JP2022521428A - 抗炎症剤に連結されたecm親和性ペプチドを用いて炎症性状態および自己免疫状態を処置するための方法および組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年2月25日付で出願された米国特許仮出願第62/809,988号の優先権の恩典を主張するものであり、これはその全体が参照により本明細書に組み入れられる。
本発明は広くは、医学の分野に関する。より具体的には、本発明は、炎症組織をターゲティングするために操作された抗炎症剤を含めて、ヌクレオチド構築体およびタンパク質を伴う組成物および方法に関する。
サイトカインおよびその受容体に対する治療法は、特に関節リウマチ(RA)および炎症性腸疾患(IBD)の抗TNF療法において、炎症性疾患および自己免疫疾患の転帰を劇的に変化させた(1-5)。しかしながら、現在の承認薬はほとんどの患者を完全に治癒させるわけではなく、全身性免疫を抑制することによって重大な副作用を有する可能性がある(6-10)。治療結果を増強し、全身性副作用を低減するために、炎症部位への効率的な薬物送達は、そのような疾患の有望な治療戦略である。炎症性組織は、増強された透過性および保持(EPR)効果を誘導する一連のメディエータを放出する(11-12)。EPR効果は、非機能性リンパ管および巨大分子の血管外遊出を可能にする緩い内皮結合に起因し、固形腫瘍および炎症組織内での巨大分子の長期保持をもたらす(11-15)。腫瘍組織とは異なり、炎症組織はそこから物質を排出する機能的なリンパ系を有する(14-16)。現在、炎症組織からの急速なクリアランスのために、炎症性疾患および自己免疫疾患の炎症組織をターゲティングする効果的な方法がない。それゆえ、炎症組織を直接ターゲティングする治療法が当技術分野において必要とされている。
炎症性疾患および自己免疫疾患に対する薬物の治療効果を増強することには、非常に大きな需要がある。考えられるアプローチの1つは、抗炎症薬を炎症部位にターゲティングすることである。コラーゲンは、大部分の組織において脈管構造の透過性が低いためにアクセス不能であるが、炎症部位においては脈管構造の過透過性のために血流に露出される。本開示は、ECM親和性ペプチドにコンジュゲートされたECM結合性抗炎症剤について記述する。そのようなペプチドの1つはコラーゲン結合ペプチド(CBP)である。CBPコンジュゲーションは、抗TNFα抗体(αTNF)に対するコラーゲン親和性をもたらした。CBP-αTNFは、コラーゲン抗体誘発関節炎モデルの炎症部位に蓄積した(実施例1)。関節炎の発症は未改変抗体と比較して、CBP-αTNFにより有意に抑制された。さらに、インターロイキン(IL)-4へのフォンヴィルブランド因子(vWF) A3ドメイン融合(A3-IL4)に由来するコラーゲン結合ドメインにより、静脈内投与後、多発性硬化症のモデルである実験的自己免疫性脳脊髄炎(EAE)の脊髄において検出することができるようになった(実施例1)。A3-IL4はEAEの臨床症状を低減したが、通常のIL-4は低減しなかった。コラーゲン結合タンパク質は、自発的炎症性腸疾患、ブレオマイシン誘発性肺線維症、およびI型糖尿病モデルの炎症組織において検出可能であった。まとめると、コラーゲン親和性により、抗炎症薬を炎症部位にターゲティングすることが可能になることから、炎症性疾患および自己免疫疾患を処置するための臨床的に技術移転の新たなアプローチが実証される。
A. 抗体
本開示の局面は、抗炎症性抗体またはその断片に関する。「抗体」という用語は、標的抗原への特異的結合についてインタクトな抗体と競合できる任意のアイソタイプのインタクトな免疫グロブリン、またはその断片をいい、キメラ抗体、ヒト化抗体、完全ヒト抗体、および二重特異性抗体を含む。本明細書において用いられる場合、「抗体」または「免疫グロブリン」という用語は互換的に用いられ、IgG、IgD、IgE、IgA、IgMおよび関連タンパク質を含めて、動物の免疫応答の一部として機能する構造的に関連するタンパク質のいくつかのクラスのいずれか、ならびに抗原結合活性を保持する抗体CDRドメインを含むポリペプチドをいう。
1) 抗体可変領域のアミノ酸配列の化学的性質およびエピトープの組成に基づく抗体/エピトープ結合相互作用の三次構造の計算による予測。
2) 水素-重水素交換および質量分析
3) ポリペプチドの全長から複数の重複するペプチド断片を作出し、これらのペプチドのエピトープに対する結合親和性を評価する、ポリペプチド断片化およびペプチドマッピングアプローチ。
4) 哺乳動物の抗体Fab断片コード遺伝子が、ファージのコートに組み込まれるようにバクテリオファージによって発現される抗体ファージディスプレイライブラリ分析。次に、このFab発現ファージの集団が、固定化されているか、または異なる外因性発現系によって発現されうる抗原と相互作用させられる。非結合Fab断片は洗い流され、それによって特異的結合Fab断片のみが抗原に付着したままになる。結合Fab断片は容易に単離することができ、それらをコードする遺伝子を決定することができる。このアプローチは、必要に応じてFv断片または特定のVHおよびVLドメインを含むFab断片のさらに小さな領域にも用いることができる。
a. 抗原結合断片
ある種の局面は、炎症性メディエータに結合するおよび/または炎症性メディエータを中和する抗体断片などの、抗体断片に関する。機能的抗体断片という用語は、抗原に特異的に結合する能力を保持する抗体の抗原結合断片を含む。これらの断片は、可変領域重鎖(VH)および/または軽鎖(VL)のさまざまな配置で構成されており; いくつかの態様において、定常領域重鎖1 (CHl)および軽鎖(CL)を含む。いくつかの態様において、それらは、重鎖2 (CH2)および3 (CH3)ドメインで構成されるFc領域を欠いている。抗原結合断片およびその改変の態様は、以下を含みうる: (i) VL、VH、CL、およびCHlドメインで構成されるFab断片タイプ; (ii) VHおよびCHlドメインで構成されるFd断片タイプ; (iii) VHおよびVLドメインで構成されるFv断片タイプ; (iv) 単一のVHまたはVLドメインで構成される単一ドメイン断片タイプdAb (Ward, 1989; McCafferty et al., 1990; Holt et al., 2003); (v) 単離された相補性決定領域(CDR)領域。そのような用語は、例えば、Harlow and Lane, Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, NY (1989); Molec. Biology and Biotechnology: A Comprehensive Desk Reference (Myers, R. A. (ed.), New York: VCH Publisher, Inc.); Huston et al., Cell Biophysics, 22:189-224 (1993); Pluckthun and Skerra, Meth. Enzymol., 178:497-515 (1989)およびDay, E. D., Advanced Immunochemistry, 2d ed., Wiley-Liss, Inc. New York, N.Y. (1990); Antibodies, 4:259-277 (2015)に記述されている。この段落での引用は全て参照により組み入れられる。
Fc領域は、抗体のCH2およびCH3ドメインを含む2つの重鎖断片を含む。2つの重鎖断片は、2つまたはそれ以上のジスルフィド結合によっておよびCH3ドメインの疎水性相互作用によって一緒に保持されている。本明細書において用いられる「Fcポリペプチド」という用語は、抗体のFc領域に由来するポリペプチドの天然型およびムテイン型を含む。二量体化を促進するヒンジ領域を含むそのようなポリペプチドの切断型が含まれる。
相補性決定領域(CDR)などの、抗原結合ペプチド足場は、態様にしたがってタンパク質結合分子を作出するために用いられる。一般に、当業者は、少なくとも1つのCDRをグラフト化するタンパク質足場のタイプを決定することができる。足場は、最適には、良好な系統発生的保存; 公知の三次元構造; 小さいサイズ; 転写後修飾がほとんどもしくは全くない; 生成、発現、および精製することが容易であるなどの、いくつかの基準を満たさなければならないことが知られている。Skerra, J Mol Recognit, 13:167-87 (2000)。
サイトカインは、細胞が興奮時に放出する一群のタンパク質である(細胞膜に発現されるサイトカインはごくわずかである)。細胞によって産生されるサイトカインは、近くの標的細胞にまたは血液循環を通じて非常に低濃度で影響を与えることができる。それらは、標的細胞の成長、分化、および活性化を促進する上で幅広い機能を有する。多くのサイトカインは免疫細胞を標的とし、免疫応答において役割を果たしうる。構造的および機能的な違いに基づいて、サイトカインは、ケモカイン、インターロイキン、成長因子、形質転換成長因子、コロニー刺激因子、腫瘍壊死因子、およびインターフェロンに大きく分類されうる。
本開示の態様は、抗炎症剤CD200を含むポリペプチドおよび組成物に関する。例示的なCD200ポリペプチドアミノ酸配列を以下に示す。
コラーゲンは細胞外マトリックス(ECM)タンパク質であり、正常組織と腫瘍組織の両方で増殖、分化、および接着などの、種々の細胞生物学的機能を調節する(Ricard-Blum, Cold Spring Harb Perspect Biol 3:a004978, 2011)。コラーゲンは哺乳動物の体内で最も豊富なタンパク質であり、ほぼ全ての組織において28のアイソフォームのうちの1つまたは複数として存在する(Ricard-Blum, Cold Spring Harb Perspect Biol 3:a004978, 2011)。血管の内皮下腔はコラーゲンが豊富である。生理学的条件下で不溶性のため、コラーゲンは血液内にほとんど存在しない(Dubois et al., Blood 107:3902-06, 2006; Bergmeier and Hynes, Cold Spring Harb Perspect Biol 4:a005132, 2012)。腫瘍脈管構造は、異常な構造のために透過性であると報告されている(Nagy et al., British journal of cancer 100:865, 2009)。したがって、その漏出性脈管構造により、コラーゲンは腫瘍中で露出されている(Liang et al., Journal of controlled release 209:101-109, 2015; Liang et al., Sci Rep 6:18205, 2016; Yasunaga et al., Bioconjugate Chemistry 22:1776-83, 2011; Xu et al. The Journal of cell biology 154:1069-80, 2001; Swartz and Lund, Nat Rev Cancer 12:210-19)。また、腫瘍組織は、正常組織と比較して増加した量のコラーゲンを含有する(Zhou et al. J Cancer 8:1466-76, 2017; Provenzano et al. BMC Med 6:11, 2008)。
によって表される。
を有する。
である。例示的なペプチドは、SEQ ID NO:12の全部または一部および以下のペプチド:
を含む。
により例示されるヒト血清アルブミンを含む。いくつかの態様において、血清アルブミンは、以下の配列:
を有するポリペプチドを含む。
ECM親和性ペプチド、血清タンパク質、またはサイトカインポリペプチドなどの、本開示のポリペプチドまたはポリヌクレオチドは、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、もしくは50個またはそれ以上の変種アミノ酸または核酸置換を含み、あるいはSEQ ID NO:1~66の、少なくとも、または多くとも3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、111、112、113、114、115、116、117、118、119、120、121、122、123、124、125、126、127、128、129、130、131、132、133、134、135、136、137、138、139、140、141、142、143、144、145、146、147、148、149、150、151、152、153、154、155、156、157、158、159、160、161、162、163、164、165、166、167、168、169、170、171、172、173、174、175、176、177、178、179、180、181、182、183、184、185、186、187、188、189、190、191、192、193、194、195、196、197、198、199、200、201、202、203、204、205、206、207、208、209、210、211、212、213、214、215、216、217、218、219、220、221、222、223、224、225、226、227、228、229、230、231、232、233、234、235、236、237、238、239、240、241、242、243、244、245、246、247、248、249、250、300、400、500、550、1000個もしくはそれ以上またはその中で導出可能な任意の範囲の連続するアミノ酸または核酸と少なくとも60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、76%、77%、78%、79%、80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%類似、同一、または相同でありうる。
