略さずに示され
ている;一方これらの変異型を有する配列内の置換され
なかった元の配列の塩基は点線を用いて示されている。
により行なわれる。テストにおいて用いられるのは、1
つの与えられた配列に対する全ての変異型の混合であ
る。
本の線で間隔どりされた一連の数字は、それぞれHIV−
2 ROD及びSIV−MACに相応するゲノム上のヌクレオチ
ドの位置を示している)。
る) ・vif2遺伝子の特異的配列(23kDの感染力因子をコード
する) ・vpx遺伝子の特異的配列(12kDのタンパク質をコード
する) 3)HIV−1 Bru、HIV−1 Mal及びHIV−1 Eliウイ
ルスのゲノムに共通の配列(1本の線により間隔どりさ
れた一連の数字は、それぞれHIV−1 Bru、HIV−1 M
A1及びHIV−1 Eliウイルスに相応するゲノム上のヌク
レオチドの位置を示している) ・env遺伝子の特異的配列(外被タンパク質をコードす
る) ・nef1遺伝子の特異的配列 ・vpu遺伝子の特異的配列 本発明は同様に、上述のリーダの配列に相補的なヌク
レオチド構造を有する配列(リーダ)をもその目的とし
ている。
ーション特性が変更されることなく、上述のものとの関
係においていくつかの突然変異を示すヌクレオチド配列
にも関する。そのために本発明の配列のハイブリダイゼ
ーション特性に影響を与えることなく、上述の配列を構
成するヌクレオチドと異なるヌクレオチドの百分率は40
%に達しうる。
場合において、リーダの3′側に比べ5′側でより多く
の突然変異が耐容され、3′側は、配列増幅を可能にす
るため1つの核酸配列の一定のストランド(鎖)と完全
にハイブリダイズしなくてはならない。アンチセンス
(AS)リーダの場合、3′側で耐容が可能である。
ン特性が変更されることなく、一時的変異が中央部分に
含まれ、各々の側に5つ以上の塩基の保持を伴う上述の
ようなリーダにもある。
本発明の中に記されている技術的な使用上の指示が実施
された場合、一般に非特異性帯域の無い明確な増幅帯域
を与えるという点にある。これは、ハイブリダイゼーシ
ョンの特異性を高める27個の塩基に達しうるリーダの長
さ、ならびに外乱性会合を除去することのできる徹底的
な使用条件によるものである。各タイプのウイルスに対
する特異性は、基準マトリクスとの相似性百分率の関数
であると同時に、受諾できる収量について40個の塩基に
達しうるリーダの長さの関数でもある。
細書第88/307.102.9号内に記述されているようなDNA又
はRNAの多数のコピーの合成によるゲノム増幅方法の利
用のためにその末端5′のレベルで1つのプロモータに
結びつけられている上述のようなリーダにも拡大され
る。
イルスによるヒトの潜在的感染又は3つのウイルス(HI
V−1、HIV−2、SIV)のうちの少なくとも1つによる
動物の潜在的感染の生体外診断に対し応用することので
きる、HIV−1及び/又はHIV−2タイプ又はSIVタイプ
のウイルスの核酸配列の遺伝子増幅を実施するための上
述のリーダの利用をその目的としている。
得られた生物学的試料(例えば循環血液の血清、リンパ
球といった生物学的流体)を用いて実現され、主として
次のような段階を含む: −上述の生物学的試料の中に場合によって存在するHIV
−1及び/又はHIV−2及び/又はSIVタイプのウイルス
のゲノムに属する検出すべき核酸の抽出段階、及び場合
によっては、2本鎖核酸を得るための、この核酸がRNA
の形をしている場合の核酸の逆トランスクリプターゼ
(逆転写酵素)を用いた処理段階(なおこの後者の段階
は以下でウイルスRNAのレトロトランスクリプション
(逆転写)段階とも呼ばれている) −・1本鎖核酸の形成に導く、検出すべき2本鎖核酸の
変性の段階、 ・以下に定めるハイブリダイゼーション条件の下で本発
明による少なくとも1つのリーダ対と上記鎖を接触させ
ることによる、本発明に基づく少なくとも1つのリーダ
と、上記変性段階の際に得られた核酸鎖の各々とのハイ
ブリダイゼーションの段階 ・1つの重合化作用物質(DNAポリメラーゼ)と異なる
4つのヌクレオシド三リン酸(dNTP)が存在する中でリ
ーダが上でハイブリダイズするような鎖と相補性をもつ
DNAを、これらのリーダから形成し、かくして先行する
変性段階に比べさらに多くの2本鎖核酸の形成がもたら
される段階 を含み、かつ場合によって生物学的試料の中にその検出
