DD147368A1 - METHOD OF INCREASING THE ACTIVITY OF SEA-RETROSPECT PEROXIDASE - Google Patents
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Abstract
Verfahren zur Aktivitaetssteigerung von Meerrettich-Peroxidase dient der Erhoehung des Chromogenumsatzes. Das Verfahren findet Anwendung im Bereich der diagnostischen Medizin bei allen Nachweismethoden, bei denen Peroxidase in eine katalytische Reaktion eingeschaltet ist. Weitere Anwendungsbeispiele mit gleichen Methoden sind Chemie, Biochemie, Lebensmittelchemie, Biologie, Immunbiologie, Veterinaermedizin. Ziel der Erfindung ist, die untere Nachweisgrenze fuer Peroxidase zu senken, die analytische Empfindlichkeit dieser Reaktion zu erhoehen oder den Peroxidaseeinsatz bei gleicher Empfindlichkeit zu reduzieren. Die Aufgabe der Erfindung, den Substratumsatz zu steigern, indem die Denaturierung des Enzyms waehrend der Reaktion durch neutrale Detergenzien verzoegert wird, wird geloest durch Zugabe von Polyoxyaethylen-Sorbitolester oder durch Polyoxyaethylen-Octylphenol zur Substratloesung. Die Konzentration der Detergenzien betraegt vorzugsweise 1 ml (= 1,11 g/I) und die Reaktionstemperatur vorzugsweise 25 Grad C, wobei ferner der pH-Wert 5,0 und die Reaktionsdauer 60 bis 120 min betragen.A process for increasing the activity of horseradish peroxidase serves to increase the chromogen conversion. The method finds application in the field of diagnostic medicine in all detection methods in which peroxidase is turned on in a catalytic reaction. Other application examples with the same methods are chemistry, biochemistry, food chemistry, biology, immunobiology, veterinary medicine. The aim of the invention is to lower the lower detection limit for peroxidase, to increase the analytical sensitivity of this reaction or to reduce the peroxidase use with the same sensitivity. The object of the invention to increase the substrate turnover by delaying the denaturation of the enzyme during the reaction by neutral detergents is achieved by adding polyoxyethylene sorbitol ester or by polyoxyethylene octylphenol to the substrate solution. The concentration of the detergents is preferably 1 ml (= 1.11 g / l) and the reaction temperature is preferably 25 ° C, the pH being 5.0 and the reaction time being 60 to 120 min.
Description
118-1-118-1-
Verfahren· zur Aktivitätssteigerung von Meerrettich-PeroxidäseProcess for increasing the activity of horseradish peroxide cheese
Anwendungsgebiet dor ErfindunqField of application of the invention
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Aktivitätssteigerung von Peroxidase und ist überall dort anwendbar, wo eine durch Peroxidase katalysierte Substratreaktion vermessen wird«, Es kann somit Anwendung finden in der klinischen Biochemie{ Biochemie { Nahrungsmittelchemie, Immunologie, Biologie, Pathologie, Pharmakologie auf den Gebieten Enzymologie, Histochemie und Enzymimmuntechnikene The invention relates to a process for increasing the activity of peroxidase and is applicable wherever a peroxidase-catalyzed substrate reaction is measured. It can thus find application in clinical biochemistry { biochemistry { food chemistry, immunology, biology, pathology, pharmacology in the fields of enzymology , Histochemistry and enzyme immuno techniques e
Peroxidase katalysiert folgende Reaktion:Peroxidase catalyzes the following reaction:
D hat die Funktion des Protonendonators und wird im Reaktionsablauf oxidiert« Als Protonendonator setzt man üblicherweise Farbstoffe (Chroroogene) ein, die im oxidierten Zustand eine höhere Extinktion aufweisen (Farbentwicklung oder Farbvermehrung)«, Dabei entscheidet auch der Extinktionskoeffizient des oxidierten Farbstoffes über die Stärke der entstehenden Farbe und damit über die Empfindlichkeit« Zur Empfindlichkeitssteigerung wurden deshalb ständig neue Protonendonstoren entwickelt mit iramsr größeren Extinktionskoeffizienten irn oxidierten Zustand,, wie 4,4~Diaminodiphenyl (Benzidin), 2-Methoxyphenol (Guajakol), 3,3-Dimethoxybenzidin (oriho-Dianisidin), ortho-Phenylendiarain, 2,2-Azino-di-(3-athyl«.benzthiazolin-sulfonat(6)) (ABTS)* ' .'..-..'D has the function of the proton donor and is oxidized in the course of the reaction. "The proton donor is usually dyes (Chroroogene), which in the oxidized state have a higher extinction (color development or color reproduction)., It also determines the extinction coefficient of the oxidized dye on the strength of Therefore, to increase sensitivity, new proton donors were constantly being developed with irramsr larger extinction coefficients in the oxidized state, such as 4,4'-diaminodiphenyl (benzidine), 2-methoxyphenol (guaiacol), 3,3-dimethoxybenzidine (oriho- Dianisidine), ortho-phenylenediuria, 2,2-azino-di (3-ethylbenzthiazoline-sulfonate (6)) (ABTS) * '.'..- ..'