ある種の態様において、本開示は、抗炎症剤および/または他の分子に機能的に連結されたECM親和性ペプチドなどの、本発明のタンパク質、ポリペプチド、およびペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドに関する。それゆえ、ある種の態様は、ECM親和性ポリペプチドおよび/または抗炎症剤もしくはその断片に融合されたECM親和性ポリペプチドもしくはその断片をコードするヌクレオチドに関する。
本開示のポリペプチドは、ベクターに含まれる核酸分子によってコードされてもよい。「ベクター」という用語は、異種核酸配列を、複製され発現されうる細胞へ導入するために、挿入できる担体核酸分子をいうように用いられる。核酸配列は「異種」であってよく、これは文脈中で、ベクターが導入されている細胞にとって、または核酸配列が組み入れられる核酸にとって核酸配列が異質であることを意味し、これには、細胞中または核酸中の配列と同種であるが、しかし、通常は見出されない、宿主細胞内または核酸内のある位置における配列が含まれる。ベクターにはDNA、RNA、プラスミド、コスミド、ウイルス(バクテリオファージ、動物ウイルスおよび植物ウイルス)、ならびに人工染色体(例えば、YAC)が含まれる。当業者は、標準的な組換え技術(例えば、ともに参照により本明細書に組み入れられるSambrook et al., 2001; Ausubel et al., 1996)を通じてベクターを構築するのに必要なものを十分に持っていると考えられる。本開示のポリペプチドをコードすることに加えて、ベクターは、1つまたは複数の他の細菌ペプチド、タグ、または免疫原性増強ペプチドなどの他のポリペプチド配列をコードすることができる。そのような融合タンパク質をコードする有用なベクターは、pINベクター(Inouye et al., 1985)、一続きのヒスチジンをコードするベクター、ならびに後の精製および分離または切断のためのグルタチオンS-トランスフェラーゼ(GST)可溶性融合タンパク質の作出で用いるための、pGEXベクターを含む。
「プロモーター」は制御配列である。プロモーターは、典型的には、転写の開始および速度が制御される核酸配列の領域である。これには、RNAポリメラーゼおよび他の転写因子などの、調節タンパク質および分子が結合しうる遺伝要素を含めてもよい。「機能的に配置された」、「機能的に連結された」、「制御下」、および「転写制御下」という語句は、プロモーターが核酸配列との関連で、その配列の転写開始および発現を制御するのに正しい機能的位置および/または方向にあることを意味する。プロモーターは、核酸配列の転写活性化に関わるシス作用調節配列をいう「エンハンサー」とともに用いられてもまたは用いられなくてもよい。
特異的開始シグナルもコード配列の効率的な翻訳に必要とされうる。これらのシグナルには、ATG開始コドンまたは隣接配列が含まれる。ATG開始コドンを含む外因性の翻訳制御シグナルを提供する必要がありうる。当業者は容易にこれを決定して、必要なシグナルを提供することができるであろう。
本発明のある種の態様において、本開示の核酸構築体を含む細胞は、発現ベクターの中にスクリーニング可能または選択可能なマーカーをコードすることによってインビトロまたはインビボで同定することができる。転写され翻訳される場合、マーカーは同定可能な変化を細胞に付与し、発現ベクターを含む細胞の容易な同定を可能にする。一般的に、選択可能なマーカーは、選択を可能にする特性を付与するものである。陽性選択可能なマーカーは、マーカーが存在することでその選択が可能になるものであるのに対し、陰性選択可能なマーカーは、マーカーが存在することでその選択が妨害されるものである。陽性選択可能なマーカーの例は、薬物耐性マーカーである。
本明細書において用いられる場合、「細胞」、「細胞株」、および「細胞培養物」という用語は互換的に用いることができる。これらの用語の全てが、任意のおよび全ての次世代のその子孫も含む。故意または偶然の変異により全ての子孫が同一ではないことがあると理解されると考えられる。異種核酸配列を発現するという文脈において、「宿主細胞」とは、原核細胞または真核細胞をいい、これには、ベクターを複製できるかまたはベクターによってコードされる異種遺伝子を発現できる、任意の形質転換可能な生物が含まれる。宿主細胞はベクターまたはウイルスのレシピエントとして、使用されることができかつ使用されている。宿主細胞は「形質移入」または「形質転換」されてもよく、それらは組換えタンパク質をコードする配列などの、外因性の核酸が宿主細胞に移入または導入される過程をいう。形質転換細胞には、初代被験細胞およびその子孫が含まれる。
先に論じた組成物の少なくとも一部または全部を含む多数の発現システムが存在する。原核生物および/または真核生物に基づくシステムを本発明で用いるために使用して、核酸配列、またはその同源のポリペプチド、タンパク質およびペプチドを産生することができる。そのような多くのシステムが市販されており、広く使用可能である。
本開示の組成物および関連する方法、特に抗炎症剤および/または他の分子に機能的に連結されたECM親和性ペプチドの投与も、本明細書において記述されるさらなる治療法などの、さらなる治療法の投与と組み合わせてまたは自己免疫もしくは炎症状態の処置のための当技術分野において公知の他の従来の治療法と組み合わせて用いられうる。
本開示の組成物は、インビボ、インビトロ、またはエクスビボ投与のために用いられうる。組成物の投与経路は、例えば、皮内投与、皮下投与、静脈内投与、局所投与、局部投与、および腹腔内投与でありうる。
アフタ性口内炎、動脈硬化性疾患、精子形成欠如、自己免疫性溶血、ベック病、クリオグロブリン血症、デュピュイトラン拘縮、水晶体過敏性眼内炎、アレルギー性腸炎、結節性紅斑、特発性顔面麻痺、慢性疲労症候群、リウマチ熱、ハマンリッチ病、感音難聴、血色素尿症発作、性腺機能低下症、局所性腸炎、白血球減少症、伝染性単核球症、横断性脊髄炎、原発性特発性粘液水腫、ネフローゼ、交感性眼炎、肉芽腫性精巣炎、膵炎、皮膚多発根炎、壊疽性膿皮症、ケルバン病性甲状腺炎、後天性脾臓萎縮、非悪性胸腺腫、白斑、毒素性ショック症候群、食中毒、T細胞の浸潤を伴う状態、白血球接着不全症、サイトカインおよびTリンパ球によって媒介される急性および遅延性過敏症に関連する免疫応答、白血球の血管外遊走を伴う疾患、多臓器損傷症候群、抗原抗体複合体介在性疾患、抗糸球体基底膜疾患、アレルギー性神経炎、自己免疫性多内分泌腺症候群、卵胞炎、原発性粘液水腫、自己免疫性萎縮性胃炎、交感性眼炎、リウマチ性疾患、混合性結合組織病、ネフローゼ症候群、膵島炎、多腺性自己免疫症候群、多腺性自己免疫症候群I型、成人発症の特発性副甲状腺機能低下症(AOIH)、拡張型心筋症などの心筋症、表皮水疱症(EBA)、ヘモクロマトーシス、心筋炎、ネフローゼ症候群、原発性硬化性胆管炎、化膿性または非化膿性副鼻腔炎、急性または慢性副鼻腔炎、篩骨、前頭、上顎、または蝶形骨副鼻腔炎、好酸球増加症などの好酸球関連障害、肺浸潤性好酸球増加症、好酸球増加症-筋肉痛症候群、レフラー症候群、慢性好酸球性肺炎、熱帯性肺好酸球増加症、気管支肺炎性アスペルギルス症、アスペルギルス症、または好酸球を含む肉芽腫、アナフィラキシー、血清反応陰性脊椎関節炎、自己免疫性多内分泌腺症候群、硬化性胆管炎、強膜、上強膜、慢性粘膜皮膚カンジダ症、ブルートン症候群、乳児期の一過性低ガンマグロブリン血症、ウィスコット・アルドリッチ症候群、毛細血管拡張性運動失調症候群、膠原病、リウマチ、神経疾患に関連する自己免疫疾患、リンパ節炎、血圧反応の低下、血管機能障害、組織損傷、心血管虚血、痛覚過敏、腎虚血、脳虚血、および血管新生を伴う疾患、アレルギー性過敏症、糸球体腎炎、再灌流傷害、虚血性再灌流障害、心筋または他の組織の再灌流傷害、リンパ腫性気管気管支炎、炎症性皮膚病、急性炎症性成分を伴う皮膚病、多臓器不全、水疱性疾患、腎皮質壊死、急性化膿性髄膜炎または他の中枢神経系炎症性疾患、眼球および眼窩の炎症性疾患、顆粒球輸血関連症候群、サイトカイン誘発毒性、ナルコレプシー、急性重篤な炎症、慢性難治性炎症、腎盂炎、動脈内過形成、消化性潰瘍、弁膜炎、移植片対宿主病、接触過敏症、喘息性気道過敏症、ならびに子宮内膜症に関連する免疫応答も企図される。
いくつかの態様において、薬学的組成物は、対象に投与される。異なる局面は、対象に組成物の有効量を投与することを伴う。いくつかの態様において、抗炎症剤を含む組成物は、炎症および/または自己免疫を処置するために対象または患者に投与されうる。さらに、そのような化合物は、さらなる処置と組み合わせて投与することができる。
以下の実施例は、本開示の好ましい態様を実証するために含めている。当業者には、以下の実施例に開示した手法が、本発明者が、本開示の実施において充分に機能を果たすと見出した手法であり、したがって、その実施のための好ましい形態を構成しているとみなされうることが認識されよう。しかしながら、当業者は、本開示に鑑みると、開示している具体的な態様において、本開示の趣旨および範囲から逸脱することなく多くの変更が行なわれうるが、それでもなお同様または類似の結果が得られることが認識されるはずである。
A. 結果
1. CBPコンジュゲーションは、抗TNFα抗体(αTNF)に対するコラーゲン親和性をもたらした
抗TNFα抗体(αTNF)をスルホスクシンイミジル-4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサン-1-カルボキシレート(スルホ-SMCC)と混合した後に、CBPを抗体に共有結合的に架橋した。マトリックス支援レーザー脱離/イオン化-飛行時間型(MALDI-TOF)質量分析によって計算した場合に、最大5つのCBPが抗体に結合された(図1A)。CBPコンジュゲーションされたαTNF (CBP-αTNF)がコラーゲンに結合する能力を調べるために、I、II、およびIII型コラーゲンに対するCBP-αTNFおよび未改変αTNF (WT-αTNF)の結合活性をELISAによって決定した。CBP-αTNFは、試験した全ての型のコラーゲンに結合したが、WT-αTNFのコラーゲンへの結合シグナルは、検出不能なレベルであった(図1B)。
内因性コラーゲンへの結合を通じたコラーゲン抗体誘発関節炎(CAIA)モデルの炎症性の足におけるCBP-αTNFの局在を、インビボでの生体内分布分析によって決定した。関節炎は、抗コラーゲン抗体の受動免疫、続いて右後足蹠にLPSを皮下注射することにより、右後足に選択的に誘発された。局所LPS注射は、他の足と比較して右後足に重度の関節炎を誘発した。LPS注射の翌日に、蛍光標識されたCBP-αTNFおよびWT-αTNFをCAIAおよびナイーブマウスに静脈内注射した。全身の蛍光レベルを、抗体注射前と注射後0.5、1、2、4、6、24、および48時間で測定した。CBP-αTNFおよびWT-αTNFを注射したCAIAマウスの関節炎の右後足の蛍光レベルは注射直後に増加したが、ナイーブマウスの蛍光レベルは関節炎および非関節炎の足の両方でほぼ同じであった(図2Aおよび2B)。非関節炎の足に対する関節炎の足でのレベルの比率は、WT-αTNFよりもCBP-αTNFを注射されたマウスの方が高かった(図2C)。注入されたCBP-αTNFは、免疫組織化学によって関節炎の主要な炎症部位である滑膜およびパンヌスで検出された(図2D)。これらのデータは、CBD-αTNFが、その未改変の形態よりも、全身注射後に炎症を起こした組織(すなわち、関節炎の足)に選択的に局在することを示している。
次に、本発明者らは、CAIAモデルにおけるCBP-αTNFの抗炎症効力について調べた。関節炎は、抗コラーゲン抗体の受動免疫とそれに続くLPSの腹腔内注射により全ての足において誘発された。LPS注射の日に、対照IgG、WT-αTNF、またはCBP-αTNFを静脈内注射した。関節炎スコアは対照マウスにおいて増加し、スコアはWT-αTNFおよびCBP-αTNFによって低減した(図3A)。CBP-αTNF処置マウスのスコア低減は、WT-αTNF処置マウスよりも有意に大きかった。組織学的観察により、関節破壊がCBP-αTNFによって有意に抑制されたことが明らかにされた(図3B)。本発明者らはさらに、CBP-αTNFが皮下経路を介した注射によって効力を示しうるかどうかを調査した。CBP-αTNFの皮下注射においてさえも、同様の蓄積傾向および阻害効力が観察された(図4)。これらのデータは、αTNFのCBP改変が、その非改変型よりも優れた抗炎症効力を提供することを示している。
局所療法の治療有効性を評価するために、本発明者らは、既述されたCBPコンジュゲーションと同じ方法で、胎盤成長因子2 (具体的には、PlGF-2123~144)に由来する乱交雑(promiscuous) ECM結合ペプチドとαTNFをコンジュゲーションした(32, 33)。PlGF-2123~144ペプチドは、複数のECMタンパク質に高い親和性で結合するため、注射部位に保持される。CAIAマウスの左後足蹠に注射されたPlGF-2123~144コンジュゲーションαTNF (PlGF-2123~144-αTNF)は注射部位に保持されたが、WT-αTNFからのシグナルは注射後に急速に低減した(図5A)。効力を比較するために、対照IgG、WT-αTNF、またはPlGF-2123~144-αTNFをCAIAマウスの左後足蹠に皮下注射した。関節炎スコアは、対照IgG処置マウスの右後肢と左後肢の両方で増加した。WT-αTNFは、この処置レジメンでのスコアを抑制しなかった。しかしながら、PlGF-2123~144-αTNFは、WT-αTNFより100倍低い用量でさえも、処置した足(左)において関節炎の発症をほぼ完全に抑制した。興味深いことに、PlGF-2123~144-αTNFは未処置の足において関節炎の発症を抑制せず(右)、その局所的な効力を示すものであった(図5B)。これらのデータは、炎症部位における薬物の蓄積が炎症を抑制し、抗炎症薬の効力を最大化するために重要であることを示唆している。
