JP2779073B2 - Selective fermentation method - Google Patents
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Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は、微生物の改良による選
択発酵法に関する。The present invention relates to a selective fermentation method by improving microorganisms.
【0002】[0002]
【従来の技術】ある微生物において2種以上の基質が代
謝の対象となっている場合、その菌によって利用され易
い基質が他の基質の異化を司る酵素の誘導を阻害する現
象は、カタボライト・リプレッション (Catabolite Rep
ression)として知られている。〔ハートウェル・エル.
及びビー・マガサニック (Hartwell L. and B. Magasan
ik) 、ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー
(J. Mol. Biol) 、第7巻、第 401〜420 頁 (1963年),
モノー・ジェイ. (Monod J.)、ルシェルシュ・シュー
ル・ラ・クロワサンス・デ・キュルチュール・バクテリ
エンヌ, テーズ (Recherches sur la croissance des c
ultures bacteriennes, thesis) 、アルマン (Harman)
、パリ (Paris)、第145頁 (1942年)〕そして、ペディ
オコッカス属に属する細菌においては、例えば、ペディ
オコッカス・ハロフィルス (Pediococcus halophiluc)
をその菌がエネルギー源として利用可能な二種以上の基
質を含有する培地中で培養した場合にも、上記のような
現象は起こる。2. Description of the Related Art When two or more substrates are subject to metabolism in a certain microorganism, the phenomenon that a substrate which is easily used by the microorganism inhibits the induction of an enzyme which controls the catabolism of another substrate is caused by catabolite lyophilization. Compression (Catabolite Rep
ression). (Hartwell L.
Hartwell L. and B. Magasan
ik), Journal of Molecular Biology
(J. Mol. Biol), Vol. 7, pp. 401-420 (1963),
Monod J., Recherches-sur-la-Croissance-de-Courture-Bactaenne, Thees (Recherches sur la croissance des c)
ultures bacteriennes, thesis) and Arman (Harman)
, Paris, p. 145 (1942)] and bacteria belonging to the genus Pediococcus, for example, Pediococcus halophiluc
The above phenomenon also occurs when is cultured in a medium containing two or more types of substrates that can be used as an energy source by the bacterium.
【0003】上記カタボライト・リプリッションは、菌
にとってエネルギー源となる基質である、糖、アミノ酸
(例えば、アルギニン等) 、有機酸等の代謝系のみなら
ず核酸、多糖類、タンパク質等の高分子基質の分解系に
まで及んでいることが、一般に知られている。そのた
め、一般には、グルコースやマンノース等の利用され易
い基質が存在すると、他の基質の代謝系の酵素生合成が
抑制を受けて、他の基質が利用できなかったり、望むよ
うな酵素の生産が不可能となる場合が多数存在してい
る。[0003] The above catabolite repli- cations are sugars and amino acids which are substrates that serve as energy sources for bacteria.
It is generally known that the present invention extends not only to metabolic systems such as arginine and the like, but also to degradation systems for polymer substrates such as nucleic acids, polysaccharides and proteins, as well as metabolic systems such as organic acids. Therefore, in general, when an easily available substrate such as glucose or mannose is present, the enzyme biosynthesis of the metabolic system of the other substrate is suppressed, so that the other substrate is not available or the production of the desired enzyme is suppressed. There are many cases where this is not possible.