を可能にするだけ充分な割合で存在する検出すべき前記
核配列を得るため規定の回数だけくり返されるようなサ
イクル。
SIVタイプのウイルスのゲノムに属する核酸が場合によ
って存在することを検出する段階。
(最終使用濃度単位)が示されている緩衝液「10×バッ
ファ」内で1分30秒間60℃にて有利に実現される。
て、或いはまたエピゾーム又は組込み型の相補的DNAを
用いて実現できる。
ルスの局在化に応じてRNA又はDNAの形で現われる。
合、そのRNAは、逆トランスクリプターゼによりDNAに再
複写される。反対に、特に血液中の細胞外環境内のHIV
タイプのウイルスのゲノムは、RNAの形にとどまる。
発明人により推奨されている生物学的試料の細胞内に含
まれているウイルス性DNAの本発明に従った抽出段階
は、以下の段階を含む: ・ポッタ大ピストン内で熱分解された0.5mの水の中で
の細胞沈渣の懸濁段階、 ・いわゆる「往復運動による」細胞の粉砕段階、 ・最終濃度が0.1%になるような、1対「×100トリト
ン」の付加段階、 ・100℃で15分乃至25分間の熱による変性段階、 ・細胞残滓のみを除去するための短い遠心分離段階、 ・無水エタノール2.5体積と最終体積の10%の3モルの
酢酸ナトリウムの付加による−20℃で一晩中のDNAの沈
殿段階。DNAは次に回収されて、70゜でエタノールによ
り2回洗浄された後熱分解水の中に再懸濁させられる。
ここでこの方法はDNAとRNAの同時沈殿を可能にし、従っ
て、「DNA直接PCR」と呼ばれる方法又は「PCR−RNA」と
呼ばれる方法の使用によるHIV又はSIVタイプのウイルス
のゲノムメッセージの検出が可能となる、ということに
留意されたい。
従来通りの方法で行われる。
1及び/又はHIV−2及び/又はSIVタイプのウイルスを
含む生物学的試料を用いて本発明の生体外診断が行なわ
れる場合、1本鎖のRNAから2本鎖のDNAへの形質転換と
いう補足的段階を実施する必要がある。
ーゼを用いた適当な媒質内での生物学的試料特に血清の
抽出後得られたRNAの処理によって実現される。
るようなウイルス性RNAの逆転写(レトロトランスクリ
プション)段階が以下の要領で実施されるような生体外
診断方法をその目的としている: −水中に再懸濁された抽出RNA10μgを最終体積40μ
内で各々40μMの濃度でリーダ対の存在する中に置く。
この全体を10分間100℃で変性し次に氷水の中に沈め
る。
ランスクリプターゼ[AMV(鳥類の骨髄芽球(細胞)症
ウイルス)又はMuMLV(モロニー白血病ウイルス)の]
+1単位のTaq−ポリメラーゼ+各25mMの4つのdNTPの
混合物1μ+Q.S.P.水10μの混合物10μを加え
る。従って最終体積は50μとなる。
ゼの作用によるcDNAの製造、 −b)第2段階:従来の遺伝子増幅;逆トランスクリプ
ターゼを破壊しハイブリダイゼーション解除/ハイブリ
ダイゼーション段階を可能にするため3分間95℃に加熱
し、次に遺伝子増幅のため前述のサイクルを開始する。
プライマ)対の存在する中で変性段階が行なわれる、前
述のような生体外診断方法をその目的としている。実
際、上に明記したように、本発明のオリゴヌクレオチド
(又はプライマ)の特徴の1つは、以下の条件の下で用
いられた場合に、一般に非特異性帯域の無い明確な増幅
帯域を与えるという点にある: −ハイブリダイゼーション:変性−再会合の第1段階の
ためプライマ(各プライマ40μモル(40μM)の溶液1
μ)をDNA−マトリクス(100〜300ng)が存在する中
に置く;10分間100℃で加熱しこのDNA−マトリクスとプ
ライマの混合物を含む試験管を氷を含む水の中に沈めて
DNA−マトリクス/プライマの再会合率を増大させる。
これらのプライマは、0.8μMという次に続く増幅段階
における最終濃度で使用されなくてはならない。
5μモルで使用される4つのdNTPと、50μの反応媒質
に対し1単位のTaq−ポリメラーゼを付加する:この段
階は、1/10゜に希釈した場合、トリスーHCl,pH8.9:50m
M;(NH4)2SO4:15mM;MgCl2:5mM;βーメルカプト−エタ
ノール:10mM;ゼラチン:0.25mg/mといった組成をもつ
「10×バッファ」という名で一般に呼ばれている本発明
の増幅緩衝液の中で実施される。この緩衝液5μとq.