Gleichzeitig als Alternative wurde versucht, die Reaktionsbedingungen zu optimieren, um dadurch den Substraturasatz zu erhöhen·At the same time as an alternative, it was tried to optimize the reaction conditions, thereby increasing the substrate composition.
Als Aktivatoren für die Peroxidasereaktion wurden Ammonium-, Zyanidionen (FRIDOVICH, 0. : 3. Biol. Chemie 238, 3921 (1963)) sowie Manganionen (KLAPPER, M. H. und HACKETT, D. P.: 3. Biol· Chemie 238, 3736 (1963)) verwendet. Sie wirken aber nur bei hohen pH-Werten, wie pH 8 oder pH 9, weit außerhalb der optimalen Reaktionsbedingungen, die bei pH 5 liegen, aktivierend unter Verwendung von ortho-Dianisidin und ortho-Phenylendiamin. Bei Einsatz von Guajakol als Chromogen sind sie wirkungslos. Eine Aktivierung aer Peroxidasereaktion unter optimalen Reaktionsbedingungen ist bisher nicht bekannt.As activators for the peroxidase reaction, ammonium, cyanide ions (FRIDOVICH, 0.: 3. Biol. Chemie 238, 3921 (1963)) and manganese ions (KLAPPER, MH and HACKETT, DP: 3. Biol. Chemie 238, 3736 (1963) ) used. However, they act only at high pHs, such as pH 8 or pH 9, far beyond the optimal reaction conditions, which are at pH 5, activating using ortho-dianisidine and ortho-phenylenediamine. When using guaiacol as chromogen they are ineffective. Activation aer peroxidase under optimal reaction conditions is not known.
Nach GALLATI, H.: 0. Clin. Chem. Clin. Biochem. 15^ 699 (1977) und MAEHLY, A. C, in: Methods in Enzymology, New York, 1955, Bd. 2, 801, ist ein stabiler Komplex zwischen Enzym und Η20« ursächlich für die zunehmende Enzymdenaturierung während der Reaktion und führt dazu, daß in Abhängigkeit von der HpOp-Konzentration nach 30 bis 60 Minuten nur noch unbedeutende Substrat« mengen umgesetzt und entsprechend nur noch geringfügige Farbsteigerungen erzielt werden.According to GALLATI, H .: 0. Clin. Chem. Clin. Biochem. 15: 699 (1977) and MAEHLY, A.C., in: Methods in Enzymology, New York, 1955, vol. 2, 801, is a stable complex between enzyme and Η 2 O 'cause of increasing enzyme denaturation during the reaction and As a result, depending on the HpOp concentration, only insignificant amounts of substrate are converted after 30 to 60 minutes, and correspondingly only slight color increases are achieved.