IL-4は、ナイーブヘルパーT細胞(Th0)のTh2細胞への分化を誘導するサイトカインである。髄腔内または鼻腔内投与による中枢神経系へのIL-4の適用は、多発性硬化症のマウスモデルである実験的自己免疫性脳脊髄炎(EAE)モデルにおいて臨床徴候および軸索形態を改善することが報告されている。したがって、臨床的に関連する注射経路である静脈内注射からのIL-4のEAEターゲティングを達成するために、本発明者らは、vWF A3ドメイン融合IL-4 (A3-IL4)タンパク質を合成した。A3-IL4は、28.6 nMの解離定数(Kd)でコラーゲンIIIに結合した(図6A)。IL-4へのvWF A3ドメイン融合は、その受容体であるIL-4Rαに対する結合親和性を無効化しなかった(図6B)。次に、内因性コラーゲンへの結合を通じたEAEモデルの炎症脊髄におけるvWF A3ドメインタンパク質の局在を蛍光イメージングによって決定した。標的組織が炎症を起こした免疫後14日目に、蛍光標識されたA3またはA3-IL4をナイーブマウスおよびEAEマウスに静脈内注射した。A3およびA3-IL4は、EAEマウスの脊髄で検出されたが、ナイーブマウスの脊髄では検出されなかった(図6C)。次に、本発明者らは、EAE症状に及ぼすA3-IL4の治療効果を調べた。最初のEAE症状が現れた免疫後14日目から、PBS、正常型IL-4、およびA3-IL4を1日おきに静脈内注射した。A3-IL4は平均疾患スコアを低減させたが、正常なIL-4はいずれの治療効果も示さなかった(図6E)。
コラーゲン結合操作が炎症性疾患にさまざまな用途を有するかどうかを調べるために、A3タンパク質およびCBPコンジュゲーション抗体の局在を、自然発症炎症性腸疾患(IBD)、ブレオマイシン誘発性特発性肺線維症(IPF)、およびI型糖尿病(T1D)モデルの炎症組織において蛍光イメージングにより決定した。標的組織が炎症を起こした時点で、蛍光標識A3、CBP-αTNF、またはCBPコンジュゲーション抗TGF-β抗体(CBP-αTGF)をEAE、IBD、IPF、およびT1Dモデルに静脈内注射し、標的組織における蛍光レベルを決定した。A3は、IBDを発症したマウスの結腸、ならびに自然発症T1Dおよびシクロホスファミド誘発性T1Dマウスの膵臓において検出されたが、健常なマウスのそれらにおいては検出されなかった(図7Aおよび7C)。同様に、CBP-αTNFはEAEモデルの脊髄、およびIBD発症マウスの結腸において検出されたが、健常なマウスのそれらにおいては検出されなかった(図6Dおよび7A)。組織病理学的分析により、CBP-αTNFは、浸潤細胞が存在するIBDモデルの結腸固有層に局在していることが明らかにされた(図7A)。また、CBP-αTGFはIPFモデルの肺において検出されたが、未改変の抗体は検出されなかった(図7B)。これらの結果は、抗体およびサイトカインに対するコラーゲン親和性を導入することで、それらを炎症組織にターゲティングすることが可能になることを示唆している。
本研究では、抗炎症性抗体にコラーゲン結合親和性を導入することで、炎症組織でのその保持およびその治療有効性が増強されることが実証された。静脈内および皮下注射されたCBP-αTNFは、CAIAモデルの炎症を起こした足に蓄積された。また、抗体へのCBPコンジュゲーションにより、EAE、IBD、およびIPFモデルの複数の炎症部位において抗体を検出することが可能とされた。これは、コラーゲン親和性が炎症部位をターゲティングすることができ、さまざまな炎症性疾患に広く適用できることを示唆している。これは、コラーゲンが脈管構造の周囲に普遍的かつ豊富に存在するが、炎症性組織では脈管構造の過透過性が発生した場合にのみ血流に露出されるためである。したがって、薬物送達方法としてのコラーゲン親和性は、組織、分子発現アプローチでも、疾患特異的アプローチでもなく、むしろ一般的な炎症特異的アプローチである。さらに重要なことに、CBP-αTNFは、CAIAモデルにおいて未改変のαTNFよりも効果的に関節炎スコアを低減させた。RAおよびIBDなどの炎症性疾患のαTNFは、大部分の患者において完全寛解を示さず、重大な副作用を及ぼしうる(6-10)。それゆえ、CBP-αTNFは、炎症および自己免疫疾患の先進治療を達成するための技術移転の可能性を秘めている。
1. CBPコンジュゲーション抗体の合成
ラット抗マウスTNF-α抗体(クローンXT3.11, BioXcell)を20当量のスルホ-スクシンイミジル4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサン-1-カルボキシレート(スルホ-SMCC)とともに室温で30分間インキュベートした。Zebaスピン脱塩カラム(Thermo Fisher Scientific)を用いて、過剰なスルホSMCCを除去した。次に、デコリオン(decorion)に由来するコラーゲン結合性配列ペプチド(CBP, LRELHLNNNC) 30当量を添加し、C残基のチオール部分へのコンジュゲーションのために室温で1時間反応させた。ペプチドはGenscriptによって95%超の純度で合成されていた。
ヒトvWF A3ドメイン残基Cys1670~Gly1874 (成熟vWFの907~1111)、ならびにヒトvWF A3ドメインおよびマウスIL-4融合タンパク質をコードする配列を、合成し、Genscriptによって哺乳動物発現ベクターpcDNA3.1(+)にサブクローニングした。組換えタンパク質のさらなる精製のために、6 Hisをコードする配列を、N末端に付加した。懸濁液に適合したHEK-293F細胞は、無血清FreeStyle 293発現培地(Gibco)中で日常的に維持された。トランスフェクションの日に、細胞を1×106個の細胞/mlの密度で新鮮培地に接種した。2μg/mlのプラスミドDNA、2μg/mlの線形25 kDaポリエチレンイミン(Polysciences)、およびOptiPRO SFM培地(終濃度4%, Thermo Fisher)を順次添加した。培養フラスコを5% CO2の存在下、37℃、135 rpmで軌道振盪することにより撹拌した。トランスフェクション6日後、細胞培地を遠心分離によって回収し、0.22μmフィルタでろ過した。AKTA pure 25 (GE Healthcare)を用いて、培地をHisTrap HP 5 mlカラム(GE Healthcare)に負荷した。洗浄緩衝液(20 mMイミダゾール, 20 mM NaH2PO4, 0.5 M NaCl, pH 7.4)によるカラムの洗浄後に、500 mMイミダゾール(20 mM NaH2PO4, 0.5 M NaCl, pH 7.4中)の勾配でタンパク質を溶出させた。溶出溶液を、HiLoad Superdex 200PGカラム(GE healthcare)を用いたサイズ排除クロマトグラフィーでさらに精製した。全ての精製段階は4℃で実行された。A3およびA3-IL-4の発現は、抗Hisタグ抗体(BioLegend)を用いたウエスタンブロッティングにより決定され、該タンパク質はSDS-PAGEによって90%超の純度であると確認された。
測定を既述のように実施する(32)。96ウェルELISAプレート(Greiner Bio One)をI型、II型、およびIII型ヒトコラーゲン(PBS中で各10μg/mL, Millipore Sigma)とともに37℃で終夜コーティングした後に、0.05% Tween 20を有するPBS (PBS-T)中1%のBSAによるブロッキングを室温で1時間行った。次に、ウェルをPBS-Tで洗浄し、1μM CBP-αTNF、1μM未改変αTNF、または0~740 nM A3-IL4とともに室温で1時間さらにインキュベートした。PBS-Tでの3回洗浄の後、ラットIgGに対するHRPコンジュゲート抗体(Jackson ImmunoResearch)により、室温で1時間インキュベートして抗体を検出した。A3-IL4を、マウスIL-4に対する特異抗体(R&D Systems)によって検出した。洗浄後、結合したタンパク質をテトラメチルベンジジン基質により、570 nmでの吸光度を差し引いて450 nmでの吸光度の測定によって検出した。
測定を既述のように実施する(32)。96ウェルELISAプレート(Greiner Bio One)を組換えマウスIL-4Rαタンパク質(PBS中で各10μg/mL, R&D Systems)とともに37℃で終夜コーティングした後に、PBS (PBS-T)中1%のBSAによるブロッキングを室温で1時間行った。次に、ウェルをPBS-Tで洗浄し、0~740 nM A3-IL4またはIL-4とともに室温で1時間さらにインキュベートした。PBS-Tでの3回洗浄の後、マウスIL-4に対する特異抗体(R&D Systems)によってIL-4を検出した。洗浄後、結合したタンパク質をテトラメチルベンジジン基質により、570 nmでの吸光度を差し引いて450 nmでの吸光度の測定によって検出した。
抗体をMALDI-TOF MS (Bruker Ultraflextreme MALDI TOF/TOF)によって分析した。全てのスペクトルを取得ソフトウェアBruker flexControl(商標)で収集し、分析ソフトウェアBruker flexAnalysis(商標)で処理した。最初に、マトリックスの飽和溶液であるα-シアノ-4-ヒドロキシ桂皮酸(Sigma-Aldrich)を、溶媒として水中50:50のアセトニトリル:1% TFA中で調製した。次に、PBS中の分析物(5μL, 0.1 mg/mL)およびマトリックス溶液(25μL)を混合し、その混合物1μLをMTP 384グランドスチールターゲットプレートに被着させた。液滴を窒素ガス流中で乾燥させた結果、均一なサンプル/マトリックス共沈物が形成された。全てのサンプルを、75%のレーザー強度で2500回のレーザーショットを用いた高質量線形ポジティブモード法を使って分析した。測定結果を、炭酸脱水酵素、ホスホリラーゼB、およびウシ血清アルブミンの混合物を用いて3点で外的に較正した。
抗TNFα抗体(クローンXT3.11, BioXcell)および抗TGF-β抗体(クローン1D11.16.8, BioXcell)を8当量のSM(PEG)24 (Thermo Fisher Scientific)とともに室温で30分間インキュベートした。Zebaスピン脱塩カラム(Thermo Fisher Scientific)を用いて、過剰なSM(PEG)24を除去した。次に、30当量のCy7標識CBP ([Cy7]LRELHLNNNC[COOH])を添加し、C残基のチオール部分へのコンジュゲーションのために室温で30分間反応させた。ペプチドはGenscriptにより95%超の純度で合成された。未反応の色素は、PBSに対する透析によって除去された。CBP非コンジュゲーション抗体については、製造元の指示にしたがいスルホ-Cy7 NHSエステル(Lumiprobe)を用いてαTNFおよびαTGFを標識した。製造元の指示にしたがいDyLight 800 NHSエステル(Thermo Fisher Sientific)を用いて、A3およびA3-IL4を標識した。モデルマウスの標的組織が炎症を起こした時点で、10~100μgのCy7標識WT-αTNF、WT-αTGF、CBP-αTNFおよびCBP-αTGF、またはDyLight 800標識A3およびA3-IL4を静脈内注射した。マウスの臓器を採取し、Xenogen IVIS Imaging System 100 (Xenogen)を用い以下の条件下で画像化した: f/ストップ: 2; 光学フィルタ励起745 nm; 励起800 nm; 露出時間: 5秒; 小ビニング。
関節炎は、-3日目に抗コラーゲン抗体カクテル(1.5 mg/マウス, Chondrex)を腹腔内注射した後、0日目にLPS (50μg/マウス, Chondrex)を腹腔内注射することにより雌性Balb/cマウス(7週齢)において誘発された。LPS注射の日に、マウスの背中に、対照IgG (200μg/マウス)、WT-αTNF (200μg/マウス)、もしくはCBP-αTNF (200μg/マウス)を静脈内もしくは皮下注射し; または左後足蹠に、対照IgG (100μg/マウス)、WT-αTNF (100μg/マウス)、もしくはPlGF-2123~144-αTNF (1μg/マウス)を皮下注射した。関節の腫れを、他所に記述されているように毎日スコア化した(31)。8日目に、後足を10%中性ホルマリン(Sigma-Aldrich)中で固定し、Decalcifer II (Leica)中で脱灰し、次いで組織学的分析に供した。