s.p.水50μを前述の媒質に付加する。
のもので成る30回〜40回のサイクル: ・10秒間94℃(変性) ・1分30秒間60℃(ハイブリダイゼーション) ・1分30秒間78℃(伸長)。
続くことになる。
異なるサイクル中のその安定性は、最大収量を得、非特
異性帯域が無いようにするための不可欠な条件である。
他の)細胞から抽出されたゲノムDNAについて100乃至30
0ngである。
媒質に対する最適な条件であり、これらの条件は反応媒
質の最終体積に応じて修正されうるものである。
複数用いることにより、HIV及び/又はSIVタイプのウイ
ルスの複数タイプの交差検出又は、HIV及び/又はSIVタ
イプの同一ウイルスの複数の遺伝子の同時検出が可能と
なる。
としては、以下のようなリーダ対を挙げることができ
る: ・特にHIV−1及び/又はHIV/2によるヒトの感染の生体
外診断のための、MMy1−MMy4、MMy2−MMy4、MMy1−MMy
3、MMy18−MMy19、MMy4bis−MMy28bis、MMy28−MMy29bi
s、MMy29−MMy30bis、MMy31−MMy32bis、 −特にHIV−1によるヒトの感染の生体外診断のため
の、MMy5−MMy8、MMy6−MMy8、MMy7−MMy8、MMy5−MMy7
bis、MMy6−MMy7bis、MMy9−MMy11、MMy10−MMy11、MMy
9−MMy10bis、MMy26−MMy5bis、MMy8bis−MMy9bis、MMy
8bis−MMy89、MMy89bis−MMy9bis、MMy15−MMy17、MMy1
5−MMy16bis、MMy16−MMy17、MMy25−MMy27、MMy26−MM
y27、 −HIV−2によるヒトの感染の生体外診断のための、MMy
20−MMy22、MMy20−MMy21bis、MMy21−MMy22、MMy23−M
My24、MMy12−MMy14、MMy12−MMy13bis。
は、熱安定性のあるDNAポリメラーゼ特にTaqポリメラー
ゼ、Appligene社のアンプリフィオーゼ又は市販されう
る熱安定性あるあらゆるDNAポリメラーゼである。
40回反復される。
オチドリーダ対に応じて、生物学的試料の中に存在する
HIV及び/又はSIVタイプのウイルスの遺伝子を選択的に
検出することをも可能にする。
て用いることのできるリーダ対は以下のようなものであ
る: −gag遺伝子のためのMMy1−MMy4、MMy2−MMy4、MMy1−M
My3、MMy4bis−MMy28bis、 −vpr遺伝子のためのMMy18−MMy19、 −env遺伝子のためのMMy5−MMy8、MMy6−MMy8、MMy7−M
My8、MMy5−MMy7bis、MMy6−MMy7bis、MMy26−MMy5bi
s、MMy8bis−MMy9bis、MMy8bis−MMy89、MMy89bis−MMy
9bis、 −nef1遺伝子のためのMMy9−MMy11、MMy9−MMy10bis、M
My10−MMy11、 −vif1遺伝子のためのMMy15−MMy17、MMy15−MMy16bi
s、MMy16−MMy17、 −vif2のためのMMy20−MMy22、MMy20−MMy21bis、MMy21
−MMy22、 −vpxのためのMMy23−MMy24、 −nef2のためのMMy12−MMy14、MMy12−MMy13bis、MMy13
−MMy14、 −vpu遺伝子のためのMMy25−MMy27、MMy26−MMy27、 −pol遺伝子のためのMMy28−MMy29bis、MMy29−MMy30bi
s、MMy30−MMy31bis、MMy31−MMy32bis。
は制限的なものではなく、ユーザの望みに応じて変える
ことができる。
たヌクレオチドフラグメントのサイズは、以下の表Iか