Ziel der Erfindung ist es, die untere Nachweisgrenze für Peroxidase zu senken und die analytische Empfindlichkeit der Methode zu steigern.The aim of the invention is to lower the lower detection limit for peroxidase and to increase the analytical sensitivity of the method.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, den Substratumsatz durch Peroxidase zu steigern, indem die Denaturierung des Enzymes während der Reaktion durch neutrale Detergenzien verzö-, gert wird. Diese Aufgabe wird dadurch gelöst, indem die Substratlösung mit neutralen Detergenzien (wie z. B. der Substratklasse Polyoxyäthylene als Sorbitolester oder Octylphenole) versetzt wird.The object of the invention is to increase the conversion of substrate by peroxidase by delaying the denaturation of the enzyme during the reaction by neutral detergents. This object is achieved by admixing the substrate solution with neutral detergents (such as, for example, the substrate class polyoxyethylenes as sorbitol ester or octylphenols).
Dio Detergentien werden in flüssiger Form {mit der Dichte ifli g/ml bei 20 0C) der Substratlösung.in einem Konzentrationsbsrsich von 0,01 ml/1 bis 10 ml/1, vorzugsweise 1 ml/1 beigefügt (Abbe I)* Dio Temperaturen bei der Umsetzung von Substratlösiing mit Detergenzien unter katalytischer Wirkung von Peroxidase betragen 4 0C bis 40 0C, vorzugsweise 25 0C, Bei einer Reaktionszeit von 1 Stunde erwies sich, daß sich der Inaktivierungsschutz durch neutrale Detergenzien mit steigender Reaktionstemperatur vergrößert (Abbe 2, 3)e Die optimale Reaktionstemperatur der Peroxidase wird bei definierter Reaktionszeit und HpOg-Konzentration durch Detergenzien zu höheren Temperaturen hin verschoben (Abb, 4). Die Grenzen der Temperatursteigerung sind durch andere verfahrensspezifische Aspekte auf 40 C gesetzt« Die Aktivitätsdifferenz zwischen Substratlösung allein und mit Detergenzlenzusatz wird mit zunehmender Reaktionsdauer größer (Äbbe 5). Dabei führt der durch Detergenzien bewirkte Inaktivierungsschutz zu einer linearen Beziehung zwischen Enzymkonzentration Und Enzymaktivität« Die optimal ermittelte Zeit für einen ausreichenden Extinktionszuwachs beträgt 2 he Die Aktivitätssteigerung ist unabhängig vom eingesetzten Chromogen, unterscheidet sich jedoch in ihrem Ausmaß bei όοη für jedes Chromogen optimal ermittelten Substratge« mischen· Neben freier Peroxidase ist auch an Proteine kovalent gebundene Peroxidase durch Detergenzien aktivierbar (z. Be Peroxidase gekoppelt an Antikörper oder an Antigene)»Dio detergents are a Konzentrationsbsrsich of 0.01 ml / 1 to 10 ml / 1, preferably 1 ml / 1 added in liquid form with the density of {f i li g / ml at 20 0 C) of Substratlösung.in (fig e I ) Dio temperatures in the implementation of Substratlösiing with detergents under catalytic action of peroxidase are 4 0 C to 40 0 C, preferably 25 0 C, with a reaction time of 1 hour proved that the inactivation by neutral detergents increases with increasing reaction temperature (Fig e 2, 3) e The optimal reaction temperature of the peroxidase is shifted by detergents to higher temperatures at a defined reaction time and HpOg concentration (Fig. 4). The limits of the temperature increase are set to 40 C by other process-specific aspects. "The difference in activity between substrate solution alone and with addition of detergent additive increases with increasing reaction time (Abb e 5). Here, the Inaktivierungsschutz caused by detergents results in a linear relationship between enzyme concentration and enzyme activity "Time optimally determined for a sufficient Extinktionszuwachs is 2 h e The increase in activity is independent of the chromogen, however optimally determined Substratge differs in magnitude at όοη for each Chromogen "mix · in addition to free peroxidase is also to proteins covalently bound peroxidase activated by detergents (eg. B e peroxidase coupled to antibodies or antigens)»