EAEは、0日目に完全フロイントアジュバント中のMOG35~55の乳濁液(200μg/マウス, Hooke Laboratories)で免疫し、続いて免疫当日および翌日にPBS中の百日咳毒素(100 ng/マウス)を投与することにより雌性C57BL/6マウス(13週齢)において誘発された。EAE症状が現れた免疫後14日目に、(モル基準で0.4μg/マウスに等価な) 1μg/マウスの組換えマウスIL-4 (Peprotech)または1μg/マウスのA3-IL4の処置を開始し、1日おきに繰り返した。個々のマウスを、以下のスケールに基づき疾患の重症度について毎日スコア化した: 0, 臨床疾患なし; 0.5, 尾虚弱; 1, 尾麻痺; 2, 後肢虚弱; 3, 後肢麻痺; 3.5, 前肢虚弱; 4, 前肢麻痺; または5, 瀕死もしくは死。
IL-10-/- × TLR-4-/- (DKO)マウスは、Cathyn Nagler (シカゴ大学)から親切にも提供していただいた。DKOマウスは自発的に大腸炎を発症し、直腸脱の発生率が高い。直腸脱の最初の兆候が現れた29週齢時に、マウスを画像分析のためにIBD発症マウスとして用いた。非発症IBD対照として、16週齢のDKOマウスおよび遺伝的背景系統(C57BL/6)マウスを用いた。
炎症を伴う肺線維症は、生理食塩水中100μg/マウスのブレオマイシン(Sigma-Aldrich)の鼻腔内注入により雌性C57BL/6マウス(9週齢)において誘発された。ブレオマイシン投与後7日目に肺が炎症を起こしたら、マウスを画像分析のために用いた。
非肥満性糖尿病(NOD)マウスは、T細胞を介した自己免疫インスリン依存性糖尿病の自発的モデルとして公知である(37, 38)。シクロホスファミドは、NODマウスにおいて糖尿病の発症を促進しうる(39)。画像分析のため、非糖尿病対照、自然発症糖尿病NODマウスおよび300 mg/kgのシクロホスファミド(Sigma-Aldrich)の腹腔内注射が加速する糖尿病マウスとしてBalb/cマウスを用いた。血糖値を糖尿病発症の指標として用いた。
CAIAマウスのパラフィン包埋関節組織およびIBD発症マウスの結腸を、5μmの厚さにスライスし、病理学的分析のためにH&Eおよび/またはPASで染色した。関節炎モデルの骨吸収および滑膜過形成の重症度を、以前に報告された基準にしたがい、次のようにわずかな変更を加えて3段階評価(0~2)によりスコア化した: 0, 軟骨および辺縁帯の軟骨下骨におけるパンヌスの正常から最小限の浸潤; 1, 軽度の皮質および髄質の骨破壊を伴う辺縁帯の軽度から中等度の浸潤; 2, 関節構造の完全またはほぼ完全な破壊に関連する重度の浸潤。両方の後足のスコアを各マウスについて合計した(マウスあたりの合計スコア, 0~4)。
GraphPad Prismソフトウェアを用して統計分析を実施し、P < 0.05を統計的に有意と見なした。経時的な関節炎スコアの変化を、反復測定二元配置分散分析によって評価し、相互作用が有意であると見なされた場合、測定の各時点でダネットの多重比較検定を用いてデータを評価した。CBP-αTNFの効力をWT-αTNFと比較するために、8日目のデータをテューキーの多重比較検定によって再度分析した。CAIAモデルの組織学的スコアについては、ダネットの多重比較検定を用いて、対照のIgG注射群とαTNF処置群の差異を比較した。
以下の参考文献および本明細書の全体を通して参照される刊行物は、本明細書において記載されるものを補足する例示的な手順または他の詳細を提供する範囲で、参照により本明細書に具体的に組み入れられる。
関節リウマチ(RA)は主要な自己免疫疾患である。インターロイキン-10 (IL-10)を用いた臨床試験は、潜在的なRA処置として実施されているが、抗原認識が主に行われるリンパ器官での滞留が不十分な可能性があるため、その治療効果は限られている。本明細書で、本発明者らは、コラーゲン結合ドメイン(CBD)の融合有りおよび無しで血清アルブミン(SA)との融合体としてIL-10を操作した。SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10は、静脈内注射後、未改変のIL-10よりも長い循環時間を示した; さらに、SA融合は、未改変のIL-10と比較してリンパ節(LN)蓄積の増強につながった。静脈内SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10処置は、足での免疫細胞組成を正常な状態に戻し、抑制性M2マクロファージの頻度を高め、関節の形態を保護した。静脈内SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10は、抗TNF-α抗体による処置と同様の効力を示した。IL-10へのSA融合は、LN蓄積およびRA制御を実現するための単純であるが、効果的な操作戦略である。
野生型(wt)マウスIL-10、SA融合マウスIL-10、およびCBD-SA融合IL-10は組換えにより発現され、融合タンパク質の分子量は、SDS-PAGEによって決定した場合にwt IL-10に対するよりも、それに応じて高かった; さらに、SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10の大部分は、非還元条件下で単量体として存在した(図8Aおよび14A)。表面プラズモン共鳴(SPR)分析により、SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10がマイクロモルオーダーのKdで新生児Fc受容体(FcRn)に結合することが明らかにされた(図8Bおよび14B)。さらに、CBD-SA-IL-10は、ナノモルオーダーのKdでI型およびIII型コラーゲンに結合することが示された(図14B)。膝窩LNから単離された脾細胞および単細胞へのこれらのタンパク質の結合能を、フローサイトメトリーによってさらに評価した(図8C)。SA融合IL-10は、脾細胞とLN由来細胞の両方でマクロファージおよび樹状細胞への高い結合を示した。蛍光標識されたSA-IL-10の静脈内投与後、wt IL-10と比較して膝窩LN内で有意に高い蛍光シグナルが観察された(図8D)。興味深いことに、より高い蛍光シグナルは、抗原提示細胞(APC)が存在する高内皮細静脈(HEV)の周囲に位置していた(18)。
SAは、血管内皮細胞でFcRnを介した再生利用を介して長い循環を示すことが知られている(19, 20)。予想通り、SA-IL-10はwt IL-10と比較して有意に長期にわたる血液循環を示した; CBD-SA-IL-10はまた、SA-IL-10と同等の循環を有していた(図9A)。図9Bは、DyLight800標識タンパク質を静脈内注射されたマウスの主要な器官からの蛍光シグナルを表す。SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10は、その長い循環特性を反映し、心臓、肺および脾臓においてwt IL-10のものよりも高いシグナルを示した。さらに、CBD-SA-IL-10で処置したマウスの炎症を起こした足からはwt IL-10よりも有意に高いシグナルが検出されたが、炎症を起こしていない足ではwt IL-10とCBD-SA-IL-10の間で有意差のない蛍光が示され、他の状況での以前の研究において報告されているように、コラーゲン親和性を通じたCBD-SA-IL-10の炎症ターゲティング能力を示すものであった(16, 21)。
受動的コラーゲン抗体誘発関節炎(CAIA)モデルにおける操作されたIL-10の治療効果を評価した(図10)。SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10の静脈内注射は関節炎の発症を有意に抑制したが、PBSまたはwt IL-10を注射したマウスは足での重度の炎症を示した(図10A)。CBD-SA-IL-10の治療効果を、RA処置のために臨床的に使用されている抗体薬のマウスモデルである抗TNF-α抗体(αTNF-α)による処置と比較し、ここではCBD-SA-IL-10がαTNF-αと同等のCAIA抑制を誘導した(図10B)。組織学的分析により、CBD-SA-IL-10およびαTNF-αの両方がPBSまたはwt IL-10処置と比較して関節破壊を抑制したことが明らかにされた(図10C)。組織学的スコアも、CBD-SA-IL-10およびαTNF-αでの処置により有意に減少した(図10C)。静脈内投与、局所(足蹠)投与、および皮下(遠位部位、背中央)投与を比較して、治療効力に及ぼす投与経路の影響についても調べた(図10D)。CBD-SA-IL-10の足蹠注射は、図10Aおよび図10Bに示されるその静脈内注射の結果と比較してCAIAに対して比較的高い抑制効果を誘導し、コラーゲン親和性を介しての、炎症を起こした足でのCBD-SA-IL-10の滞留を示唆していた(図8B)。驚くべきことに、SA-IL-10は、試験した全ての投与経路によりCAIAに対して非常に高い抑制効果を示した(図10D)。
SA融合IL-10は、FcRnに対してマイクロモルの親和性を示し(図8B)、静脈内注射後にLN内での蓄積を示した(図8D)。次に、LNにおけるIL-10の量およびその薬物動態を定量的に評価した(図12A~C)。CAIAマウス内にwt IL-10、SA-IL-10、またはCBD-SA-IL-10を静脈内注射した後、ELISAを用いさまざまな時点でのLN内のIL-10濃度を検出した。SA-IL-10は注射4時間後に、wt IL-10およびCBD-SA-IL-10と比較して、関節流入領域(膝窩) LN、腸間膜LNにおいて有意に高いIL-10シグナルおよび非流入領域(頸部) LNにおいて比較的高いシグナルを示し、CBD-SA-IL-10はwt IL-10よりも高い蓄積を示した(図12A)。SA-IL-10を注射したマウスはまた、注射後1時間前後でIL-10濃度のピークを示し(図12B)、LN内でwt IL-10よりも5~10倍高いAUCを示した(図12C)。これらのデータは、SA-IL-10が静脈内注射後すぐにLN内に蓄積し、wt IL-10と比較してLN内でより高い滞留を示したことを示唆している。
次に、フローサイトメトリーを用いて後足における免疫細胞集団を分析した(図13A)。SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10の静脈内注射後、CD45+免疫細胞の頻度はPBSまたはwt IL-10で処置した群と比較して有意に減少した。CD45+細胞内で、B細胞および樹状細胞の頻度は健常マウスでのレベルに匹敵するようになり、CD11b+細胞も健常マウスのレベルまで著しく減少した。CD11b+細胞のなかでは、G-MDSC集団が低減し、マクロファージの頻度が健常マウスのレベルまで回復した。さらに、CD206+ M2マクロファージの頻度は、PBSまたはwt IL-10処置と比較してSA-IL-10の注射によって有意に増加し、健常マウスの頻度を上回ってさえいた。足におけるT細胞集団の分析により、SA-IL-10がCAIAマウスでのCD4+細胞およびFoxp3+ Tregの変化を抑制したことが明らかにされた(図16A)。さらに、SA-IL-10は、血中のTreg頻度の減少を抑制した(図16B)。免疫細胞集団におけるこれらの変化を反映して、足におけるさまざまな炎症性サイトカインは、SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10の静脈内注射によって有意に減少し、そのレベルは健常マウスでのものと同等であった(図13B)。組織学的分析から、SA-IL-10の静脈内投与は、PBS処置マウスと比較して足での炎症応答を有意に抑制し、関節病変を低減させた(図13C)。
最後に、安全性評価を実施して、操作されたIL-10が何らかの悪影響を示すかどうか調べた。血液分析器によって測定された代表的な血液パラメータおよび脾臓重量は、処置群間で有意な変化を示さなかった(図17A)。血清中のさまざまな生化学的マーカーも、生化学分析器を用いて調べた(図17B)。操作されたIL-10処置群では、アミラーゼ(これは増加せず、むしろわずかに減少した)を除く、大部分のマーカーがPBS処置群と比較して同様のレベルを示し、操作されたIL-10が全身投与後に高い安全性を保有することを示している。
RAの現在の処置は、痛みを和らげ、滑膜炎を制御し、関節の損傷を抑制することによる対症療法に基づいている。炎症性サイトカイン、特にTNF-αを中和する抗体薬または競合する可溶性受容体は、RAを有する患者に高い治療効力をもたらした(4)。これらの生物学的製剤は主に炎症性関節に作用して炎症性サイトカインを捕捉する。しかしながら、これらの阻害薬は、その標的が免疫機能において多面発現性であり、これらの薬が疾患部位でその抗炎症効果を提供するために繰り返し投与されるため、感染のリスクを高めることが知られている(24-27)。さらに、抗体薬の投与はまた、治療効率を低下させる中和性の抗薬物抗体の誘導を引き起こしうる(28)。それゆえ、構造的に異なる分子クラスを有し、寛容などの異なる免疫抑制分子機構を有する代替アプローチの開発が望まれている。
1. 研究デザイン
本研究は、FcRnに対する操作された親和性を通じて抗炎症性サイトカインをLNにターゲティングする戦略を試験するためにデザインされた。具体的には、本発明者らは、血清アルブミン融合による抗炎症性サイトカインIL-10のLNターゲティングが、RAのマウスモデルにおいて非ターゲティングwt IL-10および現在利用可能な抗炎症性抗体治療用物質(αTNF-α)よりも優れているかどうかを試験した。wt IL-10、SA-IL-10および抗TNF-α抗体の効力を評価するために、本発明者らは、受動的CAIAモデルおよび能動的CIAモデルの両方において関節炎の症状および関節組織像をスコア化した。本発明者らはまた、生体内分布およびLN輸送、LNおよび足内の免疫応答ならびに処置後の毒性のさまざまな側面を測定した。必要なサンプルサイズを事前に決定するために統計的手法は使われなかったが、適切な統計的検定によって統計的に有意な結果を得ることができるようにパイロット実験からの推定に基づいてサンプルサイズを選択した。wt IL-10、SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10の産生は、再現性を確保するために複数人によって実施された。全ての実験は少なくとも2回繰り返された。動物実験では、最初の薬物注射の直前にマウスをケージ内の処置群にランダムに分け、同じ方法で処置した。統計値を計算するために使用されるn値は、図の凡例に示されている。薬物投与および病理学的分析は、盲検法で実施された。統計的手法は「統計分析」のセクションに記述されている。