らXIまでに示されている: (以下の表に示されている数字は、合成されたフラグメ
ントのヌクレオチド数を表わし、「ハイフン」は、テス
トされたリーダ対では相応するウイルス菌株を特徴づけ
ることができないことを示している)。
は、「サザントランスファ」による分析の際に観察され
た増幅帯域の特異性を確認するため低温プローブ技術に
おいて使用するため、又はキネーションによる32Pでの
標識づけの後に、プローブとして用いることができるよ
うに、組合わせ可能であるということに留意されたい。
第3のオリゴヌクレオチドが特異的内部プローブとして
役立ちうるようにするための従来のリーダー組合せに加
えて、交差検出を可能にするこれらの遺伝子の重複によ
る遺伝子vif1/vpr及びvif2/vpxの特殊なケースにも留意
されたい。さらに、増幅されたDNAの配列決定による分
析の際に、これらのオリゴヌクレオチドは、各方向にお
ける2重配列づけ従って配列の2重読みとりを可能にし
かくして場合によって起こる解釈のあいまいさを無くす
るようなDNA−ポリメラーゼに対し特異的なリーダとし
て用いることができる。
標識づけされた上述のもののようなリーダ、ならびに特
に上述のような生体外診断方法の枠内でのヌクレオチド
ゾンデとしてのその利用にもある。
リゴヌクレオチドをもその目的としている。このような
オリグヌクレオチドは、マトリクスと共に形成された2
重らせんの方向を逆転させる特徴をもち(ウイルスのゲ
ノムのストランド)、この2重らせんはかくして「S」
状態から「AS」状態に移行する。
ン上に硫黄原子を有するいくつかのヌクレオチドを含む
上述のオリグヌクレオチドにも関する。このようなオリ
ゴヌクレオチドは2重らせんの安定性を増大させ、ひい
ては増幅すべきDNA鎖とより良くハイブリダイズすると
いう特徴を呈する。
ライフ)」報告書、一般シリーズ、第4巻、No.1、p17
−37の中に掲載されたC.Heleneの論文中に記されている
方法に従って、発光剤(オレンジアクリジンといった平
坦な芳香族分子)が上で共有結合的に移植されているヌ
クレオチドを含むいわゆる「改変塩基」の形を呈する上
述のようなオリグヌクレオチドにも関する。このような
オリゴヌクレオチドは、特に蛍光により容易に検出可能
であるという特徴をもつ。
ウイルスによるサル(アカゲザル、マンガベイザル又は
サバンサモンキー)の感染の生体外診断方法の実施のた
めにも使用できる。なおこの方法は上述のものの主要な
特徴を受け継いでいる。
実施のための診断用キットにある。一例を挙げると、本
発明の診断用キットには以下のものが含まれる: −検出すべき核酸配列の鎖の1つとハイブリダイズする
リーダ及び上述の条件下で上述の鎖の相補鎖とハイブリ
ダイズするリーダを各々含む少なくとも1つの本発明に
基づくオリゴヌクレオチドリーダ対、 −特にDNAポリメラーゼと4つの異なる三リン酸ヌクレ
オチドの増幅作業サイクルの実施に適した試薬、及び上
述の「10×バッファ」と呼ばれる反応媒質、 −検出すべき増幅された核酸配列と特異的にハイブリダ
イズすることができる、低温プローブ技術又は放射能に
よって特に標識づけされうるゾンデ。
クレオチド配列によってコードされたタンパク質の合成
方法の実施のための、前述の本発明に基づくリーダの利
用にも関する。
条件下で本発明に基づく少なくとも1つのリーダ対と配
列を接触させることにより(一定のタンパク質をコード
し場合によってはそのヌクレオチドの或る種の変更を受
けた)HIV又はSIVタイプのウイルスのゲノムのヌクレオ
チド配列を増幅させる段階と、それに続いてこうして増
幅されたこれらの配列をタンパク質に翻訳する段階を含
んでいる。なおこの後者の段階は、特に、増幅された前