Ausführungsbeispieleembodiments
Jeweils 10 ng gereinigter Peroxidase (durch entsprechende Verdünnung eingestellt) mit Reinheitszahl 2,7, spezifische Aktivität 535 ΙΕ/mg werden in 50 ml phosphatgepufferter Kochsalzlösung pH 7,2 gelöst und reagieren mit 1,45 ml Substratlösung A, die folgende Zusammensetzung aufweist (dient als Vergleichslö-'sung):Each 10 ng of purified peroxidase (adjusted by appropriate dilution) with a purity of 2.7, specific activity 535 ΙΕ / mg are dissolved in 50 ml of phosphate buffered saline pH 7.2 and react with 1.45 ml of substrate solution A, which has the following composition (serves as comparison solution):
171 IS171 IS
0,60 ml Azetatpuffer 1 molar pH 5,0 0,60 ml H2O2 (66,0 mMol/1 aqua dest.) 0,50 ml o-Dianisidin (6 mg/0,5 ml Methanol) 58,80 ml H2O0.60 ml acetate buffer 1 molar pH 5.0 0.60 ml H 2 O 2 (66.0 mmol / 1 distilled water) 0.50 ml o-dianisidine (6 mg / 0.5 ml methanol) 58.80 ml H 2 O
60,50 ral Gesamtvolumen60.50 ral total volume
und 1,45 ml Substratlösung B, die sich wie folgt zusammensetzt;and 1.45 ml Substrate Solution B, composed as follows;
0,60 ml Azetatpuffer 1 molar pH 5,0 0,60 ml H2O2 (66,0 mMo1/1 aqua dest.) 0,50 ml o-Dianisidin (6 mg/0,5 ml Methanol) 58,74 ml H2O .0.60 ml acetate buffer 1 molar pH 5.0 0.60 ml H 2 O 2 (66.0 mmol / l aqua dest.) 0.50 ml o-dianisidine (6 mg / 0.5 ml methanol) 58.74 ml H 2 O.
0,06 ml Polyoxyäthylen-Sorbitolester0.06 ml of polyoxyethylene sorbitol ester
60,50 ml Gesamtvolumen60.50 ml total volume
Die Reaktionstemperatur betrug 20 C# Die Extinktionsbestimmung erfolgte alle 30 Minuten nach Reaktionsstop mit 10 XjI einer 5n HCl am Spektralphotometer bei einer Wellenlänge Λ « 403 nm« Die Produktion von oxidiertem Chromogen durch Peroxidase beim Umsatz der Substratlösung mit Polyoxyäthylen-Sorbitolester (Lösung B) betrug nach 120 Minuten Reaktionszeit das 2,7fache der beim Umsatz des Substratgemisches ohne Detergenz (Lösung A). Die Extinktionsmessungen nach den verschiedenen Zeitintervallen sind in Tabelle 1 aufgeführt.The reaction temperature was 20 C # The extinction was determined every 30 minutes after the reaction stop with 10 XjI a 5n HCl on the spectrophotometer at a wavelength Λ «403 nm« The production of oxidized chromogen by peroxidase in the conversion of the substrate solution with polyoxyethylene sorbitol (solution B) after 120 minutes of reaction time, 2.7 times the conversion of the substrate mixture without detergent (solution A). Extinction measurements at the various time intervals are shown in Table 1.
Ohne Detergenzienzusatz beträgt die Enzymaktivität, gemessen an der Extinktionsänderung pro Zeitintervall innerhalb der zweiten Stunde Reaktionszeit nur noch 11 % der Aktivität innerhalb der ersten 60 Minuten. Mit Detergenzienzusatz ist die Enzymaktivität innerhalb der ersten 60 Minuten l,9fach höher als ohne Detergenzienzusatz und sinkt innerhalb der zweiten Stunde lediglich auf 67 % des Einstundenwertes. Der Charakter. der Reaktionskinetik nähert sich unter den aufgeführten Reaktionsbedingungen durch den Detergenzienzusatz einer Reaktion 0, Ordnung (Abb. 5).Without addition of detergent, the enzyme activity, measured by the change in extinction per time interval within the second hour of reaction time, is only 11 % of the activity within the first 60 minutes. With addition of detergent, the enzyme activity within the first 60 minutes l, 9 times higher than without detergent additive and within the second hour only drops to 67 % of the one-hour value. The character. The reaction kinetics approached under the listed reaction conditions by the detergent addition of a reaction 0, order (Figure 5).