プロペプチドを有しないマウス血清アルブミン(全血清アルブミンのアミノ酸番号25~608)、マウスIL-10、ヒトVWF A3ドメイン残基Cys1670~Gly1874 (本明細書においてCBDといわれる、成熟VWFの番号907~1111)、および(GGGS)2リンカーをコードする配列を合成し、Genscriptによって哺乳動物発現ベクターpcDNA3.1(+)にサブクローニングした。組換えタンパク質のさらなる精製のために、6 Hisをコードする配列を、C末端に付加した。懸濁液に適合したHEK-293F細胞は、無血清FreeStyle 293発現培地(Gibco)中で日常的に維持された。トランスフェクションの日に、細胞を1×106個の細胞/mLの密度で新鮮培地に接種した。2μg/mLのプラスミドDNA、2μg/mLの線形25 kDaポリエチレンイミン(Polysciences)、およびOptiPRO SFM培地(終濃度4%, Thermo Fisher)を順次添加した。培養フラスコを5% CO2の存在下、37℃、135 rpmで軌道振盪することにより撹拌した。トランスフェクション7日後、細胞培地を遠心分離によって回収し、0.22μmフィルタでろ過した。AKTA pure 25 (GE Healthcare)を用いて、培地をHisTrap HP 5 mlカラム(GE Healthcare)に負荷した。洗浄緩衝液(20 mM NaH2PO4, 0.5 M NaCl, pH 8.0)によるカラムの洗浄後に、500 mMイミダゾール(20 mM NaH2PO4, 0.5 M NaCl, pH 8.0中)の勾配でタンパク質を溶出させた。溶出液としてPBSを用いHiLoad Superdex 200PGカラム(GE Healthcare)を使ったサイズ排除クロマトグラフィーでタンパク質をさらに精製した。全ての精製段階は4℃で実行された。タンパク質の発現は、SDS-PAGEによって90%超の純度であると確認された。精製されたタンパク質は、HEK-Blue TLR4受容体細胞株を介してエンドトキシンについて試験され、エンドトキシンレベルは0.01 EU/mL未満であると確認された。NanoDrop (Thermo Scientific)を用いて280 nmでの吸光度からタンパク質濃度を決定した。
SPR測定は、Biacore X100機器を用いて実行された。コラーゲン結合実験では、組換えヒトI型またはIII型コラーゲン(Millipore Sigma)を標準的なアミンカップリング法(およそ1500共鳴単位(RU))によってCM5センサーチップに固定化し、エタノールアミンでブロッキングした。参照セルもエタノールアミンでブロッキングした。結合アッセイを室温で実行し、CBD-SA-IL-10のKd値を、BIAevaluationソフトウェア(GE Healthcare)を用いて1:1ラングミュア結合モデルをデータに適合させることによって決定した。FcRn結合実験では、組換えマウスFcRn (Acro Biosystems)を、製造元の指示にしたがいC1チップ(GE Healthcare)にアミンカップリングを介しておよそ200 RU固定化した。SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10を室温にて30μL/分でランニング緩衝液(0.01 M一塩基性無水リン酸ナトリウム, pH 5.8, 0.15 M NaCl)中において濃度を減少させながら流した。センサーチップをサイクルごとにPBS, pH 7.4で再生した。FcRnへのSA融合タンパク質の特異的結合を、参照として用いた非機能化チャネルと比較することによって計算した。BIAevaluationソフトウェア(GE Healthcare)を用い1:1ラングミュア結合モデルをデータに適合させることによってSA-IL-10およびCBD-SA-IL-10のKd値を決定した。
7週齢のBALB/c雌性マウスおよび8週齢のDBA/1J雄性マウスを、Jackson Laboratoryから入手した。実験は、シカゴ大学の施設内動物管理使用委員会の承認を得て実施された。
70μmの細胞ストレイナを通して脾臓および膝窩LNを穏やかに破壊することによって、単細胞懸濁液を得た。赤血球を脾細胞用のACK溶解緩衝液(Quality Biological)で溶解した。細胞をカウントし、10% FBSおよび1%ペニシリン/ストレプトマイシン(全てLife Technologiesから)を補充したRPMI-1640中に再懸濁した。1×105個の細胞/ウェルを96ウェルマイクロプレートに播種し、2μg/100μLのSA、SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10とともに氷上で30分間インキュベートした。PBSによる4回の洗浄後、細胞を抗マウスアルブミン抗体(abcam)とともに氷上で20分間さらにインキュベートした。PBSによる3回の洗浄後、細胞を1μg/mL AlexaFluor 647標識抗ウサギIgG (Jackson ImmunoResearch)、抗B220 (RA3-6B2, BioLegend)、抗CD3 (145-2C11, BD Biosciences)、抗CD4 (RM4-5, BD Biosciences)、抗CD8 (53-6.7, BD Biosciences)、抗CD11c (HL3, BD Biosciences)、抗CD45 (30-F11, BD Biosciences)および抗F4/80 (T45-2342, BD Biosciences)抗体とともに氷上で20分間インキュベートした。以下に記述するように、細胞をフローサイトメトリーによって分析した。
IL-10、SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10 (35μgのIL-10に相当)を雌性BALB/cマウスに静脈内注射した。血液サンプルを注射後1分、5分、10分および30分、ならびに1時間、4時間、8時間および24時間の時点でタンパク質低結合チューブに回収し、その後に4℃で終夜インキュベーションを行った。血清中のIL-10濃度を、IL-10 Mouse Uncoated ELISAキット(Invitrogen)により製造元のプロトコルにしたがって測定した。指数二相減衰(Y = Ae-αt + Be-βt)フィッティングを用いて半減期を計算した。速いクリアランス半減期, t1/2,α; 遅いクリアランス半減期, t1/2,β。Prismソフトウェア(v8, GraphPad)を用いてデータを分析した。
関節炎は、0日目に抗コラーゲン抗体カクテル(1.0 mg/マウス, Chondrex)の腹腔内注射、続いて3日目にLPS (25μg/マウス, Chondrex)の腹腔内注射により雌性BALB/cマウスにおいて誘発された。図3B~Cの場合のみ、1.5 mg/マウスの抗コラーゲン抗体カクテルを注射した。3日目、LPS注射前にマウスにPBS、wt IL-10、SA-IL-10、CBD-SA-IL-10 (各43.5μgのIL-10に相当)、または200μgのラット抗マウスTNF-α抗体(クローンXT3.11, Bio X Cell)を静脈内に、皮下(背中央)に、または足蹠を介して注射した。関節の腫れを、製造元のプロトコル(Chondrex)にしたがって毎日スコア化した。スコア化の最終日に、後足を10%中性ホルマリン(Sigma-Aldrich)中で固定し、Decalcifer II (Leica)中で脱灰し、次いで組織学的分析に供した。パラフィン包埋した足を5μmの厚さにスライスし、H&Eで染色した。Pannoramicデジタルスライドスキャナで画像をスキャンし、Pannoramic Viewerソフトウェアを用いて分析した。関節炎モデルの骨吸収および滑膜過形成の重症度を、以前に報告された基準にしたがい、次のようにわずかな変更を加えて3段階評価(0~2)によりスコア化した: 0, 軟骨および辺縁帯の軟骨下骨におけるパンヌスの正常から最小限の浸潤; 1, 軽度の皮質および髄質の骨破壊を伴う辺縁帯の軽度から中等度の浸潤; 2, 関節構造の完全またはほぼ完全な破壊に関連する重度の浸潤。両方の後足のスコアを各マウスについて合計した(マウスあたりの合計スコア, 0~4)。組織病理学的分析は盲検法で実施された。
雄性DBA/1Jマウス(8週齢)を、尾の付け根にウシコラーゲン/完全フロイントアジュバント(CFA)乳濁液(Hooke Kit, Hooke Laboratories)を皮下注射して免疫した。3週間後、ウシコラーゲン/不完全フロイントアジュバント(IFA)乳濁液(Hooke Kit, Hooke Laboratories)の追加抗原注射を実施した。追加抗原注射後、マウスを毎日検査し、製造元のプロトコル(Hooke Laboratories)にしたがって関節の腫れをスコア化した。2~4の合計スコアを示した時点で(0日目と定義)、マウスにPBS、SA-IL-10、CBD-SA-IL-10 (各43.5μgのIL-10に相当)、または200μgのラット抗マウスTNF-α抗体(クローンXT3.11, Bio X Cell)を静脈内注射した。スコア化の最終日に、後足を収集し、上記のように組織学的分析を利用した。
蛍光標識タンパク質を作出するために、wt IL-10、SA-IL-10およびCBD-SA-IL-10を8倍モル過剰のDyLight 800 NHS ester (Thermo Fisher)を用いて室温で1時間インキュベートし、未反応の色素をZebaspinスピンカラム(Thermo Fisher)により製造元の指示にしたがって除去した。BALB/cマウスを0日目に抗コラーゲン抗体カクテル(1.0 mg/マウス)により腹腔内注射し、続いて3日目に10μgのLPSを右後足に注射した。翌日、20μgのDyLight 800標識タンパク質を静脈内注射した。4時間後、疾患モデルから採取した臓器を、Xenogen IVIS Imaging System 100 (Xenogen)を用い以下の条件下で画像化した: f/ストップ: 2; 光学フィルタ励起745 nm; 励起800 nm; 露出時間: 5秒; 小ビニング。各臓器からの蛍光シグナルを正規化するために、各臓器の重さを量った。
BALB/cマウスに、等モル量の色素で標識されたDyLight594標識wt IL-10 (43.5μg)またはSA-IL-10を静脈内注射した。注射24時間後、膝窩LNを採取し、最適切断温度(OCT)コンパウンドとともにドライアイス中で凍結した。凍結切片によって組織スライス(10μm)を得た。組織をPBS中2%のパラホルムアルデヒドにより室温で15分間固定した。PBS-Tで洗浄した後に、組織をPBS-T中の2%のBSAにより室温で1時間ブロッキングした。組織を抗マウスCD3抗体(1:100, 145-2C11, BioLegend)または抗マウス末梢リンパ節アドレッシン(PNAd)抗体(1:200, MECA79, BioLegend)およびAlexa Fluor 488ロバ抗ラット(1:400, Jackson ImmunoResearch)で染色した。組織を3回洗浄した後、4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール(DAPI; Thermo Fisher Scientific)を有するプロロングゴールド褪色防止用封入剤(Prolong gold antifade mountant)で覆った。CD3染色には倍率10倍でのイメージングにIX83顕微鏡(Olympus)を用い、PNAd染色には倍率20倍でのLeica SP8 3Dレーザー走査共焦点顕微鏡を用いた。ImageJソフトウェア(NIH)を用いて画像を処理した。
wt IL-10、SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10 (各35μgのIL-10に相当)をCAIAマウスに静脈内注射した。膝窩、腸間膜、頸部のLNを注射後30分、ならびに1、4、8および24時間の時点で収集し、その後、cOmplete(商標)プロテイナーゼ阻害剤カクテル(Roche)を有するT-PER組織タンパク質抽出試薬(Thermo Scientific)中5000ビート/分で40秒間Lysing Matrix D and FastPrep-24 5G (MP Biomedical)を用いてホモジナイズした。ホモジナイゼーション後、サンプルを4℃で終夜インキュベートした。サンプルを遠心分離し(5000 g, 5分)、総タンパク質濃度およびIL-10濃度を、それぞれBCAアッセイキット(Thermo Fisher)およびIL-10 Mouse Uncoated ELISAキット(Invitrogen)を用いて分析した。同時に、Mouse Uncoated ELISAキット(Invitrogen)またはReady-SET-Go! ELISAキット(eBioscience)を製造元のプロトコルにしたがい用いて、LN抽出物中のサイトカインレベルを測定した。GM-CSFの検出のため、wt IL-10またはSA-IL-10 (各35μgのIL-10に相当)をCAIAマウスに3日間隔で2回静脈内注射した。最後の注射の翌日、GM-CSFの検出のために膝窩LNを収集した。