記配列を含むベクタを用いて適切な宿主細胞を形質転換
し、これらの宿主細胞内で生成されたタンパク質を回収
することによって実施される。
ーダー)の翻訳から得られたポリペプチドにも関する。
ルス剤全般としてのアンチセンスオリゴヌクレオチドリ
ーダの利用、ならびに薬学的に受容できる賦形剤と結び
つけた形でのこれらのアンチセンスリーダを含む薬剤化
合物にもある。
翻訳生成物及び/又は本発明に従って構成されたリーダ
から上述の方法に従って増幅されたヌクレオチド配列の
翻訳生成物を含む免疫化合物にも関する。なおこれらの
翻訳生成物は、薬学的に受容できる賦形剤に結びつけら
れている。
言すると、本発明に従ったヌクレオチド配列の翻訳生成
物又は本発明に従って構成されたリーダを用いて増幅さ
れたヌクレオチド配列の翻訳生成物と免疫反応を形成す
ることのできる)抗体、ならびに当業者にとって既知の
方法に従いHIV−1及び/又はHIV−2タイプのウイルス
によるヒトの感染又は3つのウイルス(HIV−1、HIV−
2、SIV)のうちの少なくとも1つによる動物の感染の
生体外診断方法の実施のためのその利用、に関する。
方法は、研究対象の患者から採取した生物学的試料(特
に血清)を本発明に基づく抗体と接触させる作業、及び
場合によって生物学的試料の中に存在するHIV又はSIVタ
イプのウイルスの抗原と前記抗体の間に形成された免疫
学的複合体を(特に標識づけされた抗免疫グロブリンを
用いて)適切なあらゆる方法で検出する作業を含んでい
る。
ては、HIV又はSIVウイルスの抗原とこれらの抗体の間で
形成された免疫反応を立証する適切な試薬を含む、生体
外診断用キットをもその目的としている。
に従い上述のヌクレオチド配列(又はリーダ)に相応す
るポリペプチドの調製方法において、好ましくはC末端
アミノ酸から出発して、必要とされる順の連続するアミ
ノアシル又は適切な順序で複数のアミノアシル残基をす
でに含む予め形成されたフラグメントとアミノアシル、
或いは又こうして予め調製された複数のフラグメントを
2つずつ連続的に縮合すること、なお、これは順次段階
的に接近するようにN末端アミノ酸に至るまで、ペプチ
ド合成において既知の方法に従って行なわれ、特にカル
ボキシル基の活性化の後ペプチド結合の形成に通常介入
しなくてはならないような一方のアミン基及び他方のカ
ルボキシル基又はその逆を除くこれらのアミノアシル又
はフラグメントが支持する全ての反応基は予め保護して
おくことを特徴とする方法にも関する。
der Organischen Chemie」(有機化学の方法)第15−
I及びII巻、THIEME,STUTTGARTの中でHoubenweylが記し
た均質溶液ペプチド合成技法又は、R.D.Merrifieldが
「固相ペプチド合成(Solid Phase Peptide Synthesi
s)」(J.AM.CHEM.SOC.,45,2149−2154)に記した固相
ペプチド合成法を利用することができる。
ダ)の調製方法において、 −DNAase(デオキシリボヌクレアーゼ)Iを用いて上述
のHIV又はSIVタイプのウイルスから分離したゲノミック
DNAを保温し、その後EDTAを付加し、フェノール/クロ
ロホルム/イソアミルアルコール(25/24/1)の混合物
次にエーテルでの抽出により精製を行なう段階、 −DTTの存在する中でEcoR1メチラーゼによりこうして抽
出されたDNAを処理し、上述のような抽出により精製を
行なう段階、 −E.coli(大腸菌)のDNAリガーゼとT4DNAポリメラーゼ
の存在する中で4つのデオキシヌクレオチド三リン酸dA
TP、dCTP、dGTP及びdTTPを用いてこうして精製されたDN
Aを保温しその後上述の方法に従って精製する段階、 −こうして得られた核酸を適切なベクターの中でクロー