【0004】カタボライト・リプレッションは、ペディ
オコッカス属菌においても非常に強力な代謝調節機構の
一つであって、複数の基質混合物中における優先性下位
基質の選択発酵のみならず、一部の酵素やその他の二次
代謝物の生産等においても、大きな問題となっており、
通常はこの抑制作用から逃れることは、殆ど不可能であ
った。特別な場合に一部できるとしても、極めて長時間
培養するか、あるいは培地中で選択発酵にとって障害と
なる基質を特に取り除くことが必要であり、このことは
余計なコストを必要とするか、安価で優れてはいるが複
雑な混合物である天然培地を用いることを不可とするも
ので、解決を強く望まれているのが実情である。[0004] Catabolite repression is one of the very powerful mechanisms of metabolic regulation even in the genus Pediococcus, not only in the selective fermentation of preferential sub-substrates in a mixture of multiple substrates, but also in some fermentations. It is also a major problem in the production of enzymes and other secondary metabolites,
Normally, it was almost impossible to escape this suppression effect. Even if it can be partly done in special cases, it is necessary to cultivate for a very long time, or to specifically remove the substrate that interferes with the selective fermentation in the medium, which requires extra costs or is inexpensive. However, it is impossible to use a natural medium which is an excellent but complicated mixture, and a solution is strongly desired.
【0005】そこで、本発明者等は、ペディオコッカス
・ハロフィルスに属する微生物のカタボライト・リプレ
ッションを解除すべく種々検討した結果、該微生物に
は、フォスフォエノールパイルベート・デペンデント・
シュガー:フォスフォトランスフェレース・システム
(Phosphoenolpyruvate dependent Sugar:Phosphotrans
-ferase System) (以下、PTS と略称する。) が機能し
て存在していること、PTSを欠損させることによりカタ
ボライト・リプレッションの解除が可能であることを見
い出した。The present inventors have conducted various studies to release catabolite repression of microorganisms belonging to Pediococcus halophilus. As a result, the microorganisms include phosphoenol pileate-dependent microorganisms.
Sugar: Phosphotransferase system
(Phosphoenolpyruvate dependent Sugar: Phosphotrans
-ferase System) (hereinafter abbreviated as PTS), and found that catabolite repression can be released by deleting PTS.
【0006】PTS は、エンテリック・バクテリア (ente
ricbacteria) 等で研究されていた糖の輸送機構であ
り、クンディッヒ・ダブリュー等 (Kundig W. et a
l.,)、プロシーディングス・ナショナル・アカデミー・
オブ・サイエンス (Proc. Natl. Acad. Sci.) 、米国
(U.S.A.) 、第52巻、第1067〜1074頁 (1964年) 、ピー
・ダブリュー・ポストマ等 (P. W. Postma et al.,)、
マイクロバイオロジカル・レビュー (Microbiol. Re
v.)、第49巻、第 232〜269 頁 (1985年)等の報告があ
る。[0006] PTS stands for enteric bacteria (ente bacteria).
ricbacteria), and is a sugar transport mechanism studied by Kundig W. et a
l.,), Proceedings National Academy
Of Science (Proc. Natl. Acad. Sci.), USA
(USA), Volume 52, pp. 1067-1074 (1964), PW Postma et al.,
Microbiol. Re
v.), Volume 49, pp. 232-269 (1985).
【0007】そして、本発明者等は、先にペディオコッ
カス・ハロフィルスに属する微生物よりPTS の低下又は
欠損した変異株を得、この変異株を、カタボライト・リ
プレッションを引き起こす代謝基質を含有しかつカタボ
ライト・リプレッションにより異化が阻害される代謝基
質を含有するもの、または、これに必要により栄養源を
添加したものに、接種、培養して、その異化が阻害され
る基質を、選択的に発酵、除去する方法を開発した (特
開昭63-219368号公報参照) 。[0007] The present inventors have previously obtained a mutant having a reduced or defective PTS from a microorganism belonging to Pediococcus halophilus, and provided the mutant with a metabolic substrate that causes catabolite repression. A substance containing a metabolic substrate whose catabolism is inhibited by catabolite repression or a substance to which a nutrient is added if necessary is inoculated and cultured to selectively ferment the substrate whose catabolism is inhibited. And a method for removing it (see Japanese Patent Application Laid-Open No. 63-219368).