CAIAマウスにPBS、wt IL-10、SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10 (各43.5μgのIL-10に相当)を静脈内注射した。8日後、血液および後足を採取した。血中の赤血球をACK溶解緩衝液(Quality Biological)で溶解した後に、フローサイトメトリー用の抗体染色を行った。2% FBS、2 mg/mLコラゲナーゼDおよび40μg/mL DNase I (Roche)を補充したダルベッコ改変イーグル培地(Dulbecco's Modified Eagle Medium; DMEM)中で足を37℃で60分間消化した。70μmの細胞ストレイナを通して穏やかに破壊することによって、単細胞懸濁液を得た。以下の分子に対する抗体を用いた: 抗マウスCD3 (145-2C11, BD Biosciences)、CD4 (RM4-5, BD Biosciences)、抗マウスCD8α(53-6.7, BD Biosciences)、抗マウスCD25 (PC61, BD Biosciences)、抗マウスCD45 (30-F11, BD Biosciences)、CD44 (IM7, BD Biosciences)、CD62L (MEL-14, BD Biosciences)、PD-1 (29F.1A12, BD Biosciences)、NK1.1 (PK136, BD Biosciences)、Foxp3 (MF23, BD Biosciences)、F4/80 (T45-2342, BD Biosciences)、MHC II (M5/114.15.2, BioLegend)、CD206 (C068C2, BioLegend)、Ly6G (1A8, BioLegend)、Ly6C (HK1.4, BioLegend)、CD11b (M1/70, BioLegend)、CD11c (HL3, BD Biosciences)、B220 (RA3-6B2, BioLegend)。固定可能な生/死細胞の識別は、Fixable Viability Dye eFluor 455 (eBioscience)を製造元の指示にしたがって用い実施した。別段の指示がない限り、染色は氷上で20分間行い、細胞内染色はFoxp3染色キットを製造元の指示(BioLegend)にしたがって用い実施した。洗浄段階の後、固定前に氷上で20分間、細胞を特異抗体で染色した。全てのフローサイトメトリー分析は、Fortessa (BD Biosciences)フローサイトメーターを用いて行い、FlowJoソフトウェア(Tree Star)を用いて分析した。
BALB/cマウスにPBS、wt IL-10、SA-IL-10またはCBD-SA-IL-10 (各43.5μgのIL-10に相当)を静脈内注射した。注射2日後、マウスから収集した血液サンプルを、製造元の指示にしたがってCOULTER Ac・T 5diff CP血液分析器(Beckman Coulter)を用い分析した。脾臓の重量も測定した。タンパク質を注射したマウスから収集した血清サンプルを、製造元の指示にしたがってBiochemistry Analyzer (Alfa Wassermann Diagnostic Technologies)を用い分析した。
実験群間の統計的有意差は、Prismソフトウェア(v8, GraphPad)を用いて決定された。一元配置分散分析とそれに続くテューキーのHSD事後検定を用いた場合、群間の分散はブラウンフォーサイス検定によって類似していることが分かった。ノンパラメトリックデータの場合、クラスカル・ワリス検定とそれに続くダンの多重比較検定を用いた。単一比較の場合、両側スチューデントのt検定を用いた。記号*、**、***および****は、それぞれ0.05、0.01、0.001および0.0001未満のP値を示す; ns, 有意ではない。
以下の参考文献および本明細書の全体を通して参照される刊行物は、本明細書において記載されるものを補足する例示的な手順または他の詳細を提供する範囲で、参照により本明細書に具体的に組み入れられる。
多発性硬化症(MS)は、中枢神経系の一般的かつ重篤な脱髄性自己免疫疾患である。インターロイキン(IL)-4は、マウスMSモデルである実験的自己免疫性脳脊髄炎(EAE)の病態の発現を抑制するが、IL-4は臨床的に技術移転されていない。本明細書で、本発明者らは、血清アルブミン(SA)とIL-4の融合タンパク質(SA-IL-4)を操作して、抗原特異的T細胞プライミングが主に行われる二次リンパ器官(SLO)をターゲティングする。SA-IL-4は、新生児Fc受容体(FcRn)結合を介して、野生型(wt) IL-4と比較して、リンパ節(LN)および脾臓でより高い蓄積および滞留時間を示した。SA-IL-4の皮下投与は、全てのマウスでEAE疾患の発現を予防し、FTY720およびwt IL-4と比較して高い治療効力を実証した。SA-IL-4は、脊髄への免疫細胞の浸潤を防ぎ、脊髄構造の維持とその結果としての神経機能を促進する。SA-IL-4は、抗原反応性CD4+ T細胞におけるインテグリン発現を減少させ、細胞遊走能力の障害を示していた。SA-IL-4は、脊髄流入領域LN (dLN)において、EAE疾患の主要なサプレッサーである顆粒球様骨髄由来サプレッサー細胞の数および該細胞上のプログラム死リガンド-1の発現を増加させた。SA-IL-4は、EAE疾患の病原性細胞集団であるTh17細胞の数を減少させた。EAEの慢性期では、SA-IL-4は、脊髄への免疫細胞浸潤の阻害と脾臓におけるミエリン抗原に対する免疫応答の完全な抑止を伴う、顕著な治療効果も示した。操作されたSA-IL-4は、SLOにおける蓄積を介した予防的処置と治療的処置の両方としてのMSの技術移転の可能性を実証している。
本発明者らは、野生型(wt)マウスIL-4およびマウスSA融合マウスIL-4を組換え発現させた(図18A)。SDS-PAGEにより、IL-4へのSA融合によって分子サイズが増加したことが明らかにされた。LNおよび脾臓から新たに単離された免疫細胞に添加されると、SA-IL4は他の免疫細胞と比較して、インビトロでマクロファージおよび樹状細胞(DC)などの、抗原提示細胞(APC)に選択的に結合した(図18B)。
次に、本発明者らは、EAEの急性期において、ミエリンオリゴデンドロサイト糖タンパク質(MOG)抗原誘発性EAEをSA-IL-4で処置した(図20)。SA-IL-4を皮下(s.c.)または腹腔内(i.p.)に注射した。本発明者らは、皮下注射を選択した。というのは、それが臨床的に好都合であり、薬物が注射部位からゆっくりと吸収されるためである。腹腔内注射を静脈内の代わりに行った。というのは、EAEを発症したマウスでは尾が弛緩し、尾静脈注射が困難になるためである。本発明者らはさらに、SA-IL-4の治療効果をFTY720と比較した。FTY720は、MSを処置するための臨床承認薬(フィンゴリモド)であり、LN内のリンパ球を隔離してそれらが標的組織内の自己抗原と反応するのを防ぐ(3)。SA-IL-4の皮下注射は、全てのマウスにおいて疾患の発症を完全に抑制した(図20A、B)。腹腔内注射したSA-IL-4、およびFTY720は、7匹中4匹のマウスにおいてEAEの発症を防ぎ、残りのマウスでは疾患の重症度を抑制した。wt IL-4処置はPBS処置群と比較してEAE臨床スコア抑制を示さず、そのマウスの全てが疾患を発症した。健常の臨床指標として体重変化を用い、PBSおよびwt IL-4で処置したマウスは体重を著しく減少させることが観察された(図20C)。SA-IL-4を皮下注射されたマウスは、他の全群よりも体重が増え、良好な健康状態を示すものであった。腹腔内SA-IL-4群は平均して体重が増えたが、FTY720処置マウスはその体重を維持した。本発明者らは次に、EAE疾患の主な形態学的徴候である脊髄の脱髄を分析した(図20D)。重要なことに、SA-IL-4を皮下注射されたマウスには、検出可能ないずれの脱髄もなく、脊髄の損傷の予防を実証していた。全てのwt IL-4処置マウスは脱髄を示した。本発明者らは次に、24日目までマウスを長期間モニターしたところ、SA-IL-4腹腔内注射が疾患発症および進行を抑制した(図26)。重要なことに、SA(P573K)-IL-4は疾患スコアを抑制しなかった(図27)。これらのデータは、IL-4へのSA融合がEAE疾患抑制に及ぼすIL-4の治療効果を強力に改善することを示唆している。
本発明者らは次に、処置後の脊髄およびdLNにおける免疫細胞を分析した。驚くべきことに、SA-IL-4の皮下注射は、CNSへの免疫細胞の浸潤を有意に抑制した; 脊髄内で検出されたCD45+免疫細胞はごくわずかであった(図21A)。ゆえに、脊髄におけるTh17細胞は皮下SA-IL4処置群においてほとんど検出できなかった(図21B)。SA-IL-4の腹腔内注射は、7匹中4匹のマウスにおいて免疫細胞浸潤を抑制し、これはその群におけるEAE疾患の発生率に対応している。FTY720の投与は、予想通り、脊髄への免疫細胞の浸潤も抑制した。wt IL-4は、PBS処置と比較して、脊髄へのTh17を含む免疫細胞の浸潤に対するいずれの影響も示さなかった。
本発明者らは次に、SA-IL-4の皮下注射による脊髄での免疫細胞浸潤の減少および完全なEAE疾患予防の分子機構を分析した。本発明者らは、dLNにおけるMOG35~55反応性T細胞の数が全ての処置群において維持されたことを見出し、SA-IL-4は抗原認識を変化させないことが示唆された(図22A)。したがって、本発明者らは、SA-IL-4がT細胞の機能性を変化させると仮定した。本発明者らは最初に、T細胞の移動能力を試験した。リンパ球移動に重要な接着分子であるαLβ2およびα4β1インテグリンの発現レベル(15)は、IL-4によって減少すると報告されている(16)。本発明者らは、SA-IL-4処置がMOG35~55反応性CD4+ T細胞上のαLβ2インテグリン発現を有意に減少させたが、総CD8+ T細胞では減少させなかったことを見出した(図22B~E)。α4β1インテグリンの発現は、MOG35~55反応性CD4+ T細胞でも、総CD8+ T細胞でも有意に変化しなかった。αLβ2インテグリンは脊髄へのTh17細胞の浸潤に不可欠であるため(15)、このことから、インテグリン発現の下方制御はSA-IL-4が脊髄へのリンパ球移動を減少させる機構の1つであることが示唆される。
SA-IL-4がEAEの慢性期において治療効果を有するかどうかを決定するために、本発明者らは、重度麻痺の段階に既に到達したマウスを処置することを伴う実験をデザインした。本発明者らは、誘導後21日目からのIL-4の腹腔内注射を開始した(図23A,B)。驚くべきことに、SA-IL-4は、この遅い時点で投与された場合でも治療効力を実証したが、wt IL-4はそうでなかった。SA-IL-4処置マウスは体重が増加したが、wt IL-4処置マウスは体重が増加せず、疾患の回復を示すものであった。本発明者らは次に、皮下注射を介して慢性期におけるSA-IL-4の効果を試験し、経口FTY720治療と比較した(図23C,D)。その結果、SA-IL-4で処置されたマウスは、他の処置群と比較して臨床スコアの低下傾向があった。SA-IL-4を投与されたマウスは、他群と比較して体重が増加した。FTY720処置マウスおよびwt IL-4処置マウスは、PBS処置マウスと比較して体重が増加しなかった。
SA-IL-4が何らかの悪影響を示すかどうかを試験するために、本発明者らは、生化学分析器を用いて血清を分析し、血液分析器を用いて血液を分析した(図29)。SA-IL-4処置は臓器損傷マーカーを増加させず、血球数も変化させなかった(図29A~M)。SA-IL-4およびwt IL-4は脾腫を誘発した(図29N)。wt IL-4は、肺の水分含量の増加によって示される肺水腫を誘発したが、SA-IL-4は誘発しなかった(図29N)。これらの証拠は、SA-IL-4が全身投与後に安全であることを示唆している。
1. 組換えタンパク質の産生および精製
プロペプチドを有しないマウスSA (全血清アルブミンのアミノ酸番号25~608)、マウスIL-4、および(GGGS)2リンカーをコードする配列を合成し、Genscriptによって哺乳動物発現ベクターpcDNA3.1(+)にサブクローニングした。組換えタンパク質のさらなる精製のために、6 Hisをコードする配列を、C末端に付加した。タンパク質のアミノ酸配列を補足表1に示す。懸濁液に適合したHEK-293F細胞は、無血清FreeStyle 293発現培地(Gibco)中で日常的に維持された。トランスフェクションの日に、細胞を1×106個の細胞/mlの密度で新鮮培地に接種した。2μg/mlのプラスミドDNA、2μg/mlの線形25 kDaポリエチレンイミン(Polysciences)、およびOptiPRO SFM培地(終濃度4%, Thermo Fisher)を順次添加した。培養フラスコを5% CO2の存在下、37℃、135 rpmで軌道振盪することにより撹拌した。トランスフェクション7日後、細胞培地を遠心分離によって回収し、0.22μmフィルタでろ過した。AKTA pure 25 (GE Healthcare)を用いて、培地をHisTrap HP 5 mlカラム(GE Healthcare)に負荷した。洗浄緩衝液(20 mM NaH2PO4, 0.5 M NaCl, pH 8.0)によるカラムの洗浄後に、500 mMイミダゾール(20 mM NaH2PO4, 0.5 M NaCl, pH 8.0中)の勾配でタンパク質を溶出させた。溶出液としてPBSを用いHiLoad Superdex 200PGカラム(GE Healthcare)を使ったサイズ排除クロマトグラフィーによってタンパク質をさらに精製した。全ての精製段階は4℃で実行された。発現されたタンパク質は、SDS-PAGEによって90%超の純度であると確認された。精製されたタンパク質は、HEK-Blue TLR4受容体細胞株を介してエンドトキシンについて試験され、エンドトキシンレベルは0.01 EU/mL未満であると確認された。NanoDrop (Thermo Scientific)を用いて280 nmでの吸光度からタンパク質濃度を決定した。