ニングし適切なプローブを用いて求める核酸を回収する
段階、 を含むような方法にも関する。
は、以下の段階が含まれる: −「Bioorganic Chemistry(生物有機化学)」4;274−3
25(1986年)内に記されたリン酸亜アミノ酸β−シアン
エチルの自動化された方法を用いてDNAを合成する段
階、 −こうして得られた核酸を適切なベクター内でクローニ
ングし、適切なプローブでのハイブリダイゼーションに
より核酸を回収する段階。
以下の段階を含んでいる: −Proc,Natl.Acad,Sci USA(米国国立科学アカデミ会
報)180;7461−7465(1983年)に記されている原理に従
った天然ポリペプチドのアミノ酸鎖と適合性のある配列
をもつ、異なる制限部位を端部に備えた化学的に合成し
たオリゴヌクレオチドの組立て段階、 −こうして得られた核酸を適切なベクタ内でクローニン
グし、適切なプローブとのハイブリダイゼーションによ
り求める核酸を回収する段階。
Claims (14)
- 【請求項1】下記: MMy2−MMy4、 MMy7−MMy8、 MMy9−MMy10bis、 MMy12−MMy13bis、 MMy15−MMy17、 MMy18−MMy19、 MMy20−MMy21bis、 MMy23−MMy24、 MMy25−MMy27、 MMy28−MMy29bis、 又は上記プライマー対のいずれかの相補的配列からなる
プライマー対からなる群より選択されるAIDS関連ウイル
スの検出のためのプライマー対であって、該プライマー
は、下記: の配列を有する。 - 【請求項2】生物学的試料で始めるHIV−1及び又はHIV
−2及び又はSIVタイプのウイルスの核酸配列の調製方
法であって、該方法が、主として、下記工程: −上述の生物学的試料の中に存在することができるHIV
−1、HIV−2又はSIVタイプのウイルスのゲノムに属す
る検出すべき核酸の抽出工程、及び、場合により核酸が
RNAの形であるならば、逆トランスクリプターゼを用い
て処理する工程、 −下記工程: ・一本鎖核酸の形成を導く、検出すべき2本鎖核酸の変
性工程、 ・上記鎖を請求項1に記載の少なくとも1対のプライマ
ーと接触させることによって、上記変性工程の間に得ら
れた各々の核酸鎖のハイブリダイゼーション工程 ・DNAポリメラーゼと4つの異なるヌクレオシド三リン
酸(dNTP)の存在下でハイブリダイゼーションされた鎖
に相補的なDNAを、プライマーから始めて形成し、先行
する変性工程に比べてより多くの2本鎖核酸の形成がも
たらされる工程 を含むサイクル、 を含む方法。 - 【請求項3】該サイクルを所定回数反復し、その検出を
可能にするに十分な割合で存在する該検出すべき核酸配
列を得、さらに生物学的試料中のHIV−1及び/又はHIV
−2及び/又はSIVタイプウイルスのゲノムに属する核
酸の場合による存在を検出する工程を含む、請求項2に
記載の方法。 - 【請求項4】下記工程: ・ポッタ大ピストン内で熱分解された0.5mlの水の中で
の細胞沈渣の懸濁段階、 ・いわゆる「往復運動による」細胞の破砕段階、 ・最終濃度が0.1%になるような、1対100×トリトンの
付加段階、 ・100℃で15分〜25分間の熱による変性段階、 ・細胞残渣のみを除去するための短い遠心分離段階、 ・無水エタノール2.5体積と最終体積の10%の3モルの
酢酸ナトリウムの付加による−20℃での一晩中のDNAの
沈殿段階、 が含まれることを特徴とする、請求項2又は3記載の方
法。 - 【請求項5】ウイルスのRNAの逆転写段階には、 −水中に再懸濁された抽出RNA10μgを最終体積40μl
内で各々 0.8μMの濃度でリーダ対の存在する中に置き、この全