【0008】[0008]
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、上記方
法においては、ガラクトース等も同時に発酵するため
に、キシロースの選択発酵性は必ずしも満足すべきもの
ではなかった。そこで、本発明者等は、ペディオコッカ
ス・ハロフィルスに属する微生物よりPTS 、フォスフォ
フラクトキナーゼ (以下、PFK と略称する。) 及びグル
コキナーゼ (以下、GKと略称する。) が欠損した三重欠
損新規変異株を誘導、分離すべく種々検討し、目的とす
る変異株を得ることに成功し、更に、このようにして得
られた変異株をキシロース含有物に接種、培養して、キ
シロースを効率よく選択的に発酵させることができるこ
と等を見い出し、本発明を完成した。However, in the above method, since galactose and the like are simultaneously fermented, the selective fermentability of xylose was not always satisfactory. Therefore, the present inventors have developed a triple-deficient novel strain in which PTS, phosphofructokinase (hereinafter abbreviated as PFK) and glucokinase (hereinafter abbreviated as GK) are deficient in microorganisms belonging to Pediococcus halophilus. Induction of the mutant strain, various studies to isolate, succeeded in obtaining the desired mutant strain, and further inoculate the thus obtained mutant strain in xylose-containing material, culture, and efficiently xylose The present inventors have found that fermentation can be selectively performed, and completed the present invention.
【0009】[0009]
【課題を解決するための手段】すなわち本発明は、ペデ
ィオコッカス属に属し、フォスフォエノールパイルベー
トデペンデント・シュガー:フォスフォトランスフェラ
ーゼ・システム、フォスフォフラクトキナーゼ及びグル
コキナーゼが欠損した微生物を、ペントース含有物に接
種、培養し、ペントースを選択的に発酵させることを特
徴とするペントースの選択発酵法である。That is, the present invention relates to a microorganism belonging to the genus Pediococcus, which is deficient in the phosphoenol pileate dependent sugar: phosphotransferase system, phosphoflactokinase and glucokinase. A selective fermentation method of pentose, characterized by inoculating and culturing pentose-containing substances and selectively fermenting pentose.
【0010】以下、本発明について詳細に説明する。先
ず、本発明のペディオコッカス属に属し、PTS、PFK及び
GKが欠損した新規変異株としては、例えば、ペディオコ
ッカス・ハロフィルス3E4(以下、本変異株と言う場合
もある)が挙げられる。上記ペディオコッカス・ハロフ
ィルス3E4は、ペディオコッカス・ハロフィルス13-2株
(FERM BP-702)を変異処理して得た新規変異株であり、
ペディオコッカス・ハロフィルス3E4 の菌学的性質は、
以下に示す通りであり、また、ペディオコッカス・ハロ
フィルス13-2の菌学的性質は、特開昭60-241885号公報
に記載されている。ペディオコッカス・ハロフィルス3E
4の菌学的性質 ペディオコッカス・ハロフィルス3E4の菌学的性質は、
ペディオコッカス・ハロフィルス13-2の菌学的性質のう
ち「糖類から酸及びガスの生成の有無」及び「PTS、PFK
及びGK活性」が下記のとおりである以外は、ペディオコ
ッカス・ハ ロフィルス13-2の菌学的性質と全く同一で
ある。 (1) 糖類からの酸およびガス生成の有無 酸生成 ガス生成 L-アラビノース + − D-キシロース + − D-グルコース − − D-マンノース − − D-フラクトース + − D-ガラクトース − − D-マルトース − − シュークロース − − ラクトース − − トレハロース − − D-ソルビトール − − D-マンニトール − − イノシトール − − グリセロール − − デンプン − − (2) PTF 、PFK 及び GK活性 ペディオコッカス・ハロフィルス3E4のPTS 、PFK 及び
GK活性は表1に示す通りである。Hereinafter, the present invention will be described in detail. First, belonging to the genus Pediococcus of the present invention, PTS, PFK and
Examples of the novel mutant deficient in GK include Pediococcus halophilus 3E4 (hereinafter sometimes referred to as the present mutant). The above Pediococcus halophilus 3E4 is a Pediococcus halophilus 13-2 strain
(FERM BP-702) is a novel mutant strain obtained by mutation treatment,
The mycological properties of Pediococcus halophilus 3E4 are:
As shown below, the mycological properties of Pediococcus halophilus 13-2 are described in JP-A-60-241885. Pediococcus halophilus 3E
4 Mycological properties The mycological properties of Pediococcus halophilus 3E4 are
Among the mycological properties of Pediococcus halophilus 13-2, "whether or not acid and gas are generated from sugars" and "PTS, PFK
And GK activity ”are as described below, and are exactly the same as the bacteriological properties of Pediococcus harophilus 13-2. (1) Generation of acid and gas from saccharides Acid generation Gas generation L-arabinose +-D-xylose +-D-glucose--D-mannose--D-fructose +-D-galactose--D-maltose- -Sucrose--lactose--trehalose--D-sorbitol--D-mannitol--inositol--glycerol--starch--(2) PTF, PFK and GK activity
GK activity is as shown in Table 1.