8週齢のC57BL/6雌性マウスを、Charles River Laboratoriesから入手した。免疫前に少なくとも1週間シカゴ大学の動物施設にマウスを収容した。全ての実験は、シカゴ大学の施設内動物管理使用委員会の承認を得て実施された。
70μmの細胞ストレイナを通して脾臓または膝窩リンパ節を穏やかに破壊することによって、単細胞懸濁液を得た。赤血球を脾細胞用のACK溶解緩衝液(Quality Biological)で溶解した。細胞をカウントし、10% FBSおよび1%ペニシリン/ストレプトマイシン(全てLife Technologiesから)を補充したRPMI-1640中に再懸濁した。1×105個の細胞/ウェルを96ウェルマイクロプレートに播種し、2μg/100μlのSA、SA-IL4とともに氷上で30分間インキュベートした。PBSによる4回の洗浄後、細胞をウサギモノクローナル抗マウス血清アルブミン抗体(クローンEPR20195 abcam)とともに氷上で20分間さらにインキュベートした。PBSによる3回の洗浄後、細胞を1μg/ml AlexaFluor 647標識抗ウサギIgG抗体、抗B220抗体、抗CD3抗体、抗CD4抗体、抗CD8抗体、抗CD11c抗体、抗CD45抗体および抗F4/80抗体とともに氷上で20分間インキュベートした。以下に記述するように、細胞をフローサイトメトリーによって分析した。
EasySepマウスCD4+ T細胞分離キット(Stem Cell)を用いて、C57BL/6マウスの脾臓からマウスCD4+ T細胞を精製した。精製されたCD4+ T細胞(106個の細胞/ml)を、5μg/ml抗CD3抗体(クローン17A2, Bioxcell)でプレコーティングされ、可溶性2μg/ml抗CD28抗体(クローン37.51, BioLegend)を補充された6ウェルプレート中で2日間活性化した。培地は、10%熱不活化FBS、1%ペニシリン/ストレプトマイシンおよび50μM 2-メルカプトエタノール(Sigma Aldrich)を含有するIMDM (Gibco)であった。2日間の培養後、活性化CD4+ T細胞を50 ng/ml組換えマウスIL-2 (Peprotech)で3時間刺激して、IL-4Rα発現を誘導した。IL-2での刺激後、細胞を洗浄し、新鮮な培地中で3時間静置した。細胞を次に、96ウェルプレートに移入した(50,000個の細胞/ウェル)。示された量のwt IL-4またはSA-IL-4をCD4+ T細胞に37℃で15分間適用して、STAT6リン酸化を誘導した。細胞を、BD Phosflow Lyse/Fix緩衝液を用いて37℃で10分間直ちに固定し、次にBD Phosflow Perm Buffer IIIにより氷上で30分間透過処理した。Tyr641のリン酸化を認識するAlexaFluor 647抗pSTAT6抗体(クローンJ71-773.58.11, BD)で細胞を染色した。染色は暗所中にて室温(RT)で1時間実施した。細胞をBD LSRで取得し、FlowJo (Treestar)を用いてデータを分析した。pSTAT6+集団の平均蛍光強度(MFI)をサイトカイン濃度に対してプロットした。Prism (v8, GraphPad)を用いて、用量反応曲線を適合させた。
SPR測定は、Biacore X100 SPRシステム(GE Healthcare)で行った。マウスFcRn組換えタンパク質(Acro Biosystems)を製造元の指示にしたがって、C1チップ(GE Healthcare)上にアミンカップリングを介しておよそ200共鳴単位(RU)固定化した。SA-IL4を30μL/分でランニング緩衝液(0.01 M一塩基性無水リン酸ナトリウム, pH 5.8, 0.15 M NaCl)中において濃度を減少させながら流した。センサーチップをサイクルごとにPBS, pH 7.4で再生した。FcRnへのSA融合タンパク質の特異的結合を、参照として用いた非機能化チャネルと比較することによって計算した。BIAevaluationソフトウェア(GE Healthcare)を用いラングミュア結合速度論に実験結果を適合させた。
製造元の指示にしたがってEasySep(商標) Mouse Naive CD4+ T Cell Isolation Kit (STEMCELL Technologies)を用い、脾細胞からナイーブCD4+ T細胞を単離した。105個の細胞を96ウェルプレートにプレーティングし、3日間培養した。Th17誘導培地として、
wt IL-4またはSA-IL-4 (10μgのIL-4に相当)を雌性C57BL/6マウスに静脈内注射した。血液サンプルを注射後1分、10分、30分、1時間、2時間、4時間および24時間の時点でタンパク質低結合チューブに回収した。血漿中のIL-4濃度を、IL-4 Ready-Set-Go! Mouse Uncoated ELISAキット(Invitrogen)により製造元のプロトコルにしたがって測定した。
wt IL-4、SA-IL-4またはSA(P573K)-IL-4 (40μgのIL-4に相当)を健常なC57BL/6マウスに静脈内注射した。腰および上腕のLNならびに脾臓を注射後1時間、4時間および24時間で収集し、その後、cOmplete(商標)プロテイナーゼ阻害剤カクテル(Roche)を有するT-PER組織タンパク質抽出試薬(Thermo Scientific)中5000ビート/分で40秒間Lysing Matrix D and FastPrep-24 5G (MP Biomedical)を用いてホモジナイズした。ホモジナイゼーション後、サンプルを4℃で終夜インキュベートした。サンプルを遠心分離し(5000 g, 5分)、総タンパク質濃度およびIL-4濃度を、それぞれBCAアッセイキット(Thermo Fisher)およびIL-4 Mouse Uncoated ELISAキット(Invitrogen)を用いて分析した。同時に、Mouse Uncoated ELISAキット(Invitrogen)またはReady-SET-Go! ELISAキット(eBioscience)を製造元のプロトコルにしたがい用いて、LN抽出物中のサイトカインレベルを測定した。
蛍光標識されたwt IL-4およびSA-IL-4を作出するために、タンパク質を8倍モル過剰のDyLight 800 NHS ester (Thermo Fisher)を用いてRTで1時間インキュベートし、未反応の色素をZebaspinスピンカラム(Thermo Fisher)により製造元の指示にしたがって除去した。同等の蛍光を有する10μgのDyLight 800標識wt IL-4およびSA-IL-4をナイーブC57BL/6マウスへ静脈内注射した。4時間後、腸骨LNを、Xenogen IVIS Imaging System 100 (Xenogen)を用い以下の条件下で画像化した: f/ストップ: 2; 光学フィルタ励起745 nm; 励起800 nm; 露出時間: 5秒; 小ビニング。
上記のように、wt IL-4およびSA-IL-4をDyLight 594 NHSエステル(Thermo Fisher)で蛍光標識した。蛍光標識IL-4 (wt IL-4の場合には40μgおよびSA-IL-4の場合には同じ蛍光量)の静脈内注射1時間後に、マウスを殺処理した。マウスLNを採取し、PBS中2%のPFA中で終夜固定し、PBSで洗浄した。30%スクロース溶液中での終夜インキュベーションの後に、LNを最適切断温度(Optimum Cutting Temperature)コンパウンド中に包埋した。次に、クリオスタットを用いて5μmの凍結切片を切断した。次に切片をPBS中2%のBSAによりRTでブロッキングし、以下の一次抗体とともにRTで2時間インキュベートした: 10μg/mlのハムスター抗マウスCD3ε抗体(クローン: 145-2C11, BioLegend)抗体および2.5μg/mlのラット抗マウスPNAd (クローン: MECA-79, BioLegend)抗体。PBS-Tで洗浄した後に、組織を、以下の蛍光標識二次抗体を用いてRTで1時間染色した: Alexa Fluor 647ヤギ抗ハムスター(1:400, Jackson ImmunoResearch)およびAlexa Fluor 488ロバ抗ラット(1:400, Jackson ImmunoResearch)。組織を3回洗浄した後、4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール(DAPI; Thermo Fisher Scientific)を有するプロロングゴールド褪色防止用封入剤(Prolong gold antifade mountant)で覆った。CD3染色には倍率10倍でのイメージングにIX83顕微鏡(Olympus)を用い、PNAd染色には倍率20倍でのLeica SP8 3Dレーザー走査共焦点顕微鏡を用いた。ImageJソフトウェア(NIH)を用いて画像を処理した。
9~12週齢のC57BL/6幼若雌性マウスの背側の側腹にMOG35~55の完全フロイントアジュバント(CFA)乳濁液を皮下免疫し、続いて最初は免疫日に、次いで再び翌日に、PBS中の百日咳毒素(PTX)の腹腔内投与を行った。MOG35~55/CFA乳濁液およびPTXはHooke Laboratoriesから購入した。最初の免疫に続いて、EAEの重症度をモニターし、免疫化後8日目から毎日臨床スコアを測定した。臨床スコアは、処置群分けに対して盲検下でHooke Laboratories基準に基づきA.I.、M.N.またはA.S.によって決定された。IL-4、SA-IL-4、PBSを1日おきに、PBS 100μl中で腹腔内または皮下に(マウス背中に)投与した。FTY720 (1 mg/kg体重)を毎日経口投与した。
EAEマウスの胸椎および腰椎を採取し、胸腰椎接合部で切断した。組織を2% PFA中で終夜固定した。PBS洗浄後、Decalcifier II (Leica Biosystem)を用いて組織を終夜脱灰した。次に、組織をパラフィン中に包埋した。パラフィン包埋後、ブロックを5 mmの切片に切断した。脱パラフィンおよび再水和後、組織切片を標的回復溶液(S1699, DAKO)で処理し、蒸器中95℃超の温度で20分間加熱した。組織切片を抗マウスaMBP、abcam ab40390)とともに、湿度チャンバ中RTで1時間インキュベートした。TBS洗浄後、組織切片をビオチン化抗ラットIgG (10 mg/mL, Vector laboratories)とともにRTで30分間インキュベートした。抗原-抗体結合は、Eliteキット(PK-6100, Vector Laboratories)およびDAB (DAKO, K3468)システムによって検出された。スライドはEVOS FL Auto (Life Technologies)によって画像化された。