体を10分間100℃ で変性し次に氷水の中に沈める段階、 −5μlの「10×バッファ」の緩衝液(1/10゜に希釈さ
れたときトリス −HCl、pH=8.9:50mM;(NH4)2SO4;15mM;MgCl2:5mM; β−メルカプト−エタノール:10mM;ゼラチン:0.25mg/ml
を含む)+1単位の逆トランスクリプターゼ+1単位の
Taq−ポリメラーゼ+各25mMの4つのdNTPの混合物1μ
l+Q.S.P.水10μlの混合物10μlを再び加え(なおcD
NAの製造は13分間42℃で逆トランスクリプターゼの作用
により行なわれる)、次に3分間95℃に加熱して逆トラ
ンスクリプターゼを破壊する段階、 が含まれることを特徴とする、請求項4記載の方法。 - 【請求項6】変性段階が、請求項1記載のプライマー対
の存在する中で行われることを特徴とする、請求項2〜
5のいずれか1項記載の方法。 - 【請求項7】−ハイブリダイゼーション:変性−再会合
の第1段階のためプライマー(各プライマー40μモルの
溶液1μl)をDNAマトリクス(100〜300ng)が存在す
る中に置く:10分間100℃で加熱しこのDNA−マトリクス
とプライマーの混合物を含む試験管を氷を含んだ水の中
に沈める。これらのプライマーは、0.8μMという次に
続く増幅段階における最終濃度で使用されなくてはなら
ない、 −増幅:前記媒質内に、各々最終容器(50μl)中で0.
5μモルで使用される4つのdNTPと、50μlの反応媒質
に対し1単位のTap−ポリメラーゼを付加する;この段
階は、「10×バッファ」の名で呼ばれる請求項14に組成
が示されている増幅緩衝液の中で行われる、 という条件の下で実施されることを特徴とする、請求項
6記載の方法。 - 【請求項8】HIV−1及び/又はHIV−2タイプのウイル
スによるヒトの感染又は3つのウイルス(HIV−1、HIV
−2、SIV)の1つ以上による動物の感染の生体外検出
用である、請求項2〜7のいずれか1項記載の方法。 - 【請求項9】HIV又はSIVタイプのウイルスのゲノムのヌ
クレオチド配列の増幅とそれに続く、請求項1に記載の
プライマー対からこれらの増幅された配列をタンパク質
に翻訳する作業用の、請求項2〜7のいずれか1項記載
の方法。 - 【請求項10】−請求項1に記載の、少なくとも1対の
オリゴヌクレオチドプライマー、 −特にDNAポリメラーゼと4つの異なる三リン酸ヌクレ
オチドの増幅作業サイクルの実施に適した試薬、 −請求項5に記されているような「10×バッファ」緩衝
液、 −検出すべき増幅された核酸配列とハイブリダイズする
ことのできる、標識づけ可能なプローブ、 を含む、請求項2〜7のいずれか1項記載の方法の使用
のためのキット。 - 【請求項11】請求項2〜7のいずれか1項記載の方法
により増幅されたヌクレオチド配列の翻訳生成物の1個
又は数個と免疫反応を起こし得る抗体。 - 【請求項12】請求項11記載の抗体と研究対象の患者か
ら採取した生物学的試料との接触、及び場合によってこ
の生物学的試料の中に存在するHIV又はSIVタイプのウイ
ルスの抗原と前記抗体の間で形成された免疫学的複合体
の検出を含む、3つのウイルス(HIV−1、HIV−2、SI
V)のうちの少なくとも1つによる動物の感染又はHIV−
1及び/又はHIV−2タイプのウイルスによるヒトの感
染を「生体外」で検出する方法。 - 【請求項13】生物学的試料が血清である、請求項12記
載の方法。 - 【請求項14】請求項11記載の抗体及び場合によっては
これらの抗体とHIV及び/又はSIVウイルスの抗原の間で
起こった免疫学的反応を実証するのに適した試薬を含
む、請求項12又は13記載の方法の使用のためのキット。
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