【0011】[0011]
【表1】 [Table 1]
【0012】PTS及びPFK, GK酵素活性の測定は、阿部等
(Abe K., and K. Uchida)の方法〔J. Bacteriol. 171:
1793-1800,(1989)〕に準拠した。なお、このペディオコ
ッカス・ハロフィルス3E4は、工業技術院微生物工業技
術研究所に微工研菌寄第12004 号 (FERM P-12004) とし
て寄託されている。上記変異処理としては、N−メチル
−N'−ニトロ−N−ニトロソグアニジン (以下、MNNG
と略称する。) 、エチルメタンスルフォネート、メチル
メタンスルフォネート等の変異誘起剤、紫外線照射、X
線照射、放射線照射処理、自然変異、ファージ又はプラ
スミドによる形質転換、形質導入、接合による遺伝子組
み換え等の方法が挙げられる。Measurement of PTS, PFK, and GK enzyme activities was performed by Abe et al.
(Abe K., and K. Uchida) [J. Bacteriol. 171:
1793-1800, (1989)]. The Pediococcus halophilus 3E4 has been deposited with the Institute of Microbial Industry and Technology of the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology as Microbial Laboratories No. 12004 (FERM P-12004). As the mutation treatment, N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine (hereinafter referred to as MNNG
Abbreviated. ), Mutagenic agents such as ethylmethanesulfonate and methylmethanesulfonate, ultraviolet irradiation, X
Methods include irradiation with radiation, irradiation treatment, spontaneous mutation, transformation with phage or plasmid, transduction, genetic recombination by conjugation, and the like.
【0013】また、 PFK欠損に替わってアルドラーゼ(A
LD)欠損を有するPTS, ALD及びGK三重欠損株でも同様の
効果が期待される。本変異株を培養するのに使用される
培地としては、一般のペディオコッカス・ハロフィルス
に属する菌株の培養に用いられる培地が挙げられる。培
地の窒素源としては、利用可能な窒素化合物又はこれを
含有するものであれば如何なるものでも良く、例えば、
酵母エキス、ペプトン、肉エキス、ゼラチン、コーンス
チープリカー、アミノ酸、大豆あるいは小麦麹の浸出液
等の1種以上の窒素源が用いられる。上記窒素源にマン
ガン、リン酸、カリウム、マグネシウム、カルシウム等
の適当な無機塩類の一種以上を適宜添加し、必要により
菌の生育に必要な炭素源、例えば、糖類、各種の有機
物、無機物、ビタミン等を添加したものが培地として好
適に用いられ、そして食塩2〜17%含有培地が好まし
い。また通常の醤油製造法における仕込初期の諸味液汁
を適宜希釈し食塩15%前後に調整したものも用いられ
る。In addition, aldolase (A
A similar effect can be expected with triple deficient strains of PTS, ALD and GK that have (LD) deficiency. As a medium used for culturing the present mutant strain, a medium used for culturing a strain belonging to general Pediococcus halophilus can be mentioned. The nitrogen source of the medium may be any available nitrogen compound or any containing it, for example,
One or more nitrogen sources such as yeast extract, peptone, meat extract, gelatin, corn steep liquor, amino acids, soybean or wheat koji leaching solution are used. One or more suitable inorganic salts such as manganese, phosphoric acid, potassium, magnesium and calcium are appropriately added to the nitrogen source, and carbon sources necessary for the growth of the bacterium, if necessary, for example, sugars, various organic substances, inorganic substances, vitamins And the like are preferably used as a medium, and a medium containing 2 to 17% of sodium chloride is preferable. In addition, moromi sap at the initial stage of preparation in a normal soy sauce production method is appropriately diluted and adjusted to about 15% salt.