.-ι.-Ι
'i'i
Beispiel 2: . .Example 2:. ,
Deweils 5 ng Peroxidase-IgG-Konjugat, hergestellt durch Glu~ taraldehydvernetzung nach der Zweischrittmethode, gelöst in 50 AiI phosphatgepufferter Kochsalzlösung reagierten mit .500 All Substratlösung A und Substratlösung B (siehe Beispiel l)c Dia Extinktionsmeosung beider Ansätze erfolgte alle 30 Minuten nach Reakticnsstop mit lOxUl einer 5n HCl am Spektralphotometer bei einer Wellenlänge A = 403 nm.The 5 ng peroxidase-IgG conjugate prepared by glutaraldehyde crosslinking by the two-step method dissolved in 50 μl of phosphate buffered saline reacted with .500 All Substrate Solution A and Substrate Solution B (see Example 1). C Dia Extinction of both batches occurred every 30 minutes after reactivity stop with lOxUl of a 5n HCl on the spectrophotometer at a wavelength A = 403 nm.
Ohne Detergenzienzusatz beträgt die Enzymaktivität, gemessen an der Extinktionsänderung pro Zeitintervall innerhalb der zweiten Stunde nur noch 7 % der Aktivität innerhalb der ersten 60 Minuten, Mit Detergenzienzusatz ist die Enzymaktivität innerhalb der ersten 60 Minuten 3,2fach höher als ohne Detergentien» zusatz und sinkt innerhalb der zweiten Stunde lediglich auf 40 % des Einstundenwertes abe Die Extinktion der umgesetzten Substratlösung mit Detergenzienzusatz beträgt nach 120 Minuten Reaktionszeit das 4,2fache der Extinktion der umgesetzten Substratlösung ohne Detergenzienzusatz (Abb. 6)„Without addition of detergent, the enzyme activity, measured by the change in absorbance per time interval within the second hour, is only 7 % of the activity within the first 60 minutes. With detergent addition, the enzyme activity is 3.2 times higher in the first 60 minutes than without detergent addition and decreases within the second hour, only 40% of Einstundenwertes e from the absorbance of the reacted substrate solution is Detergenzienzusatz after 120 minutes of reaction time 4.2 times the absorbance of the reacted substrate solution without Detergenzienzusatz (Fig. 6) "
1 7111 711
Abb. 1 - Einfluß der Detergenzienkonzentration im Reaktionsgemisch auf die Aktivität gleicher Enzymkonzentration bei verschiedenen Reaktionszeiten (Reaktionstemperatur T = 25 0C), K= Kontrolle ohne DetergenzienFig. 1 - Influence of the detergent concentration in the reaction mixture on the activity of the same enzyme concentration at different reaction times (reaction temperature T = 25 0 C), K = control without detergents
Abb. 2 - Oxidation von Chromogen (o-Dianisidin) durch Meerrettich-Peroxidase (1 ng Peroxidase/Meßansatz) in Abhängigkeit von der Reaktionszeit bei verschiedenen Reaktionstemperaturen. Kein Zusatz von Detergenzien zum Reaktionsgemisch.Fig. 2 - Oxidation of chromogen (o-dianisidine) by horseradish peroxidase (1 ng peroxidase / measurement batch) as a function of the reaction time at different reaction temperatures. No addition of detergents to the reaction mixture.
Abb. 3 - Oxidation von Chromogen (o-Dianisidin) durch Meerrettich-Peroxidase (1 ng Peroxidase/Meßansatz) in Abhängigkeit von der Reaktionszeit bei verschiedenen Reaktionstemperaturen. Zusatz von 0,1 ml Tween (121 zug) zu 100 ml Reaktionsgemisch.Fig. 3 - Oxidation of chromogen (o-dianisidine) by horseradish peroxidase (1 ng peroxidase / measurement batch) as a function of the reaction time at different reaction temperatures. Add 0.1 ml of Tween (121 dc) to 100 ml of reaction mixture.