EAEマウスを免疫8日後から開始して、1日おきにPBS、wt IL-4、またはSA-IL-4 (10μgのIL-4に相当)で処置した。免疫13、17または34日後に、脊髄、脾臓、および腰のLNを採取した。2% FBS、2 mg/mLコラゲナーゼD (Sigma-Aldrich)および40μg/ml DNase I (Roche)を補充したダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中で脊髄組織を37℃で30分間消化した。70μmの細胞ストレイナを通して穏やかに破壊することによって、単細胞懸濁液を得た。脾臓の場合、血中の赤血球をACK溶解緩衝液(Quality Biological)で溶解した後に、フローサイトメトリー用の抗体染色を行った。以下の分子に対する抗体を用いた: 抗マウスCD3ε(145-2C11, BD Biosciences)、CD4 (RM4-5, BD Biosciences)、抗マウスCD8α(53-6.7, BD Biosciences)、抗マウスCD45 (30-F11, BD Biosciences)、CD44 (IM7, BD Biosciences)、CD62L (MEL-14, BD Biosciences)、F4/80 (T45-2342, BD Biosciences)、CD86 (GL1, BD Biosciences)、CD206 (C068C2, BioLegend)、Ly6G (1A8, BioLegend)、Ly6C (HK1.4, BioLegend)、CD11b (M1/70, BioLegend)、CD11c (HL3, BD Biosciences)、B220 (RA3-6B2, BioLegend)、PD-1 (29F.1A12, BD Biosciences)、PD-L1 (MIH7, BioLegend)、IL-23R (O78-1208, BD Biosciences)、IntegrinインテグリンαL (HI111, BD Biosciences)、インテグリンβ2 (M18/2, BD Biosciences)、インテグリンβ1 (HMb1-1, BD Biosciences)、インテグリンα4 (R1-2, BD Biosciences)、GM-CSF (MP1-22E9, BD Biosciences)、IL-17 (TC11-18H10.1, BD Biosciences)、IFNγ(XMG1.2, BD Biosciences)、TNFα(eBioscience, MP6-XT22)、およびRoRγt抗体(Q31-378, BD Biosciences)。MOG認識T細胞の検出の場合、T-Select I-Ab MOG35~55 Tetramer-PE (MBL International Corporation)またはMOG38~49 Tetramer-PE (NIH Tetramer Core Facility)を用いた。固定可能な生/死細胞の識別は、Fixable Viability Dye eFluor 455 (eBioscience)、Live/Dead Fixable Violet (eBioscience)、またはLive/Dead Fixable Aqua (eBioscience)を製造元の指示にしたがって用い実施した。染色は氷上で20分間行った。細胞内染色の場合、Cytofix/Cytoperm (BD Bioscience)を用いて4℃で20分間細胞を固定した。透過処理の場合、パーマ(perm)/洗浄緩衝液(BD Bioscience)を用い、細胞をパーマ/洗浄緩衝液中4℃で30分間染色した。洗浄段階の後、固定前に氷上で20分間、細胞を特異抗体で染色した。全てのフローサイトメトリー分析は、Fortessa (BD Biosciences)フローサイトメーターを用いて行い、FlowJoソフトウェア(Tree Star)を用いて分析した。
単細胞懸濁液をdLNおよび脾臓から作出した。サイトカイン産生の分析のために、5×105個のリンパ球および2×106個の脾細胞を96ウェル丸底プレートにプレーティングした。細胞を10μM MOG35~55ペプチド(Genscript)で刺激した。2時間後、GolgiPlug (ブレフェルジンA)およびGolgiStop (モネンシン)を製造元のプロトコルにしたがって添加し、細胞内サイトカインの分泌をブロックした。GolgiPlugおよびGolgiStopの添加から4時間後に、フローサイトメトリー用に細胞を染色した。固定の場合、Cytofix/Cytoperm (BD Bioscience)を4℃で20分間使用した。透過処理の場合、パーマ/洗浄緩衝液(BD Bioscience)を使用し、細胞をパーマ/洗浄緩衝液中4℃で30分間染色した。3日間の再刺激の場合、2.5×105個のリンパ球または1×106個の脾細胞を96ウェル丸底プレートにプレーティングした。細胞を10μM MOG35~55 (6時間培養、続いてフローサイトメトリーの場合)または100μg/ml MOGタンパク質(72時間培養の場合) (Anaspec)で刺激した。72時間後、Ready-Set-Go! Kit (Invitrogen)またはLEGEND MAXマウスGM-CSF ELISAキット(BioLegend)を用いたELISAによる分析のために上清を収集した。
C57BL/6マウスにPBS、wt IL-4、またはSA-IL4 (10μgのIL-4に相当)を静脈内注射した。2日後、マウスから収集した血液サンプルを、製造元の指示にしたがってCOULTER Ac・T 5diff CP血液分析器(Beckman Coulter)を用い分析した。肺および脾臓を採取し、秤量した。肺の水分含量は、FreeZone 6 Benchtop Freeze Dryer (Labconco)を用いて終夜凍結乾燥の前および後に秤量することにより決定された。PBS、wt IL-4、およびSA-IL-4を注射したマウスから収集した血清サンプルを、製造元の指示にしたがってBiochemistry Analyzer (Alfa Wassermann Diagnostic Technologies)を用い分析した。
実験群間の統計的有意差は、Prismソフトウェア(v6 GraphPad)を用いて決定された。一元配置分散分析とそれに続くテューキーのHSD事後検定を用いた場合、群間の分散はブラウンフォーサイス検定によって類似していることが分かった。単一比較の場合、両側スチューデントのt検定を用いた。記号*および**は、それぞれ0.05および0.01未満のP値を示す。
Claims (53)
- 細胞外マトリックス(ECM)親和性ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤を含む、組成物。
- 血清タンパク質に機能的に連結された抗炎症剤を含む、組成物。
- 抗炎症剤が抗炎症性抗体を含む、請求項1記載の組成物。
- 抗炎症性抗体が、TNF-α、IL-1、IL-5、IL-6、IL-6R、IL-12、IL-17A、IL-18、IFN-γ、GM-CSF、CD3、CD20、VLA-4、VLA-5、VCAM-1、TGF-β1、α4-インテグリン、α4β7-インテグリン、結合組織成長因子、血小板由来成長因子、プラスミノゲン活性化因子阻害因子-1、またはインスリン様成長因子結合タンパク質を特異的に標的とする抗体を含む、請求項3記載の組成物。
- 前記抗体がヒト化抗体またはキメラ抗体である、請求項3記載の組成物。
- 前記抗体が、アダリムマブ、セルトリズマブ、インフリキシマブ、ゴリムマブ、トシリズマブ、リツキシマブ、ウステキヌマブ、ナタリズマブ、ベドリズマブ、セクキヌマブ、またはイキセキズマブを含む、請求項4または5記載の組成物。
- 抗炎症剤が抗TNF-α抗体を含む、請求項4または6記載の組成物。
- 抗炎症剤が抗炎症性サイトカインポリペプチドを含む、請求項1または2記載の組成物。
- 前記サイトカインポリペプチドが、IL-4、IL-1ra、IL-5、IL-10、IL-11、IL-23、IL-35、IL-36ra、IL-37、インターフェロン-β、TGF-β1、TNF受容体I、およびTNF受容体IIからのポリペプチドを含む、請求項2または8記載の組成物。
- 前記サイトカインポリペプチドが、IL-4からのポリペプチドを含む、請求項9記載の組成物。
- 前記サイトカインポリペプチドが、IL-10からのポリペプチドを含む、請求項9記載の組成物。
- 抗炎症剤が、CD200からのポリペプチドを含む、請求項1または2記載の組成物。
- CD200ポリペプチドが、CD200の細胞外ドメインを含む、請求項12記載の組成物。
- ECM親和性ペプチドが、コラーゲン結合ドメインを含む、請求項1または3~11のいずれか一項記載の組成物。
- 前記ポリペプチドが、デコリンまたはフォンヴィルブランド因子(VWF)からのコラーゲン結合ドメインを含む、請求項14記載の組成物。
- ECM親和性ペプチドが、胎盤成長因子-2 (PlGF-2)またはCXCL-12γからのペプチドを含む、請求項1または3~10のいずれか一項記載の組成物。
- ECM親和性ペプチドが、SEQ ID NO: 1~17、47、もしくは52のうちの1つと少なくとも85%同一であるペプチドまたはSEQ ID NO: 1~17、47、もしくは52のうちの1つの断片と少なくとも85%同一であるペプチドを含む、請求項1または3~16のいずれか一項記載の組成物。
- 細胞外マトリックス(ECM)親和性ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤が、該ペプチドまたは該剤に機能的に連結された血清タンパク質をさらに含む、請求項1または3~17のいずれか一項記載の組成物。
- 血清タンパク質が、前記ペプチドに機能的に連結されている、請求項18記載の組成物。
- 血清タンパク質が、ペプチド結合を通じて前記ペプチドに機能的に連結されている、請求項2または19記載の組成物。
- 血清タンパク質が、アルブミンを含む、請求項2または18~20のいずれか一項記載の組成物。
- 血清アルブミンタンパク質のアミノ-アミノ近位(amino-amino proximal)にあるコラーゲン結合ドメインと、血清アルブミンタンパク質のカルボキシ近位にあるIL-10ポリペプチドとを含む、請求項21記載の組成物。
- 前記ペプチドが、抗炎症剤に共有結合している、請求項1または3~21のいずれか一項記載の組成物。
- 前記ペプチドが、二官能性リンカーを通じて抗炎症剤に架橋結合されている、請求項1または3~23のいずれか一項記載の組成物。
- 前記ペプチドが、ペプチド結合を通じて抗炎症剤に連結されている、請求項1または3~23のいずれか一項記載の組成物。
- ペプチドと抗炎症剤またはサイトカインポリペプチドとの比が、約1:1~5:1である、請求項1~25のいずれか一項記載の組成物。
- 細胞外マトリックス(ECM)親和性ペプチドに機能的に連結された第2の抗炎症剤をさらに含む、請求項1~26のいずれか一項記載の組成物。
- 請求項1~27のいずれか一項記載の組成物を対象に投与する段階を含む、対象における自己免疫状態または炎症状態を処置するための方法。
- 自己免疫状態または炎症状態が、炎症性腸疾患、特発性肺線維症、多発性硬化症、1型糖尿病、クローン病、乾癬、急性炎症、慢性炎症、神経炎症、関節炎、関節リウマチ、線維症、感染症、アレルギー、炎症治療に関連する有害事象、および炎症治療に関連する炎症性疾患を含む、請求項28記載の方法。
- 自己免疫状態または炎症状態が、多発性硬化症を含む、請求項29記載の方法。
- 自己免疫状態または炎症状態が、関節リウマチを含む、請求項29記載の方法。
- 前記組成物が全身に投与される、請求項28~31のいずれか一項記載の方法。
- 前記組成物が静脈内注射によって投与される、請求項32記載の方法。
- 前記組成物が局所的に投与される、請求項28または29記載の方法。
- 前記組成物が、炎症部位に投与されるか、または炎症部位に隣接して投与される、請求項34記載の方法。
- 前記ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤を含む組成物の投与用量が、該ペプチドなしで投与された該抗炎症剤の最小有効用量よりも少ない、請求項28~35のいずれか一項記載の方法。
- 前記ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤を含む組成物の投与用量が、同じ投与経路により該ペプチドなしで投与された該抗炎症剤の最小有効用量よりも少ない、請求項28~35のいずれか一項記載の方法。
- 前記ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤の投与用量が、該ペプチドなしで投与された該抗炎症剤の最小有効用量よりも少なくとも10%少ない、請求項37記載の方法。
- 対象が、抗炎症剤、抗炎症療法、または自己免疫療法で以前に処置されている、請求項28~38のいずれか一項記載の方法。
- 対象が、以前の処置に非応答性であると決定されている、請求項39記載の方法。
- 対象が、炎症性疾患についても自己免疫疾患についても以前に処置されていない、請求項28~38のいずれか一項記載の方法。
- 追加の炎症療法または自己免疫療法を施すことをさらに含む、請求項28~41のいずれか一項記載の方法。
- 細胞外マトリックス(ECM)親和性ペプチドに機能的に連結された第2の抗炎症剤の投与をさらに含む、請求項28~42のいずれか一項記載の方法。
- 細胞外マトリックス(ECM)親和性ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤を含む組成物を対象に投与する段階を含む、対象における炎症を低減するための方法。
- 炎症が、自己免疫状態または炎症状態に起因し、該自己免疫状態または炎症状態が、炎症性腸疾患、特発性肺線維症、多発性硬化症、1型糖尿病、関節炎、または関節リウマチを含む、請求項44記載の方法。
- 自己免疫状態または炎症状態が、多発性硬化症を含む、請求項45記載の方法。
- 自己免疫状態または炎症状態が、関節リウマチを含む、請求項45記載の方法。
- ECM親和性ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤が、抗TNFαにコンジュゲートされたコラーゲン結合ドメインを含む、請求項44~47のいずれか一項記載の方法。
- ECM親和性ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤が、IL-4に機能的に連結されたvWF-A3を含む、請求項44~47のいずれか一項記載の方法。
- ECM親和性ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤が、抗TGF-βにコンジュゲートされたコラーゲン結合ドメインを含む、請求項44~47のいずれか一項記載の方法。
- 前記組成物が全身に投与される、請求項44~50のいずれか一項記載の方法。
- 前記組成物が局所的に投与される、請求項44~50のいずれか一項記載の方法。
- ECM親和性ペプチドに機能的に連結された抗炎症剤の投与用量が、該ペプチドなしで局所的に投与された該抗炎症剤の最小有効用量よりも少なくとも20%少ない、請求項52記載の方法。
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