【0014】本変異株は、液体培養法が好ましく、静置
もしくは嫌気条件下に培養を行うのがよい。培養温度
は、15〜50℃、好ましくは20〜40℃である。そして培養
時間は培養中の食塩濃度により大幅に異なるが、通常1
〜10日間であり、また、培養時のpHは合成培地 (例え
ば、MYP 培地、YPG 培地) 及び諸味液汁培地ともにpH3
〜9が好ましい。The present mutant strain is preferably subjected to a liquid culture method, and is preferably cultured under static or anaerobic conditions. The culture temperature is 15 to 50 ° C, preferably 20 to 40 ° C. The cultivation time varies greatly depending on the salt concentration during cultivation.
-10 days, and the pH during the culturing was adjusted to pH 3 for both the synthetic medium (eg, MYP medium and YPG medium) and the moromi juice medium.
To 9 are preferred.
【0015】次に、このようにした培養物より本変異株
菌体を採取するには、如何なる手段でも良く、例えば、
遠心分離、濾過等の通常の操作法に従って分離し、必要
により洗浄して本変異株を得る。そして、本発明におい
ては、本変異株を、ペントース含有物に接種、培養し、
ペントース、例えば、キシロースを選択的に発酵させる
のである。Next, any means may be used to collect the mutant cells from the culture thus obtained.
Separation is carried out according to a usual operation method such as centrifugation, filtration and the like, and washing is performed as necessary to obtain the present mutant strain. Then, in the present invention, the present mutant strain is inoculated into a pentose-containing substance and cultured,
Pentose, for example, xylose, is selectively fermented.
【0016】ペントースとしては上記のキシロースの他
にアラビノース、リボース等が挙げられる。また、ペン
トース含有物としては、例えば、醤油諸味、木材の加水
分解液、穀類分解液等が挙げられる。本変異株の接種量
は、培地に対して例えば、102 −109 個/g、又は個/
ml、好ましくは、104 −106 個/g、又は個/mlであ
る。Examples of the pentose include arabinose, ribose and the like in addition to the above-mentioned xylose. Examples of the pentose-containing substance include soy sauce moromi, a wood hydrolyzate, and a cereal decomposition liquid. The inoculum amount of the present mutant strain is, for example, 10 2 −10 9 cells / g, or
ml, preferably, 10 4 -10 6 cells / g, or number / ml.
【0017】発酵条件としては、発酵が達成される条件
で有れば如何なる条件でもよく、例えば、上記した本変
異株の培養条件と同様に行えばよい。The fermentation conditions may be any conditions as long as fermentation is achieved. For example, the fermentation may be performed in the same manner as the above-described culture conditions of the present mutant strain.
【0018】[0018]
【発明の効果】上述したことから明らかな如く、本変異
株をペントース含有物に接種、培養すれば、醤油諸味等
においてその着色物質に関与するペントースを効率よく
選択的に発酵させることができるので、本発明は、産業
上極めて有用である。As is evident from the above, if the present mutant strain is inoculated and cultured in a pentose-containing substance, pentose involved in the coloring substance in soy sauce moromi and the like can be efficiently and selectively fermented. The present invention is extremely useful industrially.
【0019】[0019]
【実施例】以下、本発明を実施例を挙げて具体的に説明
する。但し、これらの実施例は本発明の技術的範囲を限
定するものではない。EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described specifically with reference to examples. However, these examples do not limit the technical scope of the present invention.