Abb. 4 - Oxidation von Chromogen durch Meerrettich-Percxidase (1 ng Peroxidase/Meßansatz) in Abhängigkeit von der Reaktionstemperatur bei verschiedenen Reaktionszeiten.Fig. 4 - Oxidation of chromogen by horseradish percxidase (1 ng peroxidase / measurement batch) as a function of the reaction temperature at different reaction times.
ο ο Reaktionsgemisch ohne Zusatz von ο ο reaction mixture without addition of
Detergenziendetergents
Φ'» Reaktionsgemisch mit Zusatz vonΦ '»Reaction mixture with added
Polyoxyäthylen-Sorbitolester (0,1 ml/100 ml)Polyoxyethylene sorbitol ester (0.1 ml / 100 ml)
_ ^ _ __ __ ___ __ Verbindungslinie der Reaktions-_ ^ _ __ __ ___ __ connecting line of the reaction
optima der Peroxidase in Reaktionsgeraischen ohne Detergenzien und mit DetergenzienOptima of the peroxidase in Reaktionsgeraischen without detergents and with detergents
Abb„ 5 - Enzymkinetik gleicher HRP-Konzentrationen (1 ng Peroxidase/Meßansatz}Fig. 5 - Enzyme kinetics of equal HRP concentrations (1 ng peroxidase / assay rate)
Reaktionsbedingungen; pH-Wort = 5,0Reaction conditions; pH word = 5.0
i-LOg-Konzentration = 0#65 mftol/1i-LOg concentration = 0 # 65 mftol / 1
T = 25 0CT = 25 ° C.
o~~—=—ο Reaktionsgemisch mit Detergenzieno ~ ~ - - - ο Reaction mixture with detergents
(1 ml Polyoxyäthylen-Sorbitolester/1 Reaktionsgemisch) .(1 ml polyoxyethylene sorbitol ester / 1 reaction mixture).
0——«-ο Reaktionsgemisch ohne Zusatz von Detergenzien 0 - «- ο Reaction mixture without addition of detergents
Abb« 6 - Enzymkinetik gleicher Konjugatkonzentrationen (5 ng Konjugat/Meßansatz) Reaktionsbedingungen: pH-Wert =5,0Fig. 6 - Enzyme kinetics of equal conjugate concentrations (5 ng conjugate / assay) Reaction conditions: pH = 5.0
= 0,65 mMol/1= 0.65 mmol / l
T β 25 0CT β 25 0 C
o Reaktionsgemisch mit Detergenzien ,(1 ml Polyoxyäthylen-Sorbitolester/lo Reaction mixture with detergents, (1 ml polyoxyethylene sorbitol ester / l
Reaktionsgemisch) β Reaktionsgemisch ohne Zusatz von Deter-Reaction mixture) β reaction mixture without addition of detergent
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---|---|---|---|
DD21711879A DD147368A1 (en) | 1979-11-23 | 1979-11-23 | METHOD OF INCREASING THE ACTIVITY OF SEA-RETROSPECT PEROXIDASE |
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DD21711879A DD147368A1 (en) | 1979-11-23 | 1979-11-23 | METHOD OF INCREASING THE ACTIVITY OF SEA-RETROSPECT PEROXIDASE |
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DD (1) | DD147368A1 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4931385A (en) * | 1985-06-24 | 1990-06-05 | Hygeia Sciences, Incorporated | Enzyme immunoassays and immunologic reagents |
WO1994012620A1 (en) * | 1992-12-01 | 1994-06-09 | Novo Nordisk A/S | Enhancement of enzyme reactions |
WO1994012619A1 (en) * | 1992-12-01 | 1994-06-09 | Novo Nordisk A/S | Enhancement of enzyme reactions |
WO1994012621A1 (en) * | 1992-12-01 | 1994-06-09 | Novo Nordisk | Enhancement of enzyme reactions |
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1979
- 1979-11-23 DD DD21711879A patent/DD147368A1/en unknown
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