【0020】[0020]
【実施例1】sugar:PTS、PFK及びGK三重欠損株ペディ
オコッカス・ハロフィルス3E4の 変異誘導 表 2 酵母エキス 0.3g/100ml ポリペプトン 0.5 リン酸水素二カリウム 0.5 チオグリコール酸ナトリウム 0.1 NaCl 5.0 キシロース 1.0 表2記載の培地 (以下、YPX-1-5 と略称する。) 5mlに
ペディオコッカス・ハロフィルス13-2株 (FERM BP-702)
接種し、温度30℃で4日間静置培養し、培養物を得た。
その培養物 100μl をYPX-1-5 に150mM の2-Deoxygluc
ose(2DG) を添加した培地 (YPDGX-1-5)5mlに接種し30
℃で4日間培養した。この生育してきた2DG耐性菌を表
3記載の培地 (MYPX-1-5CaCO3 プレート) に 100個程度
のコロニーが形成されるように稀釈して接種した。MYPX
-1-5CaCO3 プレートに生育したコロニーをYPX-1-5 に15
0mM のグルコースを添加した培地 (YPGX-1-5) に接種
し、温度30℃で4日間静置培養し、グルコースが殆ど減
少せずキシロースの減少の著しい菌を選択した。 表 3 肉エキス 0.5g/100ml 酵母エキス 0.5 ポリペプトン 0.5 チオグリコール酸ナトリウム 0.1 炭酸カルシウム 0.1 寒天 1.5 NaCl 5.0 キシロース 1.0 グルコース及びキシロースの定量は阿部等 (Abe K., an
d K.Uchida)の方法 (J. Bacteriol. 171:1793-1800
(1989)) に準拠した。[Example 1] sugar: Mutation induction of PTS, PFK and GK triple deficient strains Pediococcus halophilus 3E4 Table 2 Yeast extract 0.3 g / 100 ml polypeptone 0.5 dipotassium hydrogen phosphate 0.5 sodium thioglycolate 0.1 NaCl 5.0 xylose 1.0 Table 2 medium (hereinafter abbreviated as YPX-1-5) in 5 ml of Pediococcus halophilus 13-2 strain (FERM BP-702)
The cells were inoculated and allowed to stand still at a temperature of 30 ° C for 4 days to obtain a culture.
100 μl of the culture was added to YPX-1-5 at 150 mM 2-deoxygluc
5 ml of medium (YPDGX-1-5) supplemented with ose (2DG)
C. for 4 days. The 2DG-resistant bacteria thus grown were diluted and inoculated on a medium shown in Table 3 (MYPX-1-5CaCO 3 plate) so that about 100 colonies were formed. MYPX
Colonies grown on -1-5CaCO 3 plate were transferred to YPX-1-5
A medium (YPGX-1-5) supplemented with 0 mM glucose was inoculated and allowed to stand still at a temperature of 30 ° C. for 4 days to select a bacterium with little decrease in glucose and significant decrease in xylose. Table 3 Meat extract 0.5 g / 100 ml Yeast extract 0.5 Polypeptone 0.5 Sodium thioglycolate 0.1 Calcium carbonate 0.1 Agar 1.5 NaCl 5.0 Xylose 1.0 For the determination of glucose and xylose, see Abe et al. (Abe K., an
d K. Uchida) method (J. Bacteriol. 171: 1793-1800)
(1989)).
【0021】YPGX-1-5培地で選択した菌株について PT
S, PFK 及びGK活性を測定して、前記表1記載のよう
な、新規変異株ペディオコッカス・ハロフィルス3E4 (F
ERM P-12004)を得た。About strains selected on YPGX-1-5 medium PT
The S, PFK and GK activities were measured and the novel mutant Pediococcus halophilus 3E4 (F
ERM P-12004) was obtained.
【0022】[0022]
【実施例2】この新規変異株ペディオコッカス・ハロフ
ィルス3E4 (FERM P-12004)及び特開昭63-21936号に記載
しているPTS 活性が低下しているペディオコッカス・ハ
ロフィルスI−1 (FERM BP-1303) を、実施例1記載の
YPX-1-5 培地5mlに一白金耳接種し、温度30℃で4日間
静置培養して培養物を得た。Example 2 This novel mutant strain Pediococcus halophilus 3E4 (FERM P-12004) and Pediococcus halophilus I-1 having a reduced PTS activity described in JP-A-63-21936 ( FERM BP-1303) was used in Example 1.
One loopful of platinum loop was inoculated into 5 ml of YPX-1-5 medium, and cultured at 30 ° C. for 4 days to obtain a culture.
【0023】次いで、常法により該培養物を、18,000r.
p.m.で10分間遠心分離して菌体を得、その菌体を5%Na
Cl水溶液5mlで洗浄し、常法により乾燥して、ペディオ
コッカス・ハロフィルス3E4及びペディオコッカス・ハ
ロフィルスI−1の乾燥菌体をそれぞれ0.750mg 及び0.
80mg得た。Next, the culture was subjected to 18,000 r.
The cells were centrifuged at pm for 10 minutes to obtain cells, and the cells were
After washing with 5 ml of an aqueous solution of Cl and drying by a conventional method, 0.750 mg and 0.70 mg of dry cells of Pediococcus halophilus 3E4 and Pediococcus halophilus I-1, respectively.
80 mg were obtained.
【0024】[0024]
【実施例3】表 4 酵母エキス 0.3g/100ml ポリペプトン 0.5 リン酸水素二カリウム 0.5 チオグリコール酸ナトリウム 0.1 NaCl 5.0 グルコース 5.0 マンノース 0.5 ガラクトース 0.5 アラビノース 0.5 キシロース 1.0 親株ペディオコッカス・ハロフィルス13-2及び本変異株
ペディオコッカス・ハロフィルス3E4 を表4記載の培地
(YPM-1-5)5mlに接種し、温度30℃で4日間静置培養
し、培養物中の糖残存量を比較した結果を表5に示し
た。 表 5 残存量 (g/100ml)菌株名 ガラクトース アラビノース キシロース グルコース マンノース 13-2 0.45 0 0.42 4.65 0.41 3E4 0.46 0 0.10 4.74 0.45 Example 3 Table 4 Yeast extract 0.3 g / 100 ml polypeptone 0.5 dipotassium hydrogen phosphate 0.5 sodium thioglycolate 0.1 NaCl 5.0 glucose 5.0 mannose 0.5 galactose 0.5 arabinose 0.5 xylose 1.0 parent strain Pediococcus halophilus 13-2 and this mutation The strain Pediococcus halophilus 3E4 was cultured in the medium described in Table 4.
(YPM-1-5) was inoculated into 5 ml, cultivated at 30 ° C. for 4 days, and the amount of sugar remaining in the culture was compared. Table 5 Residual amount (g / 100 ml) Strain name Galactose arabinose xylose glucose mannose 13-2 0.45 0 0.42 4.65 0.41 3E4 0.46 0 0.10 4.74 0.45
【0025】[0025]
【実施例4】脱脂大豆100kg を蒸煮変性したものと、小
麦105kg を炒熬割砕したものを混合し、これに種麹を接
種し、42時間の通風製麹を行い醤油麹を得た。これに食
塩90kgを含む15℃に冷却した塩水 360Lを加えて 600L
容密閉仕込タンクに仕込を行なった。Example 4 100 kg of defatted soybeans were steam-denatured and 105 kg of wheat were crushed by roasting. The seed koji was inoculated into the mixture, followed by 42 hours of ventilation koji making to obtain soy sauce koji. Add 360L of salt water cooled to 15 ℃ containing 90kg of salt to 600L
The charge was carried out in a closed charging tank.
【0026】次いで、実施例2 において得た本変異株ペ
ディオコッカス・ハロフィルス3E4 (FERM P-12004)及び
ペディオコッカス・ハロフィルスI−1 (FERM BP-13
03) 、親株ペディオコッカス・ハロフィルス13-2 (FERM
BP-702)及び野生株I(FERM BP-1302) を、仕込後3週
間目の醤油諸味から、ポア・サイズ0.22μmのメンブラ
ンフィルター (日本ミリポア社製) を用いて無菌的に濾
過して得た諸味液汁100ml(4区分) に夫々一白金耳ずつ
接種し、温度30℃で7日間培養して培養物を夫々得た。Next, the present mutant strain Pediococcus halophilus 3E4 (FERM P-12004) and Pediococcus halophilus I-1 (FERM BP-13) obtained in Example 2 were obtained.
03), parent strain Pediococcus halophilus 13-2 (FERM
BP-702) and wild strain I (FERM BP-1302) were obtained from the soy sauce moromi three weeks after preparation by aseptic filtration using a membrane filter with a pore size of 0.22 μm (manufactured by Nippon Millipore). One platinum loop was inoculated into 100 ml (4 categories) of the obtained moromi sap, and cultured at 30 ° C. for 7 days to obtain respective cultures.
【0027】そして、得られた培養物中の糖残存量を比
較した結果を表6に示した。残存糖量の定量は、シンナ
ー・エム(Sinner M.) プルス・ジェイ (Puls J.)の方法
〔ジャーナル・オブ・クロマトグラフィー (J. Chromat
ogr.) 、第156巻、第197頁 (1978年)〕に準拠して測定
した。Table 6 shows the results of comparison of the amount of residual sugar in the obtained culture. The residual sugar content was determined by the method of Sinner M.Puls J. [Journal of Chromatography (J.
ogr.), vol. 156, p. 197 (1978)].
【0028】 [0028]
【0029】表6より明らかな如く、高濃度のグルコー
ス残存下にアラビノースおよびキシロースを選択的に完
全に発酵した。 PTS欠損株および親株13-2に比較しても
高度な選択を示した。As evident from Table 6, arabinose and xylose were selectively and completely fermented with a high concentration of glucose remaining. High selection was also shown when compared to the PTS-deficient strain and the parent strain 13-2.
Claims (1)
エノールパイルベートデペンデント・シュガー:フォス
フォトランスフェラーゼ・システム、フォスフォフラク
トキナーゼ及びグルコキナーゼが欠損した微生物を、ペ
ントース含有物に接種、培養し、ペントースを選択的に
発酵させることを特徴とするペントースの選択発酵法。A microorganism belonging to the genus Pediococcus and lacking the phosphoenol pileate dependent sugar: phosphotransferase system, phosphofructokinase and glucokinase is inoculated into a pentose-containing substance and cultured. A selective fermentation method for pentose, comprising selectively fermenting pentose.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3028969A JP2779073B2 (en) | 1991-02-22 | 1991-02-22 | Selective fermentation method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3028969A JP2779073B2 (en) | 1991-02-22 | 1991-02-22 | Selective fermentation method |
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Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04267860A JPH04267860A (en) | 1992-09-24 |
JP2779073B2 true JP2779073B2 (en) | 1998-07-23 |
Family
ID=12263249
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JP3028969A Expired - Lifetime JP2779073B2 (en) | 1991-02-22 | 1991-02-22 | Selective fermentation method |
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Families Citing this family (2)
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---|---|---|---|---|
EP2039774A1 (en) | 2001-04-04 | 2009-03-25 | Genencor International, Inc. | Methods for the production of products in host cells |
US7241587B2 (en) | 2001-04-04 | 2007-07-10 | Genencor International, Inc. | Method of uncoupling the catabolic pathway of glycolysis from the oxidative membrane bound pathway of glucose conversion |
-
1991
- 1991-02-22 JP JP3028969A patent/JP2779073B2/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
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JPH04267860A (en) | 1992-09-24 |
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